CN106967839A - B族链球菌荧光定量pcr检测的引物、探针、试剂盒和方法 - Google Patents
B族链球菌荧光定量pcr检测的引物、探针、试剂盒和方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种B族链球菌荧光定量PCR检测的引物、探针、试剂盒和方法,属于细菌检测领域。所述引物和探针包括扩增B族链球菌的引物对GBS‑F和GBS‑R及检测B族链球菌的探针GBS‑P,以及扩增人β‑actin的引物对β‑actin‑F和β‑actin‑R及检测人β‑actin的探针β‑actin‑P;所述试剂盒含有上述引物对和探针。本发明采用的引物对和探针,能特异性同时复合扩增B族链球菌基因和人类β‑actin基因,由于增加了样本采集监控的常染色体内标系统,结果更可靠、准确。
Description
技术领域
本发明涉及细菌检测的装置和方法领域,具体涉及一种B族链球菌荧光定量PCR检测的引物、探针、试剂盒和方法。
背景技术
B族链球菌(group B streptococcus,GBS)是一种寄生于人类泌尿生殖道及下消化道的条件致病菌,健康人群带菌率可达35%。早在20世纪70年代GBS就已经被证实为围产期母婴感染的重要致病菌之一。定植于产妇生殖道的B族链球菌,可在分娩时垂直传播给新生儿,而新生儿GBS感染所引起的新生儿败血症、脑膜炎和肺炎等症致死率极高,并可导致神经系统后遗症。2010年美国疾病预防中心制定了《围产期GBS预防指南》,建议孕妇于妊娠35-37周进行GBS筛查。
目前国内对GBS的筛查有三种方法:
(1)细菌培养法:采用标准细菌培养方法来检测B族链球菌的存在,取样后大约需要18-48小时得到检测结果,比较费时,不能够有效、快速地检测出B族链球菌的存在,且阳性率受到多种因素影响,弊端明显。
(2)免疫学诊断方法:血清学方法不能高通量处理样本。由于窗口期的存在,血清学的诊断存在滞后性,不能准确反映当前是否感染。该方法费时、费力,无法满足快速、早期诊断的要求。
(3)荧光PCR法检测法:荧光PCR法检测不仅耗时短,在灵敏度和特异性上也优于培养法,因此研制出一种使用简单、结果准确的B族链球菌PCR检测试剂具有重要的临床意义。但是该方法与培养法存在一个共同问题,即检测结果受取样误差影响较大,阴道及直肠样本取样操作难度大,取样结果影响到后续的检测结果。取样失败将会引起假阴性的诊断。
发明内容
本发明的目的在于提供一种B族链球菌荧光定量PCR检测的引物、探针、试剂盒和方法,用以解决现有取样误差或取样失败而引起检测假阴性结果的问题。
为实现上述目的,本发明在基于荧光定量PCR检测GBS的同时,增加了人保守基因作为内对照目的基因,设计了β-actin内标,该内标可以从样本采集、到核酸提取以及GBS基因扩增全过程监控实验操作各个环节,使得检测结果更加可靠、稳定。具体地,B族链球菌荧光定量PCR检测引物及对应探针,包括:
扩增B族链球菌的引物对GBS-F和GBS-R及检测B族链球菌的探针GBS-P,所述GBS-F、GBS-R和GBS-P的核苷酸序列分别依次如SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:3所示;
以及扩增人β-actin的引物对β-actin-F和β-actin-R及检测人β-actin的探针β-actin-P,所述β-actin-F、β-actin-R和β-actin-P的核苷酸序列分别依次如SEQ ID NO:4~SEQ ID NO:6所示。上述SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:6核苷酸序列具体参见表1。
表1 检测B族链球菌和人β-actin的引物和探针
名称 | 核苷酸序列 | SEQ ID NO: |
GBS-F | 5’-GAGGCTATTACTAGCGTTGAA-3’ | 1 |
GBS-R | 5’-GGCTTCTACACGACTACCAAT-3’ | 2 |
GBS-P | 5’-CTTCATTGCGTGCCAACCCTGAGACA-3’ | 3 |
β-actin-F | 5’-TGGCAAGAAAGTGCTCGGTG-3’ | 4 |
β-actin-R | 5’-CAGCTTGTCACAGTGCAGCTCA-3’ | 5 |
β-actin-P | 5’-ATGGCCTGGCTCACCTGGACAAC-3’ | 6 |
所述GBS-P和β-actin-P的核苷酸序列5’端分别标记不同的荧光报告集团,所述荧光报告集团选自FAM、HEX、CY3、CY5、JOE、TET或LC RED640中;所述GBS-P和β-actin-P的核苷酸序列的3’端分别标记荧光淬灭集团,所述荧光淬灭集团选自BHQ1、BHQ2、BHQ3或Dabcy1。
优选的,所述GBS-P核苷酸序列5’端标记FAM荧光报告集团,3’端标记BHQ1荧光淬灭集团;所述探针β-actin-P核苷酸序列5’端标记HEX荧光报告集团,3’标记BHQ1荧光淬灭集团。
