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ES2647466T3 - Materiales y métodos para tratar o prevenir las enfermedades asociadas a HER-3 - Google Patents

Materiales y métodos para tratar o prevenir las enfermedades asociadas a HER-3 Download PDF

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ES2647466T3
ES2647466T3 ES15154165.3T ES15154165T ES2647466T3 ES 2647466 T3 ES2647466 T3 ES 2647466T3 ES 15154165 T ES15154165 T ES 15154165T ES 2647466 T3 ES2647466 T3 ES 2647466T3
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ES
Spain
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agent
antibody
cells
antibodies
directed against
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ES15154165.3T
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English (en)
Inventor
Thore Hettmann
Daniel J. Freeman
Robert Radinsky
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Daiichi Sankyo Europe GmbH
Amgen Inc
Original Assignee
Daiichi Sankyo Europe GmbH
Amgen Inc
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Publication date
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Abstract

Un primer agente y un segundo agente, donde dicho primer agente es una proteína de unión a antígeno que se une a HER-3 y comprende: una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada que comprende una CDRH1 como se muestra en la SEQ ID NO: 256; una CDRH2 como se muestra en la SEQ ID NO: 282; una CDRH3 como se muestra en la SEQ ID NO: 315; y una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera que comprende una CDRL1 como se muestra en la SEQ ID NO: 340; una CDRL2 como se muestra en la SEQ ID NO: 344; una CDRL3 como se muestra en la SEQ ID NO: 387, y donde el segundo agente es Erlotinib, para uso en el tratamiento o la prevención del cáncer de pulmón.

Description

imagen1
DESCRIPCIÓN
Materiales y métodos para tratar o prevenir las enfermedades asociadas a HER-3
5 Antecedentes 1. Campo técnico
Este documento se refiere a materiales y métodos para tratar sujetos que tienen cáncer de pulmón administrando un primer agente que se une a HER-3, en combinación con Erlotinib.
2. Antecedentes
HER-3, conocido también como ErbB3, es un receptor de la proteína tirosina quinasa que pertenece a la familia de
15 receptores del factor de crecimiento epidérmico (EGF-R, conocido también como HER) de receptores de las proteínas tirosina quinasas, que incluye también HER-1 (conocido también como EGF-R o erbB), HER-2 (conocido también como erbB2), y HER-4 (conocido también como erbB4) (Plowman et al. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:4905-4909; Kraus et al. (1989) Proc. Natl. Acad Sci. USA 86:9193-9197; y Kraus et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:2900-2904). De la misma forma que el receptor prototípico del factor de crecimiento epidérmico, el receptor HER-3 transmembrana consiste en un dominio extracelular de unión a ligando (ECD), un dominio de dimerización en el ECD, un dominio transmembrana (TMD), un dominio intracelular de la proteína tirosina quinasa (TKD), y un dominio de fosforilación en el extremo C.
El ligando de HER-3, conocido como heregulina (HRG), se une al dominio extracelular de HER-3 y activa la
25 señalización mediada por receptor promoviendo la dimerización con otros miembros de la familia de receptores del factor de crecimiento epidérmico humano (HER), posterior a la transfosforilación del dominio HER-3 intracelular, y la activación de las cascadas de señalización posteriores. La formación de dímeros con múltiples miembros de la familia HER expande el potencial de señalización de HER-3 y esto es un medio para la diversificación de la señal así como la amplificación de la señal. La solicitud internacional WO 2007/077028 divulga anticuerpos dirigidos contra HER-3 que incluyen el anticuerpo U1-59 ilustrativo. Además, se sugiere la administración simultánea del anticuerpo específico erbitux dirigido contra EGFR. El documento WO 2008/100624 divulga anticuerpos dirigidos contra HER-3 y el uso de los mismos en el tratamiento de enfermedades cancerosas. Además, se divulgan inmunoconjugados de los anticuerpos descritos con principios activos adicionales.
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Sumario
Este documento se refiere a combinaciones de un primer y un segundo agente para su uso en el tratamiento o la prevención del cáncer de pulmón, administrando un agente que se une a HER-3, en combinación con un segundo agente que se une a y/o inhibe otro miembro de la familia HER. El segundo agente es Erlotinib. El primer agente es una proteína de unión a antígeno que se une a HER-3 y comprende una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada que comprende una CDRH11 como se muestra en la SEQ ID 256; una CDRH2 como se muestra en la SEQ ID NO 282; y una CDRH3 como se muestra en la SEQ ID NO 315; y una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera que comprende una CDRL1 como se muestra en la SEQ ID NO 340; una CDRL2
45 como se muestra en la SEQ ID NO 344; y una CDRL3 como se muestra en la SEQ ID NO 387. Se proporcionan otras proteínas de unión a Her3 solo como ejemplos comparativos.
De acuerdo con la invención, el primer agente puede ser una proteína de unión a antígeno que se une a HER-3 y comprende una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada como se muestra en la SEQ ID NO 70. La proteína de unión a antígeno puede incluir una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera como se muestra en la SEQ ID NO 72.
La proteína de unión a antígeno se puede dirigir contra el dominio extracelular de HER-3. La unión de la proteína de unión a antígeno con HER-3 puede reducir la transducción de la señal mediada por HER-3, reducir la fosforilación de
55 HER-3, reducir la proliferación celular, reducir la migración celular, y/o aumentar la regulación por defecto de HER-3.
La proteína de unión a antígeno que se une a HER-3 puede ser un anticuerpo. El anticuerpo puede ser un anticuerpo monoclonal, un anticuerpo policlonal, un anticuerpo recombinante, un anticuerpo humanizado, un anticuerpo humano, un anticuerpo quimérico, un anticuerpo multiespecífico o un fragmento de unión a antígeno del mismo (por ejemplo, un fragmento Fab, un fragmento Fab', un fragmento F(ab')2, un fragmento Fv, un diacuerpo, o una molécula de anticuerpos monocatenaria). El anticuerpo puede ser del tipo IgG1, IgG2, IgG3 o IgG4.
El primer agente puede ser una proteína de unión a antígeno que se une a HER-3, y la proteína de unión a antígeno puede acoplarse a un grupo efector. El grupo efector puede ser un radioisótopo o un radionucleido, una toxina, o un
65 grupo terapéutico o un grupo quimioterapéutico (por ejemplo, un grupo terapéutico o quimioterapéutico seleccionado entre el grupo que consiste en caliqueamicina, auristatina-PE, geldanamicina, maitansina y los derivados de las mismas).
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El segundo agente es erlotinib. Se proporcionan otros agentes como ejemplos comparativos.
5 Los métodos descritos en el presente documento pueden incluir opcionalmente administrar un tercer o agente terapéutico adicional y/o tratamiento de radiación. El tercer o agente terapéutico adicional puede ser un agente antineoplásico (por ejemplo, un anticuerpo antitumoral o un agente quimioterapéutico, tal como capecitabina, antraciclina, doxorrubicina, ciclofosfamida, paclitaxel, docetaxel, cisplatino, gemcitabina, o carboplatino).
El primer agente y el segundo agente pueden administrarse mediante administración intravenosa, subcutánea, intramuscular u oral. De acuerdo con la invención, la enfermedad es cáncer de pulmón. Otras enfermedades hipoproliferativas (por ejemplo, una enfermedad seleccionada entre el grupo que consiste en cáncer de mama, cáncer de ovario, cáncer de próstata, cáncer de colon, cáncer renal, cáncer de páncreas, carcinoma epidermoide, fibrosarcoma, melanoma, carcinoma nasofaríngeo, y carcinoma escamocelular) se presentan como ejemplos
15 comparativos.
Los métodos del presente documento pueden incluir administrar el primer agente a una dosis de aproximadamente 1 a aproximadamente 20 mg/kg de peso corporal, al menos una vez cada 6 semanas. Los métodos pueden incluir administrar el segundo agente a una dosis de aproximadamente 1 a aproximadamente 20 mg/kg de peso corporal, al menos una vez cada 6 semanas. Los métodos pueden incluir además, antes de la administración, utilizar un método que comprende el análisis de un marcador predictivo para seleccionar un sujeto que tiene una enfermedad asociada con HER-3. Los métodos pueden incluir además después de la administración, vigilar el resultado terapéutico.
A menos que se definan de otro modo, todos los términos técnicos y científicos utilizados en el presente documento
25 tienen el mismo significado que el que entiende comúnmente una persona normalmente experta en la técnica a la cual pertenece la presente invención. Aunque se pueden usar métodos y materiales similares o equivalentes a los descritos en el presente documento para llevar a la práctica la presente invención, se describen a continuación métodos y materiales adecuados. En caso de conflicto, prevalecerá la presente memoria descriptiva, incluyendo las definiciones. Además, los materiales, métodos, y ejemplos son solo ilustrativos y no se pretende que sean limitantes.
Los detalles de una o más realizaciones de la invención se muestran en los dibujos acompañantes y en la descripción a continuación. Otras características, objetos y ventajas de la invención serán evidentes a partir de la descripción y los dibujos, y a partir de las reivindicaciones.
35 Breve descripción de los dibujos
La FIG. 1 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3 y panitumumab, tanto solo como combinado, sobre el crecimiento de un xenoinjerto de tumor (Calu-3) de un cáncer de pulmón no microcítico (NSCLC). (Ejemplo comparativo) La FIG.2 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3 y erlotinib, tanto solo como combinado, sobre el crecimiento de Calu-3. La FIG.3 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con c2C4 (un inhibidor de la dimerización de HER2), o trastuzumab sobre el crecimiento independiente del anclaje basal de células SkBr-3 de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo)
45 La FIG. 4 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con c2C4, trastuzumab, o cetuximab, sobre el crecimiento independiente del anclaje estimulado por HRG de las células SkBr-3 de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo) La FIG. 5 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con 2C4), trastuzumab, o cetuximab, sobre el crecimiento independiente del anclaje basal de células MDA-MB-435 de cáncer de ovario. (Ejemplo comparativo) Las FIGS. 6A-6D son una serie de gráficas que representan los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con trastuzumab (FIG. 6A), lapatinib (FIG. 6B), gemcitibina (FIG. 6C), o cisplatino (FIG. 6D), sobre la proliferación de células MDA-MB-175VII de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo)
55 La FIG. 7 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con c2C4, trastuzumab, o lapatinib, sobre la proliferación estimulada por HRG de las células ZR-75-30 de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo) La FIG. 8 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con c2C4, trastuzumab, o lapatinib, sobre la proliferación estimulada por HRG de las células BT474 de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo) La FIG. 9 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con cetuximab, c2C4, o trastuzumab, sobre la proliferación estimulada por HRG de células DLD-1 de cáncer de colon. (Ejemplo comparativo) La FIG. 10 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo
65 como combinado con c2C4 o trastuzumab, o lapatinib sobre la proliferación estimulada por HRG de células HCC1569 de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo) La FIG. 11 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con 2C4, trastuzumab, o lapatinib, sobre la proliferación estimulada por HRG de células SkBr-3 de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo) La FIG. 12 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo
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5 como combinado con panitumumab sobre la proliferación de células FaDu de cáncer de cabeza y cuello. (Ejemplo comparativo) La FIG. 13 es una fotografía de una transferencia Western que muestra los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con cetuximab, c2C4, o trastuzumab, sobre la fosforilación de Her-3 (panel superior), Akt (panel intermedio), y ERK (panel inferior) en células MDA-MB-175VII de cáncer de mama. (Ejemplo comparativo) La FIG. 14 es una fotografía de una transferencia Western que muestra los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con cetuximab, c2C4, trastuzumab, o lapatinib, sobre la fosforilación de Her-3 (panel superior), Akt (panel intermedio), y ERK (panel inferior) en células SkBr-3 estimuladas por HRG. (Ejemplo comparativo)
15 La FIG. 15 es una fotografía de una transferencia Western que muestra los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con cetuximab, pertuzumab (c2C4), o trastuzumab, sobre la fosforilación de HER-3 (panel superior) o Akt (panel inferior) en células Ls174T de cáncer de colon estimuladas por HRG. (Ejemplo comparativo) La FIG. 16 es una fotografía de una transferencia Western que muestra los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con cetuximab, c2C4, o trastuzumab, sobre la fosforilación de Her-3 (panel superior), Akt (panel intermedio), y ERK (panel inferior) en células HCC 1569 estimuladas por HRG. (Ejemplo comparativo) La FIG. 17 es una fotografía de una transferencia Western que muestra los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con panitumumab, sobre la fosforilación de Akt, PGFR, HER
25 2, HER-3, HER-4, y ERK en células A549 epiteliales alveolares. Banda 1, IgG del control; banda 2, panitumumab, solo; banda 3, U1-59, solo; banda 4, U1-59, en combinación con panitumumab. Se usó tubulina como un control para una carga igual. (Ejemplo comparativo) La FIG. 18 es una fotografía de una transferencia Western que muestra los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3, tanto solo como combinado con panitumumab o lapatinib, sobre la fosforilación de HER-3, Akt, HER-2, ERK, y EGF-R en células Calu3 de NSCLC. Banda 1, IgG del control; banda 2, panitumumab solo; banda 3, U1-59 solo; banda 4, lapatinib solo; banda 5, U1-59 combinado con panitumumab; banda 6, U1-59 combinado con lapatinib. (Ejemplo comparativo) La FIG. 19 es una gráfica que representa los efectos de un anticuerpo humano dirigido contra HER-3 y lapatinib, tanto solo como combinado, sobre el crecimiento de un xenoinjerto de tumor de cáncer de mama (HCC-1569).
35 (Ejemplo comparativo) La FIG. 20 muestra que el tratamiento de las células A549 de NSCLC con U1-59 inhibe la fosforilación de HER3 y reduce la reactivación tras el tratamiento con gefitinib. Las células A549 se trataron con gefitinib, U1-59 o ambos, y se evaluó la fosforilación de HER3 mediante análisis ELISA. El tratamiento con gefitinib durante 1 hora dio como resultado la inhibición parcial de la fosforilación de HER, que se invirtió para controlar los niveles después de 24 horas. Por el contrario, el tratamiento con U1-59 condujo a una inhibición mayor de la fosforilación de HER que continuó después de 24 horas. El tratamiento combinado con ambos agentes evitó la inversión de la inhibición observada después de 24 horas en células tratadas solo con gefitinib. Los experimentos se llevaron a cabo en pocillos triplicados y se repitieron al menos 2 veces. Los resultados se expresaron como promedio ± SEM. (Ejemplo comparativo)
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Descripción detallada
Los encabezados de sección utilizados en el presente documento tienen fines organizativos solamente, y no deben considerarse como limitantes de la materia sujeto descrita.
Salvo que se defina de otra forma en el presente documento, los términos científicos y términos utilizados vinculados con la presente solicitud deberán tener los significados que entienden comúnmente las personas normalmente expertas en la técnica. Además, salvo que se requiera de otra forma por el contexto, los términos singulares deberán incluir las formas plurales y los términos plurales deberán incluir el singular.
55 En general, las nomenclaturas usadas vinculadas con, y las técnicas de, cultivo celular y cultivo de tejidos, biología molecular, inmunología, microbiología, genética y química e hibridación de proteínas y de ácidos nucleicos descritas en el presente documento son aquellas bien conocidas y comúnmente utilizadas en la técnica. Los métodos y técnicas de la presente solicitud se llevan a cabo generalmente de acuerdo con los métodos convencionales bien conocidos en la técnica y según se describen en diversas referencias generales y más específicas que se citan y describen en la totalidad de la presente memoria descriptiva salvo que se indique otra cosa. Véase, por ejemplo, Sambrook y col., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y. (2001), Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Associates (1992), y Harlow y Lane Antibodies: A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.
65 (1990), Las reacciones enzimáticas y las técnicas de purificación se llevan a cabo de acuerdo con las especificaciones del fabricante, como comúnmente se realizan en la técnica o como se describen en el presente documento. La terminología utilizada vinculada con, y los procedimientos de laboratorio y las técnicas de, la química analítica, la química orgánica sintética, y la química médica y farmacéutica descritas en el presente documento son aquellas bien conocidas y comúnmente utilizadas en la materia. Se pueden utilizar técnicas normalizadas para las síntesis
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5 químicas, análisis químicos, preparaciones farmacéuticas, formulaciones, y administración, y tratamiento de pacientes.
Debe entenderse que la presente invención no está limitada a la metodología, protocolos, y reactivos concretos, etc., descritos en el presente documento y como tal puede variar. La terminología utilizada en el presente documento tiene como propósito únicamente describir realizaciones particulares, y no se pretende que limite el alcance de lo divulgado, que está definido únicamente por las reivindicaciones.
Excepto en los ejemplos operativos, o donde se indique lo contrario, todos los números que expresan cantidades de ingredientes o condiciones de reacción utilizados en el presente documento deben entenderse como modificados en
15 todos los casos por el término "aproximadamente". El término "aproximadamente" cuando se usa vinculado a porcentajes puede significar +/-0,1%.
1. Panorama general
Este documento describe materiales y métodos relacionados con el tratamiento o la prevención de enfermedades asociadas con HER-3, utilizando una combinación de un primer agente que se une a HER-3 y un segundo agente que se une a/o inhibe la actividad de otros miembros de la familia HER. La materia sujeto de la invención es un primer agente y un segundo agente, donde dicho primer agente es una proteína de unión a antígeno que se une a HER-3 y comprende: una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada que comprende una CDRH1 como se
25 muestra en la SEQ ID NO: 256; una CDRH2 como se muestra en la SEQ ID NO: 282; una CDRH3 como se muestra en la SEQ ID NO: 315; y una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera que comprende una CDRL1 como se muestra en la SEQ ID NO: 340; una CDRL2 como se muestra en la SEQ ID NO: 344; una CDRL3 como se muestra en la SEQ ID NO: 387, y donde el segundo agente es Erlotinib, para uso en el tratamiento o la prevención del cáncer de pulmón.
2. Agentes de unión a HER-3
Como se describe en el presente documento, el agente que se une a HER-3 es una proteína de unión a antígeno, tal como un anticuerpo. Como se usa en el presente documento, una "proteína de unión a antígeno" o "proteína de
35 unión", como se usa en el presente documento significa una proteína que se une específicamente a un antígeno diana especificado, es decir, HER-3. Se dice que una proteína de unión a antígeno se "une específicamente" a su antígeno diana cuando la constante de disociación (KD) es ≤10-8 M. El anticuerpo se une específicamente al antígeno con "alta afinidad" cuando la KD es ≤5x10-9 M, y con "muy alta afinidad" cuando la KD es ≤5x10-10 M. En una realización, el anticuerpo tiene una KD de ≤10-9 M y una velocidad de disociación de aproximadamente 1x10-4/s. En una realización, la velocidad de disociación es aproximadamente 1x105/s. En otras realizaciones, los anticuerpos se unirán a un miembro especificado de la familia HER con una KD de entre aproximadamente 10-8 M y 10-10 M, y en otra realización más se unirá con una KD ≤2x10-10 .
Un anticuerpo dirigido a HER-3 se puede dirigir contra el dominio extracelular (ECD) de HER-3. Por ejemplo, un
45 anticuerpo dirigido contra HER-3 como se describe en el presente documento puede interactuar con al menos un epítopo de la parte extracelular de HER-3. Los epítopos pueden localizarse en el dominio L1 del extremo amino (aa 19-184), en los dominios S1 (aa 185-327) y S2 (aa 500-632) ricos en cisteína, en el dominio L2 (328-499) que está flanqueado por los dos dominios ricos en cisteína, o en una combinación de los dominios HER-3. Los epítopos pueden localizarse también en combinaciones de dominios tales como, sin limitación, un epítopo constituido por partes de L1 y S1.
Una proteína de unión a HER-3 se puede caracterizar adicionalmente por que su unión a HER-3 reduce la transducción de la señal mediada por HER-3. Una reducción de la transducción de la señal mediada por HER-3 puede, por ejemplo, producirse por una regulación por defecto de HER-3 dando como resultado una desaparición al
55 menos parcial de moléculas HER-3 de la superficie celular o mediante una estabilización de HER-3 sobre la superficie celular en una forma sustancialmente inactiva, es decir, una forma que presenta una transducción de la señal más baja en comparación con la forma no estabilizada. Como alternativa, una reducción de la transducción de la señal mediada por HER-3 también puede causarse alterando, por ejemplo, disminuyendo o inhibiendo, la unión de un ligando u otro miembro de la familia HER a HER-3. Por ejemplo, se puede producir también una reducción de la transducción de la señal mediada por HER-3, disminuyendo la formación de dímeros que contienen HER-3 con los otros miembros de la familia HER (por ejemplo, EGF-R).
Un agente de unión a HER-3 puede ser una proteína estructural que tiene una actividad de unión de tipo anticuerpo (por ejemplo, que tiene una actividad similar a un anticuerpo dirigido contra HER-3) o un anticuerpo, es decir, un 65 anticuerpo dirigido contra HER-3. Como se usa en el presente documento, el término "proteína estructural" significa un polipéptido o proteína con áreas superficiales expuestas donde las inserciones, sustituciones o deleciones de aminoácidos son muy tolerables. Los ejemplos de proteínas estructurales que se pueden utilizar de acuerdo con los presentes métodos incluyen la proteína A de Staphylococcus aureus, la proteína de unión a bilin de Pieris brassicae u otras lipocalinas, las proteínas de repetición ankyrin, y la fibronectina humana (revisado en Binz y Plückthun (2005) Curr. Opin. Biotechnol. 16:459-69). El diseño mediante ingeniería genética de una proteína estructural puede 5 considerarse como un injerto o integración de una función de afinidad sobre o en el marco estructural de una proteína plegada de forma estable. La función de afinidad significa una afinidad de unión a proteína de acuerdo con el presente documento. Una estructura puede ser estructuralmente separable de las secuencias de aminoácidos que confieren especificidad de unión. En general, las proteínas que parecen adecuadas para el desarrollo de dichos reactivos de afinidad artificiales pueden obtenerse mediante técnicas de ingeniería genética lógicas, o de forma más común, mediante técnicas de ingeniería genética combinatoria de proteínas tales como cribado frente a la proteína HER-3, ya sea purificada o bien la proteína expresada sobre la superficie celular, para reconocer agentes de unión en una biblioteca de estructuras artificiales expresada in vitro, artes conocidas por los expertos en la técnica (véase, por ejemplo, Skerra (2000) J. Mol. Recog. 13:167-87; y Binz y Plückthun, anteriormente). Además, una proteína estructural que tiene una actividad de unión de tipo anticuerpo se puede derivar a partir de un polipéptido aceptor
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15 que contiene el dominio de la proteína, que se puede injertar en los dominios de unión de un polipéptido donante para conferir especificidad de unión del polipéptido donante sobre el dominio estructural que contiene el polipéptido aceptor. Los dominios de unión insertados pueden ser, por ejemplo, la región determinante de la complementariedad (CDR) de un anticuerpo, en particular un anticuerpo dirigido contra HER-3. La inserción puede llevarse a cabo por diversos métodos conocidos de los expertos en la materia incluyendo, por ejemplo, síntesis de polipéptidos, síntesis de ácidos nucleicos de un aminoácido codificante así como diversas formas de métodos recombinantes bien conocidas por los expertos en la materia.
El término "anticuerpo" incluye anticuerpos monoclonales, anticuerpos policlonales, anticuerpos recombinantes, anticuerpos humanizados (Jones et al. (1986) Nature 321:522-525; Riechmann et al. (1988) Nature 332:323-329; y
25 Presta (1992) Curr. Op. Struct. Biol. 2:593-596), anticuerpos quiméricos (Morrison et al. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81:6851-6855), anticuerpos multiespecíficos (por ejemplo, anticuerpos biespecíficos) formados a partir de al menos dos anticuerpos, o fragmentos de anticuerpos de los mismos. El término "fragmento de anticuerpo" comprende cualquier porción de los anticuerpos anteriormente mencionados, tales como sus regiones de unión a antígeno o las regiones variables. Los ejemplos de fragmentos de anticuerpos incluyen fragmentos Fab, fragmentos Fab', fragmentos F(ab’)2, fragmentos Fv, diacuerpos (Hollinger et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:64446448), moléculas de anticuerpos monocatenarios (Plückthun in: The Pharmacology of Monoclonal Antibodies 113, Rosenburg y Moore, eds., Springer Verlag, NY (1994), 269-315) y otros fragmentos siempre que presenten la capacidad de unión a HER-3 deseada.
35 Además, el término "anticuerpo", como se usa en el presente documento, incluye moléculas de tipo anticuerpo que contienen subdominios de anticuerpos diseñados mediante ingeniería genética o variantes de anticuerpos que se producen naturalmente. Estas moléculas de tipo anticuerpo pueden ser anticuerpos de dominio único tales como los dominios VH único o VLúnico derivados tanto de fuentes naturales como los camélidos (Muyldermans et al. (2001) Rev. Mol. Biotechnol. 74:277-302) como de la expresión in vitro de bibliotecas procedentes de seres humanos, camélidos u otras especies (Holt et al. (2003) Trends Biotechnol. 21:484-90).
Un "fragmento Fv" es el fragmento de anticuerpo mínimo que contiene un sitio de reconocimiento y unión a antígeno completo. Esta región consiste en un dímero de un dominio variable de cadena pesada y un dominio variable de cadena ligera en estrecha asociación no covalente. Es en esta configuración que las tres CDR de cada dominio
45 variable interactúan para definir un sitio de unión a antígeno sobre la superficie del dímero VH-VL. En su conjunto, las seis CDR confieren al anticuerpo especificidad de unión a un antígeno. Sin embargo, incluso un único dominio variable (o la mitad de un Fv que comprende solo tres CDR específicas para un antígeno) tiene la capacidad de reconocer y unirse al antígeno, aunque usualmente con una afinidad más baja que el sitio de unión completo. El "fragmento Fab" contiene también el dominio constante de la cadena ligera y el primer dominio constante (CH1) de la cadena pesada. El "·fragmento Fab" difiere del "fragmento Fab'" por la adición de unos pocos restos en el extremo carboxi del dominio CH1 de la cadena pesada, incluyendo una o más cisteínas de la región bisara del anticuerpo. El "fragmento F(ab’)2" se produce originalmente como un par de "fragmentos Fab'" que tienen cisteínas bisagras entre ellos. Los métodos de preparar dichos fragmentos de anticuerpos, tales como digestión con papaína o pepsina, son conocidos por los expertos en la materia.
55 Un anticuerpo puede ser del tipo IgA, IgD, IgE, IgG o IgM, incluyendo los tipos IgG o IgM tales como, sin limitación, los tipos IgG1, los tipos IgG2, los tipos IgG3, los tipos IgG4, IgM1 e IgM2. Por ejemplo, en algunos casos, el anticuerpo es del tipo IgG1, IgG2 o IgG4.
