En Zimas
En Zimas
En Zimas
Fue la primera enzima en ser identificada y aislada por Anselme Payen en 1833, quien en
un principio la bautizó con el nombre de "diastasa".
Es una enzima hidrolasa que tiene la función de catalizar la reacción de hidrólisis de los
enlaces 1-4 del componente α-amilasa al digerir el glucógeno y el almidón para
formar azúcares simples. Se produce principalmente en las glándulas salivales (sobre todo
en las glándulas parótidas) y en el páncreas. Tiene actividad enzimática a un pH de 7.
Cuando una de estas glándulas se inflama, como en la pancreatitis, aumenta la producción
de amilasa y aparece elevado su nivel en sangre (amilasemia). El pH óptimo de la amilasa
salival es de 6.9.
CLASIFICACIÓN:
α-amilasa
Tambien llamada: 1,4-α-D-glucano-glucanohidrolasa; glucogenasa.
Las amilasas son enzimas dependientes de calcio, completamente afuncionales en ausencia
de iones de calcio. Actúan a lo largo de cualquier punto de la cadena de los carbohidratos,
descomponiéndolos en dextrina desde la amilopectina. Dado que puede actuar en cualquier
punto de la cadena es más rápida que la β-amilasa. En los animales es una enzima digestiva
mayor y su pH óptimo está entre 6,7 y 7,2.
β-amilasa
Tambien llamada:1,4-α-D-glucano-maltohidrolasa; amilasa sacarogénica
Otra forma de amilasa, la β-amilasa es también sintetizada por bacterias, hongos y
plantas. Actúa desde el extremo no reductor de la cadena, catalizando la hidrólisis
del segundo enlace α-1,4, rompiendo dos unidades de glucosa (maltosa) a la vez.
La amilasa presente en el grano de cereal es la responsable de la producción
de malta. Muchos microorganismos también producen amilasa para degradar el
almidón extracelular. Los tejidos animales no contienen β-amilasa, aunque puede
estar presente en microorganismos saprófitos del tracto gastrointestinal. Tiene un
pH óptimo de 4 - 5.
γ-amilasa
Tambien llamada: Glucano 1,4-α-glucosidasa; aminoglucosidasa; Exo-1,4-α-
glucosidasa; glucoamilasa; α-glucosidasa lisosómica; 1,4-α-D-glucano
glucohidrolasa.
Además de romper el último enlace α(1-4)glicosídico en el extremo no reductor de
la cadena de amilosa y amilopectina, liberando glucosa, la γ-amilasa puede romper
los enlaces glicosídicos α(1-6). A diferencia de las otras amilasas esta forma es más
eficaz en medios ácidos y su pH óptimo es de 3.
USOS:
Sirve en el diagnóstico de enfermedades al determinar sus niveles en plasma para
saber si se puede producir una pancreatitis. Sus niveles pueden estar elevados por
un daño a las células productoras de la enzima en el páncreas, o bien, por una
deficiencia renal o también por paperas.
Las enzimas amilasas son empleadas en la fabricación de pan para romper glúcidos
complejos como el almidón, presente en la harina, en azúcares simples. Las
técnicas modernas de elaboración de masas incluyen la presencia de amilasas,
aportadas por la harina de malta e incluso amilasas fúngicas, para facilitar y acelerar
estos procesos.
Algunas amilasas bacterianas se emplean como detergentes para disolver
almidones en determinados procesos industriales. Aportan en la eliminación del
polvo y tierra de la ropa que quedan atrapados en el tejido de las telas.
En la maduración de frutas la amilasa es sintetizada, degradando el almidón de las
frutas en azúcar, y volviéndolas más dulces
CITRATO SINTASA
Es una enzima que existe en casi todas las células y cataliza la primera reacción del ciclo
de Krebs. En las células eucariotas el citrato sintasa se localiza en la matriz mitocondrial,
pero es condificada por ADN nuclear en vez de por ADN mitocondrial. Es sintetizada por
ribosomas citoplasmáticos y entonces transportada a la matriz mitocondrial.
El citrato sintasa se utiliza comúnmente como marcador enzimático cuantitativo para la
presencia de mitocondrias intactas.
El citrato sintasa cataliza la reacción de condensación del acetato, proveniente del acetil-
CoA, y del oxaloacetato para formar citrato. El oxaloacetato es regenerado después de
completar el ciclo de Krebs.
Estructura:
El citrato sintasa se presenta como un homodímero. Cada subunidad consiste de unas 20
hélices alfa. Estas hélices alfa comprenden aproximadamente el 75% de la estructura
terciaria del citrato sintasa, mientras que los residuos restantes componen principalmente
extensiones irregulares de la estructura, a excepción de una lámina beta de unos 13
aminoácidos. Entre las subunidades existe un único hueco que contiene el sitio activo. Se
encuentran también dos sitios de unión: uno reservado para el citrato u oxaloacetato, y otro
reservado para la coenzima A. El sitio activo contiene tres residuos claves: His-274, His-
320 y Asp-375, que son altamente selectivos en sus interacciones con los sustratos.
Mecanismo:
El citrato sintasa tiene tres aminoácidos clave en su sitio activo que catalizan la conversión
del acetil-CoA y del oxaloacetato a citrato en una reacción de condensación aldólica.
La conversión comienza con el oxígeno cargado negativamente situado en el grupo
R del Asp-375 deprotonando el carbono alfa del acetil-CoA. Esto empuja al electrón
para formar un doble enlace con el carbono carbonilo, que fuerza al C=O a desplazar
un protón para el oxígeno desde uno de los nitrógenos del grupo R de la His-274.
Esto neutraliza el grupo R (formando un par solitario en el nitrógeno) y completa la
formación de un intermedio enol (CH2COH-SCoA).
En este momento, el par solitario de la His-274, formado en la última etapa ataca al
protón que fue añadido al oxígeno. El oxígeno, entonces, reforma el enlace carbonilo
que libera el C=C e inicia el ataque nucleofílico al carbono carbonilo del
oxaloacetato. Esto libera la mitad del enlace carbonilo para deprotonar uno de los
grupos amino de la His-320, que neutraliza uno de los nitrógenos de su grupo R.
Esta adición nucleofílica resulta en la formación de citroil-CoA.
En este momento, una molécula de agua es deprotonada por el grupo amino de la
His-320 y se inicia la hidrólisis. Uno de los pares solitarios del oxígeno ataca
nucleófilicamente el carbono carbonilo del citroil-CoA. Esto forma un intermedio
tetraédrico y resulta en la eyección de -SCoA. El -SCoA es protonado para formar
HSCoA. Finalmente, el hidroxilo añadido al carbonilo es deprotonado y se forma
citrato.
Inhibición:
El ATP es inhibidor alostérico de la Citrato Sintasa. La actividad de la enzima también
responde a los niveles de Oxalacetato y Acetil-CoA. Con frecuencia el Oxalacetato es el
reactivo limitante, porque participa en la Gluconeogénesis. Cuando falta Oxalacetato, se
acumula la Acetil-CoA que es activador de la enzima Piruvato Carboxilasa, la cual convierte
el Piruvato en Oxalacetato. El exceso de Acetil-CoA también inhibe a la enzima Piruvato
Deshidrogenasa que convierte el Piruvato en Acetil-CoA.
LIPASAS
Las lipasas (glicerol-éster hidrolasas; EC 3.1.1.3) son enzimas que catalizan la hidrólisis de
los enlaces éster presentes en los acilgliceroles in vivo. Además, pueden catalizar la
hidrólisis o síntesis de un grupo amplio de ésteres carboxílicos Estas enzimas están
ampliamente distribuidas en la naturaleza, y se encuentran en microorganismos, plantas y
animales. Una característica peculiar de las lipasas es que son enzimas solubles en agua
que actúan sobre sustratos insolubles y agregados, por lo que operan unidas a interfaces
lípido-agua. Bajo estas condiciones, se produce un incremento de la actividad catalítica,
respecto a las soluciones con concentraciones por debajo de la concentración micelar
crítica, fenómeno conocido como activación interfacial.
Funciones:
EN HUMANOS:
Se encuentra en la leche materna y, según estudios bioquímicos, es idéntica a la
enzima colesterol esterasa (o lipasa pancreática no específica), por lo que se
supone que el origen es pancreático y llega a las glándulas mamarias a través de
la circulación sanguínea. La función principal de esta lipasa gástrica es ayudar a la
absorción de grasas.
