JP2016163579A - 細胞からの脂質の抽出およびそれに由来する生産物 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】微生物細胞組成物から脂質を得る方法であって、前記細胞組成物のpHを8以上に上昇させるステップと、前記細胞組成物から脂質を分離するステップと、を含み、前記脂質が5重量%未満の有機溶媒を含有する、方法。更にpHを上昇させるステップの後に塩を添加するステップを行うことが好ましい方法。又はpHを上昇させるステップの後に加熱するステップを行うことが好ましい方法。
【選択図】図1
Description
[発明の分野]
[0001]本発明は、細胞を溶解し、細胞のpHを上昇させ、および/または細胞を塩と接触させ、並びに脂質を分離することにより、細胞から脂質を得る方法に関する。本発明はまた、本発明の方法により調製される脂質にも関する。本発明はまた、特定のアニシジン価、過酸化物価、および/またはリン含量を有する微生物脂質にも関する。
[0002]微生物細胞から多価不飽和脂肪酸などの脂質を得る典型的な方法には、所望の脂質の産生能を有する微生物を発酵槽、池またはバイオリアクターで増殖すること、微生物細胞バイオマスを含む発酵ブロスを分離すること、微生物細胞バイオマスを乾燥させること、および溶媒抽出により脂質を分離することが関わる。分離における工程としては、発酵ブロスを水で希釈する工程、希釈したブロスを遠心する工程、微生物細胞を溶解する工程、および脂質が可溶な水不混和性溶媒、例えばヘキサンを混合物に添加することにより溶解細胞から細胞内脂質を抽出する工程が含まれ得る。
[0006]本発明は、微生物細胞組成物から脂質を得る方法に関し、この方法は、細胞組成物のpHを8以上に上昇させるステップと、細胞組成物から脂質を分離するステップとを含み、ここで脂質は場合により5重量%または体積%未満の有機溶媒を含有する。
[0055]本明細書に援用され、且つ本明細書の一部をなす添付の図面は、本発明を例示し、さらには、その記載と共に、本発明の原理を説明し、且つ当業者による本発明の作製および使用を可能にする役割を担う。
[0059]本発明は、微生物細胞組成物から脂質を得る方法に関し、この方法は、細胞組成物のpHを8以上に上昇させるステップと、細胞組成物から脂質を分離するステップとを含み、ここで脂質は場合により5重量%または体積%未満の有機溶媒を含有する。一部の実施形態では、本方法は、細胞組成物に塩を添加するステップであって、それにより細胞組成物を解乳化するステップと、細胞を加熱するステップであって、それにより細胞組成物を解乳化するステップと、細胞組成物を撹拌するステップであって、それにより細胞組成物を解乳化するステップと、細胞組成物のpHを2度目に上昇させるステップであって、それにより細胞組成物を解乳化するステップとのうちの1つ以上をさらに含む。
[0090]概して、本発明の方法は、脂質の抽出または他の形での分離のために有機溶媒を利用しない。従って、一部の実施形態では、本発明の方法において脂質の抽出に十分な量または濃度の有機溶媒が植物材料を含む細胞ブロスまたは微生物細胞を含む発酵ブロスに添加されることはなく、細胞組成物に添加されることはなく、溶解細胞組成物に添加されることはなく、または脂質に添加されることはない。一部の実施形態では、有機溶媒が細胞組成物、溶解細胞組成物、または解乳化細胞組成物に添加され得る。かかる実施形態において、有機溶媒は、5体積%未満、4体積%未満、3体積%未満、2体積%未満、1体積%未満、0.5体積%未満、0.1体積%未満、または0.05体積%未満の濃度で添加される。本明細書で使用されるとき、「有機溶媒」は、少なくとも1つの炭素原子を含む溶媒を指す。本明細書で使用されるとき、「溶媒」は、疎水性または親油性であり、且つ脂質でない物質を指す。本明細書で使用されるとき、「疎水性」は、水の塊を撥ねる物質を指す。本明細書で使用されるとき、「親油性」は、脂質を溶解する物質を指す。本発明の方法に用いられない有機溶媒としては、限定はされないが、極性溶媒、非極性溶媒、水混和性溶媒、水不混和性溶媒、およびそれらの組み合わせが挙げられる。有機溶媒の非限定的な例としては、置換および非置換C4〜C8アルキル(例えば、ヘキサンなど)、C5〜C12シルコルアルキル(cylcolalkyl)、C4〜C12アルケン、C1〜C8アルコール(例えば、イソプロパノールなど)、C1〜C8アルデヒド、C4〜C8エーテル、C1〜C8エステル、C6〜C12アリール、C1〜C8アミド、C5〜C12ヘテロアリール、およびそれらの組み合わせが挙げられる。本明細書に定義するとおりの有機溶媒は、場合により溶解細胞組成物に対し、例えば溶解細胞組成物に接触させる塩基および/または塩の一成分として添加されてもよい。しかしながら、かかる実施形態において有機溶媒は、脂質が溶媒によって細胞組成物、溶解細胞組成物、または解乳化細胞組成物から実質的に抽出されない濃度で(すなわち、体積基準または重量基準で5%未満、4%未満、3%未満、2%未満、1%未満、0.5%未満、0.1%未満、または0.05%未満の濃度で)存在する。
[0092]本明細書で使用されるとき、「脂質」または「油」は、1つ以上の脂肪酸(遊離脂肪酸および脂肪酸のエステルを含む)、リン脂質、トリアシルグリセロール(すなわちトリグリセリド)、ジアシルグリセリド、モノアシルグリセリド、リゾリン脂質、石ケン、ホスファチド、ワックス、ステロールおよびステロールエステル、カロテノイド、キサントフィル、炭化水素、並びに当業者に公知の他の脂質を指す。脂質には極性脂質および中性脂質が含まれる。
レルム:ストラメノパイラ(Stramenopila)(クロミスタ(Chromista))
門:ラビリンチュラ菌門(Labyrinthulomycota)(不等毛藻類(Heterokonta))
綱:ラビリンチュラ綱(Labyrinthulomycetes)(ラビリンチュラ類(Labyrinthulae))
目:ラビリンチュラ目(Labyrinthulales)
科:ラビリンチュラ科(Labyrinthulaceae)
目:ヤブレツボカビ目(Thraustochytriales)
科:ヤブレツボカビ科(Thraustochytriaceae)
[0112]本発明の方法は、細胞または細胞バイオマスを溶解するステップであって、それにより溶解細胞組成物を形成するステップを含む。本明細書で使用されるとき、用語「細胞バイオマス」は、植物細胞または微生物細胞の集合を指す。本明細書で使用されるとき、用語「〜を溶解する」および「溶解している」は、細胞の細胞壁および/または細胞膜を破壊するプロセスを指す。一部の実施形態では、溶解するステップは、機械的に処理すること、化学的に処理すること、酵素的に処理すること、物理的に処理すること、またはそれらの組み合わせなどのプロセスを含む。
;および
塩基のKbであるBは、以下のとおり定義される:
[0183]一部の実施形態では、本発明は、本発明の方法により抽出される微生物脂質に関する。一部の実施形態では、粗微生物脂質は、26以下、25以下、20以下、15以下、10以下、5以下、2以下、または1以下のアニシジン価、および/または5以下、4.5以下、4以下、3.5以下、3以下、2.5以下、2以下、1.5以下、1以下、0.5以下、0.2以下、または0.1以下の過酸化物価、および/または100ppm以下、95ppm以下、90ppm以下、85ppm以下、80ppm以下、75ppm以下、70ppm以下、65ppm以下、60ppm以下、55ppm以下、50ppm以下、45ppm以下、40ppm以下、35ppm以下、30ppm以下、25ppm以下、20ppm以下、15ppm以下、10ppm以下、5ppm以下、4ppm以下、3ppm以下、2ppm以下、または1ppm以下のリン含量を有する。一部の実施形態では、粗微生物脂質は、重量基準または体積基準で5%未満、4%未満、3%未満、2%未満、または1%未満の有機溶媒を有する。一部の実施形態では、粗微生物脂質は、少なくとも10重量%、少なくとも15重量%、少なくとも20重量%、少なくとも25重量%、少なくとも30重量%、少なくとも35重量%、少なくとも40重量%、少なくとも45重量%、または少なくとも50重量%の所望のPUFAを有する。一部の実施形態では、粗微生物脂質は、少なくとも10重量%、少なくとも15重量%、少なくとも20重量%、少なくとも25重量%、少なくとも30重量%、少なくとも35重量%、少なくとも40重量%、少なくとも45重量%、または少なくとも50重量%のDHA、および/または少なくとも10重量%、少なくとも15重量%、または少なくとも20重量%のDPA n−6、および/または少なくとも10重量%、少なくとも15重量%、または少なくとも20重量%のEPA、および/または少なくとも10重量%、少なくとも15重量%、少なくとも20重量%、少なくとも25重量%、少なくとも30重量%、少なくとも35重量%、少なくとも40重量%、少なくとも45重量%、または少なくとも50重量%のARAを有する。一部の実施形態では、本発明の方法により抽出される粗微生物脂質は、溶媒を使用して抽出が実施された場合(例えば、典型的なヘキサン抽出またはFRIOLEX(登録商標)法(Westfalia Separator AG,独国))と比べてより低いアニシジン価、より低い過酸化物価、より低いリン含量および/またはより高い抽出収率をもたらす。
