JP7094880B2 - 代表診断法 - Google Patents
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Description
本出願は、2016年11月4日に出願された米国仮特許出願第62/418146号;2016年6月24日に出願された米国仮特許出願第62/354622号;2016年1月15日に出願された米国仮特許出願第62/279405号及び2015年11月6日に出願された米国仮特許出願第62/252153号の出願日の利益を主張し、その開示はその全体が出典明示により援用される。
用語「オルガネラ」は、天然及び合成のオルガネラを含む。
本開示は、代表試料を提供することができない先行技術の臨床サンプリング方法の限界に取り組むものである。代表試料の特徴は、より大きい実体又は試料の重要な変数及び特徴と同等である。選択的サンプリングの現在の実務は、TNMステージ分類系の要件を満たすために組織試料を収集することを目的とする。TNMステージ分類系のための試料は、腫瘍を含有する除去された臓器の正常な解剖を反映するために特異的に採取される。TNM系の予後ステージ分類にとって重要であるが、この選択的サンプリング方法は、偏りのある腫瘍試料、又は腫瘍塊を通して見出される遺伝子及び表現型の多様性を含有しない試料を生産する。
本開示はまた、本明細書に記載の代表試料又はホモジネート組成物から代表データを生成することにも関する。一態様では、代表データを生成するための方法は、本明細書に記載のホモジネート組成物を分析することを含む。さらなる態様では、分析は、ホモジネート組成物中のマーカーに関する定量的及び/又は定性的データを生成することを含む。マーカーと関連するデータを取得するための任意の適切な方法を使用することができ、そのようなものの非限定例としては、単一細胞配列決定、単一核配列決定、フローサイトメトリー、免疫組織化学染色、ヘマトキシリン及びエオシン染色、全ゲノム配列決定、ハイスループット配列決定、質量分析、DNAマイクロアレイ、又はその組合せによる測定が挙げられる。
一実施態様では、本開示は、組織試料の表現型プロファイルを決定する方法であって、ホモジネート組成物の細胞構造を分析することを含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにそれからなる、方法に関する。一態様では、表現型プロファイルについて分析することができる細胞構造は、細胞クラスター、個々の細胞、細胞の断片、オルガネラ、ペプチド、核酸、脂質、代謝物、又はその組合せを含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにそれからなる。別の態様では、細胞構造は、単一の細胞又は核を含み、単一の細胞又は核はインタクトである。一部の実施態様では、分析は、細胞構造の数、型、状態、パーセンテージ、及び/又は発現の分析を含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにそれからなる。別の態様では、分析は、単一細胞分析、単一核分析、単一オルガネラ分析、又はその組合せを含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにそれからなる。一態様では、細胞構造の状態は、増殖、アポトーシス、壊死、移動、上皮-間葉移行(「EMT」)、有糸分裂、細胞周期停止、S期、老化、及び/又は分化を含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにそれからなる。別の態様では、分析は、ホモジネートに由来するマーカーの分析を含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにそれからなる。
本開示は、別の態様では、本開示の方法を使用して生成された代表データに基づいて有効な治療レジメンを選択することによって疾患を治療する方法に関する。患者に由来する正確な量又は型の情報を用いて、患者に関する転帰を達成するための最良の応答及び最高の安全マージンのために治療レジメンを調整することができる。さらに、この情報により、患者は、他の多くの利益、例えば、より早期の診断、リスク評価、及び有効な治療を受けることによって、健康管理の質を有意に改善することもできる。
臨床関連マーカー又はバイオマーカーに関するデータ又は情報は、病状の尤度の指標を提供することができる。本開示における代表データを使用して、臨床関連マーカー、特に、いかなる病状とも以前に関連していなかったものを同定することができる。
一度、代表試料が構築されたら、試料を、さらなる加工及び/又は分析のために輸送することができる。したがって、本開示は、一部の実施態様では、ホモジネート組成物を保存する方法であって、前記組成物と、非限定例が本明細書に提供される、有効量の保存試薬とを混合することを含むか、又はあるいはそれから本質的になるか、又はさらにはそれからなる、方法にも関する。
本開示は、一般的には、臨床標本、特に、臨床腫瘍学における使用のための臨床標本における、不均一性、例えば、腫瘍不均一性の問題に取り組むための、例えば、全臓器、腫瘍、リンパ節、転移、又はその組合せの代表組織試料を生成するための方法の開発、及び様々な診断及び治療方法におけるそのような代表試料又はその一部の使用、並びに診断及び療法、特に、腫瘍学における使用のためのそのような代表試料を含む組成物に関する。
さらに、本開示は、前記方法の結果(稀な遺伝的及び/若しくはエピジェネティックな事象、稀な細胞の検出など)を使用すること、又は対象を治療するための適切な治療レジメンの選択においていくつかの標準的な診断アッセイを使用するさらなる分析にとって好適な代表試料を調製するための腫瘍試料のホモジナイズを含む、前記方法の何れかによって生産される組成物を企図する。治療レジメンは、化学療法、免疫モジュレーター投与、照射、サイトカイン投与、外科手術、又はその組合せの何れかを含んでもよい。
オーダーメイド医療の究極の目標に関して、がん専門医は、診断医が標的療法を、腫瘍内の特定の変化と関連付けることができるような腫瘍に由来する重要な突然変異を検出することに依拠する。腫瘍細胞は時間と共に療法に対して不可逆的に耐性になり得るため、固形腫瘍から次世代配列決定(NGS)により配列情報を捕捉することは、臨床腫瘍学ワークフローの重要な成分である。全ての現在の臨床NGSワークフローに固有の最も有意な障害の1つは、医師が腫瘍の全ての部分において腫瘍増殖を駆動している突然変異を検出することができず、元々存在する療法耐性を付与する突然変異を検出することもできないということである。さらに、いくつかの突然変異は腫瘍内で高出現率であり得るが、他の突然変異(ドライバー突然変異及び耐性突然変異を含む)が腫瘍のわずかな画分中に存在し得る。典型的には、この問題の根は、医師が、原発腫瘍から採取された試料に由来するホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織切片を使用するという事実である。代表サンプリングのプロセスによってサンプリングの問題を完全に解決することができるが、オーダーメイド医療を完全に実現するために臨床NGSワークフローにおいて解決しなければならない依然としていくらか有意な問題が存在する。
本開示は、組織、例えば、腫瘍、リンパ節、転移、ポリープ、嚢胞、生検、全臓器、又は前記の何れかの組合せの全体の偏りのない指標である、「代表試料」を生成するための、任意選択的に、例えば、ホルマリン、パラフィン及び/又はエタノールを用いて、ホモジナイズの前又は後に保存又は固定することができる、腫瘍又は他の組織試料、例えば、前がん性又は推定正常組織をホモジナイズするための方法に関する。再度、これらの方法は、試料内の細胞の完全性及び/又は生存能力を保持することができる。そのような代表試料は、メジャークローン(50%を超える出現率を有する)、一次サブクローン(約20%-約50%の出現率を有する)、二次サブクローン(約10%-約20%の出現率を有する)、及びマイナーサブクローン(10%未満の出現率、好ましくは、5%未満の出現率、より好ましくは、1%未満の出現率、及び最も好ましくは、0.1%未満の出現率)を含んでもよい。上記で考察されたように、代表試料は、低出現率の事象、すなわち、0.000001%以下の発生率の検出を容易にする。代表試料は、それらが組織試料、例えば、固形腫瘍又はリンパ節の全体を反映するため、現在の方法(FFPEスライド染色など)を使用した場合には信頼性高く行うことができない、組織、一般的には、腫瘍又はリンパ節/リンパ組織中でのその発生率に比例した突然変異の検出を可能にする。
開示される方法によって生成される代表試料、例えば、腫瘍試料は、(i)いくつかは固形組織と適合しないことがある、いくつかの異なる診断アッセイのために代表試料を使用する能力;(ii)低出現率のサブクローンを検出する増強された能力、すなわち、低出現率のサブクローンの発見を阻害する過少サンプリングによる偏りを取り除く全腫瘍の代表試料の作出;及び(iii)診断腫瘍検査室内での試料の増殖の排除を含む、病理学及び診断において使用される伝統的な腫瘍試料を超えるいくつかの利点を提供し、それによって、より効率的な検査室ワークフローを作出する、すなわち、現在の実務は、腫瘍1つあたり3-10個ものブロックが作製されるが、検査されるのはわずか1ブロックであると記述する。
一態様では、単一の患者から得られる単一の試料から調製される代表試料を、本明細書に開示される方法の何れか及び/又は当業界で公知の他の適合する方法を使用するその後の診断分析のために使用することができる。患者から得られる試料を、ホモジナイズ及び任意選択的なさらなる加工、例えば、篩いの前に、低分子で標識することができる。低分子標識を試料中に導入することにより、ここで、試料を、他の試料(同じ患者に由来する他の組織及び/又は腫瘍試料並びに異なる患者から得られた組織及び/又は腫瘍試料を含む)から識別することができ、かくして、この標識化手法を使用して、異なる代表試料を、多重アッセイ形式で使用することができる。
例えば、本明細書に記載の方法の何れかによって生産される本開示の試料を、さらなる加工工程にかけることができる。これらのものとしては、限定されるものではないが、代表腫瘍試料内に含有される不均一材料の分析に適用可能であるさらなる診断アッセイを含む、本出願において詳述されるものなどのさらなる分析技術が挙げられる。以下の方法を、不均一腫瘍細胞集団内に含有される細胞の同一性及び生物学的特性に関する情報をもたらし得る、本開示の試料と関連して使用することができる。本開示及び以下に記載の技術によって提供される組合せ分析は、腫瘍内のごくわずかなサブクローン集団の同定、検出、又は特徴付けを可能にすることができる。これらの結果は、診断、治療方法の選択、及び患者管理にとって有用であり得る。
液体を、予備処理(例えば、タンパク質架橋、核酸曝露など)、変性、ハイブリダイゼーション、洗浄(例えば、ストリンジェンシー洗浄)、検出(例えば、視覚的又はマーカー分子のプローブへの連結)、増幅(例えば、タンパク質、遺伝子などの増幅)、対抗染色などに適用することができる。様々な実施態様では、物質としては、限定されるものではないが、染料(例えば、ヘマトキシリン溶液、エオシン溶液など)、湿潤剤、プローブ、抗体(例えば、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体など)、抗原回収液(例えば、水性又は非水性系抗原回収溶液、抗原回収バッファーなど)、溶媒(例えば、アルコール、リモネンなど)などが挙げられる。染料としては、限定されるものではないが、色素、ヘマトキシリン染料、エオシン染料、抗体若しくは核酸と、ハプテン、酵素若しくは蛍光部分などの検出可能標識とのコンジュゲート、又は色を与えるため、及び/若しくはコントラストを増強するための他の型の物質が挙げられる。それぞれ、その全体が出典明示により本明細書に援用される、国際公開第2015197742号及び第2015150278号を参照されたい。
試料の免疫組織化学又はIHC染色(又は細胞の染色である、免疫細胞化学)はおそらく、最も一般的に適用される免疫染色技術である。IHC染色の最初の事例は蛍光色素(免疫蛍光を参照)を使用したが、現在では、ペルオキシダーゼ(免疫ペルオキシダーゼ染色を参照)及びアルカリホスファターゼなどの酵素を使用する他の非蛍光方法が使用されている。これらの酵素は、光学顕微鏡によって容易に検出可能である着色産物を与える反応を触媒することができる。あるいは、放射性元素を標識として使用し、免疫反応をオートラジオグラフィーにより可視化することができる。調製又は固定化は、細胞形態及び構造の保存に寄与し得る。不適切な固定化又は長期的な固定化は、抗体結合能力を有意に減少させ得る。多くの抗原を、ホルマリン固定試料中で上手く示すことができる。多くの抗原の検出を、固定化によって形成されるタンパク質架橋のいくらかを破壊して、隠れた抗原性部位を露出させることによって作用する抗原回収方法によって改善することができる。これを、変化する長さの時間にわたって加熱することにより(熱誘導性エピトープ回収若しくはHIER)、又は酵素的消化(タンパク質分解的誘導性エピトープ回収若しくはPIER)を使用して達成することができる。
膨張顕微鏡(ExM)は、古典的な顕微鏡回折限界と比較して解像度が高い、限定されるものではないが、細胞、組織、DNA、RNA、又は脂質を含む、目的の生物学的試料の光学的イメージングのための方法を提供する。ExMは、保存された生物学的試料の物理的拡大を可能にし、目的の生物学的試料に、組成物が目的の試料中に埋め込まれる程度まで組成物(例えば、ポリマーゲル又はヒドロゲル)を注入する。組成物が等方的に拡大する場合、試料に結合した生物学的試料又は色素(又はフルオロフォア)は拡大し、かくして、より高い解像度での生物学的試料又はフルオロフォアの光学的イメージングを可能にする。ExM下で、生物学的試料を、当業者には公知の標準的な技術、例えば、FISH、免疫組織化学染色を使用してタグで最初に染色する。次いで、試料を、一又は複数のゼラチン溶液、例えば、モノマー、架橋剤、又はイニシエータでかん流する。一実施態様では、ゼラチン溶液は、膨潤性材料を含む。一度、ゲル化プロセスが完了したら、任意選択的に、生物学的試料を、プロテアーゼを用いて消化するか、又は他の化学的処理を行う。ゲルは膨潤時に拡大し、水又は熱などの外部因子との接触によって達成することができる。ゲルの拡大は、ゲル内に埋め込まれた試料又はタグを物理的に増大させるか、又は拡大する。試料又はタグの増大及び/又は拡大は、はるかにより高い解像度(例えば、ナノスケール)での光学的イメージングを可能にする。ExMは、限定されるものではないが、タンパク質、RNA、DNA、脂質、及び古典的顕微鏡下では高解像度での同定及び局在化を行うことができないものなどの、多数の生物学的試料に適用可能である。その全体が出典明示により本明細書に援用される米国特許出願第14/627310号を参照されたい。
フローサイトメトリーは、細胞を液体の流れに懸濁すること、及びそれらを電気的検出装置によって通過させることによる、細胞計測、セルソーティング、バイオマーカー検出及びタンパク質操作に用いられるレーザーに基づく生物物理学的技術である。それにより、1秒あたり数千個に及ぶ粒子の物理的及び化学的特徴の同時的な多パラメータ分析が可能になる。フローサイトメトリーは、健康障害、特に、血液がんの診断において常套的に使用されているが、基礎研究、臨床実務及び臨床治験における多くの他の用途もある。共通の変化は、目的の集団を精製するために、その特性に基づいて粒子を物理的に選別することである。
蛍光活性化セルソーティング(FACS)は、特殊化された型のフローサイトメトリーである。それは、それぞれの細胞の特異的な光散乱及び蛍光特性に基づいて、2つ以上の容器の中の細胞の不均一な混合物を、同時に1個の細胞を選別するための方法を提供する。それは、個々の細胞からの蛍光シグナルの迅速で、客観的で定量的な記録並びに特定の目的の細胞の物理的な分離を提供するため、有用な科学機器である。細胞懸濁液は、狭く、急速に流動する液体の流れの中心に富化される。細胞の直径に対して細胞間で大きく分離されるように、フローが配置される。振動機構により、細胞の流れは個々の液滴に破壊される。液滴1個あたり1個を超える細胞となる確率が低くなるようにシステムが調整される。流れが液滴に破壊される直前に、フローは蛍光測定ステーションを通過し、そこで、それぞれの細胞の目的の蛍光特性が測定される。帯電環を、流れが液滴に破壊されるちょうどその地点に置く。直前の蛍光強度測定値に基づいて電荷を環の上に置き、反対の電荷は、液滴が流れから破壊されるにつれて液滴上に捕捉される。次いで、荷電した液滴は、その電荷に基づいて液滴を容器中に迂回させる静電偏向システムを通って落下する。一部のシステムでは、電荷は流れに直接印加され、液滴破壊は流れと同じ符号の電荷を保持する。次いで、液滴が破壊された後、流れは中性に戻る。
液滴中の単一細胞の区画化は、細胞から放出される、又は細胞により分泌されるタンパク質の分析を可能にし、それによって、伝統的なフローサイトメトリー及び蛍光活性化セルソーティングの大きな限界の1つを克服する。この手法の一例は、単一のマウスハイブリドーマ細胞から分泌される抗体を検出するための結合アッセイである。単一のマウスハイブリドーマ細胞、蛍光プローブ及び50plの液滴中の抗マウスIgG抗体で被覆された単一のビーズを同時に区画化することによって、分泌された抗体は、わずか15分後に検出される。ビーズは、分泌された抗体を捕捉し、捕捉された抗体がプローブに結合する場合、蛍光はビーズ上に局在化し、~200Hzでの液滴ソーティング並びに細胞濃縮を可能にする明確に識別可能な蛍光シグナルを生成する。記載のマイクロフルイディクス系は、他の細胞内、細胞表面又は分泌タンパク質のスクリーニングのために、また、触媒又は調節活性の定量化のために容易に適合化される。~100万個の細胞をスクリーニングするために、マイクロフルイディクス操作を、2-6時間で完了させることができる;マイクロフルイディクスデバイス及び哺乳動物細胞の調製を含む全プロセスを、5-7dで完了することができる。その全体が出典明示により本明細書に援用されるMazutis等(2013)「Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics」、Nat. Protoc. 8: 870-891を参照されたい。
臨床免疫プロファイル試験において役立つ自動免疫細胞検出のためのシステム及びコンピュータにより実現される方法によって、試料を分析することができる。自動免疫細胞検出法は、RGB画像又は生物学的に意味のある分離画像などのマルチチャネル画像から複数の画像チャネルを回収することを含む。その全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2015177268号を参照されたい。
in situハイブリダイゼーション(ISH)は、中期又は間期染色体調製物(スライド上にマウントされた試料など)の文脈における標的核酸(ゲノム標的核酸)を含有する試料と、標的核酸(例えば、本明細書に開示される一又は複数のプローブ)に特異的にハイブリダイズする、又はそれに特異的である標識されたプローブとを接触させることを含む。任意選択的に、スライドを予備処理して、例えば、均一なハイブリダイゼーションを阻害し得る材料を除去する。染色体試料とプローブとの両方を、例えば、加熱して二本鎖核酸を変性させることによって処理する。プローブ(好適なハイブリダイゼーションバッファー中で製剤化される)と試料とを、ハイブリダイゼーションを起こさせる(典型的には、平衡に達する)条件下で、かつそうするのに十分な時間にわたって組み合わせる。染色体調製物を洗浄して、過剰のプローブを除去し、標的の特異的標識化の検出を、標準的な技術を使用して実施する。その全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2015124702号を参照されたい。