本发明还提供了针对上述引物和探针的试剂盒,包括PCR扩增反应液、酶混合液、阳性对照和阴性对照,所述PCR扩增反应液中含有上述扩增B族链球菌的引物对GBS-F和GBS-R及检测B族链球菌的探针GBS-P,以及扩增人β-actin的引物对β-actin-F和β-actin-R及检测人β-actin的探针β-actin-P。所述PCR扩增反应液中还含有进行PCR扩增的其他常规试剂,如PCR反应缓冲液、MgCl2、dNTPs等;上述试剂为常规组分,可自行配置或购买,也可以全部装配入试剂盒。
所述所述酶混合液包括热启动Taq酶和尿嘧啶-N-糖基化酶。
所述阳性对照含有B族链球菌保守序列,可为含有B族链球菌保守序列的质粒或者为灭活的B族链球菌培养液。所述阴性对照为不含B族链球菌的纯化水或生理盐水。
本发明还提供了一种采用上述试剂盒,进行荧光定量PCR的检测方法,包括以下步骤:
A、提取样本DNA,制备DNA模板;
B、加样:将样本DNA、阳性对照或阴性对照分别对应加入装有PCR扩增反应液和酶混合液的PCR管中,得对应的样本PCR反应体系、阳性PCR反应体系或阴性PCR反应体系;
C、PCR扩增:将步骤B所得样本PCR反应体系、阳性PCR反应体系或阴性PCR反应体系分别反应管置于荧光定量PCR仪上,设置循环参数,进行PCR扩增;
D、PCR反应结束后,根据荧光曲线判断是否感染B族链球菌。
上述技术方案中由于在PCR扩增反应液中增加了人保守基因β-actin(即肌动蛋白)作为内对照目的基因,与B族链球菌基因同时复合扩增。若检测结果中没有任何DNA的存在,则检测不到任何荧光,可能是取样失败或其他操作环节出现问题;若只有人β-actin基因扩增,则为B族链球菌阴性;若有两种荧光同时出现,才是B族链球菌阳性。因此,可以排除B族链球菌假阴性的情况。
本发明的试剂盒和方法具有如下优点:(1)本发明采用荧光定量PCR检测方法,与传统的细菌培养法相比,大幅度缩短了检测时间;与血清学方法比较,排除了既往感染IgG阳性患者带来的假阳性结果;(2)本发明采用的引物对和探针,能特异性同时复合扩增B族链球菌基因和人类β-actin基因,由于增加了样本采集监控的常染色体内标系统,结果更可靠、准确。
附图说明
图1是本发明实施例2的样本扩增曲线,其中横坐标表示循环数,纵坐标表示荧光强度。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
实施例1 B族链球菌荧光定量PCR检测试剂盒。
本实施例的B族链球菌荧光PCR检测试剂盒,包括PCR扩增反应液、酶混合液、阳性对照和阴性对照。
其中所述PCR扩增反应液主要包括:
①PCR缓冲溶液(PCR Buffer),由tris-HCl、KCl和纯化水组成提供反应所需的pH值和盐离子环境;
②MgCl2,提供反应酶的催化剂;
③dNTPs,提供反应过程中DNA链形成所需原料;
④检测B族链球菌和人β-actin的引物对及对应的探针。
如表1所述的引物对GBS-F、GBS-R及探针GBS-P是源于B族链球菌的保守区域的引物和探针;引物对β-actin-F、β-actin-R及β-actin-P是源于人β-actin的保守区域的引物和探针。在GBS-P的5’端标记FAM荧光报告集团,3’端标记BHQ1荧光淬灭集团,在β-actin-P5’端标记HEX荧光报告集团,3’标记BHQ1荧光淬灭集团。上述引物对和探针能特异性同时复合扩增B族链球菌基因和人β-actin基因。
其中所述酶混合液为Taq酶和UNG酶,所述Taq酶为热启动Taq酶,所述UNG酶为尿嘧啶-N-糖基化酶。
所述阳性对照为含有B族链球菌保守序列的质粒或灭活的B族链球菌培养液,其浓度为1000~10000CFU/mL,所述阴性对照为为不含有B族链球菌的纯化水或生理盐水。
实施例2 B族链球菌的检测。
步骤A、提取样本DNA,制备DNA模板。
将来自医院的12例培养检测为阴性,10例培养检测为阳性的肛拭子及阴道拭子样本,按照试剂盒说明书提取核酸,制备DNA模板,本实施例采用的是由济凡生物科技(北京)有限公司提供的FinePure病毒DNA/RNA柱式提取试剂盒,按照试剂盒的说明书进行操作,还可以采用现有技术中其他的DNA提取方法。
步骤B、加样:将步骤A中制备的22个样本DNA以及试剂盒中的阳性对照和阴性对照分别对应加入装有PCR扩增反应液的PCR管中,得对应的样本PCR反应体系、阳性PCR反应体系和阴性PCR反应体系。
本实施例中PCR反应体系的组成参见表2。
表2 PCR反应体系的组成
步骤C、PCR扩增:将步骤B中所得的PCR反应体系的PCR反应管置于荧光定量PCR仪上,设置循环参数,进行PCR扩增,扩增反应程序如表3所述。
表3 扩增反应程序
步骤D、PCR反应结束后,根据荧光曲线判断是否感染B族链球菌,参见图1。
结果判定:若只有人β-actin基因扩增,则为B族链球菌阴性;若有两种荧光同时出现或者只有FAM荧光出现扩增,则是B族链球菌阳性;若两种荧光都没有扩增,则检测结果无效。最终的检测结果如表4所示。
表4 样本1~22的检测结果与培养检测结果的比对
结果分析:通过细菌培养法和荧光定量PCR方法的比较可见,荧光定量PCR方法阳性率更高。
采用本发明的试剂盒和方法,可以对生殖道分泌物和直肠分泌物等未知样本中的B族链球菌-DNA进行快速检测,为诊断B族链球菌感染提供可靠的实验依据。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施例对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 济凡生物科技(北京)有限公司