[0184]一部の実施形態では、本発明は、さらに、米国特許出願公開第2010/0239533号明細書および国際公開第2010/107415号パンフレット(各々が全体として参照により本明細書に援用される)に記載されるとおりのヤブレツボカビ(thraustochytrid)から抽出される微生物脂質に関する。一部の実施形態では、本方法は、ヤブレツボカビ(thraustochytrid)を培養液中で増殖させてバイオマスを産生するステップと、バイオマスからω−3脂肪酸を含む脂質を抽出するステップとを含む。脂質は新しく回収したバイオマスから抽出されてもよく、または変質を防止する条件下に保存されていた、予め回収していたバイオマスから抽出されてもよい。公知の方法を用いて本発明のヤブレツボカビ(thraustochytrid)を培養し、培養物からバイオマスを単離し、およびバイオマスから抽出された油の脂肪酸プロファイルを分析することができる。例えば、全体として参照により本明細書に援用される米国特許第5,130,242号明細書を参照のこと。脂質は本発明の方法により抽出することができる。
[0195]一部の実施形態では、本発明は、さらに、米国特許出願第12/729,013号明細書およびPCT/US2010/028175号明細書(各々が全体として参照により本明細書に援用される)に記載されるとおりのヤブレツボカビ(thraustochytrid)から抽出される微生物脂質に関する。一部の実施形態では、本方法は、ヤブレツボカビ(thraustochytrid)を培養液中で増殖させてバイオマスを産生するステップと、バイオマスからω−3脂肪酸を含む脂質を抽出するステップとを含む。脂質は新しく回収したバイオマスから抽出されてもよく、または変質を防止する条件下に保存されていた、予め回収していたバイオマスから抽出されてもよい。公知の方法を用いて本発明のヤブレツボカビ(thraustochytrid)を培養し、培養物からバイオマスを単離し、およびバイオマスから抽出された油の脂肪酸プロファイルを分析することができる。例えば、全体として参照により本明細書に援用される米国特許第5,130,242号明細書を参照のこと。脂質は本発明の方法により抽出することができる。
[0207]一部の実施形態では、本発明は、さらに、クリプテコディニウム・コーニイ(Crypthecodinium cohnii)種の微生物から抽出される粗脂質に関する。一部の実施形態では、本方法は、クリプテコディニウム・コーニイ(Crypthecodinium cohnii)種の微生物を培養液中で増殖させてバイオマスを産生するステップと、バイオマスからω−3脂肪酸を含む脂質を抽出するステップとを含む。脂質は新しく回収したバイオマスから抽出されてもよく、または変質を防止する条件下に保存されていた、予め回収していたバイオマスから抽出されてもよい。公知の方法を用いてクリプテコディニウム・コーニイ(Crypthecodinium cohnii)種の微生物を培養し、および培養物からバイオマスを分離することができる。例えば、全体として参照により本明細書に援用される米国特許第7,163,811号明細書を参照のこと。脂質は本発明の方法により抽出することができる。
[実施例1]
[0210]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む細胞ブロス(20,000kg)を60℃に加熱した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を、最初に第1の塩基(NaOH、50%w/w溶液の250kg)で処理して、溶解細胞組成物のpHを10.4から10.6にした。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を85℃〜102℃の温度に加熱し、24時間〜70時間にわたりその温度レベルに保持した。次に第2の塩基(NaOH、50%w/w溶液、40kg)を、pHが8を上回るまで溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を遠心して溶解細胞組成物を3相に分離した:脂質層を含む上相、乳濁液層を含む中間相、および固体層を含む下相。次に溶解細胞組成物を、Westfalia RSE110遠心機(Westfalia Separator Industry GmbH,独国)を使用し、6,000rpm、30kg/分の送り速度で運転して40℃〜80℃で遠心することにより、溶解細胞組成物から脂質を分離した。この遠心により3相が提供された:脂質を含む上相、乳濁液を含む中間相、および固体/液体乳濁液を含む下相。遠心中、溶解細胞組成物のpHは7.5〜8.5に維持した。20,000kgバッチ全体の総遠心時間は約10〜11時間であった。脂質層を分離し、その含水率は約1重量%であった。
[0211]微生物細胞(クリプテコディニウム・コーニイ(Crypthecodinium cohnii))を含む細胞ブロス(500g)を、ブロスの約7重量%のバイオマスから13.5重量%のバイオマスに濃縮した。このブロスを、10,000psiの圧力で(2パス)ホモジナイズし、溶解細胞組成物を形成した。溶解細胞組成物を塩基(すなわちNaOH、50%w/w溶液の10g)で処理して、溶解細胞組成物のpHを10.4〜10.6にした。塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を85℃〜92℃の温度に加熱し、15分間〜2時間にわたりその温度範囲に保持した。次に溶解細胞組成物を、Bench Top Sigma 6K15遠心機(SIGMA Laborzentrifugen GmbH,独国)を使用して、5,400rpmで運転して70℃〜90℃の温度で遠心することにより、溶解細胞組成物を3相に分離した:脂質を含む上相、乳濁液を含む中間相、および固体/液体乳濁液を含む下相。遠心中、溶解細胞組成物のpHは6.5〜8.5に維持した。総遠心時間は5分であった。脂質層を分離し、その含水率は約1重量%であった。
[0212]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む細胞ブロス(20,000kg)を60℃に加熱した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、溶解細胞組成物を形成した。次に、塩(固形Na2SO4、2,000kg、または溶解細胞組成物の10重量%)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を室温で24時間〜48時間撹拌した。次に溶解細胞組成物を、Westfalia RSE110 遠心機(Westfalia Separator Industry GmbH,独国)を使用して、6,000rpm、40kg/分の送り速度で運転して40℃〜75℃で遠心することにより、溶解細胞組成物から脂質を分離した。この遠心により3相が提供された:脂質を含む上相、乳濁液を含む中間相、および固体/液体乳濁液を含む下相。20,000kgバッチ全体の総遠心時間は約8〜9時間であった。遠心した溶解細胞組成物から脂質層を分離した。