EN MICROORGANISMOS:
En microorganismos, las lipasas se encuentran presentes para la digestión de
grasas, la reconstitución del organismo y el metabolismo lipoproteico. Las células
vegetales las producen para fabricar reservas de energía.
Aplicaciones:
Entre las aplicaciones más exitosas de las enzimas están aquellas que se consiguen
con sus formas inmovilizadas. Esto se debe a las ventajas que confiere la
inmovilización, entre las que se encuentran: la posibilidad de recuperar la enzima
del medio de reacción, la obtención de un producto no contaminado con la enzima,
y el incremento de la estabilidad operacional del biocatalizador.
Las lipasas han suscitado un interés creciente para la industria debido a su
versatilidad, estereoselectividad, estabilidad frente a solventes orgánicos y
capacidad de sintetizar compuestos orgánicos en mezclas de reacción con baja
actividad de agua.
Bajo determinadas condiciones, las lipasas pueden catalizar reacciones químicas
distintas de la hidrólisis, como esterificación, interesterificación, alcoholisis,
acidolisis y aminolisis.
Estas hidrolasas se han empleado ampliamente como aditivos para detergentes, en
las industrias alimentaria, papelera, química y energética; así como para la
producción de cosméticos, en tratamientos ambientales y en el diseño de
biosensores.
Es notable el impacto que han tenido las lipasas en la producción de fármacos más
selectivos y efectivos, con efectos secundarios menores, y en la obtención de
pesticidas de menor toxicidad, todo ello mediante la síntesis de compuestos
ópticamente puros y la resolución de mezclas racémicas.
ACONITASA
Estructura:
Pertenece al grupo de las Liasas, porque se considera que la isomerización reversible, se
lleva a cabo a través de reacciones de deshidratación (eliminación) e hidratación (adición)
sucesivas, a través del cis-Aconitato, que sería un intermediario unido a la enzima. Sin
embargo, evidencias espectroscópicas sugieren que el intermediario de la reacción es un
ión carbonio, capaz convertirse en Isocitrato, Citrato o cis-Aconitato. A pesar de ello, en
muchos textos se incluye el cis-Aconitato como intermediario.
Mecanismo:
En equilibrio, la enzima forma una mezcla de 58% Isocitrato, 39% Citrato y 3% cis-Aconitato.
Contiene Hierro no hemo y Azufre ácido lábil en una agrupación denominada centro
hierroazufre.
Es una enzima notable por la especificidad de la reacción que cataliza, convirtiendo el
Citrato no quiral, únicamente en uno de los cuatro isómeros posibles quirales del Isocitrato,
el 2R,3SIsocitrato o treo-D-Isocitrato, al transponer el Grupo OH del Carbono 3 del Citrato
hacia el Carbono 2, proveniente del Oxalacetato, y jamás al que proviene de la Acetil-CoA.
Los grupos encargados de eliminar y añadir el H2O en forma de H+ y OH- se encuentran
colocados en el sitio activo en las posiciones adecuadas para asegurar la
estereoespecificidad.
El complejo de Hierro y Azufre de la Aconitasa tiene una función diferente al de otras
proteínas con Hierro y Azufre. En la mayoría de las proteínas, el complejo de Hierro y Azufre
participa en reacciones de óxido reducción. En la Aconitasa, el complejo tiene la forma de
un cubo, con átomos de Hierro y Azufre alternados en los vértices. El Hierro en uno de los
vértices se coordina con los átomos de Oxígeno del carboxilo y el hidroxilo del carbono 3
del Citrato. La reacción tiene un Go ' positivo, pero en las condiciones intracelulares, el
consumo rápido del Isocitrato, mantiene el G casi en cero. Hay una isoenzima que se
encuentra fuera de la mitocondria
Inhibición:
Es inhibida competitivamente por Fluoroacetato, cuando se convierte en Fluorocitrato.
También es inhibida por el trans-Aconitato.
LACASA
En 1883 Hikorokuro Yoshida describió la lacasa cuando la extrajo del árbol de laca
japonés. Él observó que la laca extraída de ese árbol se endurecía al contacto con el
aire. Posteriormente en 1894 Gabriel Bertrand logró aislarla y purificarla, para dos años
después descubrir junto a Laborde, que la lacasa también estaba presente
en hongos. Desde entonces esta enzima se ha encontrado en especies tales como hojas
de té verde (1966), maple (1995), tabaco (1996) o más recientemente lolium (2002) cuya
lacasa ha sido caracterizada y clonada. Hasta ahora se han logrado aislar, purificar y
caracterizar poco más de 100 lacasas de hongos.
Las lacasas (EC 1.10.3.2) son enzimas pertenecientes al grupo de
las oxidasas de cobre azul. Catalizan la oxidación de un substrato orgánico o inorgánico y
la reducción de oxígeno molecular a agua, por medio de un mecanismo de transferencia de
un electrón. Básicamente cualquier substrato con características similares al p-difenol
puede ser oxidado por la lacasa. Esta enzima también puede oxidar substratos como
complejos metálicos orgánicos o inorgánicos, ferrocianidas, anilinas, benzotioles, y otros
compuestos biológicos con potenciales redox menores a 1 V.
La lacasa se encuentra en una variedad de plantas, hongos, e
inclusive insectos y bacterias.
Con ella se está desarrollado una primera aplicación: una biopila (o pila biológica)
que consta de un cátodo formado por la enzima lacasa mutante y un ánodo
formado por otra enzima. En esta batería, la enzima lacasa es capaz de tomar los
electrones procedentes del ánodo, donde otra enzima oxida la glucosa sanguínea.
Así se produce una corriente eléctrica continua que podría alimentar pequeños
dispositivos incluyendo biosensores. La biopila se ha implementado en un
nanodispositivo implantable para la detección de diferentes metabolitos en sangre,
como glucosa y oxígeno, y se ha desarrollado en el marco del proyecto 3D-
nanodevice del VII Programa Marco de la Unión Europea.
La enzima mutante también se puede utilizar en biosensores para detectar
oxígeno en fluidos fisiológicos humanos, a medida que lo consume, apunta
Miguel Alcalde.
Funciones:
En algunos hongos y plantas son parte importante de la degradación de lignina y en
la eliminación de fenoles tóxicos derivados de este proceso. Sin embargo, este
comportamiento no ha podido ser generalizado pues existen especies que llevan a
cabo estos procesos sin la presencia de lacasa.
En Aspergillus nidulans, Daldinia concentrica y Lentinus edodes, se sabe que estas
enzimas están asociadas a la síntesis de pigmentos.
Schizophyllum commune, donde su lacasa característica se encarga de la formación
de esporas.
Botrytis cinerea, esta especie de hongo posee lacasas extracelulares que están
relacionadas con procesos patogénicos.
Estructura:
La molécula de la lacasa es una holoenzima, una glicoproteína dimérica o tetramérica.
Usualmente presenta cuatro átomos de cobre localizados en tres sitios redox: tipo I, tipo II
y un par en un tipo III. La masa molecular de un monómero de lacasa varía en un rango de
50 a 100 kDa. Es una estructura estable debido a su alto nivel de glicosilación.
Su estructura se describe comúnmente como tres dominios del tipo cupridoxina,
fuertemente asociados en una estructura globular donde los sitios tipo II y III forman un
centro trinuclear
Los tres tipos de cobre se pueden distinguir mediante espectroscopía UV-
Visible y resonancia paramagnética electrónica (RPE):
Cobre tipo I:
El cobre tipo I es el responsable del color azulado de la proteína. Presenta
absorbancia a 610 nm y RPE detectable. La eficiencia catalítica de la lacasa
depende del potencial redox del cobre tipo I, a mayor potencial mayor eficiencia.
El potencial redox de las lacasas de hongos es mucho mayor (~0.3 V) que el de
lacasas de plantas y otras oxidasas azules. Por ejemplo, la R. vernicifera tiene
un potencial redoxde 430 mV mientras que el Polyporus versicolor de 780
mV. Este átomo muestra coordinación trigonal con dos residuos de histidina y uno
de cisteína como ligantes. Las lacasas de hongos presentan un cuarto ligante axial,
comúnmente leucina o fenilalanina. Sin embargo, puede ser capturado por agua y
diversos complejos. La geometría de coordinación y la naturaleza de los ligantes de
este cobredeterminan el potencial redox.
