TWI463010B - Antibody manufacturing method - Google Patents
Antibody manufacturing method Download PDFInfo
- Publication number
- TWI463010B TWI463010B TW097139552A TW97139552A TWI463010B TW I463010 B TWI463010 B TW I463010B TW 097139552 A TW097139552 A TW 097139552A TW 97139552 A TW97139552 A TW 97139552A TW I463010 B TWI463010 B TW I463010B
- Authority
- TW
- Taiwan
- Prior art keywords
- antibody
- fragment
- chain
- dna
- cell
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
- C07K2317/50—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
- C07K2317/56—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments variable (Fv) region, i.e. VH and/or VL
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2510/00—Genetically modified cells
- C12N2510/02—Cells for production
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Immunology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Description
本發明係關於抗體之製造方法。
使用基因重組技術,生產醫藥上有效之重組抗體時,使用動物細胞時,因為可進行原核細胞不能進行複雜的轉譯後修飾或折疊,所以多使用動物細胞作為生產重組抗體用之宿主細胞。
近年來,抗體或生理活性蛋白質等之許多生物醫藥品大量出現。尤其,抗體醫藥時,通常1次的投予量係mg階級,作為具有相當量之活性成份之抗體係必要的。使動物細胞有效率地生產重組抗體之技術係與抗體醫藥品之低成本化相關,約定提供安定的供給於患者。
因此,要求產生效率更高的重組抗體之製造方法。
製作生產重組抗體用之宿主細胞時,通常各導入1個複製之編碼該抗體之H鏈之DNA及1個複製之編碼L鏈之DNA於宿主細胞(非專利文獻1及2)。
非專利文獻1:Reff ME,Carner K,Chambers KS,Chinn PC,Leonard JE,Raab R et al. Depletion of B cells in vivo by a chimeric mouse human monoclonal antibody to CD20. Blood. 1994 Jan 15;83(2):435-45.
非專利文獻2:Presta LG,Chen H,O’Connor SJ,Chisholm V,Meng YG,Krummen L,et al. Humanization of an anti-vascular endothelial growth factor monoclonal antibody for the therapy of solid tumors and other disorders. Cancer Res. 1997 Oct 15;57 (20):4593-9.
另一方面,至今仍未知導入1個複製之編碼所需重組抗體之H鏈之DNA、2個複製以上之編碼L鏈之DNA之轉型穩定表現細胞,是否幫助提升所需重組抗體生產。
本發明係以提供高生產抗體之方法為目的。
本發明係為努力解決上述課題,努力的結果係藉由使用含編碼抗體之L鏈之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈之外來DNA多之細胞,發現可使抗體產生量增加,而完成本發明。
本發明之要旨係如下所述。
(1)包含使用含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,使其生產抗體或該片段之抗體或該片段之製造方法。
(2)如(1)記載之方法,其中含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,係已導入含1個複製之編碼抗體之H鏈或該片段之DNA、2個複製以上之編碼抗體之L鏈或該片段之DNA之載體之細胞。
(3)如(2)記載之方法,其中細胞為動物細胞。
(4)如(3)記載之方法,其中動物細胞係中國倉鼠卵巢細胞。
(5)如(1)至(4)中任一項記載之方法,其中抗體係嵌合體抗體、人源化抗體或人類抗體。
(6)如(1)至(5)中任一項記載之方法,其中抗體係選自抗IL-6受體抗體、抗IL-6抗體、抗Glypican-3抗體、抗CD3抗體、抗CD20抗體、抗GP Ⅱ b/Ⅲ a抗體、抗TNF抗體、抗CD25抗體、抗EGFR抗體、抗Her2/neu抗體、抗RSV抗體、抗CD33抗體、抗CD52抗體、抗IgE抗體、抗CD11a抗體、抗VEGF抗體及抗VLA4抗體所成群。
(7)製造含有以(1)至(6)中任一項記載之方法所製造之抗體或該片段之醫藥品之方法。
(8)含1個複製之編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA、2個複製以上之編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之重組載體。
(9)導入有(8)記載之載體之細胞。
(10)含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之培養細胞。
(11)包含使用表現編碼抗體之L鏈或該片段比表現編碼抗體之H鏈或該片段高之細胞,使其產生抗體或該片段之抗體或該片段之製造方法。
(12)如(1)至(7)、(11)中任一項記載之方法,其中細胞係穩定表現(stable expression)抗體或該片段之細胞。
(13)如(9)或(10)記載之細胞,其係穩定表現抗體或該片段。
依據本發明,將可廉價地產生所需之重組抗體。
本說明書係包含本申請書之優先權基礎之日本專利申請,特願2008-103308之說明書及/或圖式所記載之內容。
以下係更詳細地說明關於本發明之實施型態。
本發明係提供包含使用含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,使其生產抗體或該片段之抗體或該片段之製造方法。
本發明之方法中,含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞係例如已導入1個複製之編碼所需重組抗體之H鏈或該片段之DNA、2個複製以上之編碼L鏈或該片段之DNA之轉型細胞,而且可為生產所需重組抗體或該片段之細胞。
本發明之方法中,所需重組抗體並無特別限制,例如可為抗IL-6受體抗體、抗IL-6抗體、抗Glypican-3抗體、抗CD3抗體、抗CD20抗體、抗GP Ⅱ b/Ⅲ a抗體、抗TNF抗體、抗CD25抗體、抗EGFR抗體、抗Her2/neu抗體、抗RSV抗體、抗CD33抗體、抗CD52抗體、抗IgE抗體、抗CD11a抗體、抗VEGF抗體、抗VLA4抗體等之對任何抗原之重組抗體。抗體係不僅來自人、小鼠、大鼠、倉鼠、兔子、猴子等動物之單株抗體,亦包含嵌合體抗體、人源化抗體、或bispecific(雙特異性)抗體等之經人為改變之基因重組型抗體。重組抗體亦可進行使與聚乙二醇等之各種分子鍵結等之化學修飾。另外,抗體之型態亦非特別限定者,抗體之免疫球蛋白型態並非特別限定者,雖可為IgG1、IgG2、IgG3、IgG4等之IgG、IgA、IgD、IgE、IgM等之任一種型態,但作為醫藥使用時,以IgG及IgM為宜。
編碼抗體之L鏈之DNA及編碼H鏈之DNA係可如下述調製。自具有表現抗體之基因之融合瘤(hybridoma)、細胞、噬菌體、核糖體等,萃取mRNA。藉由使用反轉錄酵素之反轉錄反應,依此mRNA製作cDNA。藉由使用具有與L鏈基因或H鏈基因成互補鹽基序列之引子以及cDNA之PCR,增幅L鏈基因或H鏈基因,藉由與選殖用質體鍵結而取得各基因。