[0213]微生物細胞(ATCC受託番号PTA−10208)を含む低温殺菌した細胞ブロス(500g)を提供した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を第1の塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で処理して溶解細胞組成物のpHを10.5に調整した。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を95℃の温度に加熱し、溶解細胞組成物を撹拌しながら2時間にわたりその温度レベルに保持した。次に溶解細胞組成物に第2の塩基(すなわち、25%NaOH溶液)を添加してpHを8.3とした。次に溶解細胞組成物を5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層および少量の乳濁液層を得た。
[0214]微生物細胞(ATCC受託番号PTA−9695)を含む濃縮および低温殺菌した細胞ブロス(500g)を提供した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で処理して溶解細胞組成物のpHを10.5に調整した。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を95℃の温度に加熱し、溶解細胞組成物を撹拌しながら1時間にわたりその温度レベルに保持すると、pHが8.5に降下した。合計10mlの発酵ブロス中で1時間後、約1mlの油(脂質)層および約6mlの乳濁液層が存在した。溶解細胞組成物を合計220分間加熱すると、乳濁液層が消失し始めた。次に溶解細胞組成物を5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離した。脂質の抽出収率は58.8重量%であった。粗油のアニシジン価(AV)は11.3であった。細胞破壊収率は93重量%〜95重量%の範囲であった。
[0215]ATCC受託番号PTA−9695として寄託された単離ヤブレツボカビ(thraustochytrid)の微生物細胞を含む低温殺菌した細胞ブロス(473g)を提供した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を第1の塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で処理することにより溶解細胞組成物のpHを10.62に調整した。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を95℃の温度に加熱し、溶解細胞組成物を撹拌しながら3時間にわたりその温度レベルに保持した。次に溶解細胞組成物に第2の塩基(すなわち、NaOHの25%苛性溶液)を添加してpHを8.13とした。次に溶解細胞組成物を5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、等量の脂質層および乳濁液層を得た。pHを上昇させると脂質層の収率が上がるかどうかを決定するため、分離した溶解細胞組成物にさらなる第2の塩基(すなわち、25%NaOH溶液)を添加してpHを9.02とし、その溶解細胞組成物を再び5,100rpmで5分間遠心した。これにより得られた脂質層の収率は同程度であった。分離した溶解細胞組成物に再びさらなる第2の塩基を添加してpHを10.12とし、その溶解細胞組成物を再び5,100rpmで5分間遠心した。再び、これにより得られた脂質層の収率は同程度であった。
[0216]微生物細胞(ATCC受託番号PTA−9695)を含む低温殺菌した細胞ブロス(470g)を提供した。細胞バイオマスを機械的にホモジナイズして細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を第1の塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で処理することにより溶解細胞組成物のpHを10.5に調整した。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を95℃の温度に加熱し、溶解細胞組成物を撹拌しながら3時間にわたりその温度レベルに保持した。次に溶解細胞組成物に第2の塩基(すなわち、25%NaOH溶液)を添加してpHを8.07とした。次に溶解細胞組成物を5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離すると、脂質層および乳濁液層が得られ、ここでは乳濁液層が脂質層より多かった。pHを上昇させると脂質層の収率が上がるかどうかを決定するため、分離した溶解細胞組成物にさらなる第2の塩基を添加してpHを9.11とし、その溶解細胞組成物を再び5,100rpmで5分間遠心した。これにより得られた脂質層の収率は同程度であった。分離した溶解細胞組成物に再びさらなる第2の塩基を添加してpHを10.09とし、その溶解細胞組成物を再び5,100rpmで5分間遠心した。再び、これにより得られた脂質層の収率は同程度であった。
[0217]ビオチン抑制試験発酵槽において微生物細胞(クリプテコディニウム・コーニイ(Crypthecodinium cohnii))を含む細胞ブロスを使用した。20,000kgの洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌したブロスを回収した。これは低温殺菌の開始時に抜き出した。それを約1日間保持してから、移し替えてホモジナイズした。この材料を813バール/1パスでホモジナイズし、処理タンクに集め戻した。顕微鏡で調べることにより、細胞の約80%が溶解したと推定された。
[0222]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが5.8から11.2に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に、塩(固形Na2SO4、溶解細胞組成物の5重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を90℃〜95℃の範囲の温度に加熱し、90分間にわたりその温度レベルに保持すると、溶解細胞組成物のpHが9.7に降下した。90分後、45mlの発酵ブロス当たり約2.5mlの油層が存在し、および水分損失はなかった。3時間後、pHは9.2に降下していた。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層を得た。脂質の抽出収率は81重量%であった。粗油のアニシジン価(AV)は20.1であった。細胞破壊収率は92重量%〜98重量%の範囲であった。
[0223]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが4.8から11に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を90℃〜95℃の範囲の温度に加熱し、3.5時間にわたりその温度レベルに保持すると、溶解細胞組成物のpHが8.7に降下し、および水分損失はなかった。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層を得た。3.5時間後の脂質の抽出収率は92重量%であった。
[0225]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、50%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが5.8から11.2に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に溶解細胞組成物を真空下で70℃に加熱して含水量を88.7%から85.5%に低下させた。蒸発中、pHが10.36に降下した。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層を得た。脂質の抽出収率は83.9重量%であった。粗油のアニシジン価(AV)は10.5であった。細胞破壊収率は93.17重量%であった。
[0227]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、50%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが5.6から11.1に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に溶解細胞組成物をクローズドシステムにおいて40分間、90℃に加熱した。40分後、発酵ブロス40ml当たり約1mlの油(脂質)の層が存在した。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層を得た。脂質の抽出収率は85.1重量%であった。粗油のアニシジン価(AV)は16.3であった。細胞破壊収率は97.6重量%であった。
