Biology">
Divulgacion 655cfa87094a5
Divulgacion 655cfa87094a5
Divulgacion 655cfa87094a5
ISBN: 978-607-8734-56-6
Introducción.................................................................................9
Prefacio........................................................................................11
9
Introducción
10
PREFACIO
11
Prefacio
12
Luis E. Eguiarte
13
Prefacio
14
Luis E. Eguiarte
15
Prefacio
16
Luis E. Eguiarte
Luis E. Eguiarte
Instituto de Ecología, Departamento de Ecología Evolutiva
Universidad Nacional Autónoma de México
fruns@unam.mx
17
18
1
Tendencias científicas sobre la
biología del agave
1.1 Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género
Agave y otras asparagáceas
RESUMEN
21
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
Introducción
22
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
23
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
24
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
Figura 4. Partes de la flor del género Agave. A) Planta de Agave angustifolia (Oaxaca)
en floración. B) Flor madura de A. tequilana. (a) antera, (o) ovario, (t) tépalo, (es)
estilo, (et) estigma. C) Antera abierta de A. tequilana con polen maduro listo para
polinizar. D) Granos de polen maduros de A. tequilana. E) Protoplasto de grano
de polen de A. tequilana mononucleado. F) Protoplastos de polen de A. tequilana.
(a) mononucleado, (b) binucleado. G) Tubo polínico (tp) de A. tequilana (in vitro)
(flecha) entrando al óvulo a través del micrópilo. Micrografía en (G): F. J. Romo-Paz.
25
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
26
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
Gametofito masculino
Microsporogénesis
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Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
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A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
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Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
Microgametogénesis
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A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
Gametofito femenino
Figura 10. Flor de Agave spp. A) Corte longitudinal de la flor que muestra dos hileras
de óvulos (hio) distribuidas a lo largo del ovario ínfero (oi). B) Corte transversal del
ovario, se aprecian tres lóculos (línea punteada) con dos hileras de óvulos (o) cada uno,
los óvulos poseen placentación axilar. C) Micrografía de un óvulo de Agave tequilana
(tomada de González-Gutiérrez et al., 2014). D) Diagrama de las partes que componen
un óvulo de tipo anátropo (nu) nucela, (se) saco embrionario, (ii) integumento interno,
(ie) integumento externo. Las líneas de separación de la regla en B equivalen a 1 mm.
31
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
Meiosis (Megasporogénesis)
32
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
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Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
34
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
Megagametogénesis
Figura 13. Diagrama del proceso de formación del saco embrionario tipo Polygonum.
A) La megaspora funcional se divide mediante mitosis sin citocinesis para formar
un B) saco con dos núcleos que son separados por una vacuola central (v). Una
segunda mitosis forma un saco con cuatro núcleos. Finalmente, una tercera ronda
da lugar a D) un saco con cuatro núcleos en el polo calazal y cuatro en el micropilar.
E) Un núcleo de cada polo (núcleos polares) migra para fusionarse con el otro para
dar lugar al núcleo de la célula central. Durante la celularización y especialización
las tres células del extremo calazal se convierten en las antípodas (amarillo). En el
micrópilo se encuentran la célula huevo (rojo) y dos células sinérgidas (naranja); en
la parte media se posiciona la célula central (verde) que puede tener, dependiendo la
especie, el núcleo polarizado hacia el extremo micropilar F) o hacia el polo calazal G).
35
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
36
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
37
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
38
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
Fertilización y Embriogénesis
La doble fertilización
39
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
40
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
41
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
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A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
43
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
44
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
Figura 18. Esquema del desarrollo general del endospermo en Agave. El desarrollo
del endospermo en Agave es diferente al de A. thaliana. A) Como producto de la
segunda fertilización se genera el núcleo del endospermo primario que se divide
múltiples veces formando un cenocito (célula con núcleos múltiples, B y C) que
recubre las paredes de la célula central. Posteriormente, (C) viene el proceso de
celularización en el que los núcleos del cenocito se desplazan y ordenan utilizando
el citoesqueleto microtubular y de F-actina y se sintetizan paredes celulares. Este
proceso sucede de manera ordenada desde la cámara calazal hasta la micropolar,
pasando por la región periférica. En paralelo, (D) el embrión se desarrolla a partir
del cigoto generado en la primera fertilización.
45
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
Conclusiones
Referencias
Ali, M. F., Shin, J.M., Fatema, U., Kurihara, D., Berger, F., Yuan,
L. & Kawashima, T. (2023). Cellular dynamics of coenocytic
endosperm development in Arabidopsis thaliana. Nature Plants, 9,
330-342. https://doi.org/10.1038/s41477-022-01331-7
Ali, M. F., Fatema, U., Peng, X., Hacker, S. W., Maruyama, D., Sun, M.
X. & Kawashima, T. (2020). ARP2/3-independent WAVE/SCAR
pathway and class XI myosin control sperm nuclear migration in
flowering plants. Proceedings of the National Academy of Sciences, 117
(51), 32757-32763. https://doi.org/10.1073/pnas.2015550117
Alvarez, A. & Köhler, E. (1987). Morfología del polen de las Agava-
ceae y algunos géneros afines. Grana, 26 (1), 25-46. https://doi.
org/10.1080/00173138709428902
Barba-González, R. (2001). Efecto de la cafeína en los procesos de divi-
sión celular de meristemos radiculares de cebolla (Allium cepa L.) [tesis
de maestría, CUCEI-Universidad de Guadalajara]. Repositorio
Institucional UdeG. http://hdl.handle.net/20.500.12104/47928
Barranco-Guzmán, A. M., González-Gutiérrez, A. G. y Rodríguez-Ga-
ray, B. (2019). The embryo sac development of Manfreda elongata
46
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
47
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
48
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
49
Aspectos relevantes del desarrollo sexual en el género Agave y otras asparagáceas
Reiser, L. & Fischer, R. L. (1993). The ovule and the embryo sac. The
Plant Cell, 5, 1291. https://doi.org/10.2307/3869782
Rotman, N., Durbarry, A., Wardle, A., Yang, W. C., Chaboud, A.,
Faure, J. E., Berger, F., & Twell, D. (2005). A novel class of MYB
factors controls sperm-cell formation in plants. Current biology,
15(3), 244–248. https://doi.org/10.1016/j.cub.2005.01.013
Ruvalcaba-Ruiz, D., & Rodríguez-Garay, B. (2002). Aberrant meiotic
behavior in Agave tequilana Weber var. azul. BMC Plant Biology, 2,
(10) . https://doi.org/10.1186/1471-2229-2-10
She, W., y Baroux, C. (2014). Chromatin dynamics during plant se-
xual reproduction. Frontiers in Plant Science, 5, 354. https://doi.
org/10.3389/fpls.2014.00354
Simpson, M. G. (2019). Plant Morphology. En Plant Systematics (Tercera
Edición) (pp. 469-535). Academic Press. ISBN 9780128126288,
https://doi.org/10.1016/B978-0-12-812628-8.50009-2.
Sprunck, S., & Groß-Hardt, R. (2011). Nuclear behavior, cell polarity,
and cell specification in the female gametophyte. Sexual Plant Repro-
duction, 24, 123-136. https://doi.org/10.1007/s00497-011-0161-4
Sundaresan, V., & Alandete-Saez, M. (2010). Pattern formation in
miniature: the female gametophyte of flowering plants. Deve-
lopment, 137 (2), 179-189. https://doi.org/10.1242/dev.030346
Susaki, D., Izumi, R., Oi, T., Takeuchi, H., Shin, J. M., Sugi, N., Ki-
noshita, T., Higashiyama, T., Kawashima, T. & Maruyama, D.
(2023). F-actin regulates the polarized secretion of pollen tube
attractants in Arabidopsis synergid cells. The Plant Cell, 35 (4),
1222-1240. https://doi.org/10.1093/plcell/koac371
Tilton, V. R. & Mogensen, H. L. (1980). Ultrastructural aspects of
the ovule of Agave parryi before fertilization. Phytomorphology, 29,
338-50. https://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordI-
D=IN19810663823
Verma, S., Attuluri, V. P. S. & Robert, H. S. (2022). Transcriptional
control of Arabidopsis seed development. Planta, 255, 90. https://
doi.org/10.1007/s00425-022-03870-x
Wilkins, A. S., & Holliday, R. (2009). The Evolution of Meiosis From
Mitosis. Genetics, 181 (1), 3-12. https://doi.org/10.1534/gene-
tics.108.099762
50
A. Gónzalez-Gutierrez, B. Rodríguez-Garay y J. Verdín
51
52
1.2 MICROPROPAGACIÓN DE Agave spp. MEDIANTE
PROLIFERACIÓN DE YEMAS AXILARES EN SISTEMAS
DE INMERSIÓN TEMPORAL
RESUMEN
53
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
Introducción
54
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
Materiales y métodos
55
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
56
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
Resultados y discusión
57
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
58
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
59
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
60
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
61
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
62
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
63
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
64
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
Conclusiones
65
Micropropagación de Agave spp. mediante proliferación de yemas axilares en...
Referencias
66
M. I. Ortiz-Mena, A. Gutiérrez-Mora, K. L. Vega-Ramos, J. M. Rodríguez-Domínguez
y E. Tapia-Campos
Peng, M., Hudson, D., Schofield, A., Tsao, R., Yang, R., Gu, H., Bi,
Y. M., & Rothstein, S. J. (2008). Adaptation of Arabidopsis to
nitrogen limitation involves induction of anthocyanin synthesis
which is controlled by the NLA gene. Journal of experimental botany,
59(11), 2933–2944. https://doi.org/10.1093/jxb/ern148
Pérez, J., Fonseca, M., Bahi, M. & Silva, J. (2020). In vitro multiplication
of Morus alba L. Criolla variety in temporary immersion systems.
Pastos y Forrajes, 43 (3), pp. 235-243.
Robert M. L., Herrera-Herrera, J. L., Castillo, E., Ojeda, G., & Herre-
ra-Alamillo, M. A. (2006). An Efficient Method for the Micro-
propagation of Agave Species. En V. M. Loyola & F. F. Vázquez,
Methods in Molecular Biology /Plant Cell Culture Protocols (pp. 165-
178). Humana Press.
Rocano, M., Villena, P., & Peña, D. (2017). Evaluación de los sistemas
de cultivo semisólido y BIT en la multiplicación in vitro de Juglans
neotrópica. Maskana, 8(1),103–109. https://doi.org/10.18537/
mskn.08.01.09
Rosales, C., Brenes, J., Salas, K., Arce-Solano, S., & Abdel-
nour-Esquivel, A. (2018). Micropropagation of Stevia rebaudiana
in temporary immersion systems as an alternative horticultural
production method. Revista Chapingo Serie Horticultura, 24(1),
69-84. doi: 10.5154/r.rchsh.2017.08.028.