本發明之方法中,作為所需重組抗體之片段,可列舉Fab、F(ab’)2、Fv等。
編碼抗體之L鏈片段之DNA及編碼H鏈片段之DNA係可如下述調製。自具有表現抗體之基因之融合瘤、細胞、噬菌體、核糖體等,萃取mRNA。藉由使用反轉錄酵素之反轉錄反應,依此mRNA製作cDNA。藉由使用具有與L鏈基因片段或H鏈基因片段互補鹽基序列之引子以及cDNA之PCR,增幅L鏈基因片段或H鏈基因片段,藉由與選殖用質體鍵結而取得各基因片段。
本發明者等發現藉由使用已導入1個複製之編碼重組抗體之H鏈之DNA、2個複製以上之編碼L鏈之DNA之轉型細胞,與通常製造重組抗體所使用之導入1個複製之編碼H鏈之DNA、1個複製之編碼L鏈之DNA之轉型細胞相比較,所需重組抗體之產生量明顯優異地增加。
構成抗體分子之H鏈多胜肽及L鏈多胜肽係以BiP(免疫球蛋白重鏈結合蛋白質,Immunoglobulin heavy chain binding protein)之支架組合,之後,藉由折疊,完成完全的抗體結構。此組合過程係依賴L鏈多胜肽(Molecular Biology of the Cell,1990,10,2209)。因此,藉由提高L鏈基因數比,提高L鏈多胜肽之比率,認為促進H鏈多胜肽及L鏈多胜肽組合,增加產生量。
然而,於穩定表現系(Stable Expression)表現重組抗體之穩定表現轉型細胞(Stable Transformant)時,因為比暫時性表現系(Transient Expression)者之H鏈表現量低,所以顯示H鏈表現量更重要(Biotechnol. Prog.,2005,21,122)。因此,於穩定表現系時,為增加抗體之產生量,如何控制H鏈與L鏈之表現量之比,完全不知。
編碼重組抗體之L鏈或該片段之DNA數相對於編碼H鏈或該片段之DNA數之比係只要大於1即可,以1.1以上,5以下為宜,以2最好。
作為含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,可舉例如已導入含編碼抗體之H鏈或該片段之DNA之載體(例如1個)與含編碼L鏈或該片段之DNA比該載體數量多之載體(例如2個以上)之細胞、已導入1個以上於相同載體內含1個複製之編碼H鏈或該片段之DNA與1個複製之編碼L鏈或該片段之DNA之載體以及含1個複製之編碼L鏈或該片段之DNA之載體之細胞、已導入於相同載體內含1個複製之編碼H鏈或該片段之DNA與2個複製以上之編碼L鏈或該片段之DNA之載體之細胞等,以已導入於相同載體內含1個複製之編碼H鏈或該片段之DNA與2個複製以上之編碼L鏈或該片段之DNA之載體之細胞為宜。
1個複製之編碼H鏈或該片段之DNA與2個複製以上之編碼L鏈或該片段之DNA中至少1個複製係存在於其他載體時,導入此等載體的順序並無特別的限制,可分別導入此等載體,亦可同時導入。
本發明中使用於抗體表現的細胞並無特別的限制,可為動物細胞、植物細胞、酵母等之真核細胞、大腸桿菌、枯草菌等之原核細胞等之任何細胞,以CHO細胞、COS細胞、3T3細胞、骨髓瘤細胞、BHK細胞、HeLa細胞、Vero細胞等之動物細胞為宜,以CHO細胞尤佳。另外,為製造所需抗體,以適合導入CHO dhfr-細胞等所需基因之細胞為宜。例如由基因工程操作,可培養嵌入編碼所需抗體之基因之COS細胞或CHO細胞。
作為本發明之方法可使用之載體,例如以大腸桿菌為宿主時,為使載體於大腸桿菌(例如JM109、DH5 α、HB101、XL1Blue)等大量增幅,大量調製時,具有於大腸桿菌所增幅用之「ori」,進而具有經轉型之大腸桿菌之篩選基因(例如,可由某種藥劑(氨比西林或四環黴素、康那黴素、氯黴素)判別之抗藥性基因)為宜。作為載體,可舉例如M13系載體、pUC系載體、pBR322、pBluescript、pCR-Script等。另外,以cDNA之次選殖、切出為目的時,除了上述載體以外,可舉例如pGEM-T、pDIRECT、pT7等。生產本發明之抗體或該片段之目的,使用載體時,表現載體尤其有效。作為表現載體,例如於大腸桿菌之表現為目的時,除了具有載體於大腸桿菌增幅之上述特徵以外,以宿主為JM109、DH5 α、HB101、XL1-Blue等之大腸桿菌時,於大腸桿菌具有可有效地表現之啟動子,例如lacZ啟動子(Ward等,Nature(1989)341,544-546;FASEB J.(1992)6,2422-2427)、araB啟動子(Better等,Science(1988)240,1041-1043)、或T7啟動子等為宜。作為如此載體,除了上述載體以外,可列舉pGEX-5X-1(Pharmacia公司製)、「QIAexpress system」(Qiagen公司製)、pEGFP、或pET(此時,宿主係以表現T7RNA聚合酶之BL21為宜)等。
另外,對於載體,亦可含分泌多胜肽用之訊號序列。作為分泌多胜肽用之訊號序列,使大腸桿菌之細胞間質產生時,可使用pelB訊號序列(Lei,S.P. et al J. Bacteriol.(1987)169,4379)。導入載體於宿主細胞係可使用例如氯化鈣法、電穿孔法(electroporation)進行。
大腸桿菌為宿主之外,例如作為本發明之方法可使用之載體,可列舉來自哺乳動物之表現載體(例如pcDNA3(Invitrogen公司製)、或pEGF-BOS(Nucleic Acids. Res. 1990,18(17),p5322)、pEF、pCDM8或INPEP4(Biogen-IDEC公司製))、來自昆蟲細胞之表現載體(例如「Bac-to-BAC baculovairus expression system)(GIBCO BRL公司製)、pBacPAK8)、來自植物之表現載體(例如pMH1、pMH2)、來自動物病毒之表現載體(例如pHSV、pMV、pAdexLcw)、來自腺病毒之表現載體(例如pZIpneo)、來自酵母之表現載體(例如「PichiaExpression Kit)(Invitrogen公司製)、pNV11、SP-Q01)、來自枯草菌之表現載體(例如pPL608、pKTH50)等。
於CHO細胞、COS細胞、NIH3T3細胞等動物細胞之表現為目的時,以具有用以使於細胞內表現必須的啟動子,例如SV40啟動子(Mulligan等,Nature(1979)277,108)、MMLV-LTR啟動子、EF1 α啟動子(Mizushima等,Nucleic Acids Res.(1990)18,5322)、CMV啟動子(Niwa等,Gene.(1991)108,193)、小鼠β球蛋白(mBGP)等為宜,若具有用以對細胞進行轉型篩選之基因(例如,可由藥劑(例如新黴素、G418等)判別之耐藥性基因)尤佳。作為具有如此特性之載體,可舉例如pMAM、pDR2、pBK-RSV、pBK-CMV、pOPRSV、pOP13等。已知具有polyA之mRNA係於細胞內安定,為加成polyA於基因所需之polyA訊號係以具有例如小鼠β球蛋白polyA訊號、牛成長激素polyA訊號、SV40 polyA訊號等為宜。
本發明之細胞係可於暫時性表現系(Transient Expression)表現抗體或該片段,亦可於穩定表現系(Stable Expression)表現,但以於穩定表現系表現者為宜。
所謂暫時性表現系係藉由磷酸鈣法、電穿孔法、脂質轉染(lipofection)法等,嵌入環狀質體於細胞內而使表現之方法。環狀質體插入於染色體之效率低,目的基因多存在於染色體外。因此,難以長期間維持來自環狀質體之目的基因之表現。
所謂穩定表現系係藉由磷酸鈣法、電穿孔法、脂質轉染法等,嵌入藉由限制酵素處理等製成之直鏈狀質體於細胞內而使表現之方法。直鏈狀質體比環狀質體被插入於染色體之效率高,維持目的基因於染色體上之效率亦變高。因此,可長期間維持目的基因之表現。另外,若導入抗藥性基因於質體,將可篩選藥劑,將可有效率地選擇維持目的基因於染色體上之細胞。作為穩定表現系使用之動物細胞,可列舉CHO細胞、NSO細胞、SP2/0細胞等,以CHO細胞為宜。