動的対立遺伝子特異的ハイブリダイゼーション(DASH)ジェノタイピングは、不一致塩基対の不安定性の結果生じるDNAにおける融点の差異を利用するものである。このプロセスを大きく自動化することができ、これはいくつかの単純な原理を包含する。第1の工程では、ゲノム断片を増幅し、ビオチン化されたプライマーを用いるPCR反応によってビーズに結合させる。第2の工程では、増幅産物をストレプトアビジンカラムに結合させ、NaOHで洗浄して、ビオチン化されていない鎖を除去する。次いで、対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドを、二本鎖DNAに結合した場合に蛍光を発する分子の存在下で添加する。次いで、融点(Tm)を決定することができるまで温度を上昇させながら、強度を測定する。SNPにより、予想よりも低いTmが得られると予想される。DASHジェノタイピングはTmの定量可能な変化を測定しているため、SNPだけでなく、あらゆる型の突然変異を測定することができる。DASHの他の利益としては、無標識プローブを用いた場合でも動作するその能力並びにその単純な設計及び性能条件が挙げられる。
分子ビーコンは、特異的に操作された一本鎖オリゴヌクレオチドプローブを利用するものである。それぞれの末端に相補的領域が存在し、その間にプローブ配列が位置するように、オリゴヌクレオチドを設計する。この設計により、プローブはその天然の単離された状態でヘアピン構造、又はステムループ構造を採ることができる。プローブの一方の末端に結合されるのは、フルオロフォアであり、他方の末端に結合されるのは、蛍光クエンチャーである。プローブのステムループ構造のため、フルオロフォアはクエンチャーにごく接近しており、かくして、分子が蛍光を放出するのを防止する。また、プローブ配列だけが、アッセイにおいて使用されるゲノムDNAと相補的であるように、分子を操作する(Abravaya等(April 2003)「Molecular beacons as diagnostic tools: technology and applications」Clin. Chem. Lab. Med. 41 (4): 468-74)。分子ビーコンのプローブ配列がアッセイ中にその標的ゲノムDNAに遭遇する場合、それはアニーリングし、ハイブリダイズする。プローブ配列の長さのため、プローブのヘアピン断片は、より長く、より安定なプローブ-標的ハイブリッドを形成するのを優先するために変性する。このコンフォメーション変化により、フルオロフォアとクエンチャーがヘアピン結合に起因してすぐ近くにあることから解放され、分子が蛍光を発することができる。他方で、プローブ配列がわずか1個の非相補的ヌクレオチドを含む標的配列に遭遇する場合、分子ビーコンは、その天然のヘアピン状態に優先的に留まり、フルオロフォアがクエンチされたままであるため、蛍光は観察されない。
プライマー伸長は、第1に、SNPヌクレオチドのすぐ上流の塩基へのプローブのハイブリダイゼーション、次いで、DNAポリメラーゼが、SNPヌクレオチドに相補的である塩基を付加することによってハイブリダイズしたプライマーを伸長させる「ミニ配列決定」反応を含む2段階プロセスである。この組み込まれた塩基が検出され、SNP対立遺伝子を決定する(Syvanen, Nat Rev Genet. 2001 Dec;2(12):930-42)。プライマー伸長は高度に正確なDNAポリメラーゼ酵素に基づくものであるため、この方法は一般的には非常に信頼性が高い。プライマー伸長は、それを高度に可撓性にもする非常に類似する反応条件下で多くのSNPをジェノタイピングすることができる。プライマー伸長法は、いくつかのアッセイ形式において使用される。これらの形式は、MALDI-TOF質量分析(Sequenomを参照されたい)及びELISAのような方法を含む様々な検出技術を使用する。一般的には、蛍光標識されたジデオキシヌクレオチド(ddNTP)又は蛍光標識されたデオキシヌクレオチド(dNTP)の組込みを使用する2つの主な手法がある。ddNTPを用いる場合、プローブはSNPヌクレオチドのすぐ上流の標的DNAにハイブリダイズし、SNP対立遺伝子と相補的な単一のddNTPは、プローブの3’末端に付加される(ジジオキシヌクレオチド中の失われる3’-ヒドロキシルは、さらなるヌクレオチドが付加されるのを防ぐ)。それぞれのddNTPを、異なる蛍光シグナルで標識し、同じ反応中で4つ全部の対立遺伝子の検出を可能にする。dNTPを用いる場合、対立遺伝子特異的プローブは、調べられるSNP対立遺伝子のそれぞれと相補的である3’塩基を有する。標的DNAがプローブの3’塩基と相補的な対立遺伝子を含有する場合、標的DNAはプローブに完全にハイブリダイズし、DNAポリメラーゼはプローブの3’末端から伸長することができる。これは、プローブの末端上への蛍光標識されたdNTPの組込みによって検出される。標的DNAがプローブの3’塩基と相補的な対立遺伝子を含有しない場合、標的DNAはプローブの3’末端で不一致をもたらし、DNAポリメラーゼはプローブの3’末端から伸長することができない。第2の手法の利益は、いくつかの標識されたdNTPが成長している鎖に組み込まれ、シグナルの増大を可能にするというものである。
マイクロアレイの背後にある核となる原理は、相補的ヌクレオチド塩基対間で水素結合を形成することによって互いに特異的に対形成する相補的核酸配列の特性である、2つのDNA鎖の間のハイブリダイゼーションである。ヌクレオチド配列中の多数の相補的塩基対は、2つの鎖の間でより緊密な非共有結合をもたらす。非特異的結合配列を洗浄除去した後、強く対形成した鎖のみがハイブリダイズしたままである。プローブ配列に結合する蛍光標識された標的配列は、ハイブリダイゼーション条件(温度など)及びハイブリダイゼーション後の洗浄に依存するシグナルを生成する。スポット(特徴)からのシグナルの総強度は、そのスポット上に存在するプローブに結合する標的試料の量に依存する。マイクロアレイは、特徴の強度を、異なる条件下で同じ特徴の強度と比較する相対的定量化を使用し、特徴の同一性はその位置によって公知である。
発色in situハイブリダイゼーション(CISH)は、免疫組織化学(IHC)技術の発色シグナル検出法とin situハイブリダイゼーションとを組み合わせる細胞遺伝学的技術である。それは、HER-2/neuがん遺伝子増幅の検出のために蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)の代替手段として2000年頃に開発された。CISHは、それらが両方ともDNAの特異的領域の存在又は非存在を検出するために使用されるin situハイブリダイゼーション技術であるという点で、FISHと類似している。しかしながら、CISHは、FISHにおいて使用されるより高価で複雑な蛍光顕微鏡よりもむしろ明視野顕微鏡を使用するため、診断検査室においてはるかにより実用的である。
蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)は、高い程度の配列相補性を有する染色体の部分にのみ結合する蛍光プローブを使用する細胞遺伝学的技術である。それは、1980年代初期に生物医学研究者によって開発されたものであり、染色体上の特定のDNA配列の存在又は非存在を検出及び局在化するために使用される。蛍光顕微鏡を使用して、蛍光プローブが染色体に結合する場所を見つけることができる。FISHは、遺伝的カウンセリング、医学、及び種の同定における使用のためにDNA中の特異的特徴を発見するために使用されることが多い。また、FISHを使用して、細胞、循環腫瘍細胞、及び試料中の特異的RNA標的(mRNA、lncRNA及びmiRNAなど)を検出及び局在化することもできる。この文脈では、それは、細胞内の遺伝子発現の空間的-時間的パターンを定義するのに役立ち得る。
中間期又は中期調製物の代替技術であるファイバーFISHにおいては、中間期染色体を、それらが従来のFISHにおけるような、堅くコイルするよりもむしろ直線に伸びるか、又は中間期FISHにおけるような、染色体領域コンフォメーションを採るような方法でスライドに結合させる。これは、スライドに固定された後、溶解された細胞に対して、又は精製されたDNAの溶液に対して、スライドの長さに沿って機械的剪断を適用することにより達成される。染色体混合として知られる技術は、この目的のためにますます使用されている。染色体の伸長したコンフォメーションは、数キロベースまでも劇的により高い分解を可能にする。
定量的蛍光in situハイブリダイゼーション(Q-FISH)は、伝統的なFISH法に基づく細胞遺伝学的技術である。Q-FISHでは、この技術は、ペプチド核酸(PNA)オリゴヌクレオチドと呼ばれる標識された(Cy3又はFITC)合成DNA模倣体を使用して、蛍光顕微鏡及び分析ソフトウェアを使用して染色体DNA中の標的配列を定量化する。
フローFISHは、フローサイトメトリーと、細胞遺伝学的蛍光in situハイブリダイゼーション染色プロトコールとの組合せにより全細胞集団のゲノムDNA中の特定の反復エレメントのコピー数を定量化するための細胞遺伝学的技術である。フローFISHは、コルセミド、低張ショックで処理された細胞の調製された中期拡散上のテロメア反復を染色するためにフルオレセインフルオロフォアで標識された3’-CCCTAACCCTAACCCTAA-5’配列のペプチド核酸プローブ、及びメタノール/酢酸処理によるスライドへの固定を用いる、テロメア長を分析するための別の技術であるQ-FISHの改変(プロトコールはオンラインで入手可能)として、Rufer等によって1998年に初めて公開された。次いで、得られる蛍光スポットの画像を、特殊化されたコンピュータプログラム(方法及びソフトウェアはFlintbox Networkから入手可能)により分析して、蛍光定量値を得た後、実際のテロメア長を見積もるために使用することができる。PNAは低いイオン塩濃度で、また、ホルムアミドの存在下でDNAに優先的に結合するため、プローブ染色によって得られる蛍光は定量的であると考えられ、かくして、DNA二本鎖は、それが一度融解し、PNAプローブにアニーリングしたら、再形成することができず、プローブにその標的反復配列を飽和させ(それが相補鎖上のアンチセンスDNAと競合することによって標的DNAから置き換えられないため)、かくして、未結合のプローブを洗浄除去した後に所与の染色体部位でPNAプローブ標的の頻度の信頼できる定量可能な読出しを得る。
比較ゲノムハイブリダイゼーションは、細胞を培養する必要なく、参照試料と比較した試験試料のDNA中の倍数性レベルに対するコピー数変化(CNV)を分析するための分子細胞遺伝学的方法である。この技術の目的は、最も頻繁に密接に関連する2つの供給源から生じる2つのゲノムDNA試料を迅速かつ効率的に比較することであるが、それは、それらが全染色体又は染色体内領域(全染色体の一部)の獲得又は喪失に関する差異を含有すると疑われるためである。この技術は元々、固形腫瘍及び正常組織試料の染色体相補体間の差異の評価のために開発されたものであり、ギムサバンディング(g-バンディング)のより伝統的な細胞遺伝学的分析技術及び使用される顕微鏡の解像度によって制限される蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)と比較して5-10メガベースの改善された解像度を有する。
使用することができる例示的なブロッティング技術としては、以下のセクションにさらに記載され、当業界で公知の、ウェスタン、サザン、イースタン、ファーウェスタン、サウスウェスタン、ノースウェスタン、及びノーザンブロッティングが挙げられる。
ウェスタンブロット(タンパク質イムノブロットと呼ばれることもある)は、試料ホモジネート又は抽出物中の特定のタンパク質を検出するために使用される広く使用されている分析技術である。それは、3-D構造によって天然タンパク質を、又はポリペプチドの長さによって変性タンパク質を分離するためにゲル電気泳動を使用する。次いで、タンパク質を膜(典型的には、ニトロセルロース又はPVDF)に転移させ、そこでそれらを標的タンパク質に特異的な抗体で染色する。ゲル電気泳動工程は、抗体の交差反応性の問題を解決するためのウェスタンブロット分析に含まれる。
サザンブロッティングは、電気泳動により分離されたDNA断片のフィルター膜への転移と、プローブハイブリダイゼーションによるその後の断片の検出とを組み合わせたものである。フィルター膜上での特異的DNA断片へのプローブのハイブリダイゼーションは、この断片がプローブと相補的であるDNA配列を含有することを示す。電気泳動ゲルから膜へのDNAの転移工程は、標識されたハイブリダイゼーションプローブの、サイズ分画されたDNAへの容易な結合を可能にする。それはまた、標的-プローブハイブリッドの固定も可能にし、オートラジオグラフィー又は他の検出方法による分析のために使用することができる。制限酵素消化されたゲノムDNAを用いて実施されるサザンブロットを使用して、ゲノム中の配列(例えば、遺伝子コピー)の数を決定することができる。制限酵素によって切断されなかった単一のDNA断片にのみハイブリダイズするプローブは、サザンブロット上で単一のバンドをもたらすが、プローブがいくつかの高度に類似する配列(例えば、配列複製の結果であり得るもの)にハイブリダイズする場合には複数のバンドが観察される可能性がある。ハイブリダイゼーション条件の改変(例えば、ハイブリダイゼーション温度の上昇又は塩濃度の低下)を使用して、特異度を増加させ、類似性が100%未満である配列へのプローブのハイブリダイゼーションを減少させることができる。
イースタンブロットは、脂質、ホスホ部分、及びグリココンジュゲートなどの、タンパク質翻訳後改変(PTM)を分析するために使用される生化学的技術である。それは、炭水化物エピトープを検出するために最もよく使用される。かくして、イースタンブロッティングは、ウェスタンブロッティングの生化学的技術の延長であると考えることができる。複数の技術がイースタンブロッティングの用語によって記載されており、その多くが、SDS-PAGEゲルからPVDF又はニトロセルロース膜上にブロットされたタンパク質を使用する。転移されたタンパク質を、脂質、炭水化物、リン酸化又は他の任意のタンパク質改変を検出することができるプローブを使用して翻訳語改変について分析する。イースタンブロッティングを使用して、PTMとプローブとの特異的相互作用によってその標的を検出する方法に言及し、それらと、標準的なファーウェスタンブロットとを区別するべきである。原理的には、イースタンブロッティングは、レクチンブロッティングと類似する(すなわち、タンパク質又は脂質上の炭水化物エピトープの検出)。
ファーウェスタンブロッティングは、ブロット上の目的のタンパク質(一又は複数)をプローブ化するために非抗体タンパク質を用いる。このように、プローブ(又はブロットされた)タンパク質の結合パートナーを同定することができる。プローブタンパク質は、発現クローニングベクターを使用して大腸菌(E.coli)中で生産されることが多い。捕食タンパク質を含有する細胞溶解物中のタンパク質を、SDS又は天然PAGEによって最初に分離し、標準的なWBにおけるように、膜に転移させる。次いで、膜中のタンパク質を変性させ、復元させる。次いで、通常は精製されたベイトタンパク質(一又は複数)を用いて、膜をブロックし、プローブ化する。ベイトタンパク質と捕食タンパク質が一緒になって複合体を形成する場合、ベイトタンパク質を、捕食タンパク質が位置する膜中のスポット上で検出する。次いで、プローブタンパク質を、通常の方法によって可視化することができる。それを放射標識してもよい;それは抗体が存在するHis若しくはFLAGのような特異的アフィニティータグを担持してもよい;又はタンパク質特異的抗体(プローブタンパク質に対する)が存在してもよい。
サザンブロッティング(Edwin Southernによって作出された)の系列に基づき、B.Bowen、J.Steinberg及び共同研究者によって1980年に初めて記載されたサウスウェスタンブロッティングは、特異的オリゴヌクレオチドプローブに結合するその能力によってDNA結合タンパク質(DNAに結合するタンパク質)を同定すること、及び特徴付けることを含む実験技術である。タンパク質をゲル電気泳動によって分離した後、他の型のブロッティングと同様、ニトロセルロース膜に転移させる。「サウスウェスタンブロットマッピング」を、DNA結合タンパク質と、ゲノムDNA上のその特異的部位との両方の迅速な特徴付けのために実施する。タンパク質を、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を含有するポリアクリルアミドゲル(PAGE)上で分離し、尿素の存在下でSDSを除去することによって復元し、拡散によってニトロセルロース上にブロットする。目的のゲノムDNA領域を、適切であるが、異なるサイズの断片を生産するように選択された制限酵素によって消化した後、末端標識し、分離されたタンパク質に結合させる。特異的に結合したDNAを、それぞれ個々のタンパク質-DNA複合体から溶出させ、ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分析する。特異的DNA結合タンパク質をこの技術によって検出することができる証拠が提示されている。さらに、その配列特異的結合は、対応する選択的に結合したDNA断片の精製を可能にし、DNA調節配列のタンパク質媒介性クローニングを改善することができる。
ノースウェスタンブロットの実行は、ゲル電気泳動によりRNA結合タンパク質を分離することを含み、そのサイズ及び電荷に基づいてRNA結合タンパク質を分離する。個々の試料を、アガロース又はポリアクリルアミドゲル(通常はSDS-PAGE)中にロードして、複数の試料を同時に分析することができる。一度、ゲル電気泳動が完了したら、ゲル及び結合したRNA結合タンパク質を、ニトロセルロース転移用紙に転移させる。次いで、新しく転移したブロットを、ブロッキング溶液中に浸す;無脂肪ミルク及びウシ血清アルブミンは一般的なブロッキングバッファーである。このブロッキング溶液は、ニトロセルロース膜への一次及び/又は二次抗体の非特異的結合を防止するのを助ける。一度、ブロッキング溶液がブロットとの十分な接触時間を持ったら、特異的競合RNAを加え、室温でインキュベートする時間を与える。この時間に、競合RNAは、ブロット上にある試料中のRNA結合タンパク質に結合する。このプロセス中のインキュベーション時間は、加えられる競合RNAの濃度に応じて変化し得るが、インキュベーション時間は、典型的には1時間である。インキュベーションが完了した後、通常はブロットを、それぞれ5分間の洗浄で少なくとも3回洗浄して、溶液中のRNAを希釈する。一般的な洗浄バッファーとしては、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)又は10%Tween 20溶液が挙げられる。不適切な、又は不十分な洗浄は、ブロットの現像の明確性に影響する。一度、洗浄が完了したら、典型的には、ブロットをx線又は同様のオートラジオグラフィー法によって現像する。
一般的なノーザンブロッティングは、ホモジナイズされた試料から、又は細胞からの総RNAの抽出から始まる。次いで、真核mRNAを、オリゴ(dT)セルロースクロマトグラフィーの使用により単離して、ポリ(A)尾部を有するRNAのみを単離することができる。次いで、RNA試料を、ゲル電気泳動により分離する。ゲルは脆く、プローブはマトリックスに進入するには不安定であるため、ここでサイズによって分離されたRNA試料を、キャピラリー又は減圧ブロッティング系によってナイロン膜に転移させる。負に荷電した核酸は正電荷を有するナイロン膜に対する高い親和性を有するため、正電荷を有するナイロン膜は、ノーザンブロッティングにおける使用にとって最も有効である。ブロッティングのために使用される転移バッファーは、プローブ-RNA相互作用のアニーリング温度を低下させ、かくして、RNA分解を引き起こし得る高温の必要性を排除するため、それは通常、ホルムアミドを含有する。一度、RNAが膜に転移されたら、それは、UV光又は熱による膜への共有的連結を介して固定される。プローブが標識されたら、それを膜上のRNAにハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーションの効率及び特異度に影響し得る実験条件としては、イオン強度、粘度、二本鎖の長さ、不一致塩基対、及び塩基組成が挙げられる。膜を洗浄して、プローブが特異的に結合したことを確保し、バックグラウンドシグナルが生じるのを防止する。次いで、X線フィルムによってハイブリッドシグナルを検出し、密度測定によって定量することができる。ノーザンブロット試料中での比較のためのコントロールを作出するために、マイクロアレイ又はRT-PCRによる決定後に目的の遺伝子産物を示さないものを使用することができる。