Salas, J. E., Agramonte, D., Jiménez-Terry, F., Pérez, M., Collado, R.;
Barbón, R., La O, M., De Feria, M., Chávez, M. (2011). Propaga-
ción de plantas de Morus alba var. Criolla con el uso de sistemas
de inmersión temporal. Biotecnología Vegetal, 11 (2), 77-88.
Sánchez, A., Coronel-Lara, Z., Gutiérrez, A., Vargas, G., Coronado,
M. L., & Esqueda, M. (2020). Aclimatación y trasplante de vi-
troplantas de Agave angustifolia Haw. En condiciones silvestres.
Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 11(7), 15931605. https://
doi.org/10.29312/remexca.v11i7.2403
Santacruz-Ruvalcaba, F., Torres Morán, M. I., & Portillo, L. (2008).
Micropropagación de Agave tequilana Weber cv. Azul: Problemas
y perspectivas. Scientia CUCBA, 10, 7–20.
67
68
1.3 AVANCES EN LA CRIOBIOTECNOLOGÍA DE
Agave spp.
RESUMEN
69
Avances en la criobiotecnología de Agave spp.
Introducción
70
L. Delgado-Aceves, L. Portillo, R. Folgado y M. T. González-Arnao
71
Avances en la criobiotecnología de Agave spp.
Materiales y métodos
72
L. Delgado-Aceves, L. Portillo, R. Folgado y M. T. González-Arnao
Resultados y discusión
73
Avances en la criobiotecnología de Agave spp.
74
L. Delgado-Aceves, L. Portillo, R. Folgado y M. T. González-Arnao
Conclusiones
75
Avances en la criobiotecnología de Agave spp.
Referencias
76
L. Delgado-Aceves, L. Portillo, R. Folgado y M. T. González-Arnao
77
78
1.4 PROPAGACIÓN IN VITRO DE Agave potatorum
(TOBALÁ) MEDIANTE ORGANOGÉNESIS AXILAR Y
CALLOGÉNESIS EN MEDIO SÓLIDO
RESUMEN
1
Tecnológico de Monterrey, Escuela de Ingeniería y Ciencias, Av. Eugenio Garza
Sada 2501 Sur, Monterrey, México 64849.
2
Technische Universität Dresden, Trefftz-Bau, Zellescher Weg 16, Dresden, Ale-
mania 01069. * ca.puente@tec.mx
79
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
Introducción
80
E. Rodríguez de la Garza, M. A. Salazar Muñoz, F. Gutiérrez Tenorio,
D. Magallanes Enríquez, A. González Rodríguez y C. A. Puente Garza
et al., 2015), por lo que las prácticas agrícolas actuales podrían poner
en peligro a la especie (Félix-Valdez et al., 2016). Derivado de esto,
múltiples esfuerzos han sido registrados a lo largo de los años para
la protección de A. potatorum, incluyendo planes de reforestación
(Torres-García et al., 2013), estrategias de preservación (Torres et
al., 2015) y el desarrollo de análisis demográficos y de recuperación
(Delgado-Lemus et al., 2014).
Diversas estrategias de micropropagación in vitro han sido pro-
puestas como una solución por su capacidad de producir plantas
saludables y de alta calidad. Estas técnicas han probado ser efectivas
para la propagación de múltiples especies del género, incluyendo
A. peacockii, A. guiengola, A. americana, A. tequilana, A. fourcroydes y A.
potatorum (Chávez-Ortiz et al., 2021; Chen et al., 2014; Delgado-Ace-
ves et al., 2022; Garriga Caraballo et al., 2010; Reyes-Zambrano et al.,
2016; Ruiz et al., 2011), en procesos donde se ha reportado el uso de
fitorreguladores (FR) como el ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D),
ácido naftalenacético (NAA) y bencilaminopurina (BAP) (Barreto
et al., 2010; Chen et al., 2014; Monja-Mio & Robert, 2013). Por lo
tanto, la propagación in vitro usando FR representa una alternativa a
las prácticas agronómicas tradicionales para la reproducción masiva
de A. potatorum.
En este trabajo se evalúa un método de micropropagación in vitro
de A. potatorum mediante organogénesis directa y callogénesis, uti-
lizando medio sólido y FR. Como resultado, se indujo con éxito la
formación de brotes axilares y diferentes tipos de callo específicos
de cada tratamiento.
Materiales y métodos
Material vegetal
81
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
Tratamiento
Evaluación fenotípica
82
E. Rodríguez de la Garza, M. A. Salazar Muñoz, F. Gutiérrez Tenorio,
D. Magallanes Enríquez, A. González Rodríguez y C. A. Puente Garza
Análisis estadístico
Resultados y discusión
Micropropagación
83
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
84
E. Rodríguez de la Garza, M. A. Salazar Muñoz, F. Gutiérrez Tenorio,
D. Magallanes Enríquez, A. González Rodríguez y C. A. Puente Garza
85
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
86
E. Rodríguez de la Garza, M. A. Salazar Muñoz, F. Gutiérrez Tenorio,
D. Magallanes Enríquez, A. González Rodríguez y C. A. Puente Garza
87
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
Conclusiones
Referencias
88
E. Rodríguez de la Garza, M. A. Salazar Muñoz, F. Gutiérrez Tenorio,
D. Magallanes Enríquez, A. González Rodríguez y C. A. Puente Garza
89
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
545–551. https://doi.org/10.4067/S0718-58392010000400003
Lara-Ávila, J. P., & Alpuche-Solís, Á. G. (2016). Análisis de la diversi-
dad genética de agaves mezcaleros del centro de México. Revista
fitotecnia mexicana, 39(3), 323-330. http://www.scielo.org.mx/scielo.
php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802016000300323&ln-
g=es&tlng=es.
Lecona Guzmán, C. A., Reyes Zambrano, S., Barredo Pool, F. A.,
Abud Archila, M., Montes Molina, J. A., Rincón Rosales, R., &
Gutierres Miceli, F. A. (2017). In Vitro Propagation of Agave
americana by Indirect Organogenesis. Hort Science, 52(7), 1–5. ht-
tps://doi.org/10.21273/HORTSCI10498-16
Martínez-Martínez, S. Y., Arzate-Fernández, A. M., Álvarez-Ara-
gón, C., Martínez-Velasco, I., & Norman-Mondragón, T. (2021).
REGENERATION OF Agave marmorata Roelz PLANTS IN
TEMPORARY IMMERSION SYSTEMS, VIA ORGANOGE-
NESIS AND SOMATIC EMBRYOGENESIS. Tropical and Sub-
tropical Agroecosystems, 24(3), Article 3. https://doi.org/10.56369/
tsaes.3472
Martínez-Palacios, A., Ortega-Larrocea, M. P., Chávez, V. M., &
Bye, R. (2003). Somatic embryogenesis and organogenesis of
Agave victoriae-reginae: Considerations for its conservation. Plant
Cell, Tissue and Organ Culture, 74(2), 135–142. https://doi.or-
g/10.1023/A:1023933123131
Meza, D. E. E., González, G. R., & Ángeles, B. E. M. (2017). Ca-
racterizando la producción y organización de los mezcaleros en
Matatlán, México “Capital mundial del mezcal.” Estudios Sociales.
Revista de Alimentación Contemporánea y Desarrollo Regional, 27(50),
Article 50. https://doi.org/10.24836/es.v27i50.465
Monja-Mio, K. M., & Robert, M. L. (2013). Direct somatic embryoge-
nesis of Agave fourcroydes Lem. Through thin cell layer culture.
In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 49(5), 541–549.
https://doi.org/10.1007/s11627-013-9535-7
Ortíz Hernández, Y. D., Gutiérrez Hernández, G. F., Corzo Ríos, L. J.,
García Ramírez, E., & Martínez Tomás, S. H. (2018). Varietal and
germinative characterization of Agave potatorum (Asparagaceae)
90
E. Rodríguez de la Garza, M. A. Salazar Muñoz, F. Gutiérrez Tenorio,
D. Magallanes Enríquez, A. González Rodríguez y C. A. Puente Garza
91
Propagación in vitro de Agave potatorum (tobalá) mediante organogénesis axilar...
92
1.5 ANATOMÍA, COMPOSICIÓN QUÍMICA Y GENÓMICA
DE LAS FIBRAS DE Agave spp.
RESUMEN
1
Conahcyt-Colegio de Postgraduados Campus Campeche, Carretera Haltun-
chén-Edzná km 17.5, Sihochac, 24450, Campeche, México.
2
Division of Glycoscience, Department of Chemistry, School of Engineering
Sciences in Chemistry, Biotechnology and Health, KTH Royal Institute of Tech-
nology, SE-100 44 Stockholm, Sweden.
3
Adscripción actual: Conahcyt-Unidad de Bioquímica y Biología Molecular de
Plantas, Centro de Investigación Científica de Yucatán, A.C., Calle 43 No. 130 ×
32 y 34, Col. Chuburná de Hidalgo, 97205, Mérida, Yucatán, México.
*fulgencio.alatorre@cicy.mx
93
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
94
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
95
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
96
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
97
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
En los agaves, las fibras están dispersas como paquetes dentro del
tejido parenquimatoso de la hoja; su longitud y diámetro pueden
variar dependiendo de la especie, estado de desarrollo o condiciones
de crecimiento. En A. sisalana una hoja presenta aproximadamente
700 a 1400 paquetes de fibras; la longitud de la fibra oscila de 0.5
a 1.5 metros, con un diámetro promedio de 200 μm (de Andrade
Silva et al., 2008). En A. lechuguilla la fibra es corta, hasta de 40 cm y
un diámetro de 333-450 μm (Belmares et al., 1979; Castillo Quiroz
et al., 2013). En A. americana son aún más cortas, entre 11 y 12 cm
98
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
99
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
100
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
101
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
102
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
103
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
Conclusiones
Agradecimientos
Referencias
104
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
105
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
http://hdl.handle.net/10521/715.
Castillo Quiroz, D., Sáenz Reyes, J. T., Narcia Velasco, M., & Váz-
quez Ramos, J. A. (2013). Propiedades físico-mecánicas de
la fibra de Agave lechuguilla Torr. de cinco procedencias bajo
plantaciones. Revista mexicana de ciencias forestales, 4(19), 78-91.
http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pi-
d=S2007-11322013000500007&lng=es&tlng=es.
Colunga-GarcíaMarín, P., Zizumbo-Villarreal, D., & Martínez To-
rres, J. (2007). Tradiciones en el aprovechamiento de los Agaves
mexicanos: una aportación a la protección legal y conservación
de su diversidad biológica y cultural. En P. Columnga-García-
Marin, En lo ancestral hay futuro: del tequila, los mezcales y otros agaves
(pp. 229-248). CICY.
