CN103858770A - 一种花叶玉簪快速繁殖的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种花叶玉簪快速繁殖的方法,主要通过外植体的选择及消毒、继代增殖培养、生根培养以及炼苗移栽的步骤,特别是在继代过程中,提高了光强,培养基中减少了无机盐含量,增加了磷酸二氢钾和水解乳蛋白,同时采用了转换继代培养基的技术手段,达到了增殖速度快、遗传性状稳定、繁殖系数高的优良效果。
Description
技术领域
本发明涉及玉簪的繁殖方法,特别是一种花叶玉簪的快速繁殖方法。
背景技术
花叶玉簪(Hosta plantagineu)为百合科玉簪属植物,多年生宿根花卉,是著名观叶植物玉簪的变种,对喜光花卉有极强的互补性,是园林绿化的优良品种。花叶玉簪的引进与推广,极大地提高了其观赏效果,丰富了园林绿化的景观色彩。该品种株矮喜荫,复色叶面,带褶皱,金边银心相互交织,绚丽多彩的叶片呈现出魔幻般的花团锦簇。在城市高大楼群的背侧、立交桥下、庭院大树遮荫处、树篱边等喜阳花卉生长不利的地方均可种植。装盆后,可登堂入室,客厅、书房、大厅、会议室、窗台上均可用它来点缀、装饰,花叶玉簪的花还可散发出淡淡幽香,高雅不凡。
花叶玉簪常规的繁殖方法主要是通过分株,增殖率低,仅为3~5倍左右,短期内要形成大规模的生产困难较大,如果引进种苗,价格又很高。采用组织培养的繁殖方法,可以很好地解决上述难题,但通过花蕾诱导愈伤组织后形成的芽有变异现象发生,有些失去了原来的花叶特征,现有技术中有以下对花叶玉簪组织培养的研究:“花叶玉簪工厂化组培育苗技术研究”,吴国智等,《天津农业科学》,第15卷第5期;“花叶玉簪的组织培养与快速繁殖技术研究”,郝砚英等,《天津农业科学》,第12卷第2期等。上述现有技术虽然公开了不同阶段的培养基配方,然而其并没有公开具体操作条件,并且发明人在按照上述配方进行操作,用于工厂化育苗进行大量繁殖时,特别是在多次继代增殖过程中,发现随着继代次数的增加,变异率迅速提高,严重影响了工厂化生产,为此,发明人进行了有针对性的改进。
发明内容
本发明主要解决的技术问题是提供一种花叶玉簪快速繁殖的方法。
为解决上述技术问题,本发明采用的一个技术方案是:
一种花叶玉簪快速繁殖的方法,包括:
(1)外植体的选择及消毒:于3-4月选晴朗天气直接在大田中取块茎上的萌发芽做为外植体,或者在其它月份提前30天左右在地里挖出玉簪洗净后种植在以干净的珍珠岩为基质的盆中,后放在干净温室中只浇清水;用小刀削下块茎上的芽子,后浸于盛有饱和肥皂水的烧杯中5-10分钟,再用自来水冲洗到基本无泡沫,然后再重复上述浸泡冲洗的步骤一次,浸泡时间缩短至2-4分钟,自来水冲洗时间不易过长以免造成外植体二次污染,转入超净工作台,在超净台中先用70%的酒精浸泡1分钟,无菌水冲洗2次,用含有两滴吐温80的5%次氯酸钠溶液消毒10-15分钟,无菌水冲洗5次;再加入含有两滴吐温80的0.1%的升汞消毒10-15分钟,用无菌水冲洗6次;
(2)接种培养:取将步骤(1)所述的外植体,首先剥去芽的苞叶,尽量多剥几层,切取带有潜伏芽的外植体接种到接种培养基中,每瓶只接一块,培养基的PH6.2,培养温度为23±1℃,12h/d的光周期,光照强度600Lx左右,培养3-7天开始生长,所述接种培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖30g/L;
