JP2013510868A - Her−3関連疾患を治療または予防するための物質および方法 - Google Patents
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Abstract
【選択図】 図1
Description
本発明は、HER−3に結合する第1の薬剤と、HERファミリ−の他のメンバ−に結合するおよび/またはその活性を阻害する第2の薬剤との組合せを用いて、HER−3に関連した疾患を治療または予防することに関係した物質および方法を提供する。第1の薬剤および第2の薬剤は抗原結合タンパク質などの生物学的化合物または小分子チロシンキナ−ゼ阻害剤であり得る。例えば、本明細書では、HERファミリ−の個別のまたは複数のメンバ−、例えばHER−3、HER−2、EGF−R、HER−4、および/またはHERファミリ−のいずれか他のメンバ−、に結合するおよび/またはそれを阻害する、単離されたポリペプチド(例:抗体などの結合タンパク質)および/または小分子チロシンキナ−ゼ阻害剤が提供される。さらに、HER−3に結合する第1の薬剤と、1つまたは複数の他のHERファミリ−メンバ−に結合するおよび/またはその活性を阻害する第2の薬剤とを含む組成物、ならびにHER−3関連疾患を治療または予防するための前記組成物の使用方法が提供される。
本明細書に記載するように、HER−3に結合する薬剤は、抗体などの抗原結合タンパク質を含むがこれらに限らない生物学的化合物、または小分子チロシンキナ−ゼ阻害剤であり得る。本明細書中で用いる「抗原結合タンパク質」または「結合タンパク質」とは、特定の標的抗原、例えばHERファミリ−のメンバ−(例:HER−3)と特異的に結合するタンパク質を意味する。抗原結合タンパク質は、解離定数(KD)が<10−8Mであるとき、その標的抗原と「特異的に結合する」と言われる。抗体は、KDが<5×10−9Mであるときに「高い親和性」で、そしてKDが<5×10−10Mであるときに「非常に高い親和性」で、抗原と特異的に結合する。一実施形態では、抗体が<10−9MのKDおよび約1×10−4/秒のオフ速度(off−rate)を有する。一実施形態では、オフ速度が約1×105/秒である。他の実施形態では、抗体がHERファミリ−の特定のメンバ−に約10−8M〜10−10MのKDで結合し、さらに他の実施形態では、それがKD <2×10−10Mで結合する。さらに、本明細書中で用いる小分子化合物は、セリン、トレオニンまたはチロシンキナ−ゼを含めて、1種以上のタンパク質キナ−ゼの酵素活性を阻害するように化学合成された低分子量化合物である。
上で説明したように、HER−3関連疾患を治療するための本明細書で提供される組成物および方法は、HER−3に結合する第1の薬剤と、HERファミリ−の少なくとも1つの他のメンバ−(EGF−R、HER−2、HER−4を含むが、これらに限定されない)に結合するおよび/またはそれを阻害する第2の薬剤との併用を含む。第2の薬剤は、限定するものではないが、生物学的薬剤、例えばHERファミリ−のメンバ−に特異的に結合する抗体などの結合タンパク質、HER−3以外の(またはHER−3に加えて)HERファミリ−の少なくとも1つのメンバ−に結合するおよび/またはその活性を変更する(例えば、阻害する)小分子化合物、siRNA、または天然物質であり得る。本明細書中で用いる用語「他のHERファミリ−メンバ−」および「別のHERファミリ−メンバ−」とは、HER−3ではないHERファミリ−のメンバ−をさす。その例はEGF−R、HER−2、およびHER−4であるが、「HERファミリ−メンバ−」には、まだ同定されていないファミリ−メンバ−も含まれる。
追加の薬剤は、本明細書に開示するような、HER−3に結合する、およびHERファミリ−の別のメンバ−に結合するおよび/またはそれを阻害する、それぞれ第1および第2の薬剤に添加することができる。これらは、いくつかの実施形態において、化学療法薬であり得る。本明細書で開示した組成物および方法で使用する追加の薬剤はまた、HERファミリ−の別のメンバ−に結合するおよび/またはそれを阻害する薬剤の代わりに第2の薬剤として本発明において用いることができる。言い換えれば、HER3に結合する第1の薬剤は、HERファミリ−の別のメンバ−に結合するおよび/またはそれを阻害する第2の薬剤の非存在下に/代わりに、後述する追加の薬剤のいずれかと組み合わせて、特定の治療に使用することができる。
ヒドロ−4−ヒドロキシ−3,5−ジメチル−2H−ピラン−2−オン)(Novartis社, Basel, スイス; 米国特許第4939168号および第5681847号)。これらの微小管刺激薬の一部はそれらの化学構造中にタキサン環をもっている;こうしたタキサン環をもつ化合物は本明細書では「タキサン系」と呼ばれる。
本発明はまた、本明細書に記載のHER−3結合薬剤を、別のHERファミリ−タンパク質に対して誘導されたまたは化学療法化合物である第2の薬剤と組み合わせて、1種以上の薬学的に許容される担体、希釈剤および/またはアジュバントと共に、含有する医薬組成物を提供する。本明細書中で用いる用語「医薬組成物」とは、患者に適切に投与したとき、所望の治療効果を引き出すことができる化合物または組成物をさす(The McGraw−Hill Dictionary of Chemical Terms, Parker編, McGraw−Hill, San Francisco (1985))。本明細書で提供される医薬組成物の効力は一般的に、HER−3への少なくとも1種の結合タンパク質の結合に基づいている。いくつかの実施形態では、この結合がHER−3介在シグナル伝達を減少させることができる。
本発明はまた、HER−3の発現と関連した疾患および症状を治療または予防するための方法を提供する。例えば、その方法は、被験者(例えば、ヒトなどの哺乳類)または被験者由来の生物学的サンプルを、本明細書に記載する第2の薬剤と組み合わせたHER−3結合タンパク質と接触させることを含んでなる。サンプルはHER−3の発現を示す細胞、例えば腫瘍細胞、血液サンプルまたは他の適当なサンプルであり得る。いくつかの実施形態では、前記接触がin vivoで起こり、例えば、HER−3結合薬剤とHERファミリ−の別のメンバ−に結合する第2の薬剤とを含む組成物がそれを必要とする被験者に投与されるときに起こる。本明細書に記載の方法を用いて治療できるHER−3の発現と関連した疾患または症状には、例えば過剰増殖性疾患が含まれ、過剰増殖性疾患としては例えば以下のものがある:乳癌、消化器癌、膵臓癌、前立腺癌、卵巣癌、胃癌、子宮内膜癌、唾液腺癌、肺癌、腎癌、結腸癌、結腸直腸癌、甲状腺癌、膀胱癌、神経膠腫、黒色腫、転移性乳癌、非小細胞肺癌、類表皮癌、線維肉腫、黒色腫、上咽頭癌、扁平上皮細胞癌、および他のHER−3−陽性、−発現性または−過剰発現性の癌。
組み換えHER−3タンパク質を調製した。HER−3の配列(GeneBank 受入れ番号NM 001982)に基づくプライマ−:順方向プライマ−:5’−CGGGATCCATGTCCTAGCCTAGGGGC−3’(配列番号:233); 逆方向プライマ−:5’−GCTCTAGATTAATGATGATGATGATGATGTTGTCCTAAACAGTCTTG−3’ (配列番号:234)を用いて、pcDNA3−HER−3(完全長ヒトHER−3を有する発現ベクタ−、Wallasch et al. (1995) EMBO J. 14:4267−4275)からポリメラ−ゼ連鎖反応(PCR)によりHER−3の細胞外領域(ECD)cDNAをクロ−ニングした。