De Andrade Silva, F., Chawla, N. & de Toledo, F.R.D. (2008). Tensile
behavior of high performance natural (sisal) fibers. Composites
Science and Technology, 68, 3438-3443. doi.org/10.1016/j.comps-
citech.2008.10.001.
de Barros Salgado, A.L & Dirceu Ciaramello, A. A. (1979). Melhoramen-
to de agave por hibridação sisal breeding. Bragantia, 38, 3710-3717.
Díaz, M., Yépez, L., & Gotopo, E. (2018). Agave cocui: un noble de
las zonas áridas de Venezuela. Desde el Herbario CICY, 10, 137–143.
Escamilla-Treviño, L.L. (2012). Potential of plants from the genus
Agave as bioenergy crops. Bioenergy Research, 5, 1–9. doi.
org/10.1007/s12155-011-9159-x.
García Valenzuela, M. A. (2011). Etnoecología de los Agaves (Agavaceae)
en la comunidad Ngiwa (Popoloca) de los Reyes Metzontla, Puebla, México
[tesis de maestría, Colegio de Postgraduados]. Repositorio insti-
tucional COLPOS. http://hdl.handle.net/10521/440
García-Castillo, M., Rodríguez-Zapata, L., & Sanchez Teyer, L. (2022).
Differential expression of CesA genes and the relationship with
fiber content in henequen. Tropical and Subtropical Agroecosystems,
25(3). doi:http://dx.doi.org/10.56369/tsaes.4328
Gross, S. M., Martin, J. A., Simpson, J., Abraham-Juarez, M. J., Wang,
Z., & Visel, A. (2013). De novo transcriptome assembly of drou-
ght tolerant CAM plants, Agave deserti and Agave tequilana. BMC
106
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
107
Anatomía, composición química y genómica de las fibras de Agave spp.
108
D. C. Morán-Velázquez, L. F. Maceda-López, L. Rodríguez-López, F. Vilaplana
y F. Alatorre-Cobos
Sahu, P., & Sisal, G.M. (2017). (Agave sisalana) fibre and its poly-
mer-based composites: A review on current developments.
Journal of Reinforced Plastics and Composites, 36 (24), 1759-1780.
doi:10.1177/0731684417725584
Salcedo-Martínez, S. M., González-Álvarez, M., & Moreno-Limón, S.
(2010). Plantas productoras de fibras de importancia económica.
En M. Alvarado Vázquez, A. Rocha Estrada, & S. Moreno Limón
(eds.), De la lechuguilla a las biopelículas vegetales (pp. 199-226). UANL.
Sarwar, M. B., Ahmad, Z., Rashid, B., Hassan, S., Gregersen, P. L.,
De la O Leyva, M., Nagy, I., Asp, T., & Husnain, T. (2019). De
novo assembly of Agave sisalana transcriptome in response to
drought stress provides insight into the tolerance mechanisms.
Scientific Reports, 9, 396. doi.org/10.1038/s41598-018-35891-6.
Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. (2019). Actua-
lización de la superficie de henequén en el estado de Yucatán. Publicación
16. SADER. https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/
file/451423/Publicaci_n_16_-_Utilidad_de_la_Frontera_Agr_
cola_en_el_estado_de_Yucat_n.pdf
Vieira, M. C., Heinze, T., Antonio-Cruz, R., & Mendoza-Martínez, A.
M. (2002). Cellulose derivatives from cellulosic material isolated
from Agave lechuguilla and fourcroydes. Cellulose, 9, 203–212. doi.
org/10.1023/A:1020158128506.
Yudhanto, F., Jamasri, J., Rochardjo, H., & Kusumaatmaja, A. (2021).
Experimental Study of Polyvinyl Alcohol Nanocomposite Film
Reinforced by Cellulose Nanofibers from Agave Cantala. In-
ternational Journal of Engineering, 34(4), 987-998. doi: 10.5829/
ije.2021.34.04a.25
Zuleta, M. C., & Orensanz, L. (2004). Hacienda Pública y exportación
henequenera en Yucatán, 1880-1910. Historia Mexicana, 54(1),
179–247. http://www.jstor.org/stable/25139555
109
110
1.6 Sycphophorus acupunctatus GYLLENHAL PLAGA DE
LOS MAGUEYES EN MÉXICO
RESUMEN
1
Colegio de Postgraduados, Posgrado en Fitosanidad, Campus Montecillo, Tex-
coco, Estado de México. *hgzzhdz@colpos.mx
111
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
Introducción
Importancia económica de los agaves en México
Tequila
112
Héctor Gonzalez Hernández
Mezcal
113
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
114
Héctor Gonzalez Hernández
Distribución y hospedantes
115
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
116
Héctor Gonzalez Hernández
117
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
118
Héctor Gonzalez Hernández
119
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
Medidas de control
120
Héctor Gonzalez Hernández
Conclusiones
121
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
Referencias
122
Héctor Gonzalez Hernández
123
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
124
Héctor Gonzalez Hernández
125
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
Halffter, G. (1957). Plagas que afectan a las distintas especies de Agave culti-
vadas en México. Dirección General de Defensa Agrícola, Secretaría
de Agricultura y Ganadería.
Lock, G. W. (1969). Sisal. Thirty Years Sisal Research in Tanzania. Second
Edition. Tanganyika Sisal Growers Association. Longmans, Green
and Coltd.
Lugo-García, G., Ortega-Arenas, L. D., González-Hernández, H., Ara-
gón-García, A., Romero-Nápoles, J., & Rubio-Cortés, R. (2009).
Descripción de las larvas de tercer instar de Melolonthidae (Co-
leoptera) asociadas al cultivo de Agave tequilana var. Azul y su fluc-
tuación Poblacional en Jalisco, México. Neotropical Entomology, 38(6),
769-780. https://doi.org/10.1590/S1519-566X2009000600010
Matos Andrade, M. (2022). The presence of the agave weevil
Scyphophorus acupunctatus Gyllenhal, 1838 (Coleoptera: Dryophtho-
ridae) in Madeira Archipelago. A new biological control oppor-
tunity or a new invasive species? Weevil News, 98, 1-11.
O’Brien, Ch. W., & Wibmer, G. J. (1982). Annotated Checklist of the
Weevils (Curculionidae Sensu lato) of North America, Central America
and the West Indies (Coleoptera: Curculionidae). Mem. Amer. Ent. Inst.
Number 34. The American Entomological Institute. Ann. Arbor.
Olivares-Orozco, J., Ramírez-Sánchez, S. E., Jiménez-Aguilar, A.,
Guerrero-Andrade, O., Montiel-Salero, D., Rodríguez-Diego, J.
G. (2017). Notificación de Acanthoderes funeraria (Bates) sobre dos
tipos de Agave salmiana (Otto ex Salm-Dyck) en Hidalgo, México.
Revista de Protección Vegetal, 32(2), 1-5.
Pacheco Sánchez, C. (2002). Efectividad biológica de los entomopatógenos
Beauveria bassiana (Balls.) Vuill. Y Metarhizum anisopliae (Metsch.)
Sor., sobre el picudo del agave tequilero Scyphophorus acupunctatus Gyll.,
en Atotonilco, Jalisco [Tesis de Licenciatura sin publicar, Universidad
Autónoma Chapingo].
Pineda, M. G. (1983). Control químico de las plagas y enfermedades más comu-
nes del maguey pulquero Agave atrovirens Karw [Tesis de Licenciatura
sin publicar, Universidad Autónoma Chapingo].
Ramírez, J. L. (1993a). Max del Henequén Scyphophorus interstitalis Gyll.
Bioecología y Control. Serie: Libro técnico. Centro de Investigación
Regional del Sureste. INIFAP-SARH.
126
Héctor Gonzalez Hernández
127
Sycphophorus acupunctatus Gyllenhal plaga de los magueyes en México
128
Héctor Gonzalez Hernández
129
130
2
Ciencia y tecnología de bebidas de
agave
2.1 ANÁLISIS DE LA DIVERSIDAD MICROBIANA Y SU
INFERENCIA FUNCIONAL DURANTE EL PROCESO DE
FERMENTACIÓN DEL PULQUE PARA LA DEFINICIÓN
DE UN MICROBIOMA CENTRAL DE ESA BEBIDA
RESUMEN
133
Análisis de la diversidad microbiana y su inferencia funcional durante el proceso de...
Introducción
134
F. Astudillo Melgar, M. Giles Gómez, F. Bolívar y A. Escalante
135
Análisis de la diversidad microbiana y su inferencia funcional durante el proceso de...
136
F. Astudillo Melgar, M. Giles Gómez, F. Bolívar y A. Escalante
137
Análisis de la diversidad microbiana y su inferencia funcional durante el proceso de...
138
F. Astudillo Melgar, M. Giles Gómez, F. Bolívar y A. Escalante
139
Análisis de la diversidad microbiana y su inferencia funcional durante el proceso de...
140
F. Astudillo Melgar, M. Giles Gómez, F. Bolívar y A. Escalante
141
Análisis de la diversidad microbiana y su inferencia funcional durante el proceso de...
Conclusiones
142
F. Astudillo Melgar, M. Giles Gómez, F. Bolívar y A. Escalante
Agradecimientos
Referencias
143
Análisis de la diversidad microbiana y su inferencia funcional durante el proceso de...
144
F. Astudillo Melgar, M. Giles Gómez, F. Bolívar y A. Escalante
145
146
2.2 DETERMINACIÓN DE LA SUCESIÓN DE LAS
COMUNIDADES DE LEVADURAS Y DE LOS CAMBIOS
FISICOQUÍMICOS EN LA PRODUCCIÓN DE PULQUE
COMERCIAL EN LA HACIENDA DE XOCHUCA,
TLAXCO, TLAXCALA, MÉXICO
RESUMEN
147
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
148
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
Introducción
149
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
150
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
Materiales y métodos
Obtención de muestras
151
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
Estudio microbiológico
c) Identificación molecular
152
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
Estudios fisicoquímicos
153
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
Resultados y discusión
Estudio microbiológico
154
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
Aguamiel acocote
Aguamiel castaña
Aguamiel cajete
Agua lavado
Pared-cajete
T3 (12 h)
T4 (20 h)
T5 (24h)
T6 (48h)
T7 (72h)
T1 (4h)
T2 (8h)
Semilla
Xaxtle
Total
Especies
T0
Candida boidinii 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1
Clavispora lusitaniae 1 1 3 1 0 0 2 0 0 0 0 0 0 0 0 8
Clavispora sp.
0 0 1 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 4
(UBC)
Hanseniaspora
0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1
valbyensis
Kazachstania
0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1
gamospora
Kluyveromyces
0 2 4 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 7
marxianus
Kluyveromyces
0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 3
sp. (UBC)
Meyerozyma
0 0 1 2 1 0 0 0 0 1 1 0 0 0 1 7
guilliermondii
Meyerozyma sp.