另外,使基因安定地表現,而且增幅細胞內基因之複製數為目的時,可列舉於欠缺核酸合成途徑之CHO細胞中,導入具有與其互補之DHFR基因之載體(例如pCHOI等),藉由甲基蝶啶胺(MTX)增幅之方法,另外,以基因之暫時性表現為目的時,列舉使用於染色體上具有表現SV40 T抗原之基因之COS細胞,以具有SV40之複製起點之載體(pcD等)進行轉型之方法。作為複製開始點,另外亦可使用來自多瘤病毒(polyoma virus)、腺病毒(Adenovirus)、牛乳頭狀瘤病毒(BPV)等者。另外,為於宿主細胞系增幅基因複製數,表現載體作為選擇標誌,可含胺基糖苷轉移酶(aminoglycoside transferase)(APH)基因、胸腺嘧啶核苷磷酸酶(Thymidine kinase)(TK)基因、大腸桿菌黃嘌呤-鳥嘌呤磷酸核糖轉移酶(xanthine-guanine phosphoribosyltransferase)(Ecogpt)基因、二氫葉酸還原酵素(dhfr)基因等。
本發明亦提供含1個複製之編碼抗體之H鏈或該片段之DNA、2個複製以上之編碼抗體之L鏈或該片段之DNA之載體。
本發明之載體係有效地於宿主細胞內保持編碼重組抗體或該片段之DNA、或用以使表現重組抗體或該片段。藉由導入1個複製之編碼重組抗體之H鏈或該片段之DNA、2個複製以上之編碼L鏈或該片段之DNA,促進H鏈多胜肽組合於抗體分子,可依宿主細胞增加所需之重組抗體或該片段產生。
另外,本發明係提供導入本發明載體之宿主細胞。導入本發明載體之宿主細胞並無限制,例如可使用大腸桿菌或各種動物細胞等。本發明之宿主細胞係可作為例如本發明之抗體或該片段之製造或表現用之生產系使用。作為製造多胜肽用之生產系,有in vitro(體外)及in vivo(體內)之生產系。作為in vitro生產系,可列舉使用真核細胞之生產系或使用原核細胞之生產系等。
使用真核細胞時,可使用例如動物細胞、植物細胞、真菌細胞作為宿主。已知作為動物細胞,哺乳類動物,例如CHO(J. Exp. Med. (1995)108,945)、COS、3T3、骨髓瘤、BHK(baby hamster kindey,幼倉鼠腎臟)、HeLa、Vero、兩棲類細胞,例如非洲爪蟾卵母細胞(Valle, et al., Nature (1981)291,358-340)、或昆蟲細胞,例如Sf9、Sf21、Tn5。作為CHO細胞,尤其可適合使用欠缺DHFR基因之CHO細胞之dhfr-CHO(Proc. Natl. Acad. Sci.USA (1980)77,4216-4220)或CHO K-1(Proc. Natl. Acad. Sci. USA(1968)60,1275)。動物細胞中,以大量表現為目的時,以CHO細胞尤佳。導入載體於宿主細胞係可以例如磷酸鈣法、DEAE葡聚糖法、使用1,2一二油烯氧基‧3一三甲氨基丙烷(cationic liposome DOTAP)(Boehringer Manneheim社製)之方法、電穿孔法、脂質轉染法等之方法進行。
作為植物細胞,已知例如來自煙草(Nicotiana tabacum)之細胞係作為多胜肽生產系,可將其進行癒傷組織培養。作為真菌細胞,已知酵母,例如酵母(Saccharomyces)屬,如釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae),絲狀菌,例如麴菌(Aspergillus)屬,如黑麴菌(Aspergillus niger)。
使用原核細胞時,有使用細菌細胞之生產系。作為細菌細胞,可列舉大腸桿菌(E. coli),例如JM109、DH5α、HB101等,其他之枯草菌。
將此等細胞,藉由目的基因進行轉型,藉由in vitro(體外)培養經轉型之細胞,可得到編碼目的基因之多胜肽。培養係可依據已知方法進行。例如,作為動物細胞之培養液,可使用例如DMEM、MEM、RPMI1640、IMDM。此時,亦可併用牛胎兒血(FCS)等之血清補充液,亦可進行無血清培養。培養時之pH係以約6至8為宜。培養係通常以約30至40℃,進行約15至200小時,因應需要,加上交換培養基、通氣、攪拌。
藉由培養含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,可使此細胞中之抗體或該片段比傳統表現高。培養含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,可使用通常細胞(以動物細胞為宜)培養所使用之培養基。此等中通常係含胺基酸、維生素類、脂質因子、能量來源、滲透壓調節劑、鐵來源、pH緩衝劑。此等成份之適當含量範圍,通常胺基酸為0.05-1500mg/L、維生素類為0.001-10mg/L、脂質因子為0-200mg/L、能量來源為1-20g/L、滲透壓調節劑為0.1-1ooo0mg/L、鐵來源為0.1-500mg/L、pH緩衝劑為1-10000mg/L、微量金屬元素為0.00001-200mg/L、界面活性劑為0-5000mg/L、增殖輔助因子為0.05-10000μg/L及核苷為0.001-50 mg/L,但並不局限於此等,可依培養細胞之種類、所需重組抗體或該片斷之種類等適當決定。
上述成份之外,亦可添加例如微量金屬元素、界面活性劑、增殖輔助因子、核苷等。
具體上,可舉例如含左旋-丙胺酸、左旋-精胺酸、左旋-天冬醯胺、左旋-天冬胺酸、左旋-半胱胺酸、左旋-胱胺酸、左旋-麩胺醯胺、左旋-麩胺酸、甘胺酸、左旋-組織胺酸、左旋-異白胺酸、左旋-白胺酸、左旋-賴胺酸、左旋-甲硫胺酸、左旋-鳥胺酸、左旋-苯丙胺酸、左旋-脯胺酸、左旋-絲胺酸、左旋-蘇胺酸、左旋-色胺酸、左旋-酪胺酸、左旋-纈胺酸等,以左旋-丙胺酸、左旋-精胺酸、左旋-天冬醯胺、左旋-天冬胺酸、左旋-胱胺酸、左旋-麩胺醯胺、左旋-麩胺酸、甘胺酸、左旋-組織胺酸、左旋-異白胺酸、左旋-白胺酸、左旋-賴胺酸、左旋-甲硫胺酸、左旋-苯丙胺酸、左旋-脯胺酸、左旋-絲胺酸、左旋-蘇胺酸、左旋-色胺酸、左旋-酪胺酸、左旋-纈胺酸等為宜之胺基酸類;i-異肌醇、生物素、葉酸、核酸、菸鹼醯胺、菸鹼酸、對胺基苯甲酸、泛酸鈣、吡哆醛鹽酸鹽、吡哆醇鹽酸鹽、核黃素、鹽酸硫胺素、維生素B12、抗壞血酸等,以生物素、葉酸、核酸、菸鹼醯胺、泛酸鈣、吡哆醛鹽酸鹽、核黃素、鹽酸硫胺素、維生素B12、抗壞血酸等為宜之維生素類;氯化膽鹼、重酒石酸膽鹼、亞油酸、油酸、膽固醇等,以氯化膽鹼等為宜之脂質因子;葡萄糖、半乳糖、甘露糖、果糖等,以葡萄糖等為宜之能量來源;氯化鈉、氯化鉀、硝酸鉀等,以氯化鈉等為宜之滲透壓調節劑;EDTA鐵、檸檬酸鐵、氯化亞鐵、氯化鐵、硫酸亞鐵、硫酸鐵、硝酸鐵等,以氯化鐵、EDTA鐵、檸檬酸鐵等為宜之鐵來源類;碳酸氫鈉、氯化鈣、磷酸二氫鈉、HEPES、MOPS等,以碳酸氫鈉等為宜之pH緩衝劑之培養基。
上述成份以外,亦可添加例如硫酸銅、硫酸錳、硫酸鋅、硫酸鎂、氯化鎳、氯化錫、氯化鎂、亞矽酸鈉等,以硫酸銅、硫酸鋅、硫酸鎂等為宜之微量金屬元素;Tween80、Pluronic F-68等之界面活性劑;及重組型胰島素、重組型IGF-1、重組型EGF、重組型FGF、重組型PDGF、重組型TGF-α、鹽酸乙醇胺、亞硒酸鈉、A酸、鹽酸腐胺等,以亞硒酸鈉、鹽酸乙醇胺、重組型IGF-1、鹽酸腐胺等為宜之增殖輔助因子;去氧腺嘌呤核苷、去氧胞嘧啶核苷、去氧鳥糞嘌呤核苷、腺嘌呤核苷、胞嘧啶核苷、鳥糞嘌呤核苷、尿嘧啶核苷等之核苷等。另外,上述培養基之適合例中,亦可含鏈黴素、青黴素G鉀及慶大黴素等之抗生素、或酚紅等之pH指示劑。
培養基之pH係依培養細胞而異,但一般為pH6.8~7.6,大部份的情況係以pH7.0~7.4為適當。
培養基係亦可使用市售之動物細胞培養用培養基,例如D-MEM(Dulbecco’s Modified Eagle medium)、D-MEM/F-12 1:1 Mixture(Dulbecco’s Modified Eagle Medium:Nutrient Mixture F-12) 、RPMI1640、CHo-S-SF M Ⅱ(Invitrogen公司)、CHO-SF(Sigma-Aldrich公司)、EX-CELL 301(JRH biosciences公司)、CD-CHO(Invitrogen公司)、IS CHO-V(Irvine Scientific公司)、PF-ACF-CHO(Sigma-Aldrich公司)等之培養基。
另外,培養基係無血清培養基。
細胞為CHO細胞時,CHO細胞之培養係可使用該業者已知之方法進行。例如,通常氣相之CO2
濃度係0-40%,以2-10%之環境下為宜,為30-39℃,以37℃程度為宜,可進行培養。
為產生所需重組抗體或該片段,適當的細胞培養期間,通常為1天至3個月,以1天至2個月為宜,以1天至1個月尤佳。
另外,作為動物細胞培養用之各種培養裝置,可使用例如發酵槽型桶培養裝置、氣舉式培養裝置、培養瓶(culture flask)式培養裝置、旋轉角瓶(spinner flask)式培養裝置、微載體(microcarrier)式培養裝置、流動層式培養裝置、中空纖維(Hollow-fiber)式培養裝置、滾瓶式培養裝置、塡充槽式培養裝置等進行培養。