(3)继代培养:将不污染的带有新营养芽的外植体转入第一继代培养基中使芽增殖,所述第一继代培养基是1/2MS+6-BA0.5-2mg/L+NAA0.1-0.5mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,继代5次左右,转入第二继代培养基或不添加任何激素的空白培养基中继代一次,所述第二继代培养基为1/2MS+IBA0.8mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,所述空白培养基为1/2MS+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,然后再转入第一继代培养基中继续增殖,根据需苗量重复上述步骤;继代培养过程中,培养基的PH6.2,培养温度为23±1℃,14-18h/d的光周期,光照强度2000Lx左右;
(4)生根培养:将继代培养得到的小芽直接转入生根培养基中,较大的苗从中间竖着劈开一分为二再转入生根培养基中,培养基的PH6.2,培养温度为23±1℃,12h/d的光周期,光照强度600Lx左右,所述生根培养基为1/2MS+NAA0.3mg\L+蔗糖20g/L,20天左右生根,当根生长到3cm左右出瓶,根生长过长或生根时间过长都会影响移栽成活;
(5)炼苗移栽:先将培养瓶移至温室,自然条件下炼苗4d,然后解开封口膜,炼苗6d,炼苗完成后取出小苗洗净根部附着的培养基,移栽到经消毒的基质中,温度控制在24-26℃,前7d湿度控制在70%左右,以后逐渐降低湿度,直至将移栽苗置于自然条件下,炼苗移栽期间适当遮光,使光照强度为自然光的50%。
步骤(4)中所述小芽直径小于0.5mm;所述较大的芽直径0.5mm以上。
步骤(5)所述的基质为蛭石。
本发明的有益效果是:
(1)本申请以芽作为外植体,发明人经过大量长期实践操作,发现只有芽作为外植体才能保持花叶的特性;在除春季以外的其它月份,由于玉簪的芽都埋在土中,极易污染,如何防止外植体污染是以后繁殖的关键步骤,因此,发明人利用干净的珍珠岩作为基质培养花叶玉簪的母株,接种时每瓶接种一块,大大降低了外植体污染的概率,因为,发明人在具体操作期间,发现若每瓶接种3-4块外植体,只要有一块外植体污染,即便其它外植体没有污染,整瓶都不能用于后续的继代繁殖;
(2)发明人发现,在工厂化育苗过程中,继代超过5代左右,开始出现变异,发明人经研究发现,上述原因是激素累积导致,因此,在继代过程中,采用了转换培养基的方法,这也是本发明的重点之一;
(3)花叶玉簪在自然条件下,光照强、光周期长会抑制玉簪的生长,出现焦叶、休眠等现象,因此,玉簪喜欢弱光的条件,而在组培过程中,发明人发现弱光条件反而会导致组培苗徒长,而影响芽分化;另外,继代培养基中,发明人采用了1/2MS大量元素,以代替现有技术中广泛采用的MS,因为发明人经过大量的试验发现,MS大量元素同样容易导致组培苗徒长,而影响芽分化,因此,发明人创造性的以1/2MS代替MS,同时在培养基中增加了能够促进芽分化的磷酸二氢钾和水解乳蛋白,因此,在继代过程中,提高了光强,培养基中减少了无机盐含量,增加了磷酸二氢钾和水解乳蛋白,从而抑制了组培苗徒长,促进了芽分化,取得了意料不到的效果;
(4)生根时,将较大的苗竖着一分为二,每半都能形成完整的植株,因此,在最后阶段,使组培苗数量得到了成倍的增长,达到了大量繁殖的目的。
本发明培养过程速度快,再生频率较高,变异率较低,周期相对较短,能较好地保持花叶玉簪的遗传稳定性。
具体实施方式
下面对本发明的较佳实施例进行详细阐述,以使本发明的优点和特征能更易于被本领域技术人员理解,从而对本发明的保护范围做出更为清楚明确的界定。
实施例一:
花叶玉簪快速繁殖的方法,包括:
(1)外植体的选择及消毒:于3月选晴朗天气直接在大田中取块茎上的萌发芽做为外植体,用小刀削下块茎上的芽子,后浸于盛有饱和肥皂水的烧杯中5分钟,再用自来水冲洗到基本无泡沫,然后再重复上述浸泡冲洗的步骤一次,浸泡时间缩短至2分钟,自来水冲洗时间不易过长以免造成外植体二次污染,转入超净工作台,在超净台中先用70%的酒精浸泡1分钟,无菌水中洗2次,用含有两滴吐温80的5%次氯酸钠溶液消毒10分钟,无菌水中洗5次;再用含有两滴吐温80的0.1%的升汞消毒10分钟,用无菌水冲洗6次;