潜在的には自動化染色プラットフォームを使用して、試料中の標的を検出するために酵素的ビオチン化を使用する近接検出法が記載されている。1つの開示される実施態様は、試料と、ビオチンリガーゼ及び第1の標的の近くに結合する第1の特異的結合部分を含む第1のコンジュゲートとを接触させること;試料と、ビオチンリガーゼ基質及び第2の標的の近くに結合する第2の特異的結合部分を含む第2のコンジュゲートとを接触させること;第1の標的及び第2の標的が近い配置を有する場合、ビオチンリガーゼによるビオチンリガーゼ基質のビオチン化を可能にする条件に試料をかけること;並びにビオチンリガーゼ基質のビオチン化を検出することを含む。基質のビオチン化を可能にする条件は、ビオチン及びATPの添加を含む。この方法はまた、試料と、ストレプトアビジン-酵素コンジュゲートとを接触させることを含んでもよい。また、シグナル増幅を使用してもよい。その全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2014139980号を参照されたい。
ELISAの実施は、特定の抗原に対する特異性を有する少なくとも1つの抗体を含む。未知量の抗原を含む試料を、非特異的に(表面への吸着を介して)又は特異的に(「サンドイッチ」ELISAにおいて、同じ抗原に特異的な別の抗体による捕捉を介して)、固体支持体(通常、ポリスチレンマイクロタイタープレート)上に固定化する。抗原を固定化した後、検出抗体を添加し、抗原との複合体を形成させる。検出抗体を、酵素に共有的に連結するか、又はバイオコンジュゲーションによって酵素に連結された二次抗体によりそれ自身を検出することができる。各工程の間に、典型的には、プレートを温和な界面活性剤溶液で洗浄して、非特異的に結合したタンパク質又は抗体を除去する。最後の洗浄工程の後、酵素基質を添加して、試料中の抗原の量を示す可視的シグナルを生産させることによって、プレートを現像する。
循環CTCを含有することが知られる、又は疑われる試料を分析する方法は、イメージング工程を含んでもよい。一例では、イメージングは、CTC同定試薬の免疫蛍光を画像化することを含む(例えば、使用される各抗体と結合した標識を検出することによる)。別の例では、イメージングは、多スペクトル帯域通過フィルターを使用することを含む。免疫蛍光は、フルオロフォアで直接的若しくは間接的に標識された抗体から発してもよく、又は免疫蛍光は、スペクトル的にフィルタリングされた可視光でフルオロフォアを励起することから生じてもよい。一実施態様では、スペクトル的にフィルタリングされた可視光は、第1のフルオロフォアを励起するための第1の選択された範囲及び第2のフルオロフォアを励起するための第2の選択された範囲を含み、ここで、第1の選択された範囲は第2のフルオロフォアを有意に励起せず、第2の選択された範囲は第1のフルオロフォアを有意に励起しない。試料のイメージングは、第1の選択された範囲によって励起された試料の第1の免疫蛍光画像を獲得すること、及び第2の選択された範囲によって励起された試料の第2の免疫蛍光画像を獲得すること(及び2つを超えるCTC同定試薬を使用した場合に各標識についてさらなる免疫蛍光画像を獲得すること)及び第1の免疫蛍光画像と第2の免疫蛍光画像(及びそのように得られた場合、さらなる画像)を比較するか、又は重ね合わせることを含んでもよい、CTC同定試薬を位置決定又は可視化することによってCTCを位置決定又は同定することを含んでもよい。例えば、第1の免疫蛍光画像のイメージングは、CK+細胞を同定することができ、第2の免疫蛍光画像は、CD45+細胞を同定することができ、比較又は重ね合わせは、CK+及びCD45-である細胞を同定することを含む。別の実施態様では、CTC同定試薬を位置決定することによるCTCの位置決定は、コンピュータを使用して、第1の免疫蛍光画像及び第2の免疫蛍光画像(及び得られた場合、さらなる免疫蛍光画像)をアルゴリズム分析することを含む。一実施態様では、アルゴリズム分析は、細胞のサイズ、マーカーの細胞区画局在化、及び/又はマーカー発現の強度を測定するために画像をデジタル的に問い合わせることを含む。その全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2013101989号を参照されたい。
免疫沈降(IP)の液相リガンド結合アッセイは、複合体混合物に由来する抗体を使用して、特定のタンパク質、又はタンパク質群を精製又は富化するために使用される方法である。破壊された細胞又は試料の抽出物を、抗原-抗体複合体を生産する、目的の抗原に対する抗体と混合することができる。抗原濃度が低い場合、抗原-抗体複合体沈降には数時間又はさらには数日かかり、形成された少量の沈降物を単離することが困難になる。酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)又はウェスタンブロッティングは、精製された抗原(又は複数の抗原)を取得及び分析することができる2つの異なる方法である。この方法は、アガロース樹脂などの固体(ビーズ化された)支持体上に結合した抗体の助けを借りて抗原を精製することを含む。固定化されたタンパク質複合体を、単一の工程で、又は連続的に達成することができる。また、IPを、生合成放射性同位体標識と共に使用することもできる。この技術の組合せを使用して、特定の抗原が試料又は細胞によって合成されるかどうかを決定することができる。
クロマチン免疫沈降(ChIP)は、細胞中のタンパク質とDNAとの相互作用を調査するために使用される免疫沈降実験技術の型である。それは、特定のタンパク質が、プロモーター又は他のDNA結合部位上の転写因子、及びおそらく規定のシストロームなどの特定のゲノム領域と結合するかどうかを決定することを目的とする。ChIPはまた、様々なヒストン改変が関連するゲノム中の特定の位置を決定し、ヒストン改変剤の標的を示すことを目的とする。
ChIP-seqとしても知られるChIP-配列決定は、DNAとのタンパク質総合作用を分析するために使用される方法である。ChIP-seqは、クロマチン免疫沈降(ChIP)と、大規模平行DNA配列決定とを組み合わせて、DNAと結合したタンパク質の結合部位を同定するものである。それを使用して、目的のタンパク質について正確に全体的な結合部位をマッピングすることができる。ChIP-seqは、転写因子及び他のクロマチン結合タンパク質が表現型に影響する機構にどのように影響するかを決定するために主に使用される。タンパク質がDNAと相互作用して遺伝子発現を調節する方法の決定は、多くの生物学的プロセス及び疾患状態を完全に理解するためには必須である。このエピジェネティックな情報は、ジェノタイプ及び発現分析と補完的である。ChIP-seq技術は、現在、ハイブリダイゼーションアレイを使用することができるChIP-チップの代替手段として主に見られる。アレイは固定数のプローブに限定されるため、これはいくらかの偏りを必ず導入する。対照的に、配列決定は、偏りが少ないと考えられるが、異なる配列決定技術の配列決定の偏りは、依然として完全には理解されていない。転写因子及び他のタンパク質と直接的に物理的相互作用している特定のDNA部位を、クロマチン免疫沈降によって単離することができる。ChIPは、in vivoで目的のタンパク質に結合した標的DNA部位のライブラリーを生産する。大規模平行配列分析は、任意のタンパク質とDNAとの相互作用パターン、又は任意のエピジェネティックなクロマチン改変のパターンを分析するための全ゲノム配列データベースと共に使用される。これを、ChIP可能なタンパク質と、転写因子、ポリメラーゼ及び転写機構、構造タンパク質、タンパク質改変、及びDNA改変などの改変とのセットに適用することができる。特異的抗体への依存性に対する代替手段として、DNase-Seq及びFAIRE-Seqのような、ゲノム中の全てのヌクレオソーム枯渇又はヌクレオソーム破壊された活性調節領域のスーパーセットを発見するための様々な方法が開発されている。
ChIP-オンチップ(ChIP-チップとしても知られる)は、クロマチン免疫沈降(「ChIP」)と、DNAマイクロアレイ(「チップ」)とを組み合わせた技術である。通常のChIPと同様、ChIP-オンチップは、in vivoでのタンパク質とDNAとの相互作用を調査するために使用される。具体的には、それは、ゲノムワイドベースでのDNA結合タンパク質に関する、結合部位の合計であるシストロームの同定を可能にする。全ゲノム分析を実施して、ほぼ全ての目的のタンパク質の結合部位の位置を決定することができる。その技術の名称が示す通り、そのようなタンパク質は一般的には、クロマチンの文脈で動作するものである。このクラスの最も顕著な代表は、転写因子、起点認識複合体タンパク質(ORC)のような複製関連タンパク質、ヒストン、その変異体、及びヒストン改変である。ChIP-オンチップの目標は、ゲノム中の機能的エレメントを同定するのに役立ち得るタンパク質結合部位を位置決定することである。例えば、目的のタンパク質としての転写因子の場合、ゲノムを通してその転写因子結合部位を決定することができる。他のタンパク質は、プロモーター領域、エンハンサー、リプレッサー及びサイレンシングエレメント、インスレーター、境界エレメント、及びDNA複製を制御する配列の同定を可能にする。ヒストンが目的の対象である場合、改変の分布及びその局在化は調節機構への新しい洞察を提供することができると考えられる。ChIP-オンチップが設計された長期的目標の1つは、様々な生理学的条件下で全てのタンパク質-DNA相互作用を列挙する(選択された)生物のカタログを確立することである。この知識は、最終的には、遺伝子調節、細胞増殖、及び疾患進行の背後にある機構の理解に役立つ。したがって、ChIP-オンチップは、それがエピジェネティクスに関する研究により広められるため、ヌクレオチドレベルでのゲノムの組織化に関する我々の知識を補完する大きな可能性だけでなく、より高いレベルの情報及び調節も提供する。
ラジオイムノアッセイ(RIA)は、抗体の使用によって抗原の濃度(例えば、血液中のホルモンレベル)を測定するために使用される非常に高感度のin vitroアッセイ技術である。そのようなものとして、それを、対応する抗原の使用によって抗体を定量する放射結合アッセイの逆と見ることができる。古典的には、ラジオイムノアッセイを実施するために、既知量の抗原を、頻繁には、それを、チロシンに結合した、125-Iなどのヨウ素のガンマ放射活性同位体で標識することにより、放射活性にする。次いで、この放射標識された抗原を、その抗原に対する既知量の抗体と混合し、結果として、その2つは互いに特異的に結合する。次いで、未知量の同じ抗原を含有する患者に由来する血清の試料を添加する。これにより、血清に由来する未標識の(又は「コールド」)抗原は、抗体結合部位について放射標識された抗原(「ホット」)と競合する。「コールド」抗原の濃度が増大するにつれて、その多くが抗体に結合し、放射標識された変異体を置き換え、抗体に結合した放射標識された抗原の、遊離の放射標識された抗原に対する比を低下させる。次いで、結合した抗原を、未結合のものから分離し、上清中に残りの結合した抗原の放射活性を、ガンマカウンターを使用して測定する。
蛍光偏光は、蛍光異方性と同義である。この方法は、一度、蛍光標識されたリガンドが受容体に結合したら、その回転速度の変化を測定するものである。偏光を使用して、リガンドを励起し、放出された光の量を測定する。放出された光の脱分極は、存在するリガンドのサイズに依存する。小さいリガンドを使用する場合、それは大きい脱分極を有し、光を急速に回転させる。使用されるリガンドがより大きいサイズのものである場合、得られる脱分極は減少する。この方法の利点は、それが1つの標識化工程のみを含んでもよいことである。しかしながら、この方法を低いナノモル濃度で使用する場合、結果は正確であり得る。
Forster共鳴エネルギー移動(蛍光共鳴エネルギー移動とも称される)は、ごく近くにあるドナーとアクセプター分子、例えば、ドナーフルオロフォアとアクセプターフルオロフォア、又はフルオロフォアとクエンチャーの間で移動するエネルギーを利用するものである。FRETは、FPのような蛍光標識されたリガンドを使用する。FRET内のエネルギー移動は、ドナーを励起することによって開始する。ドナーとアクセプター分子との間の双極子間相互作用は、エネルギーをドナーからアクセプター分子に移動させる。ドナーとアクセプターの分子間又はその中での相互作用を、進入移動と関連する蛍光スペクトル、又はその非存在を検出することによってモニタリングすることができる。例えば、リガンドが受容体-抗体複合体に結合する場合、アクセプターは光を放出する。エネルギー移動は、ドナーとアクセプターとの距離に依存し、移動の存在又は非存在は、分子距離を示す。典型的には、10nmよりも小さい距離は、アクセプターとドナーとの間の効率的なエネルギー移動を可能にするが、関与する特定の分子に応じて、より大きい、又はより小さい距離を使用することができる。
表面プラズモン共鳴(SPR)は、リガンドの標識化を必要としない。その代わりに、それは、偏光が表面から反射される角度の変化(屈折率)を測定することによって機能する。その角度は、反射される光を増加させる、共鳴角を変化させるリガンドの固定化などの、質量又は層の厚さの変化と関連する。SPRが誘導されるデバイスは、センサーチップ、フローセル、光源、プリズム、及び固定角位置検出器を含む。
フィルターアッセイは、2つの分子間の親和性を測定するためにフィルターを使用する固相リガンド結合アッセイである。フィルター結合アッセイにおいては、フィルターを使用して、それらを通して培地を吸引することにより、細胞膜を捕捉する。この迅速な方法は、濾過及び回収を見出される画分について達成することができる速い速度で行われる。バッファーでフィルターを洗浄することにより、残留する未結合のリガンド及び結合部位から洗浄除去することができる存在する任意の他のリガンドを除去する。フィルターが洗浄される間に存在する受容体-リガンド複合体は、フィルターによって完全に捕捉されないため、有意に解離しない。フィルターの特徴は、それぞれの仕事を行う際に重要である。厚いフィルターは、小さい膜小片のより完全な回収を得るのに有用であるが、より長い洗浄時間を必要とし得る。負に荷電した膜小片を捕捉するのを助けるために、フィルターを予備処理することが推奨される。溶液中にフィルターを浸すことにより、フィルターに正の表面電荷を与え、負に荷電した膜断片を誘引する。
アフィニティークロマトグラフィーは、抗原と抗体、酵素と基質、又は受容体とリガンドの間などの高度に特異的な相互作用に基づいて生化学的混合物を分離する方法である。固定相は、典型的には、藻類に由来する線状糖分子である、頻繁にはアガロースのゲルマトリックスである。通常、出発点は、細胞溶解物、増殖培地又は血清などの、溶液中の定義されていない不均一な分子群である。目的の分子は、周知かつ定義された特性を有し、アフィニティー精製プロセスの間に活用することができる。このプロセス自体は、捕捉として考えることができ、標的分子は、固体又は固相又は媒体上に捕捉されるようになる。移動相中の他の分子は、それらがこの特性を有さないため捕捉されるようにならない。次いで、固定相を、混合物から回収し、洗浄し、標的分子を溶出として公知のプロセスにおいて捕捉物から遊離させることができる。おそらく、アフィニティークロマトグラフィーの多くの一般的な使用は、組換えタンパク質の精製のためのものである。
免疫細胞化学(ICC)は、それに結合する特異的一次抗体の使用により細胞中の特定のタンパク質又は抗原の局在化を解剖学的に可視化するための使用される一般的な実験技術である。一次抗体は、コンジュゲートされたフルオロフォアを有する二次抗体により結合された場合に蛍光顕微鏡下でタンパク質の可視化を可能にする。ICCにより、研究者は、特定の試料中の細胞が問題の抗原を発現するか否かを評価することができる。免疫陽性シグナルが認められる場合、ICCにより、研究者は、どの細胞内区画が抗原を発現しているかを決定することもできる。一次抗体又は抗血清に直接結んだものを含む、試料上での免疫学的検出を得るための多くの方法が存在する。直接的方法は、後に細胞中の抗原(例えば、タンパク質)に結合させる抗体に直接的に結合させた検出可能タグ(例えば、蛍光分子、金粒子など)の使用を含む。あるいは、多くの間接的方法が存在する。1つのそのような方法では、抗原は、一次抗体により結合され、次いで、一次抗体に結合する二次抗体の使用によって増幅される。次に、酵素部分を含有する三次試薬を加え、二次抗体に結合する。四次試薬、又は基質を加える場合、三次試薬の酵素的末端は、基質を色素反応生成物に変換し、元の一次抗体が目的の抗原を認識した同じ位置で色(多くの色が可能である;褐色、黒色、赤色など)を生産する。使用される基質(色素原としても知られる)の一部の例は、AEC(3-アミノ-9-エチルカルバゾール)、又はDAB(3,3’-ジアミノベンジジン)である。必要な酵素(例えば、抗体試薬にコンジュゲートされたホースラディッシュペルオキシダーゼ)への曝露後のこれらの試薬の1つの使用は、陽性の免疫反応産物を生産する。H&E(ヘマトキシリン及びエオシン)のような特異性の低い染色を、診断を行うために、又は治療(例えば、一部のがんにおける)に関するさらなる予測情報を提供するために使用することができない場合、目的の特異的抗原の免疫細胞化学的可視化を使用することができる。あるいは、二次抗体を、フルオロフォア(FITC及びローダミンが最も一般的である)に共有的に連結し、蛍光顕微鏡又は共焦点顕微鏡中で検出することができる。蛍光の位置は、膜タンパク質については外部、細胞質タンパク質については内部の、標的分子に応じて変化すると予想される。このように、免疫蛍光は、タンパク質の位置及び動的プロセス(エキソサイトーシス、エンドサイトーシスなど)を研究するために共焦点顕微鏡と組み合わせた場合、強力な技術である。
使用することができる例示的な電気泳動アッセイとしては、当業界で公知であり、以下にさらに記載されるような、核酸電気泳動、PAGE、天然ゲル法、自由流動電気泳動、IEF、EMSA、RFLP分析、及びザイモグラフィーが挙げられる。
核酸電気泳動は、サイズ及び反応性によってDNA又はRNA断片を分離するために使用される分析技術である。分析される核酸分子を、粘性媒体であるゲル上にセットし、そこで、核酸鎖の糖-リン酸骨格の正味の負電荷のため、電場が核酸を誘導して、陽極に向かって移動させる。これらの断片の分離は、異なるサイズの分子がゲルを通過することができる移動度を活用することによって達成される。より長い分子はゲル内でより高い抵抗を経験するため、よりゆっくりと移動する。分子のサイズはその移動度に影響するため、より小さい断片は、所与の期間により長いものよりも陽極により近いところに行き着く。いくらかの時間の後、電圧を除去し、断片化勾配を分析する。類似するサイズの断片間のより大きな分離のために、電圧又は泳動時間の何れかを増加させることができる。低電圧ゲルにわたる長い泳動が、最も正確な分解をもたらす。しかしながら、電圧は、核酸の電気泳動を決定づける唯一の因子ではない。
ポリアクリルアミドゲル電気泳動(PAGE)は、生物学的高分子、通常は、タンパク質又は核酸を、その電気泳動移動度に従って分離するための、生化学、法医学、遺伝学、分子生物学及び生物工学において広く使用される技術を記載する。移動度は、分子の長さ、コンフォメーション及び電荷の関数である。
非変性ゲルとしても知られる、天然ゲルは、依然として折り畳まれた状態にあるタンパク質を分析するものである。かくして、その電気泳動移動度は、電荷-質量比だけでなく、タンパク質の物理的形状及びサイズにも依存する。以下は、様々な形態の天然ゲル法の例である。