Catálisis:
El cobre tipo I es el sitio activo donde se lleva a cabo la oxidación del substrato (fenol) y el
cluster trinuclear formado por los cobres tipo II y III es donde ocurre
la reducción de oxígeno molecular a agua.
Se pueden definir tres pasos en el proceso de catálisis de la lacasa:
Estructura:
Esta enzima pertenece al grupo de las Liasas y cataliza la hidratación esteroespecífica del
Fumarato para formar el l-Malato.
Los estudios han revelado que el sitio activo está compuesto de residuos de aminoácidos
de tres de las cuatro subunidades de la enzima tetramérica (clase II). Dos residuos
catalíticos ácido-base potenciales son la His-188 y la Lys-324. Fumarasa es también
estereoespecífica, solo se forma el isómero L del malato
Mecanismo:
La fumarasa en el ciclo de Krebs es facilitar la producción de energía en la forma de NADH.
En el citosol la enzima metaboliza fumarato, que es un producto secundario del ciclo de la
urea y del catabolismo de los aminoácidos. No requiere cofactores y tiene una isoenzima
que se encuentra en el citoplasma.
Consiste en la adición anti de los equivalentes de una molécula de agua, para generar l-
Malato a partir del Fumarato (trans) y d-Malato a partir del Maleato (cis). La forma activa de
la enzima es un homotetrámero. El sitio activo está formado con restos de 3 unidades, e
incluye ambos extremos de las cadenas. La enzima no presente una regulación importante
pero es inhibida competitivamente por meso-Tartrato y tiene un Go ' casi igual a cero.
Deficiencia
La deficiencia de fumarasa es el trastorno del ciclo del ácido cítrico que con mayor
frecuencia se presenta en los recién nacidos y puede asociarse con dilatación ventricular
congénita y quistes periventriculares. Estos neonatos tienen aumento de lactato y piruvato,
y una proporción lactato/piruvato mayor de 35 años.
La deficiencia de fumarasa se acompaña de una elevación característica en orina de los
ácidos orgánicos fumárico y succínico.
ASPARTATO AMINOTRANSFERASA
La aspartato aminotransferasa (EC 2.6.1.1), antes conocida como transaminasa
glutámico-oxalacética (GOT) y también llamada aspartato transaminasa (AST), es
una enzima aminotransferasa que se encuentra en varios tejidos del organismo de los
mamíferos, especialmente en el corazón, el hígado y el tejido muscular. Se encuentra en
cantidades elevadas en el suero en casos de infarto agudo de miocardio,
de hepatopatía aguda y de miopatías, por el empleo de determinados fármacos y en casos
de cualquier enfermedad o trastorno en donde las células resulten dañadas gravemente.
Reacciones catalizadas
Esta enzima cataliza la reacción de transferencia de un grupo amino desde el L-
aspartato al 2-oxoglutarato, formándose L-glutamato y oxaloacetato. Esta enzima utiliza
el piridoxal 5'-fosfato como cofactor.
Clasificación
Las aminotransferasas comparten ciertos aspectos mecanísticos con otras enzimas
dependientes del grupo piridoxal-fosfato, como el enlace covalenteentre el grupo piridoxal-
fosfato y un residuo lisina de la enzima. Bajo el concepto de similitud de secuencias, las
aminotransferasas pueden agruparse en subfamilias. La aspartato aminotransferasa
pertenece a la llamada clase-I de transaminasas, junto con las siguientes:
Tirosina transaminasa
Aminoácido aromático transaminasa
1-aminociclopropano-1-carboxilato sintasa
Proteína cobC de la Pseudomonas denitrificans, que participa en
la biosíntesis de la cobalamina
Proteína YJL060c de las levaduras
Significado clínico
La concentración de la AST se eleva en cualquier situación que exista daño hepático y daño
pulmonar. También se encuentra presente en los hematíes, en el miocardio, en el músculo
esquelético, en el riñón y en el cerebro, por lo cual, ante la presencia de daño en cualquiera
de estos sitios, también elevará su concentración sérica. La AST se definió como marcador
bioquímico para el diagnóstico de infarto agudo de miocardio en 1954. Sin embargo, su uso
como marcador ha quedado obsoleto debido a la mayor sensibilidad y precocidad de la
elevación de la concentración de las troponinas cardíacas. La AST forma parte del perfil
hepático que se realiza en la clínica con el fin de evaluar la función del hígado.
Rango de referencia:
Mujer: 6 - 34 IU/L
Hombre: 8 - 40 IU/L
ARGINASA
La Arginasa (arginina amidinasa, canavanasa, L-arginasa, arginina
transamidinasa EC 3.5.3.1) es una enzima hidrolasa con un peso molecular de 105.0 kDa
y que contiene manganeso dentro de su estructura. Se encuentra presente en varios
tejidos y participa en el ciclo de la urea Krebs-Henseleit. Cataliza la reacción:
Estructura
La arginasa pertenece a la familia de enzimas ureohidrolasas. Se trata de un
homotrímero. Cada subunidad contiene un sitio activo, y los dos iones manganeso están
unidos a oxígenos y separados por aproximadamente 3.3 A.
Función:
La enzima requiere dos moléculas de manganeso para mantener una función apropiada.
Estos iones Mn2+ se coordinan con agua, orientando y estabilizando la molécula, y
dejando agua para actuar como nucleófilo y atacar L-arginina, hidrolizándola a ornitinina y
urea. Cataliza el quinto y último paso en el ciclo de la urea, una serie de reacciones
bioquímicas en los mamíferos durante el que el cuerpo coloca de amoníaco nocivo.
Específicamente, la arginasa convierte L-arginina a L-ornitina y urea.
La arginasa de mamífero es activa como trímero, pero algunas arginasas de bacterias son
hexaméricas. En la mayoría de los mamíferos esta enzima existe en dos formas:
La arginasa I trabaja en el ciclo de la urea, y está localizada principalmente en
el citoplasma del hígado
la arginasa II se encuentra implicada en la regulación de concentración de arginina
y ornitina en la célula, está localizada en la mitocondria de varios tejidos del
cuerpo con mayor abundancia en riñones y próstata, además de encuentra en
ausencia de otras enzimas del ciclo de la urea.
En la actualidad, estudios realizados en macrófagos y en células mieloides en general,
han permitido considerar la arginasa como una enzima que interviene en multitud de
funciones celulares muy diversas, que van desde:
Existen dos tipos de macrófagos, los M1, que promueven la actividad inflamatoria;
y los M2, que favorecen la reparación de tejidos y disminuyen la inflamación. La
opcionalidad de estas funcionalidades en macrófagos depende del estímulo de
ambos tipos de citoquinas (TH1 y TH2), que como hemos visto inducen ambos
enzimas, arginasa e Inos
Mecanismo
El sitio activo mantiene a la L-arginina en posición por medio un puente de hidrógeno
entre el grupo cloruro de guanidina con Glu227. Este enlace oriente a la L-arginina para
un ataque nucleofílico por el hidróxido asociado al metal. Esto resulta en un intermediario
tetraédrico. Los iones Mn2+ actúan para estabilizar tanto el grupo hidroxilo como el
intermediario tetraédrico, así como desarrollar un solo par de electrones sp3 en el grupo
NH2 conforme el intermediario tetraédrico se forma.
Dicho sitio activo es sumamente específico, por lo que modificar la estructura del sustrato
o la estereoquímica disminuye severamente la actividad cinética de la enzima. Esta
especificidad ocurre debido al alto número de puentes de hidrógeno entre el sustrato y la
enzima; los puentes de hidrógeno facilitados por agua saturan tanto las cuatro posiciones
aceptoras en el grupo alfa carboxilato, así como las tres posiciones en el grupo alfa
amino. La estructura cristalográfica de este complejo con la enzima revela que el metal se
desplaza puenteando el ion hidróxido y el cluster de manganeso binuclear.