[0228]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、50%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが4.9から11.2に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に溶解細胞組成物を室温で4時間混合した。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離すると、少量の脂質層が得られた。
[0230]微生物細胞(ATCC受託番号PTA−9695)を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、50%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが5.6から11.1に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に溶解細胞組成物を70℃〜75℃の範囲で3時間加熱した。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層を得た。脂質の抽出収率は84.4重量%であった。
[0232]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(約500g)を提供した。このブロスを、事前の細胞溶解ステップなしに、塩基(すなわち、50%NaOH溶液)で化学的に処理した。塩基の添加によりブロスのpHが7.3から11に上昇した。塩基の添加およびpHの上昇により細胞が溶解され、溶解細胞組成物が形成された。次に、塩(固形Na2SO4、溶解細胞組成物の5重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を90℃の温度に加熱し、2時間にわたりその温度レベルに保持した。90℃の温度をさらに2〜4時間維持しながら、溶解細胞組成物が入ったベッセルを開放して水を蒸発させた。次に溶液を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、脂質層を得た。脂質の抽出収率は70重量%超であった。粗油のアニシジン価(AV)は11.6であった。
[0233]微生物細胞(ATCC受託番号PTA−9695)を含む細胞ブロス(9,925kg)を提供した。細胞ブロスを水によって1:1の重量比で希釈し、20,000kgの希釈ブロスを形成した。希釈前のブロスの固形分含量は16.13重量%であり、希釈後は8.25重量%であった。希釈ブロスを混合し、スラッジ除去用遠心機により6,400rpmで遠心して、細胞外水溶性または水分散性化合物を取り除いた。遠心機からの濃縮物(10,250kg)を収集し、その固形分含量は10.5重量%であった。収集した濃縮物を62℃〜64℃に加熱して濃縮物を低温殺菌した。低温殺菌した濃縮物に酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で処理して溶解細胞組成物のpHを11に調整した。次に、塩(固形Na2SO4、溶解細胞組成物の5重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を95℃の温度に加熱し、溶解細胞組成物を撹拌しながら10時間〜12時間にわたりその温度レベルに保持した。撹拌後、溶解細胞組成物のpHは8.6となり、極めて少量の乳濁液層が存在した。撹拌タンクを60℃に放冷し、冷却する間に溶解細胞組成物のpHは9.6に上昇した。リン酸を添加することにより溶解細胞組成物のpHは8.2に降下した。リン酸の添加が脂質層と極めて少量の乳濁液層との分離を阻害することはなかった。次に溶解細胞組成物を、5,100rpm、48kg/分の送り速度で5分間、60℃〜63℃で遠心することにより溶解細胞組成物を分離すると、1.7重量%〜2.3重量%の含水率を有する脂質層が得られた。
[0234]微生物細胞(クリプテコディニウム・コーニイ(Crypthecodinium cohnii))を含む、洗浄し、濃縮し、且つ低温殺菌した細胞ブロス(500g)を提供した。ブロスを8,000〜12,000psiの圧力で(2パス)ホモジナイズすることにより、溶解細胞組成物を形成した。溶解細胞組成物を塩基(すなわち、12.5%NaOH溶液)で処理すると、溶解細胞組成物のpHは7.8〜8.2に達した。塩(固形Na2SO4、溶解細胞組成物の5重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を60℃の温度に加熱し、その温度に保持した。溶解細胞組成物のpHは、塩基(すなわち、12.5%NaOH溶液)を添加することにより、クローズドシステムにおいて水分損失はほとんど乃至まったくなしに、10〜15時間にわたり7.8〜8.2レベルに維持した。次に溶解細胞組成物を約5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物を分離し、油層を得た。これにより40mlの試料において約2mlの油層がもたらされた。油の抽出収率は73重量%であった。粗油のアニシジン価(AV)は13.5であった。細胞破壊収率は82重量%〜86重量%であった。
[0235]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む低温殺菌した細胞ブロス(1,000g)を提供した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を塩基(すなわち、12.5%NaOH溶液)で処理して溶解細胞組成物のpHを7.21から10.52に調整した。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次にこのブロスを4つの部分量に分け、各部分量を4つの異なる温度および時間で保持した:1)試験#1は90℃で22時間保持した;2)試験#2は90℃で2時間保持し、次に25℃で20時間保持した;3)試験#3は60℃で22時間保持した;および4)試験#4は25℃で22時間保持した。次に個々の試験材料を、それ以上pH調整することなく遠心した。試験#1、#2、および#3について、ブロスは約6,600rpm(4,800のg力)で5分間遠心して溶解細胞組成物を分離した。試験#4は4,800のg力では良好に分離されなかった(<20%)ため、g力を15,000に上げ、ブロスを15,000のg力で5分間スピンした。重量パーセントとしての脂質の抽出収率およびアニシジン価(AV)を以下の表に掲載する。
[0237]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む低温殺菌した細胞ブロス(1,000g)を提供した。次にこのブロスを3つの部分量に分け、以下のとおり希釈した:1)試験#1は一切希釈せず、対照部分量として供した;2)試験#2は水で25%希釈した;および3)試験#3は水で50%希釈した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加することにより細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を塩基(すなわち、12.5%NaOH溶液)で処理して溶解細胞組成物のpHを6.8から10.6に調整した。次に、溶解細胞組成物に塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を添加した。次にブロスを90℃に加熱して20時間保持した。保持時間の後、各試験材料のブロスを2つに分け、一方の半分量はそのまま遠心し、他方の半分量はそのpHを約8.5に調整してから遠心した。次に双方の部分量とも約8,545rpm(8,000のg力)で5分間遠心した。重量パーセントとしての脂質の抽出収率およびアニシジン価(AV)を以下の表に掲載する。
[0239]様々な発酵ロットから得られた細胞ブロスを、実施例2に記載される方法を用いて処理し、但し塩を添加するタイミング(例えば、ホモジナイゼーションの前および後)および塩の量は変更した。得られた分離後の脂質を分析した。この分析を表4に提供する。