無担体電気泳動としても知られる自由流動電気泳動(FFE)は、連続電気泳動及び液体に基づく分離技術である。それは、典型的には、タンパク質、ペプチド、オルガネラ、細胞、DNAオリガミ及び粒子の定量的及び半定量的分離のために使用される。FFEの利点は、分離が、ゲル電気泳動におけるポリアクリルアミドのような、固体マトリックスの相互作用なしに、迅速かつ穏やかな液体に基づく様式で行われるということである。これは、分析物が失われないため、非常に高い回収率を確保する。FFE分離は連続的であり、分取的適用のためにハイスループットの分析物を確保する。さらに、分離を、天然条件又は変性条件下で行うことができる。2つのプレート間で均等かつ層流の液膜を伝導し、平行分画チューブ中に分割し、マイクロタイタープレート中に収集する。高い電圧電場を、層流に対して垂直に印加する。層流中の分析物を、電荷密度及び等電点によって分離する。
焦点電気泳動としても知られる、等電点電気泳動(IEF)は、等電点(pI)の差異によって様々な分子を分離するための技術である。IEFは、両性電解質溶液を固定化pH勾配(IPG)ゲル中に添加することを含む。IPGは、pH勾配でコポリマー化されたアクリルアミドゲルマトリックスであり、最もアルカリ性(>12)のpH値を除いて完全に安定な勾配をもたらす。固定化pH勾配は、Immobilineの比の連続的変化によって得られる。Immobilineは、そのpK値によって規定される弱酸又は塩基である。その等電点(pI)よりも低いpH領域にあるタンパク質は、正に荷電し、したがって、陰極(負に荷電した電極)に向かって移動する。しかしながら、それが増加するpHの勾配を通って移動するにつれて、タンパク質がそのpIに一致するpH領域に達するまで、タンパク質の全体の電荷は減少する。この点で、それは正味の電荷を有さず、したがって、移動は停止する(何れかの電極に向かう電気的引力が存在しないため)。結果として、タンパク質は鋭い安定したバンドに集中し、それぞれのタンパク質はそのpIに一致するpH勾配中の点に位置する。この技術は、別々のバンドに分画される単一の電荷によって異なるタンパク質に関して極端に高く分解することができる。集中する分子は、pH勾配(通常、脂肪族両性電解質によって作られる)を有する媒体にわたって分布する。電流は媒体を通過し、「正の」陽極末端と「負の」陰極末端とを作る。負に荷電した分子は、媒体中のpH勾配を通って、「正の」末端に向かって移動するが、正に荷電した分子は「負の」末端に向かって移動する。粒子がその電荷の反対の極に向かって移動する際に、それはその分子のpHが等電点に達する点に達するまで変化するpH勾配を通って移動する。この点で、分子は最早電荷を有さず(結合した官能基のプロトン化又は脱プロトン化のため)、そのようなものとして、ゲル内でさらに進まない。勾配は、最初にpI値が変化するポリ両性電解質などの低分子の溶液を電気泳動にかけることによって、目的の粒子を添加する前に確立される。
免疫電気泳動は、電気泳動及び抗体との反応に基づくタンパク質の分離及び特徴付けのためのいくつかの生化学的方法の一般名である。免疫電気泳動の変形は、典型的には、分離されるか、又は特徴付けられるタンパク質と反応する、抗体としても知られる免疫グロブリンを使用する。高いpH(約8.6)で緩衝化された約1mmの厚さの1%ゲルスラブとしてのアガロースが、電気泳動並びに抗体との反応にとって伝統的に好ましい。アガロースは、タンパク質の自由な通過及び分離を可能にする大きな孔径を有するが、タンパク質及び特異的抗体の免疫沈降のためのアンカーを提供するため、それをゲルマトリックスとして選択した。抗体は高いpHで実際に移動しないため、高いpHを選択した。電気泳動のためには、水平冷却プレートを有する電気泳動装備が通常推奨された。免疫沈降物は、湿潤アガロースゲル中に見られるが、乾燥ゲル中でクマシーブリリアントブルーのようなタンパク質色素で染色される。SDS-ゲル電気泳動とは対照的に、アガロース中での電気泳動は、調査中のタンパク質の天然の構造及び活性を保持する、天然の条件を可能にし、したがって、免疫電気泳動は、電気泳動分離に加えて、酵素活性及びリガンド結合などの特徴付けを可能にする。
ゲルシフトアッセイ、ゲル移動度シフトアッセイ、バンドシフトアッセイ、又はゲル遅延アッセイとも称される、電気泳動移動度シフトアッセイ(EMSA)又は移動度シフト電気泳動は、タンパク質-DNA又はタンパク質-RNA相互作用を研究するための使用される一般的なアフィニティー電気泳動技術である。この手順は、タンパク質又はタンパク質の混合物が所与のDNA又はRNA配列に結合することができるかどうかを決定することができ、時には、1を超えるタンパク質分子が結合複合体中に含まれるかどうかを示すこともできる。ゲルシフトアッセイは、転写開始、DNA複製、DNA修復又はRNAプロセシング及び成熟を研究する場合に、DNaseフットプリンティング、プライマー伸長、及びプロモーター-プローブ実験と同時に、in vitroで実施されることが多い。先駆けをより早期の文献に見出すことができるが、多くの現在のアッセイは、Garner及びRevzin及びFried及びCrothersにより記載された方法に基づく。
RFLP分析。DNAを、血液試料などの細胞から収集し、制限酵素を使用して小片に切断する。これにより、異なる個体のDNA配列間での変異の結果として異なるサイズの数千個のDNA断片が生成される。次いで、断片を、ゲル電気泳動を使用してサイズに基づいて分離する。次いで、分離された断片を、ニトロセルロース又はナイロンフィルターに転移させる;この手順は、サザンブロットと呼ばれる。ブロット内のDNA断片をフィルターに永続的に固定し、DNA鎖を変性させる。次いで、反復配列を含有するゲノム中の配列と相補的である放射標識されたプローブ分子を添加する。これらの反復配列は、異なる個体間で長さが変化する傾向があり、可変数縦列型反復配列又はVNTRと呼ばれる。プローブ分子は、反復配列を含有するDNA断片にハイブリダイズし、過剰のプローブ分子は洗浄除去される。次いで、ブロットをX線フィルムに曝露する。プローブ分子に結合したDNAの断片は、フィルム上で暗いバンドとして現れる。
ザイモグラフィーは、酵素の基質レパートリーに基づく、加水分解酵素の検出のための電気泳動技術である。ゲルザイモグラフィーでは、試料を、SDS-PAGEのための標準的な非還元的ローディングバッファー中で調製する。還元剤又は沸騰は酵素の再フォールディングを阻害するため、これらのものは必要ない。好適な基質(一般的には、ゼラチン又はカゼイン)を、アクリルアミドゲルの調製中に分解ゲル中に埋め込む。電気泳動後、非緩衝化Triton X-100中でインキュベートし、次いで、37℃で一定時間にわたって適切な消化バッファー中でインキュベートすることによって、SDSをゲル(又はザイモグラム)から除去する。続いて、ザイモグラムを染色すると(一般的には、アミドブラック又はクマシーブリリアントブルーを用いる)、消化の領域が、基質が酵素によって分解された暗く染色されたバックグラウンドに対して明確なバンドとして現れる。
使用することができる例示的な遺伝子発現プロファイリング技術としては、以下のセクションにさらに記載され、当業界で公知のような、PCR、DNAマイクロアレイ、SAGE、リアルタイムPCR、ディファレンシャルディスプレイPCR、及びRNA-seqを用いるDNAプロファイリングが挙げられる。
ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)プロセスは、DNA複製の生物学的プロセスを模倣するが、それを目的の特異的DNA配列に限定する。PCR技術の開示と共に、DNAプロファイリングは、識別力と、非常に小さい(又は分解された)出発試料から情報を回収する能力との両方において大きく躍進した。PCRは、特定のDNA領域の量を大きく増幅させる。PCRプロセスでは、DNA試料を、加熱により別個のポリヌクレオチド鎖に変性させる。2つのオリゴヌクレオチドDNAプライマーを使用して、各プライマーの活性末端(すなわち、3’末端)の通常の酵素的伸長が他方のプライマーに向かって導くような様式で、反対のDNA鎖上の2つの対応する近隣部位にハイブリダイズさせる。PCRは、熱安定性Taqポリメラーゼなどの高温に耐える複製酵素を使用する。この様式で、2つの新しいコピーの目的の配列が生成される。この様式での変性、ハイブリダイゼーション、及び伸長の反復により、指数的に増殖する数の目的のDNAコピーが生産される。サーマルサイクリングを実施する機器は、現在では商業的供給源から容易に入手可能である。このプロセスは、2時間以下で所望の領域の100万倍以上の増幅をもたらすことができる。
マイクロアレイの背後にある核となる原理は、相補的ヌクレオチド塩基対間で水素結合を形成することにより、互いに特異的に対形成する相補的核酸配列の特性である、2つのDNA鎖間のハイブリダイゼーションである。ヌクレオチド配列中の多数の相補的塩基対は、2つの鎖間のより緊密な非共有結合を意味する。非特異的結合配列を洗浄除去した後、強く対形成した鎖のみが依然としてハイブリダイズしていると予想される。プローブ配列に結合する蛍光標識された標的配列は、ハイブリダイゼーション条件(温度など)、及びハイブリダイゼーション後の洗浄に依存するシグナルを生成する。スポット(特徴)に由来するシグナルの総強度は、そのスポット上に存在するプローブに結合する標的試料の量に依存する。マイクロアレイは、特徴の強度が異なる条件下での同じ特徴の強度と比較し、特徴の同一性がその位置によって公知である相対量を使用する。
遺伝子発現の連続分析(SAGE)は、転写物の断片に対応する小さいタグの形態の目的の試料中のメッセンジャーRNA集団のスナップショットを生産する分子生物学者によって使用される技術である。簡単に述べると、SAGE実験は、以下のように進行する。
リアルタイムポリメラーゼ連鎖反応は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に基づく分子生物学の実験技術である。それは、従来のPCRのように、その終わりではなく、PCR中に、すなわち、リアルタイムで、標的DNA分子の増幅をモニタリングする。リアルタイムPCRを、定量的に(定量的リアルタイムPCR)、半定量的に、すなわち、ある特定の量のDNA分子の上/下で(半定量的リアルタイムPCR)、又は定性的に(定性的リアルタイムPCR)使用することができる。リアルタイムPCRにおけるPCR産物の検出のための2つの一般的方法は、(1)任意の二本鎖DNAに挿入する非特異的蛍光色素、及び(2)プローブとその相補的配列とのハイブリダイゼーション後にのみ検出を可能にする蛍光リポーターで標識されたオリゴヌクレオチドからなる配列特異的DNAプローブである。リアルタイムPCRを、少なくとも1つの特定の波長の光のビームを各試料に当て、励起されたフルオロフォアにより放出される蛍光を検出する能力を有するサーマルサイクラー中で実行する。サーマルサイクラーはまた、試料を急速に加熱及び冷却し、それによって、核酸及びDNAポリメラーゼの物理化学的特性を利用することができる。PCRプロセスは、一般的には、25-50回反復される一連の温度変化からなる。これらのサイクルは通常、3つの段階からなる:約95度での第1段階は、二本鎖の分離を可能にする;約50-60℃の温度での第2段階は、プライマーとDNA鋳型との結合を可能にする;約68-72℃での第3段階は、DNAポリメラーゼによって実行される重合を容易にする。断片のサイズが小さいことに起因して、酵素はアラインメント段階と変性段階の間の変化中にその数を増加させることができるため、最後の工程は通常、この型のPCRでは省略される。さらに、4工程のPCRでは、各サイクル中でほんの数秒間続く短い温度フェーズ中に、例えば、80度の温度で蛍光を測定して、非特異的色素を使用する場合にプライマーダイマーの存在によって引き起こされるシグナルを減少させる。各サイクルのための使用される温度及びタイミングは、DNAを合成するために使用される酵素、反応物中の二価イオン及びデオキシリボヌクレオチド(dNTP)の濃度並びにプライマーの結合温度などの様々なパラメータに依存する。
ディファレンシャルディスプレイ(DDRT-PCR又はDD-PCRとも称される)は、研究者が真核細胞試料の任意の対の間のmRNAレベルでの遺伝子発現の変化を比較及び同定することができる技術である。このアッセイを、必要に応じて、1を超える対に拡張することができる。対になった試料は、研究者が遺伝子発現パターンを研究することを望み、特定の差異の根本原因又は実験によって影響される特定の遺伝子を解明することを望む形態学的、遺伝学的又は他の実験的差異を有すると予想される。ディファレンシャルディスプレイの概念は、細胞中の多くのmRNAを体系的に増幅させ、可視化するために固定されたオリゴ-dTプライマーと組み合わせた限定数の短い任意のプライマーを使用することである。1990年代初頭でのその開示の後、ディファレンシャルディスプレイは、mRNAレベルで示差的に発現される遺伝子を同定するための一般的な技術になった。高い精度及び読出しを提供する、蛍光DDプロセス並びに放射標識などの様々な簡素化されたDD-PCRプロトコールが提唱されている。
全トランスクリプトームショットガン配列決定(WTSS)とも呼ばれる、RNA配列決定(RNA-seq)は、所与の瞬間でのゲノムからのRNAの存在及び量のスナップショットを示す次世代配列決定の能力を使用する技術である。
タンパク質質量分析とは、タンパク質の研究への質量分析の適用を指す。質量分析は、タンパク質の特徴付けのための重要な新しい方法である。全タンパク質のイオン化のための2つの主要な方法は、電子スプレーイオン化(ESI)及びマトリックス支援レーザー脱離/イオン化(MALDI)である。利用可能な質量分析計の性能及び質量範囲に沿って、2つの手法がタンパク質を特徴付けるために使用される。第1に、インタクトなタンパク質を、上記の2つの技術の何れかによってイオン化した後、質量分析装置に導入する。この手法は、タンパク質分析の「トップダウン」戦略と称される。第2に、タンパク質を、トリプシンなどのプロテアーゼを使用してより小さいペプチドに酵素的に消化する。続いて、これらのペプチドを質量分析計に導入し、ペプチド質量フィンガープリンティング又はタンデム質量分析によって同定する。したがって、この後者の手法(「ボトムアップ」プロテオミクスとも呼ばれる)は、タンパク質の存在を推測するためにペプチドレベルでの同定を使用する。全タンパク質質量分析は主に、飛行時間(TOF)MS、又はフーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴(FT-ICR)の何れかを使用して行われる。これらの2つの型の機器は、その広い質量範囲、及びFT-ICRの場合、その高い質量精度のため、それらが好ましい。タンパク質分解ペプチドの質量分析は、より安価な機器設計を特徴付けのために使用することができるため、タンパク質特徴付けのはるかにより一般的な方法である。さらに、一度、全タンパク質がより小さいペプチド断片に消化されたら、試料調製がより容易である。ペプチド質量分析のための最も広く使用されている機器は、高いペースでペプチド質量フィンガープリント(PMF)の獲得を可能にする(1つのPMFを約10秒で分析することができる)ため、MALDI飛行時間機器である。多段階四重極飛行時間及び四重極イオントラップも、本出願において有用である。
近年、DNAメチル化の測定によってがんを診断する方法が提唱されている。DNAメチル化は主に、転写因子の結合を阻害し、かくして、遺伝子の発現を沈黙化させる特定の遺伝子のプロモーター領域中のCpG島のシトシン上で起こる。かくして、腫瘍阻害遺伝子のプロモーター中のCpG島のメチル化の検出は、がん研究に大いに役立つ。近年、がんの診断及びスクリーニングのために、メチル化特異的PCR(本明細書では以後、MSPと称する)又は自動化DNA配列決定などの方法によって、プロモーターのメチル化を決定する試みが活発に行われている。その全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2009069984A2号を参照されたい。
少なくとも一部の実施態様は、標本を分析するための方法及びシステムに関する。標本を、その特性に基づいて分析することができる。これらの特性は、加工中に静的又は動的であってよい音響特性、機械的特性、光学的特性などを含む。一部の実施態様では、標本の特性を、加工中に連続的又は定期的にモニタリングして、標本の状態(state/condition)を評価する。得られた情報に基づいて、加工を制御して、加工の一貫性を増強し、加工時間を減少させ、加工の品質を改善するなどする。音響を使用して、試料などの柔らかい物体を分析することができる。音響シグナルが試料と相互作用する場合、伝播されるシグナルは、弾性及び硬度などの、試料のいくつかの機械的特性に依存する。固定剤(例えば、ホルマリン)中に入れられた試料はより重度に架橋するようになるため、伝播の速度は試料の特性に応じて変化すると予想される。一部の実施態様では、生物学的試料の状態を、音響波の飛行時間に基づいてモニタリングすることができる。状態は、密度状態、固定状態、染色状態などであってもよい。モニタリングは、限定されるものではないが、試料密度、架橋、脱灰、色素着色などの変化の測定を含んでもよい。生物学的試料は、骨などの非流体試料、又は他の型の試料であってもよい。一部の実施態様では、方法及びシステムは、標本をモニタリングするための音響エネルギーの使用に関する。反射モード及び/又は伝播モードでの音響エネルギー間の相互作用に基づいて、標本に関する情報を取得することができる。音響測定を行うことができる。測定値の例としては、音響シグナルの振幅、減衰、散乱、吸収、標本中での飛行時間(TOF)、音響波の位相シフト、又はその組合せが挙げられる。標本は、一部の実施態様では、加工中に変化する特性を有する。一部の実施態様では、固定剤を標本に適用する。標本がより固定されるようになるにつれて、分子架橋のため、機械的特性(例えば、弾性、剛性など)が変化する。これらの変化を、TOFによる音速測定を使用してモニタリングすることができる。測定値に基づいて、固定剤の状態又は標本の他の組織学的状態を決定することができる。過少固定又は過剰固定を回避するために、試料の静的特徴、試料の動的特徴、又はその両方をモニタリングすることができる。試料の特徴としては、伝播特徴、反射率特徴、吸収特徴、減衰特徴などが挙げられる。ある特定の実施態様では、試料を評価するための方法は、試料の加工の前、間及び/又は後に音響波速度を分析することを含む。これは、音響波を、伝達装置から、対象から採取された試料に送達することにより、新鮮な、固定されていない試料に関するベースライン測定値を最初に確立することによって達成される。ベースラインTOF音響波を、受信器を使用して検出する。試料を加工した後、又はその間に、第2の音響波を、伝達装置から試料に送達する。第2のTOF音響波を、第2の音響波が試料を通って伝わった後に受信器を使用して検出する。試料中の音速を、第1のTOFと第2のTOFに基づいて比較して、速度の変化を決定する。これらの測定値は、分析される各試料について固有なものであってよく、したがって、各試料に関するベースラインを確立するために使用することができる。さらなるTOF測定値を使用して、媒体に起因するTOFの寄与、測定チャネルなどを決定することができる。一部の実施態様では、標本が媒体のベースラインTOFを決定するために存在しない場合、媒体のTOFを測定する。その全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2011109769号を参照されたい。
リピドミクス研究は、数千個の細胞脂質分子種の同定及び定量化並びに他の脂質、タンパク質、及び他の代謝物とのその相互作用を含む。リピドミクスにおける調査者は、細胞脂質の構造、機能、相互作用、及び動力学並びにシステムの摂動中に生じる変化を検査する。リピドミック分析技術は、質量分析(MS)、核磁気共鳴(NMR)分光法、蛍光分光法、二重偏波干渉分光法及びコンピュータ計算法を含んでもよい。リピドミック研究では、異なる脂質分子種の含量及び組成の空間的及び時間的変化を定量的に記載するデータは、その生理学的又は病理学的状態の変化による細胞の摂動後に生じる。これらの試験から得られる情報は、細胞機能の変化への機構的洞察を容易にする。