2 0 0 3 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 6
(UBC)
Saccharomyces
0 0 0 0 2 0 0 1 1 1 2 0 1 0 0 8
cerevisiae
Saccharomyces
0 0 0 1 0 1 2 0 2 1 0 1 0 0 2 10
paradoxus
Saccharomyces
0 1 0 0 1 3 1 0 0 0 1 3 1 1 1 13
sp. (UBC)
Starmerella stellata 0 0 0 0 0 1 1 0 1 1 0 2 0 0 0 6
Starmerella sp.
0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 1 1 4
(UBC)
Zygosaccharomyces
0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1
balii
Total de aislados
3 5 11 9 4 5 9 4 5 5 5 6 2 2 5 80
identificados
0.6365
1.3321
1.3761
1.3030
1.0397
0.9502
2.1594
1.3862
1.3321
1.3321
1.3321
1.0114
0.6931
0.6931
1.3321
2.6310
Índice de Shannon
(H’)
UBC= Unidad básica de caracterización (Núñez-Colín & Escobedo-López, 2011)
155
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
156
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
157
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
Conclusiones
158
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
Referencias
159
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
160
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
161
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
162
R. Arredondo-Fernández, P. E. Lappe Oliveras, S. Le Borgne, R. Moreno-Terrazas y
C. Ojeda Linares
163
Determinación de la sucesión de las comunidades de levaduras y de los cambios...
164
2.3 CARACTERIZACIÓN METAGENÓMICA Y
EVALUACIÓN DE COMPUESTOS VOLÁTILES EN
FERMENTACIONES DE MEZCAL DEL ESTADO DE
OAXACA
RESUMEN
165
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
Introducción
166
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
167
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
Materiales y métodos
Muestras biológicas
Análisis metagenómico
168
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
169
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
Resultados y discusión
170
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
171
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
172
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
173
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
174
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
175
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
Conclusiones
Referencias
176
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
177
Caracterización metagenómica y evaluación de compuestos volátiles en...
178
R. Quezada Romero, J. A. Morales Valencia, M. R. Kirchmayr, M. Arellano Plaza,
J. Morrissey y A. C. Gschaedler Mathis
179
180
2.4 CARACTERIZACIÓN SENSORIAL DEL MEZCAL:
DESDE LOS AROMAS HASTA LAS PREFERENCIAS
RESUMEN
181
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
Introducción
Resultados y discusión
182
Sergio Erick García Barrón
183
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
184
Sergio Erick García Barrón
185
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
186
Sergio Erick García Barrón
187
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
188
Sergio Erick García Barrón
189
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
190
Sergio Erick García Barrón
191
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
192
Sergio Erick García Barrón
193
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
Borracho 17 8 0 4 29 0.000
Comida 4 4 8 24 40 0.0001
Cruda 18 11 3 5 37 0.0002
Cultura 2 7 8 20 37 0.0019
Estado 21 4 40 3 68 0.000
Fiesta 9 15 5 9 38 n.s.
Fuerte 58 45 56 34 193 0.0078
Gusano 6 5 12 17 40 n.s.
Maguey 10 14 26 23 73 n.s.
Naranja 0 2 4 12 18 0.0016
Quemante 12 12 22 3 49 0.0028
Tradición 7 22 21 25 75 0.0393
Variedad 1 3 4 22 30 0.000
*Las comparaciones son entre campo social; se utilizó la prueba exacta de Fisher, p<0.05
y los valores significativos se marcan en negritas.
194
Sergio Erick García Barrón
Conclusiones
195
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
Referencias
196
Sergio Erick García Barrón
197
Caracterización sensorial del mezcal: desde los aromas hasta las preferencias
198
2.5 HUELLA ESPECTRAL DE BEBIDAS DESTILADAS
DE AGAVE MEDIANTE ESPECTROSCOPIA DE
INFRARROJO
RESUMEN
1
Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de
Jalisco A.C. Tecnología Alimentaria, Camino Arenero 1227, El Bajío, Zapopan,
Jal., México 45019. * jelopez@ciatej.mx
199
Huella espectral de bebidas destiladas de agave mediante espectroscopia...
Introducción
200
D. N. Regla Corona, P. M. Mondragón Cortez y J. E. López Ramírez
201
Huella espectral de bebidas destiladas de agave mediante espectroscopia...
202
D. N. Regla Corona, P. M. Mondragón Cortez y J. E. López Ramírez
Materiales y métodos
Obtención de muestras
Resultados y discusión
203
Huella espectral de bebidas destiladas de agave mediante espectroscopia...
204
D. N. Regla Corona, P. M. Mondragón Cortez y J. E. López Ramírez
205
Huella espectral de bebidas destiladas de agave mediante espectroscopia...
206
D. N. Regla Corona, P. M. Mondragón Cortez y J. E. López Ramírez
Conclusiones
207
Huella espectral de bebidas destiladas de agave mediante espectroscopia...
Referencias
208
2.6 COMPARACIÓN DE CINCO PROCESOS
FERMENTATIVOS PARA LA ELABORACIÓN DE
COMITECO
RESUMEN
209
Comparación de cinco procesos fermentativos para la elaboración de comiteco
Introducción
Materiales y métodos
210
A. G. Verdugo-Valdez, D. Valdivieso-Solís, P. Lappe-Oliveras, M. R. Kirchmayr,
C. Orantes-García, S. Sánchez-Cortés y A. C. Gschaedler
Resultados y discusión
211
Comparación de cinco procesos fermentativos para la elaboración de comiteco
212
A. G. Verdugo-Valdez, D. Valdivieso-Solís, P. Lappe-Oliveras, M. R. Kirchmayr,
C. Orantes-García, S. Sánchez-Cortés y A. C. Gschaedler
213
Comparación de cinco procesos fermentativos para la elaboración de comiteco
214
A. G. Verdugo-Valdez, D. Valdivieso-Solís, P. Lappe-Oliveras, M. R. Kirchmayr,
C. Orantes-García, S. Sánchez-Cortés y A. C. Gschaedler
215
Comparación de cinco procesos fermentativos para la elaboración de comiteco
Conclusiones
216
A. G. Verdugo-Valdez, D. Valdivieso-Solís, P. Lappe-Oliveras, M. R. Kirchmayr,
C. Orantes-García, S. Sánchez-Cortés y A. C. Gschaedler
Referencias
217
Comparación de cinco procesos fermentativos para la elaboración de comiteco
Verdugo Valdez, A., Segura García, L., Kirchmayr, M., Ramírez Rodrí-
guez, P., González Esquinca, A., Coria, R., & Gschaedler Mathis,
A. (2011). Yeast communities associated with artisanal mezcal fer-
mentations from Agave salmiana. Antonie van Leeuwenhoek, 100(4),
497–506. https://doi.org/10.1007/s10482-011-9605-y
218
3
Fructanos y otros derivados del
agave
3.1 PROCESO DE ULTRAFILTRACIÓN DE FRUCTANOS
DE AGAVE: FOULING O ENSUCIAMIENTO DE
MEMBRANAS DE CERAMICA
RESUMEN
221
Proceso de ultrafiltración de fructanos de agave: fuoling o ensuciamiento...
Introducción
222
N. Luiz-Santos, R. Camacho-Ruiz, J. García-Fajardo y L. Moreno-Vilet
223
Proceso de ultrafiltración de fructanos de agave: fuoling o ensuciamiento...
Materiales y métodos
Fructanos de agave
224
N. Luiz-Santos, R. Camacho-Ruiz, J. García-Fajardo y L. Moreno-Vilet
(2)
225
Proceso de ultrafiltración de fructanos de agave: fuoling o ensuciamiento...
(3)
(4)
Resultados y discusión
(5)
226
N. Luiz-Santos, R. Camacho-Ruiz, J. García-Fajardo y L. Moreno-Vilet
227
Proceso de ultrafiltración de fructanos de agave: fuoling o ensuciamiento...
228
N. Luiz-Santos, R. Camacho-Ruiz, J. García-Fajardo y L. Moreno-Vilet
Conclusiones
Referencias
Chhaya, C. S., Sharma. C., Mondal, S., Majumdar, G. C., & De, S.
(2012). Clarification of Stevia extract by ultrafiltration: Selection
criteria of the membrane and effects of operating conditions.
Food and Bioproducts Processing, 90(3), 525–532. https://doi.or-
g/10.1016/j.fbp.2011.10.002
Fane, A. G., Tang, C. Y., & Wang, R. (2010). Membrane Technology
for Water: Microfiltration, Ultrafiltration, Nanofiltration, and
Reverse Osmosis. Treatise on Water Science, 4, 301–335. https://
doi.org/10.1016/B978-0-444-53199-5.00091-9
Flores-Montaño, J. L., Camacho-Ruiz, R. M., Prado-Ramírez, R., Mo-
reno-Vilet, L., Luiz-Santos, N., Mendoza-Rivera, M. de los Á., &
Ballón-Villagrá, A. (2015). Fructanos fraccionados de Agave y su proceso
de obtención a nivel piloto e industrial (Patent No. MX/a/2015/014523).
Luiz-Santos, N., Prado-Ramírez, R., Arriola-Guevara, E., Cama-
cho-Ruiz, R. M., & Moreno-Vilet, L. (2020). Performance eva-
luation of tight ultrafiltration membrane systems at pilot scale for
agave fructans fractionation and purification. Membranes, 10(10),
1–19. https://doi.org/10.3390/membranes10100261
Luiz-Santos, N., Prado-Ramirez, R., Camacho-Ruíz, R. M., Guate-
mala-Morales, G., M., Arriola-Guevara, E., & Moreno-Vilet,
L. (2022). Effect of Operating Conditions and Fructans Size
Distribution on Tight Ultrafiltration Process for Agave Fruc-
tans Fractionation : Optimization and Modeling. Membranes, 12.
https://doi.org/10.3390/membranes12060575
229
Proceso de ultrafiltración de fructanos de agave: fuoling o ensuciamiento...
230
N. Luiz-Santos, R. Camacho-Ruiz, J. García-Fajardo y L. Moreno-Vilet
231
232
3.2 EFECTO DE MEZCLAS DE FRUCTANOS LINEALES
Y RAMIFICADOS SOBRE LA APOPTOSIS IN VITRO EN
CÉLULAS DE COLON
RESUMEN
233
Efecto de mezclas de fructanos lineales y ramificados sobre la apoptosis in vitro...
Introducción
234
P. Álvarez García, L. E. Alcántara Quintana, M. A. Ruiz Cabrera, R. González García y
A. Grajales Lagunes
Materiales y metodos
235
Efecto de mezclas de fructanos lineales y ramificados sobre la apoptosis in vitro...
Ensayos celulares
236
P. Álvarez García, L. E. Alcántara Quintana, M. A. Ruiz Cabrera, R. González García y
A. Grajales Lagunes
Análisis estadístico
Resultados y discusión
237
Efecto de mezclas de fructanos lineales y ramificados sobre la apoptosis in vitro...