Caracterización
La caracterización de esta enzima puede ser por medio de resonancia
electroparamagnérica (EPR por sus siglas en inglés). Esta técnica revela que la arginasa
totalmente activada por manganeso contiene un centro de dos moléculas de Mn2+ con
espines acoplados separadas por 3.6A los cuales se ubican en la parte inferior de la
hendidura del sitio activo. Es el centro metálico el encargado de llevar a cabo la catálisis
de arginina.
Patología
Una deficiencia en arginasa se refiere típicamente a un decremento en la actividad de la
arginasa L en las células hepáticas, a esto se le conoce comúnmente como
hiperargininemia o argininemia. Dicho desorden es hereditario y se considera uno de los
más raros dentro de la ureogenesis. Una deficiencia de arginasa, a diferencia de otros
desórdenes en el ciclo de la urea, no previene la ureogénesis. Entre los síntomas de este
desorden se incluyen discapacidad neurológica, demencia, retraso en el crecimiento,
e hiperamonemia; aunque algunos de los síntomas se pueden controlar con restricciones
alimenticias y desarrollos farmacéuticos, no existe una cura completa y efectiva.
ISOCITRATO DESHIDROGENASA
Estructura:
Es una Oxido-reductasa de especificidad absoluta, que cataliza la reacción de
descarboxilación oxidativa del 2R,3S-Isocitrato producido por la Aconitasa.
El anillo de Nicotinamida del NAD+ (o NADP+ en algunos organismos) oxida al grupo -OH
del Isocitrato convirtiéndolo en Oxalosuccinato, intermediario unido a la enzima.
Mecanismo:
La reacción es estimulada por el mecanismo simple de disponibilidad de sustrato (isocitrato,
NAD (P)+, Mg+2 / Mn+2).
Inhibición:
Inhibida por producto (2-oxoglutarato y NAD (P) H) e inhibida por ATP por inhibición
competitiva feedback.
TELOMERASA
El ciclo catalítico de la enzima telomerasa determina la capacidad humana para sintetizar
"repeticiones" de ADN (segmentos de ADN específicos de seis nucleótidos) en los extremos
del cromosoma, y así proporcionar la inmortalidad en las células. Comprender el
mecanismo subyacente de la acción de la telomerasa ofrece nuevas vías hacia terapias
antienvejecimiento eficaces. Ilustración que representa la enzima telomerasa Esta figura
representa la enzima telomerasa y los telómeros relativos a un cromosoma.
Funciones:
Las células humanas típicas son mortales y no pueden renovarse para siempre. Como
demostró Leonard Hayflick hace medio siglo, las células humanas tienen una esperanza de
vida replicativa limitada, y las células más viejas alcanzan este límite antes que las células
más jóvenes. Este "límite de Hayflick" de la vida celular está directamente relacionado con
la cantidad de repeticiones de ADN únicas que se encuentran en los extremos de los
cromosomas portadores de material genético. Estas repeticiones de ADN son parte de las
estructuras protectoras de cobertura, denominadas "telómeros", que protegen los extremos
de los cromosomas de reordenamientos de ADN no deseados e injustificados que
desestabilizan el genoma.Cada vez que la célula se divide, el ADN telomérico se contrae y
finalmente no logrará asegurar los extremos del cromosoma. Esta reducción continua de la
longitud de los telómeros funciona como un "reloj molecular" que cuenta hasta el final del
crecimiento celular. La capacidad disminuida para que las células crezcan está fuertemente
asociada con el proceso de envejecimiento, y la reducida población de células contribuye
directamente a la debilidad, la enfermedad y la falla orgánica.
Contrarrestar el proceso de contracción de los telómeros es la enzima, la telomerasa, que
posee la clave única para retrasar o incluso revertir el proceso de envejecimiento celular.
Genética y producción
En humanos, la enteropeptidasa se encuentra codificada por el gen PRSS7 (también
conocido como ENTK) presente en el cromosoma 21q21. Algunas mutaciones sin sentido
y mutaciones en el marco de lectura en este gen conducen a un raro desorden recesivo
caracterizado por un severo defecto en el crecimiento de aquellos infantes afectados,
debido a la deficiencia de enteropeptidasa.
Aplicaciones
La especificidad de la enteropeptidasa la convierte en una herramienta ideal para
aplicaciones bioquímicas; una proteína de fusión que contiene una marca de afinidad C-
terminal tal como una secuencia poli-histidina, unida por esta secuencia puede ser cortada
por la enteropeptidasa para obtener la proteína diana por subsecuente purificación
proteica.9 Por el contrario, la secuencia N-terminal de las proteasas que requieren ser
clivadas previo a su activación, pueden ser mutadas para permitir su activación por la
enteropeptidasa.
ALCOHOL DESHIDROGENASA
La alcohol deshidrogenasa (ADH) (EC 1.1.1.1) es una enzima descubierta a mediados de
los años 1960 en la mosca Drosophila melanogaster y es un dímero con un peso
molecular de 80 kDa. Las alcohol deshidrogenasas son un grupo de siete enzimas que
están frecuentemente presentes en muchos organismos y facilitan la interconversión entre
alcoholes y aldehídos o cetonas con la reducción de NAD+ a NADH. La reacción
catalizada es:
Mecanismo
La sintetasa primero se une a ATP y al correspondiente aminoácido o su precursor para
formar un aminoacil-adenilato, liberando una molécula de pirofosfato inorgánico (PPi). El
complejo adenilato-aaRS luego se une la molécula apropiada de ARNt, y el aminoácido se
transfiere desde el complejo aminoacil-AMP a un grupo hidroxilo (ya sea 2' o 3') del último
nucleótido (A76, en el extremo 3') del ARNt. Algunas sintetasas también pueden mediar
una reacción de corrección de lectura para garantizar una alta fidelidad en la carga del
ARNt: si el ARNt se ha unido con un aminoácido incorrecto, la sintetasa puede hidrolizar
la unión aminoacil-ARNt.
Reacción:
Reacción:
Clases
Hay dos clases de aminoacil-ARNt sintetasa:
Clase I:
Esta posee dos motivos con secuencias muy conservadas. Puede ser una
proteína monomérica o dimérica (posee una o dos subunidades respectivamente).
Cataliza la aminoacilación en el grupo 2'-OH de un nucleótido de adenosina del
ARNt.
Clase II:
Esta posee tres motivos con secuencias altamente conservadas. Usualmente es
dimérica o tetramérica (dos o cuatro unidades respectivamente). Cataliza la
aminoacilación en el grupo 3'-OH de la misma adenosina. Como excepción,
aunque la fenilalanil-ARNt sintetasa pertenece a la clase II, produce
aminoacilación en el grupo 2'-OH.
Aunque el aminoacilo se una inicialmente a la posición 2' del nucleótido del ARNt,
finalmente migra a la posición 3' a través de un proceso de transesterificación.
Estructuras
Ambas clases de aminoacil-ARNt sintetasas son proteínas multidominio. Típicamente, una
aaRS consiste en un dominio catalítico (donde ocurren las dos reacciones antes
descritas), un dominio de unión al anticodón (que interactúa principalmente con la región
del anticodón del ARNt y asegura la unión del ARNt correcto a cada aminoácido). Además
algunas aaRS poseen sitios adicionales de unión al ARNt y dominios de edición que
hidrolizan las moléculas aminoacil-ARNt incorrectamente emparejadas.
Se ha encontrado que los sitios catalíticos de una determinada clase de aaRS son
homólogos unos de otros, mientras que no hay similitud entre los de las clases I y II. Las
aaRS de clase I poseen un plegamiento Rossmann y poseen la arquitectura de cadenas
antiparalelas beta, mientras que las aaRS clase II poseen un plegamiento único formado
por cadenas beta antiparalelas.
Los dominios en hélice alfa de unión al anticodón de las sintetasas de arginil, glicil y
cisteinil-ARNt se denominan dominos DARL debido a una secuencia de aminoácidos
característica, muy conservada evolutivamente (D-A-R-L).
Evolución
La mayoría de las aminoacil-ARNt sintetasas de una determinada especificidad son
evolutivamente más cercanas entre sí que a las aaRS de otra especificidad. Sin embargo,
las asparraginil-ARNt sintetasas y glutaminil-ARNt sintetasas se encuentran dentro del
grupo de las aspartil-ARNt sintetasas y glutamil-ARNt sintetasas, respectivamente. La
mayoría de las aaRS de una especificidad dada también pertenecen a una sola clase. Sin
embargo, hay dos versiones diferentes de las lisil-ARNt sintetasas, una perteneciente a la
clase I y la otra perteneciente a la clase II.