[0241]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))から得られたアルカーゼ(Alcalase)酵素処理済み溶解細胞組成物の試料を使用した。この試料のpHは約5.5であった。試料を4つのより少量の試料に分割し、それらのうち3つの試料のpHを、水酸化ナトリウムを添加することによってそれぞれ約7.4、約10.5、および約12に調整した。試料を脱イオン水により1:1比で希釈した。各0.5gの希釈試料に、POBN(α−(4−ピリジル1−オキシド)−N−tert−ブチルニトロン、1.25M;50μL)をスピントラップ化学剤として添加した。Bruker BioSpin e−scan EPR(電子常磁性共鳴)分光計(システム番号SC0274)(Bruker BioSpin,Billerica,MA)で試料を計測して脂質酸化により存在するフリーラジカルの量を計測した。試料を室温(20℃)でインキュベートし、および各50μLのPOBN含有試料をpHの調整後1時間毎に4時間にわたり、以下の分光計パラメータを使用して試験した:変調周波数86Hz、変調振幅2.11ガウス、マイクロ波出力5.19mW、時定数20.48秒、掃引時間10.49秒、掃引幅100ガウス、および走査回数8。EPR分光計の測定値の結果を図5に提供する。
[0243]油糧種子はナタネ植物から抽出され、次に粉砕ミルに通されることで油糧種子の外殻が割られ、壊される。次に油糧種子は、吸引によるなど、公知の手段により脱皮され、油糧種子の外皮から種子の肉部(内部)が取り出される。次に脱皮された油糧種子を圧搾機に通すことによりホモジナイズしまたは搾り出すと、脱皮された油糧種子はケーキ状に粉砕され、それにより油糧種子の細胞が溶解される。水を添加することにより乳化した溶解細胞組成物が形成される。乳化した溶解細胞組成物はろ過され、溶解細胞組成物からあらゆる余分な皮片が取り除かれる。乳化した溶解細胞組成物は塩基(すなわち、25%NaOH溶液)で処理して溶解細胞組成物のpHが11に調整される。次に溶解細胞組成物に塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)が添加される。次に溶解細胞組成物は90℃の温度に加熱され、溶解細胞組成物を撹拌しながら6時間〜48時間にわたりそのレベルに保持される。次に溶解細胞組成物を5,100rpmで5分間遠心することにより溶解細胞組成物が分離され、脂質層および乳濁液層が得られる。
[ヘキサン抽出により得られる粗脂質の比較分析]
[0244]実施例2に記載される方法を用いるロットから得られた粗脂質を分析し、様々な仕様を決定した。実施例2で利用した同じ微生物細胞に対し典型的なヘキサン抽出法を用いて、さらなる粗脂質を得た。ヘキサン抽出法には、発酵ブロスを噴霧乾燥し、その噴霧乾燥バイオマスにヘキサンを添加して15重量%〜20重量%固形分の溶液を得ることが含まれた。次に溶液をホモジナイズして細胞を溶解し、溶解細胞組成物を形成した。溶解細胞組成物を遠心し、脂質およびヘキサンを含む層を取り出した。次に脂質からヘキサンを除去した。分析の結果を表5に提供する。
[実施例24]
[0246]実施例1および実施例3に記載される方法を用いる様々な発酵ロットから得られた粗脂質を分析し、様々な仕様を決定した。米国特許第5,928,696号明細書並びに国際公開第01/76385号パンフレットおよび国際公開第01/76715号パンフレットに記載されるとおり水溶性有機溶媒で脂質を抽出する方法であるFRIOLEX(登録商標)法(Westfalia Separator AG,独国)を用いて、さらなる粗脂質を得た。分析の結果を表6に提供する。
[0249]実施例16に記載する方法を用いて微生物細胞(ATCC受託番号PTA−9695)のブロスから得られた粗脂質を分析し、様々な仕様を決定した。微生物細胞(ATCC受託番号PTA−9695)のブロスからFRIOLEX(登録商標)法(Westfalia Separator AG,独国)を用いてさらなる粗脂質を得た。FRIOLEX(登録商標)法は、米国特許第5,928,696号明細書並びに国際公開第01/76385号パンフレットおよび国際公開第01/76715号パンフレットに記載されるとおり水溶性有機溶媒(例えば、イソプロピルアルコール)で脂質を抽出する方法である。分析の結果を表7に提供する。
[粗脂質の精製]
[0251]実施例1に概説する方法およびFRIOLEX(登録商標)法を用いて粗脂質を得た。粗脂質を、以下を逐次的に行うことによってさらに処理した:1)脱ガムおよび苛性精製;2)脱色;3)チルドろ過;および4)抗酸化剤による脱臭。粗脂質、苛性精製した脂質、脱色した脂質、および脱臭した脂質のデータを表8aおよび表8bに提供する。精製油の比較を表9に提供する。
[官能プロファイル比較]
[0253]実施例26において得られた精製油を、8〜12名の官能分析の専門家パネルが分析した。官能分析の専門家は、アロマ、芳香、および後味に基づき様々な脂質仕様を格付けし、各脂質についての「全体的なアロマ強度」を提供した。ユニバーサルスペクトルの記述的分析方法を用いて試料のアロマおよび芳香特性を評価した。この方法では、0〜15の強度スケール(0=検出なし、および15=極めて高強度)を使用して油のアロマおよび芳香属性が計測される。官能データの結果を表10に提供する。
[比較例]
[0255]有機溶媒を使用することなしに微生物から脂質を得るための抽出法が、米国特許第6,750,048号明細書に記載されている。本発明の方法により調製される粗脂質から得られる精製油と、米国特許第6,750,048号明細書に開示される抽出法により調製される粗脂質から得られる精製油との比較を表11に提供する。
[0257]単離ヤブレツボカビ(thraustochytrid)(ATCC受託番号PTA−9695)を、分類学上の分類について特徴付けた。
[0270]単離ヤブレツボカビ(thraustochytrid)(ATCC受託番号PTA−9695)は、以下に記載するとおり、様々な培養条件下で高レベルの細胞成長を生じた。典型的な培地および培養条件を表15に示す。また、高レベルの脂肪酸およびDHAが認められた(すなわち、乾燥細胞重量の50重量%超が脂肪酸であり、脂肪酸メチルエステルの50重量%超がDHAであった)。
[0274]単離ヤブレツボカビ(thraustochytrid)(ATCC受託番号PTA−9695)のバイオマス試料(試料A)から油を抽出した。このバイオマス試料は、pH7.0で20%溶存酸素を有し22.5℃で980ppm Cl−を含む炭素および窒素供給培養液で産生された。バイオマス試料Aからヘキサン抽出法により油を抽出して微生物油試料A1を得た。簡潔に言えば、乾燥バイオマスをヘキサンと共に、ステンレス鋼製の管およびステンレス鋼製のボールベアリングを使用して約2時間粉砕した。スラリーを真空ろ過し、ろ液を回収した。ロータリーエバポレータを使用してヘキサンを除去した。また、FRIOLEX(登録商標)法(GEA Westfalia Separator UK Ltd.,Milton Keynes,英国)を用いてバイオマス試料Aから油を抽出し、微生物油試料A2を得た。微生物油試料A1およびA2から低圧フラッシュクロマトグラフィーを用いて個々の脂質クラスを単離し、各クラスの重量パーセントを決定した。水素炎イオン化検出ガスクロマトグラフィー(GC−FID)を用いて各クラスの脂肪酸プロファイルを脂肪酸メチルエステル(FAME)として決定した。
[0281]実施例31に記載されるとおり、Friolex法を用いて発酵ブロスから油を抽出した後、精製、脱色、および脱臭ステップによって粗油をさらに処理して最終油を得た。この最終油を高オレイン酸ヒマワリ油で希釈し、DHA含量が約400mg/gの完成した市販品の油を得た。個々の脂質クラスを単離し、水素炎イオン化検出ガスクロマトグラフィー(GC−FID)を用いて各クラスの脂肪酸プロファイルを脂肪酸メチルエステル(FAME)として決定した。
[0288]980ppm Cl−を含む炭素および窒素供給培養液(ヤブレツボカビ(thraustochytrid)培地)において単離ヤブレツボカビ(thraustochytrid)(ATCC受託番号PTA−9695)の2日経過播種フラスコを調製した。
[微生物の単離]