En determinados aspectos, por ejemplo, vinculados a la generación de anticuerpos como candidatos terapéuticos contra HER-3, puede ser deseable que un anticuerpo sea capaz de fijar el complemento y participar en la citotoxicidad dependiente del complemento (CDC). Existen numerosos isotipos de anticuerpos que son capaces de lo mismo incluyendo: por ejemplo, IgM de murino, IgG2a de murino, IgG2b de murino, IgG3 de murino, IgM humano, IgG1 humano, IgG3 humano e IgA humano. Se apreciará que los anticuerpos que se generan no necesitan 65 inicialmente poseer dicho isotipo sino, más bien, el anticuerpo que se genera puede poseer cualquier isotipo y el anticuerpo puede tener un isotipo cambiado mediante agregación de los genes de la región V clonados molecularmente o ADNc a genes de la región constante clonados molecularmente, o ADNc en vectores de expresión adecuados usando técnicas de biología molecular convencionales bien conocidas en la materia y expresar a continuación los anticuerpos en células hospedadoras utilizando técnicas conocidas en la materia. El anticuerpo de isotipo cambiado puede poseer también una región Fc que se ha diseñado molecularmente mediante ingeniería 5 genética para poseer una CDC superior sobre las variantes que se producen naturalmente (Idusogie et al. (2001) J. Immunol. 166:2571-2575) y se expresan recombinantemente en células hospedadoras utilizando técnicas conocidas en la materia. Dichas técnicas incluyen el uso de técnicas recombinantes directas (véase, por ejemplo, patente de Estados Unidos 4.816.397), técnicas de fusión célula a célula (véase, por ejemplo, patentes de Estados Unidos números 5.916.771 y 6.207.418), entre otras. En la técnica de fusión célula a célula, un mieloma u otra línea de células tal como CHO se prepara de tal manera que posea una cadena pesada con cualquier isotipo deseado y se prepara otro mieloma u otra línea de células tal como CHO de tal manera que posea la cadena ligera. Dichas células pueden posteriormente fusionarse, y se puede aislar una línea de células que expresa un anticuerpo intacto. A modo de ejemplo, un anticuerpo IgG4 humano dirigido contra HER-3 que posea la unión deseada al antígeno de HER-3 puede tener un isotipo cambiado fácilmente para generar un isotipo de una IgM humana, una IgG1 humana o una
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15 IgG3 humana, aunque sigue teniendo la misma región variable (que define la especificidad del anticuerpo y algo de su afinidad). Dicha molécula podría ser capaz a continuación de fijar el complemento y participar en la CDC.
Además, un anticuerpo puede ser también capaz de unirse a los receptores Fc sobre células efectoras tales como monocitos y linfocitos citolíticos naturales (NK), y participar en la citotoxicidad celular dependiente de anticuerpos (ADCC). Existen numerosos isotipos de anticuerpos que son capaces de lo mismo, incluyendo, sin limitación, los siguientes: IgG2a de murino, IgG2b de murino, IgG3 de murino, IgG1 humana e IgG3 humana. Se apreciará que los anticuerpos que se generan no necesitan inicialmente poseer dicho isotipo sino, más bien, el anticuerpo que se genera puede poseer cualquier isotipo y el anticuerpo puede tener un isotipo cambiado mediante agregación de los genes de la región V clonados molecularmente o ADNc a genes de la región constante clonados molecularmente, o 25 ADNc en vectores de expresión adecuados usando técnicas de biología molecular convencionales bien conocidas en la materia y expresar a continuación los anticuerpos en células hospedadoras utilizando técnicas conocidas en la materia. El anticuerpo de isotipo cambiado puede poseer también una región Fc que se ha diseñado molecularmente mediante ingeniería genética para poseer una ADCC superior sobre las variantes que se producen naturalmente (Shields et al. (2001) J. Biol. Chem. 276:6591-604) y se expresan recombinantemente en células hospedadoras utilizando técnicas conocidas en la materia. Dichas técnicas incluyen el uso de técnicas recombinantes directas (véase, por ejemplo, patente de Estados Unidos 4.816.397), técnicas de fusión célula a célula (véase, por ejemplo, patentes de Estados Unidos números 5.916.771 y 6.207.418), entre otras. En la técnica de fusión célula a célula, un mieloma u otra línea de células tal como CHO se prepara de tal manera que posea una cadena pesada con cualquier isotipo deseado y se prepara otro mieloma u otra línea de células tal como CHO de tal manera que posea
35 la cadena ligera. Dichas células pueden posteriormente fusionarse, y se puede aislar una línea de células que expresa un anticuerpo intacto. A modo de ejemplo, un anticuerpo IgG4 humano dirigido contra HER-3 que posea la unión deseada al antígeno de HER-3 podría tener un isotipo cambiado fácilmente para generar un isotipo de una IgG1 humana o una IgG3 humana, aunque sigue teniendo la misma región variable (que define la especificidad del anticuerpo y algo de su afinidad). Dicha molécula puede ser a continuación capaz de unirse a FcγR sobre las células efectoras y participar en la ADCC.
La TABLA 10 del presente documento proporciona secuencias de aminoácidos para numerosas CDR que pueden incluirse en anticuerpos contra HER-3. Una proteína de unión aislada dirigida a HER-3 puede incluir una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada que contiene al menos una CDR seleccionada entre el grupo que consiste en: 45 (a) una CDRH1 como se muestra en las SEQ ID NOS: 2, 6, 10, 14, 18, 22, 26, 30, 34, 36, 40, 42, 46, 50, 54, 60, 62, 66, 70, 74, 78, 80, 84, 88, 92, 96, 100, 104, 108, 112, 116, 120, 122, 126, 130, 134, 138, 142, 146, 150, 154, 158, 162, 166, 170, 174, 178, 182, 186, 190, 194, 198, 202, 206, 210, 214, 218, 222, 226 y 230, (b) una CDRH2 como se muestra en las SEQ ID NOS: 2, 6, 10, 14, 18, 22, 26, 30, 34, 36, 40, 42, 46, 50, 54, 60, 62, 66, 70, 74, 78, 80, 84, 88, 92, 96, 100, 104, 108, 112, 116, 120, 122, 126, 130, 134, 138, 142, 146, 150, 154, 158, 162, 166, 170, 174, 178, 182, 186, 190, 194, 198, 202, 206, 210, 214, 218, 222, 226 and 230, y (c) una CDRH3 como se muestra en las SEQ ID NOS:2, 6, 10, 14, 18, 22, 26, 30, 34, 36, 40, 42, 46, 50, 54, 60, 62, 66, 70, 74, 78, 80, 84, 88, 92, 96, 100, 104, 108, 112, 116, 120, 122, 126, 130, 134, 138, 142, 146, 150, 154, 158, 162, 166, 170, 174, 178, 182, 186, 190, 194, 198, 202, 206, 210, 214, 218, 222, 226 y 230, y/o una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera que comprende al menos una de las CDR seleccionadas entre el grupo que consiste en: (d) una CDRL1 como se muestra en las 55 SEQ ID NO: 4, 8, 12, 16, 20, 24, 28, 32, 38, 44, 48, 52, 56, 58, 64, 68, 72, 76, 82, 86, 90, 94, 98, 102, 106, 110, 114, 118, 124, 128, 132, 136, 140, 144, 148, 152, 156, 160, 164, 168, 172, 176, 180, 184, 188, 192, 196, 200, 204, 208, 212, 216, 220, 224, 228 y 232, (e) una CDRL2 como se muestra en las SEQ ID NOS: 4, 8, 12, 16, 20, 24, 28, 32, 38, 44, 48, 52, 56, 58, 64, 68, 72, 76, 82, 86, 90, 94, 98, 102, 106, 110, 114, 118, 124, 128, 132, 136, 140, 144, 148, 152, 156, 160, 164, 168, 172, 176, 180, 184, 188, 192, 196, 200, 204, 208, 212, 216, 220, 224, 228 y 232, y (f) una CDRL3 como se muestra en las SEQ ID NOS:4, 8, 12, 16, 20, 24, 28, 32, 38, 44, 48, 52, 56, 58, 64, 68, 72, 76, 82, 86, 90, 94, 98, 102, 106, 110, 114, 118, 124, 128, 132, 136, 140, 144, 148, 152, 156, 160, 164, 168, 172, 176, 180, 184, 188, 192, 196, 200, 204, 208, 212, 216, 220, 224, 228 y 232, como se muestra en el listado de secuencias adjunto al presente documento. Una proteína de unión a antígeno para su uso de acuerdo con la invención es como se define en las reivindicaciones. Se proporcionan otras proteínas de unión a antígeno como ejemplos comparativos.
65 Una proteína de unión aislada dirigida a HER-3 puede incluir una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada seleccionada entre el grupo que consiste en las SEQ ID NOS:2, 6, 10, 14, 18, 22, 26, 30, 34, 36, 40, 42, 46, 50, 54, 60, 62, 66, 70, 74, 78, 80, 84, 88, 92, 96, 100, 104, 108, 112, 116, 120, 122, 126, 130, 134, 138, 142, 146, 150, 154, 158, 162, 166, 170, 174, 178, 182, 186, 190, 194, 198, 202, 206, 210, 214, 218, 222, 226 y 230, y/o una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera seleccionada entre el grupo que consiste en las SEQ ID NOS:4, 8, 12, 16, 20,
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5 24, 28, 32, 38, 44, 48, 52, 56, 58, 64, 68, 72, 76, 82, 86, 90, 94, 98, 102, 106, 110, 114, 118, 124, 128, 132, 136, 140, 144, 148, 152, 156, 160, 164, 168, 172, 176, 180, 184, 188, 192, 196, 200, 204, 208, 212, 216, 220, 224, 228 y 232, como se muestra en el listado de secuencias adjunto al presente documento.
Un anticuerpo dirigido contra HER-3 puede incluir una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada y una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera como se muestra en las SEQ ID NOS: 2 y 4, 6 y 8, 10 y 12, 14 y 16, 18 y 20, 22 y 24, 26 y 28, 30 y 32, 36y 38, 42 y 44, 46 y 48, 50 y 52, 54 y 56, 60 y 58, 62 y 64, 66 y 68, 70 y 72, 74 y 76, 78 y 82, 80 y 82, 84 y 86, 88 y 90, 92 y 94, 96 y 98, 100 y 102, 104 y 106, 108 y 110, 112 y 114, 116 y 118, 122 y 124, 126 y 128, 130 y 132, 134 y 136, 138 y 140, 142 y 144, 146 y 148, 150 y 152, 154 y 156, 158 y 160, 162 y 164, 166 y 168, 170 y 172, 174 y 176, 178 y 180, 182 y 184, 186 y 188, 190 y 192, 194 y 196, 198 y 200, 202 y 204, 206 y
15 208, 210 y 212, 214 y 216, 218 y 220, 222 y 224, 226 y 228, 230 y 232, o una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada como se muestra en una cualquiera de las SEQ ID NOS:34, 40, 60, 62, y 120, o una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 58 y 64, como se muestra en el listado de secuencias adjunto al presente documento.
Una proteína dirigida a HER-3 puede ser una proteína estructural que tiene una actividad de unión de tipo anticuerpo (por ejemplo, que tiene una actividad similar a un anticuerpo dirigido contra HER-3) o un anticuerpo, por ejemplo, un anticuerpo dirigido contra HER-3. Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 ilustrativos se designan U1-1, U1-2, U1-3, U1-4, U1-5, U1-6, U1-7, U1-8, U1-9, U1-10, U1-11, U1-12, U1-13, U1-14, U1-15, U1-16, U1-17, U1-18, U1-19, U120, U1-21, U1-22, U1-23, U1-24, U1-25, U1-26, U1-27, U1-28, U1-29, U1-30, U1-31, U1-32, U1-33, U1-34, U1-35,
25 U1-36, U1-37, U1-38, U1-39, U1-40, U1-41, U1-42, U1-43, U1-44, U1-45, U1-46, U1-47, U1-48, U1-49, U1-50, U151, U1-52, U1-53, U1-55.1, U1-55, U1-57.1, U1-57, U1-58, U1-59, U1-61.1, U1-61, y U1-62, o los anticuerpos que tienen al menos una cadena pesada o ligera de uno de los anticuerpos anteriormente mencionados. El anticuerpo designado U1-59 (SEQ ID NO: 70/72), puede utilizarse de acuerdo con la presente invención.
Debe entenderse que la secuencia de aminoácidos de las proteínas de unión a HER-3 descrita en el presente documento no está limitada a los veinte aminoácidos convencionales (véase, Immunology -A Synthesis (2ª Edición, Golub y Gren, eds., Sinauer Associates, Sunderland, Mass. (1991)). Por ejemplo, los aminoácidos pueden incluir estereoisómeros (por ejemplo, D-aminoácidos) de los veinte aminoácidos convencionales, aminoácidos no naturales tales como aminoácidos α,α disustituidos, N-alquil aminoácidos, ácido láctico, y otros aminoácidos no
35 convencionales. Los ejemplos de aminoácidos no convencionales, que pueden ser también componentes adecuados para las proteínas de unión proporcionadas en el presente documento, incluyen: 4-hidroxiprolina, γcarboxiglutamato, ε-N,N,N-trimetillisina, ε-N-acetillisina, O-fosfoserina, N-acetilserina, N-formilmetionina, 3metilhistidina, 5-hidroxlisina, σ-N-metilarginina, y otros aminoácidos e iminoácidos similares, por ejemplo, 4hidroxiprolina.
Además, se contemplan variaciones menores en las secuencias de aminoácidos de las SEQ ID NOS 70 y 72 como abarcadas por la presente divulgación, con la condición de que las variaciones no estén en las secuencias de las CDR definidas en las reivindicaciones y mantengan al menos un 75% (por ejemplo, al menos un 80%, 90%, 95% o 99%) de las secuencias que se muestran en las SEQ ID NOS:70 y 72. Se pueden producir variaciones en las 45 regiones marco (es decir, fuera de las CDR. En algunas realizaciones, las variaciones en las secuencias de aminoácidos, es decir, deleciones, inserciones y/o sustituciones de al menos un aminoácido, pueden producirse cerca de los límites de los dominios funcionales. Pueden identificarse dominios estructurales y funcionales por comparación de los datos de los nucleótidos y/o las secuencias de aminoácidos en bases de datos públicas o privadas. Se pueden utilizar métodos informatizados de comparación para identificar motivos de secuencias o predecir los dominios de conformación de proteínas que se producen en otras proteínas de unión de estructura y/o función conocida. Se conocen en la técnica métodos para identificar secuencias de proteínas que se pliegan en una estructura tridimensional conocida. (Véanse por ejemplo, Bowie et al. (1991) Science 253:164; Proteins, Structures and Molecular Principles, Creighton, Ed., W H. Freeman and Company, Nueva York (1984); Introduction to Protein Structure, Branden y Tooze, eds., Garland Publishing, Nueva York, N.Y. (1991); y Thornton et al. (1991) Nature
55 354:105). De esta manera, los expertos en la materia pueden reconocer motivos de secuencias y conformaciones estructurales que se pueden utilizar para definir dominios estructurales y funcionales de acuerdo con las proteínas descritas en el presente documento.
Las variaciones en las secuencias de aminoácidos que se muestran en las SEQ ID NOS:70 y 72 pueden incluir las que conducen a una susceptibilidad reducida a la proteolisis o a la oxidación, alterar los modelos de glicosilación o alterar las afinidades de unión o conferir o modificar otras propiedades fisicoquímicas o funcionales de la proteína de unión. En particular, se contemplan sustituciones de aminoácidos conservativas. Las sustituciones conservativas son aquellas que tienen lugar en una familia de aminoácidos que están relacionados en sus cadenas secundarias. Las familias de aminoácidos incluyen los siguientes: familia ácida = aspartato, glutamato; familia básica = lisina, arginina, 65 histidina; familia no polar = alanina, valina, leucina, isoleucina, prolina, fenilalanina, metionina, triptófano; y familia polar no cargada = glicina, asparagina, glutamina, cisteína, serina, treonina, tirosina. Las familias alternativas
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incluyen: familia hidroxialifática = serina y treonina; familia que contiene amida = asparagina y glutamina; familia alifática = alanina, valina, leucina e isoleucina; y familia aromática = fenilalanina, triptófano, y tirosina. Por ejemplo, es razonable esperar que una sustitución aislada de una leucina con una isoleucina o valina, un aspartato con un glutamato, una treonina con una serina, o una sustitución similar de un aminoácidos con un aminoácido
5 estructuralmente relacionado no tendrá un mayor efecto sobre la unión o las propiedades de la proteína de unión resultante, especialmente si la sustitución no implica un aminoácido en un sitio del marco. Sin embargo, todas las otras posibles sustituciones de aminoácidos están también abarcadas en el presente documento. Si se produce un cambio de aminoácido, puede determinarse fácilmente una proteína de unión a HER-3 funcional que reduce la transducción de la señal de HER-3 evaluando la actividad de unión específica de HER-3 de la proteína de unión resultante mediante ELISA o FACS o mediante ensayos funcionales in vitro o in vivo.
En algunas realizaciones, se puede acoplar una proteína de unión a HER-3 a un grupo efector. Dicha proteína de unión puede ser especialmente útil en aplicaciones terapéuticas. Como se usa en el presente documento, el término "grupo efector se refiere a un grupo citotóxico tal como un radioisótopo o un radionucleido, una toxina, un grupo
15 terapéutico u otro grupo efector conocido en la materia. Los ejemplos de grupos efectores adecuados son radioisótopos o radionucleidos (por ejemplo, 3H, 14C, 15N, 35S, 90Y, 99Tc, 111In, 125I, 131I) o isótopos sin radio (por ejemplo, 2D), caliqueamicina, análogos de dolastatina tales como auristatinas, y agentes quimioterapéuticos tales como geldanamicina y derivados de maitansina, incluyendo DM1. Por lo tanto, en algunos casos, un grupo puede ser un grupo marcado y un grupo efector. Se conocen en la técnica diversos métodos para unir grupos efectores a polipéptidos o glicopolipéptidos (tales como anticuerpo), y se pueden utilizar en la preparación y el transporte de las composiciones y métodos descritos en el presente documento. En algunas realizaciones, puede ser útil tener grupos efectores unidos a una proteína de unión por brazos separadores de diversas longitudes para, por ejemplo, reducir el impedimento estérico potencial.
25 Este documento se refiere también a procesos para preparar una proteína de unión a HER-3 aislada, que comprende la etapa de preparar la proteína a partir de una célula hospedadora que expresa la proteína. Las células hospedadoras que pueden utilizarse incluyen, sin limitación, hibridomas, células eucariotas (por ejemplo, células de mamíferos tales como células de hámster, conejo, rata, cerdo, o ratón), células vegetales, células fúngicas, células de levaduras (por ejemplo, células de Saccharomyces cerevisiae o Pichia pastoris), células procariotas (por ejemplo, células de E. coli), y otras células utilizadas para la producción de proteínas de unión. Varios métodos para preparar y aislar proteínas de unión, tales como proteínas estructurales o anticuerpos, a partir de células hospedadoras, se conocen en la técnica y se pueden usar para llevar a cabo los métodos descritos en el presente documento. Además, los métodos para preparar fragmentos de proteínas de unión, por ejemplo, fragmentos de proteínas estructurales o fragmentos de anticuerpos, tales como digestión con papaína o pepsina, técnicas de clonación
35 modernas, técnicas para preparar moléculas de anticuerpos monocatenarios (Plückthun, anteriormente) y diacuerpos (Hollinger et al., anteriormente), son también conocidas de los expertos en la técnica y se pueden usar para llevar a cabo los métodos actualmente descritos.
En algunas realizaciones, se puede preparar una proteína de unión a HER-3 a partir de un hibridoma que secreta la proteína. Véase, por ejemplo, Köhler et al. (1975) Nature 256:495.
En algunas realizaciones, se puede preparar una proteína de unión a HER-3 de forma recombinante optimizando y/o amplificando la expresión de la proteína de unión en las células hospedadoras, y aislando la proteína de unión de las células hospedadoras. Con este fin, las células hospedadoras pueden transformarse o transfectarse con ADN (por
45 ejemplo, un vector) que codifica una proteína de unión a HER-3, y cultivarse en condiciones adecuadas para producir la proteína de unión. Véase, por ejemplo, patente de Estados Unidos n-º 4.816.567. Las células hospedadoras útiles incluyen, por ejemplo, células CHO, células NS/0 de mieloma, células 293 de riñón embriónico humano, células de E. coli, y células de Saccharomyces cerevisiae.
Se pueden preparar proteínas de unión a HER-3 que son anticuerpos preparados a partir de animales diseñados mediante ingeniería genética para preparar anticuerpos completamente humanos, o a partir de una biblioteca de expresión de anticuerpos preparada en un bacteriófago, levadura, ribosoma o E. coli. Véase, por ejemplo, Clackson et al. (1991) Nature 352:624-628; Marks et al. (1991) J. Mol. Biol. 222:581-597; Feldhaus y Siegel (2004) J. Immunol. Methods 290:69-80; Groves y Osbourn (2005) Expert Opin. Biol. Ther. 5:125-135; y Jostock y Dubel (2005) Comb.
55 Chem. High Throughput Screen 8:127-133.
En algunas realizaciones, los anticuerpos que se describen en el presente documento pueden ser anticuerpos completamente humanos o humanizados. Los anticuerpos humanos evitan determinados problemas asociados con los anticuerpos xenogénicos, tales como los anticuerpos que poseen regiones variables y/o constantes de murino o rata. La presencia de proteínas derivadas xenogénicas puede conducir a una respuesta inmunitaria frente al anticuerpo por un paciente, lo que posteriormente conduce a la rápida eliminación del anticuerpo, la pérdida de utilidad terapéutica a través de la neutralización del anticuerpo, y/o reacciones alérgicas graves, incluso peligrosas para la vida. Para evitar la utilización de anticuerpos derivados de murino o rata, se pueden generar anticuerpos completamente humanos mediante la introducción de loci de anticuerpos humanos funcionales en un roedor u otro 65 mamífero o animal para que el roedor, u el otro mamífero o animal produzcan anticuerpos completamente humanos.
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Un método para generar anticuerpos completamente humanos es utilizar variedades de ratones XENOMOUSE® que se han diseñado mediante ingeniería genética para contener fragmentos de configuración de la línea germinal de un tamaño de 245 kb y 190 kb del locus de la cadena pesada y del locus de la cadena ligera kappa humanas. Otras variedades de ratones XENOMOUSE® contienen fragmentos de configuración de la línea germinal de un
5 tamaño de 980 kb y 800 kb del locus de la cadena pesada y el locus de la cadena ligera kappa humanas. Otras variedades adicionales de ratones XENOMOUSE® contienen fragmentos de configuración de la línea germinal de un tamaño de 980 kb y 800 kb del locus de la cadena pesada y el locus de la cadena ligera kappa humanas más un locus de la cadena ligera lambda humana completa configurado para la línea germinal de un tamaño de 740 kb. Véase, Clackson et al. (1997) Nature Genetics 15:146-156; y Green y Jakobovits (1998) J. Exp. Med. 188:483-495. Las variedades de XENOMOUSE® están disponibles de Amgen, Thousand Oaks, CA.
La producción de ratones XENOMOUSE® se describe y delinea adicionalmente en la publicación de patente de Estados Unidos 2003/0217373, presentada el 20 de noviembre de 2002; las patentes de Estados Unidos números 5.939.598, 6.075.181, 6.114.598, 6.150.584, 6.162.963, 6.673.986, 6.833.268, y 7.435.871, y las patentes japonesas
15 números 3068180B2, 3068506B2, y 3068507B2. Véase, además, la patente europea n.º EP0463151, las publicaciones PCT con números WO 94/02602, WO 96/34096, WO 98/24893 y WO 00/76310.
Como alternativa, se puede usar una estrategia de tipo "minilocus". En la estrategia de tipo minilocus, se imita un locus Ig exógeno mediante la inclusión de partes (genes individuales) procedentes del locus Ig. Por lo tanto, uno o más genes VH, uno o más genes DH, uno o más genes JH, una región mu constante, y una segunda región constante (por ejemplo, una región gamma constante) se forman en una construcción para la inserción en un animal. Esta estrategia se describe en las patentes de los Estados Unidos 5.545.806, 5.545.807, 5.569.825, 5.591.669, 5.612.205, 5.625.126, 5.625.825, 5.633.425, 5.643.763, 5.661.016, 5.721.367, 5.770.429, 5.789.215, 5.789.650, 5.814.318, 5.874.299, 5.877.397, 5.981.175, 6.023.010, 6.255.458, las divulgaciones de las cuales se incorporan por
25 lo tanto por referencia en su totalidad en el presente documento. Véase, además, patente EP n.º 0546073, y publicaciones PCT números WO 92/03918, WO 92/22645, WO 92/22647, WO 92/22670, WO 93/12227, WO 94/00569, WO 94/25585, WO 96/14436, WO 97/13852 y WO 98/24884.
Se pueden generar también anticuerpos humanos a partir de ratones en los que, a través de una fusión microcelular, se han introducido grandes partes de cromosomas, o cromosomas completos. Véase, las solicitudes de patentes EP con números 773288 y 843961. Además, se han generado ratones KM™, que son el resultado de la reproducción cruzada de ratones TC de Kirin con ratones con el minilocus de Medarex (Humab). Estos ratones poseen el transcromosoma HC de los ratones Kirin y el transgén de la cadena kappa de los ratones Medarex (Ishida et al. (2002) Cloning Stem Cells 4:91-102).
35 Se pueden derivar también anticuerpos humanos mediante métodos in vitro. Los ejemplos adecuados incluyen, aunque no de forma limitativa, la expresión en fagos (como comercializa Cambridge Antibody Technology, Morphosys, Dyax, Biosite/Medarex, Xoma, Symphogen, Alexion (anteriormente Proliferon), y Affimed), la expresión de ribosomas (como comercializa Cambridge Antibody Technology), la expresión de levaduras, y similares.
Como se describe en el presente documento, se prepararon los anticuerpos utilizando tecnología XENOMOUSE®, como se describe a continuación. Dichos ratones son capaces de producir moléculas de la inmunoglobulina humana y anticuerpos, y son deficientes en la producción de moléculas de inmunoglobulina de murino y anticuerpos. Las tecnologías utilizadas para conseguir lo mismo se divulgan en las patentes, solicitudes, y referencias divulgadas en
45 el presente documento. Por ejemplo, la producción transgénica de ratones y anticuerpos de los anteriores de divulga en la solicitud de patente de Estados Unidos con n.º de serie 08/759.620, presentada el 3 de diciembre de 1996 y las publicaciones PCT números WO 98/24893 y WO 00/76310. Véase también Mendez et al. (1997) Nature Genetics 15:146-156.
Utilizando la tecnología que se describe en el presente documento, se pueden producir anticuerpos monoclonales completamente humanos contra una variedad de antígenos. Por ejemplo, se pueden inmunizar líneas de ratones XENOMOUSE® con un antígeno HER-3 de interés (por ejemplo, HER-3 o un fragmento del mismo), se pueden recuperar células linfáticas (tales como linfocitos B) a partir de ratones que expresan anticuerpos, y las líneas de células recuperadas pueden fusionarse con una línea de células de tipo mieloide para preparar líneas de células de
55 hibridoma inmortales. Estas líneas de células de hibridoma pueden cribarse y seleccionarse para identificar líneas de células de hibridoma que producen anticuerpos específicos para el antígeno de interés. Se proporcionan en el presente documento métodos para la producción de múltiples líneas de células de hibridoma que producen anticuerpos específicos para HER-3. Se proporcionan además en el presente documento métodos para caracterizar anticuerpos producidos por dichas líneas de células, incluyendo el análisis de la secuencia de nucleótidos y aminoácidos de las cadenas pesada y ligera de dichos anticuerpos.
En general, los anticuerpos producidos por hibridomas fusionados como se describe a continuación son cadenas pesadas de IgG1 humanas con cadenas ligeras kappa completamente humanas, aunque algunos anticuerpos descritos en el presente documento poseen cadenas pesadas de IgG4 humanas así como cadenas pesadas de 65 IgG1 humanas. Los anticuerpos pueden ser también de otros isotipos humanos, incluyendo IgG2 e IgG3. Los anticuerpos tienen generalmente elevadas afinidades, con una KD normalmente de aproximadamente 10-6 a
aproximadamente 10-13 M o menor, cuando se miden mediante técnicas de fase sólida y basadas en células.