238
P. Álvarez García, L. E. Alcántara Quintana, M. A. Ruiz Cabrera, R. González García y
A. Grajales Lagunes
dedor de 5%. Mientras que para las células cancerosas SW480 (Figura
1c) los porcentajes de células apoptóticas fueron significativamente
(p<0.05) elevados, aproximadamente 100% con mezclas de fructa-
nos (0.75/0.25) en este caso, siendo el componente predominante
los fructanos lineales a una concentración de 5%. A diferencia de
las HT29, las SW480 se vieron más afectadas con la predominancia
de fructanos lineales, por ende, el tipo de célula, el tiempo de trata-
miento, la concentración utilizada y el tipo de fructanos utilizado son
factores importantes para considerar en la apoptosis celular ya que,
dependiendo del resultado que se busque, se deben de implementar
estos parámetros de manera diferente.En general, las células SW480
y HT29 presentaron mayor incidencia a la apoptosis con las mezclas
de fructanos, lo cual sugiere que la combinación de fructanos lineales
y ramificados puede inducir la apoptosis de células de cáncer de colon
suprimiendo o inhibiendo las células cancerosas, probablemente de-
bido a sus anomalías estructurales. Estos resultados son interesantes
debido a que indican que la inclusión de fructanos no fermentados
también induce a la apoptosis de las células cancerígenas, ya que en
la mayoría de los estudios reportados se han utilizado los metaboli-
tos (ácido acético, propiónico y butírico) producidos después de la
fermentación de prebióticos tipo inulina por bacterias para evaluar
el efecto anticancerígeno. Los productos de la fermentación podrían
haber incrementado la actividad de genes pro-apoptóticos que con-
ducen a una mayor expresión de proteínas y apoptosis, dicho efecto
ha sido mayormente asociado a la producción de butirato (Munjal et
al., 2009, Borowicki et al., 2010; Arun et al., 2019).
Los efectos anticancerígenos producidos por los fructanos usa-
dos en este estudio puede ser por expresiones génicas al iniciarse la
señalización de los fructanos en la célula, así como la disminución de
los niveles de ATP, la actividad citotóxica que incrementa los niveles
del lactato deshidrogenasa (LDH).
239
Efecto de mezclas de fructanos lineales y ramificados sobre la apoptosis in vitro...
240
P. Álvarez García, L. E. Alcántara Quintana, M. A. Ruiz Cabrera, R. González García y
A. Grajales Lagunes
Conclusiones
241
Efecto de mezclas de fructanos lineales y ramificados sobre la apoptosis in vitro...
Referencias
242
P. Álvarez García, L. E. Alcántara Quintana, M. A. Ruiz Cabrera, R. González García y
A. Grajales Lagunes
243
Efecto de mezclas de fructanos lineales y ramificados sobre la apoptosis in vitro...
244
3.3 CINÉTICA DE LIBERACIÓN DE CURCUMINA
EN MICROENCAPSULADOS DE ALGINATO CON
AGAVINAS Y MATERIAL LIGNOCELULÓSICO
RESUMEN
245
Cinética de liberación de curcumina en microencapsulados de alginato con agavinas...
Introducción
246
C. Buitrago Arias, C. Camilo Villa, R. Martínez Velarde, L. Alamilla Beltrán,
A. R. Jiménez Aparicio, B. H.Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
Materiales y métodos
247
Cinética de liberación de curcumina en microencapsulados de alginato con agavinas...
Eficacia de la encapsulación
248
C. Buitrago Arias, C. Camilo Villa, R. Martínez Velarde, L. Alamilla Beltrán,
A. R. Jiménez Aparicio, B. H.Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
Cinética de liberación
Donde:
Mt/M∞ = fracción de soluto liberada, k = constante de liberación,
n = mecanismo de difusión y t = tiempo.
Asimismo, la cinética de liberación se ajustó al modelo propuesto
por Peppas-Sahlin (Ecuación 3).
Donde:
k1 y k2 representan las constantes de difusión y erosión, respec-
tivamente, y m es el exponente de difusión.
El coeficiente de difusión (D) de la curcumina desde los microencap-
sulados se calculó según Agnihotri et al. (2006) usando la Ecuación 4.
249
Cinética de liberación de curcumina en microencapsulados de alginato con agavinas...
Análisis estadístico
Resultados y discusión
250
C. Buitrago Arias, C. Camilo Villa, R. Martínez Velarde, L. Alamilla Beltrán,
A. R. Jiménez Aparicio, B. H.Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
251
Cinética de liberación de curcumina en microencapsulados de alginato con agavinas...
Eficiencia de encapsulación
252
C. Buitrago Arias, C. Camilo Villa, R. Martínez Velarde, L. Alamilla Beltrán,
A. R. Jiménez Aparicio, B. H.Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
253
Cinética de liberación de curcumina en microencapsulados de alginato con agavinas...
Conclusiones
Referencias
254
C. Buitrago Arias, C. Camilo Villa, R. Martínez Velarde, L. Alamilla Beltrán,
A. R. Jiménez Aparicio, B. H.Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
Dhakal, S., Schmidt, W. F., Kim, M., Tang, X., Peng, Y., & Chao, K.
(2019). Detection of additives and chemical contaminants in
turmeric powder using FT-IR spectroscopy. Foods, 8(5). https://
doi.org/10.3390/foods8050143
Đorđević, V., Balanč, B., Belščak-Cvitanović, A., Lević, S., Trifković,
K., Kalušević, A., Kostić, I., Komes, D., Bugarski, B., & Nedović,
V. (2014). Trends in Encapsulation Technologies for Delivery of
Food Bioactive Compounds. Food Engineering Reviews, 7, 452 - 490.
https://doi.org/10.1007/s12393-014-9106-7
Fertah, M., Belfkira, A., Taourirte, M., & Brouillette, F. (2015). Con-
trolled Release of Diclofenac by a New System Based on a Ce-
llulosic Substrate and Calcium Alginate. BioResources, 10(1950),
5932–5948.
Flores, F. P., & Kong, F. (2017). In Vitro Release Kinetics of Mi-
croencapsulated Materials and the Effect of the Food Matrix.
Annual Review of Food Science and Technology, 8, 1–23. https://doi.
org/10.1146/annurev-food-030216-025720
Hernández, Y. R., García Serrano, L. A., Maruri, D. T., Jiménez Apari-
cio, A. R., Camacho Díaz, B. H., & Arenas Ocampo, M. L. (2018).
Optimization of the microwave-assisted ethanosolv extraction of
lignocellulosic compounds from the bagasse of Agave angustifolia
Haw using the response methodology. Journal of agricultural and
food chemistry, 66(13), 3533-3540.
Hu, Q., & Luo, Y. (2021). Chitosan-based nanocarriers for encapsu-
lation and delivery of curcumin: A review. International Journal of
Biological Macromolecules, 179, 125–135. https://doi.org/10.1016/j.
ijbiomac.2021.02.216
Iqbal, H. M. N., Kyazze, G., & Keshavarz, T. (2013). Advances
in the valorization of lignocellulosic materials by biotechno-
logy: An overview. BioResources, 8(2), 3157–3176. https://doi.
org/10.15376/biores.8.2.3157-3176
Jiang, T., Liao, W., & Charcosset, C. (2020). Recent advances in en-
capsulation of curcumin in nanoemulsions: A review of en-
capsulation technologies, bioaccessibility and applications. Food
Research International, 132(October 2019), 109035. https://doi.
org/10.1016/j.foodres.2020.109035
255
Cinética de liberación de curcumina en microencapsulados de alginato con agavinas...
256
3.4 ENCAPSULACIÓN DE Saccharomyces boulardii
CON AGAVINAS: UN NUEVO ENFOQUE DEL USO DE
BIOMATERIALES DE Agave angustifolia HAW
RESUMEN
257
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
Introducción
258
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
259
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
Materiales y métodos
Materia prima
260
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
261
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
262
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
Ecuación 1
N= Colonias contadas
D= Factor de dilución
Ecuación 2
Donde:
g sólidos secos = g sólidos en la dispersión + g del botón de m.o.
en la centrifugación
UFC/mL solución = recuento de m.o. en la dispersión
p = densidad de la dispersión
Ecuación 3
Donde:
263
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
Rendimiento de encapsulación
Ecuación 4
Donde:
W = peso en gramos
264
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
Análisis estadístico
Resultados y discusión
265
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
polvo, estas deben mantener una aw por debajo de 0.33 para mantener
las características de fluidez del polvo y evitar su aglomeración. Por
otra parte, para asegurar la estabilidad de los encapsulados durante
el almacenamiento, se ha sugerido que el contenido de humedad se
encuentre en valores de 4% a 5% (Espinosa-Andrews & Urías-Silvas,
2012; Arslan et al., 2015).
En el Cuadro 2 se observa que todos los tratamientos cumplieron
con las especificaciones recomendadas para asegurar la estabilidad
microbiológica y de almacenamiento de los encapsulados. Específi-
camente los tratamientos AF90-5, AF-90-10 y AF-110-10 están en
el intervalo de aw que asegura la estabilidad microbiológica y fisico-
química de los encapsulados durante su almacenamiento.
266
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
267
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
268
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
269
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
270
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
Conclusiones
271
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
Referencias
272
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
273
Encapsulación de Saccharomyces boulardii con agavinas: un nuevo enfoque del uso...
274
L. K. Vigil Cuate, S. V. Ávila Reyes, B. H. Camacho Diaz, R. Campos Mendiola,
A. R. Jiménez Aparicio, P. Osorio Diaz, P. S. Robert Canales y M. L. Arenas Ocampo
275
276
3.5 OBTENCIÓN DE SAPONINAS DE Agave angustifolia
Haw POR EXTRACCIÓN ASISITIDA POR MICROONDAS
RESUMEN
1
Centro de Desarrollo de Productos Bióticos, Instituto Politécnico Nacional,
P.O. Box 24,Yautepec 62730, Morelos, México.
*bcamacho@ipn.mx; mlarenas@ipn.mx
2
Centro de Investigación Biomédica del Sur (IMSS), Argentina No. 1, Col Cen-
tro, Xochitepec C.P. 62790, Morelos, México.
277
Obtención de saponinas de Agave angustifolia haw por extracción asisitida...
Introducción
278
A. Madrazo Rojas, R. Bahena Pérez, E. Jiménez Ferrer, A. López Bonilla,
B. H. Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
279
Obtención de saponinas de Agave angustifolia haw por extracción asisitida...
Materiales y métodos
280
A. Madrazo Rojas, R. Bahena Pérez, E. Jiménez Ferrer, A. López Bonilla,
B. H. Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
Resultados y discución
281
Obtención de saponinas de Agave angustifolia haw por extracción asisitida...
Panax notoginseng. Kwon et al. (2003) indicaron que MAE fue superior
al método convencional en su capacidad para extraer saponinas sin
causar degradación. A partir de un extracto etanólico al 50% de Bu-
pleurum chinens. Hu et al. (2008) refieren que las condiciones óptimas
para MAE fueron 5.8-6 minutos y 360 a 400W para la obtención de
saikosaponinas a y d. Los resultados arrojados por la CCF de fase
reversa con sistema 7:3 y 8:2 se observan en la Figura 1.