[0293]米国西海岸(カリフォルニア州(California)、オレゴン州(Oregon)、およびワシントン州(Washington))およびハワイ州(Hawaii)に沿った入り江および河口域を含む潮間生息地から、干潮時に試料を採取した。水、堆積物、生きている植物材料、および死滅した植物/動物の残骸を滅菌した50ml管に入れた。水と共に各試料の部分量を、単離培地の固形寒天プレートに塗布した。単離培地は以下からなった:500mlの人工海水、500mlの蒸留水、1gのグルコース、1gのグリセロール、13gの寒天、1gのグルタミン酸塩、0.5gの酵母エキス、0.5gのカゼイン加水分解物、1mlのビタミン溶液(100mg/Lのチアミン、0.5mg/Lのビオチン、0.5mgのB12)、1mlの微量ミネラル溶液(PII金属、1リットル当たり6.0gのFeCl36H2O、6.84gのH3BO3、0.86gのMnCl24H2O、0.06gのZnCl2、0.026のCoCl26H2O、0.052gのNiSO4H2O、0.002gのCuSO45H2Oおよび0.005gのNa2MoO42H2Oを含有)、並びに各500mgのペニシリンGおよび硫酸ストレプトマイシン。寒天プレートを暗所において20〜25℃でインキュベートした。2〜4日後、寒天プレートを顕微鏡下で調べ、細胞のコロニーを滅菌したつまようじで取り、新鮮な培地プレートに再びストリークした。汚染生物が除去されるまで、細胞を新鮮な培地に繰り返しストリークした。単離した微生物のうち2つをATCC受託番号PTA−10212およびPTA−10208のもとに寄託した。
[0294]ATCC受託番号PTA−10212として寄託した単離微生物(「PTA−10212」)の培養物は、白色の、湿潤した、塗抹されたコロニーのように見え、目に見える独立した胞子嚢群はなかった。
[0304]ATCC受託番号PTA−10208として寄託された微生物(「PTA−10208」)は、米国特許出願公開第2010/0239533号明細書および国際公開第2010/107415号パンフレットに記載されるATCC受託番号PTA−9695として寄託された微生物(「PTA−9695」)のサブ単離株(培養物から単離され、新しい別個の明確に異なる培養物として維持される個々の細胞)として同定された。
[ATCC受託番号PTA−10212として寄託された単離微生物の増殖特性]
[0306]単離微生物(ATCC受託番号PTA−10212)を、以下に記載するとおり、個別の発酵ランで増殖特性について調べた。典型的な培地および培養条件を表30に示す。
[0311]単離微生物(ATCC受託番号PTA−10208)を、以下に記載するとおり、個別の発酵ランで増殖特性について調べた。典型的な培地および培養条件を表31に示す。
[微生物株ATCC PTA−10208およびPTA−10212の脂肪酸プロファイル]
[0317]4つのバイオマス試料(PTA−10208試料#1;PTA−10208試料#2;PTA−10212試料#1;およびPTA−10212試料#2)を溶媒抽出により総粗油含量について分析し、高速液体クロマトグラフィー/蒸発光散乱検出(HPLC/ELSD)により脂質クラスを決定し、HPLC/質量分析法(HPLC/MS)によりトリアシルグリセロール(TAG)を分析し、および水素炎イオン化検出ガスクロマトグラフィー(GC−FID)により脂肪酸(FA)プロファイルを決定した。各凍結乾燥バイオマスの粗脂質含量を、ヘキサンによる溶媒粉砕(solvent grinding)を用いて決定し、直接エステル交換反応により生成したFAMEの合計(mg/g)と比較し、得られた脂肪酸メチルエステル(FAME)をGC/FID分析により定量化した。抽出された粗脂質中の脂肪酸もまたエステル交換反応により定量化し、得られたFAMEのGC/FID分析を用いて定量化した。抽出された粗脂質において、ELSDを伴う順相HPLCおよび大気圧化学イオン化MS(APCI−MS)同定法を用いて全ての中性脂質(NL)および遊離脂肪酸(FFA)の重量パーセントを決定した。この方法は、ステロールエステル(SE)、TAG、遊離脂肪酸(FFA)、1,3−ジアシルグリセロール(1,3−DAG)、ステロール、1,2−ジアシルグリセロール(1,2−DAG)、およびモノアシルグリセロール(MAG)を分離し、定量化する。結果を以下の表32および表33に示す。表32および表33の脂肪酸プロファイルは、溶媒を使用して抽出した試料から得られたことが注記される。表32および表33の脂肪酸プロファイルは、本発明の方法を用いて試料を抽出した場合に実質的に同じになることが予想される。
[0322]粗油抽出−粗油は凍結乾燥バイオマスの試料から溶媒粉砕を用いて抽出した。例えば、約3グラムのバイオマスをスウェーデン管(Swedish tube)に秤量した。スウェーデン管に3個のボールベアリングおよび30mLのヘキサンを加え、それをネオプレン栓で密閉し、振盪機に2時間置いた。得られたスラリーを、ブフナー漏斗およびワットマンろ紙を使用してろ過した。ろ過された液体を回収して溶媒を真空下で除去し、残った粗脂質の量を重量測定法で決定した。
[PTA−10208試料#1]
[0329]PTA−10208試料#1についてのバイオマスおよび抽出した粗脂質の脂肪酸プロファイルを、GC/FIDを用いて決定した。バイオマス中の脂肪酸は、28.6mgのバイオマスをFAME管に直接量り取ることによりインサイチュでエステル交換し、一方、抽出した粗脂質の試料は、55.0mgの粗脂質を50mLメスフラスコに量り取り、且つ1mlを別のFAME管に移すことにより調製した。バイオマスの推定粗脂質含量は、FID検出によるGCを用いて53.2%(FAMEの合計として)と決定され、一方、乾燥バイオマスから52.0%(wt/wt)の脂質が抽出され、97.8%の総脂質回収率が得られた。粗脂質はGC/FIDを用いて91.9%脂肪酸(FAMEの合計として)と決定された。粗脂質に含まれる主要な脂肪酸は、C16:0(182.5mg/g)、C20:5 n−3(186.8mg/g)、およびC22:6 n−3(423.1mg/g)であった。
[0332]PTA−10208試料#2についてのバイオマスおよび抽出した粗脂質の脂肪酸プロファイルを、GC/FIDを用いて決定した。バイオマス中の脂肪酸は、32.0mgのバイオマスをFAME管に直接量り取ることによりインサイチュでエステル交換し、一方、抽出した粗脂質の試料は、60.1mgの粗脂質を50mLメスフラスコに量り取り、且つ1mlを別のFAME管に移すことにより調製した。バイオマスの推定粗脂質含量は、FID検出によるGCを用いて52.4%(FAMEの合計として)と決定され、一方、乾燥バイオマスから48.0%(wt/wt)の脂質が抽出され、91.7%の総脂質回収率が得られた。粗脂質はGC/FIDを用いて95.3%脂肪酸(FAMEの合計として)と決定された。粗脂質に含まれる主要な脂肪酸は、C16:0(217.5mg/g)、C20:5 n−3(169.3mg/g)、およびC22:6 n−3(444.1mg/g)であった。
[0335]ATCC受託番号PTA−10208として寄託された微生物由来の粗油の試料(試料PTA−10208#3)を、HPLC/ELSD/MSを用いて分析した。合計98.38%の脂質が回収され、ステロールエステル(SE)画分が0.32%を占め、TAG画分が96.13%を占め、1,3−ジアシルグリセロール(DAG)画分が0.22%を占め、1,2−DAG画分が0.78%を占め、およびステロール画分が0.93%を占めた。
[0336]PTA−10212試料#1についてのバイオマスおよび抽出した粗脂質の脂肪酸プロファイルを、GC/FIDを用いて決定した。バイオマス中の脂肪酸は、27.0mgのバイオマスをFAME管に直接量り取ることによりインサイチュでエステル交換し、一方、抽出した粗脂質の試料は、52.5mgの粗脂質を50mLメスフラスコに量り取り、且つ1mlを別のFAME管に移すことにより調製した。バイオマスの推定粗脂質含量は、FID検出によるGCを用いて38.3%(FAMEの合計として)と決定され、一方、乾燥バイオマスから36.3%(wt/wt)の脂質が抽出され、94.6%の総脂質回収率が得られた。粗脂質はGC/FIDを用いて83.2%脂肪酸(FAMEの合計として)と決定された。粗脂質に含まれる主要な脂肪酸は、C16:0(328.5mg/g)、C20:5 n−3(90.08mg/g)、およびC22:6 n−3(289.3mg/g)であった。