試料中の免疫細胞定量化は、エピジェネティックに基づく、定量的リアルタイムPCR支援細胞計測(qPACC)を使用することによって行うことができる。活発に発現されるか、又は沈黙化される遺伝子の何れかのクロマチン構造のメチル化状態は、エピジェネティックに基づく細胞の同定及び定量化技術の基礎である。ジヌクレオチド、シトシンリン酸グアニン中のシトシン塩基の5’炭素からのメチル基の細胞型特異的除去(脱メチル化)の発見は、ほんの少量のヒト血液又は組織試料からの免疫細胞の正確かつ強固な定量化を可能にする。ゲノムDNA上に位置するこれらのエピジェネティックなバイオマーカーは、目的の細胞と安定的に関連する。Kleen及びYuan (November 2015). 「Quantitative real-time PCR assisted cell counting (qPACC) for epigenetic - based immune cell quantification in blood and tissue」、J. Immunother. Cancer 46 (3)。
限定されるものではないが、RNA、DNA、又はタンパク質配列決定などの技術を使用する、限定されるものではないが、がんの存在と関連するタンパク質、抗原、酵素、ホルモン、DNA突然変異、及び炭水化物などの「腫瘍マーカー」の検出は、がんの型の正確な診断にとって、及び適切な治療方法の選択にとって重要である。そのようなマーカーとしては、限定されるものではないが、アルファフェトタンパク質(限定されるものではないが、生殖細胞腫瘍及び肝細胞癌と関連することが多い)、CA15-3(限定されるものではないが、乳がんと関連することが多い)、CA27-29(限定されるものではないが、乳がんと関連することが多い)、CA19-9(限定されるものではないが、膵臓がん、結腸直腸がん及び他の型の胃腸がんと関連することが多い)、CA-125(限定されるものではないが、卵巣がん、子宮内膜がん、卵管がん、肺がん、乳がん及び胃腸がんと関連することが多い)、カルシトニン(限定されるものではないが、甲状腺髄様癌と関連することが多い)、カルレチニン(限定されるものではないが、中皮腫、性索-生殖腺間質腫瘍、副腎皮質癌、滑膜肉腫と関連することが多い)、がん胎児性抗原(限定されるものではないが、胃腸がん、子宮頸がん、肺がん、卵巣がん、乳がん、尿路がんと関連することが多い)、CD34(限定されるものではないが、血管周囲細胞腫/単発性線維性腫瘍、多形性脂肪腫、消化管間質腫瘍、隆起性皮膚線維肉腫と関連することが多い)、CD99MIC2(限定されるものではないが、ユーイング肉腫、原始神経外胚葉性腫瘍、血管周囲細胞腫/単発性線維性腫瘍、滑膜肉腫、リンパ腫、白血病、性索-生殖腺間質腫瘍と関連することが多い)、CD117(限定されるものではないが、消化管間質腫瘍、肥満細胞症、精上皮腫と関連することが多い)、クロモグラニン(限定されるものではないが、神経内分泌腫瘍と関連することが多い)、第3、7、17、及び9p21染色体(限定されるものではないが、膀胱がんと関連することが多い)、様々な型のサイトケラチン(限定されるものではないが、多くの型の癌腫及び一部の型の肉腫と関連することが多い)、デスミン(限定されるものではないが、平滑筋肉腫、骨格筋肉腫、及び子宮内膜間質肉腫と関連することが多い)、上皮膜抗原(限定されるものではないが、様々な型の癌腫、髄膜腫、及び一部の型の肉腫と関連することが多い)、第VIII因子/CD31FL1(限定されるものではないが、血管肉腫と関連することが多い)、グリア細胞繊維性酸性タンパク質(限定されるものではないが、神経膠腫(星状細胞腫、上衣腫)と関連することが多い)、グロス嚢胞症液タンパク質(限定されるものではないが、乳がん、卵巣がん、及び唾液腺がんと関連することが多い)、HMB-45(限定されるものではないが、メラノーマ、PECオーマ(例えば、血管筋脂肪腫)、明細胞癌、副腎皮質癌と関連することが多い)、ヒト絨毛性ゴナドトロピン(限定されるものではないが、妊娠性絨毛性疾患、生殖細胞腫瘍、及び絨毛癌と関連することが多い)、免疫グロブリン(限定されるものではないが、リンパ腫、白血病と関連することが多い)、インヒビン(限定されるものではないが、性索-生殖腺間質腫瘍、副腎皮質癌、血管芽細胞腫と関連することが多い)、様々な型のケラチン(限定されるものではないが、癌腫、一部の型の肉腫と関連することが多い)、様々な型のリンパ球マーカー(限定されるものではないが、リンパ腫、白血病と関連することが多い)、MART-1(Melan-A)(限定されるものではないが、メラノーマ、ステロイド産生腫瘍(副腎皮質癌、性腺腫瘍)と関連することが多い)、Myo D1(限定されるものではないが、横紋筋肉腫、小型丸型青色細胞腫瘍と関連することが多い)、筋肉特異的アクチン(MSA)(限定されるものではないが、筋肉腫(平滑筋肉腫、横紋筋肉腫)と関連することが多い)、ニューロフィラメント(限定されるものではないが、神経内分泌腫瘍、小細胞肺癌と関連することが多い)、ニューロン特異的エノラーゼ(限定されるものではないが、神経内分泌腫瘍、小細胞肺癌、乳がんと関連することが多い)、胎盤アルカリホスファターゼ(PLAP)(限定されるものではないが、精上皮腫、未分化胚細胞腫、胎生期癌と関連することが多い)、前立腺特異的抗原(限定されるものではないが、前立腺がんと関連することが多い)、PTPRC(CD45)(限定されるものではないが、リンパ腫、白血病、組織球性腫瘍と関連することが多い)、S100タンパク質(限定されるものではないが、メラノーマ、肉腫(神経肉腫、脂肪腫、軟骨肉腫)、星状細胞腫、消化管間質腫瘍、唾液腺がん、一部の型の腺癌、組織球性腫瘍(樹状細胞、マクロファージ)と関連することが多い)、平滑筋アクチン(SMA)(限定されるものではないが、消化管間質腫瘍、平滑筋肉腫、PECオーマと関連することが多い)、シナプトフィシン(限定されるものではないが、神経内分泌腫瘍と関連することが多い)、サイログロブリン(限定されるものではないが、甲状腺がんの術後マーカーと関連することが多い)、甲状腺転写因子-1(限定されるものではないが、あらゆる型の甲状腺がん、肺がんと関連することが多い)、腫瘍M2-PK(限定されるものではないが、結腸直腸がん、乳がん、腎細胞癌、肺がん、膵臓がん、食道がん、胃(stomach)がん、子宮頸がん、卵巣がんと関連することが多い)、ビメンチン(限定されるものではないが、肉腫、腎細胞癌、子宮内膜がん、肺癌、リンパ腫、白血病、メラノーマと関連することが多い)、ALK遺伝子再配列(限定されるものではないが、非小細胞肺がん及び未分化大細胞リンパ腫と関連することが多い)、ベータ-2-ミクログロブリン(B2M)(限定されるものではないが、多発性骨髄腫、慢性リンパ球性白血病、及び一部のリンパ腫と関連することが多い)、ベータ-ヒト絨毛性ゴナドトロピン(ベータ-hCG)(限定されるものではないが、絨毛癌及び生殖細胞腫瘍と関連することが多い)、BRCA1及びBRCA2遺伝子突然変異(限定されるものではないが、卵巣がんと関連することが多い)、BCR-ABL融合遺伝子(フィラデルフィア染色体)(限定されるものではないが、慢性骨髄性白血病、急性リンパ芽球性白血病、及び急性骨髄性白血病と関連することが多い)、BRAF V600突然変異(限定されるものではないが、皮膚メラノーマ及び結腸直腸がんと関連することが多い)、CD20(限定されるものではないが、非ホジキンリンパ腫と関連することが多い)、クロモグラニンA(CgA)(限定されるものではないが、神経内分泌腫瘍と関連することが多い)、上皮起源の循環腫瘍細胞(CELLSEARCH(登録商標))(限定されるものではないが、転移性乳がん、前立腺がん、及び結腸直腸がん)、サイトケラチン断片21-1(限定されるものではないが、ランチがん(lunch cancer)と関連することが多い)、EGFR遺伝子突然変異分析(限定されるものではないが、非小細胞肺がんと関連することが多い)、エストロゲン受容体(ER)/プロゲステロン受容体(PR)(限定されるものではないが、乳がんと関連することが多い)、HE4(限定されるものではないが、卵巣がんと関連することが多い)、KRAS遺伝子突然変異分析(限定されるものではないが、結腸直腸がん及び非小細胞肺がんと関連することが多い)、乳酸デヒドロゲナーゼ(限定されるものではないが、生殖細胞腫瘍、リンパ腫、白血病、メラノーマ、及び神経芽細胞腫と関連することが多い)、ニューロン特異的エノラーゼ(NSE)(限定されるものではないが、小細胞肺がん及び神経芽細胞腫と関連することが多い)、核マトリックスタンパク質22(限定されるものではないが、膀胱がんと関連することが多い)、プログラム細胞死リガンド1(PD-L1)(限定されるものではないが、非小細胞肺がんと関連することが多い)、ウロキナーゼプラスミノゲン活性化因子(uPA)及びプラスミノゲン活性化因子阻害剤(PAI-1)(限定されるものではないが、乳がんと関連することが多い)、5-タンパク質シグネチャー(OVA1(登録商標))(限定されるものではないが、卵巣がんと関連することが多い)、21-遺伝子シグネチャー(Oncotype DX(登録商標))(乳がんと関連することが多い)、70-遺伝子シグネチャー(Mammaprint(登録商標))(限定されるものではないが、乳がんと関連することが多い)、及びHER2/neu遺伝子増幅又は過剰発現(限定されるものではないが、乳がん、卵巣がん、胃食道接合部腺癌、胃(stomach)がん、非小細胞肺がん及び子宮がんと関連することが多い)が挙げられる。腫瘍と関連するさらなるバイオマーカーは、限定されるものではないが、Pl3KCA突然変異、FGFR2増幅、p53突然変異、BRCA突然変異、CCND1増幅、MAP2K4突然変異、ATR突然変異、又は発現が特定のがんと相関する任意の他のバイオマーカー;AFP、ALK、BCR-ABL、BRCA1/BRCA2、BRAF、V600E、Ca-125、CA19.9、EGFR、Her-2、KIT、PSA、S100、KRAS、ER/Pr、UGT1A1、CD30、CD20、F1P1L1-PDGRFa、PDGFR、TMPT、及びTMPRSS2;のうちの少なくとも1つ;又はABCB5、AFP-L3、アルファ-フェトタンパク質、アルファ-メチルアシル-CoAラセマーゼ、BRCA1、BRCA2、CA15-3、CA242、Ca27-29、CA-125、CA15-3、CA19-9、カルシトニン、がん胎児性抗原、がん胎児性抗原ペプチド-1、デス-ガンマカルボキシプロトロンビン、デスミン、初期前立腺がん抗原-2、エストロゲン受容体、フィブリン分解産物、グルコース-6-リン酸イソメラーゼ、vE6、E7、L1、L2若しくはp16INK4aなどのHPV抗原、ヒト絨毛性ゴナドトロピン、IL-6、ケラチン19、乳酸デヒドロゲナーゼ、ロイシルアミノペプチダーゼ、リポトロピン、メタンフリン、ネプリリシン、NMP22、ノルメタンフリン、PCA3、前立腺特異的抗原、前立腺酸性ホスファターゼ、シナプトフィシン、サイログロブリン、TNF、ERG、ETV1(ER81)、FLI1、ETS1、ETS2、ELK1、ETV6(TEL1)、ETV7(TEL2)、GABPa、ELF1、ETV4(E1AF;PEA3)、ETV5(ERM)、ERF、PEA3/E1AF、PU.1、ESE1/ESX、SAP1(ELK4)、ETV3(METS)、EWS/FLI1、ESE1、ESE2(ELF5)、ESE3、PDEF、NET(ELK3;SAP2)、NERF(ELF2)、又はFEV、から選択される転写因子、腫瘍関連糖タンパク質72、c-kit、SCF、pAKT、pc-kit、及びビメンチンから選択される少なくとも1つのバイオマーカーを含んでもよい。あるいは、又はさらに、目的のバイオマーカーは、限定されるものではないが、CTLA-4、PDL1、PDL2、PD1、B7-H3、B7-H4、BTLA、HVEM、KIR、TIM3、GAL9、GITR、LAG3、VISTA、
KIR、2B4、TRPO2、CD160、CGEN-15049、CHK1、CHK2、A2aR、TL1A、及びB-7ファミリーリガンド若しくはその組合せなどの免疫チェックポイント阻害剤であってよいか、又はCTLA-4、PDL1、PDL2、PD1、B7-H3、B7-H4、BTLA、HVEM、TIM3、GAL9、LAG3、VISTA、KIR、2B4、CD160、CGEN-15049、CHK1、CHK2、A2aR、B-7ファミリーリガンド、若しくはその組合せからなる群から選択されるチェックポイントタンパク質のリガンドである。さらなるマーカーとしては、限定されるものではないが、急性リンパ芽球性白血病(etv6、am11、シクロフィリンb)、B細胞リンパ腫(Igイディオタイプ)、神経膠腫(E-カドヘリン、アルファ-カテニン、ベータ-カテニン、ガンマ-カテニン、p120ctn)、膀胱がん(p21ras)、胆管がん(p21ras)、乳がん(MUCファミリー、HER2/neu、c-erbB-2)、子宮頸癌(p53、p21ras)、結腸癌(p21ras、HER2/neu、c-erbB-2、MUCファミリー)、結腸直腸がん(結腸直腸関連抗原(CRC)-C017-1A/GA733、APC)、絨毛癌(CEA)、上皮細胞がん(シクロフィリンb)、胃(gastric)がん(HER2/neu、c-erbB-2、ga733糖タンパク質)、肝細胞がん(アルファ-フェトタンパク質)、ホジキンリンパ腫(Imp-1、EBNA-1)、肺がん(CEA、MAGE-3、NY-ESO-1)、リンパ球由来白血病(シクロフィリンb)、メラノーマ(p5タンパク質、gp75、腫瘍胎児抗原、GM2及びGD2ガングリオシド、Melan-A/MART-1、cdc27、MAGE-3、p21ras、gp100.sup.Pmel117)、骨髄腫(MUCファミリー、p21ras)、非小細胞肺癌(HER2/neu、c-erbB-2)、上咽頭がん(Imp-1、EBNA-1)、卵巣がん(MUCファミリー、HER2/neu、c-erbB-2)、前立腺がん(前立腺特異的抗原(PSA)及びその抗原性エピトープPSA-1、PSA-2、及びPSA-3、PSMA、HER2/neu、c-erbB-2、ga733糖タンパク質)、腎がん(HER2/neu、c-erbB-2)、子宮頸部及び食道の扁平上皮がん(ヒトパピローマウイルスタンパク質などのウイルス産物)、精巣がん(NY-ESO-1)、及び/又はT細胞白血病(HTLV-1エピトープ)と関連する少なくとも1つのバイオマーカーの検出が挙げられる。
推定循環腫瘍細胞は、AML、CML、多発性骨髄腫、脳腫瘍、乳腫瘍、メラノーマ、及び前立腺がん、結腸がん、及び胃(gastric)がんなどの複数のヒト腫瘍において現在報告されている。原理的には、循環腫瘍細胞を、いくつかの実験戦略によって同定することができる。多くの循環腫瘍細胞は、その正常な対応物を同定する細胞表面マーカーを発現すると考えられる。この観察は、細胞のフローサイトメトリーに基づく細胞選別又はマイクロビーズに基づくアフィニティー精製の何れかを使用する比較的単純な富化手順を提供する。Schawb, M. Encyclopedia of Cancer, 3rd edition, Springer- Verlag Berlin Heidelberg, 2011を参照されたい。
さらに例示的な実施態様では、試料、又は一若しくは複数のその細胞を、DNA配列決定にかけることができる。DNA配列決定を、例えば、特定の遺伝子、領域、調節配列、イントロン、エクソン、SNP、潜在的な融合物などに標的化して、例えば、がんと関連する、又はその診断と関連する配列を検出することができる。DNA配列決定を、全ゲノム又はその有意な部分に対して行うこともできる。使用することができる例示的な配列決定法としては、限定されるものではないが、サンガー配列決定及びダイターミネーター配列決定、並びにピロシーケンシング、ナノポア配列決定、マイクロポアに基づく配列決定、ナノボール配列決定、MPSS、SOLID、Solexa、Ion Torrent、Starlite、SMRT、tSMS、合成による配列決定、ライゲーションによる配列決定、質量分析配列決定、ポリメラーゼ配列決定、RNAポリメラーゼ(RNAP)配列決定、顕微鏡に基づく配列決定、マイクロフルイディクスサンガー配列決定、顕微鏡に基づく配列決定、RNAP配列決定、トンネル電流DNA配列決定、及びin vitroウイルス配列決定などの次世代配列決定(NGS)技術が挙げられる。それぞれその全体が出典明示により本明細書に援用される国際公開第2014144478号、国際公開第2015058093号、国際公開第2014106076号及び国際公開第2013068528号を参照されたい。
融合遺伝子は非融合遺伝子よりもはるかにより活発な異常タンパク質を生産し得るため、融合遺伝子は腫瘍形成に寄与し得る。融合遺伝子は、がんを引き起こすがん遺伝子であることが多い;これらのものとしては、前立腺がんにおいて生じることが多い、第21染色体上の中間部欠失を有する、BCR-ABL、TEL-AML1(t(12;21)を有するALL)、AML1-ETO(t(8;21)を有するM2 AML)、及びTMPRSS2-ERGが挙げられる。TMPRSS2-ERGの場合、アンドロゲン受容体(AR)シグナル伝達を破壊し、腫瘍形成性ETS転写因子によるAR発現を阻害することにより、融合産物は前立腺がんを調節する。多くの融合遺伝子は、血液がん、肉腫、及び前立腺がんから発見される。腫瘍形成性融合遺伝子は、2つの融合パートナーに由来する新しい、又は異なる機能を有する遺伝子産物をもたらし得る。あるいは、癌原遺伝子を強力なプロモーターに融合し、それによって、腫瘍形成機能を、上流の融合パートナーの強力なプロモーターによって引き起こされる上方調節によって機能するように設定する。後者は、がん遺伝子が免疫グロブリン遺伝子のプロモーターと並列するリンパ腫において共通している。また、腫瘍形成性融合転写物は、トランススプライシング又はリードスルー事象によって引き起こされ得る。ある特定の染色体異常及びその結果である融合遺伝子の存在は、正確な診断を行うためにがん診断内で一般的に使用される。染色体分染分析、蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)、及び次世代配列決定(エキソーム及び/又はトランスクリプトーム)が、がん関連融合タンパク質の同定のために診断研究所において使用される一般的な方法である。
薬物耐性は、悪性腫瘍の化学療法の失敗の原因であり、耐性は元々存在する(内因性耐性)か、又は薬物によって誘導される(獲得耐性)である。耐性マーカーの検出は、限定されるものではないが、免疫組織化学及びフローサイトメトリーによる癌関連線維芽細胞の同定、免疫組織化学染色を使用するアルデヒドデヒドロゲナーゼ1、切断されたカスパーゼ3、シクロオキシゲナーゼ2、リン酸化されたAkt、Ki-67、及びH2AXタンパク質、P糖タンパク質発現、ヒアルロナン(細胞外マトリックスの主なグリコサミノグリカン成分)、全ゲノムアレイ比較ゲノミクスハイブリダイゼーションにより同定される、3q26.2の獲得、並びに6q11.2-12、9p22.3、9p22.2-22.1、9p22.1-21.3、Xp22.2-22.12、Xp22.11-11.3、及びXp11.23-11.1の喪失、免疫染色により同定されるLRP過剰発現、RNA配列決定を使用する、マイクロRNA MiR-193a-5pと関連する遺伝子産物であるHGF及びc-MET、細胞選別により同定されるCD44過剰発現、及びヒストンデアセチラーゼの強力な阻害剤であるトリコスタチンAに基づく。化学療法耐性マーカーは、タンパク質の過剰発現、限定されるものではないが、DNA配列決定、RNA配列決定、及びタンパク質配列決定などの技術を使用する、DNA、RNA、又はタンパク質レベルの何れかでのこの過剰発現の同定の形態を取ってもよいことが多い。一部の化学療法耐性マーカーは、エピジェネティックな変化の形態を取り、DNAピロシーケンシングによるこれらの変化の同定は、化学療法耐性マーカーの同定にとって特に有用であり得る。さらに、遺伝子の突然変異は、遺伝子産物の発現に直接影響し、がん性細胞の形成をもたらすことがあり、DNA配列決定による遺伝子突然変異の同定は、非常に有用である。現在では、耐性は通常、長期間の薬物投与後の治療中に診断される。時間と共に、チロシンキナーゼ阻害剤、例えば、上皮増殖因子受容体(EGFR)の阻害剤に対する耐性を付与する特定の突然変異を見出すことができる。PCR又はDNA配列決定を使用する、EGFR遺伝子中のT790Mなどの突然変異の検出は、EGFRチロシンキナーゼ阻害に対する耐性を示し、特に、非小細胞肺がんの場合、そのような阻害剤を用いて患者を治療する可能性を排除する。薬物耐性の迅速な評価のための方法が現在存在している。3つのクラスの試験手順:新鮮な腫瘍細胞培養物試験、がんバイオマーカー試験及びポジトロン放出断層撮影(PET)試験が一般的に使用されている。薬物耐性を、新鮮な腫瘍細胞培養物試験を用いてin vitroで治療前に、及びPET試験を用いてin vivoで短時間の治療後に診断することができる。Lippert, T.等(2011)「Current status of methods to assess cancer drug resistance」、Int. J. Med. Sci. 8 (3): 245-253を参照されたい。
