Este documento describe el mecanismo redox de ciclo propuesto para la generación de fuerza motriz de protones (p.m.f.) por la formiato deshidrogenasa-N (Fdh-N) y la nitrato reductasa (Nar) en Escherichia coli durante el crecimiento anaeróbico con nitrato. Se presenta la estructura cristalina de Fdh-N resuelta a 1,6 Å, la cual muestra que las subunidades a y b están en el lado periplásmico de la membrana, mientras que la sub
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Este documento describe el mecanismo redox de ciclo propuesto para la generación de fuerza motriz de protones (p.m.f.) por la formiato deshidrogenasa-N (Fdh-N) y la nitrato reductasa (Nar) en Escherichia coli durante el crecimiento anaeróbico con nitrato. Se presenta la estructura cristalina de Fdh-N resuelta a 1,6 Å, la cual muestra que las subunidades a y b están en el lado periplásmico de la membrana, mientras que la sub
Descripción original:
Para metabolismo microbiano
Título original
La nitrato reductasa A unida a la membrana de Escherichia Coli NarGHI
Este documento describe el mecanismo redox de ciclo propuesto para la generación de fuerza motriz de protones (p.m.f.) por la formiato deshidrogenasa-N (Fdh-N) y la nitrato reductasa (Nar) en Escherichia coli durante el crecimiento anaeróbico con nitrato. Se presenta la estructura cristalina de Fdh-N resuelta a 1,6 Å, la cual muestra que las subunidades a y b están en el lado periplásmico de la membrana, mientras que la sub
Este documento describe el mecanismo redox de ciclo propuesto para la generación de fuerza motriz de protones (p.m.f.) por la formiato deshidrogenasa-N (Fdh-N) y la nitrato reductasa (Nar) en Escherichia coli durante el crecimiento anaeróbico con nitrato. Se presenta la estructura cristalina de Fdh-N resuelta a 1,6 Å, la cual muestra que las subunidades a y b están en el lado periplásmico de la membrana, mientras que la sub
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Muchas proteínas de membrana, incluida la adenosina trifosfato sintasa (ATP
sintasa) y transportadores secundarios, son impulsados por la fuerza protón motriz
(p.m.f. o gradiente electroquímico de protones) a través de biomembranas. Es comun pensar en la maquinaria molecular especial, como una bomba de protones o el Q-cycle, que son necesarios para generar el p.m.f. Sin embargo, estos son casos excepcionales y, de hecho, no existe en la teoría quimiosmótica original propuesto por Mitchell. Esto describe la cadena respiratoria de oxígeno como una serie de ciclos redox, donde los electrones son transferidos desde el lado "fuera" de la membrana hasta el lado "dentro" en cada complejo respiratorio y son cotransportados de regreso con H+, en forma de quinol, del lado “dentro” al lado “fuera” de la membrana entre los complejos. Aunque esta idea ha sido modificada posteriormente por agregando bombas de protones y el Q-cycle, el ciclo redox simple sigue pareciendo el mecanismo más común para p.m.f. generación y es utilizado por una amplia gama de organismos. Escherichia coli proporciona un sistema ideal para estudiar la base estructural del ciclo redox mecanismo, que aún no se ha explicado completamente. Durante el crecimiento anaeróbico de E.coli en presencia de nitrato, el principal donador de electrones al sistema de respiración de nitrato es el formiato, que se produce a partir del piruvato a través de la acetil-coenzima A. En esta condición, dos proteínas integrales de membrana son inducida: nitrato reductasa disimilatoria (Nar) y formiato deshidrogenasa-N (Fdh-N, N 5 inducible por nitrato) . Ambas enzimas tienen dos subunidades asociadas a la membrana (una alfa y beta) y una subunidad de membrana integral (gamma), una composición de subunidad común entre enzimas respiratorias unidas a la membrana. Jones demostró la p.m.f. generación por el sistema Nar/Fdh-N y ha propuesto un redox mecanismo de ciclo responsable de esta energía conservación (Fig. 1) (6). Fig. 1. Una propuesta de cómo la fuerza motriz de protones es generado por Fdh- N y nitrato reductasa en Escherichia coli interior membrana. MK, menaquinona; MKH2, reducido forma de menaquinona; MGD, molibdopterina-dinucleótido de guanina; b, hemo b; FeS, hierro-azufre grupo. Sin embargo, quedan por resolver las dos cuestiones principales siguientes: respondió para entender cómo pmf es generado por estas enzimas. (i) Topología de membrana de la menaquinona sitio de unión en Fdh-N. paramagnético de electrones Los estudios de resonancia (EPR) mostraron que el sitio de unión de la menaquinona en Nar está cerca proximidad a un hemo b en el lado periplásmico. Sin embargo, el lado de la membrana desde qué protones son llevados hasta el Fdh-N El sitio de unión de menaquinona aún no se ha determinado. Este es un tema crítico para resolver si Fdh-N y Nar están, de hecho, formando un ciclo redox acoplado por menaquinona. (ii) Topología de membrana de la subunidad Fdh-N a. Generalmente se acepta que la subunidad a de Nar existe en el lado citoplasmático (5). Aunque la subunidad Fdh-N a es altamente homóloga a la contraparte Nar, su membrana la topología aún no se ha determinado. Este escrítico para dilucidar si la reacción de transferencia de electrones de formiato a nitrato contribuye a la generación de potencial de membrana. Aquí, presentamos la estructura de Fdh-N en 1,6 Å. Un estudio comparativo de la Fdh-N con otras enzimas respiratorias relacionadas, en incluyendo Nar y [NiFe] hidrogenasa, tiene explicó con éxito cómo el p.m.f. es generado por el sistema Fdh-N/Nar. Estructura general. Detalles de la muestra la preparación, la cristalización y la determinación de la estructura se proporcionan en el material complementario (8). Estadísticas para la recopilación de datos y la determinación de la estructura se resumen en la Tabla 1. Se muestra la estructura general de Fdh-N en la Fig. 2. Fdh-N se empaqueta como un trímero (total masa molecular 5 510 kD) con los monómeros relacionados por un eje de simetría triple cristalográfica (Fig. 2, A y B). Él el trímero muestra una forma de "hongo" con las dimensiones más grandes de 125 Å (junto con la membrana) por 150 Å (a lo largo de la membrana normal). Dos observaciones sugieren que este es un trímero fisiológico: (i) El Los monómeros están muy apretados con un superficie de contacto de ;5254 Å2, y (ii) un molécula de cardiolipina, un fosfolípido derivado de la membrana original de E. coli, es mantenido en la interfaz del trímero. La estructura cristalina indica que a y b subunidades de Fdh-N están en el periplasma lado de la membrana (Fig. 2C). el a y b subunidades existen en el lado opuesto de la membrana de los terminales NH2 y COOH de la subunidad g, que han sido consistentes Se determina que está ubicado en el citoplasma.