[0339]バイオマスおよび抽出した粗脂質PTA−10212試料#2の脂肪酸プロファイルを、GC/FIDを用いて決定した。バイオマス中の脂肪酸は、29.5mgのバイオマスをFAME管に直接量り取ることによりインサイチュでエステル交換し、一方、抽出した粗脂質の試料は、56.5mgの粗脂質を50mLメスフラスコに量り取り、且つ1mlを別のFAME管に移すことにより調製した。バイオマスの推定粗脂質含量は、FID検出によるGCを用いて40.0%(FAMEの合計として)と決定され、一方、乾燥バイオマスから41.3%(wt/wt)の脂質が抽出され、106.1%の総脂質回収率が得られた。粗脂質はGC/FIDを用いて82.8%脂肪酸(FAMEの合計として)と決定された。粗脂質に含まれる主要な脂肪酸は、C16:0(327.3mg/g)、C20:5 n−3(92.5mg/g)、およびC22:6 n−3(277.6mg/g)であった。
[0342]PTA−10212試料#3についてのバイオマスの脂質含量は、FAME合計として34%であると推定され、溶媒抽出後に得られた粗油の量は37重量%であり、バイオマス中に存在する脂質の109%の回収率が得られた。フラッシュクロマトグラフィーを用いた分画後、粗油の約46%がTAGとして単離され、28%がDAGとして単離された。粗油は309mg/gのDHAおよび264mg/gのEPAを含有した。単離TAGは、341mg/gのDHAおよび274mg/gのEPAを含有した。単離DAG画分は、262mg/gのDHAおよび237mg/gのEPAを含有した。バイオマス、抽出した粗油、および単離した画分の全脂肪酸プロファイルを、それぞれmg/gおよび%FAMEとして計算した以下の表36および表37に示す。
[0343]PTA−10212試料#4は、FAME合計として決定される約23%の脂質を含有し、そのうち107%がヘキサン抽出を用いて回収された。フラッシュクロマトグラフィーを用いた分画後、粗油の約42%がTAGとして単離され、18%がDAGとして単離された。粗油は、275mg/gのDHAおよび209mg/gのEPAを含有した。単離TAGは296mg/gのDHAおよび205mg/gのEPAを含有した。単離DAG画分は245mg/gのDHAおよび219mg/gのEPAを含有した。バイオマス、抽出した粗油、および単離した画分の全脂肪酸プロファイルを以下の表38(mg/g)および表39(%FAME)に示す。
[0344]PTA−10212のバイオマスからFRIOLEX(登録商標)法(GEA Westfalia Separator UK Ltd.,Milton Keynes,英国)を用いて粗油の試料を抽出し、微生物油PTA−10212試料#5を得た。PTA−10212試料#5から低圧フラッシュクロマトグラフィーを用いて個々の脂質クラスを単離し、各クラスの重量パーセントを決定した。各クラスの脂肪酸プロファイルを、GC−FIDを用いて決定した。
[0346]粗油を、精製、脱色および脱臭によってさらに処理して精製油を得た。この精製油を高オレイン酸ヒマワリ油で希釈して、DHA含量が約400mg/gの最終油を得た。個々の脂質クラスを単離し、各クラスの脂肪酸プロファイルをGC−FIDを用いてFAMEとして決定した。
[0347]単離したTAG画分(表44〜表45)および単離したステロール/DAG画分(表46〜表47)に関連するプロファイルを含めた、PTA−10208最終油#1〜5についての脂肪酸プロファイルを、表42〜表43に要約する。
[0349]DHAはPTA−10212最終油中に41.63%で366.9mg/g存在し、一方、EPAは16.52%で存在した。個々の脂肪酸プロファイルを決定した。それを表50に要約する。
[0350]ATCC受託番号PTA−10208および10212として寄託された単離微生物の2日経過した播種フラスコを、表30および表31による培地中の炭素および窒素供給培養物として調製した。
[0355]微生物細胞(シゾキトリウム属(Schizochytrium))を含む2つの細胞ブロス(約13.3kg)を20リットル発酵槽において60℃に加熱した。発酵槽は直径15cmの6ブレードラシュトン(Rushton)インペラを2つ有した。上のインペラは12リットル標線に位置し、下のインペラは上のインペラの10cm下方に位置した。第1の細胞ブロスは307センチメートル/秒で連続撹拌した。第2の細胞ブロスは464センチメートル/秒で連続撹拌した。酵素(すなわち、アルカラーゼ(Alcalase)2.4L FG 0.5%)を細胞バイオマスに添加して細胞を溶解し、乳化した溶解細胞組成物を形成した。この乳化した溶解細胞組成物を、最初に、溶解細胞組成物のpHが10.4から10.6になるまで塩基(NaOH、50%w/w溶液の250kg)で処理した。次に、塩(固形NaCl、溶解細胞組成物の2重量%の量)を溶解細胞組成物に添加した。次に溶解細胞組成物を90℃の温度に加熱し、20時間にわたりその温度レベルに保持した。各細胞ブロスの試料を取り、pHを8.0に調整して50ml試験管に入れた。試験管を遠心し、油抽出データを計測した。油抽出データを表53に提供する。
[0357]本明細書に記載される様々な実施形態または選択肢は全て、いかなる変形例にも組み合わせることができる。本発明は、そのいくつかの実施形態を参照して詳細に図示および記載されているが、当業者は、それらが単に例として、且つ限定としてではなく提示されているもので、本発明の趣旨および範囲から逸脱することなくそこに形態および詳細の様々な変更を加え得ることを理解するであろう。従って、本発明の広さおよび範囲は上述の例示的実施形態のいずれによっても限定されてはならず、以下の特許請求の範囲およびその均等物に従ってのみ定義されるべきである。
Claims (59)
- 微生物細胞組成物から脂質を得る方法であって、
前記細胞組成物のpHを8以上に上昇させるステップと、
前記細胞組成物から脂質を分離するステップと、
を含み、前記脂質が5重量%未満の有機溶媒を含有する、方法。 - 前記pHを上昇させるステップにより前記細胞組成物が溶解する、請求項1に記載の方法。
- 前記pHを上昇させるステップにより前記細胞組成物が解乳化する、請求項1に記載の方法。
- 前記細胞組成物に塩を添加するステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップをさらに含む、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記塩を添加するステップが前記pHを上昇させるステップの後に行われる、請求項4に記載の方法。
- 前記細胞組成物を加熱するステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップをさらに含む、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記加熱するステップが、前記pHを上昇させるステップの後に行われる、請求項6に記載の方法。
- 前記細胞組成物のpHを2度目に上昇させるステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップをさらに含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pHを2度目に上昇させるステップが、前記塩を添加するステップまたは前記加熱するステップの後に行われる、請求項8に記載の方法。
- 細胞から脂質を得る方法であって、
細胞を溶解するステップであって、それにより溶解細胞組成物を形成するステップと、
前記溶解細胞組成物のpHを8以上に上昇させるステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップと、
前記溶解細胞組成物に塩を添加するステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップと、
前記解乳化細胞組成物から脂質を分離するステップと、
を含み、前記脂質が5重量%未満の有機溶媒を含有する、方法。 - 細胞組成物から脂質を得る方法であって、
前記細胞組成物のpHを8以上に上昇させるステップであって、それにより前記細胞組成物を溶解し、且つ前記細胞組成物を解乳化するステップと、
前記細胞組成物に塩を添加するステップと、
前記解乳化細胞組成物から脂質を分離するステップと、
を含み、前記脂質が5重量%未満の有機溶媒を含有する、方法。 - 前記溶解細胞組成物を加熱するステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップをさらに含む、請求項10または11に記載の方法。