Este documento describe también moléculas de ácido nucleico aislado que codifican las proteínas de unión a HER-3 como se describe en el presente documento. El término "molécula de ácido nucleico aislado", como se usa en el
5 presente documento, se refiere a un polinucleótido de ADNc genómico, o de origen sintético, o alguna combinación de los mismos, que (1) no está asociado con todo o una parte de un polinucleótido con el cual el "polinucleótido aislado" se encuentra en la naturaleza, (2) está unido de forma operativa a un polinucleótido al cual no está unido en la naturaleza, o (3) no se produce en la naturaleza como parte de una secuencia más grande. Además, el término "molécula de ácido nucleico", como se usa en el presente documento, significa una forma polimérica de nucleótidos de al menos 10 bases de longitud, tanto ribonucleótidos como desoxinucleótidos o una forma modificada de cualquier tipo de nucleótido, tal como nucleótidos con grupos azúcar modificados o sustituidos y similares. El término incluye también formas monocatenarias y bicatenarias de ADN.
Una molécula de ácido nucleico puede unirse operativamente a una secuencia control. El término "secuencia
15 control", como se usa en el presente documento, se refiere a secuencias de polinucleótidos que son necesarias para efectuar la expresión y el procesamiento de secuencias de codificación a las cuales están ligadas. la naturaleza de dichas secuencias control difiere dependiendo del organismo hospedador. En procariotas, dichas secuencias control incluyen generalmente promotores, sitios de unión a ribosomas, y secuencias de terminación de la transcripción. En eucariotas, generalmente, dichas secuencias control incluyen promotores y secuencias de terminación de la transcripción. Se pretende que la expresión "secuencia control" incluya, como mínimo, todos los componentes cuya presencia es esencial para la expresión y procesamiento, y puede incluir también componentes adicionales cuya presencia es ventajosa, por ejemplo, secuencias líder y secuencias de ligandos. Además, el término "unido operativamente", como se usa en el presente documento, se refiere a posiciones de componentes descritas de esta manera que están en una relación que las permite funcionar en su manera prevista. Además, una secuencia control
25 de la expresión unida operativamente a una secuencia de codificación está ligada de tal manera que se consigue la expresión de la secuencia de codificación en condiciones compatibles con la secuencia control de la expresión.
Se describen también en el presente documento vectores que comprenden una molécula de ácido nucleico que codifica una proteína de unión como se describe en el presente documento. La molécula de ácido nucleico puede unirse operativamente a una secuencia control. Además, el vector puede contener adicionalmente un origen de replicación o un gen marcador de la selección. Los ejemplos de vectores que se pueden utilizar incluyen, por ejemplo, plásmidos, cósmidos, fagos, y virus.
Este documento describe también células hospedadoras transformadas con una molécula de ácido nucleico o un
35 vector, como se describe en el presente documento. Se puede llevar a cabo la transformación mediante cualquier método conocido para introducir polinucleótidos en una célula hospedadora, incluyendo, por ejemplo, empaquetar el polinucleótido en un virus (o en un vector vírico) y transducir una célula hospedadora con el virus (o vector), o mediante procedimientos de transfección conocidos en la técnica, como se ilustra mediante las patentes de Estados Unidos números 4.399.216, 4.912.040, 4.740.461 y 4.959.455. Los métodos para introducir polinucleótidos heterólogos en células de mamíferos son bien conocidos en la técnica, e incluyen, sin limitación, transfección mediada por dextrano, precipitación con fosfato de calcio, transfección mediada con polibreno, fusión de protoplastos, electroporación, encapsulación del(de los) polinucleótido(s) en liposomas, y microinyección directa del ADN en núcleos. Los ejemplos de células hospedadoras que se pueden usar incluyen hibridomas, células eucariotas (por ejemplo, células de mamíferos tales como células de hámster, conejo, rata, cerdo, ratón u otros animales),
45 células vegetales (por ejemplo, células de maíz y tabaco), células fúngicas (por ejemplo, células de S. cerevisiae y P. pastoris), células procariotas tales como E. coli, y otras células utilizadas en la técnica para la producción de anticuerpos. Las líneas de células de mamíferos disponibles como hospedadores para la expresión son bien conocidas en la técnica e incluyen, por ejemplo, muchas líneas de células inmortalizadas disponibles de la American Type Culture Collection (ATCC; Manassas, VA). Estas incluyen, sin limitación, células de ovario de hámster chino (CHO), células HeLa, células de riñón de cría de hámster (BHK), células de riñón de mono (COS), células de carcinoma hepatocelular humano (por ejemplo, células Hep G2), y otras numerosas líneas de células.
3. Agentes que se unen a otros miembros de la familia HER
55 Como se ha reseñado anteriormente, las composiciones y métodos descritos en el presente documento para el tratamiento de la enfermedad asociada a HER-3 incluyen un primer agente que se une a HER-3, en combinación con un segundo agente que se une y/o inhibe al menos un miembro diferente de la familia HER, incluyendo, aunque no de forma limitativa, EGF-R, HER-2, HER-4. De acuerdo con la invención, el segundo agente es Erlotinib. Otros ejemplos fuera del alcance de la invención incluyen fármacos biológicos, por ejemplo, una proteína de unión, tal como un anticuerpo que se une específicamente a un miembro de la familia HER, un compuesto molecular pequeño que se une a y/o altera (por ejemplo, inhibe) la actividad de al menos un miembro de la familia HER diferente de (o además de) HER-3, un ARNip, o una sustancia natural. Como se usa en el presente documento, las expresiones "otros miembros de la familia HER" y "otro miembro de la familia HER" se refieren a miembros de la familia HER que no son HER-3. Los ejemplos son EGF-R, HER-2, y HER-4, pero "miembro de la familia HER" incluye también los
65 miembros de la familia que no se han identificado todavía.
El segundo agente puede alterar la actividad (por ejemplo, aumentar o disminuir) la actividad del otro miembro de la familia HER, tanto a través de un efecto directo como un efecto indirecto sobre el miembro de la familia HER. Debe señalarse, sin embargo, que todos los segundos agentes que se describen en el presente documento tendrán un efecto sobre la función y la actividad de la familia HER.
5 Erlotinib (comercializado como TARCEVA™) es un fármaco utilizado para tratar NSCLC, el cáncer de páncreas, y varios tipos diferentes de cánceres. Erlotinib se dirige específicamente al EGF-R de la tirosina quinasa, uniéndose de forma reversible al sitio de unión al ATP del receptor. De acuerdo con la invención, una composición para el tratamiento del cáncer de pulmón puede ser U1-59, combinado con erlotinib, o U1-59, combinado con erlotinib y otro(s) agente(s). En algunas realizaciones preferidas, U1-59 se puede usar en el tratamiento de pacientes con cánceres incluyendo cáncer de pulmón no microcítico (NSCLC), NSCLC localmente avanzado y NSCLC metastásico tras el fracaso de al menos un régimen de quimioterapia anterior, combinado con erlotinib.
15 4. Agentes adicionales para utilizarse en las composiciones y métodos descritos en el presente documento
Se pueden añadir agentes adicionales al primer y segundo agente para su uso de acuerdo con la invención. Estos, en algunas realizaciones, serán fármacos quimioterapéuticos.
Por ejemplo, los agentes que actúan como estimulantes de los microtúbulos incluyen NK-105(paclitaxel) [(-)-(2R,3S)3-benzoilamino-2-hidroxi-3-fenilpropionato de (1S,2R,3S,4S,5R,7S,8S,10R,13S)-4,10-diacetoxi-2-benzoiloxi-5,20epoxi-1,7-dihidroxi-9-oxotax-11-en-13-ilo] (NanoCarrier, Chiba, Japón), milataxel (1,10β-dihidroxi-9-oxo-5β,20-epoxi3zeta-tax-11-eno-2α,4,7β13α-tetrail 4-acetato 2-benzoato 13-[(2R,3R)-3-(terc-butoxicarbonilamino)-3-(furan-2-il)-2hidroxipropanoato] 7-propanoato) (Taxolog, Fairfield, NJ), laulimalida (Kosan Biosciences, Hayward, CA (B-M
25 Squibb)), sarcodictiina A (1R,4aR,6S,7S,10R,12aR)-11-metoxicarbonil-7,10-epoxi-10-hidroxi-1-isopropil-4,7-dimetil1,2,4a,5,6,7,10,12a-octahidrobenzociclododecen-6-il éster) del ácido (3-(1-metilimidazol-4-il)-2(E)-propenoico (Pfizer, New York, NY), simotaxel (12b-acetato 12-benzoato 6-ciclopentanocarboxilato 9-[(2R,3R)-2-hidroxi-3-[[(1metiletoxi)carbonil]amino]-3-(tiofen-2-il)propanoato]) de ((2aR,4S,4aS,6R,9S,11S,125,12aR,12bS)-4,11-dihidroxi4a,8,13,13-tetrametil-5-oxo-2a,3,4,4a,5,6,9,10,11,12,12a,12b-dodecahidro-7,11-metano-1H-ciclodeca[3,4]benz[1,2b]oxete-6,9,12,12b-tetrailo) (Taxolog, Fairfield, NJ), SYN-2001 (CLL Pharma, Niza, Francia), TL-310 (Taxolog, Fairfield, NJ), TL1836 (Taxolog, Fairfield, NJ), tesetaxel (4-acetato 2-benzoato 13-[(2R,3S)-3-[(tercbutoxicarbonol)amino]-3-(3-fluoropiridin-2-il)-2-hidroxipropanoato de 2’-[(dimetilamino)metil]-1-hidroxi-5β,20-epoxi9α,10α-dihidro[1,3]dioxolo[4’,5’:9,10]tax-11-eno-2α,4,13α-triilo) (Daiichi Sankyo, Tokio, Japón), TL-1892 (Taxolog, Fairfield, NJ), TPI-287(N-terc-butil éster del ácido (2’R,3’S)-2’-hidroxi-N-carboxi-3’-amino-5’-metil-hexanoico), 13
35 éster 50-20-epoxi-1,2α,4,7β,9α,10α,13α-heptahidroxi-4,10-diacetato-2-benzoato-7,9-acroleína acetal-tax-11-eno (Tapestry Pharmaceuticals, Boulder, CO), ortataxel (6,12b-diacetoxi-12-benzoiloxi-10,11-carbonildioxi-4-hidroxi4a,8,13,13-tetrametil-5-oxo-2a,3,4,4a,5,6,9,10,11,12,12a,12b-dodecahidro-1H-7,11-metanociclodeca[3,4]benz[1,2b]oxet-9-il éster del ácido 2aR-[2aα,4β,4aβ,6β,9α(2R,3S),10β,11β, 12α,12aα,12bα]-3-(tert-butoxicarbonilamino)-2hidroxi-5-metil-hexanoico) (Indena, Milán, Italia), paclitaxel poliglumex ácido (L-piroglutamilpoli-L-glutamil-L-glutámico γ-esterificado parcialmente con (1R,2S)-2-(benzoilamino)-1-[[[(2aR,4S,4aS,6R,9S,11S,12S,12aR,12bS)-6,12bbis(acetiloxi)-12-(benzoiloxi)-4,11-dihidroxi-4a,8,13,13-tetrametil-5-oxo-2a,3,4,4a,5,6,9,10,11,12,12a,12bdodecahidro-7,11-metano-1H-ciclodeca[3,4]benzo[1,2-b]oxet-9-il]oxi]carbonil]-2-feniletilo) (Cell Therapeutics, Seattle, WA), partículas unidas a la proteína paclitaxel (paclitaxel: (-)-(2R,3S)-3-benzoilamino-2-hidroxi-3-fenilpropionato de (1S,2R,3S,4S,5R,7S,8S,10R,13S)-4,10-diacetoxi-2-benzoiloxi-5,20-epoxi-1,7-dihidroxi-9-oxotax-11-en-13-ilo)
45 (Abraxis BioScience, Los Angeles, CA), paclitaxel(NCI) ((-)-(2R,3S)-3-benzoilamino-2-hidroxi-3-fenilpropionato de (1 S,2R,3S,4S,5R,7S,8S, 10R,13S)-4,10-diacetoxi-2-benzoiloxi-5,20-epoxi-1,7-dihidroxi-9-oxotax-11-en-13-ilo) (NCI(NIH)), paclitaxel (NeoPharm, Lake Bluff, IL) ((-)-(2R,3S)-3-benzoilamino-2-hidroxi-3-fenilpropionato de (1S,2R,3S,4S,SR,7S,8S,10R,13S)-4,10-diacetoxi-2-benzoiloxi-5,20-epoxi-1,7-dihidroxi-9-oxotax-11-en-13-ilo ) (NeoPharm, Lake Bluff, IL), patupilona ((1S,3S,7S,10R,11S,12S,16R)-7,11-dihidroxi-8,8,10,12,16-pentametil-3-[(1E)1-(2-metil-1,3-tiazol-4-il)prop-1-en-2-il]-4,17-dioxabiciclo[14.1.0] heptadecano-5,9-diona) (publicación de Estados Unidos n.º 2003/0104625, Novartis, Basilea, Suiza), PEG-paclitaxel (Enzo Pharmaceuticals, Long Island, NY), docetaxel hidrato ((-)-trihidrato de (2R,3S)-3-terc-butoxicarbonilamino-2-hidroxi-3-fenilpropionato de (1S,2S,3R,4S,5R,7S,8S,10R,13S)-4-acetoxi-2-benzoiloxi-5,20-epoxi-1,7,10-trihidroxi-9-oxotax-11-eno-13-ilo) (Sanofi-Aventis, Bridgewater, NJ), eleuterobina ((1R,4aR,6S,7S,10R,12aR)-11-(2-O-acetil-β-D-arabinopiranosiloximetil)-7,10
55 epoxi-1-isopropil-10-metoxi-4,7-dimetil-1,2,4a,5,6,7,10,12a-octahidrobenzociclododecen-6-il éster del ácido 3-(1-metilimidazol-4-il)-2(E)-propenoico) (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY), IDN-5390 (Indena, Milán, Italia), ixabepilona ((1S,3S,7S,10R,11S,12S,16R)-7,11-dihidroxi-8,8,10,12,16-pentametil-3-[(1E)-1-metil-2-(2-metiltiazol-4il)etenil]-17-oxa-4-azabiciclo [14.1.0] heptadecano-5,9-diona) (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY), KOS-1584 (Kosan Biosciences, Hayward, CA (B-M Squibb)), KOS-1803 (17-iso-oxazol 26-trifluoro-9,10-dehidro-12,13-desoxiepotilona B) (Kosan Biosciences, Hayward, CA (B-M Squibb)), KOS-862 (Kosan Biosciences, Hayward, CA (B-M Squibb)); patentes de Estados Unidos números 6204388 y 6303342), larotaxel (4,10-diacetato 2-benzoato 13[(2R,3S)-3-[(terc-butoxicarbonil)amino]-2-hidroxi-3-fenilpropanoato] de 1-hidroxi-9-oxo-5β,20-epoxi-7β,19-ciclotax-11eno-2α,4,10β,13α-tetrailo tetrahidratado) (Sanofi-Aventis, Bridgewater, NJ, publicaciones PCT números WO 95/26961 y WO 96/1259), ANG-1005 (conjugado de Angiopep-2/paclitaxel) (AngioChem, Montreal, Canadá, patente
65 de Estados Unidos n.º 7557182), BMS-184476 (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY, publicación EP n.º 639577), BMS-188797 (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY), BMS-275183 (3’-terc-butil-3’-N-terc-butiloxicarbonil-4-deacetil
3’-defenil-3’-N-debenzoil-4-O-metiloxi-carbonil-paclitaxel) (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY), BMS-310705 (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY), BMS-753493 (Bristol-Myers Squibb, Nueva York, NY), cabazitaxel (4acetato 2-benzoato 13-[(2R,3S)-3-[[(tercbutoxi)carbonil]amino]-2-hidroxi-3-fenilpropanoato] de 1-hidroxi-7β,10βdimetoxi-9-oxo-5β,20-epoxitax-11-eno-2α,4,13α-triilo) (Sanofi-Aventis, Bridgewater, NJ), DHA-paclitaxel (Protarga,
5 King of Prussia, PA, TAXOPREXIN®), disermolida ([3S-[3α,4β,5β,6α(2R*,3Z,5R*,6R*,7S*,8Z,11R*,12S*, 13S*,14S*,15R*,16E)]]-6-[14[(aminocarbonil)oxi]-2,6,12-trihidroxi-5,7,9,11,13,15-hexametil-3,8,16,18nonadecatetraenil]tetrahidro-4-hidroxi-3,5-dimetil-2H-piran-2-ona) (Novartis, Basilea, Suiza, patentes de Estados Unidos con los números 4939168 y 5681847). Algunos de estos estimulantes de microtúbulos tienen un anillo de taxano en sus estructuras químicas; dichos compuestos que tienen un anillo de taxano se denominan en el presente documento "taxanos".
Las antraciclinas incluyen actinomicinas tales como actinomicida D (Dactinomicina: 2-amino-N,N’bis[(6S,9R,10S,13R,18aS)-6,13-diisopropil-2,5,9-trimetil-1,4,7,11,14-pentaoxohexadecahidro-1H-pirrolo[2,1-i] [1,4,7,10,13] oxatetraazaciclohexadecin-10-il]-4,6-dimetil-3-oxo-3H-fenoxazina-1,9-dicarboxamida), bleomicina
15 (clorhidrato de bleomicina: (3-{[(2’-{(5S,8S,9S,10R,13S)-15-{6-amino-2-[(1S)-3-amino-1-{[(2S)-2,3-diamino-3oxopropil]amino}-3-oxopropil]-5-metilpirimidin-4-il}-13-[{[(2R,3S,4S,5S,6S)-3-{[(2R,3S,4S,5R,6R)-4-(carbamoiloxi)3,5-dihidroxi-6-(hidroximetil)tetrahidro-2H-piran-2-il]oxi}-4,5-dihidroxi-6-(hidroximetil) tetrahidro-2H-piran-2-il]oxi} (1Himidazol-5-il)metil]-9-hidroxi-5-[(1R)-1-hidroxietil]-8,10-dimetil-4,7,12,15-tetraoxo-3,6,11,14-tetraazapentadec-1-il}2,4’-bi-1,3-tiazol-4-il)carbonil]amino}propil)(dimetil)sulfonio), clorhidrato de daunorrubicina (daunorrubicina: 8S-cis)clorhidrato de 8-Acetil-10-((3-amino-2,3,6-trideoxi-alfa-L-lixo-hexopiranosil)oxi)-7,8,9,10-tetrahidro-6,8,11-trihidroxi-1metoxi-5,12-naftacenediona), clorhidrato de doxorrubicina (doxorrubicina: (8S,10S)-clorhidrato de 10-[(3-amino-2,3,6tridesoxi-α-L-lixo-hexopiranosil)oxi]-8-glicoloil-7,8,9,10-tetrahidro-6,8,11-trihidroxi-1-metoxi-5,12-naftacenediona) (Alza, Mountain View, CA), clorhidrato de idarrubicina ((7S,9S)-clorhidrato de 9-acetil-7,8,9,10-tetrahidro-6,7,9,11tetrahidroxi-7-O-(2,3,6-trideoxi-3-amino-α-L-lixo-hexopiranosil)-5,12-naftacenodiona) (Pfizer, Nueva York, NY,
25 patentes de Estados Unidos números 4046878 y 4471052), y mitomicina ((1aS,8S,8aR,8bR)-6-amino-4,7-dioxo1,1a,2,8,8a,8b-hexahidro-8a-metoxi-5-metilazirino[2,3:3,4]pirrolo[1,2-α]indol-8-ilmetilcarbamato) (Kyowa-Hakko-Kirin, Tokio, Japón).
Cisplatino y gemcitabina son agentes quimioterapéuticos. Cisplatino o cis-diaminodicloroplatino(II) es un fármaco basado en platino utilizado para tratar diversos tipos de cánceres. El complejo cisplatino platino reacciona in vivo, uniéndose a y produciendo la reticulación del ADN, que estimula en última instancia la apoptosis. Gemcitabina es un análogo de nucleósido donde los átomos de hidrógeno de los carbonos 2' de la desoxicitidina están sustituidos por átomos de flúor. Como fluorouracilo y otros análogos de pirimidina, gemcitabina sustituye a citidina durante la replicación del ADN, que detiene el crecimiento tumoral ya que no se pueden unir nucleósidos adicionales al
35 nucleósido "defectuoso", dando como resultado la apoptosis. Gemcitabina se comercializa como GEMZAR® por Eli Lilly and Company (Indianapolis, IN). En algunas realizaciones, una combinación para el tratamiento del cáncer de pulmón incluyendo el cáncer de pulmón no microcítico puede ser: U1-59 combinado con Erlotinib y cisplatino o gemcitabina y otro(s) agente(s).
Capecitabina (pentil[1-(3,4-dihidroxi-5-metil-tetrahidrofuran-2-il)-5-fluoro-2-oxo-1H-pirimidin-4-il]aminometanoato, Xeloda, Roche) es un agente quimioterapéutico administrado por vía oral. Capecitabina es un profármaco que se convierte enzimáticamente en 5-fluouracilo en el tumor, donde inhibe la síntesis de ADN y retrasa el crecimiento del tejido tumoral. En algunas realizaciones, una combinación para el tratamiento de la enfermedad asociada con HER3 puede ser: U1-49, U1-53 o U1-59 combinado con un segundo agente como se describe en el presente documento
45 (por ejemplo, lapatanib) y capecitabina para el tratamiento del cáncer, donde el cáncer es cáncer gastrointestinal, cáncer de páncreas, cáncer de próstata, cáncer de ovario, cáncer de estómago, cáncer de endometrio, cáncer de las glándulas salivales, cáncer de riñón, cáncer de colon, cáncer de tiroides, cáncer de vejiga, glioma, melanoma, cáncer de pulmón incluyendo cáncer de pulmón no microcítico, cáncer colorrectal y/o cáncer de mama incluyendo cáncer de mama metastásico. En algunos casos, dicha combinación puede administrarse tras el fracaso del tratamiento previo con antraciclina o taxano, por ejemplo.
Docetaxel (N-terc-butil éster de (2R,3S)-N-carboxi-3-fenilisoserina, 13-éster con 5,20-epoxi-1,2,4,7,10,13hexahidroxitax-11-en-9-ona 4-acetato 2-benzoato, trihidrato) y paclitaxel ((2α,4α,5β,7β,10β,13α)-4,10-bis(acetiloxi)13-{[(2R,3S)-3-(benzoilamino)-2-hidroxi-3-fenilpropanoil]oxi}-1,7-dihidroxi-9-oxo-5,20-epoxitax-11-en-2-il be) son
55 agentes quimioterapéuticos. Docetaxel está comercializado como Taxótere por Sanofi Aventis. Paclitaxel está comercializado como Taxol por Bristol-Myers Squibb. en la formulación de Taxol, paclitaxel se disuelve en Cremophor EL y etanol, como un agente de administración. Una formulación donde paclitaxel está unido a albúmina se comercializa como Abraxane. En algunas realizaciones, una combinación puede ser: U1-59 combinado con Erlotinib y docetaxel o paclitaxel y otro(s) agente(s) tales como trastuzumab, para el tratamiento del cáncer de pulmón incluyendo cáncer de pulmón no microcítico.
La inyección de liposomas de clorhidrato de doxorrubicina se comercializa como Doxil, una formulación de liposomas que comprende cloruro de doxorrubicina. En algunas realizaciones, una combinación puede incluir administrar U1-59 combinado con Erlotinib y una inyección de liposomas de clorhidrato de doxorrubicina, con o sin uno o más agentes
65 diferentes tales como paclitaxel o agentes quimioterapéuticos basados en platino, para el tratamiento del cáncer de pulmón.
imagen10
Clorhidrato de irinotecan hidratado (irinotecan: clorhidrato de (+)-(4S)-4,11-dietil-4-hidroxi-9-[(4piperidinopiperidino)carboniloxi]-1H-pirano[3’,4’:6,7]indolizino[1-2-b]quinolina-3,14(4H,12H)-diona trihidratado) (Yakult, publicaciones EP números 137145 y 56692) se comercializa como Campto, Camptosar e Ircan. En algunas realizaciones, un tratamiento combinado puede incluir administrar U1-59 combinado con Erlotinib y clorhidrato de
5 irinotecan hidratado, o U1-59 combinado con Erlotinib, clorhidrato de irinotecan hidratado, y uno o más de otros agente(s) tales como 5-FU(5’-desoxi-5-fluorouridina o 5-fluoro-2,4(1H,3H)-pirimidinadiona), folinato de calcio (ácido N-[4-[[(2-amino-5-formil-1,4,5,6,7,8-hexahidro-4-oxo-6-pteridinil)metilamino]benzoil]-L-glutámico, sal de calcio (1:1)) o levofolinato de calcio ((-)-N-[4-[[[(6S)-2-amino-5-formil-1,4,5,6,7,8-hexahidro-4-oxo-6-pteridinil]methyl]amino]benzoil]L-glutamato de calcio), para el tratamiento del cáncer de pulmón incluyendo cáncer de pulmón no microcítico.
Los agentes adicionales que se van a usar en las composiciones y métodos descritos en el presente documento, pueden ser estructuras artificiales o de origen natural que no son un anticuerpo, pero que tienen una actividad similar a la de un anticuerpo (por ejemplo, tienen una actividad similar a la de un anticuerpo).
15 Dichos agentes adicionales pueden ser agentes que inhiben, bloquean o reducen (actúan como antagonistas hacia), o, activan, estimulan o aceleran (actúan como agonistas hacia) una actividad de otras dianas, incluyendo, aunque no de forma limitativa aquellos que afectan al crecimiento celular y/o a las rutas de supervivencia, tales como inhibidores de PI3K, inhibidores de AKT, inhibidores de mTOR, inhibidores de RAF/B-RAF, inhibidores de RAS, inhibidores de MEK, inhibidores de los receptores de muerte que incluyen agonistas de DR4 y DR5 tales como los anticuerpos agonísticos dirigidos contra DR4 o DR5 (por ejemplo, cedelizumab, tigatuzumab, drozirumab, conatumumab), agonistas de PPAR gamma (por ejemplo, efatutazona, troglitazona, pioglitazona, rosiglitazona), inhibidores de c-MET, inhibidores de Hsp-90 e inhibidores de la telomerasa.
Dichos agentes adicionales pueden ser antiangiogénicos, incluyendo, aunque no de forma limitativa, 25 antagonistas/inhibidores de VEGF (por ejemplo, bevacizumab, vandetanib).
Además, dichos agentes adicionales pueden ser inmunoterapéuticos tales como vacunas o agentes terapéuticos celulares.
Como se describe adicionalmente a continuación, estos y otros agentes pueden estar contenidos en las composiciones descritas en el presente documento, y puede administrarse en una variedad de formas, combinaciones y dosificaciones diferentes.
5. Composiciones
35 Este documento describe también composiciones farmacéuticas que comprenden un agente de unión a HER-3 como se describe en el presente documento, combinado con un segundo agente que se dirige contra otra proteína de la familia HER o es un compuesto quimioterapéutico, así como uno o más transportadores, diluyentes y/o adyuvantes farmacéuticamente aceptables. La expresión "composición farmacéutica", como se usa en el presente documento, se refiere a un compuesto o composición química capaz de inducir un efecto terapéutico deseado cuando se administra adecuadamente a un paciente (The McGraw-Hill Dictionary of Chemical Terms, Parker, Ed., McGraw-Hill, San Francisco (1985)). La potencia de las composiciones farmacéuticas proporcionadas en el presente documento se basa normalmente en la unión de la al menos una proteína de unión a HER-3. Esta unión puede conducir a una reducción de la transducción de la señal mediada por HER-3.
