ChapitreIV 3 Exprim

Retenue manuelle
Les rats peuvent être retirés de leur cage en saisissant la queue à 1–2 cm de la
base.
On peut retenir le rat par l'un des moyens suivants
Retenue manuelle
Saisir fermement le rat autour du thorax avec le pouce ou l'index sous la mandibule pour
éviter d'être mordu
Avec une retenue à une main, la queue peut être tenue entre le quatrième et le cinquième
doigt.
Retenue manuelle
Le rat peut être palmé sur son dos avec l'index et le majeur placés entre sa mandibule
pour minimiser le risque d'être mordu
Retenue manuelle
Retenue manuelle
Retenue mécanique
Plusieurs dispositifs de contention mécanique sont disponibles dans le commerce.

Ils sont conçus pour une manipulation à court terme et comprennent divers dispositifs
de retenue réglables en plastique rigide
Cônes de décapitation
Retenue mécanique
Des serviettes
Retenue chimique
La contention chimique est disponible et dans la section d'anesthésie.

Cela peut s'avérer utile pour les procédures qui sont plus que momentanément
douloureuses ou nécessitent une immobilisation stricte.
Identification
Contentionner la souris et identifier par des perforations, à l’aide d’un poinçon sur
le pavillon de l’oreille.
Techniques
Administration
par injection
On peut injecter des composés via différentes voies ; PO (oralement),IV (intraveineuse),

IM (intramusculaire) ou SQ (sous-cutanée); et véhicules (solution saline normale ou
physiologique, eau stérile, etc)
Techniques
Intrapéritonéale
 Insérer au complet l’aiguille avec

un angle de 45° dans les cadrans
inférieurs droits et gauches de
l’abdomen.
 Éviter les cadrans supérieurs et la
ligne médiane au bas de l’abdomen
où se situe la vessie.
Techniques
Intrapéritonéale
Techniques
Sous-cutanée
 Contentionner en soulevant la peau du cou, injecter sous les doigts entre l’index et le pouce à
l’intérieur du repli de la peau.
 Volume maximum : 0,5 ml

Techniques
Intraveineuse
 Laisser la souris entrer dans un tube

conique 50 ml (perforé aux deux extrémités)
ou une boîte de contention.
 Bien fixer le tube ou la boîte sur la surface
de travail et sortir la queue.
 Deux veines sont visibles de chaque côté de
la queue et permettent de faire l’injection.
Techniques
Intramusculaire
 Tendre la patte de la main

libre et bien la maintenir entre
deux doigts afin de
l’immobiliser. Pour plus
d’assurance, vous pouvez
effectuer la technique à deux.
Techniques
Gavage
 Placer la sonde du côté gauche de la bouche de

la souris avec un angle de 45° et l’insérer
délicatement en longeant le palais.
 Redresser la seringue à la verticale en

douceur et la descendre sans qu’il y ait de
résistance. On ne doit jamais forcer.
Techniques
 Administrer le volume et retirer doucement la sonde.

Techniques
Injection sous l’aponévrose plantaire

de la patte
Techniques
Directives d’administration du volume pour le rat

Techniques d'échantillonnage
Prélèvement
sanguin
Le sang peut être prélevé sur de nombreux sites différents chez le rat.
Les sites de collecte de sang de survie comprennent la queue, les veines

saphène jugulaire et métatarsienne dorsale ; veine cave et plexus orbitaire.
 A titre indicatif, le volume de sang prélevé au cours d'une seule survie le prélèvement
doit être limité à 1,25 ml/100 g de poids corporel.
 Si ce volume maximum est prélevé, un intervalle de deux semaines entre les

les collectes devrait être sûr.
 Si des prélèvements plus fréquents sont nécessaires, il convient de surveiller
l'hématocrite et le taux de protéines sériques.
Une étude récente (Scipioni, et. al) évaluant des prélèvements sanguins
multiples et fréquents, suggère que l'élimination jusqu'à 40 % du volume
sanguin total d'un rat sur une période de 24 heures n'a pas d'effets
indésirables, même lorsqu'elle est répétée deux semaines plus tard. .
Saphène
Ce site est privilégié pour les prélèvements répétitifs de petites quantités et ne nécessite pas
d’anesthésie.
Utiliser un tube conique 50 ml ou une boîte de contention
Étirer la patte arrière et bien la maintenir en pinçant la peau sur le genou pour la
maintenir en extension.
Raser les poils de la cheville jusqu’au genou à l’aide d’un rasoir électrique ou d’une lame de
scalpel. La veine doit être apparente et bien gonflée. Vous pouvez activer la circulation en
bougeant le pied de façon répétitive.
Appliquer un onguent (gelée de pétrole) afin