上述のように、対象試料の別の適用は、腫瘍特異的抗体の生産又はがん若しくは腫瘍ワクチンの製造において使用することができる、腫瘍細胞及びそれに由来する抗原の単離のためのものである。
単離された腫瘍細胞に由来する新抗原の同定は、がん(一又は複数)を有する対象の治療にとって最も重要である。そのようなものとして、本開示を使用して生成される試料を、腫瘍試料を用いる新抗原バイオマーカーの同定のために、限定されるものではないが、本出願で考察されるものなどの任意の関連する診断方法にかけることができる。
代表組織試料を、本明細書に記載され、図3に図示されるホモジナイズ方法を使用してホルマリン固定された腫瘍試料から誘導した。一般に、腫瘍試料、すなわち、ホルマリン固定された腫瘍試料を、任意選択的に、周囲の隣接正常組織から除去し、機械的に解離し、元の切除された腫瘍のあらゆる成分を含有する代表試料を生産した。次いで、代表試料を、下流の分析のためにさらに加工することができる。そのような加工は、60mg/mLのコラゲナーゼH及び1mM CaCl2を含有するバッファー(例えば、PBS)に移す前に、CC1バッファー中、85℃での調整を含んでいた。次いで、得られた酵素処理されたホモジナイズされた組織を、40℃で少なくとも約30分間、コラゲナーゼHと共にインキュベートした後、CC1バッファーに戻し、約10分間、85℃で加熱して、残りのコラゲナーゼ酵素を不活化した。次いで、代表試料を使用して、サブ試料を誘導した後、様々な診断アッセイのために使用した。
材料:組織の機械的剪断を、Hamilton Beach Single Serve Blender(Walmart、Tucson、AZ)又はIKA-Works(Staufen in Breisgau、Germany)からのIKA Works Tube Mill Control System(0004180001)を使用して、及びMiltenyi Biotec(Teterow、Germany)からのgentleMACS Dissociatorを使用して実施した。数個の細胞から、数万個の細胞を含有するクラスターまでの、ホモジナイズ後の様々なサイズの組織断片に留意されたい(図15)。加熱及びpHによる細胞調整を、Ventana Medical Systemsからの細胞調整1(CC1)バッファー(Tucson、AZ;カタログ番号950-124)中で実施した。AccuMax(登録商標)を、Innovative Cell Technologies(San Diego、CA)から取得した。コラゲナーゼH(11074032001)を、Roche(Basel、Switzerland)から取得した。Ventana Medical Systems(Tucson、AZ)からの以下の抗体を使用した:抗PD-L1(SP263)ウサギモノクローナル一次抗体(790-4905);抗Ber-EP4マウスモノクローナル抗体(760-4383);抗CD8(SP57)ウサギモノクローナル一次抗体(790-4460);抗HER-2/neu(4B5)ウサギモノクローナル一次抗体(790-2991)。
上記方法を使用して、ヒト腫瘍の臨床組織標本及び固定された動物組織を含む、様々な試料型に由来する代表試料を作出した。
代表腫瘍試料を、腎臓試料及び肺試料から生成した。
材料:組織の機械的剪断を、IKA-Works(Staufen im Breisgau、Germany)からのIKA Works Tube Mill Control System(0004180001)を使用して、また、Miltenyi Biotec(Teterow、Germany)からのgentleMACS Dissociatorを使用して実施した。加熱及びpHによる細胞調整を、Ventana Medical Systemsからの細胞調整1(CC1)バッファー(Tucson、AZ;カタログ番号950-124)中で実施した。コラゲナーゼH(11074032001)を、Roche(Basal、Switzerland)から取得した。Ventana Medical Systems(Tucson、AZ)からの以下の抗体を使用した:抗PD-L1(SP263)ウサギモノクローナル一次抗体(790-4905);抗Ber-EP4マウスモノクローナル抗体(760-4383);抗CD8(SP57)ウサギモノクローナル一次抗体(790-4460);抗HER-2/neu(4B5)ウサギモノクローナル一次抗体(790-2991)。
特に、代表試料を、本明細書に記載され、図3に示される方法に従って、61歳の男性に由来するベースボールサイズの腎臓腫瘍から生成した。標準的なH&E染色を使用して、機械的解離、調整、及び酵素的消化の後に腎臓試料中の組織断片サイズを可視化した(図8A)。次いで、試料を、3つの異なるバイオマーカー:PD-L1(図8B)、CD8(図8C)、及びEp-Cam(図8D)に関するDAB-IHC分析にかけた。3つ全てのタンパク質が、代表腎臓腫瘍臨床試料中で検出された。
代表組織及び腫瘍試料を、本明細書に記載され、図3に図示されるホモジナイズ方法を使用して固定された組織又は腫瘍標本から生成し、目的のタンパク質、例えば、生物学的及び/又は医学的な予後又は予測マーカーを、免疫細胞化学(ICC)を使用して代表試料中で検出した。
スライドガラス上に沈着した代表試料を、自動化ICCを使用して染色することができるかどうかを決定するために、動物組織と扁桃腺標本の調製された混合物に由来する試料を、単一のバイオマーカーDAB ICCについて染色した(図12)。図12は、動物試料とヒト扁桃腺標本との混合物から調製された代表試料中の、自動化DAB ICCを使用して、B細胞を区別する、CD20の検出を示す。CD20は、代表試料中に含有されるヒト扁桃腺組織に由来する細胞中で検出された。
本実施例は、腫瘍転移の結果生じ得るがん細胞の高感度検出を可能にする、リンパ節組織からの代表試料の生成を記載する。代表組織試料を、本明細書に記載され、図3に図示されるホモジナイズ方法を使用してホルマリン固定された腫瘍試料から誘導した。一般に、腫瘍試料、すなわち、ホルマリン固定された腫瘍試料を、最初に機械的に解離した後、85℃のCC1バッファー中で調整した後、1×PBSバッファーに移した。
抗体:抗BRAFV600Eマウスモノクローナル抗体(カタログ番号790-4855、Ventana Medical Systems,Inc.)を使用して、b-Rafを検出した。
リンパ節(扁桃腺)由来の代表試料内の低出現率事象を検出することができるかどうかを決定するために、代表リンパ節試料を、スライドガラス上に沈着させ、図10に記載されるような自動化ICCを使用して染色した。
本実施例は、外科的に切除された原発腫瘍から作出された代表試料を記載する。
代表組織試料を、直径約8cmのホルマリン固定された外科的に切除された結腸、及び腎臓の部分切除から誘導した(GLAS Tissue Consultants、Winston-Salem、NCから調達)(図18A及び18B)。ここで、図18Aは、8cmの結腸腺癌を依然として含有する結腸切除に由来する材料を示すが、図18Bは、乳頭状尿路上皮腎臓腫瘍を含有する腎臓の腎部分切除に由来する残留組織を示す。
細胞型の多様性が元の試料内に含有されるかどうかを決定するために、組織切片と代表試料の両方を、H&Eで染色した(図19及び20及び23)。ここで、図19Aは、結腸の腺癌から得られた第1の切片を示すが、図19Bは、結腸の腺癌に由来する第2の異なる切片を示す。図19A及び19B中のそれぞれの切片は、それぞれ、病理学者によって得られたものである。H&E染色の差異は、同じ腫瘍内の変化を示す。図19Cは、結腸の腺癌から調製された代表試料のH&E染色を示す。図20A-20Cは、乳頭状尿路上皮腎臓腫瘍から得られた異なる組織切片のH&E染色を示す。図20Aは、乳頭状尿路上皮腎臓腫瘍から採取した第1の切片を示す。図20Bは、乳頭状尿路上皮腎臓腫瘍から採取した第2の異なる切片を示す。図10A及び20Bに示されるそれぞれの切片は、病理学者によって得られたものである。H&E染色の差異は、同じ腫瘍内の変化を示す。図20Cは、乳頭状尿路上皮腎臓腫瘍から調製された代表試料のH&E染色を示す。
本実施例は、代表試料を生産するための組織試料の機械的解離及びホモジナイズの工程を記載する。この方法は、組織試料の切断及びミンチ化並びに単一細胞解離を含む。
組織を手作業で切断するか(図25A)又は「ジューサー」などの適切な食品加工機器(図25B)を使用してミンチ化した。この方法はホルマリン固定された扁桃腺組織を使用するが(図25A-25Bに示される)、他の組織型を使用することもできる。扁桃腺を、新鮮に注文し、24時間にわたって、10%中性緩衝化ホルマリン中で固定した後、純粋なエタノール中で保存した。扁桃腺を、外科用メスを使用して手動で細断するか、又はジューサー中で機械的に解離した。次いで、得られたホモジネートを脱水し、組織プロセッサー(PROCESSOR NAME)中、パラフィンワックスでかん流した。4μmの切片を試料から採取し、H&E染色を使用して、組織断片のサイズ分布を可視化した。
ミンチ、切断、及びジュース化が組織断片の均一な分布をもたらしたかどうかを決定するために、リンパ節(扁桃腺)を手作業で細断したか、又はジューサーを使用して機械的に解離した。図25A及び図25Bにおいて明らかなように、手による固定された扁桃腺の細断は、非常に均一なサイズ分布を有する組織断片の混合物をもたらす。組織断片は、数万個から数十万個の細胞を含有し、組織学的に認識可能な様式で臓器の構造を維持する。
本実施例は、定量化、単離、及びバイオマーカー分析のための、臓器、組織、又は腫瘍に由来する代表試料の単一細胞へのさらなる加工(ブレンディング、ジュース化、又はミンチ化による)を記載する。方法は、機械的解離、フィルタリング、酵素的解離、及び超音波処理を含む。
本実施例で使用される臨床腫瘍試料は、GLAS Tissue Consultantsから得られた上記の大きい結腸腺癌である。リンパ節(扁桃腺)、及び結腸腺癌ホモジネートを、上記のように調製した。ホモジネートの試料を、1mmの篩(Advantech Manufacturing、New Berlin、WI)を使用して濾過し、篩を通過することができない材料を収集した。次いで、1mmの篩を通過したホモジネート試料を、20μmのフィルター(Pluriselect、San Diego、CA)を使用して濾過した。20μmのフィルターを通過することができなかった材料を収集した。20μmのフィルターを通過することができたホモジネートを、10μmのフィルターに通過させ、通過した単一細胞を収集した。10μmのフィルターを通過した単一細胞を、800gで5分間遠心分離し、3%BSA及び0.09%アジ化ナトリウムを含むPBS中に再懸濁し、3回繰り返し、上清を廃棄した。単一細胞は、すぐに4℃で保存できる。
連続濾過工程の目標は、ホモジネートを含む様々なサイズの粒子の組成を決定することであった。各工程で、フィルターを通過することができなかった組織を、光学顕微鏡によって注意深く分析した(図29)。図26Aに示されるように、1mmの篩を通過することができなかった材料は、主に結合組織及び筋肉線維から構成されていた。この材料は、細胞性を欠くため、廃棄した。20μmのフィルターを通過することができなかった材料は、主に大きい多細胞クラスターから構成されていた(図26B)。10μmのフィルターを通過することができない材料は主に、腫瘍細胞の小さい多細胞クラスターから構成されていた(図26C)が、10μmのフィルターを通過した材料は、ホモジナイズプロセス中に遊離した単一細胞であった(図26D)。したがって、代表試料を作出するためのヒト腫瘍のホモジナイズは、大きい多細胞クラスターから、個々の細胞までの組織断片サイズの分布を生成する。
20μm及び10μmのフィルターを通過しなかった多細胞断片(又はクラスター)をさらに加工して、単一の細胞を生成した。プローブソニケーターを使用する超音波処理を使用して、多細胞断片を単一細胞に物理的に解離しようとした。多細胞断片を、増大する量の音響エネルギーに曝露し、腫瘍細胞の遊離を、Coulter Counterを使用して粒子のサイズを分析することによって評価した。図35に示されるように、増大する量の音響エネルギーは、直径5.5-9.3μmの粒子の放出をもたらす(245Jパネル中の矢印)。物理的に遊離した細胞は、上記実施例に由来するホモジネートから単離された腫瘍細胞と相関し、これは、多細胞断片が主に腫瘍細胞から構成されることを示唆している。
結腸腫瘍の代表試料に由来する単一細胞を、蛍光染色及びFLOWサイトメトリー分析により、バイオマーカー発現についてさらに特徴付けた。FLOWサイトメトリーは、生検試料から採取された生細胞のための一般的な診断分析法である。数千個から数十万個の細胞を、バイオマーカーの存在又は非存在について調べ、細胞数と、各細胞に関するバイオマーカー発現レベルとを同時に定量することができる。当業者であれば、ホルマリン固定された試料のための現在の分析方法が、単一細胞への解離よりもむしろ、パラフィン包埋化及び組織切片化を含むため、切除された臓器、組織、又は腫瘍に由来するホルマリン固定された組織試料がFLOWサイトメトリーに適していないことを認識できる。以下の実施例は、結腸腫瘍から生産された加工された細胞をFLOWサイトメトリーによって分析することができるかどうかを決定することを目的とするものであった。
細胞を、Ventana Medical Systems,Inc.からのCD3、CD8、CD45、CK8/18、EGFR、及びPD-L1抗体を用いて染色した。一部の事例では、チラミドシグナル増幅を使用して、蛍光染色を改善した。細胞(約3×107細胞/チューブ)を、300×gで2分遠心分離した後、0.3mlの3%H2O2中に再懸濁した。15分のインキュベーションの後、細胞を、PBS中の0.1%Tween20、0.1%BSAで3回洗浄した。TSAブロッキングバッファー(0.3ml)を5分添加した後、37℃で30分、0.2mlの一次抗体中でインキュベートした。次いで、細胞を、PBS中の0.1%Tween20、0.1%BSAで3回洗浄した後、37℃で30分、ホースラディッシュペルオキシダーゼにコンジュゲートした0.2mlのヤギ抗種抗体中に再懸濁した。次に、細胞を1.2mlの20μMチラミド-ローダミン101中に希釈し、5分インキュベートした後、1.2mlのTSA H2O2と共に30分インキュベートした。細胞を、PBS中の0.5%デキストラン、0.1%Tween20、0.1%BSAで3回洗浄し、保存のためにMACS-T-STC中に再懸濁した。イメージング又はフローサイトメトリーの前に、細胞を3μMのDAPIで10分染色した。
Attune FLOWサイトメトリーシステム(ThermoFisher Scientific)を使用して、様々なバイオマーカーを発現する細胞のパーセンテージを定量した。コントロール(一次Abで染色されていない細胞)と試料(一次Abで染色された細胞)との間の蛍光強度シフトは、全細胞集団内の標的細胞の存在量に比例し、これを使用して、集団中の陽性細胞のパーセンテージを算出した。図29A-29Eに示されるように、バックグラウンドより上の蛍光シグナルが、試験した全てのバイオマーカーについて検出された。免疫系及び腫瘍の成分は、同じ試料中で検出された;CK8/18及びEGFRと比較した、CD45及びCD8(図29A-29C)。一部の事例では、免疫細胞と腫瘍細胞の両方を、同時に染色することができる(図29EにおけるPD-L1)。さらに、FLOWサイトメトリー分析において染色陽性の細胞のパーセンテージは、同じ臨床事例に由来する包埋代表試料のIHC染色と類似している(図29A-29E)。
結腸腫瘍の代表試料に由来する単一細胞を単離及び捕捉して、特定の細胞集団の生体分子分析を可能にした。本実施例では、2つの型の単離及び捕捉、FLOWソーティング及び磁気ビーズによるアフィニティーソーティングを使用した。
新鮮な組織の生存能力
新鮮な扁桃腺を、マグネシウムを含まない、かつカルシウムを含まない、1:1(w:v)のDPBS中、IKAブレンダー中で、3000rpmで2分間(Rep)ブレンドし、外科用メスを用いて組織をミンチ化した後、一次細胞培養物についてコラゲナーゼ消化する伝統的な方法(Trad)で調製された扁桃腺と比較した(Donnenberg等、Methods Mol Biol., 568: 261-279, 2009)。
膵臓の高分化型神経内分泌新生物、乳頭状尿路上皮癌、及び結腸腺癌に由来する組織(それぞれ、図35A、35B及び35C)を、指示された温度で6カ月間、標準的な細胞保存溶液(20%グリセロール、10%DMSO、5%MeOH、及び100%MeOH)中でインキュベートした。RNAを、Agilentバイオアナライザー上で単離及び分析した。図35A、35B及び35C中に示されるように、バイオアナライザー追跡における18S RNAのピークの強度の微妙な差異によって示されるような異なるレベルにも拘わらず、全ての保存方法は、RNAの完全性を保持していた(図38A中の20%グリセロール試料を参照されたい)。これらのデータは、ホルマリン固定された代表試料のための複数の保存方法が、長時間にわたってRNAの完全性を保持することを示している。
本実施例は、定量化、単離、及びバイオマーカー分析のために、臓器、組織、又は腫瘍に由来するホルマリン固定された代表試料を(ブレンディング、ジュース化、又はミンチ化により)個々の核にさらに加工することを記載する。方法は、機械的解離、濾過、及び酵素的解離を含む。方法の固有な態様は、1)ホルマリン固定された代表試料から核を含有する単一粒子を抽出及び分解する方法の確立;2)同じ代表試料の異なるアリコートからの粒子単離の再現性の評価;3)機械的解離及び核抽出法により試料に課される細胞破壊の程度をモニタリングするための手法の確立;4)腫瘍と正常部分母集団とを識別するのに役立つ代表試料から抽出された核と結合したままであるマーカーの同定;5)フローサイトメトリーにより固定された代表試料から抽出、染色された材料を分析するための方法の確立;(6)a)配列決定のための十分なDNAを取得する、及びb)低出現率サブクローンのための分析感度を保持するのに必要である腫瘍粒子数の確立を含む。