培養雖可使用批式培養(batch culture)、饋料批式培養(fed-batch culture)、連續培養(continuous culture)等中任一種方法,但以饋料批式培養或連續培養為宜,以饋料批式培養尤佳。
另一方面,作為於in vivo生產抗體或該片斷之系統,可舉例如使用動物之產生系或使用植物之產生系。藉由導入目的基因於此等之動物或植物,使動物或植物的體內生產多胜肽,進行回收‧本發明中所謂「宿主」係包含此等動物、植物。
使用動物時,有使用哺乳類動物、昆蟲之生產系。作為哺乳類動物,可使用羊、豬、綿羊、小鼠、牛(Vicki Glaser,SPECTRUM Biotechnology Applications,1993)。另外,使用哺乳類動物時,可使用基因轉殖動物。
基因轉殖動物之製造方法係已知。例如依據Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:7380-7384(1980)記載的方法,可得到基因轉殖動物。具體上,導入目的基因於哺乳動物之全能細胞,使個體生產此細胞。所得之個體中,藉由篩選嵌入導入基因於體細胞及生殖細胞中之個體,可製作目的之基因轉殖動物。作為導入基因之全能細胞,除了受精卵或初期胚胎以外,可舉例如具有多分化能之如ES細胞之培養細胞。
例如,調製目的基因(本發明中,編碼抗體之H鏈或該片段之DNA與編碼抗體之L鏈或該片段之DNA)與編碼山羊β酪蛋白之乳汁中原有所產生之多胜肽之基因作為融合基因。接著,注入含此融合基因之基因片段於山羊胚胎中,移植此胚胎於母山羊。自接受胚胎的山羊所生之基因轉殖羊或該子孫產生的乳汁,可得到目的多胜肽(本發明中之抗體或該片段)。為增加由基因轉殖羊所生產之含多胜肽之乳汁,亦可使用適當的激素於基因轉殖羊(Ebert,K.M. et al.,Bio/Technology(1994)12,699-702)。
另外,作為昆蟲,例如可使用蠶。使用蠶時,藉由使蠶感染插入編碼目的多胜肽之基因(本發明中,編碼抗體之H鏈或該片段之DNA與編碼抗體之L鏈或該片段之DNA)之桿狀病毒(baculovirus),可自此蠶的體液,得到目的多胜肽(Susumu,M. et al.,Nature(1985)315,592-594)。
另外,使用植物時,可使用例如菸草。使用菸草時,插入編碼目的多胜肽之基因(本發明中,編碼抗體之H鏈或該片段之DNA與編碼抗體之L鏈或該片段之DNA)於植物表現用載體,例如pMON 530,導入此載體於如農桿菌(Agrobacterium tumefaciens)之桿菌。使菸草,例如(Nicotiana tabacum)感染此桿菌,可由本菸草葉,得到所需多胜肽(本發明中之抗體或該片段)(Julian K.-C.Ma et al.,Eur. J. Immunol.(1994)24,131-138)。
本發明亦提供含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之培養細胞。培養細胞係如上所述。
另外,本發明亦提供包含使用表現抗體之L鏈或該片段比抗體之H鏈或該片段高之細胞,使產生抗體或該片段之抗體或該片段之製造方法。作為表現抗體之L鏈或該片段比抗體之H鏈或該片段高之細胞,可列舉含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之培養細胞,如此細胞係如上所述。藉由培養表現抗體之L鏈或該片段比抗體之H鏈或該片段高之細胞,可使此細胞生產抗體或該片段。培養基或培養條件等係如上所述。
作為以本發明之製造方法所生產之抗體,不僅來自人、小鼠、大鼠、倉鼠、兔子、猴子等動物之單株抗體,亦包含嵌合體抗體、人源化抗體、或bispecific(雙特異性)抗體等之人為改變之基因重組型抗體。另外,抗體之型態亦非特別限定者,抗體之免疫球蛋白型態並非特別限定者,雖可為IgG1、IgG2、IgG3、IgG4等之IgG、IgA、IgD、IgE、IgM等之任一種型態,但作為醫藥使用時,以IgG及IgM為宜。另外,作為本發明之抗體,不僅whole之抗體,亦可包含Fv、Fab、F(ab)2
等之抗體片段。
將以本發明之方法製造之抗體,進一步作為抗體修飾物,亦可使與聚乙二醇(PEG)等之各種分子鍵結,作為抗體修飾物使用。得到如此之抗體修飾物係可由施以化學修飾於所得抗體而得。此等方法係已於此領域確立。
上述本發明之抗體係可由該業者已知之方法製作。
生產單株抗體之融合瘤係基本上使用已知技術,如下述製作。亦即,使用所需抗原或表現所需抗原之細胞作為敏化抗原,將其依據通常的免疫方法進行免疫,將所得之免疫細胞,由通常之細胞融合法,使與已知親代細胞融合,由通常之篩選法,篩選生產單株抗體之細胞(融合瘤)而可製作。製作融合瘤係可依據例如Milstein等之方法(Kohler. G. and Milstein,C.,Methods Enzymol. (1981)73:3-46)等進行。抗原之免疫原性低時,使與白蛋白等之具有免疫原性之巨大分子鍵結,進行免疫即可。
另外,自融合瘤篩選抗體基因,嵌入於適當的載體,將其導入宿主,可使用基因重組技術而使生產之基因重組型抗體(例如參考Carl,A. K. Borrebaeck,James,W. Larrick,THERAPEUTIC MONOCLONAL ANTIBODIES,Published in the United Kingdom by MACMILLAN PUBLISHERS LTD,1990)。具體上,使用反轉錄酵素,依融合瘤之mRNA合成抗體之可變區(V區)之cDNA。若得到編碼目的之抗體之V區之DNA,連接其與所需之編碼抗體恆定區(C區)之DNA,嵌入其於表現載體。或亦可嵌入編碼抗體之V區之DNA於含抗體C區之DNA之表現載體。表現控制區係嵌入於表現載體,於例如增強子、啟動子之控制下表現。接著,可藉此表現載體,將宿主細胞轉型,使表現抗體。
本發明中,使對人之異種抗原性降低等為目的,可使用人為改變之基因重組型抗體,例如嵌合體(Chimeric)抗體、人源化(Humanized)抗體等。此等改變抗體係可使用已知方法製造。嵌合體抗體係人類以外之哺乳動物,例如小鼠抗體之重鏈、輕鏈之可變區及人抗體之重鏈、輕鏈之恆定區所成之抗體,連接編碼小鼠抗體之可變區之DNA與編碼人類抗體之恆定區之DNA,將其嵌入表現載體,導入宿主,使生產而可得。
人源化抗體亦稱為再構成(reshaped)人類抗體,將人以外之哺乳動物,例如小鼠抗體之互補性決定區(CDR;complementarity determining region),移植於人類抗體之互補性決定區者,亦已知該一般基因重組手法。具體上,將連接小鼠抗體之CDR與人類抗體之抗體架構區(framework region;FR)而設計之DNA序列,自已製作數個寡聚核苷酸,由PCR法合成以使末端部份具有重疊(overlap)部份。連接所得之DNA與編碼人類抗體恆定區之DNA,接著嵌入於表現載體,將其導入於宿主,使生產而可得(參考歐洲專利申請書公開號碼EP 239400、國際專利申請書公開號碼WO 96/02576)。介在CDR所連接之人類抗體之FR係選擇互補性決定區形成良好抗原鍵結部位者。因應需要,亦可取代抗體之可變區之抗體架構區之胺基酸,以使再構成人抗體之互補性決定區形成適當的抗原鍵結位(Sato,K. et al.,Cancer Res.(1993)53,851-856)。
另外,亦已知人類抗體之取得方法。例如於體外,將淋巴球以所需抗原或表現所需抗原之細胞敏化,使敏化淋巴球與人骨髓瘤細胞,例如U266融合,亦可得到對抗原具有鍵結活性之所需人類抗體(參考特公平1-59878)。另外,將具有人類抗體基因之全部建構之基因轉殖動物,以抗原進行免疫,可取得所需之人類抗體(參考國際專利申請書公開號碼WO93/12227、WO92/03918、WO94/02602、WO94/25585、WO96/34096、WO96/33735)。另外,亦已知使用人類抗體庫,由盤選(Panning)取得人類抗體之技術。例如,使用人類抗體之可變區作為單鏈抗體(scFv,sinlge-chain antibody fragment),由噬菌體呈現法,使於噬菌體表面表現,可選擇鍵結於抗原之噬菌體。若分析所選擇之噬菌體之基因時,可決定編碼鍵結於抗原之人類抗體之可變區之DNA序列。若明白鍵結於抗原之scFv之DNA序列時,可製作含該序列之適當的表現載體,取得人類抗體。此等方法係已眾所皆知,可參考WO92/01047、WO92/20791、WO93/06213、WO93/11236、WO93/19172、WO95/01438、WO95/15388。