ヒト癌形成におけるHER−3の役割を解明するために、ヒト癌細胞株のパネルにおいて、HER−3の発現を定量化した。癌細胞株は、ATCCによって推奨されているとおりに増殖させた。詳細には、PBS中の10mM EDTAを用いて105細胞を採取し、FACS緩衝液(PBS、3%FCS、0.4%アジド)で1回洗浄し、96ウェルの丸底プレ−ト上に播種した。上清を除去するために、1000rpmで3分間、細胞を遠心し、次いで、α−HER−3抗体2D1D12(WO 03013602)(3μg/mL)とともに再懸濁した。細胞懸濁液を氷上で1時間静置し、FACS緩衝液で2回洗浄し、FACS緩衝液中に1:50で希釈した二次抗体(100μL/ウェル)ロバ抗ヒト−PE(Jackson)とともに再懸濁した。氷上及び暗所で、細胞懸濁液を30分間静置し、FACS緩衝液を用いて2回洗浄し、分析した(FACS、Beckman Coulter)。HER−3は、種々の乳房、大腸、上皮、黒色腫、鼻咽頭、卵巣、膵臓、及び前立腺の細胞株を含む多くのヒト癌細胞株で発現した。米国特許公開公報第2008/0124345号の図面を参照。本特許出願公開は、参照することにより、その全体が、本明細書に組み込まれる。
実施例1に記載されているとおりに調製されたHER−3 ECDタンパク質及びC32細胞(ヒト悪性黒色腫;ATCC#CRL−1585)を抗原として使用した。XENOMOUSE(登録商標)マウス(系統XMG1及びXMG4、Abgenix,Inc.Fremont,CA)を順次免疫処置することによって、HER−3に対するモノクロ−ナル抗体を産生させた。全ての注射に対し、足蹠を介して、XENOMOUSE(登録商標)動物に免疫処置を施した。各注射の総容量は、50μL/マウス、25μL/足蹠であった。
コ−ホ−ト番号1に関しては、免疫したマウスから得た血清中の抗HER−3抗体力価は、HER−3 ECDタンパク質に対するELISAによって測定した。各XENOMOUSE(登録商標)動物の特異的力価は、650nmでの光学密度から測定され、下記表1に示されている。力価の値は、血清の最大希釈の逆数であり、ODの読み取りは、バックグラウンドの2倍である。従って、数値が高くなるほど、HER−3ECDに対する液性免疫応答は大きくなる。
免疫処置をしたマウスを犠牲にし、各コ−ホ−トからリンパ節を採集し、プ−ルした。DMEM中で磨り潰すことによってリンパ球系細胞を解離させて、組織から細胞を放出させ、細胞をDMEM中に懸濁させた。細胞を計数し、0.9mL DMEM/1億リンパ球を細胞ペレットに添加して、穏やかに、但し、完全に、細胞を再懸濁した。1億細胞当りCD90+磁気ビ−ズ100μLを用いて、4℃で15分間、磁気ビ−ズとともに細胞をインキュベ−トすることによって、細胞を標識した。最大108個の陽性細胞(又は最大2×109個の全細胞)を含有する磁気標識された細胞懸濁液をLS+カラムにかけ、DMEMでカラムを洗浄した。全ての流出物を、CD90陰性画分として集めた(これらの細胞の多くは、B細胞であると予想された。)。
培養から14日後に、精製hisタグHER−3 ECDを用いるELISA及びヤギ抗ヒトIgGFc−HRP(Caltag Inc., Cat.No.H10507、使用した濃度は、1:2000希釈であった。)を用いるELISAによる無関係なhisタグタンパク質に対するカウンタ−スクリ−ニングによって、コ−ホ−ト番号1(コ−ホ−ト番号1のマウスを、任意に融合番号1及び2に分割した。)から得られたハイブリド−マ上清のHER−3特異的抗体に対する一次スクリ−ニングを行い、ELISAプレ−ト上に固定化されたHER−3 ECDへのヒトIgG結合を検出した。一次スクリ−ニングに基づく陽性ハイブリド−マ細胞増殖ウェルから得た古い培養上清を取り除き、そして新鮮なハイブリド−マ培地を用いて、HER−3陽性ハイブリド−マ細胞を懸濁し、24ウェルプレ−トに移した。培養から2日後には、これらの上清は、二次的確認スクリ−ニングのために使用した。HER−3特異的完全ヒトIgGk抗体に対する二次的確認スクリ−ニングでは、ヒトγ鎖検出のためのヤギ抗ヒトIgGFc−HRP(Caltag Inc., Cat.No.H10507、1:2000希釈を使用する。)及びヒトκ軽鎖検出のためのヤギ抗hIgκ−HRP(Southern Biotechnology, Cat.No.2060−05)という検出用抗体の2つの組を用いたELISAによって、第一のスクリ−ニングにおいて陽性であったものをスクリ−ニングした。コ−ホ−ト番号1から、91の完全ヒトIgG/κHER−3特異的モノクロ−ナル抗体が生成した。
培養から14日後に、コ−ホ−ト番号3及び番号4から得られたハイブリド−マ(融合番号3及び番号4)上清を、FMATによって、HER−3−特異的モノクロ−ナル抗体に関してスクリ−ニングした。一次スクリ−ニングにおいて、1:10最終希釈のハイブリド−マ上清を、ヒトHER−3を発現するRat1−Her3細胞及び400ng/mLのCy5が結合したヤギF(ab’)2抗ヒトIgG、Fc特異的抗体(Jackson ImmunoResearch, Cat.No.109−176−098)とともに、室温で6時間インキュベ−トした。細胞への抗体及び検出抗体の結合を、FMAT(Applied Biosystems)によって測定した。細胞への抗体の非特異的結合は、親Rat1細胞への抗体の結合によって測定した。融合物番号3の一次スクリ−ニングから、HER−3−特異的抗体を産生する計420のハイブリド−マを選択した。同じFMATプロトコ−ルを用いて、これらの増大した培養物からの上清を再度試験し、これらのうちの262が、HER−3発現細胞へ特異的に結合することが確認された。融合物番号4の一次スクリ−ニングから、HER−3特異的抗体を産生する計193のハイブリド−マを選択した。FACSによって、これらの増大した培養物からの上清物を試験し、これらのうちの138が、HER−3発現細胞へ特異的に結合することを確認した。FACS確認アッセイでは、2%FBSを含有するPBS中において、1:2希釈で、1時間、40℃で、ハイブリド−マ上清とともに、Rat1−XHER3細胞と親Rat1細胞(陰性対照として)をインキュベ−トした。PBSでの洗浄後、2.5μg/mLのCy5が結合したヤギF(ab’)2抗ヒトIgG、Fc特異抗体(JIR#109−176−098)及び5μg/mL PE−結合ヤギF(ab’)2抗ヒトκ特異抗体(SB#2063−09)によって、細胞への抗体の結合を検出した。PBSでの洗浄によって、非結合抗体を除去した後、1:4の希釈で、cytofix(BD#51−2090KZ)によって、細胞を固定し、FACSCaliburによって分析した。