機械的解離を、IKA-WorksからのIKA Works Tube Mill Control System(0004180001;Staufen im Breisgau、Germany)及びMiltenyi Biotec(Teterow、Germany)からのgentleMACS Dissociatorを用いて実施した。使用した全てのフィルターは、Pluriselect(San Diego、CA)からのものであった。使用したバッファーは、以下の会社:CC1(950-124;Ventana Medical System、Tucson、AZ)、EZプレップ(950-102;Ventana Medical Systems)、Reaction Buffer(950-300;Ventana Medical Systems)、autoMACSバッファー(130-091-221、Miltenyi Biotech)、dPBS(14190、Fisher Scientific、USA)からのものであった。Tween20を、Fisher Scientific、USA(AC233362500)から購入した。以下の試薬を、Sigma、USAから購入した:NP40(74385)、DNAse(AMPD1)、四塩化スペルミン(S2876)、DAPI(D9542)、トリプシン(59427C)、ペプシン(P7012)、プロナーゼ(P5147)。他の酵素は、以下の会社:プロテイナーゼK(0706、VWR、USA)、Accumax(AM105、Innovative Cell Technologies、San Diego、CA)、コラゲナーゼH(11074032001、Roche、Basel、Switzerland)からのものであった。チラミド-ローダミン101を、Sigmaから購入した化学物質を使用して社内で合成した。マウス抗サイトケラチン8/18抗体(760-4344)、マウス抗CD45抗体(760-2505)、及びヤギ抗マウスHRPコンジュゲート抗体(760-4310)は、Ventana Medical Systemsからのものであった。Alexa 488とコンジュゲートしたヤギ抗マウス抗体を、Invitrogen(A-11001)から購入した。
ヒト扁桃腺を、Northwest Medical Center(Tucson、AZ)から取得し、Ventana Medical Systemsで24時間、10%中性緩衝化ホルマリン中で固定した。腫瘍試料をGLAS/(Winston-Salem、NC http://glaswpcopy.wpengine.com/)から取得し、ホルマリン中で予め固定した。
代表試料を、VWRプラススライド上のautoMACSバッファー中に塗布した。ヘマトキシリン及びエオシン(H&E)染色を、Ventana Medical Systems Symphonyプラットフォーム(Ventana Medical Systems、Tucson、AZ)及び対応するH&E Symphony Reagent(Ventana Medical Systems、Tucson、AZ)を使用して実施した。
組織切片又はパラフィン包埋代表試料を、Ventana Medical Systems BenchmarkXTプラットフォーム(Ventana Medical Systems、Tucson、AZ)を使用する明視野DABに基づく免疫組織化学(IHC)にかけた。バイオマーカーの可視化を、VentanaからのOptiView DAB Detection Kit(760-700)を使用して実施した。抗体を4分間インキュベートした。画像を、Zeiss Axio明視野顕微鏡上で獲得した。
凝集分析のために、試料を、40μmフィルターを通して濾過した後、Attune Acoustic Focusingフローサイトメーター(Thermo Fisher Scientific、USA)上で分析した。粒子をDAPI(3μM)と共に10分インキュベートした後、濾過した。流量が1分あたり4,000の事象を超えた場合、試料を希釈した。
モデル系としてホルマリン固定された扁桃腺を使用して、様々な酵素的方法を、代表試料のアリコートを単一粒子に解離させるために調査した。酵素的工程の前に、扁桃腺材料を、autoMACSバッファー中、IKAブレンダー中で最初に機械的に解離し、85℃に加熱したCC1バッファー中に1:1に希釈し、gentleMACS解離装置を使用してgentleMACSチューブ中でさらにブレンドした。試料は、85℃で5分の加熱、次いで、ブレンディングの2ラウンドを受けた。機械的解離に続いて、消化され、100μmフィルターを通して濾過されたH&E染色された材料を視覚的にモニタリングすることにより、異なる酵素条件を定性的に評価した。酵素不活化を、不活化工程の後、24時間にわたって4℃で材料をインキュベートすること、材料をVWRプラススライド上に塗布すること、H&Eで染色すること、及び細胞の形態、又は核の完全性をモニタリングすることにより試験した。試験した条件を、表3にまとめる。
異なる酵素的及び機械的解離方法を、代表扁桃腺試料の連続アリコートから一緒に比較した。比較した方法を、表6にまとめる。それぞれの方法の有効性を、血球計を使用して出発材料1グラムあたりの、それぞれの方法により遊離された粒子数を計数することにより評価した。生物学的な3組の試料を、示されたように分析した。
解離調製中の各工程に由来する上清を保持し、核破壊の指標として、溶液中に遊離したDNAについて分析した。上清を、技術的複製のために3つに分割した。必要に応じて、GeneVac(SP Scientific)を使用して、試料を濃縮した。製造業者の指示書に従ってRoche High pure FFPEキットを使用して、残存する残留物からDNAを抽出した。また、DNAを、バルクホモジネートから採取された、保存された加工液と一緒に、0.1gのアリコートから抽出して、参照試料として用いた。DNA収量を、Nanodrop-1000 Spectrophotometer(Thermo Scientific)を使用して評価した。加工液から抽出されたDNAを、参照試料から抽出されたDNAのパーセンテージとして表して、放出されたDNAのパーセンテージが損傷した核のパーセンテージに比例するという前提で、細胞核への損傷のための代用物として用いた。
プロテイナーゼK-ペプシン法を使用して代表扁桃腺試料から単離された粒子を、DAPI(3μM、10分)を使用して染色して、DNA含量を可視化し、フローサイトメトリーによって分析した。凝集を、ダブレット、トリプレット、及びトリプレットを超えるDNAレベルを含有する粒子によって証明した。以下の条件を試験して、粒子の脱凝集を支援する添加物を決定した:1%Tween20、1%NP40、DNAse、1.5mM四塩化スペルミジン、5mM CaCl2。フローサイトメトリーを使用して、各添加物の存在下での正常扁桃腺調製物に由来するDAPIヒストグラムを使用して、シングレット、ダブレット、及びトリプレットを超えるDNAレベルのパーセンテージを評価した。
扁桃腺組織から調製される代表試料を、上記のようにCC1バッファーを使用して機械的解離にかけた。腫瘍組織については、バルク機械的解離を、1:1の腫瘍:MACS比でIKAブレンダー中のMACSバッファー中で最初に実行した後、総ホモジネートのアリコートを採取し、1gの腫瘍組織:5mlの溶液の比で、IKAブレンダー中でさらにブレンドした。希釈されたブレンドされた材料を、1mm×1mmの金属篩を通して濾過し、濾過された材料を、上記のように1gの腫瘍組織:5mlのCC1バッファーの比で、CC1で調整した。扁桃腺と腫瘍試料の両方について、CC1バッファーを、ベンチトップマイクロ遠心分離機(Eppendorf)中、300×gで1分の遠心分離によってdPBSに交換した(1:1);その後の液体交換は全て、同じ様式で実施した。遠心分離後、ペレットを、1mg/mlプロテイナーゼKを含有するdPBS中に1:1で再懸濁し、50℃で10分インキュベートした。プロテイナーゼKをクエンチするため、及びさらなる解離のため、試料を、150mM NaCl、pH1.5中の5mg/mlのペプシン中で交換した。溶液のpHを、pHストリップで試験し、必要に応じて5M HClを使用して1.5-2に再調整した。試料を、10分毎に穏やかに混合しながら、37℃で30分インキュベートした。腫瘍組織については、両方の酵素的消化工程の間にThermoMixer F1.5(Eppendorf)中、600rpmでのチューブの撹拌により、収量を改善した。ペプシンを、5M NaOHを用いてpHを約8に調整することにより不活化した後、ペプシンを含有する溶液を、autoMACSバッファー、1%Tween20及び1.5mM四塩化スペルミジン(MACS-T-STC)に交換した。消化された試料を、10mlのMACS-T-STCを使用して40μmのフィルターにより濾過し、遠心分離によって収集し、下流の適用の前の保存のために500μlのMACS-T-STC中に再懸濁した。腫瘍核調製物の再現性を、同じ腫瘍の複数の調製物にわたって、Multisizer-4e(Beckman Coulter)上で測定され、腫瘍組織の出発「乾燥」重量に対して正規化された、3-30μm範囲の粒子の収量をモニタリングすることによって評価した。同じ腫瘍の異なる調製物に由来する粒子のサイズ分布をモニタリングすることにより、再現性をさらに評価した。
標準的な免疫蛍光
プロテイナーゼK-ペプシン法を使用して1gの代表腫瘍試料から調製された核を、300×gで1分の遠心分離によって収集した後、200μlのマウス抗サイトケラチン8/18一次抗体中に再懸濁した。一次抗体を、37℃で1時間又は4℃で24時間にわたって試料核と共にインキュベートした。コントロール試料は一次抗体を受けなかった。インキュベーション後、試料をEZプレップバッファーで6回洗浄した後、37℃で0.5-1時間、MCASバッファー中のヤギ抗マウスAlexa-488抗体(1:500)中に再懸濁した。また、一部の試料を、3μMのDAPIで10分染色した。染色された試料を、4℃で反応バッファーを用いて4回洗浄した。50μlの試料を、VWRプラススライド上に拡散し、ガラスカバースリップを介してすぐに画像化した。染色された細胞の画像を、社内ソフトウェアによって制御されるZeiss Axio落射蛍光顕微鏡上で獲得し、画像を、ImageJを使用して分析した。染色された核を、MACS-T-STC中、4℃で保存した。
機械的ホモジナイズ又はプロテイナーゼk-ペプシン法によって単離された粒子核(チューブあたり3×107個の粒子)を、300×gで2分遠心分離した後、0.3mlの3%H2O2中に再懸濁した。15分のインキュベーション後、核を、PBS中の0.1%Tween20、0.1%BSAで3回洗浄した。TSAブロッキングバッファー(0.3ml)を5分間添加した後、37℃で30分間、0.2mlの一次抗体中でインキュベートした。核を、PBS中の0.1%Tween20、0.1%BSAで3回洗浄した後、37℃で30分、ホースラディッシュペルオキシダーゼにコンジュゲートされた0.2mlのヤギ抗種抗体中に再懸濁した。核を、1.2mlの20μMチラミド-ローダミン101中に希釈し、5分インキュベートした後、1.2mlのTSA H2O2中に30分希釈した。核を、PBS中の0.5%デキストラン、0.1%Tween20、0.1%BSAで3回洗浄し、保存のためにMACS-T-STC中に再懸濁した。イメージング又はフローサイトメトリーの前に、核を3μMのDAPIで10分染色した。染色された核の画像を、Olympus BX63落射蛍光顕微鏡上で獲得し、ImageJを使用して分析した。
核を、上記のプロテイナーゼK-ペプシン法を使用して扁桃腺から単離した。粒子を、血球計を使用して計数した。DNAを、製造業者の指示書に従ってRoche High pure FFPEキットを使用して、105、106、及び107個の粒子から調製した。DNA収量を、Nanodrop-1000 Spectrophotometer(Thermo Scientific)を使用して評価した。
代表試料の個々の核へのさらなる加工
代表試料の個々の核へのさらなる加工は、細胞膜の除去を必要とする。新鮮な細胞のための現在の核単離法は、核を遊離させる酵素を必要とせず、ホルマリン固定された試料からの核単離は一般的な方法ではない。正常な核と腫瘍核との区別を可能にする細胞骨格マーカーを維持しながら、個々の核を効率的に単離するために、処理された核からDNAを遊離させる過度の損傷なく核を明らかにする酵素的方法が開発された。
プロテイナーゼK-ペプシンの解離方法を、3つの独立した扁桃腺試料について機械的解離のみと比較した。図44A-44Cは、プロテイナーゼK-ペプシン法が、代表試料から遊離された粒子数を有意に改善することを示している。興味深いことに、H&E染色の結果は、プロテイナーゼK-ペプシン法により遊離した粒子の多くは、脂肪質断片が結合した、又は結合していない核からなるが、機械的に解離された試料はより多くのインタクトな細胞材料を含有することを示す(図48、下パネル)。
同じ代表腫瘍試料からの核調製物の再現性を決定するために、方法の一貫性及び個々のアリコート中に存在する集団の一貫性を評価した。総ホモジネートから採取された異なるアリコート(~1グラム)から、上記のプロテイナーゼK-ペプシン法を使用して核を調製した。図45Aは、2つの異なる腫瘍(結腸及び肺)から調製された核の収量が、同じ代表試料から採取された複数のアリコートにわたって高度に一貫していることを示す。結腸腫瘍から単離された粒子のサイズ分布をさらに分析して、3つの異なる調製物にわたって非常に再現性が高く、特徴的なサイズ分布を同定した(図45B)。注目すべきことに、核は特徴的なサイズの2つの集団に分布する(図45B)。これらのデータは、同じ代表試料の異なるアリコートが一貫した細胞組成を含有し、核を抽出するための開発された方法が2つの異なる核集団の一貫した収量を生産することを支持する。
代表試料の個々の核へのさらなる加工は、核区画からのDNAの遊離をもたらし得る。上清中へのDNAの放出は、核に対する損傷の潜在的な読出しである。図46は、機械的又はプロテイナーゼK-ペプシン法による扁桃腺材料の加工中に、約4%の総DNAが放出されることを示す。3つの異なる腫瘍の加工により、10%未満のDNAが放出される(図46)。興味深いことに、機械的方法と酵素的方法の両方について類似するパーセンテージの核損傷が起こり、これは、プロテイナーゼK-ペプシン法が核を損傷することなくインタクトな核を単離することを支持している。
最初のフローサイトメトリー実験により、より高いDAPI染色強度のピーク中の粒子の存在によって証明されるように、~35%の粒子が凝集状態で存在することが示された(図47、パネル(ii)、R2(緑色)及びR3(ピンク色))。側方散乱対前方散乱のドットプロット上でバックゲートされた場合(パネル(i)、緑色及びピンク色の集団)、より高いDAPI強度のピーク中にあるこれらの粒子は、より高い前方及び側方散乱を示す領域にマッピングされ、これは、より大きなサイズを示す。当業者であれば、常套的なダブレット識別により単一核(R1、赤色)を特異的に分析することができるが、試料中に存在する単一核の数は増加した。いくつかの添加物(方法を参照されたい)を添加して、単離された核の凝集を減少させた。1%のTween20の添加は、凝集した粒子の数を~35%から~23%まで減少させることが発見された(B中のプロットのR2+R3と、A中のプロットの同じ領域とを比較されたい)。他の添加物は、凝集した粒子の数を減少させるのに無効であった;しかしながら、1.5mMの四塩化スペルミンの添加は、長時間にわたって核の完全性を維持した(示さない)。注目すべきことに、DNAseが細胞中の核DNAへの接近を獲得するのを防止し、それを破壊する機能的な細胞又は核膜は存在しないため(データは示さない)、新鮮な組織と違って、DNAseを使用して、固定された組織を脱凝集させることはできない。
代表試料に由来する単離された核を選別するために、核と結合したままであるマーカーを同定して、腫瘍と正常とを識別した。中間フィラメント(サイトケラチン、ビメンチン)は、核と密接に関連することが多く、それらは周囲の正常な間質から癌腫を同定するために使用されることも多い。これらのものは、プロテイナーゼK-ペプシン法を使用して収集された単離された核粒子中で染色することができる系列特異的マーカーであってもよいことが仮定された。図48Aは、サイトケラチン8/18に関する特徴的な強力な免疫組織化学染色を示す結腸腺癌に由来する切片を示す;及びパラフィンワックス中に包埋された同じ固定された腫瘍に由来する代表試料から採取された切片は同様の染色を示す(図52B)。図48Cは、プロテイナーゼK-ペプシン法を使用してこの腫瘍の代表試料から単離され、CK8/18について染色され、蛍光的にコンジュゲートされた二次抗体で可視化された材料を示す。注目すべきことに、試料をプロテイナーゼK-ペプシン法を用いて解離する場合、このマーカーは保持され、一次抗体を用いずにインキュベートしたネガティブコントロール試料は、わずかなバックグラウンド染色を示す(図48D)。ビメンチンは、扁桃腺から単離された多くの核と結合したままである。しかしながら、機械的に解離された試料中で染色陽性である表面マーカーCD45は、プロテイナーゼK-ペプシン処理を用いた場合に失われる(示さない)。かくして、サイトケラチン及びビメンチンは、表面マーカーが破壊された場合であっても、フローサイトメトリー分析及びセルソーティングのための系列特異的核結合マーカーとして役立つ。系列特異的転写因子などの他の核マーカーを、特定の腫瘍型について染色することもできる。これは、ホルマリン固定された試料からの核単離の固有な特徴である。
従来の免疫蛍光(IF)染色(図48C)は、フローサイトメトリーによって陽性に染色された集団を一貫して分解するための明るく、安定で十分なシグナルを提供しなかった(示さない)。フローサイトメトリーによる染色された試料の分析は、より安定なシグナルを得るためにフルオロフォアに直接コンジュゲートされた抗体の使用を必要とすることが多い。代表試料から単離された材料に関する課題は、それが重度にホルマリン固定されることが多い腫瘍に由来するということである。フローサイトメトリーによる固定された代表試料の常套的な分析を可能にするために、ホルマリン固定された組織に対して使用される抗体を使用する抗体染色のために、チラミドシグナル増幅(TSA)を使用した。TSAのために、チラミドをコンジュゲートされたフルオロフォアを、マーカー特異的一次抗体に結合する二次抗体にコンジュゲートされたHRPによって活性化する。活性化された蛍光色素は、一次抗体によって認識されるマーカーの近くでタンパク質に共有的に結合し、明るく、安定なシグナルを生産する。図53Aは、従来の免疫蛍光対TSAを使用してCD45について染色された機械的に解離された扁桃腺の比較を示す。図53Bは、TSAにより増幅された、2つの異なる腫瘍型に関するサイトケラチン染色を示す。溶液中でのTSAの特異性を示す、サイトケラチン染色された試料内のDAPI染色されたサイトケラチン陰性細胞の存在に留意されたい。
次に、結腸及び肺腫瘍の代表試料に由来するサイトケラチン(CK)及びDAPI染色された核を、フローサイトメトリーを使用して分析した(図50)。両事例において、CK陽性(コガモ緑)及びCK陰性(ピンク)集団が識別された(図50、パネルi)。CK陰性集団は2倍体DNA含量と関連していた(図50、パネルii)が、これは、これらのものが腫瘍内に存在する正常細胞(おそらく免疫細胞)の集団に由来する核であることを確認するものである。CK陽性集団について、DAPI染色は、異数性DNAを有する核の画分を示した(図50、パネルiii)が、これは、これらのものがおそらく腫瘍細胞に由来することを支持するものである。各試料について、核は、正常な核(図50、パネルiv)又は腫瘍核(パネルv)について富化された画分に上手く選別された。DNAは、これらの収集された集団から上手く抽出されたが、これを、次世代配列決定(NGS)、PCR、in situハイブリダイゼーション、又は他の下流の分析によって分析することができる。
特定の特徴を有する規定数の粒子を、FLOWソーティングを使用して収集した。異なる数の粒子からのDNA収量の較正は、NGSなどの、特定の下流分析のために代表試料からどれぐらいの材料を収集するべきかを決定する。図52は、代表扁桃腺試料に由来する機械的に解離され、プロテイナーゼK-ペプシンで解離された粒子からのDNA収量を示す。重要なことに、これらのデータは、プロテイナーゼK-ペプシン法から単離された粒子が、機械的解離のみから単離された粒子と類似するDNA収量を提供することを示し、これは、酵素的方法がDNAの完全性を維持することを示している。さらに、粒子数を算出して、5%の出現率で存在するクローンを検出するのに必要とされる数を決定した(表8)。これらの結果は、下流の配列決定適用における変異体検出に動力を供給するための代表試料に由来する特定の集団から十分な数の粒子を収集する努力を導くと予想される。