282
A. Madrazo Rojas, R. Bahena Pérez, E. Jiménez Ferrer, A. López Bonilla,
B. H. Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
283
Obtención de saponinas de Agave angustifolia haw por extracción asisitida...
284
A. Madrazo Rojas, R. Bahena Pérez, E. Jiménez Ferrer, A. López Bonilla,
B. H. Camacho Díaz y M. L. Arenas Ocampo
Conclusiones
Referencias
285
Obtención de saponinas de Agave angustifolia haw por extracción asisitida...
286
4
Aprovechamiento integral y
sostenible de los agaves y sus
subproductos
4.1 MATERIALES COMPUESTOS DE MATRIZ
POLIMÉRICA CON REFUERZO CELULÓSICO: UNA
ALTERNATIVA DE ALTO VALOR AGREGADO PARA
LOS AGAVES
RESUMEN
1
Unidad de Materiales, Centro de Investigación Científica de Yucatán, A.C. Calle
43 No. 130 x 32 y 34, Chuburná de Hidalgo, C.P. 97205, Mérida, Yucatán, México
*pherrera@cicy.mx
289
Materiales compuestos de matriz polimérica con refuerzo celulósico...
Introducción
290
Pedro Jesús Herrera Franco y Alex Valadez Gonzalez
291
Materiales compuestos de matriz polimérica con refuerzo celulósico...
292
Pedro Jesús Herrera Franco y Alex Valadez Gonzalez
Materiales y métodos
293
Materiales compuestos de matriz polimérica con refuerzo celulósico...
Resultados y discusión
294
Pedro Jesús Herrera Franco y Alex Valadez Gonzalez
295
Materiales compuestos de matriz polimérica con refuerzo celulósico...
296
Pedro Jesús Herrera Franco y Alex Valadez Gonzalez
297
Materiales compuestos de matriz polimérica con refuerzo celulósico...
298
Pedro Jesús Herrera Franco y Alex Valadez Gonzalez
299
Materiales compuestos de matriz polimérica con refuerzo celulósico...
Conclusiones
300
Pedro Jesús Herrera Franco y Alex Valadez Gonzalez
Referencias
Abdelmouleh, M., Boufi, S., Belgacem, M.N. & Dufresne, A., (2007).
Short natural-fibre reinforced polyethylenereinforced andpolye-
thylene naturaland natural rubber composites: Effect of sila-
ne coupling agents and fibres loading. Composites Science and Te-
chnology, (67), 1627–1639. doi:10.1016/j.compscitech.2006.07.003.
Abdelmouleh, M., Boufi, S., Belgacem, M.N., Dufresne, A. & Gandini,
A., (2005). Modification of cellulose fibers with functionali-
zed silanes: Effect of the fiber treatment on the mechanical
performances of cellulose-thermoset composites. Journal of
Applied Polymer Science, 3(98), 974–984. doi:10.1002/app.22133.
Castillo-Lara, J. F., Flores-Johnson, E. A., Valadez-Gonzalez, A.,
Herrera-Franco, P. J., Carrillo, J. G., Gonzalez-Chi, P. I., & Li, Q.
M. (2020). Mechanical Properties of Natural Fiber Reinforced
Foamed Concrete. Materials (Basel, Switzerland), 13(14), 3060. ht-
tps://doi.org/10.3390/ma13143060
Netravali, A.N. & Chabba, S. (2003). Composites get greener. Mate-
rials. Today, 6(64), 22–26. DOI: 10.1016/S1369-7021(03)00427-9
Valadez-González, A., Cervantes-Uc, J.M., Olayo, R. & Herrera-Fran-
co, P.J.,(1999b). Chemical modification of henequén fibers with
an organosilane coupling agent. Composites Part B: Engineering,
30(3), 321–331. doi:10.1016/S1359-8368(98)00055-9.
301
302
4.2 PRUEBAS MORFOLÓGICAS Y MECÁNICAS
DE BIOCOMPOSITOS DE PLA/FIBRAS DE AGAVE
FABRICADOS MEDIANTE MDF
Tania Diaz Vidal1, Valeria Figueroa Velarde1 y Luis Carlos Rosales Rivera1*
RESUMEN
1
Universidad de Guadalajara, Departamento de Ingeniería Química, Blvd. M.
García Barragán 1421, Guadalajara, Jalisco, México 44430.
*carlos.rosales@academicos.udg.mx
303
Pruebas morfológicas y mecánicas de biocompositos de pla/fibras de agave...
Introducción
304
Tania Diaz Vidal, Valeria Figueroa Velarde y Luis Carlos Rosales Rivera
Materiales y métodos
305
Pruebas morfológicas y mecánicas de biocompositos de pla/fibras de agave...
Materiales
Métodos
4
El software de posicionamiento y de slicer vienen incluidos con la impresora
3D. Algunos ejemplos bajo licencia son el Ultimaker Cura y Simplify3D; otros
ejemplos gratuitos son el Repetier-Host, Slic3r y Replicator-G.
5
Las primeras capas son claves para garantizar el éxito, por lo que hay que tener
especial cuidado en los primeros momentos de impresión y garantizar que ésta
sea correcta.
306
Tania Diaz Vidal, Valeria Figueroa Velarde y Luis Carlos Rosales Rivera
-60/30 ° Rectilíneo
Ángulo de
Tipo de llenado
llenado
-45/45°
307
Pruebas morfológicas y mecánicas de biocompositos de pla/fibras de agave...
Morfología
Pruebas mecánicas
Resultados y discusión
308
Tania Diaz Vidal, Valeria Figueroa Velarde y Luis Carlos Rosales Rivera
309
Pruebas morfológicas y mecánicas de biocompositos de pla/fibras de agave...
310
Tania Diaz Vidal, Valeria Figueroa Velarde y Luis Carlos Rosales Rivera
311
Pruebas morfológicas y mecánicas de biocompositos de pla/fibras de agave...
Conclusiones
312
Tania Diaz Vidal, Valeria Figueroa Velarde y Luis Carlos Rosales Rivera
Referencias
Ahn, S. H., Montero, M., Odell, D., Roundy, S., & Wright, P. K.
(2002). Anisotropic material properties of fused deposition mo-
deling ABS. Rapid Prototyping Journal, 8(4), 248–257. https://doi.
org/10.1108/13552540210441166
Blok, L. G., Longana, M. L., Yu, H., & Woods, B. K. S. (2018). An
investigation into 3D printing of fibre reinforced thermoplastic
composites. Additive Manufacturing, 22(8), 176–186. https://doi.
org/10.1016/J.ADDMA.2018.04.039
Bourmaud, A., Beaugrand, J., Shah, D. U., Placet, V., & Baley, C.
(2018). Towards the design of high-performance plant fibre
composites. Progress in Materials Science, 97, 347–408. https://doi.
org/10.1016/J.PMATSCI.2018.05.005
Chung, J. J., Im, H., Kim, S. H., Park, J. W., & Jung, Y. (2020). Toward
Biomimetic Scaffolds for Tissue Engineering: 3D Printing Tech-
niques in Regenerative Medicine. Frontiers in Bioengineering and Biote-
chnology, 8, 1251. https://doi.org/10.3389/FBIOE.2020.586406/
BIBTEX
Cisneros-López, E. O., González-López, M. E., Pérez-Fonseca, A.
A., González-Núñez, R., Rodrigue, D., & Robledo-Ortíz, J. R.
(2016). Effect of fiber content and surface treatment on the
mechanical properties of natural fiber composites produced by
rotomolding. Composite Interfaces 24(1), 35–53. https://doi.org/1
0.1080/09276440.2016.1184556.
Cisneros-López, E. O., Pérez-Fonseca, A. A., González-García, Y.,
Ramírez-Arreola, D. E., González-Núñez, R., Rodrigue, D., &
Robledo-Ortíz, J. R. (2018). Polylactic acid–agave fiber biocom-
posites produced by rotational molding: A comparative study
with compression molding. Advances in Polymer Technology, 37(7),
2528–2540. https://doi.org/10.1002/ADV.21928.
Faruk, O., Bledzki, A. K., Fink, H. P., & Sain, M. (2012). Biocom-
posites reinforced with natural fibers: 2000–2010. Progress in
Polymer Science, 37(11), 1552–1596. https://doi.org/10.1016/J.
PROGPOLYMSCI.2012.04.003.
313
Pruebas morfológicas y mecánicas de biocompositos de pla/fibras de agave...
314
Tania Diaz Vidal, Valeria Figueroa Velarde y Luis Carlos Rosales Rivera
Park, S., Shou, W., Makatura, L., Matusik, W., & Fu, K. (Kelvin).
(2022). 3D printing of polymer composites: Materials, processes,
and applications. Matter, 5(1), 43–76. https://doi.org/10.1016/J.
MATT.2021.10.018.
Pérez-Fonseca, A. A., Robledo-Ortíz, J. R., González-Núñez, R., &
Rodrigue, D. (2016). Effect of thermal annealing on the mecha-
nical and thermal properties of polylactic acid-cellulosic fiber
biocomposites. Journal of Applied Polymer Science, 133(31). https://
doi.org/10.1002/app.43750.
Rasiya, G., Shukla, A., & Saran, K. (2021). Additive Manufacturing-A
Review. Materials Today: Proceedings, 47, 6896–6901. https://doi.
org/10.1016/J.MATPR.2021.05.181.
Tekinalp, H. L., Kunc, V., Velez-Garcia, G. M., Duty, C. E., Love, L.
J., Naskar, A. K., Blue, C. A., & Ozcan, S. (2014). Highly oriented
carbon fiber–polymer composites via additive manufacturing.
Composites Science and Technology, 105, 144–150. https://doi.or-
g/10.1016/J.COMPSCITECH.2014.10.009.
315
316
4.3 PRODUCCIÓN DE ETANOL LIGNOCELULÓSICO
A PARTIR DE BAGAZO DE AGAVE: UN CASO DE
ESTUDIO A NIVEL PILOTO
RESUMEN
1
Unidad de Biotecnología Industrial subsede Zapopan del Centro de Investiga-
ción y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de Jalisco A.C. (CIATEJ).
Camino Arenero 1227, El Bajío, Zapopan, Jalisco, México. 45019.
*lamaya@ciatej.mx
2
Laboratorio de Futuros en Bioenergía, Centro de Investigación y de Estudios
Avanzados del IPN, Unidad Guadalajara, Av. del Bosque 1145, El Bajío, Zapopan,
Jalisco, México. 45019.
317
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
Introducción
318
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
319
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
320
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
Materiales y métodos
321
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
322
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
323
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
Donde:
[Glucosa], [Celobiosa], [Biomasa]: Concentraciones en g L-1
f: Contenido de celulosa en la biomasa en g g-1
La tasa de liberación de glucosa (HS) se obtuvo a través de la
ecuación (2).