精製組換え細胞外ドメイン(たとえば、R&D Biosystems, Minneapolis, MNから入手可能)を用いるELISAにおける、HER−1(EGF−R)、HER−2及びHER−4を上回るHER−3に対する特異性、異なるHERファミリ−メンバ−を発現するヒト腫瘍細胞株のFACSベ−スの分析並びにHER−3陽性細胞に対するFACS染色での平均蛍光強度のバックグラウンドの5倍を超える増加に基づいて、ハイブリド−マのクロ−ニングのために、コ−ホ−ト番号1及び2から得た抗体を選択した。これらの基準に基づいて、限界希釈細胞プレ−ティングによって、計23のハイブリド−マ株をクロ−ニングのために選択した。
ELISA法を用いて、抗原特異的抗体の濃度に対して上清を標準化した。平行して滴定された濃度既知のコ−ホ−ト番号1から得られた2つの抗HER−3ヒトIgG1抗体を用いて、標準曲線を作成し、コ−ホ−ト番号3及び4から得られた試験ハイブリド−マ上清中の抗原特異的抗体の量を標準と比較した。このようにして、各ハイブリド−マ培養物中のヒトHER−3 IgG抗体の濃度を推定した。
以下の議論は、ここに記載されたようにして調製された抗体に関する構造情報を提供する。本発明の抗体の構造を分析するために、特定のハイブリド−マから重鎖及び軽鎖断片をコ−ドする遺伝子が増幅された。配列決定は、以下のようにして行った。
HER3抗体のヒトVheavy及びVκcDNA配列の分析は、Abgenix社内ソフトウェア(5AS)を用いて、HER−3配列とヒト生殖細胞系Vheavy及びVκ配列とを一列に並べることによって行った。本ソフトウェアによって、V遺伝子、D遺伝子及びJ遺伝子の使用並びに組換え接合部におけるヌクレオチド挿入及び体細胞突然変異が確認された。体細胞突然変異を確認するために、アミノ酸配列もコンピュ−タシミュレ−ションで作製された。市販の配列分析ソフトウェア並びにヒトV、D及びJ遺伝子の配列に関する入手可能な情報、例えばVbase(http://vbase.mrc−cpe.cam.ac.uk/)を用いて、同様の結果を得ることができた。
抗体U1−59を分泌するハイブリド−マ系列を含む、多数のハイブリド−マ系列を含有する組織培養ウェルから全RNAを抽出した。3’−C−γプライマ−とともに、5’−リ−ダ−VHファミリ−特異的プライマ−を用いて、重鎖可変領域を増幅した。VH4プライマ−を用いて、主要なバンドが増幅され、他のバンドは見られなかった。VH4−34γ断片は、ヒトγ1定常領域遺伝子とインフレ−ムにあるpCDNA発現ベクタ−中にクロ−ニングされた。
全部で6つの重鎖/κ軽鎖対に対し、一過性トランスフェクションにおいて、κ鎖の各々とともに、各重鎖をトランスフェクトした。A20κ鎖とのγ鎖のトランスフェクションは、乏しい抗体発現を与えたのに対して、A20κ鎖がμ鎖とともに同時トランスフェクションした場合には、抗体は全く分泌せず、検出もされなかった。HER−3結合アッセイには、計3つのIgG sups及び2つのIgM supsが利用可能であった。
HER−3への結合に関して競合するHER−3抗体のクラスタ−を評価するために、「Jia et al. (2004) J. Immunol. Methods.288, 91−98」に発表されているように、多重競合抗体ビニングを行った。コ−ホ−ト番号1由来の検査されたHER−3抗体は、結合に対する競合に基づいて、5つのビンにクラスタ−化された。
本発明のヒト抗HER−3抗体のエピト−プの特性を評価した。まず、還元され、変性され、HER−3−Hisタグ化され、精製されたECDタンパク質のドットブロット分析が、検査された抗HER−3抗体(U1−59、U1−61、U1−41、U1−46、U1−53、U1−43、U1−44、U1−47、U1−52、U1−40、U1−49)による結合の不存在を示し、全てがジスルフィド結合の還元に対して感受性を有するエピト−プを有することが実証され、また全てが不連続なエピト−プを有することが示唆された。次に、HER−3細胞外ドメインの以下の4つのドメインへの分割に基づいて、様々なヒト−ラットHER−3キメラ分子を操作することによって、HER−3分子中の所定のドメインに抗体をマッピングした。
1)L1(D1):マイナ−なリガンド結合ドメイン、
2)S1(D2):第一のシステインリッチドメイン、
3)L2(D3):主要リガンド結合ドメイン、及び
4)S2(D4):第二のシステインリッチドメイン。
mAb−HER−3 ECD複合体のチップ上タンパク質分解消化物を用い、表面エンハンス型レ−ザ−脱離イオン化飛行時間型質量分析装置により、抗体U1−59のさらなるマッピングを行った。PS20プロティンチップアレイに、プロテインAを共有結合させ、mAb U1−59を捕捉するために使用した。次いで、HER−3−His精製抗原とともに、PS20プロティンチップとモノクロ−ナル抗体の複合体をインキュベ−トした。次に、Asp−Nの高濃度を用いて、抗体抗原複合体を消化した。チップを洗浄すると、チップ上の抗体に結合されたHER−3ペプチドのみが保持された。SELDIによってエピト−プを決定し、断片の質量によってエピト−プを同定した。同定された6814 D断片は、HER−3−his ECDの部分的消化物から生成される2つの可能な予想されたペプチドに対応する。重複するペプチドの両者は、ドメインS1にマッピングされる。HER−3欠失構築物への結合と、SELDIの結果を合わせることにより、エピト−プは、残基251〜325にマッピングされた。
抗体構造は、各免疫グロブリン鎖の超可変領域に対する「カノニカルクラス」の観点から記載されている(Chothia et al. (1987) J. Mol. Biol., 196:901−17)。様々な免疫グロブリンのFab及びVL断片の原子構造は、それらのアミノ酸配列とそれらの抗原結合部位の三次元構造との関係を決定するために分析された。Chothiaらは、それらのパッキング、水素結合又は異常なφ、ψ若しくはω立体構造を採る能力を通して、超可変領域の主鎖立体構造に主として関与する残基は相対的に少ないことを見出した。これらの残基は、超可変領域内及び保存されたβシ−トフレ−ムワ−ク中の部位に存在することが見出された。未知の構造を有する免疫グロブリンの配列を調べることによって、Chothiaらは、多くの免疫グロブリンが、公知の構造の1つとサイズが類似する超可変領域を有すること、さらに、観察された立体構造に関与する部位に同一の残基を含有することを示す。
する、合致したカノニカルクラスが存在しない場合には、「s18」(CDRが18のサイズであることを意味する。)のように、文字s及び数字で、カノニカルクラスの割り当てに印が付されている。重鎖又は軽鎖の1つに対して入手可能な配列デ−タが存在しない場合には、カノニカルクラスは、「Z」でマ−クされる。