Además, las filogenias moleculares de las aaRS a menudo no son compatibles con las
filogenias aceptadas para los organismos, por ejemplo violan el patrón de llamada
filogenética canónica demostrado por la mayoría de otras enzimas en los tres dominios de
la vida: Archaea, Bacteria y Eukarya. Por otra parte, las filogenias inferidas para aaRS de
diferentes aminoácidos a menudo no están de acuerdo unas con otras. Estos son dos
claros indicios de que se ha producido una transferencia horizontal en varias ocasiones
durante la historia evolutiva de las aminoacil-ARNt sintetasas (Carl R. Woese, Gary J.
Olsen, Michael Ibba, and Dieter Söll. Microbiology and Molecular Biology Reviews, March
2000, p. 202-236, Vol. 64, No. 1: Aminoacyl-tRNA Synthetases, the Genetic Code, and the
Evolutionary Process).
Expandiendo el código genético por medio de aminoacil-ARNt sintetasas mutantes
En algunas de las aminoacil ARNt sintetasas, la cavidad en la que se une el aminoácido
puede mutarse y modificarse para aceptar aminoácidos artificiales, no naturales,
sintetizados en laboratorio, con el fin de unirlos a determinados ARNt específicos. Esto
supone una expansión del código genético, extendiéndolo más allá de los veinte
aminoácidos universales presentes en la naturaleza para incluir también un aminoácido
artificial. El aminoácido artificial se encuentra entonces codificado por un codón que de
otra forma sería no codificante, como por ejemplo el codón de terminación ambar. Estos
organismos que expresan la sintetasa mutante pueden entonces programarse
genéticamente para incorporal el aminoácido artificial en una posición deseada de una
proteína de interés, permitiendo a los bioquímicos o biólogos moleculares sondear o
modificar la función de la proteína. Por ejemplo, se puede partir de un gen que codifica
una proteína que une una determinada secuencia de ADN y, dirigiendo un aminoácido
artificial con una cadena lateral reactiva al sitio de unión, crear una nueva proteína que
corte al ADN en esa secuencia diana, en lugar de unirse a ella.
Otros propósitos útiles de la incorporación de aminoácidos sintéticos son: fotoreactividad,
quelación de metales, quelación de xenón, entrecruzamiento, cambios de color,
resonancia de espín, fluorescencia, biotinilación, y aminoácidos con actividad redox.
NUCLEASA
Concepto
Las nucleasas son un grupo de enzimas que escinde los ácidos nucleicos. Las nucleasas,
que pertenecen a la clase de las enzimas llamadas hidrolasas, son generalmente
específicas en acción, las ribonucleasas actúan únicamente sobre los ácidos ribonucleicos
(ARN) y las desoxirribonucleasas que actúan solo sobre los ácidos desoxirribonucleicos
(ADN). Algunas enzimas que tienen una acción general (como las fosfoesterasas, que
hidrolizan los ésteres del ácido fosfórico) pueden llamarse nucleasas porque los ácidos
nucleicos son susceptibles a su acción. Las nucleasas se encuentran tanto en animales
como en plantas.
Tipos
Las enzimas de restricción son nucleasas que dividen solo aquellas moléculas de ADN en
las que reconocen subunidades particulares. Algunos dividen la molécula de ADN objetivo
en sitios aleatorios (Tipo I), pero otros dividen la molécula solo en el sitio de reconocimiento
(Tipo II) o a una distancia fija del sitio de reconocimiento (Tipo III). Las enzimas de
restricción tipo II y III son herramientas poderosas en la elucidación de la secuencia de
bases en moléculas de ADN. Desempeñan un papel fundamental en el campo de la
tecnología del ADN recombinante o la ingeniería genética.
Estructura
La estructura primaria de la nucleasa es, en general, poco conservada y mínimamente
conservada en sitios activos, cuyas superficies comprenden principalmente residuos de
aminoácidos ácidos y básicos. Las nucleasas se pueden clasificar en familias plegables.
Funciones
Reparación del ADN
Dado que todas las células dependen del ADN como medio de información genética,
el control de la calidad genética es una función esencial de todos los organismos.
La replicación del ADN es un proceso propenso a errores, y las moléculas de ADN
en sí mismas son vulnerables a la modificación por muchos factores estresantes
metabólicos y ambientales. Ejemplos ubicuos incluyen especies reactivas de
oxígeno, cerca del ultravioleta y radiación ionizante. Muchas nucleasas participan
en la reparación del ADN reconociendo sitios de daño y escindiéndolos del ADN
circundante. Estas enzimas funcionan independientemente o en complejos. La
mayoría de las nucleasas implicadas en la reparación del ADN no son específicas
de la secuencia. Reconocen los sitios de daño a través de la deformación de la
estructura secundaria del ADN bicatenario (ADNds).
Revisión de replicación
Durante la replicación del ADN, las ADN polimerasas alargan nuevas cadenas de
ADN contra cadenas molde complementarias. La mayoría de las ADN polimerasas
comprenden dos dominios enzimáticos diferentes: una polimerasa y una
exonucleasa de corrección de pruebas. La polimerasa alarga la nueva cadena en la
dirección 5 '→ 3'. La exonucleasa elimina nucleótidos erróneos de la misma cadena
en la dirección 3 '→ 5'. Esta actividad de exonucleasa es esencial para la capacidad
de una ADN polimerasa de corregir. Las deleciones que inactivan o eliminan estas
nucleasas aumentan las tasas de mutación y mortalidad en los microbios afectados
y el cáncer en ratones.
Horquilla de replicación detenida
Muchas formas de daño en el ADN detienen la progresión de la horquilla de
replicación, lo que hace que las ADN polimerasas y la maquinaria asociada
abandonen la horquilla. Luego debe ser procesado por proteínas específicas de la
horquilla. El más notable es MUS81. Las eliminaciones causan sensibilidad a los
rayos UV o a la metilación en la levadura, además de los defectos meióticos.
Reparación de desajuste
La reparación del desajuste de ADN en cualquier organismo dado se efectúa
mediante un conjunto de endonucleasas específicas de desapareamiento. En
procariotas, este papel se llena principalmente con MutSLH y proteínas asociadas
a reparación de parches muy cortos (reparación de VSP).
Regulación
La actividad de la enzima se regula mediante la fosforilación de la cadena alfa
(inactivación) llevada a cabo por la piruvato deshidrogenasa kinasa y defosforilación de la
cadena alfa (activación) llevada a cabo por la piruvato deshidrogenasa fosfatasa.
La PDH es estimulada por la insulina, fosfoenolpiruvato y AMP, pero es completamente
inhibida por el ATP, NADH y acetil-CoA.
Piruvato deshidrogenasa (NAD+)
La enzima Piruvato deshidrogenasa (NAD+) EC 1.2.1.51 cataliza la reacción de
descarboxilación oxidativa del piruvato según la siguiente ecuación.
Piruvato + CoA + NAD+ ↔ Acetil-CoA + CO2 + NADH
Esta enzima es inhibida por el oxígeno y estimulada por la insulina. Se presenta
como un homodímero y se une a una molécula de FAD, a una molécula de FMN y
a la tiamina pirofosfato. Está presente en organismos como la Anabaena variabilis,
Chlorobium chlorochromatii, Cryptosporidium parvum (Q968X7), Entamoeba
dispar, Euglena gracilis (Q94IN5) y Lactococcus lactis.
Piruvato deshidrogenasa (citocromo)
La enzima deshidrogenasa (citocromo) EC 1.2.2.2 cataliza la reacción de
descarboxilación oxidativa del piruvato según la siguiente ecuación.