Donde:
Hs: Tasa volumétrica de liberación de glucosa en g L-1 h-1
[Glucosa]: Concentración de glucosa en g L-1
[Tiempo]: Tiempo de hidrólisis en h
324
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
Donde:
Qs: Tasa volumétrica de consumo de glucosa en g L-1 h-1.
[Glucosa]: Consumo de glucosa durante la fermentación en g L-1.
Tiempo: Tiempo de fermentación donde la glucosa fue consumida
completamente en h.
La productividad volumétrica de etanol (QP) fue obtenida me-
diante la ecuación (4).
Donde:
Qp: Productividad volumétrica de etanol en g L-1 h-1.
[Etanol]: Concentración de etanol en g L-1.
Tiempo: Tiempo de fermentación donde se determinó la concentra-
ción más alta de etanol en h.
Métodos analíticos
325
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
Resultados y discusión
326
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
327
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
328
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
329
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
330
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
5-HMF ND ND
Etanol (g L-1)
Etanol 18.462 15.142
Compuestos volátiles (mg L-1)
Metanol 68.444 27.552
Isobutanol 26.568 25.175
Alcohol isoamílico 51.998 11.921
Alcohol furfurílico 208.65 101.564
ND: No detectado
Conclusiones
331
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
Referencias
Abraham, A., Mathew, A. K., Park, H., Choi, O., Sindhu, R., Pa-
rameswaran, B., Pandey, A., Park, J. H., & Sang, B. I. (2020).
Pretreatment strategies for enhanced biogas production from
lignocellulosic biomass. Bioresource Technology, 301. https://doi.
org/10.1016/j.biortech.2019.122725
Alemán-Nava, G. S., Gatti, I. A., Parra-Saldivar, R., Dallemand, J. F., Ritt-
mann, B. E., & Iqbal, H. M. N. (2018). Biotechnological revaloriza-
tion of Tequila waste and by-product streams for cleaner production
– A review from bio-refinery perspective. Journal of Cleaner Production,
172, 3713–3720. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2017.07.134
Álvarez-Chávez, J., Villamiel, M., Santos-Zea, L., & Ramírez-Jimé-
nez, A. K. (2021). Agave By-Products: An Overview of Their
Nutraceutical Value, Current Applications, and Processing Me-
thods. Polysaccharides, 2(3), 720–743. https://doi.org/10.3390/
polysaccharides2030044
Arreola-Vargas, J., Ojeda-Castillo, V., Snell-Castro, R., Corona-Gon-
zález, R. I., Alatriste-Mondragón, F., & Méndez-Acosta, H. O.
(2015). Methane production from acid hydrolysates of Agave
tequilana bagasse: Evaluation of hydrolysis conditions and me-
332
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
333
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
334
Jorge García-Béjar, Arturo Sánchez y Lorena Amaya-Delgado
335
Producción de etanol lignocelulósico a partir de bagazo de agave: un caso de estudio...
336
4.4 VALORIZACIÓN DE BAGAZO DE AGAVE MEDIANTE
LA CREACIÓN DE BIORREFINERÍAS
337
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
338
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
339
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
340
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
Materiales compuestos
Propósitos agrícolas
341
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
342
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
343
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
Pretratamientos
344
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
Alto porcentaje de
Requerimiento alto de
recuperación de sólidos
Autohidrólisis Fisicoquímico energía, remueve princi-
y baja formación de
palmente hemicelulosa.
compuestos inhibidores.
Explosión de Reduce la fracción de lig- Costoso, no solubiliza hemi-
fibra con nina, tiempo de retención celulosa de forma significati-
Fisicoquímico
amoníaco corto, no hay formación va, el amoníaco debe ser re-
(AFEX) de productos inhibidores. cuperado para reducir costos.
Bajo tiempo de reten- Proceso corrosivo y peligro-
Hidrólisis ácida Químico ción, remueve hemi- so, requiere equipos especia-
celulosa y lignina. les, formación de inhibidores.
Remueve lignina y parte Baja digestibilidad de
Hidrólisis de la hemicelulosa, reduce maderas suaves, requie-
Químico
alcalina el grado de polimeriza- re grandes cantidades
ción de la celulosa. de agua para lavado.
Degradación de lig-
Tratamiento Requiere altos tiem-
Biológico nina, bajo requeri-
microbiológico pos de reacción.
miento energético.
Biocombustibles
345
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
Líquidos iónicos,
Pérez-Pimienta
organosolv + hidró- Lote Etanol
et al. (2017)
lisis enzimática
Ríos-González
Autohidrólisis Lote Etanol
et al. (2017)
Líquidos iónicos
Pérez Pimienta
apróticos + hidró- Lote Etanol
et al. (2022)
lisis enzimática
Fermentación Muñoz -Páez
Hidrólisis ácida Lote secuencial Hidrógeno
oscura et al. (2020)
Montoya-Rosa-
Hidrólisis enzimática Filtro percolador Hidrógeno
les et al. (2019)
Gabriel-Barajas
Hidrólisis ácida Lote secuencial Hidrógeno
et al. (2022)
Reactor continuo Contreras-Dá-
Hidrólisis enzimática Hidrógeno
de tanque agitado vila et al. (2017)
Digestión Continuo en Calderón-Soto
Hidrólisis enzimática Biogás
anaerobia dos etapas et al. (2022)
Explosión de vapor + Estrada Maya y
Lote Biogás
hidrólisis enzimática Weber (2022)
Líquidos iónicos + Pérez-Pimienta
Lote Biogás
hidrólisis enzimática et al. (2021)
Producción de biohidrógeno
346
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
347
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
348
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
Conclusiones
349
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
Referencias
350
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
351
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
352
J. Pérez-Barragán, O. García-Depraect, R. Maya-Yescas, R. Vallejo-Rodríguez y
E. León-Becerril
353
Valorización de bagazo de agave mediante la creación de biorrefinerías
354
4.5 EVALUACIÓN PRELIMINAR DE LOS RESIDUOS
LÍQUIDOS AGROINDUSTRIALES DE Agave fourcroydes
Lem. COMO PREBIÓTICO
RESUMEN
1
Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de
Jalisco A.C. Subsede Sureste, Parque Científico Tecnológico de Yucatán, Km 5.5
Sierra Papacal-Chuburná Puerto, Mérida, México, 97302. *tgonzalez@ciatej.mx
2
Universidad Anáhuac-Mérida, Escuela de Biotecnología, Km 15.5, Carretera
Mérida-Progreso, Int. Km 2 Carretera a Chablekal, México, 97310.
3
Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de Ja-
lisco A.C. Unidad de Biotecnología Médica y Farmacéutica, Av. Normalistas 800
Colinas de la Normal, Guadalajara, México, 44270.
355
Evaluación preliminar de los residuos líquidos agroindustriales de Agave fourcroydes...
Introducción
356
A. Sánchez-Contreras, Y. Ávila-Lizarraga, M. González-Ávila y T. González-Flores
Materiales y métodos
Material biológico
357
Evaluación preliminar de los residuos líquidos agroindustriales de Agave fourcroydes...
Cuantificación de saponinas
Ensayo de hemólisis
358
A. Sánchez-Contreras, Y. Ávila-Lizarraga, M. González-Ávila y T. González-Flores
Resultados y discusión
359
Evaluación preliminar de los residuos líquidos agroindustriales de Agave fourcroydes...
b* 37.17 ± 0.26
C* 37.53 ± 0.26
h -0.13 ± 0.00
Aw 0.84 ± 0.02
% de humedad 7.5 ± 0.14
% de sólidos 92.5 ± 0.14
Fibra cruda (%) 0.61 ± 0.01
Proteína (%) 1. 02 ± 0.00
Azúcares totales (%) 17.09 ± 0.13
Azúcares reductores (%) 3.61 ±.05
pH 6.4 ± 0.02
Los valores son promedio (n = 3)
Cuantificación de saponinas
Ensayo de hemólisis
360
A. Sánchez-Contreras, Y. Ávila-Lizarraga, M. González-Ávila y T. González-Flores
361
Evaluación preliminar de los residuos líquidos agroindustriales de Agave fourcroydes...
362
A. Sánchez-Contreras, Y. Ávila-Lizarraga, M. González-Ávila y T. González-Flores
Conclusiones
363
Evaluación preliminar de los residuos líquidos agroindustriales de Agave fourcroydes...
Referencias
364
A. Sánchez-Contreras, Y. Ávila-Lizarraga, M. González-Ávila y T. González-Flores
Kim, J. D., Khan, M. I., Shin, J. H., Lee, M. G., Seo, H. J., Shin, T. S.,
& Kim, M. Y. (2015). HPLC fractionation and pharmacological
assessment of green tea seed saponins for antimicrobial, anti-angio-
genic and hemolytic activities. Biotechnology and Bioprocess Engineering,
20(6), 1035–1043. https://doi.org/10.1007/s12257-015-0538-6
Lee, J. H., Jeon, J. K., Kim, S. G., Kim, S. H., Chun, T., & Imm, J.
Y. (2011). Comparative analyses of total phenols, flavonoids,
saponins and antioxidant activity in yellow soy beans and mung
beans. International Journal of Food Science & Technology, 46(12),
2513–2519. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2011.02775.x
López, M. G., Huazano-García, A., García-Pérez, M. C., & Gar-
cía-Vieyra, M. I. (2014). Agave fiber structure complexity and its
impact on health. En N. Benkeblia (ed.), Polysaccharides: Natural
fiber in food and nutrition (pp. 45–74). CRC Press.
Mancilla-Margalli, N. A., & López, M. G. (2006). Water-soluble
carbohydrates and fructan structure patterns from Agave and
Dasylirion species. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54(20),
7832–7839. https://doi.org/10.1021/jf060354v
Mathias-Rettig, K., & Ah-Hen, K. (2014). El color en los alimentos
un criterio de calidad medible. Agro Sur, 42(2), 57–66. https://
doi.org/10.4206/agrosur.2014.v42n2-07
Mex-Álvarez, R. M. J., Maldonado-Velázquez, M. G., Yanez-Nava, D.,
Guillén-Morales, M. M., & Cardos-Burgos, E. G. (2020). Activi-
dad hemolítica de Euphorbiaceae. Revista de Ciencias Farmaceúticas y
Biomedicina. Memorias, Ed. Especial, 1, 54.
Miller, G. L. (1959). Use of dinitrosalicylic acid reagent for determi-
nation of reducing sugar. Analytical Chemistry, 31(3), 426–428.