如上述所得之抗體或該片段係可精製至均勻。抗體或該片段之分離、精製係可使用通常多胜肽所使用之分離、精製方法。例如適當選擇、組合親和層析等之層析管柱、過濾器、超濾、鹽析、透析、SDS聚丙烯醯胺膠體電泳、等電點電泳等,可分離、精製抗體(Antibodies:A Laboratory Manual. Ed Harlow and David Lane,Cold Spring Harbor Laboratory,1988),但不局限於此等者。上述所得抗體之濃度測定係可由吸光度測定或酵素連結免疫吸附法(Enzyme-linked immunosorbent assay;ELISA)等進行。
作為親和層析使用之管柱,可列舉蛋白質A管柱、蛋白質G管柱。例如作為使用蛋白質A管柱之管柱,可列舉Hyper D,POROS,Sepharose F. F.(Pharmacia)等。
作為親和層析以外之層析管柱,可舉例如離子交換層析、疏水性層析、凝膠過濾、逆相層析、吸附層析等(Strategies for Protein Purification and Characterization:A Laboratory Course Manual. Ed Daniel R. Marshak et al.,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1996)。此等層析係可使用HPLC、FPLC等之液相層析進行。
另外,藉由於多胜肽精製前或精製後,使適當的多胜肽修飾酵素作用,亦可任意施以修飾、或除去部份胜肽。作為多胜肽修飾酵素,可使用例如胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶、賴胺醯肽鏈內切酶(lysylendopeptidase)、蛋白激酶(proteinkinase)、葡萄糖苷酶(glucosidase)等。
依據本發明之方法所製造之抗體或該片段,具有可作為醫藥使用之生物學活性時,藉由混合此多胜肽與醫藥上所容許之載體或添加劑而製劑化,可製造醫藥品。
作為醫藥上所容許之載體或添加劑之例,可舉例如水、醫藥上所容許之有機溶劑、膠原蛋白、聚乙烯醇、聚乙烯基吡咯烷酮、羧乙烯基聚合物、羧甲基纖維素鈉、聚丙烯酸鈉、褐藻酸鈉、水溶性葡聚糖、羧甲基澱粉鈉、果膠、甲基纖維素、乙基纖維素、三仙膠、阿拉伯膠、酪蛋白、瓊脂、聚乙二醇、二甘油、甘油、丙二醇、凡士林、鏈烷烴、硬脂醇、硬脂酸、人血清白蛋白(HSA)、甘露糖醇、山梨糖醇、乳糖、作為醫藥添加物所容許之界面活性劑等。
實際之添加物係因應本發明治療劑之劑型,自上述中選擇單獨或適當組合,但當然不局限於此等者。例如,作為注射用製劑使用時,可使用溶解經精製之多胜肽於溶劑,例如生理食鹽水、緩衝溶液、葡萄糖溶液等,於其中加入防吸附劑,例如Tween80、Tween20、明膠、人血清白蛋白者。或亦可為用以形成於使用前溶解再構成之劑型而冷凍乾燥者,作為冷凍乾燥用之賦形劑,可使用例如甘露糖醇、葡萄糖等之糖醇或糖類。
抗體或該片段之有效投予量係依抗體或該片段之種類、治療或預防對象之疾病之種類、患者之年齡、疾病之嚴重程度等而適當選擇。例如抗體為抗Glypican-3抗體,以此作為抗癌劑使用時,抗Glypican-3抗體之有效投予量係選自每一次每1kg體重為0.001mg至1000mg之範圍。或可選擇每位患者為0.01至10000Omg/body之投予量。然而,此等投予量並非受局限者。
抗體或該片段之投予方法係可為經口、非經口投予中任一種,以非經口投予為宜,具體上可舉例如注射(例如由靜脈內注射、肌肉內注射、腹腔內注射、皮下注射等之全身或局部地投予)、經鼻投予、經肺投予、經皮投予等。
以下係由實施例更具體地說明本發明。另外,此等實施例係用以說明本發明者,但並非局限本發明之範圍者。
首先,如下述調製人源化抗Glypican-3抗體之H鏈基因。Glypican-3片段(由PCR使與GST之融合蛋白質基因表現而取得)對小鼠(MRL/1pr,日本Charles River)進行免疫。使用此小鼠之脾臟細胞,製作融合瘤。由使用Glypican-3作為抗原之ELISA,篩選融合瘤,選擇生產Glypican-3結合抗體之複製體。自融合瘤萃取mRNA,藉由使用反轉錄酵素之反轉錄反應,製作cDNA。藉由使用具有與小鼠H鏈可變區基因成互補鹽基序列之引子(CAGGGGCCAGTGGATAGACCGATG)(序列號碼1)以及cDNA之PCR,增幅小鼠抗Glypican-3H鏈可變區基因,藉由與pGEM-T Easy(Promega)結合而取得。由Kabat database搜尋並鑑定具有小鼠抗Glypican-3H鏈可變區基因之架構區與同源性(homology)之人抗體H鏈可變區基因。設計結合經鑑定人抗體H鏈可變區基因之各架構區部份與小鼠抗Glypican-3抗體H鏈可變區基因之各CDR部份之人源化抗Glypican-3H鏈可變區基因之鹽基序列,由PCR合成。結合人源化抗Glypican-3H鏈可變區基因與人IgG1恆定區基因,由胺基酸取代進行最適化,製作人源化抗Glypican-3H鏈基因(參考WO06/06693)。藉由於CAG啟動子之下游結合人源化抗Glypican-3抗體之H鏈基因,進而於更下游結合連接小鼠β球蛋白polyA訊號,製作H鏈表現單位。可由H鏈表現單位上游之BamH I及HindⅢ,以及下游之Xho I,切出H鏈表現單位。
接著,如下述調製人源化抗Glypican-3抗體之L鏈基因。Glypican-3片段對小鼠進行免疫。使用此小鼠之脾臟細胞,製作融合瘤。由使用Glypican-3作為抗原之ELISA,篩選融合瘤,選擇生產Glypican-3結合抗體之複製體。自融合瘤萃取mRNA,藉由使用反轉錄酵素之反轉錄反應,製作cDNA。藉由使用具有與小鼠L鏈可變區基因成互補鹽基序列之引子(GCTCACTGGATGGTGGGAAGATG)(序列號碼2)以及cDNA之PCR,增幅小鼠抗Glypican-3L鏈可變區基因,藉由與pGEM-T Easy(Promega)結合而取得。由Kabat database搜尋並鑑定具有小鼠抗Glypican-3L鏈可變區基因之架構區與同源性(homology)之人類抗體L鏈可變區基因。設計結合經鑑定人類抗體L鏈可變區基因之各架構區部份與小鼠抗Glypican-3抗體H鏈可變區基因之各CDR部份之人源化抗Glypican-3L鏈可變區基因之鹽基序列,由PCR合成。結合人源化抗Glypican-3L鏈可變區基因與人類IgGκ恆定區基因,由胺基酸取代進行最適化,製作人源化抗Glypican-3L鏈基因(參考WO06/06693)。藉由於CAG啟動子之下游結合人源化抗Glypican-3抗體之L鏈基因,進而於下游結合小鼠β球蛋白polyA訊號,製作L鏈表現單位。可以HindⅢ,切出L鏈表現單位。
結合以BamH I及Hol I消化之IDEC公司製質體INPEP4與H鏈表現單位,製作pINP-GC33-H1。結合經HindⅢ消化之pINGP-GC33-H1與以HindⅢ切出之L鏈表現單位。由上述操作,製作每個質體保持1個複製之L鏈表現單位及1個複製之H鏈表現單位之1個複製L鏈表現質體phGC33CAG#1以及每個質體保持2個複製之L鏈表現單位及1個複製之H鏈表現單位之2個複製L鏈表現質體phGC33CAG1(圖1)。
由電穿孔法導入phGC33CAG#1或phGC33CAG1於CHO細胞DXB11株。接著,於400μg/mL之G418存在下培養細胞,篩選經導入表現質體之細胞株。使表現質體基因增幅之目的下,接著,於10至100nM MTX之存在下實施培養。
取得4株之1個複製L鏈表現質體導入細胞株及5株之2個複製L鏈表現質體導入細胞株,使用125mL燒瓶,進行批次培養,進行比較。培養係以培養液量為50mL,開始細胞密度為2×105
cells/mL,培養溫度為37℃,振動速度為110rpm之條件實施。培養開始後第3、5、6、7天,測定培養液中之抗體濃度,進行比較。4株之1個複製L鏈表現質體導入細胞株之第7天之抗體產生量約為60-260μg/mL。另一方面,5株之2個複製L鏈表現質體導入細胞株之第7天之抗體產生量約為420-690μg/mL。2個複製L鏈表現質體導入細胞株之抗體生產量比1個複製L鏈表現質體導入細胞株之抗體產生量,高於2倍以上(圖2)。