Piruvato + Ferricitocromo b1 + H2O ↔ Acetato + CO2 + Ferrocitocromo b1
Es una enzima bacteriana y se presenta como un homotetrámero al que se une
una molécula de FAD, una molécula de tiamina pirofosfato y un ion magnesio. Su
localización celular es la membrana celular y se activa por digestión proteolítica
limitada
LA MURAMIDASA
también conocida como lizosima (Nacetil muramidaglicano hidrolasa, E. C. 3. 2.1. 17), fue
descubierta en 1922 por Alexander Fleming. Es la primera proteína de la que se dispuso
de su secuencia por cristalografía de rayos-X, además la primera enzima de la que se
determinó su mecanismo enzimático gracias a David Phillis en 1966 (Jollés y Jollés,
1984). Desde su descubrimiento esta proteína ha jugado un papel muy importante en los
modelos enzimáticos, y en muchos aspectos de la biología moderna, incluyendo la
química de proteínas, cristalografía, resonancia magnética nuclear (NMR), inmunología y
plegamiento de proteínas (Chantal y col., 2007).
Ubicación:
La lisozima se encuentra en muchos organismos como virus, insectos, anfibios, reptiles,
aves y mamíferos, produciéndose en multitud de tejidos y fluidos, incluyendo huevos de
aves, leche humana, lágrimas, saliva y es además secretada por leucocitos
polimorfonucleares (Niyonsaba y Ogawa, 2005).
En los humanos, la lisozima juega un rol muy importante en la defensa frente a las
infecciones. En las lágrimas se encuentra en cantidades comprendidas entre 3.000 y
5.000 μg/mL y protege frente a bacterias y virus (Lesnierowski y col., 2007). En la saliva
protege frente una gran variedad de microorganismos como bacterias, virus y hongos de
diferentes especies de Candida (Tenovuo, 2002; Samaranayake y col., 2008). Además de
la actividad antibacteriana, se han descrito muchas otras actividades biológicas de la
lisozima: por ejemplo la actividad antiviral.
Acción:
La lisozima administrada por vía oral y cutánea previene enfermedades de la piel, como
herpes simple y la varicela, debido a su actividad antiinflamatoria (Sava, 1996). Se ha
descrito que posee actividad frente al virus del VIH tipo 1 en ensayos in vitro (Lee-Huang
y col., 1999), proponiéndose como mecanismo de acción, que la actividad antiviral puede
estar asociada con su carga positiva y las interacciones con la superficie del virus
cargadas negativamente (Losso y col., 2000).
Se han descrito otras actividades a la lisozima de huevo como actividad antioxidante (Liu
y col., 2006), actividad antiheparínica (Mega y col., 1994), actividad antifúngica, capacidad
fusogénica con fosfolípidos y potenciación del efecto de antibióticos (Ibrahim y col., 2001).
También se ha descrito en la bibliografía que la lisozima humana actúa como agente
inmunomodulante, jugando un papel muy importante en el mecanismo de defensa natural
(Koslov y col., 2000; Cho y col., 2005).
La función del sistema inmune es reconocer y controlar los microorganismos, basándose
en la habilidad de presentar y reconocer productos conservados del metabolismo
microbiano que son únicos de los microorganismos y no se producen en células
eucarióticas. Como ejemplo de estas moléculas asociadas a patógenos encontramos al
lipopolisacarido (LPS) de bacterias Gram- negativas, secuencias de ADN no metiladas y
peptidoglicano de bacterias Gram-positivas y negativas. Varias sustancias
antimicrobianas y enzimas hidrolíticas están distribuidas dentro de los gránulos
citoplasmáticos de neutrófilos y son eficientes en la efensa frente a bacterias. Estudios
recientes han demostrado que la lisozima es uno de los principales componentes de los
gránulos primarios y secundarios de los neutrófilos y el principal producto secretado por
los macrófagos, por ello puede actuar en la activación de estas células frente a los
procesos de inflamación por la presencia de bacterias (Ganz y col., 2003; Cho y col.,
2005).
Reconocimiento:
Organismos internacionales como la FAO/WHO y muchos países como Alemania, Austria,
Australia, Bélgica, Dinamarca, España, Finlandia, Francia, Italia, Japón y Reino Unido
tienen reconocida a la lisozima de clara de huevo como una proteína no tóxica y por ello
es utilizada para fines alimentarios, farmacológicos y terapéuticos, se estima que más de
100 toneladas de lisozima son usados anualmente para estos propósitos (Mine y col,
2004). La FDA (Administración de drogas y alimentos en Estados unidos) considera a la
lisozima como GRAS (generalmente reconocido como seguro) para el uso en la industria
quesera. La lisozima de huevo está catalogada como aditivo de uso alimentario con el
código (E-1105). Vegetales frescos, pescado, carne, frutas, langostinos y otros alimentos
han sido preservados por contacto de la superficie del alimento con la lisozima. Esta
proteína también es usada para conservar otros alimentos como pepinillos Kimuchi, sushi
y fideos chinos. Entre sus usos encontramos la protección en los quesos frente a
bacterias dañinas como el Clostridium tyrobutyricum que provoca la hinchazón de los
quesos. Varias patentes garantizan que la lisozima a bajas concentraciones controla el
crecimiento de microorganismos en quesos durante más de 24 meses. Recientemente se
han creado plásticos que contienen la lisozima adherida fuertemente a un biopolímero,
estos biofilms son utilizados como conservantes por contacto del alimento con los
biopolímeros (Mine y col., 2004).
La lisozima también está adquiriendo gran importancia en la elaboración del vino. El
dióxido de sulfuro es comúnmente usado como conservante en enología. Actúa como un
antioxidante para proteger de la oxidación a los compuestos fenólicos. Además el SO2
inhibe las oxidasas endógenas y previene la fermentación indeseable como fermentación
acética y maloláctica. Se quiere reducir el uso de SO2 por su efecto tóxico en la salud
humana. Por ello se han establecido unos límites para añadirlo en la fabricación de los
vinos. Se han realizado muchos estudios para desarrollar protocolos enológicos con
aditivos alternativos que sustituyen al sulfito en las mencionadas funciones. Mundialmente
se busca la fabricación de vinos libres de sulfitos.
Otras funciones:
A partir de los años 1990 el uso de la lisozima de clara de huevo ha sido propuesto para
el control de la fermentación maloláctica en la elaboración de los vinos, porque promueve
la estabilización microbiana y previene el aumento de las concentraciones de ácido
acético y aminas biógenas. Se ha demostrado que la lisozima previene el crecimiento de
Oenococcus oeni y bacterias lácticas alterantes. De acuerdo con la legislación de la
comunidad europea EC Nr 2066 se permite agregar 500 mg/L para vinos tintos y 250
mg/L para los blancos (Sonni y col., 2009; Weber y col., 2009). Aunque en la industria del
vino se utiliza para controlar el crecimiento de bacterias lácticas (Oenococcus,
Lactobacillus y Pediococcus), tiene poca acción sobre las bacterias Gram-negativas
(bacterias acéticas) y levaduras por lo que no puede reemplazar totalmente al anhídrido
sulfuroso (Delfini y col., 2004; Tirelli y De Noni, 2007)
TRIPSINA.
Antecedentes
Las catalasas monofuncionales son de dos tipos: las catalasas con subunidades pequeñas
(masa molecular ≈ 60 kDa) y las catalasas con subunidades grandes (masa molecular > 80
kDa). Las primeras se encuentran en los mamíferos, las plantas, los hongos y la mayoría
de las bacterias y tienen la característica de unir NADPH y de ser inhibidas e inactivadas
por sustrato. La unión del NADPH es para prevenir la acumulación del compuesto II y III.
Las catalasas grandes sólo están presentes en los hongos y en las bacterias, no unen
NADPH, tienen un dominio en el C-terminal semejante a la flavodoxina y son resistentes al
H2O2. Un estudio cinético muestra que la catalasa de hígado de bovino (BLC:“bovine liver
catalase”), que es una catalasa pequeña, se inhibe reversiblemente y se inactiva
irreversiblemente a partir de 200 mM de H2O2, mientras que la catalasa R de Aspergillus
niger, que es una catalasa grande, no muestra inhibición reversible e inactivación
irreversible con 2M de sustrato. La inhibición reversible de la BLC se debe a la acumulación
del compuesto III . Otra catalasa grande que no se inhibe reversiblemente y no se inactiva
irreversiblemente con altas concentraciones de H2O2 (3 M) es la Catalasa-1 de Neurospora
crassa (CAT-1). Además de su resistencia al H2O2, la CAT-1 presenta cooperatividad en
altas concentraciones de sustrato (> 200 mM)
Para poder entender estas diferencias funcionales es importante conocer la estructura
tridimensional de las distintas catalasas. Estableciendo correlaciones estructura-función se
podrá desentrañar el mecanismo íntimo de la reacción.