d’empêcher la goutte de diffuser sur la peau.
Piquer la veine et récolter la goutte à l’aide d’un
capillaire ou d’un tube.
Raser les poils de la cheville jusqu’au genou à l’aide d’un rasoir électrique ou d’une lame de
scalpel. La veine doit être apparente et bien gonflée. Vous pouvez activer la circulation en
bougeant le pied de façon répétitive.
Appliquer un onguent (gelée de pétrole) afin

d’empêcher la goutte de diffuser sur la peau.
Piquer la veine et récolter la goutte à l’aide d’un
capillaire ou d’un tube.
Ponction cardiaque
Ce prélèvement peut être effectué seulement sur

un animal que l’on euthanasie. Il permet de
prélever la dose maximum de sang.
Anesthésier le rat et bien fixer sur la surface de

travail. Mettre de l’alcool pour bien visualiser le
sternum.
Piquer avec un angle de 30 à 45° au côté gauche du
sternum de l’animal.
Tirer doucement le piston et retirer tout le sang

(environ 10-12 ml) et euthanasier l’animal.
Aorte abdominale
Déplacer les intestins vers la gauche.
Insérer l’aiguille BISEAU VERS LE BAS à la base

de l’aorte pour éviter de recevoir du sang au visage
dû à la pression sanguine élevée.
Veine caudale
 Le prélèvement de sang de la veine latérale de la queue du rat peut ne

pas nécessiter d’anesthésie, mais aura besoin d'une source de chaleur qui
dilatera le système vasculaire
 Après dilatation du système vasculaire, le rat est maintenu dans un

dispositif de contention manuel
• Tenir le rat les Veine jugulaire

pattes antérieures
ramenées dans le • Insérer dans la veine
dos et relever la tête une aiguille, biseau
afin de mettre en vers le haut.
évidence les deux

épaules.
• À l’aide de l’index,
basculer la tête vers
l’arrière pour
mettre la jugulaire
en extension.
• Soutirer le volume sanguin désiré et retirer l’aiguille.
• Effectuer une pression pour arrêter le saignement.
Plexus orbital
L'animal doit être anesthésié

avec le pouce et l'index non
dominants du collecteur
utilisés pour maintenir la tête
du rat stable
Un tube capillaire ou une pipette est placé au niveau médial (coin interne) de l'œil.
Si le sang ne coule pas, le collecteur peut soit ne pas être dans le plexus ou en
appliquant trop de pression qui empêche le sang de s'accumuler dans le tube ou la
pipette.
Lorsque le volume est prélevé, retirez le tube ou la pipette et retirez le pouce pression
sur la veine jugulaire.
Tableau : Volume approximatif pouvant être obtenu selon les sites de ponction

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La contention chimique est disponible et dans la section d'anesthésie.

On peut injecter des composés via différentes voies ; PO (oralement),IV (intraveineuse),

 Insérer au complet l’aiguille avec

 Volume maximum : 0,5 ml

 Laisser la souris entrer dans un tube

 Tendre la patte de la main

 Placer la sonde du côté gauche de la bouche de

 Redresser la seringue à la verticale en

 Administrer le volume et retirer doucement la sonde.

Injection sous l’aponévrose plantaire

Directives d’administration du volume pour le rat

Les sites de collecte de sang de survie comprennent la queue, les veines

 Si ce volume maximum est prélevé, un intervalle de deux semaines entre les

Utiliser un tube conique 50 ml ou une boîte de contention

Appliquer un onguent (gelée de pétrole) afin

Appliquer un onguent (gelée de pétrole) afin

Ce prélèvement peut être effectué seulement sur

Anesthésier le rat et bien fixer sur la surface de

Tirer doucement le piston et retirer tout le sang

Déplacer les intestins vers la gauche.

Insérer l’aiguille BISEAU VERS LE BAS à la base

 Le prélèvement de sang de la veine latérale de la queue du rat peut ne

 Après dilatation du système vasculaire, le rat est maintenu dans un

• Tenir le rat les Veine jugulaire

dos et relever la tête une aiguille, biseau

afin de mettre en vers le haut.

évidence les deux

L'animal doit être anesthésié

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