間接FACS Scatchard分析によって、本発明の抗HER−3抗体の親和性測定を行った。従って、PBS中の10mM EDTAを用いて105個の目的の細胞又はSK−Br3細胞を採取し、FACS緩衝液(PBS、3%FCS、0.4%アジド)で1回洗浄し、96ウェルの丸底プレ−ト上に播種した。1000rpmで3分間、細胞を遠心して、上清を除去し、次いで、α−HER−3抗体(3μg/mL)又はFACS緩衝液中の20μg/mLヒトモノクロ−ナル抗体から開始して、1:2の希釈工程で希釈された抗体希釈物(100μL/ウェル)を用いて再懸濁した。細胞懸濁液を氷上で1時間静置し、FACS緩衝液で2回洗浄し、FACS緩衝液に1:50希釈した二次抗体(100μL/ウェル)ロバ抗ヒトPE(Jackson)を用いて再懸濁した。氷上及び暗所で、細胞懸濁液を30分間静置し、FACS緩衝液を用いて2回洗浄し、分析した(FACS,Beckman Coulter)。FACS Scatchard分析に従って、各測定に対して蛍光平均を計算した。各蛍光平均からバックグラウンド染色(=第一の抗体なし)を差し引いた。x値=蛍光平均及びy値=蛍光平均/mAbの濃度(nM)を用いてScatchardプロットを作成した。KDは、一次方程式の1/mの絶対値と解した。以下の表7には、このようにして選択されたある種の抗体に対する親和性測定が記載されている。
本発明のHER−3は、HERファミリ−によって媒介される細胞シグナル伝達の重要なゲ−トキ−パ−としての役割を通じて、過剰増殖性疾患の開始及び進行に影響を与えることができる因子として同定されてきた。従って、HER−3が受容体インタ−ナリゼ−ションよって細胞表面/膜から効果的に除去されれば、細胞シグナル伝達が、従って、悪性腫瘍における細胞の形質転換及び/又は維持が、最終的に減少又は抑制され得る。
細胞をベ−スとしたアッセイにおいて、HER−3へのリガンド結合を阻害する本発明の抗HER−3抗体の能力を定量するために、放射性リガンド競合実験を行った。従って、変化する抗体濃度で、氷上で30分間静置した4×105個のSK−BR−3細胞を用いて、HER−3受容体結合アッセイを行った。各ウェルに、1.25nM[I125]−α−HRG[I125]−β−HRGを添加し、氷上で2時間、インキュベ−ションを続けた。プレ−トを5回洗浄し、風乾し、シンチレ−ションカウンタ−で数えた。抗体は、内在性HER−3を発現する細胞への、[125I]−α−HRG/[125I]−β−HRGの結合を特異的に低下させることができた。米国特許公開公報第2008/0124345号の図6a−6eを参照。
本発明の抗体が、リガンドβ−HRGによって媒介されるHER−3の活性化をブロックできるかどうかを調べるために、ELISA実験を行った。リガンドによって媒介されるHER−3の活性化は、受容体チロシンのリン酸化の増加によって検出した。
本発明の抗体が、リガンドβ−HRGによって媒介されるp42/p44MAP−キナ−ゼの活性化をブロックできるかどうかを調べるために、次のELISA実験を行った。リガンドによって媒介されるHER−3の活性化は、タンパク質(Thr202/Tyr204)のリン酸化の増加によって検出した。
以下のELISA実験において、本発明者らは、本発明の抗HER−3抗体が、リガンドβ−HRGによって媒介されるAKTキナ−ゼの活性化をブロックすることができるかどうかを調べた。リガンドによって媒介されるAKTの活性化は、タンパク質(Ser473)のリン酸化の増加によって検出された。
本発明の抗体がHGR−刺激細胞増殖を阻害する能力を決定するために、インビトロ実験を実施した。96ウェルプレ−ト上のFCS含有培地中に、一晩、2000個のMCF7細胞を播種した。37℃で1時間、0.5%FCSを有する培地中で希釈された抗体とともに、細胞を4つ組みでプレインキュベ−トした。抗体溶液にリガンドを直接添加することによって、30ng/mLのα−HRG又は20ng/mLのβ−HRG(R&D Systems)で細胞を刺激した後、72時間、増殖させた。ALAMAREBLUE(商標)(BIOSOURCE)を添加し、37℃で、暗所にてインキュベ−トした。30分毎に、590nmでの吸光度を測定した。アラマ−ル・ブル−の添加から90分後に、デ−タを採取した。これらの研究は、代表的な抗体がヒト癌細胞中でのHRG誘導細胞増殖を阻害できることを示した。米国特許公開公報第2008/0124345号の図10を参照。
本発明の抗体が細胞移動をブロックするかどうかを調べるために、移動実験を行った。細胞懸濁液に抗体の表記量を添加し、37℃で45分間、両者をインキュベ−トすることによって、血清飢餓状態のMCF7細胞をプレインキュベ−トした。次いで、コラ−ゲンIによって被覆されたトランスウェル(transwells)(BD Falcon, 8μm細孔)の最上部チャンバ−中に、細胞懸濁液(50,000細胞)500μLを置いた。単独の、又はリガンドβ−HRG−EGFドメイン(R&D Systems)を含有する750μL培地(MEM、アミノ酸、ピルビン酸ナトリウム、ペニシリン−ストレプトマイシン、0.1%BSA、ウシ胎児血清なし)を、チャンバ−の底で使用した。37℃で8時間、細胞を移動させ、DAPIで染色した。染色された核を手作業で計数した。対照抗体と比較した阻害として、%阻害を表した。これらの実験は、代表的な抗HER−3抗体が、HRG誘導細胞移動を減少できたことを実証した。米国特許公開公報第2008/0124345号の図11を参照。
本発明の抗HER−3抗体が足場非依存性細胞増殖を阻害する能力を調べるために、軟寒天アッセイを実施した。このような形質転換された細胞のみが軟寒天中で増殖することができるので、軟寒天コロニ−形成アッセイは、形質転換された細胞に対して試験するための標準的なインビトロアッセイである。
しばしば、ヒト異種移植腫瘍研究において、治療用抗体の抗腫瘍効果が評価される。これらの研究では、ヒト腫瘍は、免疫不全マウス中で、異種移植片として増殖し、治療効果は、腫瘍増殖阻害の程度によって測定される。本発明の抗HER−3抗体が、ヌ−ドマウス中でのヒト乳癌細胞の腫瘍増殖を妨げるかどうかを決定するために、雌のNMRIヌ−ド/ヌ−ドマウス中に、5×106個のT47D細胞を移植した。腫瘍は、動物の背中上の皮下で増殖した。移植から8日後に、腫瘍が20mm3の平均容積に到達した時点で、治療を開始した。最初の治療前に、マウスを無作為化し、治療群にわたって、最初の腫瘍容積(平均、中央値及び標準偏差)の均一性を確保するために、統計学的試験を行った。治療は、50mg/kgの負荷投与量から開始し、続いて、腹腔内注射によって、週に一回、25mg/kgを注射した。コントロ−ルア−ムには、ドキソルビシン(医薬品グレ−ド)を与えた。全ての動物に、0.5mg/kg/週のエストロゲンを腹腔内注射して補充した。処置群の詳細は、下記表8に記載されている。
これらの研究は、抗HER−3抗体の投与が、腫瘍増殖を減少させることを実証した。米国特許公開公報第2008/0124345号の図13を参照。
他の固形腫瘍タイプでの抗HER−3抗体の治療可能性を試験するために、ヒト膵臓腫瘍細胞株B×PC3に由来する確立された腫瘍を有するマウスにおいて、抗HER−3抗体である、U1−53及びU1−59を試験した。ビヒクル対照、PBS又は確立された治療用抗体、ア−ビタックス(Erbitux)の何れかで処理されたマウスのセットをコントロ−ルとして含めた。5×106個のBxPC3細胞を、Matrigelなしに、CB17 SCIDマウス中の皮下に接種した。140mm2の平均容積を有する確立された腫瘍を有するマウスに、腹腔内注射を介して、U1−53、U1−59、ア−ビタックスの50mg/kg又はPBSの等容量を与えた。その後、マウスは、研究期間中、毎週1回、25mg/kgの注射を受けた。