由上述確認藉由導入相對於1個複製H鏈之2個複製L鏈於宿主細胞,比傳統上藉由導入1個複製L鏈於宿主細胞,提高產生量。
WO92/019759記載之於人源化抗人IL-6R抗體H鏈基因及人源化抗人IL-6R抗體L鏈基因之各個上游,結合CAG啟動子,於更下游結合小鼠β球蛋白poly A訊號,製作H鏈表現單位及L鏈表現單位。於嵌入新黴素抗藥性基因及dhfr之pBluescript上,結合H鏈表現單位及L鏈表現單位,製作以人源化抗人IL-6R抗體基因之1個複製H鏈及1個複製L鏈所構成之1個複製L鏈表現質體以及1個複製H鏈及2個複製L鏈所構成之2個複製L鏈表現質體(圖3),由電穿孔法導入於CHO細胞DXB11株。接著,於400μg/mL之G418存在下培養細胞,篩選導入表現質體之細胞株。
取得176株之1個複製L鏈表現質體導入細胞株及176株之2個複製L鏈表現質體導入細胞株,使用24孔培養盤之批次培養,進行比較。培養係以培養液量為0.7mL,培養溫度為37℃,振動速度為160rpm之條件實施。培養開始後第12天,測定培養液中之抗體濃度,依抗體產生量重新排列後,進行團體間比較(圖4)。整體上,結果係2個複製L鏈表現質體導入細胞之產生量比1個複製L鏈表現質體之產生量高。
由上述確認藉由導入相對於1個複製H鏈之2個複製L鏈於宿主細胞,比傳統上藉由導入1個複製L鏈於宿主細胞,提高產生量。
本發明係可應用於所有抗體產生細胞。
本說明書引用之全部出版物、專利及專利申請書,原原本本作為參考,為本說明書採用者。
本發明係可利用於生產抗體。
序列號碼1係表示具有與小鼠H鏈可變區基因成互補鹽基序列之引子之序列。
序列號碼1係表示具有與小鼠L鏈可變區基因成互補鹽基序列之引子之序列。
[圖1]圖1係表示每個質體保持1個複製之L鏈表現單位及1個複製之H鏈表現單位之1個複製L鏈表現質體phGC33CAG#1以及每個質體保持2個複製之L鏈表現單位及1個複製之H鏈表現單位之2個複製L鏈表現質體phGC33CAG1。
[圖2]圖2係表示1個複製L鏈表現質體導入細胞株及2個複製L鏈表現質體導入細胞株之抗體(人源化抗人磷脂醯肌醇蛋白聚糖-3(Glypican-3)抗體)之產生量圖。
[圖3]表示以人源化抗人類IL-6R抗體基因之1個複製H鏈及1個複製L鏈所構成之1個複製L鏈表現質體以及以1個複製H鏈及2個複製L鏈所構成之2個複製L鏈表現質體。
[圖4]圖4係表示1個複製L鏈表現質體導入細胞株及2個複製L鏈表現質體導入細胞株之抗體(人源化抗人類IL-6R抗體)之產生量圖。
Claims (13)
- 一種抗體或該片段之製造方法,其特徵係包含使用含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,使其生產抗體或該片段,且抗體之免疫球蛋白型態係IgG1。
- 如申請專利範圍第1項之方法,其中含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多之細胞,係已導入含1個複製之編碼抗體之H鏈或該片段之DNA、2個複製以上之編碼抗體之L鏈或該片段之DNA之載體之細胞。
- 如申請專利範圍第2項之方法,其中細胞為動物細胞。
- 如申請專利範圍第3項之方法,其中動物細胞係中國倉鼠卵巢細胞。
- 如申請專利範圍第1項至第4項中任一項之方法,其中抗體係嵌合體抗體、人源化抗體(humanized antibody)或人類抗體。
- 如申請專利範圍第1項之方法,其中抗體係選自抗IL-6受體抗體、抗IL-6抗體、抗Glypican-3抗體、抗CD3抗體、抗CD20抗體、抗GP Ⅱ b/Ⅲ a抗體、抗TNF抗體、抗CD25抗體、抗EGFR抗體、抗Her2/neu抗體、抗RSV抗體、抗CD33抗體、抗CD52抗體、抗IgE抗體、抗CD11a抗體、抗VEGF抗體及抗VLA4抗體所成群。
- 一種方法,其特徵係製造含有以申請專利範圍第1 項至第6項中任一項之方法所製造之抗體或該片段之醫藥品。
- 一種重組載體,其特徵係含1個複製之編碼抗體之H鏈或該片段之DNA、2個複製以上之編碼抗體之L鏈或該片段之DNA,且抗體之免疫球蛋白型態係IgG1。
- 一種細胞,其特徵係導入有申請專利範圍第8項之載體。
- 一種培養細胞,其特徵係含編碼抗體之L鏈或該片段之外來DNA之複製數比編碼抗體之H鏈或該片段之外來DNA多,且抗體之免疫球蛋白型態係IgG1。
- 一種抗體或該片段之製造方法,其特徵係包含使用表現編碼抗體之L鏈或該片段比表現編碼抗體之H鏈或該片段高之細胞,使其產生抗體或該片段,且抗體之免疫球蛋白型態係IgG1。
- 如申請專利範圍第1項之方法,其中細胞係穩定表現(stable expression)抗體或該片段之細胞。
- 如申請專利範圍第9項或第10項之細胞,其係穩定表現抗體或該片段。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2007267384 | 2007-10-15 | ||
JP2008103308 | 2008-04-11 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
TW200934867A TW200934867A (en) | 2009-08-16 |
TWI463010B true TWI463010B (zh) | 2014-12-01 |
Family
ID=40567372
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
TW097139552A TWI463010B (zh) | 2007-10-15 | 2008-10-15 | Antibody manufacturing method |
Country Status (17)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US9683027B2 (zh) |
EP (1) | EP2202307B2 (zh) |
JP (4) | JP4976502B2 (zh) |
KR (1) | KR101558009B1 (zh) |
CN (3) | CN103540632A (zh) |
AU (1) | AU2008312937B2 (zh) |
BR (1) | BRPI0818674B1 (zh) |
CA (1) | CA2701338C (zh) |
DK (1) | DK2202307T4 (zh) |
ES (1) | ES2499391T5 (zh) |
IL (2) | IL205051A (zh) |
MX (1) | MX2010004007A (zh) |
PL (1) | PL2202307T5 (zh) |
SG (1) | SG185302A1 (zh) |
SI (1) | SI2202307T2 (zh) |
TW (1) | TWI463010B (zh) |
WO (1) | WO2009051108A1 (zh) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
BRPI0818674B1 (pt) * | 2007-10-15 | 2023-01-17 | Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha | Métodos para produção de um anticorpo inteiro ou de um fragmento do mesmo e para preparação de fármacos, bem como vetor recombinante |
KR102223417B1 (ko) | 2009-10-26 | 2021-03-05 | 에프. 호프만-라 로슈 아게 | 글리코실화된 면역글로불린의 제조 방법 |
CN107629124A (zh) * | 2010-12-28 | 2018-01-26 | 中外制药株式会社 | 动物细胞的培养方法 |
RU2015144020A (ru) * | 2013-03-15 | 2017-04-21 | Дженентек, Инк. | Среды для культивирования клеток и способы получения антител |