背景
代表試料からの核の単離は、VENTANA BenchMark自動化染色プラットフォーム上での自動化された様式で、全腫瘍の多様性を代表する腫瘍試料上でのin situハイブリダイゼーション(ISH)を実施する機会を可能にする。単離された核のISH染色の解釈は、おそらくより容易であり、パラフィン包埋された組織の欠如のため、非特異的バックグラウンドが少ない。
機械的解離を、実施例9に記載のように実施した。
臨床試料は、実施例9に記載されたものである。
代表試料を、VWRプラススライド上のautoMACSバッファー中に塗布した。ヘマトキシリン及びエオシン(H&E)染色を、Ventana Medical Systems Symphonyプラットフォーム(Ventana Medical Systems、Tucson、AZ)及び対応するH&E Symphony Reagent(Ventana Medical Systems、Tucson、AZ)を使用して実施した。
単離された核を、実施例8のように調製し、1mLあたり2×107個の粒子でスライド上に塗布し、一晩、空気乾燥させた。Ventana Medical Systems Benchmark XTプラットフォーム(Ventana Medical Systems、Tucson、AZ)を使用するHer2/Chr17 Dual in situハイブリダイゼーション(ISH)プロトコールを使用して、試料をアッセイした。バイオマーカーの可視化を、それぞれ、銀HRP検出及びアルカリホスファターゼ(AP)Red検出を使用して実施した。抗体カクテルを8分間インキュベートした。Zeiss Axio明視野顕微鏡上で画像を獲得した。
結腸及び肺腫瘍からの核の単離は、ホルマリン固定された組織試料のISH分析のための新規試料を作出する。周囲の組織がシグナルの獲得及び解釈を困難にしないため、核の単離は遺伝子コピー数の迅速な評価を可能にし、その検出スキームを図39に示す。図39に示されるように、Her2/Chr17 DNAオリゴプローブを、結腸腫瘍に由来する代表試料から単離された核にハイブリダイズさせる場合、2つのHer2遺伝子及び2つの第17染色体アルファサテライト領域(それぞれ、黒色のHer2 SISH及び赤色のChr17アルカリホスファターゼシグナル、破線矢印及び矢印)が容易に検出可能である。興味深いことに、肺腫瘍に由来する代表試料から単離された核の画分は、核のパーセンテージにおける十分なSISHシグナルにより示されるように、Her2遺伝子座の増幅を有する(図40、破線矢印のHer2 SISHシグナル)。
背景
次世代配列決定(NGS)は、数百万個から数十億個のDNA断片の同時的分析を可能にするハイスループットDNA配列決定技術である。過去十年で、NGS技術における大きな進歩により、研究者及び医師は、DNA突然変異と、腫瘍不均一性、標的療法に対する耐性、及びがん免疫療法の有効性とを連結することが可能になった。しかしながら、クリニックにおいてNGSのために使用される腫瘍試料は専ら、上記のように偏りのあるFFPE組織である。腫瘍に由来する代表試料のNGS分析は、NGSデータの臨床的関連を有意に改善すると予想される。
腫瘍の機械的解離を、Walmart(Tucson、AZ)から購入したHamilton Beach Single Serveブレンダーを使用して、又はIKA-Works(Staufen im Breisgau、Germany)からのIKA Works Tube Mill Control System(0004180001)を使用することにより実施した。全てのライブラリー調製(TruSeq Amplicon Cancer Panel)及びMiSeq試薬キット(MiSeq Reagent Kit V2)を、Illumina Inc(San Diego、CA)から購入した。配列決定を、MiSeq(Illumina、San Diego、CA)上で実施した。
48の既知のがん遺伝子の小さい標的遺伝子パネルを使用して、ホルマリン固定されたヒト腫瘍に由来する代表試料をディープシーケンシングした。がん組織に由来する突然変異の検出における有意な改善を証明するために、代表試料を、同じ腫瘍から採取した組織切片と比較した。全ての事例において、代表試料は、小さいFFPEブロックを獲得する現在の組織学的サンプリング方法よりも有意に多くの腫瘍突然変異を送達した。
背景:
臓器、組織、又は腫瘍に由来する代表試料を、パラフィンワックス中に包埋して、組織の細胞断片を含有する試料型を生成し、それによって、元の臓器、組織、又は腫瘍内に含有される構造間の解剖学的関係を保持することができる。包埋された代表試料から採取された組織切片を、解剖病理学者によって、又はデジタル顕微鏡走査システムを使用して分析することができる。デジタル走査システムからのデータをさらに調査して、バイオマーカー間、又は患者間の不均一性のレベルを定量することができる。さらに、走査システムからの出力を、以下に例示される不均一性の数的分析への入力として使用することができる。
新鮮な扁桃腺を、Northwest Hospital(Oro Valley、AZ)から獲得し、到着時に10%中性緩衝化ホルマリン中で固定した。いくつかの扁桃腺試料を、全扁桃腺を組織カセットに入れた後、脱水及びパラフィンかん流により、FFPEブロックに加工した。扁桃腺の代表試料を、以前の実施例に記載のように行った。ヒト肺及び結腸腫瘍に由来する代表試料は、実施例11に記載のものと同じ試料であった。扁桃腺、結腸腫瘍、及び肺腫瘍に由来する代表試料の試料を、顕微鏡レンズ用紙中に包み、組織カセットに入れた。組織カセットをキシレン中に入れ、組織プロセッサー(Leica Biosystems、Wetzlar、Germany)中に脱水した後、ワックス中に包埋した。4μmの切片を、分析した全てのブロックから採取した。
多くの組織学的染色の解釈は、組織構造、例えば、腫瘍細胞に対する免疫細胞の方向の保持を必要とする。したがって、腫瘍の個々の細胞への解離は、全ての組織学的アッセイに応用することができない。インタクトな臓器に由来する機械的に解離された代表試料をワックス中に包埋し、組織切片化し、特定の構造的特徴について評価することができるかどうかを決定するために、全扁桃腺を、IKA Tube Mill中で機械的に解離させた。扁桃腺ホモジネートの試料を脱水し、ワックス中に包埋し、4μmの切片を取得し、スライドガラス上に置き、Ventana BenchMark XT上で様々なバイオマーカーについて染色した。
1.分析のための代表試料を調製する方法であって、
a.少なくとも1の対象から外科的切除組織試料を取得すること;及び
b.外科的切除組織試料をホモジナイズして、ホモジナイズされた試料を取得すること
を含む方法。
2.外科的切除組織試料の少なくとも一部を固定することをさらに含む、実施態様1に記載の方法。
3.外科的切除試料の第1の部分を加工すること、及び一又は複数の固定、包埋された組織ブロックを生成することをさらに含む、実施態様1に記載の方法。
4.残りの外科的組織切除試料の第2の部分をホモジナイズすることをさらに含む、実施態様3に記載の方法。
5.一又は複数の固定、包埋された組織ブロックの少なくとも一部を、ミクロトーム法により加工して、形態学的分析のための一又は複数の組織薄片を生産することをさらに含む、実施態様3又は4に記載の方法。
6.一又は複数の固定、包埋された組織ブロックのうちの少なくとも1つを脱パラフィン化すること、及び一又は複数の脱パラフィン化された固定、包埋された組織ブロックに由来する組織をホモジナイズすることをさらに含む、実施態様5に記載の方法。
7.外科的切除組織試料が、一又は複数の別々の組織小片を含む、実施態様1に記載の方法。
8.一又は複数の別々の組織小片が、外科的切除試料を取得するために対象から切除された一又は複数の原発固形腫瘍組織塊の少なくとも一部を含む、実施態様7に記載の方法。
9.一又は複数の別々の組織小片が、対象から切除された一又は複数のリンパ節の少なくとも一部を含む、実施態様8に記載の方法。
10.別々の組織小片の少なくとも一部を別々にホモジナイズして、別々のホモジナイズされた試料を得ることをさらに含む、実施態様7、8又は9に記載の方法。
11.外科的切除組織試料が、単一の組織塊を含む、実施態様1に記載の方法。
12.単一の組織塊が、単一の組織塊の2以上の小片にさらに分割される、実施態様11に記載の方法。
13.単一の組織塊の2以上の小片のうちの少なくとも1つをホモジナイズすること、及び残りの単一の組織塊の2以上の小片のうちの少なくとも1つを保存することをさらに含む、実施態様12に記載の方法。
14.ホモジナイズすることが、物理的分離を含む、実施態様1に記載の方法。
15.物理的分離が、切断、細断、又はミンチによるものである、実施態様14に記載の方法。
16.ホモジナイズすることが、機械的解離を含む、実施態様1に記載の方法。
17.機械的解離が、ブレンドすること又はジュースにすることによるものである、実施態様16に記載の方法。
18.ホモジナイズすることが、生化学的解離によるものである、実施態様1に記載の方法。
19.生化学的解離が、プロテアーゼによるものである、実施態様18に記載の方法。
20.ホモジネートの少なくとも一部から一又は複数の生体分子を精製することをさらに含む、実施態様1に記載の方法。
21.一又は複数の生体分子が、DNA、RNA、タンパク質、脂質、及び代謝物からなる群から選択される、実施態様20に記載の方法。
22.一又は複数の生体分子を分析することをさらに含む、実施態様21に記載の方法。
23.一又は複数の生体分子を分析することが、PCR、質量分析、次世代配列決定、又はELISAによるものである、実施態様22に記載の方法。
24.分析が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様22に記載の方法。
25.ホモジナイズされた試料の少なくとも一部をパラフィン中に包埋することをさらに含む、実施態様1に記載の方法。
26.パラフィン包埋されたホモジナイズされた試料の一又は複数の薄片を調製することをさらに含む、実施態様25に記載の方法。
27.パラフィン包埋されたホモジナイズされた試料の薄片に対して組織学的分析を実施することをさらに含む、実施態様26に記載の方法。
28.組織学的分析が、H&E染色、IHC染色、ISH染色、及びFISH染色によるものである、実施態様27に記載の方法。
29.パラフィン包埋されたホモジナイズされた試料の薄片に対する組織学的分析が、ヒトによって解釈される、実施態様27に記載の方法。
30.パラフィン包埋されたホモジナイズされた試料の薄片に対する組織学的分析が、自動化されたデバイスによって定量される、実施態様27に記載の方法。
31.解釈が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様29に記載の方法。
32.定量化が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様30に記載の方法。
33.ホモジネートの少なくとも一部をさらに加工して、細胞断片を生成することをさらに含む、実施態様1に記載の方法。
34.ホモジネートの少なくとも一部の加工が、物理的、機械的、化学的、又は酵素的方法によるものである、実施態様32に記載の方法。
35.細胞断片が、核、細胞膜、及び細胞オルガネラからなる群から選択される、実施態様33に記載の方法。
36.細胞断片の少なくとも一部が、少なくとも1つのスライドガラスに固定される、実施態様33に記載の方法。
37.少なくとも1つのスライドガラスに固定された細胞断片の少なくとも一部が、組織学的分析にかけられる、実施態様36に記載の方法。
38.組織学的分析が、H&E染色、IHC染色、ISH染色、又はFISH染色によるものである、実施態様37に記載の方法。
39.少なくとも1つのスライドガラスに固定された細胞断片の少なくとも一部に対する組織学的分析が、ヒトによって解釈される、実施態様36に記載の方法。
40.少なくとも1つのスライドガラスに固定された細胞断片の少なくとも一部に対する組織学的分析が、自動化されたデバイスによって定量される、実施態様36に記載の方法。
41.解釈が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様39に記載の方法。
42.定量化が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様40に記載の方法。
43.細胞断片の少なくとも一部が、フローサイトメトリー、FACS、又は粒子分析装置によって分析される、実施態様33に記載の方法。
44.分析が、データセットを生産する、実施態様43に記載の方法。
45.細胞断片の少なくとも一部から少なくとも1つの細胞断片を精製することをさらに含む、実施態様33に記載の方法。
46.精製が、FACS、アフィニティー精製、サイズ排除分画遠心分離、濾過、又は電気泳動によるものである、実施態様45に記載の方法。
47.細胞断片の少なくとも一部から精製された少なくとも1つの細胞断片に由来する生体分子を単離することをさらに含む、実施態様45に記載の方法。
48.細胞断片の少なくとも一部から精製された少なくとも1つの細胞断片に由来する生体分子を分析することをさらに含む、実施態様47に記載の方法。
49.分析が、PCR、質量分析、次世代配列決定、又はELISAである、実施態様48に記載の方法。
50.分析が少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様49に記載の方法。
51.ホモジネートの少なくとも一部をさらに加工して、少なくとも1つの解離された細胞を生成することをさらに含む、実施態様1に記載の方法。
52.ホモジネートの少なくとも一部の加工が、物理的、機械的、化学的、又は酵素的な加工である、実施態様51に記載の方法。
53.少なくとも1つの解離された細胞が、正常細胞、がん細胞、又は細菌細胞である、実施態様51に記載の方法。
54.少なくとも1つの解離された細胞が、少なくとも1つのスライドガラスに固定される、実施態様51に記載の方法。
55.少なくとも1つのスライドガラスに固定された少なくとも1つの解離された細胞が、組織学的分析にかけられる、実施態様54に記載の方法。
56.組織学的分析が、H&E染色、IHC染色、ISH染色、又はFISH染色である、実施態様55に記載の方法。
57.少なくとも1つのスライドガラスに固定された少なくとも1つの解離された細胞に対する組織学的分析が、ヒトによって解釈される、実施態様55に記載の方法。
58.少なくとも1つのスライドガラスに固定された少なくとも1つの解離された細胞に対する組織学的分析が、自動化されたデバイスによって定量される、実施態様55に記載の方法。
59.解釈が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様57に記載の方法。
60.定量化が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様58に記載の方法。
61.少なくとも1つの解離された細胞が、フローサイトメトリー、FACS、又は粒子分析装置によって分析される、実施態様51に記載の方法。
62.分析が、データセットを生産する、実施態様61に記載の方法。
63.少なくとも1つの解離された細胞から少なくとも1つの細胞を精製することをさらに含む、実施態様51に記載の方法。
64.精製が、FACS、アフィニティー精製、サイズ排除分画遠心分離、濾過、又は電気泳動である、実施態様63に記載の方法。
65.少なくとも1つの解離された細胞からの精製された少なくとも1つの細胞からの生体分子を単離することをさらに含む、実施態様63に記載の方法。
66.少なくとも1つの解離された細胞からの精製された少なくとも1つの細胞からの生体分子を分析することをさらに含む、実施態様65に記載の方法。
67.分析が、PCR、質量分析、次世代配列決定、又はELISAである、実施態様66に記載の方法。
68.分析が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様67に記載の方法。
69.少なくとも1つの解離された細胞からの精製された少なくとも1つの細胞が、少なくとも1つのスライドガラスに固定される、実施態様63に記載の方法。
70.少なくとも1つのスライドガラスに固定された少なくとも1つの解離された細胞からの精製された少なくとも1つの細胞が、組織学的分析にかけられる、実施態様69に記載の方法。
71.組織学的分析が、H&E染色、IHC染色、ISH染色、又はFISH染色である、実施態様70に記載の方法。
72.少なくとも1つのスライドガラスに固定された少なくとも1つの解離された細胞からの精製された少なくとも1つの細胞に対する組織学的分析が、ヒトによって解釈される、実施態様70に記載の方法。
73.少なくとも1つのスライドガラスに固定された少なくとも1つの解離された細胞からの精製された少なくとも1つの細胞に対する組織学的分析が、自動化されたデバイスによって定量される、実施態様70に記載の方法。
74.解釈が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様72に記載の方法。
75.定量化が、少なくとも1つのデータセットを生産する、実施態様73に記載の方法。
76.少なくとも1の対象に由来する少なくとも1つのデータセットを分析することをさらに含む、実施態様24、31、32、41、42、44、50、59、60、62、68、74及び75の何れか一項に記載の方法。
77.分析が、バイオマーカーの多様性又は表現型の多様性のデータセットの決定を含む、実施態様76に記載の方法。
78.分析が、少なくとも1つの異なるバイオマーカー又は表現型の出現率の決定を含む、実施態様76に記載の方法。
79.分析が少なくとも1つの臨床判断の決定を含む、実施態様76に記載の方法。
80.臨床判断が、疾患予後の決定、疾患の再発の予測、疾患の療法の標的の予測、臨床治験の対象の組み入れ、又は少なくとも1の対象に関する治療的処置戦略である、実施態様79に記載の方法。
Claims (6)
- ヒト対象におけるがんの診断のための分析用の代表試料を調製するin vitroでの方法であって、
a.少なくとも1の対象からの外科的切除組織試料を提供すること;
b.外科的切除組織試料をコラゲナーゼで処理して、サイズが100μm以下である複数の細胞クラスターを取得すること;
c.取得された複数の細胞クラスターを、代表試料として提供すること;及び
d.(i)代表試料、又は、
(ii)特定のバイオマーカー又はバイオマーカーの組み合わせを発現する、代表試料の一部又は画分
において、
(i)サンプリングされる細胞のパーセンテージ、
(ii)腫瘍細胞のパーセンテージ、
(iii)腫瘍幹細胞、及び/又は
(iv)腫瘍サブクローンの相対頻度又はパーセンテージ
を検出すること
を含む方法。 - 外科的切除組織試料の少なくとも一部を固定することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 外科的切除組織試料の第1の部分を加工すること、及び一又は複数の固定、包埋された組織ブロックを生成することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 残りの外科的切除組織試料の第2の部分から複数の細胞クラスターを取得することをさらに含む、請求項3に記載の方法。
- 一又は複数の固定、包埋された組織ブロックの少なくとも一部を、ミクロトーム法により加工して、形態学的分析のための一又は複数の組織薄片を生産することをさらに含む、請求項3又は4に記載の方法。
- 一又は複数の固定、包埋された組織ブロックのうちの少なくとも1つを脱パラフィン化すること、及び一又は複数の脱パラフィン化された固定、包埋された組織ブロックに由来する組織から複数の細胞クラスターを取得することをさらに含む、請求項5に記載の方法。
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