標的抗体を用いる過剰増殖性疾患の単剤療法は、しばしば、一方で、薬物耐性の発生、他方で、抗原性の変化などの問題によって妨害される。例えば、長期の治療後の抗原性の喪失は、腫瘍細胞を治療抗体に対して非感受性とさせる可能性がある。というのは、標的抗原を発現しないあるいはこれを失った腫瘍細胞は選択的な増殖という利点を有するからである。これらの問題は、腫瘍細胞上の異なる受容体を標的とする治療抗体又は別の抗腫瘍薬と組み合わせて本発明の抗体を使用することによって回避され得る。複数のシグナル伝達経路又は関連する経路においてでも、しかし、複数の介入工程で介入することも、治療的な利点を与え得る。これらの併用治療様式は、各々、異なる作用機序を介して作用する2つの抗癌剤を組み合わせるので、より効果的である可能性がある。
HER−3を含む受容体のerbBファミリ−のメンバ−は、極めて様々な上皮癌中で異常に発現されており、多くのこれらの固形腫瘍の増殖及び生存において重要な役割を果たしていることが知られている。これらの腫瘍には、悪性黒色腫、頭部及び頸部扁平上皮細胞癌、非小細胞肺癌及び前立腺癌、神経膠腫、胃癌、乳癌、結腸直腸癌、膵臓癌、卵巣癌が含まれる。本発明の抗HER−3抗体の抗癌活性が個別の腫瘍タイプ(例えば、膵臓癌(実施例21参照))に限定されず、多くのHER−3依存性腫瘍に対する治療薬として使用することができることを確かめるために、本発明者らは、さらなる異種移植片研究においてU1−53及びU1−59を試験した。CB17 SCIDウス中に、5×105個のヒト悪性黒色腫細胞HT144を皮下注射した後、U1−53及びU1−59の50mg/kg、同容量のPBS又は200mg/kgのダカルバシン(DITC)を直ちにその後で腹腔内注射した。その後、マウスは、週一回、25m/kgのU1−53又はU1−59を受けたのに対して、200mg/kgのDITCを2週毎に1回与えた。
10×106細胞/mLの最終濃度になるように、2:1比率の、Matrigelを用いて、HT−29ヒト大腸癌細胞を培地中に懸濁した。4から5週齢のCD1nu/nuマウスの右側腹部中に、細胞懸濁液0.2mLを皮下注射した。計95匹のマウスを使用した。
対照群:非特異的ヒトIgG25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−53、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−7、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−59、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群5−FU:5−フルオロウラシル、50mg/kg、9d×5、腹腔内。
5×106細胞/mLの最終濃度になるように、1:1の比率のMatrigelを用いて、Calu−3ヒト非小細胞肺癌細胞を培地中に懸濁した。9週齢の雌CB17scidマウスの右側腹部中に、0.05mLの細胞懸濁液を皮下注射した。計60匹のマウスを使用した。
PBSビヒクル群
hG対照群:非特異的ヒトIgG:25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−53、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−7、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−59、25mg/kg、週2回、腹腔内。
5×106細胞/mLの最終濃度になるように、2:1の比率のMatrigelを用いて、ヒト膵臓BxPC3腫瘍細胞を培地中に懸濁した。5−7週齢の雌BalbC nu/nuマウスの右側腹部中に、0.2mLの細胞懸濁液を皮下注射した。計100匹のマウスを使用した。
hIgG対照群:非特異的ヒトIgG、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−53、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−7、25mg/kg、週2回、腹腔内。
処置群:抗体U1−59、25mg/kg、毎週、腹腔内。
Gemzar処置群、ゲムシタビン、80mg/kg、毎週、腹腔内。
Calu−3 NSCLC腫瘍異種移植片モデルを使用し、単独又はパニツムマブ若しくはエルロチニブと併用して抗HER−3抗体(U1−59)の有効性を評価した。インビボでの有効性を決定するために、〜200mm3のCalu−3 NSCLC異種移植片を有するマウスを週に2回抗HERファミリ−阻害剤又は対照で処置した。A549細胞を用いて他の実験を行った。パニツムマブとの併用研究で、U1−59に対する負の対照として、IgG1を使用し、またパニツムマブに対する負の対照としてIgG2を使用した。図1に示すとおり、100μgのU1−59又は100μgのパニツムマブは、対照と比較して、それぞれ単独で腫瘍の増殖を大きく減少させたが、それぞれ100μgの2つの薬剤を併用すると、腫瘍の増殖を完全に阻止した(併用対各薬剤単独に対するp<0.0001)。エルロチニブを用いた併用研究において、U1−59に対する負の対照としてIgG1を使用し、エルロチニブに対する負の対照としてエルロチニブ溶媒対照を使用した。図2に示すとおり、100μgのU1−59と25μgのエルロチニブとの併用は、各薬剤単独よりもより大きな阻害効果を有した。U1−59とエルロチニブとの併用は、U1−59単独よりも有意に効果的であった(p=0.0376)。
SkBr−3(基底又はHRG刺激)及びMDA−MB−435(基底)癌細胞の足場非依存性増殖へのHER阻害剤ペルツズマブ、トラスツズマブ又はセツキシマブとの併用によるU1−59の効果を評価するための実験を行った。IgGが全ての研究での負の対照として使用された。腫瘍細胞コロニ−がHRGの非存在下又は存在下6〜10日間で形成され、4〜6時間MTTで染色されて、定量化された。単剤としてのU1−59は、MDA−MB−435細胞のコロニ−増殖を抑制しなかったが、SkBr−3細胞中では50%までコロニ−増殖を抑制し(p<0.001)、また他のHER阻害剤と併用すると95%までコロニ−増殖を抑制した(p<0.05)。例えば、5μg/mLのペルツズマブ又はトラスツズマブと5μg/mLのU1−59との併用は、基底SkBr−3乳癌細胞での足場非依存性増殖をいずれかの薬剤単独よりも有意に大きく減少させた(図3)。ペルツズマブ、トラスツズマブ又はセツキシマブとU1−59との併用は、HRG刺激SkBr−3細胞においてU1−59を別個に用いた場合より有意(p<0.006)に効果的だった(図4)。同様に、U1−59とペルツズマブ、トラスツズマブ又はセツキシマブのいずれかとの併用は、U1−59を別個に使用した場合よりも、基底卵巣癌細胞(MDA−MB−435)のコロニ−形成を有意により効果的に(p<0.002)阻害した(図5)。
HER−2阻害剤又は化学療法剤との併用によるU1−59の癌細胞増殖への効果を評価するための研究を行った。具体的には、MDA−MB−175VII乳癌細胞中で以下の実験を行った:
・U1−59及びトラスツズマブ
対照群=DMSO+75μg/mL IgG1+PBS
10μg/mL U1−59
75μg/mL トラスツズマブ