CA2913687C (en) | 2013-07-04 | 2022-12-13 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Interference-suppressed immunoassay to detect anti-drug antibodies in serum samples |
US20190225694A1 (en) | 2016-06-28 | 2019-07-25 | Zaklady Farmaceutyczne Polpharma Sa | Recombinant production of monoclonal antibodies |
US20190374639A1 (en) | 2016-11-21 | 2019-12-12 | Polpharma Biologics S.A. | Aqueous pharmaceutical formulations |
Family Cites Families (33)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8607679D0 (en) | 1986-03-27 | 1986-04-30 | Winter G P | Recombinant dna product |
JPS6459878A (en) | 1987-08-31 | 1989-03-07 | Matsushita Electric Ind Co Ltd | Semiconductor laser protective circuit |
ES2139598T3 (es) | 1990-07-10 | 2000-02-16 | Medical Res Council | Procedimientos para la produccion de miembros de parejas de union especifica. |
GB9015198D0 (en) | 1990-07-10 | 1990-08-29 | Brien Caroline J O | Binding substance |
DE69133476T2 (de) | 1990-08-29 | 2006-01-05 | GenPharm International, Inc., Palo Alto | Transgene Mäuse fähig zur Produktion heterologer Antikörper |
CA2090969C (en) † | 1990-09-04 | 2001-08-21 | Russell Arthur Brierley | Production of insulin-like growth factor-1 in methylotrophic yeast cells |
DK0628639T3 (da) * | 1991-04-25 | 2000-01-24 | Chugai Pharmaceutical Co Ltd | Rekonstitueret humant antistof mod human interleukin-6-receptor |
ATE181571T1 (de) | 1991-09-23 | 1999-07-15 | Medical Res Council | Methoden zur herstellung humanisierter antikörper |
ES2227512T3 (es) | 1991-12-02 | 2005-04-01 | Medical Research Council | Produccion de anticuerpos contra auto-antigenos a partir de repertorios de segmentos de anticuerpos fijados en un fago. |
EP0746609A4 (en) | 1991-12-17 | 1997-12-17 | Genpharm Int | NON-HUMAN TRANSGENIC ANIMALS CAPABLE OF PRODUCING HETEROLOGOUS ANTIBODIES |
CA2131151A1 (en) | 1992-03-24 | 1994-09-30 | Kevin S. Johnson | Methods for producing members of specific binding pairs |
AU675661B2 (en) | 1992-07-24 | 1997-02-13 | Abgenix, Inc. | Generation of xenogeneic antibodies |
CA2161351C (en) | 1993-04-26 | 2010-12-21 | Nils Lonberg | Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies |
GB9313509D0 (en) | 1993-06-30 | 1993-08-11 | Medical Res Council | Chemisynthetic libraries |
EP0731842A1 (en) | 1993-12-03 | 1996-09-18 | Medical Research Council | Recombinant binding proteins and peptides |
KR100261941B1 (ko) | 1994-07-13 | 2000-07-15 | 나가야마 오사무 | 사람의 인터루킨-8에 대한 재구성 사람항체 |
US5561053A (en) | 1994-08-05 | 1996-10-01 | Genentech, Inc. | Method for selecting high-expressing host cells |
CA2219361C (en) | 1995-04-27 | 2012-02-28 | Abgenix, Inc. | Human antibodies derived from immunized xenomice |
AU2466895A (en) | 1995-04-28 | 1996-11-18 | Abgenix, Inc. | Human antibodies derived from immunized xenomice |
EP0985033A4 (en) * | 1997-04-04 | 2005-07-13 | Biosite Inc | POLYVALENT AND POLYCLONAL LIBRARIES |
DE69830901T2 (de) | 1997-05-02 | 2006-05-24 | Genentech Inc., San Francisco | ein verfahren zur herstellung multispezifischer antikörper die heteromultimere und gemeinsame komponenten besitzen |
US20020062010A1 (en) | 1997-05-02 | 2002-05-23 | Genentech, Inc. | Method for making multispecific antibodies having heteromultimeric and common components |
US6171586B1 (en) * | 1997-06-13 | 2001-01-09 | Genentech, Inc. | Antibody formulation |
EP1383800A4 (en) † | 2001-04-02 | 2004-09-22 | Idec Pharma Corp | RECOMBINANT ANTIBODIES CO-EXPRESSED WITH GNTIII |
US6605176B2 (en) | 2001-07-13 | 2003-08-12 | Taiwan Semiconductor Manufacturing Co., Ltd. | Aperture for linear control of vacuum chamber pressure |
US20030157641A1 (en) * | 2001-11-16 | 2003-08-21 | Idec Pharmaceuticals Corporation | Polycistronic expression of antibodies |