(2)接种培养:取将步骤(1)所述的外植体,首先剥去芽的苞叶,尽量多剥几层,切取带有潜伏芽的外植体接种到接种培养基中,每瓶只接一块,培养基的PH6.2,培养温度为22℃,12h/d的光周期,光照强度1500Lx左右,培养5天开始生长,所述接种培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖30g/L;
(3)继代培养:将不污染的带有新营养芽的外植体转入第一继代培养基中使芽增殖,所述第一继代培养基是1/2MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,继代5次,转入第二继代培养基或不添加任何激素的空白培养基中继代一次,所述第二继代培养基为1/2MS+IBA0.8mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,所述空白培养基为1/2MS+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,然后再转入第一继代培养基中继续增殖5代;继代培养过程中,培养基的PH6.2,培养温度为22℃,14h/d的光周期,光照强度2000Lx左右;
(4)生根培养:将继代培养得到的直径小于0.5cm的小芽转入生根培养基中,将直径0.5cm以上较大的芽竖向劈开一分为二再转入生根培养基中,培养基的PH6.2,培养温度为22℃,12h/d的光周期,光照强度1500Lx左右,所述生根培养基为1/2MS+NAA0.3mg\L+蔗糖20g/L,20天左右生根,当根生长到3cm左右出瓶,根生长过长或生根时间过长都会影响移栽成活;
(5)炼苗移栽:先将培养瓶移至温室,自然条件下炼苗4d,然后解开封口膜,炼苗6d,炼苗完成后取出小苗洗净根部附着的培养基,移栽到经消毒的蛭石中,温度控制在24-26℃,前7d湿度控制在70%左右,以后逐渐降低湿度,直至将移栽苗置于自然条件下,炼苗移栽期间适当遮光,使光照强度为自然光的50%。
实施例二:
花叶玉簪快速繁殖的方法,包括:
(1)外植体的选择及消毒:于4月选晴朗天气直接在大田中取块茎上的萌发芽做为外植体,用小刀削下块茎上的芽子,后浸于盛有饱和肥皂水的烧杯中7分钟,再用自来水冲洗到基本无泡沫,然后再重复上述浸泡冲洗的步骤一次,浸泡时间缩短至3分钟,自来水冲洗时间不易过长以免造成外植体二次污染,转入超净工作台,在超净台中先用70%的酒精浸泡1分钟,无菌水冲洗2次,用含有两滴吐温80的5%次氯酸钠溶液消毒12分钟,无菌水冲洗5次;再加入含有两滴吐温80的0.1%的升汞消毒12分钟,用无菌水冲洗6次;
(2)接种培养:取将步骤(1)所述的外植体,首先剥去芽的苞叶,尽量多剥几层,切取带有潜伏芽的外植体接种到接种培养基中,每瓶只接一块,培养基的PH6.2,培养温度为23℃,12h/d的光周期,光照强度1500Lx左右,培养3天开始生长,所述接种培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖30g/L;
(3)继代培养:将不污染的带有新营养芽的外植体转入第一继代培养基中使芽增殖,所述第一继代培养基是1/2MS+6-BA1.2mg/L+NAA0.3mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,继代5次,转入第二继代培养基或不添加任何激素的空白培养基中继代一次,所述第二继代培养基为1/2MS+IBA0.8mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,所述空白培养基为1/2MS+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,然后再转入第一继代培养基中继续增殖3代;继代培养过程中,培养基的PH6.2,培养温度为23℃,18h/d的光周期,光照强度2000Lx左右;