10μg/mL U1−59+75μg/mLトラスツズマブ
・U1−59及びラパチニブ
対照群=DMSO+150μg/mL IgG1
73.5μg/mL U1−59
0.1μM ラパチニブ
73.5μg/mL U1−59+0.1μM ラパチニブ
・U1−59及びゲムシタビン(gemcitabine)
対照群=DMSO+75μg/mL IgG1+PBS
10μg/mL U1−59
1μg/mL ゲムシタビン
10μg/mL U1−59+1μg/mLゲムシタビン
・U1−59及びシスプラチン
対照群=DMSO+75μg/mL IgG1+PBS
10μg/mL U1−59
1μg/mL シスプラチン
10μg/mL U1−59+1μg/mL シスプラチン
U1−59単独又はU1−59とセツキシマブ、ペルツズマブ、トラスツズマブ、又はラパチニブとの併用がシグナル伝達に与える効果を刺激されていないMDA−MB−175VII乳癌細胞、HRG刺激SkBr−3乳癌細胞、HRG刺激Ls174T結腸癌細胞及びHRG刺激HCC−1569乳癌細胞中で測定した。細胞は、図13−16に示す薬剤で処置され、HER−3、Akt、及びERKのリン酸化は、リン酸化部位特異的抗体を用いてウエスタンブロット法により評価した。U1−59のペルツズマブ、トラスツズマブ、又はラパチニブのいずれかとの併用は、単剤処置に比べて、試験した全ての細胞型においてHER−3、Akt、及びERKのリン酸化をさらに低下させた。U1−59とセツキシマブとの併用は、これらのアッセイにおいて相乗作用を余り効率よく与えていないようであった。
U1−59及びラパチニブのインビボでの併用効果を評価するために、マウスにヒト乳癌細胞(HCC−1569)を移植し、U1−59及びラパチニブのそれぞれ単独又は併用して処置した。腫瘍を100mm3より大きいかあるいは等しいサイズにまで到達させ、次いでマウスを対照、ラパチニブ、U1−59又はラパチニブ及びU1−59の併用で処置した。図19に示すように、U1−59単独では、HCC−1569腫瘍の増殖を阻害しなかったし、またラパチニブ単独では、対照と比較していくらかはあったが、有意の腫瘍増殖阻害をもたらさなかった(p=0.16)。しかしながら、ラパチニブのU1−59との併用は、腫瘍増殖の有意な阻害を来たした(p<0.02対対照又はp<0.05対ラパチニブ)。
抗HER−3mAbは、悪性腫瘍疾患の診断に使用できる。HER−3は、正常な組織と比べて極めて異なった様式で腫瘍細胞上に発現しており、従って、HER−3の発現分析は、固形腫瘍の一次診断、固形腫瘍の病期診断及び悪性度分類、増殖性疾患及び腫瘍形成の予後兆候の判定基準の評価並びにHER−3陽性腫瘍を有する患者におけるリスク管理を補助する。
試料中のHER−3抗原検出用酵素結合免疫吸着法(ELISA)が開発されている。本アッセイでは、96ウェルミクロタイタ−プレ−ト又は384ウェルマイクロタイタ−プレ−トなどのマイクロタイタ−プレ−トのウェルに、HER−3抗原に対して向けられた第一の完全なヒトモノクロ−ナル抗体を数時間吸着させる。固定化された抗体は、検査試料中に存在し得るHER−3抗原の何れかに対する捕捉抗体としての役割を果たす。ウェルを濯ぎ、ミルクタンパク質又はアルブミンなどのブロッキング剤で処理して、分析物の非特異的吸着を防ぐ。
IHCによる組織切片中のHER3抗原を測定するために、まず、パラフィンで包埋された組織を、2回、5分間、キシレン中でパラフィンを除去し、次いで、100%エタノ−ルで3分間、2回、95%エタノ−ルで1分間、水和し、蒸留水中で濯いだ。エピト−プのアンマスキング、酵素消化又はサポニンによって、ホルマリン固定及びパラフィン包埋によって遮蔽された抗原エピト−プを露出させる。エピト−プのアンマスキングのために、例えば、2NHCl溶液(pH1.0)のようなエピト−プ回収溶液中で、20〜40分間にわたって、蒸し器、水槽又は電子レンジ中でパラフィン部分を加熱する。酵素消化の場合は、プロテイナ−ゼK、トリプシン、プロナ−ゼ、ペプシンなどの異なる酵素溶液中、37℃で10〜30分間、組織切片をインキュベ−トする。
ヒト血清中のHER−3レベルを定量するために、サンドイッチELISAが開発される。サンドイッチELISA中で使用される2つの完全なヒトモノクロ−ナル抗HER−3抗体は、HER−3分子上の異なるドメインを認識し、結合に関して競合しない。例えば、実施例8を参照。以下のようにして、ELISAを行う。2μg/mLの濃度の、コ−ティング緩衝液(0.1MNaHCO3、pH9.6)中の捕捉抗HER−3抗体50μLを、ELISAプレ−ト(Fisher)上に被覆した。4℃で一晩インキュベ−トした後、ブロッキング緩衝液200μL(PBS中、0.5%BSA、0.1%Tween20、0.01%チメロサ−ル)で、25℃で1時間、プレ−トを処理する。PBS(洗浄緩衝液、WB)中の0.05%Tween20を用いて、プレ−トを洗浄した(3回)。50%ヒト血清を含有するブロッキング緩衝液中で正常な血清又は患者の血清(Clinomics, Bioreclaimation)を希釈する。4℃で一晩、血清試料とともにプレ−トをインキュベ−トし、洗浄緩衝液で洗浄し、次いで、25℃で1時間、ビオチン化された検出抗HER−3抗体100μL/ウェルとともにインキュベ−トする。洗浄後、HRP−ストレプトアビジンとともにプレ−トを15分間インキュベ−トし、前述のように洗浄し、次いで、発色させるために、H2O2中のo−フェニレンジアミン(Sigma発色溶液)100μL/ウェルで処理する。H2SO4(2M)の50μL/ウェルで反応を停止させ、492nmでELISAプレ−トリ−ダ−を用いて分析する。4パラメ−タ−曲線フィッティングプログラムを用いて、精製されたHER−3抗原の希釈と比較することによって、血清試料中のHER−3抗原の濃度を計算する。
項目A、B及びCでの記載及び論じた結果に基づき、HER−3抗原の発現レベルに基づいて、被験者での癌の病期診断をすることが可能である。所定のタイプの癌に対し、疾病の進行における様々な段階にあるとして、及び/又は癌の治療処置における様々な点にあるとして診断された被験者から血液試料を採取する。血液試料中に存在するHER−3抗原の濃度は、存在する抗原の量を特異的に測定する方法を用いて決定される。このような方法には、項目A及びBに記載されている方法などのELISA法が含まれる。進行又は治療の各段階に対して統計学的に有意な結果を与える試料の集団を用いて、各段階に関して特徴的であると考え得るHER−3抗原の濃度範囲が示される。
・抗HER−2mAbを用いる治療に適格でない患者
・抗HER−1mAb又は小分子抗EGF−R阻害薬に対して耐性を有する患者
・エルロチニブ又はゲフィチニブに対して耐性を示す非小細胞肺癌(NSCLC)を有する患者
腫瘍を有するヒト患者における抗HER−3抗体治療のインビボでの効果を決定するために、抗HER−3抗体の有効量を、ある時間にわたって、このようなヒト患者に注射する。治療の間、周期的にヒト患者はモニタ−され、腫瘍が進行するかどうか、特に、腫瘍が増殖及び転移するかどうかを決定する。