45 Un "transportador farmacéuticamente aceptable" (denominado también en el presente documento "excipiente" o "transportador") es un disolvente farmacéuticamente aceptable, un agente suspensor, un agente estabilizante, o cualquier otro vehículo farmacológicamente inerte para administrar uno o más compuestos terapéuticos (por ejemplo, proteínas de unión a HER) a un sujeto, que es no tóxico para la célula o mamífero que se expone al mismo a las dosificaciones y concentraciones empleadas. Los transportadores farmacéuticamente aceptables pueden ser líquidos o sólidos, y se pueden seleccionar con la manera de administración planificada a tener en cuenta a fin de proporcionar el volumen, la consistencia, y otras propiedades de transporte y químicas consistentes, cuando se combina con uno o más compuestos terapéuticos y cualesquiera otros componentes de una composición farmacéutica dada. Los transportadores farmacéuticamente aceptables típicos que no reaccionan perjudicialmente
55 con aminoácidos incluyen, a modo de ejemplo y no de limitación: agua, suero salino, agentes de unión (por ejemplo, polivinilpirrolidona o hidroxipropilmetilcelulosa), cargas (por ejemplo, lactosa y otros azúcares, gelatina, o sulfato de calcio), lubricantes (por ejemplo, almidón, polietilenglicol, o acetato de sodio), disgregantes (por ejemplo, almidón o almidón glicolato de sodio), y agentes humectantes (por ejemplo, laurilsulfato sódico). Los transportadores farmacéuticamente aceptables incluyen también soluciones acuosas con pH tamponado o liposomas (vesículas pequeñas compuestas de diversos tipos de lípidos, fosfolípidos y/o tensioactivos que son útiles para la administración de un fármaco a un mamífero). Los ejemplos adicionales de transportadores farmacéuticamente aceptables incluyen tampones tales como fosfato, citrato y otros ácidos orgánicos, antioxidantes tales como ácido ascórbico, polipéptidos de bajo peso molecular (de menos de aproximadamente 10 restos), proteínas tales como albúmina de suero, gelatina o inmunoglobulinas, polímeros hidrófilos tales como polivinilpirrolidona, aminoácidos
65 tales como glicina, glutamina, asparagina, arginina o lisina, monosacáridos, disacáridos y otros carbohidratos incluyendo glucosa, manosa o dextrinas, agentes quelantes, tales como EDTA, alcoholes azucarados tales como manitol o sorbitol, contraiones formadores de sales tales como sodio, y/o tensioactivos no iónicos tales como TWEEN™, polietilenglicol (PEG), y PLURONICS™.
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Los liposomas son vesículas que tienen una membrana formada de un material lipófilo y un interior acuoso que
5 puede contener la composición que se va a administrar. Los liposomas pueden ser particularmente útiles debido a su especificidad y a la duración de la acción que ofrecen desde el punto de vista de la administración del fármaco. Las composiciones de liposomas pueden estar formadas, por ejemplo, a partir de fosfatidilcolina, dimiristoil fosfatidilcolina, dipalmitoil fosfatidilcolina, dimiristoil fosfatidilglicerol, o dioleoil fosfatidiletanolamina. Están disponibles numerosos agentes lipófilos, incluyendo LIPOFECTIN® (Invitrogen/Life Technologies, Carlsbad, CA) y EFFECTENE™ (Qiagen, Valencia, CA).
Al menos uno de los agentes contenidos en una composición farmacéutica (por ejemplo, un agente de unión a HER3 o un agente que se une y/o inhibe otro miembro de la familia HER) puede acoplarse a un efector tal como caliqueamicina, duocarmicinas, auristatinas, maitansinoides, un radioisótopo, o un agente quimioterapéutico tóxico
15 tal como geldanamicina y maitansina. Dichos conjugados pueden ser particularmente útiles para dirigirse a células (por ejemplo, células cancerosas) que expresan HER-3.
La vinculación de proteínas de unión a radioisótopos puede proporcionar ventajas para los tratamientos tumorales. A diferencia de la quimioterapia y otras formas de tratamiento del cáncer, la radioinmunoterapia o la administración de una combinación de proteína de unión a radioisótopo puede dirigirse directamente a células cancerosas con daño mínimo al tejido sano y normal circundante. Con esta "poción mágica" los pacientes pueden tratarse con cantidades de radioisótopos mucho más pequeñas que otras formas de tratamiento disponibles actualmente. Los radioisótopos adecuados incluyen, por ejemplo, itrio90 (90Y), indio111 (111In), 131I, 99mTc, radioplata-111, radioplata-199, y bismuto213. El enlace de los radioisótopos con las proteínas de unión puede llevarse a cabo con, por ejemplo, quelatos
25 bifuncionales convencionales. Como la plata es monovalente, para el enlace de la radioplata-111 y la radioplata-199, pueden utilizarse enlazadores basados en azufre (Hazra et al. (1994) Cell Biophys. 24-25:1-7). El enlace de los radioisótopos de plata puede implicar reducir la inmunoglobulina con ácido ascórbico. Además, tiuxetan es un quelante enlazador de MX-DTPA unido a ibritumomab para formar ibritumomab tiuxetan (Zevalin) (Witzig (2001) Cancer Chemother. Pharmacol. 48 (Supl 1):91-95). Ibritumomab tiuxetan puede reaccionar con radioisótopos tales como indio111(111In) o 90Y para formar 111In-ibritumomab tiuxetan e 90Y-ibritumomab tiuxetan, respectivamente.
Las proteínas de unión descritas en el presente documento, particularmente cuando se usan para tratar el cáncer, pueden conjugarse con fármacos quimioterapéuticos tóxicos tales como maitansinoides, (Hamann et al. (2002) Bioconjug. Chem. 13:40-46), geldanamicinoides (Mandler et al. (2000) J. Natl. Cancer Inst. 92:1549-1551) y
35 maitansinoides, por ejemplo, el fármaco maitansinoide, DM1 (Liu et al. (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:86188623). Los enlazadores que liberan los fármacos en condiciones ácidas o reductoras o tras la exposición a proteasas específicas pueden emplearse con esta tecnología. Se puede conjugar una proteína de unión como se describe en la técnica.
Se puede conjugar una proteína de unión con auristatina-PE. Auristatina-PE, por ejemplo, es un agente antimicrotúbulos que es una modificación estructural del constituyente peptídico de un molusco marino sin concha, dolastatina 10. Auristatina-PE tiene actividad antitumoral y actividad vascular antitumoral (Otani et al. (2000) Jpn. J. Cancer Res. 91:837-44). Por ejemplo, auristatina-PE inhibe el crecimiento celular e induce la detención del ciclo celular y la apoptosis en líneas de células de cáncer de páncreas (Li et al. (1999) Int. J. Mol. Med. 3:647-53). Por
45 consiguiente, para dirigirse específicamente a la actividad antitumoral y las actividades vasculares antitumorales de la auristatina-PE en tumores concretos, la auristatina-PE puede conjugarse a una proteína de unión como se describe en el presente documento.
Las composiciones farmacéuticas descritas en el presente documento pueden contener también al menos un principio activo adicional. Los ejemplos de principios activos adicionales incluyen anticuerpos o inhibidores de bajo peso molecular de otras proteínas quinasas receptoras, tales como IGFR-1 y c-met, ligandos de receptores tales como el factor endotelial vascular (VEGF), agentes citotóxicos tales como doxorrubicina, cisplatino o carboplatino, citoquinas, o agentes antineoplásicos. Se conocen en la técnica muchos agentes antineoplásicos. Se puede seleccionar un agente antineoplásico entre el grupo de proteínas terapéuticas que incluyen, aunque no de forma
55 limitativa, anticuerpos y proteínas inmunomoduladoras. Se puede seleccionar un agente antineoplásico entre el grupo de moléculas pequeñas y agentes quimioterapéuticos consistentes en inhibidores mitóticos, inhibidores de quinasa, agentes alquilantes, antimetabolitos, antibióticos intercalantes, inhibidores de factor de crecimiento, inhibidores del ciclo celular, enzimas, inhibidores de topoisomerasa, inhibidores de la histona desacetilasa, agentes antisupervivencia, modificadores de la respuesta biológica, antihormonas (por ejemplo, antiandrógenos), estimulantes de microtúbulos, antraciclinas, y agentes antiangiogénesis. Cuando el agente antineoplásico es radiación, el tratamiento puede llevarse a cabo tanto con una fuente interna (por ejemplo, braquiterapia) como con una fuente externa (por ejemplo, radioterapia de rayos externa). El uno o más principio(s) activo(s) adicionales puede(n) administrarse con el agente de unión a HER3 y el segundo agente tanto de forma simultánea como separada, en una formación única o en formulaciones individuales (separadas) para cada principio activo.
65 Las composiciones farmacéuticas descritas en el presente documento pueden ser especialmente útiles para el diagnóstico, prevención, o tratamiento de una enfermedad hiperproliferativa. La enfermedad hiperproliferativa puede estar asociada con una transducción aumentada de la señal de la familia HER. En particular, la enfermedad puede estar asociada con una fosforilación aumentada de HER-3, y una formación aumentada del complejo entre HER-3 y otros miembros de la familia HER, una actividad aumentada de la PI3 quinasa, una actividad aumentada de la
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5 quinasa del extremo c-jun y/o la actividad de AKT, una actividad aumentada de ERK2 y/o PYK2, o cualquier combinación de los mismos. La enfermedad hiperproliferativa puede, por ejemplo, seleccionarse entre el grupo consistente en cáncer de mama, cáncer gastrointestinal, cáncer de páncreas, cáncer de próstata, cáncer de ovario, cáncer de estómago, cáncer de endometrio, cáncer de las glándulas salivales, cáncer de pulmón, cáncer de riñón, cáncer de colon, cáncer colorrectal, cáncer de tiroides, cáncer de vejiga, glioma, melanoma, u otros cánceres que expresan o sobreexpresan HER-3, y la formación de metástasis tumorales.
Se pueden formular composiciones farmacéuticas mezclando uno o más principios activos con uno o más transportadores, diluyentes, y/o adyuvantes, y opcionalmente otros agentes que se incorporan usualmente en las formulaciones para proporcionar una transferencia, administración, tolerancia, y similares mejoradas. Se puede 15 formular una composición farmacéutica, por ejemplo, en formulaciones liofilizadas, soluciones acuosas, dispersiones, o preparaciones sólidas, tales como comprimidos, grageas o cápsulas. Se pueden encontrar una multitud de formulaciones adecuadas en el formulario conocido por todos los químicos farmacéuticos: Remington’s Pharmaceutical Sciences (18ª ed, Mack Publishing Company, Easton, PA (1990)), particularmente el Capítulo 87 del anterior por Block, Lawrence. Estas formulaciones incluyen, por ejemplo, polvos, pastas, pomadas, gelatinas, ceras, aceites, lípidos, lípidos (catiónicos o aniónicos) que contienen vesículas (tales como LIPOFECTIN™), conjugados de ADN, pastas de absorción anhidras, emulsiones de aceite en agua y de agua en aceite, emulsiones de carbowax (polietilenglicoles de diversos pesos moleculares), geles semisólidos, y mezclas semisólidas que contienen carbowax. Cualquiera de las anteriores mezclas puede ser adecuada en los tratamientos y terapias que se describen en el presente documento, con la condición de que el principio activo en la formulación no sea inactivado por la
25 formulación y la formulación sea fisiológicamente compatible y tolerable con la ruta de administración. Véase, además, Baldrick (2000) Regul. Toxicol. Pharmacol. 32:210-218; Wang (2000) Int. J. Pharm. 203:1-60; Charman (2000) J. Pharm. Sci. 89:967-978; y Powell et al. (1998) PDA J. Pharm. Sci. Technol. 52:238-311), y las citas del anterior para la información adicional relacionada con las formulaciones, excipientes y transportadores bien conocidos por los químicos farmacéuticos.
Este documento pertenece también al uso de al menos un agente (por ejemplo, una proteína de unión a HER-3 aislada) como se describe en el presente documento, y al menos un principio activo diferente (por ejemplo, un agente que se une a otro miembro de la familia HER o un compuesto quimioterapéutico) en premezcla con transportadores, diluyentes y/o adyuvantes farmacéuticamente aceptables, para la fabricación de una composición
35 farmacéutica para el diagnóstico, prevención o tratamiento de una enfermedad hiperproliferativa (por ejemplo, una enfermedad asociada con HER-3). La composición farmacéutica puede ser una composición farmacéutica como se describe en el presente documento, y la enfermedad hiperproliferativa puede ser una enfermedad hiperproliferativa como se describe en el presente documento.
Los métodos para formular y administrar posteriormente composiciones terapéuticas son bien conocidos por los expertos en la materia. La dosificación generalmente es dependiente de la gravedad y la sensibilidad del estado de enfermedad que se va a tratar, con una duración del ciclo de tratamiento de algunos días a algunos meses o hasta que se efectúa una cura o se consigue una disminución del estado de enfermedad. Las personas normalmente expertas en la técnica determinan de forma rutinaria las dosificaciones óptimas, metodologías de dosificación y tasas
45 de repetición. Las dosificaciones óptimas pueden variar dependiendo de la potencia relativa de los polipéptidos individuales, y pueden estimarse generalmente basándose en la CE50 que se encuentra que es eficaz en modelos animales in vitro e in vivo. Típicamente, la dosificación es de 0,1 µg a 100 mg por kg de peso corporal, y puede proporcionarse una vez o más diariamente, bisemanalmente, semanalmente, mensualmente o incluso menos a menudo. Tras un tratamiento satisfactorio, puede ser deseable hacer que el paciente se someta a un tratamiento de mantenimiento para prevenir la recurrencia del estado de enfermedad.
Se pueden administrar las composiciones farmacéuticas mediante numerosos métodos, dependiendo de si se desea un tratamiento local o sistémicos y sobre la zona que se va a tratar. La administración puede ser, por ejemplo, tópica (por ejemplo, transdérmica, sublingual, oftálmica, o intranasal); pulmonar (por ejemplo, mediante inhalación o
55 insuflación de polvos o aerosoles); oral; o parenteral (por ejemplo, mediante inyección subcutánea, intratecal, intraventricular, intramuscular, o intraperitoneal, o mediante goteo intravenoso). La administración puede ser rápida (por ejemplo, mediante inyección) o se puede producir en un periodo de tiempo (por ejemplo, mediante infusión o administración lenta de formulaciones de formulaciones de liberación lenta). Para tratar tejidos del sistema nervioso central, se pueden administrar proteínas de unión a HER-3 mediante inyección o infusión en el fluido cerebro espinal, normalmente con uno o más agentes capaces de promover la penetración de los polipéptidos a través de la barrera hematoencefálica.
Las composiciones y formulaciones para administración intratecal o intraventricular pueden incluir soluciones acuosas estériles, que pueden contener también tampones, diluyentes y otros aditivos adecuados (por ejemplo,
65 potenciadores de la penetración, compuestos transportadores y otros transportadores farmacéuticamente aceptables).
Las composiciones farmacéuticas incluyen, sin limitación, soluciones, emulsiones, suspensiones acuosas, y formulaciones que contienen liposomas. Estas composiciones pueden generarse a partir de una variedad de componentes que incluyen, por ejemplo, líquidos preformados, sólidos autoemulsionantes y semisólidos autoemulsionantes. Las emulsiones son a menudo sistemas bifásicos que comprenden dos fases líquidas
5 inmiscibles mezcladas y dispersadas íntimamente entre sí; en general, las emulsiones son de una variedad tanto de agua en aceite (a/ac) como de aceite en agua (ac/a). Las formulaciones en emulsión se han utilizado ampliamente para la administración oral de agentes terapéuticos debido a su facilidad de formulación y eficacia de solubilización, absorción, y biodisponibilidad.
Los agentes de unión a HER pueden abarcar adicionalmente cualesquiera sales, ésteres, o las sales de dichos ésteres farmacéuticamente aceptables, o cualquier otro compuesto que, tras la administración a un animal, incluyendo un ser humano, sea capaz de proporcionar (de forma directa o indirecta) el metabolito biológicamente activo o un resto del mismo. Por consiguiente, por ejemplo, este documento proporciona sales de moléculas pequeñas y polipéptidos, profármacos y sales farmacéuticamente aceptables de dichos profármacos, y otros
15 bioequivalentes. El término "·profármaco" indica un agente terapéutico que se prepara en una forma inactiva y se convierte en una forma activa (es decir, un fármaco) en el cuerpo o células del mismo mediante la acción de enzimas endógenas u otros compuestos químicos y/o condiciones. El término "sales farmacéuticamente aceptables" se refiere a sales fisiológica y farmacéuticamente aceptables de los polipéptidos proporcionados en el presente documento (es decir, las sales que retienen la actividad biológica deseada del polipéptido progenitor sin impartir efectos toxicológicos no deseados). Los ejemplos de sales farmacológicamente aceptables incluyen, aunque no de forma limitativa, sales formadas con cationes (por ejemplo, sodio, potasio, calcio, o poliaminas tales como espermina); sales de adición de ácido formadas con ácidos inorgánicos (por ejemplo, ácido clorhídrico, ácido bromhídrico, ácido sulfúrico, ácido fosfórico, o ácido nítrico); y sales formadas con ácidos orgánicos (por ejemplo, ácido acético, ácido cítrico, ácido oxálico, ácido palmítico, o ácido fumárico).
25 Se describen en el presente documento composiciones farmacéuticas que contienen (a) uno o más agentes de unión a HER-3; (b) uno o más agentes que se unen a otro miembro de la familia HER; y (c) uno o más agentes diferentes que funcionan mediante un mecanismo diferente. Por ejemplo, uno o más agentes de (c) son intercambiables con aquellos de (b); fármacos antiinflamatorios, incluyendo, aunque no de forma limitativa, fármacos antiinflamatorios no esteroideos y corticoesteroides, y fármacos antivíricos, incluyendo, aunque no de forma limitativa, ribivirina, vidarabina, aciclovir y ganciclovir, se pueden incluir en las composiciones. Otros agentes no polipeptídicos (por ejemplo, agentes quimioterapéuticos) están también en el alcance de este documento. Dichos compuestos combinados se pueden usar juntos o secuencialmente.
35 Las composiciones pueden contener adicionalmente otros componentes complementarios que se encuentran convencionalmente en las composiciones farmacéuticas. Por lo tanto, las composiciones pueden incluir también materiales compatibles, materiales farmacéuticamente activos tales como, por ejemplo, antipruríticos, astringentes, anestésicos locales o agentes antiinflamatorios, o materiales adicionales útiles para formular físicamente diversas formas farmacéuticas de las composiciones proporcionadas en el presente documento, tales como colorantes, agentes aromatizantes, conservantes, antioxidantes, opacantes, agentes espesantes y estabilizantes. Además, la composición puede mezclarse con agentes auxiliares, por ejemplo, lubricantes, conservantes, estabilizantes, agentes humectantes, emulsionantes, sales para variar la presión osmótica, tampones, colorantes, aromatizantes, y sustancias aromáticas. Cuando se añaden, sin embargo, dichos materiales no deben interferir de forma indebida con las actividades biológicas de los componentes polipeptídicos en las composiciones proporcionadas en el presente
45 documento. Las formulaciones pueden esterilizarse si se desea.
Las formulaciones farmacéuticas, que pueden presentarse convenientemente en una forma farmacéutica, pueden prepararse de acuerdo con las técnicas convencionales bien conocidas en la industria farmacéutica. Dichas técnicas incluyen la etapa de poner en asociación los principios activos (por ejemplo, los agentes de unión de la familia HER proporcionados en el presente documento) con el(los) transportador(es) o excipiente(s) farmacéuticos deseados. Típicamente, las formulaciones pueden prepararse uniformemente y poner los principios activos en íntima asociación con transportadores líquidos o transportadores sólidos finamente divididos o ambos, y a continuación, en caso necesario, conformar el producto. Las formulaciones pueden esterilizarse si se desea, con la condición de que el método de esterilización no interfiera con la eficacia del polipéptido contenido en la formulación.
55 Las composiciones descritas en el presente documento pueden formularse en cualquiera de muchas formas farmacéuticas posibles tales como, aunque no de forma limitativa, comprimidos, cápsulas, jarabes líquidos, geles blandos, supositorios, y enemas. las composiciones pueden también formularse como suspensiones en medios acuosos, no acuosos o mixtos. Las suspensiones acuosas pueden contener además sustancias que aumentan la viscosidad de la suspensión incluyendo, por ejemplo, carboximetilcelulosa sódica, sorbitol, y/o dextrano. Las suspensiones pueden contener también estabilizantes.
Se pueden combinar las proteínas de unión a HER con material de envasado y comercializarse como kits para el tratamiento de las enfermedades asociadas a HER-3. Son bien conocidos los componentes y métodos para producir
65 artículos de fabricación. Los artículos de fabricación pueden combinar uno o más de los polipéptidos y compuestos que se muestran en las secciones anteriores. Además, el artículo de fabricación puede incluir además, por ejemplo,
tampones u otros reactivos de control para reducir o vigilar la formación del complejo inmunitario reducido. Se pueden incluir en dichos kits instrucciones que describan como los polipéptidos son eficaces para tratar las enfermedades asociadas con HER-3. Cualquiera de los primeros agentes, los segundos agentes y agentes adicionales podría administrarse en nanopartícula(s) o liposoma(s), o cualesquiera otras forma(s) adecuadas.
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6. Métodos
Este documento describe también métodos para tratar o prevenir enfermedades y dolencias asociadas con la expresión de HER-3. Por ejemplo, un método puede incluir poner en contacto un sujeto o muestra biológica procedente de un sujeto (por ejemplo, un mamífero tal como un ser humano) con una proteína de unión a HER-3 en combinación con un segundo agente, como se describe en el presente documento. La muestra puede ser una célula que muestra la expresión de HER-3, tal como una célula tumoral, una muestra de sangre u otra muestra adecuada. El contacto puede producirse in vivo, tal como cuando una composición que contiene un agente de unión a HER-3 y un segundo agente que se une a otro miembro de la familia HER se administra a un sujeto que lo necesita. Las
15 enfermedades o dolencias asociadas con la expresión de HER-3 que se pueden tratar utilizando los métodos descritos en el presente documento incluyen, por ejemplo, enfermedades hiperproliferativas tales como cáncer de mama, cáncer gastrointestinal, cáncer de páncreas, cáncer de próstata, cáncer de ovario, cáncer de estómago, cáncer de endometrio, cáncer de las glándulas salivales, cáncer de pulmón, cáncer de riñón, cáncer de colon, cáncer colorrectal, cáncer de tiroides, cáncer de vejiga, glioma, melanoma, cáncer renal, cáncer de mama metastásico, cáncer de pulmón no microcítico, carcinoma epidermoide, fibrosarcoma, melanoma, carcinoma nasofaríngeo, carcinoma escamocelular, y otros cánceres positivos para HER-3, que expresan o sobreexpresan HER-3.
El término "tratamiento o prevención", cuando se usa en el presente documento, se refiere tanto a un tratamiento terapéutico y profiláctico como a medidas preventivas, que se pueden usar para prevenir, ralentizar, o disminuir los 25 efectos de una dolencia o trastorno patológico dirigido. Aquellos que necesitan de prevención o tratamiento pueden incluir aquellos que ya padecen el trastorno, así como para aquellos que tengan tendencia a desarrollar el trastorno,
o aquellos en los que se va a prevenir el trastorno. El paciente que necesita prevención o tratamiento puede ser un paciente mamífero (es decir, cualquier animal clasificado como un mamífero, incluyendo seres humanos, animales domésticos y de granja, y animales de zoo, animales de competición, o mascotas, tales como perros, gatos, ganado, caballos, ovejas, cerdos, cabras, conejos, etc.) En algunas realizaciones, el paciente que necesita tratamiento es un paciente humano.
Los métodos para prevenir o tratar enfermedades o dolencias asociadas con la expresión de HER-3 en un paciente que los necesita pueden incluir administrar al paciente cantidades eficaces de al menos un agente de unión a HER-3 35 como se describe en el presente documento y al menos un agente diferente frente a otro miembro de la familia HER,
o un compuesto quimioterapéutico (por ejemplo, al menos uno de los agentes "adicionales/suplementarios" descritos anteriormente, que son intercambiables con los segundos agentes que se unen a y/o inhiben otra familia HER). Dicho tratamiento puede, por ejemplo, inhibir el crecimiento, la migración o la invasión de células anómalas. El agente contra HER-3 y el al menos un agente diferente pueden administrarse simultáneamente (por ejemplo, cuando están contenidos en la misma composición, o por premezcla en una bolsa i.v. común), o por separado (por ejemplo, secuencialmente). Las enfermedades o dolencias asociadas con la expresión de HER-3 pueden tratarse utilizando los métodos proporcionados en el presente documento e incluyen, por ejemplo, las enfermedades hiperproliferativas relacionadas en el presente documento. El paciente que necesita de prevención o tratamiento puede ser un mamífero (por ejemplo, un ser humano, un animal doméstico o de granja, o un animal de zoo, de competición, o
45 mascota, tal como un perro, gato, vaca, caballo, oveja, cerdo, cabra, o conejo). En algunos casos, el paciente es un paciente humano.
Como se usa en el presente documento, la expresión "cantidad eficaz" es una cantidad de un agente que da como resultado una disminución o estabilización en uno o más síntomas o características clínicas de la dolencia asociada a HER-3 que se está tratando. Por ejemplo, la administración de una cantidad eficaz de una composición como se describe en el presente documento puede dar como resultado la ralentización de la progresión del crecimiento tumoral, un tamaño tumoral disminuido, o una activación disminuida de HER-3 o de los biomarcadores sensibles a HER-3 (por ejemplo, Akt, HER-2, ERK, o EGF-R). La ralentización o disminución puede ser cualquier reducción en comparación con un valor previo (por ejemplo, un 5%, 10%, 20%, 25%, o más de una reducción del 25% en los
55 síntomas o características). Una "cantidad eficaz" puede dar como resultado una enfermedad estable.
Además de los modos de administración clásicos de los potenciales agentes terapéuticos de las proteínas de unión, por ejemplo, mediante las formulaciones anteriormente mencionadas, pueden ser también útiles modalidades de administración recientemente desarrolladas. Por ejemplo, se ha notificado la administración local de un anticuerpo monoclonal marcado con 131I para el tratamiento de tumores cerebrales primarios tras extirpación quirúrgica. Además, la inyección estereotáctica intracerebral directa de anticuerpos monoclonales y sus fragmentos se está estudiando también clínica y preclínicamente. La perfusión hiperosmolar intracarótida es una estrategia experimental para dirigir anticuerpos monoclonales humanos conjugados con fármacos a neoplasias malignas en el cerebro primario.
65 Tal como se ha descrito anteriormente, la dosis de los agentes administrada puede depender de una variedad de factores. Estas incluyen, por ejemplo, la naturaleza de los agentes, el tipo de tumor, y la ruta de administración. Debe hacerse hincapié en que los presentes métodos no se limitan a ninguna dosis concreta. Se conocen en la técnica los métodos para determinar las dosis adecuadas, e incluyen aquellos descritos en los Ejemplos y los Ejemplos Comparativos en el presente documento.
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5 Dependiendo del tipo y la gravedad de la dolencia que se va a tratar, se pueden administrar hasta aproximadamente 20 mg/kg de cada anticuerpo a un paciente que lo necesita, por ejemplo, mediante una o más administraciones separadas o mediante infusión continua. Una dosificación diaria típica puede variar entre aproximadamente 1 µg/día a aproximadamente 100 mg/día o más, dependiendo de los factores mencionados anteriormente. Para administraciones repetidas a lo largo de varios días o un periodo mayor, dependiendo de la dolencia que se va a tratar, el tratamiento puede ser sostenido hasta que se produzca una supresión deseada de los síntomas de enfermedad.