ATE420964T1 (de) * | 2001-11-16 | 2009-01-15 | Biogen Idec Inc | Polycistronische expression von antikörpern in cho zellen |
TW200510532A (en) | 2003-07-15 | 2005-03-16 | Chugai Pharmaceutical Co Ltd | IgM production by transformed cell and method of quantifying the same |
AU2005222963B2 (en) * | 2004-03-15 | 2009-10-29 | Biogen Idec Ma Inc. | Methods and constructs for expressing polypeptide multimers in eukaryotic cells using alternative splicing |
EP2314317A3 (en) * | 2004-07-09 | 2011-06-29 | Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha | Anti-glypican 3 antibody |
GB0425534D0 (en) * | 2004-11-19 | 2004-12-22 | Celltech R&D Ltd | Process for obtaining antibodies |
CA2615983A1 (en) † | 2005-07-21 | 2007-02-01 | Abbott Laboratories | Multiple gene expression including sorf constructs and methods with polyproteins, pro-proteins, and proteolysis |
BRPI0818674B1 (pt) * | 2007-10-15 | 2023-01-17 | Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha | Métodos para produção de um anticorpo inteiro ou de um fragmento do mesmo e para preparação de fármacos, bem como vetor recombinante |
-
2008
- 2008-10-14 BR BRPI0818674-0A patent/BRPI0818674B1/pt active IP Right Grant
- 2008-10-14 SG SG2012076485A patent/SG185302A1/en unknown
- 2008-10-14 CA CA2701338A patent/CA2701338C/en active Active
- 2008-10-14 SI SI200831306T patent/SI2202307T2/sl unknown
- 2008-10-14 CN CN201310401442.2A patent/CN103540632A/zh active Pending
- 2008-10-14 US US12/734,094 patent/US9683027B2/en active Active
- 2008-10-14 AU AU2008312937A patent/AU2008312937B2/en active Active
- 2008-10-14 PL PL08838661T patent/PL2202307T5/pl unknown
- 2008-10-14 DK DK08838661.0T patent/DK2202307T4/da active
- 2008-10-14 CN CN200880106430A patent/CN101802192A/zh active Pending
- 2008-10-14 CN CN201610656433.1A patent/CN106244651A/zh active Pending
- 2008-10-14 MX MX2010004007A patent/MX2010004007A/es active IP Right Grant
- 2008-10-14 ES ES08838661T patent/ES2499391T5/es active Active
- 2008-10-14 EP EP08838661.0A patent/EP2202307B2/en active Active
- 2008-10-14 KR KR1020107008087A patent/KR101558009B1/ko active IP Right Grant
- 2008-10-14 JP JP2009538093A patent/JP4976502B2/ja active Active
- 2008-10-14 WO PCT/JP2008/068588 patent/WO2009051108A1/ja active Application Filing
- 2008-10-15 TW TW097139552A patent/TWI463010B/zh active
-
2010
- 2010-04-13 IL IL205051A patent/IL205051A/en active IP Right Grant
-
2012
- 2012-04-12 JP JP2012090908A patent/JP5788830B2/ja active Active
-
2015
- 2015-06-05 JP JP2015114464A patent/JP6092304B2/ja active Active
- 2015-07-23 IL IL240122A patent/IL240122B/en active IP Right Grant
-
2017
- 2017-02-08 JP JP2017020965A patent/JP6506786B2/ja active Active
- 2017-05-08 US US15/589,000 patent/US11136375B2/en active Active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Stefan Schlatter.,"On the Optimal Ratio of Heavy to Light Chain Genes for Efficient Recombinant Antibody Production by CHO Cells" Biotechnol. Prog. 2005, 21, 122-133. 摘要、第123頁左欄第3-5段、第124頁左欄第6段、第124頁右欄全、第125頁左欄第1-2段、第129頁右欄第2段、第130頁全、第131頁左欄第1段、第132頁左欄第2段、圖示1-2 * |
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP6506786B2 (ja) | 抗体の製造方法 | |
AU2011350456B2 (en) | Animal cell culturing method | |
EP2154244B1 (en) | Cell culture method using amino acid-enriched medium | |
TWI463013B (zh) | Manufacture of dissimilar proteins | |
EP2351833B1 (en) | Peptide-containing culture medium for culturing animal cell | |
RU2486245C2 (ru) | Способ получения клетки, способной продуцировать гетеропротеины с высоким выходом | |
US12145978B2 (en) | Composition comprising an antibody | |
AU2015202051B2 (en) | Method for production of antibody |