抗HER−3抗体抱合体のインビボでの効果を決定するために、抗HER−3抗体抱合体の有効量を、一定の期間にわたって、腫瘍の兆候を示すヒト患者又は動物に注射する。例えば、投与される本発明の抗HER−3抗体抱合体は、DM1−抗HER−3抗体抱合体、アウリスタチン−抗HER−3抗体抱合体又は放射性同位体−抗HER−3抗体抱合体である。治療の間、周期的に、ヒト患者又は動物はモニタ−され、腫瘍が進行するかどうか、特に、腫瘍が増殖及び転移するかどうかを決定する。
前臨床薬物動態(PK)、BxPC3異種移植片マウスの抗腫瘍有効性及び薬力学的(PD)デ−タを使用して客観的反応に対する最小有効用量レジメンを予想するために前臨床モデリングを使用する研究を行った。
A549細胞をHam’sF−12培地(Gibco)中に蒔いた。全ての培地は、10%FBS(Hyclone、Logan,UT)及び1XL−グルタミン(Gibco)で補充されていた。細胞を一昼夜血清飢餓状態にした。培地を新鮮な無血清培地に変え、50μg/mlのU1−59又は5μMのゲフィチニブ単独、又はU1−59とゲフィチニブを併用して37℃で1又は24時間、細胞を処置した。それぞれの処置時点の後、細胞を冷PBSで洗浄し、200μMフェニルメタンスルフォニルフルオライド(PMSF)(Fluka Biochemica)、200μM Haltプロテア−ゼインヒビタ−カクテルキット(protease inhibitor coktail kit)(Pierce Biotechnology)及び200μMオルトバナジン酸ナトリウム(Sigma−Aldrich, St.Louis, MO)を含有するRIPA緩衝液(20mM Tris−HCl pH7.5、1%Igepal、1%デオキシコ−ル酸ナトリウム、150mM NaCl,0.1% SDS、1% Triton X−100)を使用して溶解させた。溶解物は、QIAシュレッダ−カラム(Qiagen)を通過させ、通過画分は、分光光度計(Beckman Coulter, Fullerton, CA)を使用して定量化した。ウェエ当たり50μgのタンパク質は、製造業者のプロトコルに従い、ELISA Duoset(R&D systems)を使用し、pHERについて繰り返し分析した。結果を図20に示す。
本発明は、その詳細な記載と一体となって記載されているが、上記記載は、添付したクレ−ムの範囲によって定義される本発明の範囲を説明するものであり、限定するものではないことは理解されるべきである。他の態様、利点及び変更は以下のクレ−ムの範囲内にある。
Claims (50)
- 第1の薬剤と第2の薬剤を被験者に投与することを含んでなる、被験者においてHER−3と関連した疾患を治療または予防する方法であって、第1の薬剤がHER−3に結合するものであり、そして第2の薬剤がHERファミリ−の別のメンバ−に結合するおよび/またはその活性を阻害するものである、方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する小分子化合物または抗原結合タンパク質である、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、
配列番号236、251、252、および256からなる群より選択されるCDRH1;配列番号258、278、280、および282からなる群より選択されるCDRH2;および配列番号283、285、309、313、および315からなる群より選択されるCDRH3を含む重鎖アミノ酸配列;および
配列番号320、334、337、および340からなる群より選択されるCDRL1;配列番号343、356、351、および344からなる群より選択されるCDRL2;および配列番号360、381、385、および387からなる群より選択されるCDRL3を含む軽鎖アミノ酸配列;
を含んでなる、請求項1記載の方法。 - 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ(a)配列番号236、251、252、および256に示されるCDRH1;(b)配列番号258、278、280、および282に示されるCDRH2;および(c)配列番号283、285、309、313、および315に示されるCDRH3からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む重鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ(d)配列番号320、334、337、および340に示されるCDRL1;(e)配列番号343、356、351、および344に示されるCDRL2;および(f)配列番号360、381、385、および387に示されるCDRL3からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ(a)配列番号236、251、252、および256に示されるCDRH1;(b)配列番号258、278、280、および282に示されるCDRH2;および(c)配列番号283、285、309、313、および315に示されるCDRH3からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む重鎖アミノ酸配列と、(d)配列番号320、334、337、および340に示されるCDRL1;(e)配列番号343、356、351、および344に示されるCDRL2;および(f)配列番号360、381、385、および387に示されるCDRL3からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号236、251、252、および256からなる群より選択されるCDRH1、配列番号258、278、280、および282からなる群より選択されるCDRH2、および配列番号283、285、309、313、および315からなる群より選択されるCDRH3を含む重鎖アミノ酸配列、または配列番号320、334、337、および340からなる群より選択されるCDRL1、配列番号343、356、351、および344からなる群より選択されるCDRL2、および配列番号360、381、385、および387からなる群より選択されるCDRL3を含む軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号42、54、70、92、および96からなる群より選択される重鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質が配列番号44、56、72、94、および98からなる群より選択される軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項8記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号42、54、70、92、および96からなる群より選択される重鎖アミノ酸配列と、配列番号44、56、72、94、および98からなる群より選択される軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号42の重鎖アミノ酸配列および配列番号44の軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号54の重鎖アミノ酸配列および配列番号56の軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号70の重鎖アミノ酸配列および配列番号72の軽鎖アミノ酸配列を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号283、285、309、313、および315からなる群より選択されるCDRH3を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 