Un método como se describe en el presente documento puede incluir analizar un marcador concreto (por ejemplo,
15 HER-3) en una muestra biológica procedente de un sujeto para determinar si el sujeto tiene una enfermedad asociada con la expresión de HER-3. dichos métodos se pueden usar para seleccionar sujetos que tienen enfermedades asociadas con HER-3. En dichos métodos, la etapa de análisis puede llevarse a cabo antes de la etapa de administración, y dicho cribado de pacientes puede evitar tratamiento que probablemente no sean eficaces. Por lo tanto, en algunos casos, los métodos descritos en el presente documento pueden incluir además detectar un antígeno de HER-3 en o sobre una célula, para la determinación de la concentración de un antígeno de HER-3 en pacientes que padecen de una enfermedad hiperproliferativa como se ha mencionado anteriormente, o para la estadificación de una enfermedad hiperproliferativa en un paciente. Para estadificar la progresión de una enfermedad hiperproliferativa en un sujeto bajo estudio, o para caracterizar la respuesta del sujeto a un curso de tratamiento, puede tomarse una muestra de sangre del sujeto y puede determinarse la concentración del antígeno
25 de HER-3 presente en la muestra. La concentración obtenida de esta manera puede utilizarse para identificar en qué intervalo de concentraciones se encuentra el valor. El intervalo identificado de esta manera puede correlacionarse con una etapa de progresión o una etapa de tratamiento identificada en las diversas poblaciones de sujetos diagnosticados, proporcionado así una etapa para el sujeto en estudio. Una biopsia de la enfermedad, por ejemplo, de tejido canceroso, obtenida del paciente también puede utilizarse para evaluar la cantidad de antígeno de HER-3 presente. La cantidad de antígeno de HER-3 presente en el tejido de la enfermedad puede evaluarse utilizando, por ejemplo, inmunohistoquímica, ELISA o una matriz de anticuerpos utilizando anticuerpos dirigidos contra HER-3 como se describe en el presente documento. Otros parámetros de interés diagnóstico son el estado de dimerización así como las moléculas asociadas a la dimerización de la proteína HER-3 y el estado de activación de esta y sus moléculas asociadas. Los métodos analíticos de proteínas para determinar aquellos parámetros son bien conocidos
35 en la técnica y son entre otros las técnicas de la transferencia western y las técnicas de inmunoprecipitación, el análisis FACS, la reticulación química, la transferencia de energía de resonancia de bioluminiscencia (BRET), la transferencia de energía de resonancia de fluorescencia (FRET) y similares (por ejemplo, Price et al. (2002) Methods Mol. Biol. 218:255-268, o la tecnología eTag (documentos WO 05/03707, WO 04/091384 y WO 04/011900).
En algunos casos, un método como se describe en el presente documento puede incluir una o más etapas para vigilar el resultado terapéutico del tratamiento. Por ejemplo, se puede vigilar un sujeto para los síntomas de su enfermedad, para determinar si se ha producido una reducción en los síntomas. se puede vigilar también al sujeto, por ejemplo, para los efectos secundarios potenciales del tratamiento. La vigilancia puede llevarse a cabo tras la etapa de administración, y, en algunas realizaciones, puede llevarse a cabo múltiples veces (por ejemplo, entre
45 administraciones, si las dosificaciones se proporcionan más de una vez). Dichos métodos pueden utilizarse para evaluar la eficacia y seguridad de los métodos de tratamiento descritos en el presente documento, por ejemplo.
La invención se describirá adicionalmente en los siguientes ejemplos, que no limitan el alcance de la invención descrito en las reivindicaciones.
Ejemplos
Ejemplo 1: Antígeno de HER-3 y preparación de la línea de células
55 Se prepararon proteínas HER-3 recombinantes. Se clonó el ADNc del dominio extracelular de HER-3 (ECD) mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) de pcDNA3-HER-3 (vector de expresión con HER-3 de longitud completa, Wallasch et al. (1995) EMBO J. 14:4267-4275) con cebadores basados en la secuencia de HER-3 (n.º de registro GeneBank NM_001982): Cebador directo: 5’-CGGGATCCATGTCCTAGCCTAGGGGC-3’ (SEQ ID NO: 233); Cebador inverso: 5’-GCTCTAGATTAATGATGATGATGATGATG TTGTCCTAAACAGTCTTG-3’ (SEQ ID NO: 234).
El producto de la PCR se digirió con BamH1 y XbaI y se ligó en pcDNA3 (Invitrogen) digerido con BamH1 y XbaI. Se transfectaron los plásmidos en células HEK293 utilizando un método CaPO4. La proteína de fusión HER-3-HIS se purificó a partir de medio acondicionado recogido mediante cromatografía de afinidad Ni-NTA.
65 Se generaron células Rati HER-3 mediante transferencia génica retrovírica. Brevemente, se sembraron células
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5 placa de 6 cm) con sobrenadantes de células GP+E 86 liberando títulos elevados de pLXSN o pLXSN-HER-3, virus p (> 1 X 106 G418 u.f.c./ml; m.o.i. de 10) durante 4-12 horas en presencia de Polibreno (4 mg/ml; Aldrich). Tras cambiar el medio, se inició la selección de células RatI con G418. Normalmente, se repicaron clones estables tras la selección durante 21 días.
10 Ejemplo 2: Expresión de HER-3 en líneas de células de cánceres humanos
Se cuantificó la expresión de HER-3 en un panel de líneas de células de cánceres humanos para elucidar el papel de HER-3 en la formación del cáncer en seres humanos. Las líneas de células de cánceres se hicieron crecer como recomendaba la ATCC. De forma detallada, se recogieron 105 células con EDTA 10 mM en PBS, se lavaron una vez 15 con tampón FACS (PBS FCS al 3%, azida al 0,4%) y se sembraron en una placa de fondo redondo de 96 pocillos. Las células se centrifugaron durante 3 minutos a 1000 rpm para eliminar el sobrenadante y a continuación se volvieron a suspender con anticuerpo 2D1D12 dirigido contra □-HER-3 (WO03013602) (3 µg/ml). Se incubaron las suspensiones celulares en hielo durante 1 hora, se lavaron dos veces con tampón FACS, y se volvieron a suspender con anticuerpo secundario de burro (100 µl/pocillo) dirigido contra PE humana (Jackson) diluido 1:50 en tampón
20 FACS. Las suspensiones celulares se incubaron en hielo en la oscuridad durante 30 minutos, se lavaron dos veces con tampón FACS y se analizaron (FACS, Beckman Coulter). Se expresó HER-3 en una variedad de líneas de células de cánceres humanos, incluyendo varias líneas de células de cánceres de mama, colon, epidermoide, melanoma, nasofaringe, ovario, páncreas, y próstata. Véase, las figuras de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345, que se han incorporado por tanto por referencia en su totalidad en el presente documento.
25
Ejemplo 3: Inmunización y titulación
La proteína HER-3 ECD que se preparó como se ha descrito en el Ejemplo 1 y las células C32 (Human melanoma; ATCC n.º CRL-1585) se usaron como antígeno. Se desarrollaron anticuerpos monoclonales dirigidos contra HER-3
30 inmunizando secuencialmente ratones XENOMOUSE® (variedades XMG1 y XMG4; Abgenix, Inc., Fremont, CA). Los animales XENOMOUSE® se inmunizaron mediante la almohadilla plantar para todas la inyecciones. El volumen total de cada inyección fue de 50 µl por ratón, 25 µl por almohadilla plantar.
Para la cohorte n.º 1 (ratones 10 XMG1), la inmunización inicial fue con 10 µg de proteína HER-3 ECD premezclada
35 1:1 (v/v) con TITERMAX GOLD® (Sigma, Oakville, ON) por ratón. Se prepararon los cinco refuerzos posteriores con 10 µg de proteína HER-3 ECD premezclada 1:1 (v/v) con 100 µg de gel de alum (Sigma, Oakville, ON) en D-PBS exento de pirógeno. El sexto refuerzo consistió en 10 µg de proteína HER-3 ECD premezclada 1:1 (v/v) con TITERMAX GOLD®. La séptima inyección consistió en 10 µg de proteína HER-3 ECD premezclada 1:1 v/v con 100 µg de gel de alum. Se realizó un refuerzo final con 10 µg de proteína HER-3 ECD en DPBS exento de pirógeno, sin
40 adyuvante. Los ratones XENOMOUSE® se inmunizaron en los días 0, 4, 7, 11, 15, 20, 24, y 29 para este protocolo, y se llevaron a cabo las fusiones en el día 33. Las dos extracciones se realizaron mediante un procedimiento de exsanguinación retroorbital en el día 13 después del cuarto refuerzo y en el día 19 después del sexto refuerzo. No hubo cohorte n.º 2. Para la cohorte n.º 3 (ratones 10 XMG1) y la cohorte n.º 4 (ratones 10 XMG4), la primera inyección fue con 107 células C32 en PBS de Dulbecco exento de pirógeno (DPBS) premezclado 1:1 (v/v) con
45 TITERMAX GOLD® por ratón. Los siguientes cuatro refuerzos fueron con 107 células C32 en DPBS exento de pirógeno, premezclado con 25 µg de Adju-Phos y 10 µg de CpG por ratón. El sexto refuerzo fue con 107 células C32 en DPBS exento de pirógeno, premezclado 1.1 (v/v) con TITERMAX GOLD® por ratón. El séptimo, octavo, y noveno refuerzos fueron con 107 células C32 en DPBS exento de pirógeno, premezclado con 25 µg de Adju-Phos y 10 µg de CpG por ratón. El décimo a decimo catorce refuerzos fueron con 5 µg de proteína HER-3 ECD en DPBS exento de
50 pirógeno, premezclado con 25 µg de Adju-Phos y 10 µg de CpG por ratón. Un refuerzo final consistió en 5 µg de proteína HER-3 ECD en DPBS exento de pirógeno, sin adyuvante. Para ambas cohortes n.º 3 y n.º 4, se inmunizaron los ratones en los días 0, 3, 7, 11, 14, 17, 21, 24, 28, 33, 35, 38, 42 y 45, y se llevaron a cabo las fusiones en el día 49. Las tres extracciones se realizaron mediante un procedimiento de exsanguinación retroorbital en el día 12 después del cuarto refuerzo, en el día 19 después del sexto refuerzo, y en el día 40 después del
55 duodécimo refuerzo.
Selección de animales para la recogida por título: Para la cohorte n.º 1, se determinaron los títulos del anticuerpo dirigido contra HER-3 en el suero de ratones inmunizados mediante ELISA frente a la proteína HER-3 ECD. se determinó el título específico de cada animal XENOMOUSE® a partir de la densidad óptica a 650 nm, y se muestra
60 en la TABLA 1 siguiente. El valor del título es el recíproco de la dilución mayor de sueros con una lectura de DO de dos veces la del fondo. Por lo tanto, cuanto mayor sea el número, mayor será la respuesta inmunohumoral a HER-3 ECD.
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TABLA 1
Cohorte n.º 1, XMG1
ID de ratón
Después de 4 inyecciones. Después de 6 inyecciones
P3421
8.000 11.000
P3422
850 2.600
P3423
2.700 5.200
P3424
3.200 9.100
P3425
5.400 2.500
P3426
700 1.500
P3427
5.800 7.000
P3428
3.900 4.300
P3429
2.200 2.500
P34210
600 850
NC
250 175
PC
377.000 311.000
NC
mAb IL-8 D39 2.1
PC
xHER-3-2D1D12
Para las cohortes n.º 3 y n.º 4, se determinaron los títulos de anticuerpo dirigido contra HER-3 en el suero de ratones inmunizados mediante FACS utilizando células Rat1/HER-3 (línea de células positiva para antígeno) y células Rat1/pLSXN (línea de células negativa para antígeno). Se muestran los datos en las TABLAS 2 y 3 y se presentan como media geométrica (GeoMan) de la intensidad de la fluorescencia de las células de la tinción celular dirigida contra HER-3 por las diluciones en serie de las muestras de suero.
TABLA 2 TABLA 3 Ejemplo 4: Recuperación de linfocitos, Aislamiento de linfocitos B, Fusiones y generación de hibridomas
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5 Se sacrificaron ratones inmunizados y se extrajeron los ganglios linfáticos y se combinaron los de cada cohorte. Se disociaron las células linfáticas triturándolos en DMEM para liberar las células de los tejidos, y se suspendieron las células en DMEM. Se contaron las células, y se añadieron 0,9 ml de DMEM por 100 millones de linfocitos al aglomerado de células para resuspender las células suave, pero completamente. Utilizando 100 µl de CD90+ perlas magnéticas por 100 millones de células, se marcaron las células incubando las células con las perlas magnéticas a
10 4ºC durante 15 minutos. La suspensión de células marcada magnéticamente que contenía hasta 108 células positivas (o hasta 2x109 células totales) se cargó sobre una columna LS+ y la columna se lavó con DMEM. Se recogió el efluente total como la fracción negativa para CD90 (la mayoría de estas células se esperaba que fueran linfocitos B).
15 La fusión se llevó a cabo mezclando los linfocitos B enriquecidos lavados con las anteriores células P3X63Ag8.653 de mieloma no secretoras adquiridas de la ATCC (n.º de catálogo, CRL 1580) (Kearney et al. (1979) J. Immunol. 123:1548-1550) a una relación de 1:1. La mezcla de células se aglomeró suavemente mediante centrifugación a 800
g. Tras la eliminación completa del sobrenadante, las células se trataron con 2 a 4 ml de solución de pronasa, (CalBiochem, n.º de catálogo 53702; 0,5 mg/ml en PBS) durante no más de 2 minutos. A continuación se añadieron
20 3 a 5 ml de FBS para detener la actividad de la enzima, y se ajustó la suspensión a un volumen total de 40 ml la solución de fusión electrocelular, ECFS (sacarosa 0,3 M, Sigma, n.º de catálogo S7903, acetato de magnesio 0,1 mM, Sigma, n.º de catálogo M2545, acetato de calcio 0,1 mM, Sigma, n.º de catálogo C4705). Se retiró el sobrenadante tras la centrifugación y las células se volvieron a suspender en 40 ml de ECFS. Se repitió esta etapa de lavado y las células se volvieron a suspender de nuevo en ECFS a una concentración de 2x106 células/ml.
25 Se llevó a cabo la fusión electrocelular utilizando un generador de fusión, modelo ECM2001, Genetronic, Inc., San Diego, CA. El tamaño de la cámara de fusión era de 2,0 ml y se utilizaron los siguientes parámetros de ajuste del instrumento: Condiciones de alineación: voltaje: 50 V, tiempo: 50 segundos; rotura de membrana: voltaje: 3000 V, tiempo: 30 µs; tiempo de espera después de la fusión: 3 segundos.
30 Después de ECF, se retiraron las suspensiones de células de la cámara de fusión en condiciones estériles y se transfirieron en un tubo estéril que contenía el mismo volumen de medio de cultivo de hibridoma (DMEM (JRH Biosciences), FBS al 15% (Hyclone), suplementado con L-glutamina, pen/strep, OPI (oxaloacetato, piruvato, insulina de bovino) (todo de Sigma) e IL-6 (Boehringer Mannheim). Se incubaron las células durante 15 a 30 minutos a 37ºC,
35 y a continuación se centrifugaron a 400 g durante cinco minutos. Las células se volvieron a suspender suavemente en un pequeño volumen de medio de selección de hibridoma (Hybridoma Culture Medium suplementado con 0,5x HA (Sigma, n.º de catálogo. A9666)), y el volumen se ajustó adecuadamente con más medio de selección de hibridoma, basándose en una siembra en placas final de 5x106 linfocitos B por placa de 96 pocillos y 200 µl por pocillo. Las células se mezclaron y pipetearon suavemente en placas de 96 pocillos y se dejaron crecer. En el día 7
40 o 10, se retiró la mitad del medio, y las células se volvieron a alimentar con medio de selección de hibridoma.
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Ejemplo 5: Selección de los anticuerpos candidatos mediante ELISA
Después de 14 días de cultivo, se llevó a cabo el cribado primario de los sobrenadantes de hibridomas de la cohorte n.º 1 (los ratones en la cohorte uno se dividieron arbitrariamente en la fusión n.º 1 y n.º 2) para los anticuerpos 5 específicos de HER-3 mediante ELISA utilizando HER-3 ECD etiquetada con his purificada y contracribado frente a una proteína irrelevante etiquetada con his mediante ELISA utilizando HRP de cabra dirigido contra huIgGFc (Caltag Inc., n.º de catálogo H10507, utilizando una concentración, la dilución fue 1:2000) para detectar la unión de IgG a la HER-3 ECD inmovilizada sobre placas ELISA. Se retiraron los sobrenadantes de cultivos viejos de pocillos con células de hibridoma positivas en crecimiento en un cribado primario, y las células de hibridoma positivas para HER3 se suspendieron con medio de cultivo de hibridoma reciente y se transfirieron a placas de 24 pocillos. Después de 2 días en cultivo, estos sobrenadantes se utilizaron durante un cribado de confirmación secundario. En el cribado de confirmación secundario de los anticuerpos IgGk completamente humanos, específicos de HER-3, se cribaron los positivos en el primer cribado mediante ELISA con dos conjuntos de anticuerpos detectores: HRP de cabra dirigido contra huIgGFc (Caltag Inc., n.º de catálogo H10507, utilizando una dilución 1:2000) para la detección de la cadena
15 gamma humana, y HRP de cabra dirigido contra hIg kappa (Southern Biotechnology, n.º de catálogo 2060-05) para la detección de la cadena ligera kappa humana. A partir de la cohorte n.º 1.91 se generaron anticuerpos monoclonales específicos de HER-3 de IgG/kappa completamente humanos.
Ejemplo 6: Selección de anticuerpos candidatos mediante FMAT/FACS
Después de 14 días de cultivo, los sobrenadantes de hibridomas de las cohortes n.º 3 y n.º 4 (fusiones n.º 3 y n.º 4) se cribaron para los anticuerpos monoclonales específicos de HER-3 mediante FMAT. En el cribado primario, los sobrenadantes de hibridomas a la dilución 1:10 final se incubaron con células Rat1-HER-3 que expresaban HER-3 humana y 400 ng/ml de F(ab’)2 de cabra conjugado con Cy5 dirigido contra IgG humana, anticuerpos específico de 25 Fc (Jackson ImmunoResearch, n.º de catálogo 109-176-098) a temperatura ambiente durante 6 horas. Se midieron la unión de anticuerpos y los anticuerpos de detección contra las células mediante FMAT (Applied Biosystems). Se determinó la unión no específica de anticuerpos para las células mediante su unión a células Rat1 progenitoras. Se seleccionaron un total de 420 anticuerpos específicos productores de hibridomas a partir del cribado primario de la fusión n.º 3. Los sobrenadantes de estos cultivos expandidos se ensayaron de nuevo utilizando el mismo protocolo FMAT, y se confirmó que 262 de los mismos se unían específicamente a células que expresaban HER-3. Un total de 193 anticuerpos específicos de HER-3 productores de hibridomas se seleccionaron a partir del cribado primario de la fusión n.º 4. Los sobrenadantes de estos cultivos expandidos se ensayaron mediante FACS y se confirmó que 138 de los mismos se unían específicamente a células que expresaban HER-3. En el ensayo FACS de confirmación, se incubaron células Rat1-XHER-3 y células Rat1 progenitoras (como control negativo) con sobrenadantes de
35 hibridoma a una dilución 1:2 durante 1 hora a 40ºC en PBS que contenía FBS al 2%. Tras el lavado con PBS, se detectó la unión de anticuerpos a las células mediante 2,5 µg/ml de F(ab’)2 de cabra conjugado con Cy5 dirigido contra IgG humana, anticuerpo específico de Fc (JIR n.º 109-176-098) y 5 µg/ml de F(ab’)2 de cabra conjugado con PE dirigido contra anticuerpos específico de kappa humano (SB n.º 2063-09). Tras retirar los anticuerpos no unidos lavando con PBS, se fijaron las células mediante cytofix (BD n.º 51-2090KZ) a una dilución 1:4 y se analizaron mediante FACSCalibur.
Ejemplo 7: Selección de hibridomas para clonación
Se seleccionaron anticuerpos de la cohorte n.º 1 para la clonación del hibridoma basándose en la especificidad de
45 HER-3 sobre HER1 (EGF-R), HER-2 y HER-4 en ELISA utilizando dominios extracelulares recombinantes purificados (disponibles de, por ejemplo, R&D Biosystems, Mineápolis, MN), análisis basado en FACS de líneas de células tumorales humanas que expresan diferentes miembros de la familia HER, y un aumento > de 5 veces en la intensidad fluorescente media en la tinción FACS para las células positivas para HER-3 sobre el fondo. Basándose en estos criterios, se seleccionaron un total de 23 líneas de hibridomas para la clonación mediante siembra en placas con dilución limitante.
Se seleccionaron los anticuerpos de las cohortes 3 y 4 para la clonación del hibridoma basándose en la especificidad de HER-3 sobre HER-1 (EGF-R), HER-2 y HER-4 más tres criterios diferentes. El primer criterio fue un cribado mediante ELISA de anticuerpos con epítopos contenidos en el dominio L2 de HER-3 (véase el Ejemplo 8 a
55 continuación).
El segundo criterio fue la neutralización de la unión de la heregulina alfa biotinilada para las células que expresan HER-3 en un ensayo basado en FACS. Se recogieron células SKBR-3, se lavaron en medio de cultivo, se aglomeraron mediante centrifugación y se volvieron a suspender en medio de cultivo. Las células resuspendidas se distribuyeron en alícuotas en placas de 96 pocillos. Se centrifugaron las placas para aglomerar las células. Se añadieron anticuerpos de ensayo a los sobrenadantes de hibridoma agotado a 25 µl/pocillo y se incubaron durante 1 hora en hielo para permitir la unión del anticuerpo. Se añadieron cincuenta µl de una solución de heregulina-alfa10 nM (R&D Biosystems) a cada pocillo para una concentración final de 5 nM y se incubaron en hielo durante 1,5 horas. Se lavaron las células en 150 µl de PBS, se aglomeraron mediante centrifugación y se eliminó el sobrenadante. Se 65 volvieron a suspender las células en 50 µl de anticuerpo policlonal dirigido contra HRG-alfa a 10 µg/ml y se incubaron durante 45 minutos en hielo. Se lavaron las células en 200 µl de PBS, se aglomeraron mediante centrifugación, y se eliminó el sobrenadante. Se añadieron cincuenta µl de una solución de anticuerpo de conejo marcado con Cy5 dirigido contra un anticuerpo policlonal de cabra a 5 µg/ml más 7AAD a 10 µg/ml y se incubaron en hielo durante 15 minutos. Se lavaron las células en 200 µl de PBS, se aglomeraron mediante centrifugación y se eliminó el sobrenadante. Se volvieron a suspender las células en 100 µl de tampón FACS y se leyeron en el FACS. 5 Los anticuerpos de ensayo dirigidos contra HER-3 que redujeron la unión de la heregulina-alfa son aquellos que tenían una intensidad de la fluorescencia más baja. Como controles positivos, se utilizaron diluciones en serie 1:5 de
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10.000 ng/ml a 16 ng/ml de un mAb de HER-3 de ratón (105,5) o el mAb deHER-3 dirigido contra IgG1 humana, se utilizó U1-49. Los controles negativos fueron solo heregulina-alfa, solo células, anticuerpo de cabra solo dirigido contra anticuerpo policlonal de heregulina-alfa y anticuerpo de conejo solo dirigido contra anticuerpo policlonal de cabra marcado con Cy5.
El tercer criterio fue con respecto a la clasificación para la afinidad y/o la intensidad de la fluorescencia media relativa superior en FACS utilizando líneas de células que expresaban HER-3. Se llevó a cabo la clasificación relativa para la afinidad normalizando las concentraciones de anticuerpos específicas de HER-3 y representándolas gráficamente
15 frente a los datos procedentes del ELISA de antígeno limitantes del siguiente modo.
Normalización de las concentraciones de anticuerpos específicas de antígenos utilizando ELISA de antígenos elevado: Utilizando un método ELISA, se normalizaron los sobrenadantes para la concentración del anticuerpo específico de antígeno. Utilizando dos anticuerpos IgG1 humanos dirigidos contra HER-3 de la cohorte 1 de una concentración conocida titulados en paralelo, se generó una curva patrón y las cantidades de anticuerpo específico de antígeno en los sobrenadantes del hibridoma de ensayo de las cohortes 3 y 4 se compararon con el patrón. De este modo, se estimó la concentración de anticuerpo IgG de HER-3 humano en cada cultivo de hibridoma.
Se prepararon placas de neutravidina revistiendo con neutravidina a 8 µg/ml en 1XPBS/azida de sodio al 0,05%
25 sobre placas de unión de medio Costar 3368 a 50 µl/pocillo con incubación durante la noche a 4ºC. Al día siguiente se bloquearon las placas con 1XPBS/leche desnatada al 1%. HER-3 ECD etiquetada con his fotobiotinilada a 500 ng/ml en 1XPBS/leche desnatada al 1% se unió a las placas de neutravidina incubando durante 1 hora a temperatura ambiente. El sobrenadante de hibridoma, diluido en serie 1:2,5 desde una dilución de partida de 1:31 a una dilución final de 1:7568 en1XPBS/leche desnatada al 1%/azida al 0,05%, se añadió a 50 µl/pocillo, y a continuación se incubó durante 20 horas a temperatura ambiente. Se utilizaron diluciones en serie para asegurar la obtención de lecturas de DO para cada valor desconocido en el intervalo lineal del ensayo. A continuación, se añadió un anticuerpo de detección secundario, Fc de cabra dirigido contra IgG humana HRP a 400 ng/ml en 1XPBX/leche desnatada al 1% a 50 µl/pocillo. Después de 1 hora a temperatura ambiente, las placas se lavaron de nuevo 5 veces con agua y se añadieron 50 µl de sustrato TMB de un componente a cada pocillo. La reacción se detuvo después de
35 30 minutos mediante la adición de 50 µl de ácido clorhídrico 1 M a cada pocillo y se leyeron las placas a una longitud de onda de 450 nm. Se generó una curva patrón a partir de los dos mAb IgG1 HER-3 de la cohorte n.º 1, se diluyó en serie a 1:2 desde 1000 ng/ml a 0,06 y se evaluó en ELISA utilizando el anterior protocolo. Para cada valor desconocido, se utilizaron lecturas de DO en el intervalo lineal del ensayo para estimar la concentración de IgG HER-3 en cada muestra.
El análisis del antígeno limitado es un método que clasifica por afinidad los anticuerpos específicos de antígeno preparados en los sobrenadantes del cultivo de linfocitos B con respecto a todos los anticuerpos específicos de antígeno diferentes. En presencia de un revestimiento muy bajo de antígeno, solo los anticuerpos con afinidad más elevada deben poder unirse a cualquier nivel detectable en el equilibrio. (Véase por ejemplo, Publicación PCT n.º
45 WO 03048730A2). En este caso, dos mAb de la cohorte n.º 1, ambos de concentración conocida y KD conocida, se utilizaron como bancos de pruebas en el ensayo.