<120> B族链球菌荧光定量PCR检测的引物、探针、试剂盒和方法
<130> 2010
<160> 6
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> Artifical sequence
<400> 1
gaggctatta ctagcgttga a 21
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> Artifical sequence
<400> 2
ggcttctaca cgactaccaa t 21
<210> 3
<211> 26
<212> DNA
<213> Artifical sequence
<400> 3
cttcattgcg tgccaaccct gagaca 26
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> Artifical sequence
<400> 4
tggcaagaaa gtgctcggtg 20
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> Artifical sequence
<400> 5
cagcttgtca cagtgcagct ca 22
<210> 6
<211> 23
<212> DNA
<213> Artifical sequence
<400> 6
atggcctggc tcacctggac aac 23
Claims (9)
1.一种B族链球菌荧光定量PCR检测的引物及探针,其特征在于,所述引物及对应探针包括:
扩增B族链球菌的引物对GBS-F和GBS-R及检测B族链球菌的探针GBS-P,所述GBS-F、GBS-R和GBS-P的核苷酸序列分别依次如SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:3所示;
以及扩增人β-actin的引物对β-actin-F和β-actin-R及检测人β-actin的探针β-actin-P,所述β-actin-F、β-actin-R和β-actin-P的核苷酸序列分别依次如SEQ ID NO:4~SEQ ID NO:6所示。
2.根据权利要求1所述的B族链球菌荧光定量PCR检测的引物及探针,其特征在于,所述GBS-P和β-actin-P的核苷酸序列5’端分别标记不同的荧光报告集团,所述荧光报告集团选自FAM、HEX、CY3、CY5、JOE、TET或LC RED640中;所述GBS-P和β-actin-P的核苷酸序列的3’端分别标记荧光淬灭集团,所述荧光淬灭集团选自BHQ1、BHQ2、BHQ3或Dabcy1。
3.根据权利要求2所述的B族链球菌荧光定量PCR检测的引物及探针,其特征在于,所述GBS-P核苷酸序列5’端标记FAM荧光报告集团,3’端标记BHQ1荧光淬灭集团;所述探针β-actin-P核苷酸序列5’端标记HEX荧光报告集团,3’标记BHQ1荧光淬灭集团。
4.一种B族链球菌荧光定量PCR检测的试剂盒,包括PCR扩增反应液、酶混合液、阳性对照和阴性对照,其特征在于,所述PCR扩增反应液中含有如权利要求1~3任一项所述的引物及对应探针。
5.根据权利要求4所述的B族链球菌荧光定量PCR检测的试剂盒,其特征在于,检测B族链球菌的引物和探针的配比为GBS-F:GBS-R:GBS-P=2:2:1;检测人β-actin的引物和探针的配比为β-actin-F:β-actin-R:β-actin-P=2:2:1。
6.根据权利要求4所述的B族链球菌荧光定量PCR检测的试剂盒,其特征在于,所述酶混合液包括热启动Taq酶和尿嘧啶-N-糖基化酶。
7.根据权利要求4所述的B族链球菌荧光定量PCR检测的试剂盒,其特征在于,所述阳性对照为含有B族链球菌保守序列的质粒或灭活的B族链球菌培养液,所述阴性对照为不含B族链球菌的纯化水或生理盐水。
8.一种B族链球菌荧光定量PCR检测的方法,采用权利要求4所述的试剂盒,其特征在于,包括以下步骤:
A、提取样本DNA,制备DNA模板;
B、加样:将样本DNA、阳性对照或阴性对照分别对应加入装有PCR扩增反应液和酶混合液的PCR管中,得对应的样本PCR反应体系、阳性PCR反应体系或阴性PCR反应体系;
C、PCR扩增:将步骤B所得样本PCR反应体系、阳性PCR反应体系或阴性PCR反应体系分别置于荧光定量PCR仪上,设置循环参数,进行PCR扩增;
D、PCR扩增反应结束后,根据荧光曲线判断是否感染B族链球菌。
9.根据权利要求8所述的B族链球菌荧光定量PCR检测的方法,其特征在于,步骤C中PCR扩增的程序为:
步骤一、预变性95℃5分钟;
步骤二、变形95℃15秒,
步骤三、退火,延伸及荧光采集60℃15秒,
重复步骤二和步骤三,共设置45个循环。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
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Application publication date: 20170721 |