Navarro del Hierro, J., Cueva, C., Tamargo, A., Núñez-Gómez, E.,
Moreno-Arribas, M. V., Reglero, G., & Martin, D. (2020). In Vi-
tro colonic fermentation of saponin-rich extracts from quinoa,
lentil, and fenugreek. Effect on sapogenins yield and human
gut microbiota. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 68(1),
106–116. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.9b05659
Pathaw, N., Devi, K. S., Sapam, R., Sanasam, J., Monteshori, S., Phu-
railatpam, S., Devi, H. C., Chanu, W. T., Wangkhem, B., & Man-
365
Evaluación preliminar de los residuos líquidos agroindustriales de Agave fourcroydes...
366
4.6 CAPACIDAD ESPUMANTE DE EXTRACTOS DEL
GUISHE DE Agave lechuguilla
RESUMEN
1
Universidad de Guanajuato. Depto. Ing. Agroindustrial. División de C. de la
Salud e Ingenierías. Campus Celaya-Salvatierra, Priv. de Arteaga s/n, centro Sal-
vatierra, Gto., México CP 38900. *lvargas@ugto.mx
367
Capacidad espumante de extractos del guishe de Agave lechuguilla
Introducción
368
Lorena Vargas Rodríguez
369
Capacidad espumante de extractos del guishe de Agave lechuguilla
Materiales y métodos
370
Lorena Vargas Rodríguez
Las saponinas fueron extraídas una vez por maceración del guishe
(G), previamente tamizado (malla 6-8), utilizando agua desionizada
(GA) y alcohol etílico al 50 % (GE), en proporción de 10 g de G por
100 mL de solvente durante 24 h a temperatura ambiente. El conte-
nido fue mezclado para homogeneización con una espátula evitando
espumar. La maceración ocurrió en vasos de precipitados de 500 mL
tapados con plástico autoadherible y en oscuridad, luego se filtró sobre
papel filtro de uso doméstico, obteniéndose GA y GE del día 0 (d0).
371
Capacidad espumante de extractos del guishe de Agave lechuguilla
Resultados y discusión
372
Lorena Vargas Rodríguez
373
Capacidad espumante de extractos del guishe de Agave lechuguilla
374
Lorena Vargas Rodríguez
375
Capacidad espumante de extractos del guishe de Agave lechuguilla
Conclusiones
376
Lorena Vargas Rodríguez
Referencias
377
Capacidad espumante de extractos del guishe de Agave lechuguilla
378
5
Aspectos socioculturales del agave:
normatividad y patrimonio
5.1 PROYECTO LAM: UNA ALTERNATIVA PARA LA
CONSERVACIÓN DE AGAVES REGIONALES DE
OAXACA
RESUMEN
1
Proyecto LAM A.C., Iturbide s/n Santa Catarina Minas, Oaxaca.
*oaxaca@proyeclam.org
381
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
Introducción
382
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
1
En el pasado, la compra de maguey se hacía por pieza, surco, ciento, docena o
camioneta. Actualmente todo el maguey se vende por kilo, criterio introducido
por los tequileros que han estado comprando maguey en Oaxaca desde 2005.
383
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
Objetivo
Materiales y métodos
384
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
Cuadro 1. Relación de especies de agaves que fueron monitoreados durante el año 2021
Periodo de Periodo de Tamaño
Nombre común Periodo de floración
crecimiento de quiote crecimiento de copa final de
y científico quiote
Inicio Término Inicio Término Inicio Término
Blanca (Agave americana) 19/02/21 21/05/21 09/04/21 21/05/21 03/06/21 09/07/21 8.68m
Blanca (Agave americana) 08/03/21 21/05/21 30/04/21 21/05/21 27/05/21 26/06/21 7.35m
Sierruda (Agave
10/02/21 21/05/21 09/04/21 21/05/21 07/06/21 13/07/21 7.72m
americana americana)
Sierruda (Agave
12/02/21 18/03/21 Planta dada de baja por infestación de picudo 4.32m
americana var. americana)
Arroqueño (Agave
22/03/21 21/05/21 23/04/21 21/05/21 23/06/21 23/07/21 5.76m
americana var. oaxacensis)
Sierrudita (Agave americana) 01/02/21 21/05/21 01/04/21 21/05/21 02/06/21 12/07/21 7.76m
Sierrudita (Agave americana) 12/02/21 21/05/21 01/04/21 21/05/21 16/06/21 17/07/21 7.32m
Sierrudita (Agave americana) 11/02/21 21/05/21 01/04/21 21/05/21 03/06/21 08/07/21 7.02m
Cuishe (Agave rhodacantha) 02/03/21 21/05/21 19/04/21 21/05/21 09/06/21 23/07/21 5.20m
Tobala (Agave potatorum) 04/05/21 13/08/21 05/07/21 20/08/21 03/08/21 18/08/21 3.18m
Fuente: Registros obtenidos de la base de datos de plantas madre de PLAM 2021.
385
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
Resultados y discusión
386
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
387
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
388
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
389
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
390
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
391
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
Conclusiones
392
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
393
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
Referencias
394
Matias Domínguez-Laso y Graciela C. Ángeles-Carreño
tion/264495893_Caracterizacion_y_usos_de_las_especies_de_aga-
ve_en_Tamaulipas
Magaña-González, K. C., Vázquez-García, J. A., & Reyna-Bustos, O.
F. (2007). Visitantes florales en Agave valenciana (Agavacea) en Mas-
cota, Jalisco: Observaciones preliminares. En J. Vázquez-García,
M. Cházaro Basáñez, E. Flores-Berrios, G. Hernández-Vera & Y.
Vargas-Rodríguez (eds.). Agaves del Occidente de México. Serie Fronteras
de Biodiversidad 3 (pp. 32-36). Universidad de Guadalajara-Consejo
Regulador del Tequila AC.-Centro de Investigación y Asistencia
en Tecnología y Diseño del Estado de Jalisco A.C.-CONAFOR.
ISBN: 978-970-27-1293-0.
Molina-Freaner, F., & Eguiarte, L. E. (2003). The pollination biology
of two paniculate agaves (Agavaceae) from northwestern Mexico:
contrasting roles of bats as pollinators. American journal of botany,
90(7), 1016–1024. https://doi.org/10.3732/ajb.90.7.1016
Ojeda, I., Santos-Guerra, A., Caujapé-Castells, J., Jaén-Molina, R., Ma-
rrero, A., & Cronk, QCB. (2012). Comparative Micromorphology
of Petals in Macaronesian Lotus (Leguminosae) Reveals a Loss of
Papillose Conical Cells during the Evolution of Bird Pollination.
International Journal of Plant Sciences, 173, 365-374. https://doi.
org/10.1086/664713
Slauson, L. A. (2000). Pollination biology of two chiropterophilous
agaves in Arizona. American Journal of Botany, 87, 825-836. https://
doi.org/10.2307/2656890
Starr, G. D. (2021). Agaves of Oaxaca: Part One. Two recent-
ly described species: Agave megalodonta and Agave quiotepencen-
sis. Cactus and Succulent Journal, 93 (3), 226–237. https://doi.
org/10.2985/015.093.0309
Troiani, H. O., Prina, A. O., Muiño, W. A., Tamame, M. A., & Bein-
ticinco, L. (2017). Botánica, morfología, taxonomía y fitogeografía 1ª ed.
Universidad Nacional de la Pampa. ISBN 978-950-863-321-7 326p.
https://repo.unlpam.edu.ar/handle/unlpam/110
Whitney, H. M., Chittka, L., Bruce, T. J. A., & Glover, B. J. (2009a). Co-
nical epidermal cells allow bees to grip flowers and increase foraging
efficiency. Current Biology, 19, 948-953. DOI 10.1016/j.cub.2009.04.051
395
Proyecto LAM: una alternativa para la conservación de agaves regionales de Oaxaca
Whitney, H. M., Federle, W., & Glover, B. J. (2009b). Grip and slip:
mechanical interactions between insects and the epidermis of
flowers and flower stalks. Communicative & Integrative Biology, 2,
505-508. DOI 10.4161/cib.2.6.9479
Whitney, H. M., Kolle, M., Álvarez-Fernández, R., Steiner, U., & Glo-
ver, B. J. (2009c). Contributions of iridescence to floral patterning.
Communicative & Integrative Biolology, 2, 230-232.
396
5.2 RESILIENCIA SOCIOCULTURAL EN EL ALTO
MEZQUITAL, HIDALGO: EL MAGUEY COMO SÍMBOLO
DE IDENTIDAD Y SUBSISTENCIA
RESUMEN
1
Coordinación de Desarrollo Regional, Centro de Investigación en Alimentación
y Desarrollo, A. C. Carretera Gustavo Enrique Astiazarán Rosas Núm. 46, Her-
mosillo, Sonora, 83304, México.
2
Departamento de Biotecnología y Ciencias Alimentarias. Instituto Tecnológico
de Sonora. Calle 5 de febrero 818 Sur. Col. Centro. Cd. Obregón, Sonora, 85000,
México. * abel.verdugo@itson.edu.mx
3
Biotecnología industrial, Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología
y Diseño del Estado de Jalisco, Camino Arenero No. 1227, El Bajío, CP 45019,
Zapopan, Jalisco, México.
4
Prestador de Servicios Profesionales
397
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
Introducción
398
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
Materiales y métodos
399
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
Resultados y discusión
400
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
401
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
402
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
403
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
404
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
405
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
406
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
407
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
Figura 1. Plantas de maguey infectadas por viruela (a) y escama armada (b)
408
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
409
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
410
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
Conclusiones
411
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
Agradecimientos
Referencias
412
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
413
Resiliencia sociocultural en El Alto Mezquital, Hidalgo: el maguey como símbolo...
414
D. A. Leyva-Trinidad, A. Verdugo-Fuentes, S. E. García-Barrón y J. P. Pérez-Camarillo
415
416
5.3 PERSPECTIVAS Y LIMITACIONES DEL SISTEMA
AGROFORESTAL DEL AGAVE LLAMADO METEPANTLE
RESUMEN
417
Perspectivas y limitaciones del sistema agroforestal del agave llamado metepantle
418
G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
419
Perspectivas y limitaciones del sistema agroforestal del agave llamado metepantle
420
G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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Perspectivas y limitaciones del sistema agroforestal del agave llamado metepantle
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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Perspectivas y limitaciones del sistema agroforestal del agave llamado metepantle
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
Conclusión
Agradecimientos
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Perspectivas y limitaciones del sistema agroforestal del agave llamado metepantle
Referencias
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
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G. Viniegra-González, A. Cruz-Guerrero, E. Favela-Torres, G. Hernández-Cárdenas,
N. A. Martha-Lucero, E. Sánchez-Ortega y F. de León-González
437
gement, 1(1). https://amexen.org/energy/index.php/energy/
article/view/13/31
Zúñiga-Estrada, L., Rosales Robles, E., Yáñez-Morales, M. D. J., &
Jacques-Hernández, C. (2018). Características y productividad de
una planta MAC, Agave tequilana desarrollada con fertigación
en Tamaulipas, México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 9(3),
553-564. https://doi.org/10.29312/remexca.v9i3.1214
438