Se prepararon placas de neutravidina revistiendo con neutravidina a 8 µg/ml en 1XPBS/azida de sodio al 0,05% sobre placas de unión de medio Costar 3368 a 50 µl/pocillo con incubación durante la noche a 4ºC. Al día siguiente se bloquearon las placas con 1XPBS/leche desnatada al 1%. HER-3 ECD etiquetada con his biotinilada (50 µl/pocillo) se unió a placas de neutravidina de 96 pocillos a cinco concentraciones: 125, 62,5, 31,2, 15,6, y 7,8 ng/ml en 1XPBS/leche desnatada al 1% durante 1 hora a temperatura ambiente. Cada placa se lavó 5 veces con agua. Se añadieron sobrenadantes de hibridoma diluidos 1:31 en 1XPBS/leche desnatada al 1%/azida al 0,05% a 50 ul/pocillo. Después de 20 horas de incubación a temperatura ambiente en un agitador, las placas se lavaron de
55 nuevo 5 veces con dH2O. A continuación, se añadió un anticuerpo de detección secundario, Fc de cabra dirigido contra IgG humana HRP (peroxidasa de rábano picante) a 400 ng/ml en 1XPBS/leche desnatada al 1% a 50 µl/pocillo. Después de 1 hora a temperatura ambiente, las placas se lavaron de nuevo 5 veces con dH2O y 50 µl de sustrato TMB de un componente a cada pocillo. La reacción se detuvo después de 30 minutos mediante la adición de 50 µl de ácido clorhídrico 1 M a cada pocillo y se leyeron las placas a una longitud de onda de 450 nm. Se usaron lecturas de DO de una concentración de antígeno que dieron como resultado valores de DO en el intervalo lineal para el análisis de datos.
Representación gráfica de datos de antígenos elevados (que estima comparativamente las concentraciones específicas de anticuerpos; véase anteriormente para los detalles) frente a la DO limitada de los antígenos ilustró 65 que los anticuerpos tenían una afinidad relativamente superior, por ejemplo, aquellos que se unieron tenían una DO superior en el ensayo limitado de antígenos a la vez que tenían cantidades inferiores de anticuerpo IgG HER-3 en el
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sobrenadante. Se continuó con los hibridomas de las cohortes n.º 3 y n.º 4 de los 33 mejores anticuerpos en estos conjuntos de ensayos para su clonación mediante siembra del hibridoma con dilución limitante.
Como alternativa, el análisis FACS de la expresión de HER-3 de las células RatI/pLXSN y RatI/HER-3 mostró
5 resultados similares (no hubo reactividad cruzada con los epítopos de rata endógenos. De forma detallada, se recogieron 1x105 células con EDTA 10 mM en PBS, se lavaron una vez con tampón FACS (PBS, FCS al 3 %, azida al 0,4 %) y se sembraron en una placa de 96 pocillos de fondo redondo. Las células se centrifugaron durante 3 minutos a 1000 rpm para eliminar el sobrenadante y a continuación se volvieron a suspender con los anticuerpos específicos de la familia HER (3 µg/ml). Se incubaron las suspensiones celulares en hielo durante 45 minutos, se lavaron dos veces con tampón FACS, y se volvieron a suspender con anticuerpo secundario de burro (100 µl/pocillo) dirigido contra PE humana (Jackson) diluido 1:50 en tampón FACS. Las suspensiones celulares se incubaron en hielo en la oscuridad durante 30 minutos, se lavaron dos veces con tampón FACS y se analizaron (FACS, Beckman Coulter).
15 Ejemplo 8: Análisis estructural de anticuerpos dirigidos contra HER-3
La siguiente descripción proporciona información estructural relacionada con los anticuerpos preparados como se describe en el presente documento. A fin de analizar las estructuras de los anticuerpos, se amplificaron los genes que codifican los fragmentos de la cadena pesada y la cadena ligera del hibridoma concreto. Se llevó a cabo la secuenciación del siguiente modo:
Se amplificaron los transcritos VH y VL a partir de clones de hibridoma individuales en placas de 96 pocillos utilizando la reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa (RT-PCR). Se aisló el ARNm de Poli(A)+ de aproximadamente 2x105 células de hibridoma usando un kit Fast-Track (Invitrogen). Se analizaron cuatro reacciones
25 de la PCR para cada hibridoma: dos para la cadena ligera (kappa (k) y dos para la cadena pesada gamma (γ). Para la amplificación se usó el kit de PCR QIAGEN OneStep a temperatura ambiente (Qiagen, n.º de catálogo 210212). En las reacciones de la PCR acopladas a temperatura ambiente, se sintetizaron ADNc con una mezcla de enzimas a temperatura ambiente (Omniscript y Sensiscript) utilizando el cebador específico de la secuencia de sentido contrario que correspondía a Ck, o a un consenso de las regiones CH1 de los genes Cγ. Se llevó a cabo la transcripción inversa a 50ºC durante 1 h seguida por la amplificación mediante la PCR del ADNc mediante la ADN polimerasa HotStarTaq para una alta especificidad y sensibilidad. Cada reacción de la PCR utilizó una mezcla de cebadores 5' de sentido directo; Las secuencias del cebador se basaban en las secuencias líder de VH and VK disponibles en el sitio web de Vbase (http://vbase.mrc-cpe.cam.ac.uk/).
35 Las reacciones de la PCR se analizaron a 94ºC durante 15 min, comienzo inicial caliente seguido por 40 ciclos de 94ºC durante 30 s (desnaturalización), 60ºC durante 30 s (hibridación) y 72ºC durante 1 min (alargamiento).
Los productos de la PCR se purificaron y se secuenciaron directamente utilizando cebadores de la PCR directos e inversos usando el Kit de reacción rápida de secuenciación del ciclo del terminador BigDye ABI PRISM (Perkin Elmer). Ambas hebras se secuenciaron utilizando los kits de secuenciación del terminador Prism dye y una máquina de secuenciación ABI 377.
Análisis de secuencias: Se llevaron a cabo los análisis de las secuencias de ADNc V pesada y V kappa humanas de los anticuerpos dirigidos contra HER-3 alineando las secuencias de HER-3 con las secuencias pesada V y kappa V
45 germinales humanas utilizando el programa informático de fabricación propia Abgenix (5AS). El software identificó la utilización del gen V, el gen D y el gen J así como las inserciones de nucleótidos en las uniones de la recombinación y las mutaciones somáticas. También se generaron informáticamente secuencias de aminoácidos para identificar mutaciones somáticas. Podrían obtenerse resultados similares con un programa informático de análisis de secuencias comercialmente disponible e información públicamente disponible en la secuencia de los genes V, D, y J humanos, por ejemplo, Vbase (http://vbase.mrc-cpe.cam.ac.uk/).
Clonación molecular de mAb U1-59: Se extrajo el ARN total del pocillo de cultivo de tejido que contenía múltiples linajes de hibridoma, incluyendo el linaje de hibridoma que secreta el anticuerpo U1-59. Se amplificó una región variable de la cadena pesada utilizando los cebadores 5' específicos de la familia VH líder, con el cebador 3’-C
55 gamma. Se amplificó una banda principal utilizando un cebador VH4, no fueron visibles otras bandas. Se clonó el fragmento VH4-34 gamma en el vector de expresión pCDNA en marco con un gen de la región constante gamma 1 humana.
Se amplificó una región variable de la cadena pesada de IgM utilizando cebadores específicos de la familia 5' VH con el cebador de la región constante 3' mu. Se amplificó una banda principal utilizando el cebador VH2, no fueron visibles otras bandas. Se clonó el fragmento mu de VH2-5 en el vector de expresión pCDNA en marco con el gen de la región constante mu humana. Se amplificaron y secuenciaron las cadenas V kappa. Se identificaron cuatro productos de la cadena kappa mediante la RT-PCR. Se secuenciaron los productos y después del análisis de secuencias mediante traducción informatizada, solo tres de ellos tenían marcos de lectura abiertos. Estas tres 65 cadenas kappa funcionales se clonaron a partir del pocillo del hibridoma U1-59 oligoclonal identificado basándose en la utilización del gen de V kappa como (1) VK1 A3-JK2, (2) VK1 A20-JK3 y (3) B3-JK1. Todas las V-kappa se
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clonaron en el vector de expresión pCDNA en marco con un gen de la región constante de la cadena ligera kappa humana.
Transfecciones: Cada cadena pesada se transfectó con cada una de las cadenas kappa en transfecciones transitorias para un total de 6 parejas de cadena pesada/cadena ligera kappa. La transfección de la cadena gamma con la cadena kappa A20 proporcionó una mala expresión del anticuerpo, mientras que no se secretó o detectó anticuerpo cuando la cadena A20 kappa se transfectó simultáneamente con la cadena mu. Un total de tres IgG sups y dos IgM sups estuvieron disponibles para el ensayo de unión a HER-3.
Cadena
VH D J Constante ORF
Pesada
VH4-34 D1-20 JH2 Gamma Sí
Pesada
VH2-5 D6-6 JH4b Mu Sí
Ligera
A3 JK2 Kappa Sí
Ligera
A20 JK3 Kappa Sí
Ligera
B3 JK1 Kappa Sí
Ligera
A27 JK3 Kappa NO
10 Se detectó la actividad de unión de las líneas de células HER-3+ en FACS con el mAb IgG1 consistente en la cadena kappa de VH4-34 y B3. Ninguna otra combinación VH/Vk proporcionó una señal de fluorescencia por encima del fondo en FACS que utilizan líneas de células HER-3+.
15 Competición de unión de los anticuerpos dirigidos contra HER-3: Se llevó a cabo la unión del anticuerpos competitiva multiplexada como se publicó en Jia et al. (2004) J Immunol Methods. 288, 91-98 para evaluar agrupaciones de anticuerpos dirigidos contra HER-3 que competían por la unión a HER-3. Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 ensayados de la cohorte 1 se agruparon en 5 compartimentos basándose en la competición por la unión.
Compartimento n.º 1
Compartimento n.º 2 Compartimento n.º 3 Compartimento n.º 4 Compartimento n.º 5
U1-42
U1-48 U1-52 U1-38 U1-45
U1-44
U1-50 U1-39 U1-40
U1-62
U1-51 U1-41
U1-46
U1-43
U1-47
U1-49 U1-61
U1-58
U1-53
U1-55
20 Caracterización de epítopos de los anticuerpos dirigidos contra HER-3: Se caracterizaron los epítopos de los anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos. En primer lugar, un análisis de inmunotransferencia de la proteína ECD purificada etiquetada con His de HER-3 desnaturalizada reducida, mostró la ausencia de unión por los anticuerpos dirigidos contra HER-3 ensayados (Ul-59, U1-61, U1-41, U1-46, U1-53, U1-43, U1-44, U1-47, U1-52,
25 U1-40, U1-49)) demostrando que todos tenías epítopos sensibles a la reducción de los enlaces disulfuro, sugiriendo que todos tenían epítopos discontinuos. A continuación, los anticuerpos se cartografiaron para definir los dominios en la molécula de HER-3 diseñando mediante ingeniería genética diversas moléculas quiméricas de HER-3 de ser humano-rata, basándose en la división del dominio extracelular de HER-3 en cuatro dominios:
30 1) L1 (D1): el dominio menor de unión a ligando, 2) S1 (D2): el primer dominio rico en cisteína, 3) L2 (D3): el dominio mayor de unión a ligando, y 4) S2 (D4): el dominio sec rico en cisteína.
35 Se amplificó el dominio extracelular (ECD) del ADNc de HER-3 humana a partir de células RAT1-HER-3. Se amplificaron los ADNc de HER-3 de rata mediante la RT-PCR de un ARN de hígado de rata y se confirmaron mediante secuenciación. Los ADNc que expresaban el ECD de HER-3 de ser humano y rata se clonaron en vectores de expresión de mamíferos como proteínas de fusión V5-His. Los dominios de HER-3 ECD se intercambiaron en la estructura proporcionada por la HER-3 ECD de rata utilizando los sitios de restricción interna Mfe1, BstX1 y DraIII.
40 Por este medio, se construyeron diversas proteínas de fusión HER-3 ECD HIS de rata/ser humano quiméricas (aminoácidos 1-160, 161-358, 359-575, 1-358, 359-604) y se expresaron mediante transfección transitoria de células HEK 293T. Se confirmó la expresión de las construcciones utilizando un anticuerpo policlonal de rata contra HER-3 humana. Se ensayaron los anticuerpos monoclonales en ELISA para la unión a los ECD quiméricos secretados.
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5 Dos de los anticuerpos humanos, incluyendo el anticuerpo U1-59, se hicieron reaccionar en cruzado con HER-3 de rata. Para asignar dominios de unión, estos mAb se ensayaron frente a una forma truncada de HER-3 consistente en la proteína etiquetada con L1-S1-V5his purificada a partir del sobrenadante de las células HEK 293T transfectadas con un ADN plásmido que codifica la expresión de los dominios extracelulares L1-S1 del mAb U1-59 dirigido contra HER-3 unido a la proteína L1-S1 en ELISA, implicando que su epítopo en el mAb 2.5.1 dirigido contra L1-S1 no se
10 une con la proteína L1-S1, implicando que su epítopo está en L2-S2. Se llevó a cabo el cartografiado adicional del anticuerpo U1-59 utilizando la espectroscopía de masas con tiempo de vuelo SELDI con digestiones proteolíticas en chip de los complejos mAb-HER-3 ECD.
Cartografiado de los epítopos U1-59 utilizando SELDI: Se llevó a cabo el cartografiado adicional del anticuerpo U1
15 59 utilizando la espectroscopía de masas con tiempo de vuelo SELDI con digestiones proteolíticas en chip de los complejos mAb-HER-3 ECD. La proteína A se unió covalentemente a la matriz del chip de proteína PS20 y se utilizó para capturar el mAb U1-59. A continuación el complejo del chip de proteína PS20 y el anticuerpo monoclonal se incubaron con el antígeno purificado HER-3-His. A continuación, el complejo antígeno-anticuerpos se digirió con una alta concentración de Asp-N. Se lavó el chip, dando como resultado la retención solo del péptido HER-3 unido al
20 anticuerpos sobre el chip. Se determinó el epítopo mediante SELDI y se identificó mediante la masa del fragmento. El fragmento 6814 D identificado corresponde a dos posibles péptidos esperados generados a partir de una digestión parcial de la HER-3-his ECD. Ambos péptidos solapantes cartografían el dominio S1. Acoplando los resultados de SELDI con la unión a una construcción de la deleción de HER-3, el epítopo se cartografió en los restos 251 a 325.
25 La localización de los dominios de unión en la parte extracelular de HER-3 que son reconocidos por los mAb dirigidos contra HER-3 humanos se resumen en la TABLA 4. Los resultados de la cartografía del dominio del epítopo fueron consistentes con los resultados de los compartimentos de competición vinculados a la competición de los anticuerpos, con los anticuerpos que compiten en cruzado entre sí por la unión a HER-3 cartografiando también a los
30 mismos dominios en HER-3.
TABLA 4
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Ejemplo 9: Determinación de las clases convencionales de anticuerpos
Se ha descrito la estructura de los anticuerpos en términos de "clases convencionales" para las regiones hipervariables de cada cadena de inmunoglobulina (Chothia et al. (1987) J. Mol. Biol. 196:901-17). Se analizaron las 5 estructuras atómicas de los fragmentos Fab y VL de una variedad de inmunoglobulinas para determinar la relación entre sus secuencias de aminoácidos y las estructuras tridimensionales de sus sitios de unión a antígenos. Chothia, et al. encontraron que había relativamente pocos restos que, a través de su empaquetamiento, enlace de hidrógeno,
o la capacidad de asumir conformaciones phi, psi u omega poco usuales, eran principalmente responsables de las conformaciones de la cadena principal de las regiones hipervariables. Se encontró que estos restos se encontraban
10 en sitios en las regiones hipervariables y en el marco de la lámina β conservada. Examinando las secuencias de inmunoglobulinas que tienen una estructura desconocida, Chothia, et al. muestran que muchas inmunoglobulinas tienen regiones hipervariables que son similares en tamaño a una de las estructuras conocidas y adicionalmente contenían restos idénticos en los sitios responsables para la conformación observada.
15 Su descubrimiento implica que estas regiones hipervariables tienen conformaciones cercanas a las de las estructuras conocidas. Para cinco de las regiones hipervariables, el repertorio de conformaciones pareció limitarse a un número relativamente pequeño de clases estructurales individuales. Estas conformaciones de cadena principal que se producen comúnmente de las regiones hipervariables se denominan "estructuras convencionales". Un trabajo adicional de Chothia et al. (Nature (1989) 342:877-83) y otros (Martin et al. (1996) J. Mol. Biol. 263:800-15) confirmó
20 que existe un pequeño repertorio de conformaciones de cadena principal para al menos cinco de las seis regiones hipervariables de anticuerpos.
Se analizaron las CDR de cada anticuerpo descritas anteriormente para determinar su clase convencional. Como se sabe, se han asignado clases convencionales únicamente a la CDR1 y la CDR2 de la cadena pesada del anticuerpo, 25 junto con CDR1, CDR2 y CDR3 de la cadena ligera de anticuerpo. Las siguientes tablas resumen los resultados del análisis. Los datos de las clases convencionales están en la forma de HCDR1-HCDR2-LCDR1-LCDR2-LCDR3, donde "HCDR" se refiere a la cadena pesada de la CDR y "LCDR" se refiere a la cadena ligera de la CDR. Por lo tanto, por ejemplo, una clase convencional de 1-3-2-1-5 se refiere a un anticuerpo que tiene un HCDR1 que se encuentra comprendido en la clase convencional 1, un HCDR2 que se encuentra comprendido en la clase
30 convencional 3, un LCDR1 que se encuentra comprendido en la clase convencional 2, un LCDR2 que se encuentra comprendido en la clase convencional 1, y un LCDR3 que se encuentra comprendido en la clase convencional 5.
Se realizaron las asignaciones a una clase convencional concreta donde hubo un 70% o más de identidad de los aminoácidos en el anticuerpo con los aminoácidos definidos para cada clase convencional. Los aminoácidos 35 definidos para cada anticuerpo se pueden encontrar, por ejemplo, en los artículos de Chothia, et al. referido anteriormente. La TABLA 5 y LA TABLA 6 notifican los datos de las clases convencionales de cada uno de los anticuerpos HER-3. Donde hubo menos de un 70% de identidad, la asignación de la clase convencional está marcada con un asterisco ("*") para indicar que se realizó la mejor estimación de la clase convencional adecuada, basándose en la longitud de cada CDR y en la totalidad de los datos. Donde no había una clase convencional
40 correspondiente con la misma longitud de la CDR, la asignación de la clase convencional está marcada con una letra s y un número, tal como "s18", lo que significa que la CDR es de tamaño 18. Donde no había datos de la secuencia disponibles para una de las cadenas pesada o ligera, la clase convencional está marcada con "Z".
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TABLA 5
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La TABLA 6 es un análisis del número de anticuerpos por clase. El número de anticuerpos que tienen la clase
5 convencional concreta designado en la columna de la izquierda se muestra en la columna de la derecha. Los cuatro mAb que carecen de datos de secuencia de una cadena y, por tanto, que tienen "Z" en la asignación convencional no se incluyen en este recuento.
La estructura observada más comúnmente es 3-1-2-1-1: Veintiuno de cuarenta y uno mAb que tienen secuencias de 10 la cadena pesada y ligera tenían esta combinación.
TABLA 6
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Se llevaron a cabo las mediciones de afinidad de los anticuerpos dirigidos contra HER-3 mediante análisis indirecto de FACS Scatchard. Por lo tanto, se recogieron 105 células de interés o células SK-Br 3 con EDTA 10 mM en PBS, 5 se lavaron una vez con tampón FACS (PBS, FCS al 3 %, azida al 0,4 %) y se sembraron sobre una placa de fondo redondeado de 96 pocillos. Las células se centrifugaron durante 3 min a 1000 rpm para eliminar el sobrenadante y a continuación se volvieron a suspender con un anticuerpo dirigido contra α-HER-3 (3 µg/ml) o con diluciones de anticuerpo (100 µl/pocillo) comenzando con 20 µg/ml de anticuerpo monoclonal humano en tampón FACS, se diluyeron en etapas de dilución 1:2. Se incubaron suspensiones de células en hielo durante 1 h, se lavaron dos 10 veces con tampón FACS y se volvieron a suspender con anticuerpo secundario (100 µl/pocillo) de burro dirigido contra PE humana (Jackson) diluido 1:50 en tampón FACS. Las suspensiones celulares se incubaron en hielo y en la oscuridad durante 30 min, se lavaron dos veces con tampón FACS y se analizaron (FACS, Beckman Coulter). De acuerdo con el análisis FACS Scatchard, se calculó el promedio de la fluorescencia para cada medición. La tinción de fondo (= sin el 1er anticuerpo) se sustrajo de cada promedio de fluorescencia. Se generó la gráfica Scatchard con
15 el valor x = promedio de la fluorescencia y valor y = promedio de la fluorescencia/concentración de mAb (nM). Se tomó la KD como el valor absoluto de 1/m de ecuación lineal. En la TABLA 7 se proporcionan mediciones de la afinidad para determinados anticuerpos seleccionados de esta manera.
TABLA 7
Clon
KD (nm)
U1-38
n.d.
U1-39
102
U1-40
6,7
U1-41
0,18
U1-42
n.d.
U1-43
0,57
U1-44
4
U1-52
16,8
U1-61
0,13
U1-62
20,4
U1-46
13,8
U1-47
9,38
U1-49
1
U1-50
39,3
U1-51
131,6
U1-53
0,082
U1-55,1
3,7
U1-58
6,4
U1-59
3,69
U1-24
0,06
U1-7
0,02

Ejemplo 11: Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 inducen la endocitosis del receptor HER-3
20
Se ha identificado HER-3 como un factor que puede influenciar el inicio y la progresión de enfermedades hiperproliferativas sirviendo como un garante importante de la señalización celular mediada por la familia HER. Por
25 lo tanto, si HER-3 se elimina eficaz de la superficie/membrana celular por la internalización del receptor, la señalización y por tanto, la transformación y/o el mantenimiento de células en una neoplasia puede disminuirse o suprimirse en última instancia.
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A fin de investigar si los anticuerpos dirigidos contra HER-3 son capaces de inducir una endocitosis acelerada de HER-3, se compararon la cantidad relativa de moléculas de HER-3 sobre la superficie celular tras 0,5 y 4 h de incubación de las células con anticuerpos dirigidos contra HER-3. se sembraron 3x105 células en medio de crecimiento normal en una placa de 24 pocillos y se dejó crecer durante la noche. Se preincubaron las células con 5 10 µg/ml de mAB dirigidos contra HER-3 en medio de crecimiento normal durante los tiempos indicados a 37ºC. Las células se desprendieron con EDTA 10 mM, y se incubaron con 10 µg/ml de mAb dirigidos contra HER-3 en tampón de lavado (PBS, FCS al 3 %, azida al 0,04 %) durante 45 min a 4ºC. Se lavaron dos veces las células con tampón de lavado, se incubaron con anticuerpo secundario de burro dirigido contra PE humana (Jackson) se diluyeron 1:100 durante 45 min a 4°C, se lavaron dos veces con tampón de lavado y se analizaron mediante FACS (Beckman
10 Coulter, EXPO). Se calculó el porcentaje de internalización basándose en la reducción de la intensidad de la fluorescencia promedio de las muestras tratadas con anticuerpos dirigidos contra HER-3 con respecto a las muestras tratadas con el control. Estos experimentos demostraron que el tratamiento de las células con anticuerpos dirigidos contra HER3 conduce a la internalización del receptor. Véase, Figura 5 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
15 Ejemplo 12: Inhibición de la unión al ligando de células SKBr3 de cáncer humano por anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos
Se llevaron a cabo experimentos de competición de radioligandos a fin de cuantificar la capacidad de los anticuerpos
20 dirigidos contra HER-3 de inhibir la unión del ligando con HER-3 en un ensayo basado en células. Por lo tanto, se llevó a cabo el ensayo de unión al receptor HER-3 con 4x105 SK-BR-3 células que se incubaron con concentraciones variables de anticuerpos durante 30 min en hielo. Se añadieron 1,25 nM de [I125]-α-HRG/[125I]-β-HRG a cada pocillo y se continuó la incubación durante 2 h en hielo. Se lavaron las placas cinco veces, se secaron al aire y se contaron en un contador de centelleo. Los anticuerpos fueron capaces de reducir específicamente la
25 unión de [125I]-α-HRG/[125I]-β-HRG a las células que expresaban HER-3 endógeno. Véase, las Figuras 6a-6e de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
Ejemplo 13: Inhibición de la fosforilación de HER-3 inducida por ligando mediante anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos
30 Se llevaron a cabo experimentos ELISA a fin de investigar si los anticuerpos son capaces de bloquear la activación de HER-3 mediada por el ligando de β-HRG. Se detectó la activación de HER-3 mediada por el ligando mediante la fosforilación aumentada del receptor de la tirosina.
35 Día 1: 1 placa de 96 pocillos se revistió con 20 µg/ml de Colágeno I en ácido acético 0,1 M durante 4 h a 37ºC. Se sembraron 2,5xl05 células en medio de crecimiento normal Día 2: Las células fueron privadas de alimento en 100 µl de medio exento de suero durante 24 h. Día 3: Se preincubaron las células con 10 µg/ml de mAB dirigidos contra HER-3 durante 1 h a 37ºC y a continuación se trataron con 30 ng/ml de dominio β-HRG-EGF (R&D Systems) durante 10 min. Se extrajo el
40 medio y se fijaron las células con una solución al 4% de formaldehído en PBS durante 1 h a temperatura ambiente. Se retiró la solución de formaldehído y se lavaron las células con tampón de lavado (PBS/Tween 20 al 0,1 %). Se inactivaron las células con H2O2 al 1%, NaN3 al 0,1% en tampón de lavado y se incubaron durante 20 min a temperatura ambiente, a continuación se bloquearon con NET-Gelantina durante 5 h a 4º C. Se añadió anticuerpo primario phospho-HER-3 (Tyr1289) (anticuerpo policlonal de conejo; Cell signaling n.º 4791; 1:300)
45 durante la noche a 4ºC. Día 4: Se lavó la placa 3x con tampón de lavado, a continuación se incubó con anticuerpo dirigido contra POD de conejo diluido 1:3000 en PBS. Se añadió BSA al 0,5% a cada pocillo y se incubó durante 1,5 h a temperatura ambiente. Se lavó la placa 3x con tampón de lavado y una vez con PBS. Se añadió tetrametilbencidina (TMB, Calbiochem) y se vigiló a 650 nm. La reacción se detuvo mediante la adición de 100 µl de HCl 250 nM y se leyó
50 la absorbancia a 450 nm con una longitud de onda de referencia de 650 nm utilizando un lector de placas Vmax (Thermo Lab Systems).
Estos experimentos demostraron que los anticuerpos dirigidos contra HER-3 eran capaces de reducir la activación de HER-3 mediada por el ligando indicada por una fosforilación disminuida del receptor de la tirosina. Véase, Figura
55 7a de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
Para ensayar la potencia del mAb U1-53 para inhibir la activación de HER-3 inducida por el ligando, Las células MCF-7 fueron privadas de alimento durante 24 h, se incubaron con mAb U1-53 durante 1 h a 37ºC y se estimularon con 10 nM de HUG-β durante 10 min. Se transfirieron los lisados a placas ELISA con 1B4 (mAb de ratón dirigido
60 contra HER-3) y se analizó la fosforilación de HER-3 con el anticuerpo 4G10. La fosforilación de HER-3 fue inhibida casi completamente de una manera dependiente de la dosis con una CI50 de 0,14 nM. Véase, La Figura 7b de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
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Se llevaron a cabo a continuación experimentos ELISA a fin de investigar si los anticuerpos son capaces de bloquear 5 la activación del ligando mediada por β-HRG de la quinasa p42/p44 MAP. Se detectó la activación de HER-3 mediada por el ligando mediante la fosforilación aumentada de la proteína (Thr202/Tyr204).