(4)生根培养:将继代培养得到的直径小于0.5cm的小芽转入生根培养基中,将直径0.5cm以上较大的芽竖向劈开一分为二再转入生根培养基中,培养基的PH6.2,培养温度为23℃,12h/d的光周期,光照强度1500Lx左右,所述生根培养基为1/2MS+NAA0.3mg\L+蔗糖20g/L,20天左右生根,当根生长到3cm左右出瓶,根生长过长或生根时间过长都会影响移栽成活;
(5)炼苗移栽:先将培养瓶移至温室,自然条件下炼苗4d,然后解开封口膜,炼苗6d,炼苗完成后取出小苗洗净根部附着的培养基,移栽到经消毒的蛭石中,温度控制在24-26℃,前7d湿度控制在70%左右,以后逐渐降低湿度,直至将移栽苗置于自然条件下,炼苗移栽期间适当遮光,使光照强度为自然光的50%。
实施例三:
一种花叶玉簪快速繁殖的方法,
(1)外植体的选择及消毒:若在8月初开始取外植体,则在7月初在地里挖出玉簪洗净后种植在以干净的珍珠岩为基质的盆中,后放在干净温室中只浇清水;用小刀削下块茎上的芽子,后浸于盛有饱和肥皂水的烧杯中10分钟,再用自来水中洗到基本无泡沫,然后再重复上述浸泡中洗的步骤一次,浸泡时间缩短至4分钟,自来水冲洗时间不易过长以免造成外植体二次污染,转入超净工作台,在超净台中先用70%的酒精浸泡1分钟,无菌水中洗2次,用含有两滴吐温80的5%次氯酸钠溶液消毒15分钟,无菌水冲洗5次;再加入含有两滴吐温80的0.1%的升汞消毒15分钟,用无菌水中洗6次;
(2)接种培养:取将步骤(1)所述的外植体,首先剥去芽的苞叶,尽量多剥几层,切取带有潜伏芽的外植体接种到接种培养基中,每瓶只接一块,培养基的PH6.2,培养温度为24℃,12h/d的光周期,光照强度1500Lx左右,培养7天开始生长,所述接种培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖30g/L;
(3)继代培养:将不污染的带有新营养芽的外植体转入第一继代培养基中使芽增殖,所述第一继代培养基是1/2MS+6-BA2mg/L+NAA0.5mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,继代5次,转入第二继代培养基或不添加任何激素的空白培养基中继代1次,所述第二继代培养基为1/2MS+IBA0.8mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,所述空白培养基为1/2MS+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,然后再转入第一继代培养基中继续增殖5代,后转入第二继代培养基中继代1代,然后再转入第一继代培养基中继续增殖2代;继代培养过程中,培养基的PH6.2,培养温度为24℃,16h/d的光周期,光照强度2000Lx左右;
(4)生根培养:将继代培养得到的直径小于0.5cm的小芽转入生根培养基中,将直径0.5cm以上较大的芽竖向劈开一分为二再转入生根培养基中,培养基的PH6.2,培养温度为24℃,12h/d的光周期,光照强度1500Lx左右,所述生根培养基为1/2MS+NAA0.3mg\L+蔗糖20g/L,20天左右生根,当根生长到3cm左右出瓶,根生长过长或生根时间过长都会影响移栽成活;
(5)炼苗移栽:先将培养瓶移至温室,自然条件下炼苗4d,然后解开封口膜,炼苗6d,炼苗完成后取出小苗洗净根部附着的培养基,移栽到经消毒的蛭石中,温度控制在24-26℃,前7d湿度控制在70%左右,以后逐渐降低湿度,直至将移栽苗置于自然条件下,炼苗移栽期间适当遮光,使光照强度为自然光的50%。
对比例:
对比例的条件、步骤和实施例三相同,并且都是继代14代,唯一的区别是不转换培养基,只是在第一继代培养基中继代增殖。