- 前記加熱するステップが、前記塩を添加するステップの後に行われる、請求項12に記載の方法。
- 前記溶解細胞組成物を撹拌するステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップをさらに含む、請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記溶解細胞組成物のpHを上昇させるステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップをさらに含む、請求項10〜14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記溶解細胞組成物のpHを上昇させるステップが、前記塩を添加するステップまたは前記加熱するステップの後に行われる、請求項15に記載の方法。
- 前記pHを上昇させるステップが、塩基の添加を含む、請求項1〜16のいずれか一項に記載の方法。
- 前記塩基が1〜12のpKbを有する、請求項1〜17のいずれか一項に記載の方法。
- かき混ぜるか、混ぜ合わせるか、ブレンドするか、振盪するか、振動させるか、またはそれらの組み合わせにより、前記溶解細胞組成物を撹拌するステップを含む、請求項14〜18のいずれか一項に記載の方法。
- 前記溶解するステップが、機械的処理、物理的処理、化学的処理、酵素的処理、またはそれらの組み合わせを含む、請求項1〜19のいずれか一項に記載の方法。
- 前記機械的処理がホモジナイゼーションである、請求項20に記載の方法。
- 前記塩が前記溶解細胞組成物の0.1重量%〜20重量%の量で添加される、請求項4〜21のいずれか一項に記載の方法。
- 前記塩が、アルカリ金属塩、アルカリ土類金属塩、硫酸塩、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項4〜22のいずれか一項に記載の方法。
- 前記分離するステップが遠心を含む、請求項1〜23のいずれか一項に記載の方法。
- 少なくとも50重量%のトリグリセリドを含む脂質を提供する、請求項1〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 26以下のアニシジン価を有する脂質を提供する、請求項1〜25のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細胞が微生物細胞である、請求項10〜26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記微生物細胞を含む発酵ブロスを濃縮するステップをさらに含む、請求項1〜9および27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細胞が油糧種子である、請求項10〜26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記油糧種子が、ヒマワリ種子、キャノーラ種子、菜種、亜麻仁、ヒマシ油種子、コエンドロ種子、キンセンカ種子、およびその遺伝子修飾変異体からなる群から選択される、請求項29に記載の方法。
- 前記細胞または細胞組成物を洗浄するステップをさらに含む、請求項1〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細胞または細胞組成物を低温殺菌するステップをさらに含む、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記溶解細胞組成物を濃縮するステップをさらに含む、請求項1〜32のいずれか一項に記載の方法。
- 前記脂質を精製するステップをさらに含む、請求項1〜33のいずれか一項に記載の方法。
- 前記精製するステップが、精製、脱ガム、酸処理、アルカリ処理、冷却、加熱、脱色、脱臭、脱酸、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項34に記載の方法。
- 前記脂質を回収するステップをさらに含み、前記回収するステップが、撹拌なしに前記脂質をポンピングすることを含む、請求項1〜35のいずれか一項に記載の方法。
- 細胞から脂質を得る方法であって、
細胞を溶解するステップであって、それにより溶解細胞組成物を形成するステップと、
前記細胞組成物を撹拌するステップであって、それにより前記細胞組成物を解乳化するステップと、
前記解乳化細胞組成物から脂質を分離するステップと、
を含み、前記脂質が5重量%未満の有機溶媒を含有する、方法。 - 前記撹拌するステップが、350センチメートル毎秒〜900センチメートル毎秒の先端速度を有するインペラで前記細胞組成物を撹拌することを含む、請求項37に記載の方法。
- 請求項1〜38のいずれか一項に記載の方法により得られる脂質。
- 1つ以上の多価不飽和脂肪酸を含む、請求項39に記載の脂質。
- 少なくとも35重量%のドコサヘキサエン酸を含む、請求項39または40に記載の脂質。
- 3以下の全体的なアロマ強度を有する、請求項39〜41のいずれか一項に記載の脂質。
- 2以下の全体的な芳香強度を有する、請求項39〜41のいずれか一項に記載の脂質。
- 26以下のアニシジン価を有する、請求項39〜43のいずれか一項に記載の脂質。
- 100ppm以下のリン含量を有する、請求項39〜44のいずれか一項に記載の脂質。
- 5以下の過酸化物価を有する、請求項39〜45のいずれか一項に記載の脂質。
- 少なくとも20重量%のエイコサペンタエン酸と、各5重量%未満のアラキドン酸、ドコサペンタエン酸n−6、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、エイコセン酸、エルカ酸、およびステアリドン酸とを含む、請求項39に記載の脂質。
- 少なくとも10重量%のトリアシルグリセロール画分を含み、前記トリアシルグリセロール画分中の脂肪酸の少なくとも12重量%がエイコサペンタエン酸であり、前記トリアシルグリセロール画分中の脂肪酸の少なくとも25重量%がドコサヘキサエン酸であり、および前記トリアシルグリセロール画分中の脂肪酸の5重量%未満がアラキドン酸である、請求項39に記載の脂質。
- 5以下の過酸化物価を有する、請求項47または48に記載の脂質。
- 粗油である、請求項39〜49のいずれか一項に記載の脂質。
- 26以下のアニシジン価、5以下の過酸化物価、100ppm以下のリン含量、および5重量%未満の有機溶媒を有する粗微生物脂質。
- 少なくとも70重量%のトリグリセリド画分を含む抽出微生物脂質であって、前記トリグリセリド画分のドコサヘキサエン酸含量が少なくとも50重量%であり、前記トリグリセリド画分のドコサペンタエン酸n−6含量が少なくとも0.5重量%〜6重量%であり、および前記油が26以下のアニシジン価を有する、抽出微生物脂質。
- 少なくとも70重量%のトリグリセリド画分を含む抽出微生物脂質であって、前記トリグリセリド画分のドコサヘキサエン酸含量が少なくとも40重量%であり、前記トリグリセリド画分のドコサペンタエン酸n−6含量が少なくとも0.5重量%〜6重量%であり、ドコサヘキサエン酸のドコサペンタエン酸n−6との比が6:1より大きく、および前記油が26以下のアニシジン価を有する、抽出微生物脂質。
- 少なくとも約70重量%のトリグリセリド画分を含む抽出微生物脂質であって、前記トリグリセリド画分のドコサヘキサエン酸含量が少なくとも60重量%であり、および前記油が26以下のアニシジン価を有する、抽出微生物脂質。
- 前記油が5以下の過酸化物価を有する、請求項52〜54のいずれか一項に記載の抽出微生物脂質。
- 前記油が100ppm以下のリン含量を有する、請求項52〜55のいずれか一項に記載の抽出微生物脂質。
- 前記脂質が粗油である、請求項52〜56のいずれか一項に記載の抽出微生物脂質。
- 脂質を得る方法であって、請求項50、51、または57のいずれか一項に記載の粗脂質を精製するステップを含む方法。
- 前記精製するステップが、苛性精製、脱ガム、酸処理、アルカリ処理、脱色、脱臭、脱酸、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項58に記載の方法。
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