Día 1: se revistió 1 placa de 96 pocillos con 20 µg/ml de Colágeno I en ácido acético 0,1 M durante 4 h a 37ºC. Se sembraron 3x105 en medio de crecimiento normal Día 2: Las células fueron privadas de alimento en 100 µl de medio exento de suero durante 24 h. Día 3: Se preincubaron las células con 5 µg/ml de mAB dirigidos contra HER-3 durante 1 h a 37ºC y a continuación se trataron con 20 ng/ml de dominio β-HRG-EGF (R&D Systems) durante 10 min. Se extrajo el medio y se fijaron las células con una solución al 4% de formaldehído en PBS durante 1 h a temperatura ambiente. Se retiró la solución de formaldehído y se lavaron las células con tampón de lavado (PBS/Tween 20 al
15 0,1%). Se inactivaron las células con H2O2 al 1%, NaN3 al 0,1% en tampón de lavado y se incubaron durante 20 min a temperatura ambiente, a continuación con PBS/BSA al 0,5% durante 5 h a 4 ºC. Se añadió anticuerpo primario fosfo-quinasa p42/p44 MAP (Thr202/Tyr204) (anticuerpo policlonal de conejo; Cell signaling n.º 9101; 1:3000) durante la noche a 4ºC Día 5: Se lavó la placa 3x con tampón de lavado, a continuación se incubó con anticuerpo dirigido contra HRP de conejo diluido 1:5000 en PBS -se añadió BSA al 0,5% a cada pocillo y se incubó durante 1,5 h a temperatura ambiente. Se lavó la placa 3x con tampón de lavado y una vez con PBS. Se añadió tetrametilbencidina (TMB, Calbiochem) y se vigiló a 650 nm. La reacción se detuvo mediante la adición de 100 µl de HCl 250 nM y se leyó la absorbancia a 450 nm con una longitud de onda de referencia de 650 nm utilizando un lector de placas Vmax (Thermo Lab Systems). Estos experimentos desvelaron que los anticuerpos dirigidos eran capaces de reducir la activación de la quinasa p42/p44 MAP mediada por el ligando tal como
25 indica la fosforilación disminuida. Véase, Figura 8 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
Ejemplo 15: Inhibición de la fosforilación de Phospho-AKT inducida β-HRG mediante anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos
En el siguiente experimento ELISA los inventores investigaron si los anticuerpos dirigidos contra HER-3 son capaces de bloquear la activación de la quinasa AKT mediada por β-HRG. Se detectó la activación de AKT mediada por el ligando mediante la fosforilación aumentada de la proteína (Ser473).
Día 1: se revistió 1 placa de 96 pocillos con 20 µg/ml de Colágeno I en ácido acético 0,1 M durante 4 h a 37ºC.
35 Se sembraron 3x105 en medio de crecimiento normal Día 2: Las células fueron privadas de alimento en 100 µl de medio exento de suero durante 24 h. Día 3: Se preincubaron las células con 5 µg/ml de mAB dirigidos contra HER-3 durante 1 h a 37ºC y a continuación se trataron con 20 ng/ml de dominio β-HRG-EGF (R&D Systems) durante 10 min. Se extrajo el medio y se fijaron las células con una solución al 4% de formaldehído en PBS durante 1 h a temperatura ambiente. Se retiró la solución de formaldehído y se lavaron las células con tampón de lavado (PBS/Tween 20 al 0,1 %). Se inactivaron las células con H2O2 al 1%, NaN3 al 0,1% en tampón de lavado y se incubaron durante 20 min a temperatura ambiente, a continuación se bloquearon con PBS/BSA al 0,5 % durante 5 h a 4º C. Se añadió anticuerpo primario phospho-Akt (Ser473) (anticuerpo policlonal de conejo; Cell signaling n.º 9217; 1:1000) durante la noche a 4ºC.
45 Día 4: Se lavó la placa 3x con tampón de lavado, a continuación se incubó con anticuerpo dirigido contra HRP de conejo diluido 1:5000 en PBS -se añadió BSA al 0,5% a cada pocillo y se incubó durante 1,5 h a temperatura ambiente. Se lavó la placa 3x con tampón de lavado y una vez con PBS. Se añadió tetrametilbencidina (TMB, Calbiochem) y se vigiló a 650 nm. La reacción se detuvo mediante la adición de 100 µl de HCl 250 nM y se leyó la absorbancia a 450 nm con una longitud de onda de referencia de 650 nm utilizando un lector de placas Vmax (Thermo Lab Systems). Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 fueron capaces de reducir AKT mediada por β-HRG como se indicó por la fosforilación disminuida. Véase, Figura 9 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
Ejemplo 16: Inhibición de la proliferación celular de MCF7 mediada por α-HRG/β-HRG mediante anticuerpos 55 dirigidos contra HER-3 humanos
Se llevaron a cabo experimentos in vitro a fin de determinar la capacidad de los anticuerpos para inhibir la proliferación celular estimulada por HRG. Se sembraron 2000 MCF7 en medio que contenía FCS en placas de 96 pocillos durante la noche. Se preincubaron las células por cuadruplicado con anticuerpos diluido en medio con FCS al 0,5% durante 1 h a 37ºC. Se estimularon las células con 30 ng/ml de α-HRG o 20 ng/ml de β-HRG (R&D Systems) añadiendo ligando directamente a una solución de anticuerpo y a continuación se dejaron crecer durante 72 h. Se añadió ALAMAREBLUE™ (BIOSOURCE) y se incubó a 37ºC en la oscuridad. Se midió la absorbancia a 590 nm cada 30 min. Los datos se tomaron 90 min después de la adición de alamar blue. Estos estudios mostraron que los anticuerpos representativos podrían inhibir el crecimiento celular inducido por HRG en células de cáncer humano.
65 Véase, Figura 10 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
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Se llevaron a cabo los experimentos de transmigración a fin de investigar si los anticuerpos bloquean la migración de
5 células. Se preincubaron células MCF7 privadas de suero añadiendo la cantidad indicada de anticuerpos a la suspensión celular e incubando ambas durante 45 min a 37ºC. A continuación se colocaron 500 µl de suspensión de células (50.000 células) en la cámara superior de transpocillos revestidos con colágeno I (BD Falcon, poros de 8 µm). Se utilizaron 750 µl de medio (MEM, aminoácidos, Piruvato de Na, Pen.-Estrept., BSA al 0,1 %, sin suero de feto de ternera) solo o conteniendo los ligandos del dominio β-HRG-EGF (R&D Systems) en la cámara inferior. Se
10 dejaron migrar las células durante 8 h a 37ºC y a continuación se tiñeron con DAPI. Los núcleos teñidos se contaron manualmente; el porcentaje de inhibición se expresó como una inhibición con respecto a un anticuerpo del control. Estos experimentos demostraron que los anticuerpos dirigidos contra HER-3 representativos podría reducir la migración de células inducida por HRG. Véase, Figura 11 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
15 Ejemplo 18: Ensayo de formación de colonias (Ensayo de agar blando)
Se llevaron a cabo los ensayos de agar blando a fin de investigar la capacidad de los anticuerpos dirigidos contra HER-3 de inhibir el crecimiento celular independiente del anclaje. El ensayo de formación de colonias en agar blando es un ensayo normalizado in vitro para probar las células transformadas, ya que solo dichas células transformadas
20 pueden crecer en agar blando.
se preincubaron 750 a 2000 células (dependiendo de la línea de células) con los anticuerpos indicados a 10 µg/ml en medio IMDM (Gibco) durante 30 min y se volvieron a suspender en agar noble de Difco al 0,4%. La suspensión de células se sembró en placas en capa inferior de agarosa al 0,75% que contenía FCS al 20% por cuadruplicado en 25 una placa de 96 pocillos. Se dejaron formar las colonias durante 14 días, y a continuación se tiñeron con 50 µl de MTT (0,5 mg/ml en PBS) durante la noche, y se contaron con un sistema de cámara Scanalyzer HTS (Lemnatec, Wuerselen). Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 fueron capaces en reducir el crecimiento celular independiente del anclaje de células MDA-MB361 and NCI-ADR de cáncer de mama, células MKN-28 de cáncer gástrico, células T HT144 de melanoma, células Skov3 de carcinoma de ovario, células PPC-1 de cáncer de próstata, células BX-PC3
30 de cáncer de páncreas, células A431 de carcinoma epidermoide, y células de carcinoma de pulmón. Véase, las Figuras 12a-12i de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
Ejemplo 19: Anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos inhiben el crecimiento del carcinoma de mama humano en ratones atímicos
35 La eficacia antitumoral de los anticuerpos terapéuticos se evalúa a menudo en estudios de xenoinjertos de tumores humanos. En estos estudios, el crecimiento de los tumores humanos como xenoinjertos en ratones inmunocomprometidos y la eficacia terapéutica se midieron por el grado de inhibición del crecimiento del tumor. A fin de determinar, si los anticuerpos dirigidos contra HER-3 interfieren con el crecimiento del tumor de células de cáncer
40 de mama humanas en ratones atímicos, se implantaron 5x106 células T47D en ratones hembras atímicos NMRI/atímicos. Los tumores fueron subcutáneos, crecieron en la parte posterior del animal. Los tratamientos comenzaron cuando los tumores alcanzaron un volumen medio de 20 mm3; ocho días después del implante. Antes del primer tratamiento, se aleatorizaron los ratones y se llevaron a cabo las pruebas estadísticas para asegurar la uniformidad en los volúmenes tumorales de partida (media, mediana y desviación estándar) a través de los grupos
45 de tratamiento. El tratamiento comenzó con una dosis de carga de 50 mg/kg seguida por inyecciones de 25 mg/kg una vez a la semana mediante inyección intraperitoneal. Un brazo del control recibió doxorrubicina (calidad farmacéutica). Se suplementaron todos los animales con 0,5 mg/kg/semana de estrógeno inyectado i.p. En la TABLA 8 siguiente se proporcionan los detalles de los grupos de tratamiento. Estos estudios demostraron que la administración de un anticuerpo dirigido contra HER-3 dio como resultado la reducción del crecimiento del tumor.
50 Véase, Figura 13 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
TABLA 8
Grado
N 1er Compuesto Carga (mg/kg) Dosis semanal (mg/kg) Ruta Calendario
1.
10 PBS - i.p. una vez a la semana
2.
10 Doxorrubicina 8 mg/kg i.v. una vez a la semana*
3.
10 U1-53 50mg/kg 20 ml/kg 25mg/kg 10ml/kg i.p. una vez a la semana
* tratamiento de doxorrubicina como se describe por Boven et al., Cancer Research, 1992.
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Para ensayar el potencial terapéutico de los anticuerpos dirigidos contra HER-3 en otros tipos de tumores sólidos se
5 ensayaron los anticuerpos dirigidos contra HER-3, U1-53 y U1-59, en ratones con tumores establecidos derivados de la línea de células BxPC3 de tumor de páncreas humano. Como conjuntos de controles de ratones tratados con el vehículo del control, se incluyeron PBS o el anticuerpo terapéutico establecido, Erbitux. Se inocularon 5x106 células BxPC3 por vía subcutánea sin Matrigel en ratones CB17 SCiD. Los ratones que soportan tumores establecidos con un volumen medio de 140mm2 recibieron 50 mg/kg de U1-53, U1-59, Erbitux o el volumen equivalente de PBS
10 mediante inyección intraperitoneal. Posteriormente los ratones recibieron una vez a la semana 25 mg/kg de inyecciones durante la duración del estudio.
U1-53 y U1-59 redujeron el crecimiento de los tumores de páncreas humano de una manera citostática. Véase, Figura 14 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345. De forma notable, en este experimento, U1-53 y
15 U1-59 fueron más eficaces que el anticuerpo Erbitux dirigido contra EGF-R en el retraso del crecimiento tumoral. Estos estudios demostraron la eficacia terapéutica de los anticuerpos dirigidos contra HER-3 en comparación con el agente terapéutico de referencia.
Ejemplo 21: La combinación de anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos con anticuerpos dirigidos 20 contra EGFR aumenta la actividad antitumoral
La monoterapia de enfermedades hiperproliferativas con anticuerpos dirigidos está a menudo impedida por problemas tales como, por una parte, el desarrollo de resistencia a fármacos, y por otra parte, un cambio en la antigenicidad. Por ejemplo, la pérdida de antigenicidad tras el tratamiento prolongado puede volver las células 25 tumorales insensibles a los anticuerpos terapéuticos, debido a que aquellas células tumorales que no expresan o han perdido el antígeno dirigido tienen una ventaja de crecimiento selectiva. Estos problemas pueden solventarse utilizando los anticuerpos en combinación con un anticuerpo terapéutico que dirige un receptor diferente sobre las células tumorales, u otro agente antineoplásico. Intervenir en múltiples rutas de señalización o incluso en tutas relacionadas, pero en múltiples etapas de intervención puede proporcionar también beneficio terapéutico. Es
30 probable que estas modalidades de tratamientos combinados sean más eficaces, ya que combinan dos agentes anticancerosos, funcionando cada uno mediante un mecanismo de acción diferente.
A fin de demostrar la factibilidad de los anticuerpos U1-53 y U1-59 dirigidos contra HER-3 como agentes de combinación adecuados, los inventores compararon administraciones monoterapéuticas de U1-53 o U1-59 con 35 aquellas en que tanto U1-53 o U1-59 se combinaros con el anticuerpos específico dirigido contra EGR, Erbitux. Se inocularon 5x106 células BxPC3 por vía subcutánea con Matrigel en ratones CB17 SCID. Después que los volúmenes tumorales habían alcanzado 200 mm3, se aleatorizaron los ratones en grupos de tratamiento individuales. Se llevaron a cabo administraciones intraperitoneales de U1-53, U1-59 y Erbitux como únicos agentes o combinaciones tanto de anticuerpos dirigidos contra HER-3 con Erbitux o como un coctel de dos anticuerpos
40 dirigidos contra HER-3. Se dosificaron todos los anticuerpos a una carga única de 50 mg/kg/semana, seguido por inyecciones semanales de 25 mg/kg durante seis semanas. Los brazos del control recibieron administraciones bisemanales de Gemcitabina (120 mg/kg), se combinaron semanalmente inyecciones de IgG humana o vehículo (PBS). En la TABLA 9 siguiente se detallan los regímenes.
45 TABLA 9
Grado
N Compuesto Dosis de carga (mg/kg) Dosis semanal (mg/kg) Ruta Calendario
1
12 PBS 20 ml/kg 10ml/kg q7d i.p.
2
12 IgG humana combinada 50mg/kg 25mg/kg q7d i.p.
3
12 U1-53 50mg/kg 25mg/kg q7d i.p.
4
12 U1-59 50mg/kg 25mg/kg q7d i.p.
5
12 Erbitux 50mg/kg 25mg/kg q7d i.p.
6
12 U1-53 + Erbitux 25 mg/kg cada uno 12,5mg/kg cada uno q7d i.p.
7
12 U1-59 + Erbitux 25 mg/kg cada uno 12,5mg/kg cada uno q7d i.p.
8
12 U1-53 + U1-59 25 mg/kg cada uno 12,5mg/kg cada uno q7d i.p.
9
12 Gemcitabina ninguno 120 mg/kg 2x semanalmente i.p.
Cuando se administraron los anticuerpos U1-53 y U1-59 en monoterapia, se retrasó el crecimiento de los tumores de páncreas humanos en el mismo grado que Gemcitabina, que se usa a menudo como quimioterapia normalizada
35
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contra el cáncer de páncreas. La administración de Erbitux con U1-53 o U1-59 dio como resultado una reducción significativamente mayor de crecimiento del tumor que la observada con la administración en monoterapia tanto de U1-53, como de U1-59 o Erbitux. Por lo tanto, se puede conseguir una respuesta terapéutica beneficiosa combinando los anticuerpos dirigidos contra HER-3 con anticuerpos adecuados que dirigen los antígenos tumorales
5 separados. Véase, Figura 15 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
En resumen, los anticuerpos dirigidos contra HER-3 tenían una potente eficacia terapéutica frente a los tumores humanos in vivo. pueden combinarse eficazmente con otros agentes terapéuticos antineoplásicos para el aumento de actividad antitumoral.
Ejemplo 22: Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos inhiben el crecimiento tumoral del melanoma humano en ratones nu/nu
Los miembros de la familia erbB de receptores, incluyendo HER-3, se expresan de forma anómala en una gran
15 variedad de cánceres epiteliales y se sabe que juegan importantes papeles en el crecimiento y la supervivencia de muchos de estos tumores sólidos. Estos tumores incluyen melanomas, cánceres escamocelulares de cabeza y cuello, cáncer de pulmón no microcítico y cáncer de próstata, glioma, cáncer gástrico, de mama, colorrectal, de páncreas, cánceres de ovario. A fin de verificar, que los anticuerpos dirigidos contra HER-3 no están restringidos en su actividad anticancerosa a tipos de tumores individuales, por ejemplo, cánceres de páncreas (véase, Ejemplos 21), pero que se pueden usar como agentes terapéuticos contra muchos tumores dependientes de HER-3, los inventores ensayaron U1-53 y U1-59 en estudios de xenoinjertos adicionales. Se inyectaron células HT144 de melanoma humano (5 x 105) por vía subcutánea en ratones CB17 SCID, seguido por una inyección intraperitoneal posterior inmediata de 50 mg/kg de U1-53 y U1-59, el volumen equivalente de PBS o Dacarbacina (DITC) a 200 mg/kg. Posteriormente, los ratones recibieron 25 mg/kg de U1-53 o U1-59 una vez semanalmente, mientras que se
25 proporcionó DITC una vez cada dos semanas a 200 mg/kg.
Se calcularon las medianas de los volúmenes tumorales de cada grupos de tratamiento. La administración de los anticuerpos dio como resultado la reducción del crecimiento de los melanomas humanos cuando se compararon con tumores que se habían tratado con el vehículo del control. Véase, Figura 16 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345. Estos resultados demuestran que los anticuerpos no están restringidos en su potencial terapéutico y se dirigen a una amplia variedad de cánceres que expresan HER-3.
Ejemplo 23: Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos inhiben el crecimiento de los xenoinjertos de carcinoma de colon en ratones
35 Se suspendieron células HT-29 de carcinoma de colon humano en medio con una relación 2:1 de Matrigel a una concentración final de 10 x 106 células/ml. se inyectaron 0,2 ml de la suspensión de células por vía s.c. en el flanco derecho de ratones CD1 nu/nu de 4-5 semanas de edad. Se utilizaron un total de 95 ratones.
Los ratones se asignaron aleatoriamente a los grupos del control y de tratamiento. El tratamiento comenzó el mismo día. La duración del tratamiento fue de 29 días. Tras la finalización del estudio, se recogieron tres tumores por grupo 3 horas después de la administración del tratamiento. Los tumores se congelaron rápidamente y se mantuvieron a 80ºC.
45 El siguiente protocolo de tratamiento se llevó a cabo:
-Grupo control: IgG humana no específica 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento: anticuerpos U1-53, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento: anticuerpos U1-7, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento: anticuerpos U1-59, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento 5-FU: 5-fluorouracilo, 50 mg/kg, 9d x5, intraperitoneal
Se calcularon las medianas de los volúmenes tumorales de cada grupo de tratamiento. La administración de los anticuerpos dio como resultado la reducción del crecimiento de los tumores HT-29 de carcinoma de colon cuando se
55 compararon con tumores que se habían tratado con laIgG1 no específica human. Véase, Figura 17 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
Ejemplo 24: Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos inhiben el crecimiento del cáncer de pulmón en ratones
Se suspendieron células Calu-3 de cáncer de pulmón no microcítico en medio con una relación 1:1 de Matrigel a una concentración final de 5 x 106 células/ml. se inyectaron 0,05 ml de la suspensión de células por vía s.c. en el flanco derecho de ratones CB17 hembras de 9 semanas de edad. Se utilizaron un total de 60 ratones.
65 Los ratones se asignaron aleatoriamente a los grupos del control y de tratamiento. El tratamiento comenzó el mismo día. La duración del tratamiento fue de 32 días.
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El siguiente protocolo de tratamiento se llevó a cabo:
Grupo de vehículo PBS
5 -grupo hG del control: IgG humana no específica: 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento anticuerpo U1-53, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento anticuerpo U1-7, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento anticuerpo U1-59, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal
Se calcularon las medianas de los volúmenes tumorales de cada grupos de control y de tratamiento. La administración de los anticuerpos dio como resultado la reducción del crecimiento de los xenoinjertos de cáncer de pulmón no microcítico cuando se compararon con tumores que se habían tratado con el PBS vehículo del control o IgG humana no específica. Véase, Figura 18 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
15 Ejemplo 25: Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 humanos inhiben el crecimiento del tumor de páncreas humano en ratones Balb/C
Se suspendieron células BxPC3 de tumor de páncreas humano en medio con una relación 2:1 de Matrigel a una concentración final de 5 x 106 células por ml. se inyectaron 0,2 ml de la suspensión de células por vía s.c. en el flanco derecho de ratones hembras BalbC nu/nu de 5-7 semanas de edad. Se utilizaron un total de 100 ratones.
Los ratones se distribuyeron aleatoriamente en los grupos del control y de tratamiento. El tratamiento comenzó el mismo día. La duración del tratamiento fue de 27 días.
25 El siguiente protocolo de tratamiento se llevó a cabo:
-grupo hIgG del control: IgG2 humana no específica, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento anticuerpo U1-53, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento anticuerpo U1-7, 25 mg/kg, dos veces a la semana, intraperitoneal -Grupo de tratamiento anticuerpo U1-59, 25 mg/kg, semanalmente, intraperitoneal -Grupo de tratamiento con Gemzar, gemcitabina, 80 mg/kg, semanalmente, intraperitoneal
Se calcularon las medianas de los volúmenes tumorales de cada grupos de control y de tratamiento. La administración de los anticuerpos dio como resultado la reducción del crecimiento de los tumores de páncreas
35 humanos cuando se compararon con tumores que se habían tratado con IgG humana no específica o con Gemzar. Véase, Figura 19 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345.
La inhibición de HER-3 en los tumores de páncreas humanos podría también mostrarse en un experimento farmacodinámico. Los xenoinjertos de tumores BxPC3 se hicieron crecer como se ha descrito anteriormente. se trataron 3 ratones con 500 µg de un anticuerpo IgG1 del control y se trataron 3 ratones con 500 µg del anticuerpo U1-59 dirigido contra HER-3. Se trataron los ratones en el día 1 y día 4 y a continuación se sacrificaron en el día 5 para medir la inhibición dependiente del anticuerpos de la fosforilación de HER-3 (pHER-3).
Se homogeneizaron los tumores en un tampón RIPA normalizado con inhibidores de la proteasa. Se separaron 50
45 µg de lisado transparente en un gel Tris-glicina al 4-20%, se transfirieron a una membrana de nitrocelulosa y se bloquearon en albúmina de suero bovino al 3% (BSA). Se llevó a cabo la inmunotransferencia utilizando un anticuerpo dirigido contra pHER-3 (anticuerpo 21D3, Cell Signaling Technology). Se usó un anticuerpo dirigido contra actina (AB a-2066, Sigma) como control.
Se detectó la expresión mediante quimioluminiscencia potenciada (Amersham Biosciences, Piscataway, NJ)). Se capturaron las imágenes con el Versadoc 5000 Imaging System (BioRad, Hercules, CA). Tras la administración del anticuerpos U1-59 dirigido contra HER-3, la fosforilación de HER-3 ya no era detectable. Véase, Figura 20 de la publicación de Estados Unidos n.º 20080124345. Por lo tanto, los anticuerpos fueron capaces de reducir significativamente la activación de HER-3 en células de tumores de páncreas humanos.
55 Ejemplo 26: U1-59 inhibe el crecimiento tumoral en combinación con un segundo agente en estudios de xenoinjertos
Se utilizaron modelos de xenoinjerto tumoral Calu-3 NSCLC para evaluar la eficacia de un anticuerpo dirigido contra HER-3 (U1-59) tanto solo como combinado con panitumamab o erlotinib. Para determinar la eficacia in vivo, los ratones que portan xenoinjertos de ~200 mm3 de Calu-3 NSCLC se trataron dos veces una semana con inhibidores de la familia dirigida contra HER-3 o el control. Se llevaron a cabo otros experimentos con células A549. En los estudios combinados con panitumumab, Se usó IgG1 como control negativo para U1-59 y se usó IgG2 como un control negativo para panitumumab. Como se muestra en la Figura 1, aunque 100 µg de U1-59 o 100 µg de
65 panitumumab solo redujeron mucho el crecimiento tumoral en comparación con el control, la combinación de 100 µg de cada uno de los dos agentes inhibió completamente el crecimiento del tumor (p < 0,0001 para la combinación frente a cualquier agente solo). En los estudios de los estudios con erlotinib, se usó IgG1 como control negativo para U1-59 y se usó vehículo de erlotinib como control negativo para erlotinib. Como se muestra en la Figura 2, la combinación de 100 µg U1-59 y 25 µg erlotinib tenían un mayor efecto inhibidor que cualquier agente solo. La combinación de U1-59 con erlotinib fue significativamente más eficaz que U1-59 solo (p = 0,0376).
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5
Ejemplo 27: U1-59 en combinación con inhibidores de HER inhibe el crecimiento independiente del anclaje de las células de cáncer de mama y ovario
Los experimentos se llevaron a cabo para evaluar el efecto de U1-59 en combinación con los inhibidores de HER pertuzumab, trastuzumab, o cetuximab sobre el crecimiento independiente del anclaje de SkBr-3 (basal o estimulado por HRG) y las células MDA-MB-435 de cáncer (basal). Se usó IgG como un control negativo para todos los estudios. Las colonias de células tumorales se formaron en ausencia o presencia de HRG durante 6 a 10 días y se tiñeron con MTT durante 4 a 6 horas y se cuantificaron. U1-59 como un único agente no inhibe el crecimiento de colonias de las células MDA-MB 435, pero inhibió el crecimiento de colonias en un 50% en las células SkBr-3
15 (p<0,001), y hasta un 95% cuando se combinó con otros inhibidores de HER (p<0,05). Por ejemplo, la combinación de 5 µg/ml de pertuzumab o trastuzumab con 5 µg/ml de U1-59 redujo el crecimiento independiente del anclaje en células SkBr-3 de cáncer de mama basal significativamente más que cualquier agente solo (figura 3), pertuzumab, trastuzumab, o cetuximab combinados con U1-59 fueron significativamente (p<0,006) más eficaz que U1-59 solo en células SkBr-3 estimuladas con HRG (Figura 4). De manera similar, las combinaciones de U1-59 con cualquiera de pertuzumab, trastuzumab o cetuximab inhibieron la formación de colonias en la formación de células de cáncer de ovario basal (MDA-MB-435) significativamente mejor (p<0,002) que U1-59 solo (Figura 5).