LACTASA
La lactasa, un tipo de β-galactosidasa, es una enzima producida en el intestino delgado y
que se sintetiza durante la infancia de todos los mamíferos. Su acción es imprescindible en
el proceso de conversión de la lactosa, azúcar doble (disacárido), en sus
componentes glucosa y galactosa. La lactasa se produce en el borde de cepillo de
las células que recubren las vellosidades intestinales. Pertenece a la familia de
las disacaridasas, que son las enzimas que se encargan de romper los disacáridos en
los monosacáridos que los forman.
Algunos microorganismos, como las bacterias lácticas, producen lactasa. Esto les permite
hidrolizar la lactosa y metabolizar sus componentes: la glucosa vía glucólisis y la galactosa
por la ruta de Leloir o la ruta de la tagatosa-6-fosfato.
En los mamíferos, con la edad se produce un descenso fisiológico de la secreción de
lactasa. No obstante, en los seres humanos se han desarrollado mutaciones genéticas que
permiten la secreción de la lactasa durante la vida adulta, como parte de una adaptación
evolutiva en las poblaciones que han domesticado ganado lechero y han seguido
consumiendo leche durante la edad adulta.
Cuando no se produce suficiente lactasa, la lactosa no se digiere correctamente
(maldigestión) y puede provocar una malabsorción de lactosa. La intolerancia a la
lactosa son los síntomas de esta malabsorción. El consumo de productos lácteos por parte
de personas con intolerancia a la lactosa no produce daños en el tracto gastrointestinal,
sino que se limita a síntomas transitorios. Una gran parte de las persona que creen tener
intolerancia a la lactosa no presentan en realidad malabsorción de lactosa, por lo que sus
síntomas gastrointestinales no tienen relación con el consumo de lactosa sino que se deben
a la presencia de enfermedades no diagnosticadas, tales como la enfermedad celíaca,
la enfermedad inflamatoria intestinal o el sobrecrecimiento bacteriano. Asimismo, la
intolerancia a la lactosa con frecuencia es confundida con una alergia a la leche,
especialmente difícil de diagnosticar cuando es no mediada por IgE.
La lactasa en los mamíferos
En los mamíferos, con la edad se produce un descenso fisiológico de la secreción de
lactasa. No obstante, en los seres humanos se han desarrollado mutaciones genéticas que
permiten la secreción de la lactasa durante la vida adulta, como parte de una adaptación
evolutiva. Estas mutaciones se han producido durante la evolución humana varias veces
de forma independiente, en diferentes zonas del mundo, probablemente relacionadas con
la domesticación del ganado lechero durante los últimos 10.000 años. Múltiples variantes
han permitido a varias poblaciones modificar rápidamente la expresión del gen que codifica
la lactasa y han sido fuertemente conservadas en las poblaciones que consumen leche
durante la vida adulta. La persistencia de lactasa se hereda como un
rasgo mendeliano dominante. Concretamente, la actividad de la lactasa se mantiene en la
edad adulta en Europa (centro y norte, con descenso de la prevalencia hacia el sur), en
África (norte y poblaciones de pastores) y Arabia (poblaciones de pastores), donde se
continuó ancestralmente la toma de leche tras el destete. Por el contrario, en las culturas
que no han tenido relación con animales productores de leche, como la japonesa, la china,
la india, la mayor parte de África (poblaciones de agricultores), etc., la proporción de
intolerancia primaria a la lactosa es elevada.
Anomalías
Cuando no se produce suficiente lactasa, la lactosa (el azúcar de la leche) no se digiere
correctamente (maldigestión) y puede provocar una malabsorción de lactosa. La intolerancia a
la lactosa es la manifestación clínica. En función de su origen, existen tres formas de intolerancia
a la lactosa:
Deficiencia primaria de lactasa
Está causada por el descenso fisiológico de la secreción de lactasa que ocurre con la
edad en todos los mamíferos. No obstante, en los seres humanos se han desarrollado
mutaciones genéticas que permiten la secreción de la lactasa durante la vida adulta,
como ocurre por ejemplo en la raza caucásica (blanca).
En estos casos, la malabsorción de lactosa no siempre se acompaña de síntomas y
suele responder a dietas exentas o con bajo contenido de lactosa. Las personas sanas
con deficiencia primaria o permanente de lactasa son capaces de consumir al menos 12
g de lactosa por comida (la cantidad contenida en una taza de leche) sin experimentar
ningún síntoma o solo síntomas leves. Esta tolerancia mejora si la leche es consumida
junto con las comidas, eligiendo leche baja en lactosa, sustituyendo la leche por yogur
o quesos curados, o tomando suplementos de lactasa. Asimismo, el consumo regular
de alimentos lácteos por parte de personas con deficiencia primaria de lactasa puede
permitir una adaptación favorable de las bacterias del colon, que pueden ayudar a la
descomposición de la lactosa, permitiendo una tolerancia progresiva y mantenida a la
lactosa.
La intolerancia a la lactosa primaria está ampliamente sobre diagnosticada,
especialmente en niños y adolescentes. Frecuentemente, se interpretan como
"normales" o primarias las formas de malabsorción secundarias o adquiridas, lo cual
desemboca en largos retrasos en el diagnóstico de enfermedades subyacentes graves,
causantes de la malabsorción, tales como la enfermedad celíaca o la enfermedad
inflamatoria intestinal
Deficiencia secundaria de lactasa
La malabsorción secundaria de lactosa se debe a una deficiencia de lactasa en las
personas que mantienen la secreción de lactasa en la vida adulta, como consecuencia
de enfermedades que provocan lesión de la pared intestinal.2 Una vez que el principal
problema se resuelve, los productos lácteos a menudo pueden ser consumidos
normalmente, con lo que además se evita una exclusión innecesaria de esta importante
fuente de calcio.Entre las principales enfermedades que provocan deficiencia
secundaria de lactasa cabe destacar:
La enfermedad celíaca sin tratamiento: en esta suele aparecer asociada una
intolerancia a la lactosa transitoria por deficiencia relativa de lactasa. Por esta
razón, al comienzo de la dieta sin gluten (DSG) es conveniente restringir la leche
y sus derivados. Se pueden introducir de forma gradual pasados entre 1 y 2
meses desde la implantación de la DSG, ya que la intolerancia a la lactosa es
secundaria al gluten y suele desaparecer por completo durante los tres primero
meses de dieta estricta.
Enfermedad de Crohn.
Infección gastrointestinal: Se trata de un
episodio agudo de gastroenteritis infecciosa que lleva asociado un daño en la
mucosa del intestino. Generalmente, su duración es muy corta, unos pocos días,
y solamente se justifica retirar la lactosa en niños malnutridos y
con deshidratación.
Enteropatías sensibles a proteínas de leche de vaca. La tolerancia se recupera
rápidamente tras la retirada de las proteínas de leche de vaca de la dieta, con
normalización por lo general en un plazo de 4 a 6 semanas. La alergia a leche
de vaca mediada por IgE no se acompaña de enteropatía y en consecuencia,
no presenta intolerancia a la lactosa.
Medicamentos. Hay cierta gama de fármacos que pueden dar como resultado
un daño mucoso en el tracto gastrointestinal. Algunos de éstos
son: antiinflamatorios no esteroideos (AINE), como la aspirinay
el ibuprofeno; antibióticos, etc.
Otras: gastropatía diabética, síndrome carcinoide, cirugías abdominales,
giardiasis, malnutrición, enteritis actínica, enteritis regional, fibrosis quística, etc.
Fosfoglicerato mutasa
3-Fosfoglicerato 2-Fosfoglicerato
Mecanismo de reacción
En el estado inicial de la enzima, el sitio activo contiene un complejo fosfohistidina
formado por la fosforilación de un residuo específico de histidina. Cuando el 3-
fosfoglicerato entra en el sitio activo, el complejo fosfohistidina se posiciona para facilitar
la transferencia del grupo fosfato desde la enzima al carbono 2 del fosfoglicerato
formándose así el compuesto intermedio 2,3-bisfosfoglicerato. La defosforilación del
residuo de histidina efectúa un cambio alostérico local en la configuración de la enzima
que alinea el grupo fosfato del carbono 3 del bisfosfoglicerato con la histidina del sitio
activo de la enzima y facilita la transferencia del grupo fosfato. De esta forma se devuelve
a la enzima a su estado inicial fosforilado y se libera el producto 2-fosfoglicerato.