上述三个实施例中,花叶玉簪的变异率分别为1.5%,1.2%,1.3%,增值倍数平均达到了4倍左右,生根率达到了96%,最终的成活率达到了100%,并且质量得到了较好的保证,而对比例中,由于在继代培养中没有转换培养基,继代到第8代时,变异率达到了22%,继代到第11代时,变异率达到了48%,继代到第14代时,变异率达到了76%左右,严重影响了花叶玉簪的工厂化育苗。
除上述实施例外,本发明还可以有其他实施方式。凡采用等同替换或等效变换形成的技术方案,均落在本发明要求的保护范围。
Claims (3)
1.一种花叶玉簪快速繁殖的方法,其特征在于,包括:
(1)外植体的选择及消毒:于3-4月选晴朗天气直接在大田中取块茎上的萌发芽做为外植体,或者在其它月份提前30天左右在地里挖出玉簪洗净后种植在以干净的珍珠岩为基质的盆中,后放在干净温室中只浇清水;用小刀削下块茎上的芽子,后浸于盛有饱和肥皂水的烧杯中5-10分钟,再用自来水冲洗到基本无泡沫,然后再重复上述浸泡冲洗的步骤一次,浸泡时间缩短至2-4分钟,自来水冲洗时间不易过长以免造成外植体二次污染,转入超净工作台,在超净台中先用70%的酒精浸泡1分钟,无菌水冲洗2次,用含有两滴吐温80的5%次氯酸钠溶液消毒10-15分钟,无菌水冲洗5次;再用含有两滴吐温80的0.1%的升汞消毒10-15分钟,用无菌水冲洗6次;
(2)接种培养:取将步骤(1)所述的外植体,首先剥去芽的苞叶,尽量多剥几层,切取带有潜伏芽的外植体接种到接种培养基中,每瓶只接一块,培养基的PH6.2,培养温度为23±1℃,12h/d的光周期,光照强度600Lx左右,培养3-7天开始生长,所述接种培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖30g/L;
(3)继代培养:将不污染的带有新营养芽的外植体转入第一继代培养基中使芽增殖,所述第一继代培养基是1/2MS+6-BA0.5-2mg/L+NAA0.1-0.5mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,继代5次左右,转入第二继代培养基或不添加任何激素的空白培养基中继代一次,所述第二继代培养基为1/2MS+IBA0.8mg/L+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,所述空白培养基为1/2MS+磷酸二氢钾150mg/L+水解乳蛋白500mg/L+蔗糖30g/L,然后再转入第一继代培养基中继续增殖,根据需苗量重复上述步骤;继代培养过程中,培养基的PH6.2,培养温度为23±1℃,14-18h/d的光周期,光照强度1000Lx左右;
(4)生根培养:将继代培养得到的小芽直接转入生根培养基中,较大的苗从中间竖着劈开一分为二再转入生根培养基中,培养基的PH6.2,培养温度为23±1℃,12h/d的光周期,光照强度600Lx左右,所述生根培养基为1/2MS+NAA0.3mg\L+蔗糖20g/L,20天左右生根,当根生长到3cm左右出瓶,根生长过长或生根时间过长都会影响移栽成活;
(5)炼苗移栽:先将培养瓶移至温室,自然条件下炼苗4d,然后解开封口膜,炼苗6d,炼苗完成后取出小苗洗净根部附着的培养基,移栽到经消毒的基质中,温度控制在24-26℃,前7d湿度控制在70%左右,以后逐渐降低湿度,直至将移栽苗置于自然条件下,炼苗移栽期间适当遮光,使光照强度为自然光的50%。
2.根据权利要求1所述的花叶玉簪快速繁殖的方法,其特征在于,步骤(4)中所述小芽直径小于0.5mm;所述较大的芽直径0.5mm以上。
3.根据权利要求1或2所述的花叶玉簪快速繁殖的方法,其特征在于,步骤(5)所述的基质为蛭石。
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