Ejemplo 28: U1-59 en combinación con inhibidores de HER-2 o agentes quimioterapéuticos reduce la proliferación de células cancerosas
25 Se llevaron a cabo estudios para evaluar el efecto de U1-59 combinado con inhibidores de HER-2 o agentes quimioterapéuticos sobre la proliferación de células cancerosas. En particular, se llevaron a cabo los siguientes experimentos en células MDA-MB-175VII de cáncer de mama:
U1-59 y Trastuzumab
Control = DMSO + 75 µg/ml de IgG1 + PBS
10 µg/ml de U1-59 35 75 µg/ml de Trastuzumab 10 µg/ml de U1-59 + 75 µg/ml de Trastuzumab
U1-59 y Lapatinib
Control = DMSO + 150 µg/ml de IgG1
73,5 µg/ml de U1-59 0,1 µM de Lapatinib 73,5 µg/ml de U1-59 + 0,1 µM de Lapatinib
45
U1-59 y Gemcitabina
Control = DMSO + 75 µg/ml de IgG1 + PBS
10 µg/ml de U1-59 1 µg/ml de Gemcitabina 10 µg/ml de U1-59 + 1 µg/ml de Gemcitabina
U1-59 y Cisplatino
55 Control = DMSO + 75 µg/ml de IgG1 + PBS
10 µg/ml de U1-59 1 /ml de Cisplatino 10 µg/ml de U1-59 + 1 µg/ml de Cisplatino
Se incubaron células MDA-MB-175VII de cáncer de mama con U1-59 y/o los otros agentes durante 1 hora antes de la estimulación con HRG. Después de cuatro días, se midió el crecimiento de las células tratadas con ALAMAR BLUE™. En estos ensayos, U1-59 redujo la proliferación de MDA-MB-175VII estimulada por HRG hasta un 40% 65 (p<0,05) como un agente único, y hasta un 80% (p<0,05) cuando se combinaron con trastuzumab o lapatinib (Figuras 6A y 6B). Cabe destacar que, Se observó también actividad aditiva en células MDA-MB-175VII cuando se
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combinó U1-59 con quimioterapia normalizada de atención (gemcitabina y cisplatino; p<0,05 frente a cualquier agente único solo) (Figuras 6C y 6D). En cada uno de estos experimentos, la combinación de U1-59 con el inhibidor de HER-2 fue más eficaz en reducir la proliferación de células MDA-MB175VII que cualquier agente solo.
5 Se llevaron a cabo similares experimentos con U1-59 y pertuzumab, trastuzumab, o lapatinib en células ZR-75-30 de cáncer de mama estimuladas por HRG y células BT474 de cáncer de mama estimuladas por HRG (Figuras 7 y 8, respectivamente). En cada caso, la combinación de U1-59 y lapatinib tenía un efecto inhibidor mayor sobre la proliferación celular. En comparación con el tratamiento con el agente único solo, la combinación de U1-59 con pertuzumab o trastuzumab o lapatinib fue significativamente (p < 0,004) más eficaz que U1-59 solo. Combinar U1-59 con uno o más de pertuzumab, trastuzumab, y cetuximab en células DLD-1 de cáncer de colon estimuladas por HRG y células HCC-1569 de cáncer de mama estimuladas por HRG tuvo efectos similares, como se muestra en las Tablas 9 y 10. Además, las combinaciones de U1-59 con trastuzumab o lapatinib en células SkBr-3 de cáncer de mama estimuladas por HRG fueron también más eficaces que U1-59 solo (p < 0,004) (Figura 11).
15 En experimentos adicionales, Se cultivaron células de cabeza y cuello (FaDu) en medio de crecimiento (MEM + FBS al 10% + 1X PSG) y se trataron con controles de IgG, U1-59, panitumumab o una combinación de U1-59 con panitumab. Tras incubación durante 5 días a 37°C, Se midió la proliferación con ALAMAR BLUE™. Como un agente único, U1-59 redujo la proliferación de células FaDu de 15% a 20%, mientras que la combinación de U1-59 con panitumumab dio como resultado una reducción del 80%. La combinación de U1-59 con panitumumab dio como resultado en una mejora significativa (p = 0,001 frente a la mejor actividad del agente único) sobre el uso de cualquier agente solo (Figura 12).
Ejemplo 29: U1-59 en combinación con otros inhibidores de HER inhiben la transducción de la señal
25 Se midió el efecto de U1-59 tanto solo como combinado con cetuximab, pertuzumab, trastuzumab, o lapatinib sobre la transducción de la señal en células MDA-MB-175VII de cáncer de colon sin estimular, células SkBr-3 de cáncer de mama estimuladas con HRG, las células Ls174T de cáncer de colon estimuladas con HRG, y las células HCC-1569 de cáncer de mama estimuladas con HRG. Se trataron células con agentes como se indicó en las Figuras 13-16 y se evaluó la fosforilación de HER-3, Akt, y ERK mediante transferencia Western con anticuerpos fosfoespecíficos. La combinación de U1-59 con cualquiera de pertuzumab, trastuzumab, o lapatinib redujo adicionalmente la fosforilación de HER-3, Akt y ERK en todos los tipos de células ensayados en comparación con los tratamientos con agentes únicos. La combinación de U1-59 con cetuximab pareció sinergizar menos eficazmente en estos ensayos.
Se llevaron a cabo estudios similares en células A549 epiteliales alveolares (Figura 17) y células Calu3 NSCLC
35 (Figura 18) se trataron con U1-59 solo o U1-59 en combinación con panitumumab o lapatinib, utilizando la transferencia Western para evaluar la fosforilación de Akt, EGF-R, HER-2, HER-3, HER-4 y ERK. La combinación de U1-59 con panitumumab tuvo un efecto aparente mayor sobre la fosforilación de HER-3 en células A549, aunque la combinación fue más eficaz con respecto a la fosforilación de Akt y EGF-R en células Calu3.
Se llevaron a cabo experimentos adicionales para evaluar la eficacia in vitro y el crecimiento independiente del anclaje de las células A549 tratadas con 10 µg/ml de U1-59, otros Ab de la familia HER, o el mAb del control en medio que contiene suero. Las colonias de células tumorales se formaron en ausencia de ligando exógeno durante 10 días y se tiñeron con MTT y se cuantificaron utilizando el sistema de formación de imágenes de la cámara Scanalyzer HTS. U1-59 inhibió el crecimiento en un 50% (p<0,001) en la línea de células A549 y dio como resultado
45 una estasis tumoral en el modelo de xenoinjerto de A549 NSCLC frente a la IgG del control u otros mAb dirigidos contra HER (p<0,05).
Estos resultados demuestran que U1-59 inhibe la señalización proximal y distal de HER-3 en las líneas de células de cáncer de mama in vitro y estas células de cáncer de mama son sensibles al tratamiento con U1-59 como un agente único y en combinación con agentes dirigidos contra HER.
Ejemplo 30: U1-59 sensibiliza lapatinib para la actividad in vivo
Para evaluar los efectos combinados de U1-59 y lapatinib in vivo, se implantaron células de cáncer de mama
55 humano (HCC-1569) a ratones y se trataron con U1-59 y lapatinib tanto solos como combinados. Se dejó que los tumores alcanzaran tamaños mayores que o iguales a 100 mm3, y los ratones se trataron posteriormente con el control, lapatinib, U1-59, o una combinación de U1-59 y lapatinib. Como se muestra en la Figura 19, U1-59 solo no inhibe el crecimiento del tumor HCC-1569, y lapatinib solo produjo alguna inhibición, pero no significativa del crecimiento del tumor en comparación con el control (p=0,16). La combinación de lapatinib con U1-59, sin embargo, dio como resultado una inhibición significativa del crecimiento tumoral (p < 0,02 frente al control o p < 0,05 frente a lapatinib).
Estos resultados indican que la combinación de U1-59 y lapatinib dio como resultado una inhibición sinérgica del crecimiento del tumor HCC-1569 in vivo. Este resultado es particularmente interesante y alentador ya que muestra
65 que incluso los tipos tumorales que pueden no responder a U1-59 o lapatinib solo, pueden tratarse muy eficazmente con la combinación de ambos.
imagen38
Se pueden usar mAB dirigidos contra HER-3 en el diagnóstico de enfermedades malignas. HER-3 se expresa en células tumorales de un modo muy distinto en comparación con el tejido normal y, por lo tanto, un análisis de la
5 expresión de HER-3 ayudaría en el diagnóstico primario de los tumores sólidos, estadificando y clasificando los tumores sólidos, la evaluación de criterios pronósticos para las enfermedades y neoplasias proliferativas y la gestión del riesgo en pacientes con tumores positivos para HER-3.
A. Detección de antígeno de HER-3 en una muestra
Se desarrolló un enzimoinmunoanálisis de adsorción (ELISA) para la detección del antígeno HER-3 en una muestra. En el ensayo, pocillos de una placa de microvaloración, tales como una placa de microvaloración de 96 pocillos o una placa de microvaloración de 384 pocillos, se adsorbieron durante algunas horas con un primer anticuerpo monoclonal completamente humano dirigido contra el antígeno de HER-3. El anticuerpo inmovilizado sirve como un
15 anticuerpo de captura para cualquiera del antígeno HER-3 que pueden estar presentes en una muestra de ensayo. Los pocillos se enjuagaron y se trataron con un agente bloqueante tal como proteína láctea o albúmina para prevenir la adsorción no específica del analito.
Posteriormente, los pocillos se trataron con una muestra de ensayo sospechosa de contener el antígeno de HER-3,
o con una solución que contiene una cantidad normalizada del antígeno de HER-3. Dicha muestra es, por ejemplo, una muestra de suero de un sujeto sospechoso de tener niveles de antígeno de HER-3 en circulación considerados como diagnósticos de una patología. Tras enjuagar le muestra de ensayo o el patrón, se trataron los pocillos con un segundo anticuerpo monoclonal dirigido contra HER-3 completamente humano que se marca mediante conjugación con biotina. el anticuerpo dirigido contra HER-3 marcado sirve como un anticuerpo detector. Tras enjuagar el
25 anticuerpo secundario en exceso, los pocillos se trataron con peroxidasa de rábano picante conjugada con avidina (HRP) y un sustrato cromogénico adecuado. La concentración del antígeno de HER-3 en las muestras de ensayo se determinó mediante comparación con una curva patrón desarrollada a partir de las muestras de patrón.
B. Detección del antígeno de HER-3 en inmunohistoquímica (IHC)
A fin de determinar el antígeno de HER-3 en las secciones de tejido mediante IHC, tejidos incluidos en parafina se desparafinaron en primer lugar en xileno durante 2 x 5 min y a continuación se hidrataron con etanol al 100% 2 x 3 min, etanol al 95% 1 min y se enjuagaron en agua destilada. Los epítopos antigénicos enmascarados mediante fijación de la formalina e inclusión en parafina se expusieron mediante desenmascaramiento de epítopos, digestión
35 enzimática o saponina. Las secciones de parafina con desenmascaramiento de epítopos se calentaron en una olla, baño de agua u horno microondas durante 20-40 min en una solución de recuperación de epítopos como por ejemplo, una solución de HCl 2 N (pH 1,0). En el caso de una digestión enzimática, se incubaron secciones de tejido a 37ºC durante 10-30 minutos en soluciones de enzimas diferentes tales como proteinasa K, tripsina, pironasa, pepsina, etc.
Tras enjuagar la solución de recuperación de epítopos o la enzima en exceso, se trataron las secciones de tejido con un tampón de bloqueo para prevenir las interacciones no específicas. Se incubó el anticuerpo primario a las diluciones adecuadas en tampón de dilución durante 1 hora a temperatura ambiente o durante la noche. Se enjuagó el anticuerpo primario en exceso y se incubaron las secciones en solución de bloqueo de peroxidasa durante 10 min
45 a temperatura ambiente. Tras otra etapa de lavado, se incubaron las secciones de tejido con un anticuerpo secundario marcado con un grupo que puede servir como un ancla para una enzima. Los ejemplos por tanto son anticuerpos secundarios marcados con biotina que son reconocidos por la peroxidasa de rábano picante acoplada a estreptavidina. La detección del complejo anticuerpo/enzima se consigue incubando con un sustrato cromógeno adecuado.
C. determinación de la concentración de antígeno de HER-3 en suero de pacientes
Se desarrolló un ELISA de tipo sándwich para cuantificar los niveles de HER-3 en suero humano. Los dos anticuerpos monoclonales dirigidos contra HER-3 completamente humanos utilizados en el ELISA de tipo sándwich, 55 reconocieron diferentes dominios de la molécula HER-3 y no compiten por la unión, por ejemplo (véase, Ejemplo 8). El ELISA se llevó a cabo del siguiente modo: 50 µl de anticuerpo dirigido contra HER-3 de captura en tampón de revestimiento (NaHCO3 0,1 M, pH 9,6) a una concentración de 2 µg/ml se revistieron sobre placas ELISA (Fisher). Tras la incubación a 4ºC durante la noche, se trataron las placas con 200 µl de tampón de bloqueo (BSA al 0,5%, Tween 20 al 0,1%, Timerosal al 0,01% en PBS) durante 1 h a 25ºC. Se lavaron las placas (3x) utilizando Tween 20 al 0,05% en PBS (tampón de lavado, WB). Se diluyeron sueros normal o de paciente (Clinomics, Bioreclaimation) en tampón de bloqueo que contenía suero humano al 50%. Se incubaron las placas con muestras de suero durante la noche a 4ºC, se lavaron con WB, y a continuación se incubaron con 100 µl/pocillo de anticuerpo dirigido contra HER3 de detección biotinilado durante 1 h a 25ºC. Tras el lavado, las placas se incubaron con HRP-Estreptavidina durante 15 min, se lavaron como antes, y a continuación se trataron con 100 µl/pocillo de o-fenilendiamina en H2O2 65 (solución de desarrollo de Sigma) para la generación de color. La reacción se detuvo con 50 µl/pocillo de H2SO4 (2 M) y se analizaron utilizando un lector de placas ELISA a 492 nm. Se calculó la concentración del antígeno de HER
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3 en muestras de suero por comparación con diluciones de antígeno de HER-3 purificado utilizando un programa de ajuste de curvas de cuatro parámetros.
Estadificación de cáncer en un paciente: Basándose en los resultados establecidos y discutidos en los puntos A, B y
5 C, es posible estadificar un cáncer en un sujeto basándose en los niveles de expresión del antígeno de HER-3. Para un tipo dado de cáncer, se tomaron muestras de sangre de los sujetos a los que se les diagnosticó estar en diversas etapas en la progresión de la enfermedad, y/o en diversos puntos en el tratamiento terapéutico del cáncer. Se determinó la concentración del antígeno de HER-3 presente en las muestras de sangre utilizando un método que determina específicamente la cantidad del antígeno que está presente. Dicho método incluye un método ELISA, dicho método se describe en los puntos A y B. Utilizando una población de muestras que proporciona resultados estadísticamente significativos de cada etapa de progresión o tratamiento, se designó un intervalo de concentraciones del antígeno de HER-3 que puede considerarse característico de cada etapa.
A fin de estadificar la progresión del cáncer en un sujeto en estudio, o para caracterizar la respuesta del sujeto del
15 sujeto en un curso de tratamiento, se toma una muestra de sangre del sujeto y se determina la concentración del antígeno de HER-3 presente en la muestra. La concentración obtenida de esta manera se usa para identificar en qué intervalo de concentraciones se encuentra el valor. El intervalo identificado de esta manera puede correlacionarse con una etapa de progresión o una etapa de tratamiento identificada en las diversas poblaciones de sujetos diagnosticados, proporcionado así una etapa para el sujeto en estudio.
Los anticuerpos dirigidos contra HER-3 como se describe en el presente documento se usan para el tratamiento de determinados trastornos hiperproliferativos o asociados a HER-3 basándose en numerosos factores, tales como la expresión HER-3, por ejemplo. Los tipos de tumores tales como cáncer de mama, cáncer gastrointestinal, cáncer de páncreas, cáncer de próstata, cáncer de ovario, cáncer de estómago, cáncer de endometrio, cáncer de las glándulas
25 salivales, cáncer de pulmón, cáncer de riñón, cáncer de colon, cáncer colorrectal, cáncer de tiroides, cáncer de vejiga, glioma, melanoma, y otros cánceres que expresan o expresan en exceso HER-3 son ejemplos de indicaciones que se tratan con un tratamiento combinado como se describe en el presente, aunque las indicaciones no se limitan a aquellas en la lista precedente. Además, los siguientes grupos de personas pueden beneficiarse del tratamiento como se describe en el presente documento:
•
Pacientes no elegibles para el tratamiento con un mAb dirigido contra HER-2
•
Pacientes con resistencia a un mAb dirigido contra HER-1 o un inhibidor de molécula pequeña dirigido contra EGF-R
•
Pacientes con NSCLC resistente a erlotinib o gefitinib
35 Se usan anticuerpos dirigidos contra HER-3 combinados con uno o más agentes adicionales en un "tratamiento combinado" así denominado. Dicho tratamiento combinado incluye, aunque no de forma limitativa, los agentes divulgados en el presente documento. El tratamiento combinado con anticuerpos dirigidos contra HER-3 y otros agentes pueden alargar la supervivencia del paciente, aumentar el tiempo hacia la progresión del tumor, o potenciar la calidad de vida del paciente. El diseño del protocolo y la administración abordará la eficacia terapéutica así como la capacidad de reducir las dosis usuales de tratamientos normalizados, tales como, por ejemplo, quimioterapia o radioterapia.
Tratamiento de seres humanos con anticuerpos dirigidos contra HER-3: Para determinar los efectos in vivo del
45 tratamiento de anticuerpos dirigido contra HER-3 en pacientes humanos con tumores, se inyectó a dichos pacientes humanos durante un determinado periodo de tiempo una cantidad eficaz de anticuerpo dirigido contra HER-3. En lapsos de tiempo periódicos durante el tratamiento, se vigiló a los pacientes humanos para determinar si sus tumores progresan, en particular, si los tumores crecen y metastatizan.
Un paciente de tumor tratado con los anticuerpos dirigidos contra HER-3 tiene un nivel inferior de crecimiento y/o metástasis tumoral en comparación con el nivel de crecimiento y metástasis tumoral en pacientes de tumor tratados con la terapéutica estándar actual de atención.
Tratamiento con conjugados de anticuerpos dirigidos contra HER-3: Para determinar los efectos in vivo de los
55 conjugados de anticuerpos dirigidos contra HER-3, se inyectó a pacientes humanos o animales que presentaban tumores durante un determinado periodo de tiempo una cantidad eficaz de conjugado de anticuerpo dirigido contra HER-3. Por ejemplo, el conjugado de anticuerpo dirigido contra HER-3 administrado es el conjugado de anticuerpo DM1 dirigido contra HER-3, un conjugado de anticuerpo de auristatina dirigido contra HER-3 o un conjugado de anticuerpo de radioisótopo dirigido contra HER-3. En lapsos de tiempo periódicos durante el tratamiento, se vigiló a los pacientes humanos o animales para determinar si sus tumores progresan, en particular, si los tumores crecen y metastatizan.
Un paciente humano o animal que presenta tumores y experimenta tratamiento con, por ejemplo, conjugados de anticuerpos DM1 dirigidos HER-3 y conjugados de anticuerpos de radioisótopos dirigidos contra HER-3 tienen un 65 nivel inferior de crecimiento y metástasis tumoral cuando se comparan con un paciente o animal del control que presentan tumores y que experimentan tratamiento con una terapia alternativa. Los anticuerpos DM1 del control que
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se pueden usar en animales incluyen conjugados que comprenden DM1 unido a anticuerpos del mismo isotipo de los anticuerpos dirigidos contra HER-3, pero más específicamente, no tienen la capacidad de unirse al antígeno del tumor HER-3. Los anticuerpos con radioisótopos del control que se pueden usar en ensayos animales incluyen conjugados que comprenden radioisótopos unidos a anticuerpos del mismo isotipo de los anticuerpos dirigidos
5 contra HER-3, pero más específicamente, no tienen la capacidad de unirse al antígeno del tumor HER-3. Nota: los conjugados del control no se administrarían a seres humanos.
Ejemplo 33: Identificación primera en dosis humanas y calendario de mAb dirigido contra HER-3 basándose en la farmacocinética preclínica, datos de farmacodinámica y eficacia
10 Se llevaron a cabo estudios para utilizar la modelación preclínica para predecir un régimen de dosificación mínimamente eficaz para la respuesta objetivo utilizando la farmacocinética preclínica (PK), Eficacia antitumoral en ratones del xenoinjerto BxPC3, y datos de farmacodinámica (PD).
15 Se trataron ratones que portaban xenoinjertos pancreáticos BxPC3 establecidos de ~200mm3 dos veces por semana con U1-59 a 25, 100, 200, 500 µg/ratón. Se analizó la inhibición de pHER en tumores de xenoinjerto BxPC3 mediante transferencia western. Se utilizó un modelo de eficacia de PK/PD (basándose en Simeoni et al. (2004) Cancer Res. 64:1094-1101) para seleccionar de forma prospectiva la dosis y el calendario para la prueba adicional. Para confirmar el modelo de eficacia de PK/PD, se trataron ratones portadores de tumor BxPC3 de páncreas con
20 400 µg/ratón bisemanalmente y 200 µg/ratón bisemanalmente, semanalmente y dos veces a la semana. Se usó el escalado interespecie basándose en el peso corporal (BW) para predecir los parámetros PK de U1-59 en un ser humano sobre la base de las concentraciones en suero obtenidas en ratones, ratas y monos. Se utilizó la relación entre la concentración de fármaco, la inhibición de pHER-3 en animales, y el escalado de la PK interespecie para seleccionar la dosis mínimamente eficaz para la primera en el estudio con seres humanos.
25 el tratamiento de U1-59 con xenoinjertos BxPC3 dio como resultado una inhibición estadísticamente significativa del crecimiento tumoral y los niveles de pHER-3 en una manera dependiente de la dosis y el calendario (p<0,05). El tratamiento con U1-59 a 400 µg/ratón bisemanalmente y 200 µg/ratón bisemanalmente, semanalmente y dos veces a la semana dieron como resultado un 50%, 33%, 74% y 70% de inhibición e crecimiento tumoral (p<0,05), un 30%,
30 58%, 23% y 20% de inhibición de pHER-3 (transferencia Western cuantitativa) frente al grupo tratado con la IgG del control, respectivamente. Las concentraciones en suero de U1-59 en la necropsia para los grupos de dosis respectivos fueron (media (SD)) de 2,07 (0,97), 0,45 (0,21), 3,08 (0,82 ) y 34,9 (9,1 ) µg/ml, respectivamente. Se estimó que la concentración mínima estimada necesaria para conseguir una inhibición de pHER-3 máxima del 90% (CI90) era de ~3 µg/ml. El modelo de eficacia de PK/PD predijo un volumen tumoral medio (R2 = 0,925). Se estimaron
35 que el espacio libre (CL) y el volumen inicial de distribución (Vd) en el hombre eran 11 ml/día/kg y 28 ml/kg. La comparación de los perfiles de PK humana simulados sugirió que las dosis bimensuales > 3 mg/kg, que deberían presentar una PK lineal, pueden dar como resultado > 90% de inhibición de pHER-3 durante un intervalo de dosificación de dos semanas.
40 La eficacia antitumoral en el modelo de xenoinjerto BxPC3 de páncreas estaba correlacionada con una concentración en suero aumentada de U1-59 y una disminución en los niveles de pHER-3, permitiendo el desarrollos de una relación de eficacia de PK/PD. Se utilizó esta relación para determinar una dosis y un calendario para U1-59 para investigar primero en un estudio humano (FIH).
45 Ejemplo 34: Estudios de reactivación
Se sembraron en placas células A549 en medio F-12 de Ham (Gibco), se suplementaron todos los medios con FBS al 10% (Hyclone, Logan, UT) y 1X L-glutamina (Gibco). Se privaron las células de suero durante la noche. Se cambiaron los medios a medio exento de suero reciente y se trataron las células con 50 µg/ml de U1-59 o gefitinib 5 50 µM solo, o combinación de U1-59 y gefitinib, durante 1 o 24 horas a 37ºC. se lavaron las células con PBS frío después de sus respectivos puntos de tiempo de tratamiento y se lisaron utilizando tampón RIPA (Tris-HCl 20 mM pH 7,5, Igepal al 1%, desoxicolato de sodio al 1%, NaCl 150 mM, SDS al 0,1%, Triton X-100 al 1%) que contenía 200 µM de fluoruro de fenilmetanosulfonilo (PMSF) (Fluka Biochemica), 200 µM del kit del cóctel inhibidor de la proteasa Halt (Pierce Biotechnology), y 200 µM de ortovanadato de sodio (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO). Se
55 pasaron los lisados a través de columnas desfibradoras QIA (Qiagen) y se cuantificó el flujo a su través utilizando un espectrofotómetro (Beckman Coulter, Fullerton, CA). Se analizaron las proteínas, 50 µg por pocillo, por duplicado para pHER3 utilizando ELISA Duoset (R&D systems) de acuerdo con el protocolo del fabricante. En la FIGURA 20 se muestran los resultados.
60 OTRAS REALIZACIONES
Debe entenderse que el alcance de la invención se define mediante el alcance de las reivindicaciones adjuntas.
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Claims (10)

  1. imagen1
    REIVINDICACIONES
    1.
    Un primer agente y un segundo agente, donde dicho primer agente es una proteína de unión a antígeno que se une a HER-3 y comprende: una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada que comprende una CDRH1 como se muestra en la SEQ ID NO: 256; una CDRH2 como se muestra en la SEQ ID NO: 282; una CDRH3 como se muestra en la SEQ ID NO: 315; y una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera que comprende una CDRL1 como se muestra en la SEQ ID NO: 340; una CDRL2 como se muestra en la SEQ ID NO: 344; una CDRL3 como se muestra en la SEQ ID NO: 387, y donde el segundo agente es Erlotinib, para uso en el tratamiento o la prevención del cáncer de pulmón.
  2. 2.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, donde dicho primer agente comprende una secuencia de aminoácidos de la cadena pesada como se muestra en la SEQ ID NO: 70 o/y una secuencia de aminoácidos de la cadena ligera como se muestra en la SEQ ID NO: 72.
  3. 3.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, donde dicho primer agente comprende la secuencia de aminoácidos de la cadena pesada de la SEQ ID NO: 70 y la secuencia de aminoácidos de la cadena ligera de la SEQ ID NO: 72.
  4. 4.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, donde dicho primer agente es un anticuerpo, particularmente un anticuerpo monoclonal, un anticuerpo policlonal, un anticuerpo recombinante, un anticuerpo humanizado, un anticuerpo humano, un anticuerpo quimérico, un anticuerpo multiespecífico, o un fragmento de anticuerpo del mismo, particularmente un fragmento Fab, un fragmento Fab', un fragmento F(ab')2, un fragmento Fv, un diacuerpo, o una molécula de anticuerpo monocatenario, particularmente un anticuerpo del tipo IgG1, IgG2, IgG3 o IgG4.
  5. 5.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, donde el mencionado primer agente se acopla a un grupo efector, particularmente a un radioisótopo o radionucleido, una toxina, o un grupo terapéutico o quimioterapéutico, donde el grupo terapéutico o quimioterapéutico es preferentemente caliqueamicina, auristatina PE, geldanamicina, maitansina y los derivados de las mismas.
  6. 6.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, donde dicho tratamiento de prevención comprende administrar un agente terapéutico adicional y/o radioterapia, donde el agente terapéutico adicional es preferentemente un agente antineoplásico o un anticuerpo antitumoral o un agente quimioterapéutico, donde el agente quimioterapéutico se selecciona preferentemente entre el grupo que consiste en capecitabina, antraciclina, doxorrubicina, ciclofosfamida, paclitaxel, docetaxel, cisplatino, gemcitabina, y carboplatino.
  7. 7.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, donde dicho primer agente y dicho segundo agente son para la administración mediante administración intravenosa, subcutánea, intramuscular u oral.
  8. 8.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, comprendiendo dicho tratamiento o prevención administrar dicho primer agente o segundo agente a una dosis de aproximadamente 1 a aproximadamente 20 mg/kg de peso corporal, al menos una vez cada 6 semanas.
  9. 9.
    El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, comprendiendo además dicho tratamiento
    o prevención, antes de la administración a un sujeto, el análisis de un marcador predictivo para seleccionar un sujeto que tiene cáncer de pulmón.
  10. 10. El primer agente y el segundo agente para el uso de la reivindicación 1, comprendiendo además dicho tratamiento o prevención, tras la administración a un sujeto, vigilar el resultado terapéutico.
    224
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