第1の薬剤が、HER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号360、381、385、および387からなる群より選択されるCDRL3を含んでなる、請求項1記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質がHER−3の細胞外ドメインに対して向けられたものである、請求項3〜15のいずれか一項記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質のHER−3への結合がHER−3介在シグナル伝達を減少させる、請求項3〜15のいずれか一項記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質のHER−3への結合がHER−3リン酸化を減少させる、請求項3〜15のいずれか一項記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質のHER−3への結合が細胞増殖を減少させる、請求項3〜15のいずれか一項記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質のHER−3への結合が細胞移動を減少させる、請求項3〜15のいずれか一項記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質のHER−3への結合がHER−3のダウンレギュレ−ションを増加させる、請求項3〜20のいずれか一項記載の方法。
- HER−3に結合する前記抗原結合タンパク質が抗体である、請求項3〜20のいずれか一項記載の方法。
- 前記抗体がモノクロ−ナル抗体、ポリクロ−ナル抗体、組換え抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、キメラ抗体、多重特異性抗体、またはその抗体フラグメントである、請求項22記載の方法。
- 前記抗体フラグメントがFabフラグメント、Fab’フラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメント、ダイアボディ、または一本鎖抗体分子である、請求項23記載の方法。
- 前記抗体がIgG1−、IgG2−、IgG3−またはIgG4−タイプのものである、請求項22記載の方法。
- 第1の薬剤がHER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、その抗原結合タンパク質がエフェクタ−グル−プに結合されている、請求項1記載の方法。
- 前記エフェクタ−グル−プが放射性同位元素もしくは放射性核種、毒素、または治療薬もしくは化学療法薬グル−プである、請求項26記載の方法。
- 前記治療薬もしくは化学療法薬グル−プがカリケアマイシン、アウリスタチン−PE、ゲルダナマイシン、メイタンシンおよびそれらの誘導体からなる群より選択される、請求項27記載の方法。
- 第2の薬剤が小分子化合物または抗原結合タンパク質である、請求項1〜15のいずれか一項記載の方法。
- 第2の薬剤がトラスツズマブである、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がラパチニブおよびネラチニブからなる群より選択される、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がパニツムマブである、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がエルロチニブである、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がセツキシマブである、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がペルツズマブである、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がア−ビタックスである、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤がT−DM1である、請求項29記載の方法。
- 第1の薬剤と第2の薬剤を被験者に投与することを含んでなる、被験者においてHER−3と関連した疾患を治療または予防する方法であって、第1の薬剤がHER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号42の重鎖アミノ酸配列および配列番号44の軽鎖アミノ酸配列を含んでなり、そして第2の薬剤がエルロチニブ、ラパチニブ、ネラチニブおよびペルツズマブからなる群より選択される、方法。
- 第1の薬剤と第2の薬剤を被験者に投与することを含んでなる、被験者においてHER−3と関連した疾患を治療または予防する方法であって、第1の薬剤がHER−3に結合する抗原結合タンパク質であり、かつ配列番号42の重鎖アミノ酸配列および配列番号44の軽鎖アミノ酸配列を含んでなり、そして第2の薬剤がトラスツズマブ、T−DM1、パニツムマブ、ア−ビタックス、およびセツキシマブからなる群より選択される、方法。
- 場合により、さらなる治療薬および/または放射線療法を投与することを含む、請求項1記載の方法。
- さらなる治療薬が抗腫瘍薬である、請求項40記載の方法。
- 抗腫瘍薬が抗腫瘍抗体または化学療法薬である、請求項40記載の方法。
- 化学療法薬がカペシタビン、アントラサイクリン、ドキソルビシン、シクロホスファミド、パクリタキセル、ドセタキセル、シスプラチン、ゲムシタビン、およびカルボプラチンからなる群より選択される、請求項42記載の方法。
- 第1の薬剤と第2の薬剤が静脈内、皮下、筋肉内または経口投与により投与される、請求項29記載の方法。
- 前記疾患が過剰増殖性疾患である、請求項29記載の方法。
- 前記疾患が乳癌、卵巣癌、前立腺癌、結腸癌、腎癌、肺癌、膵臓癌、類表皮癌、線維肉腫、黒色腫、上咽頭癌、および扁平上皮細胞癌からなる群より選択される、請求項29記載の方法。
- 第1の薬剤を約1〜約20mg/kg体重の用量で6週間に少なくとも1回投与することを含む、請求項29記載の方法。
- 第2の薬剤を約1〜約20mg/kg体重の用量で6週間に少なくとも1回投与することを含む、請求項29記載の方法。
- 投与に先立って、HER−3と関連した疾患を有する被験者を選択するための予測マ−カ−の解析を含む方法を用いることをさらに含む、請求項29記載の方法。
- 投与後、治療結果をモニタリングすることをさらに含む、請求項29記載の方法。
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