Familia de la fosfoglicerato mutasa
- La fosfoglicerato mutasa (PGAM) y la bisfosfoglicerato mutasa (BPGM) son
ezimas relacionadas estructuralmente que catalizan reacciones de transferencia
de grupos fosfato entre los tres átomos de carbono del fosfoglicerato. Las dos
enzimas catalizan tres reacciones diferentes, aunque en diferentes proporciones:
La isomerización del 2-fosfoglicerato a 3-fosfoglicerato mediante el
compuesto intermedio 2,3-bisfosfoglicerato.
La síntesis del 2,3-bisfosglicerato desde el 1,3-bisfosfoglicerato.
La degradación del 2,3-bisfosfoglicerato a 3-fosfoglicerato
(actividad fosfatasa de la bisfosfoglicerato fosfatasa EC 3.1.3.13).
- La enzima bifuncional 6-fosfofructo-2-kinasa / fructosa-2,6-bisfosfato 2-
fosfatasa (EC 2.7.1.105 y EC 3.1.3.46) (PFK2). La PFK2 cataliza la síntesis y la
degradación de la fructosa-2,6-bisfosfato. La PFK2 es una enzima importante en la
regulación del metabolismo de carbohidratos en el hígado. Como PGAM y BPGM,
la reacción de la fructosa-2,6-bisfosfato 2-fosfatasa utiliza un intermedio
fosfohistidina y el dominio fosfatasa de la PFK2 está estructuralmente relacionado
a la PGAM y BPGM.
ESTREPTOQUINASA
Contraindicaciones
Hipersensibilidad a estreptoquinasa, anistreplasa y albúmina. Hemorragia activa. Diátesis
hemorrágica. Úlceras en los últimos 6 meses. Síndrome menstrual. Postparto. Tuberculosis
activa. Neoplasia. Tromboembolismo potencial. Valvulopatía mitral con fibrilación auricular;
endocarditis infecciosa. Traumatismo o cirugía recientes (10 días). Ictus en los 2 meses
anteriores. HTA severa. Retinopatía diabética o hipertensiva. No repetir tto. en los 3-6
meses siguientes por formación de anticuerpos antiestreptoquinasa.
FOSFOPIRUVATO HIDRATASA
La fosfopiruvato hidratasa o, más sencillamente enolasa (EC 4.2.1.11) es
una metaloenzima que cataliza la transformación de 2-
fosfoglicerato a fosfoenolpiruvato durante la glucólisis. La enzima puede también catalizar la
reacción inversa, según la concentración de los sustratos en el medio.
Cada subunidad de la estructura de la enolasa está formada por dos dominios donde se
diferencian once láminas beta y doce hélices alfa. El dominio más pequeño es el amino
terminal y consta de cuatro hojas β, seguido por tres hélices α. El dominio mayor, el
carboxilo terminal, comienza con dos hojas β, seguido por dos hélices α y termina con un
barril compuesto por seis secuencias β-α alternas dispuestas de manera que las hojas β
están rodeadas por las hélices α. La enzima es globular y compacta debido a
las interacciones hidrofóbicas entre los dos dominios que forman a la enzima.
El sitio activo de la enolasa se encuentra en el extremo carboxílico del barril, donde los
iones metálicos cofactores de magnesio se unen al sustrato: 2-fosfoglicerato (2PG). En
este lugar de la enzima encontramos cinco residuos que resultan muy importantes para la
actividad enzimática. Una mutación que afecte a uno de ellos, concretamente a His, deja
a la enzima mutada con solo un 0,01% de su actividad catalítica.
Mecanismo de acción
Funciones
La enolasa es una enzima con una diversidad funcional, aunque se la reconoce sobre
todo por su función como marcador de lesiones neuronales, función realizada por su
isoenzima NSE, enolasa neuro específica.
- Función catalítica: La enolasa interviene en la reacción de glucólisis en el paso
del 2-fosfo-D-glicerato al fosfoenolpiruvato, molécula con alto contenido
energético.
Esta misma función catalítica tiene lugar también en la respiración de las células
de levadura. En esta reacción, la enolasa necesita la presencia de iones Magnesio
a los cuales se unirá para intervenir en la catalización de la reacción del proceso
de respiración de estas células, convirtiendo así el 2PG en PEP. Por este motivo,
la enolasa es conocida como una metaloenzima.
- Función como parámetro para lesiones neuronales y enfermedades
cerebrovasculares:
Se han estudiado altas concentraciones de EEN como indicador de posibles
complicaciones en el organismo. Los dos casos más frecuentes, son su alta
concentración en sangre que se estudia como parámetro para pronosticar
enfermedades cerebrovasculares, así como su elevada concentración en el líquido
cefalorraquídeo en recién nacidos (de entre 12 y 72h de vida), que se encuentran
en estado asfíctico grave. En este último caso la concentración de enolasa ha
permitido estudiar la influencia de ciertos procesos asfícticos en posibles daños
neuronales que se le pueden derivar.
- Receptor de plasminógeno:
En la superficie de células hematopoyéticas, endoteliales y epiteliales de
determinados agentes patógenos, la enolasa se encuentra como receptor de una
glicoproteína sintetizada por el hígado, la profibrinolisina conocida también como
plasminógeno.
- Así pues, este reconocimiento del plasminógeno permite que este sea
transformado en plasmina favoreciendo procesos como la degradación de matriz
extracelular. Esta propiedad de la enolasa la convierte en una enzima con una
destacable funcionalidad en el sistema fibrinolítico (encargado de la degradación
de la fibrina) tanto pericelular como intracelular.
- Función como respuesta adaptativa a la hipertermia:
La hipertermia, así como otros choques térmicos, causa modificaciones en la
célula, sobre todo en la estructura de las mitocondrias. El cambio brusco de
temperatura provoca una disminución en la funcionalidad de estos compartimentos
celulares que deriva en una descenso en la concentración de adenosín-
trifosfatos, ATP, molécula encargada de la obtención de energía.
Así pues, en los choques térmicos la célula necesita disponer de vías anaerobias
alternativas para poder obtener la energía celular necesaria. En la adquisición de
estas rutas anaerobias alternativas es cuando se puede observar un aumento de
enolasa a modo de respuesta adaptativa al cambio frusco de las condiciones
térmicas.
Aún se están estudiando otras funciones de la enolasa así como su posible
implicación en la respuesta al estrés salino al asociarse al tonoplasto
GLUCOSA 6-FOSFATO
Ácido (3, 4, 5,6-tetrahidroxitetrahidropirano-2-il) metoxifosfónico
La glucólisis.
La ruta de las pentosas fosfato.
Además, la glucosa-6-fosfato puede ser convertida en glucógeno o en almidón, como almacén
energético depositado en el hígado o en el músculo. Se almacenará en forma glucógeno en la
mayoría de los organismos pluricelulares y en forma de almidón intracelular o gránulos de glucógeno
en el resto de organismos.
SÍNTESIS DE: GLUCOSA-6-FOSFATO
Desde glucosa
En el interior de la célula, la glucosa-6-fosfato es producida por la fosforilación de
la glucosa en su carbono 6. Esta reacción es catalizada por la enzima hexoquinasa en la
mayoría de las células, y en los animales superiores, también por la glucoquinasa, en
determinadas células como los hepatocitos (células del hígado). Esta reacción consume una
molécula de ATP.
La principal razón que explica esta rápida fosforilación de la glucosa tras su entrada en la
célula, es prevenir su difusión al exterior, ya que la fosforilación añade un
grupo fosfato cargado que impide que la glucosa-6-fosfato pueda atravesar la membrana
plasmática.
Desde glucógeno
La glucosa-6-fosfato también puede ser producida durante la glucogenolisis, a partir
de glucosa-1-fosfato, el primer producto generado en la hidrólisis de
los polímeros de glucógeno.
RIBULOSA-6-FOSFATO DESHIDROGENASA
RIBOSA-5-FOSFATO
Ácido (2,3,4-Trihidroxi-5-oxo-pentoxi) fosfórico