Práctica de Laboratorio

Determinación del tamaño de parcela mínimo de muestreo para captura de agentes de control natural.
Captura y colecta de organismos asociados a las plagas de importancia económica.
Análisis de Incidencia y Severidad de parcela agrícola.
 Porque analizar nuestra parcela productiva?
Cualquier organismo que se alimenta de otro es conocido como su enemigo
natural. Los insectos que son enemigos naturales de plagas se llaman insectos
benéficos.
El control biológico es un enfoque usado para reducir las poblaciones de
insectos dañinos con enemigos naturales. A organismos introducidos de otras
partes del mundo se les conoce como exóticos comparado con los
organismos nativos o propios del lugar.
Conocer que organismos podemos utilizar para este tipo de control, reduce
costos en químicos, toxicidad al entorno, cultivo y agricultores, por esto y
mucho mas es importante conocer nuestra parcela y los organismos presentes
que pueden constituirse en nuestros aliados.
Determinación del área mínima de muestreo en una comunidad arvense

Es imposible determinar el número de muestras necesarias para un

estudio, sin hacer antes un muestreo preliminar (Martella et al.,
2012).
La metodología estadística utiliza como base para la determinación
del tamaño de muestra, el tamaño de la población, lo cual es
precisamente uno de los parámetros que se quiere determinar.
Nkoa, Owen, & Swanton, (2015) proponen la siguiente ecuación
para determinar el número de cuadrantes necesarios para obtener
una buena estimación del tamaño de la población de una especie
de maleza.
Donde:
n = Número necesario de cuadrantes (tamaño de muestra)
Za = Nivel de significancia de a
Vs = Varianza del muestreo, es decir: error del muestreo =
varianza entre cuadrantes
r = Número de repeticiones
D = Margen de error expresado como una fracción de la
media Ӯ = Media del carácter de interés
Vp = Varianza entre los bloques de un mismo tratamiento.
Una metodología usada desde hace tiempo, es la llamada
determinación de la gráfica especies área, que relaciona la
riqueza de especies en función del área muestreada. Se
determina comúnmente mediante la técnica de puntos
anidados, la cual consiste en trazar el área a muestrear como
polígonos (rectángulos iguales). En ésta, se contabiliza el
número total de especies de interés presentes; posteriormente
esta área se va dividiendo tantas veces como sea necesario,
hasta que la especies de interés no es observada tomando
como área mínima el cuadro inmediato anterior en donde se
encontró.
Objetivo
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de:
Aplicar la metodología necesaria para obtener el área mínima
muestral para determinar la población de interés en un terreno
específico.

Materiales
Libreta de campo, lápiz, cinta métrica.

Metodología
Se recorre la parcela, al identificar la especie de interés, se
toma esa área y se divide la parcela en dos, tomando la mitad a
la q pertenece el punto de observación del organismo como la
mitad a seguir caminando y dividiendo la parcela.
La mitad identificada se vuelve a dividir y se analiza si en ese
tamaño de área aun es posible identificar el organismo de
interés.
Se identifican los organismos observados y colectados.
Los datos obtenidos se consignan en una tabla
Colecta de organismos de interés en Agroecosistemas
• COLECTA DIRECTA Es aquella en la que el colector busca de manera activa a
los organismos en su ambiente, en los sitios donde éstos se distribuyen. Esta
estrategia es utilizada ampliamente por la mayoría de los colectores, quienes
se apoyan de herramientas e instrumentos que varían según el sustrato o
sitio de búsqueda. Implica poseer cierta información biológica sobre los
grupos que se desea colectar, principalmente su distribución geográfica,
ocurrencia estacional y hábitos alimenticios. En la naturaleza, las plantas,
cadáveres, hojarasca, suelo, musgo, hongos, nidos de vertebrados e
invertebrados, etc., son sitios específicos donde pueden existir especies de
insectos con diferentes grados de asociación a ellos.
Las plantas a su vez pueden estar habitadas, y ser consumidas, en
cada una de sus partes por organismos que se especializan en raíz,
tallo, hojas, flores, frutos y semillas. Además, los diferentes
recursos en la naturaleza presentan una sucesión en la fauna de
insectos que los consumen. Todos estos elementos deben ser
tomados en cuenta cuando se colecta de manera directa, junto con
el objetivo del estudio. Para comentar la colecta directa mediante
el uso de herramientas, se hará mención a los principales sustratos
donde se pueden colectar insectos. Sin embargo, el método más
simple es tomar a los insectos con los dedos y es el más común en
muchos grupos que no son peligrosos para el ser humano (Steyskal
et al., 1986).
• Hojarasca y suelo:
se puede colectar de manera directa en hojarasca y suelo utilizando un cernidor, el
cual permite retener las partículas grandes y deja pasar partículas e insectos
pequeños a la parte baja, donde pueden ser vistos y colectados con mayor facilidad,
mientras que los organismos medianos y grandes quedan por encima de éste y
expuestos.
En esta técnica se usan comúnmente palas de jardinero, para depositar el sustrato
en el cernidor, también se utilizan aspiradores, para colectar los ejemplares
pequeños sin dañarlos. Es necesario colocar una muestra tan grande como sea
posible encima del cernidor y proceder al cernido por varios minutos; se
recomienda repetir la acción varias veces para obtener una mejor representación
de ejemplares, ya que algunos grupos, como colémbolos y hormigas, son
numerosos en este sitio, pero otros son muy escasos. También se pueden buscar
ejemplares solo moviendo la hojarasca y el suelo con alguna pala, pero la
observación y captura de los organismos pequeños resulta fortuita.
• Sobre plantas: la colecta directa en plantas es apoyada
frecuentemente por una red de golpeo, en la cual caen
insectos que están sujetos a las plantas, ya que muchos de
ellos tienen la conducta de dejarse caer cuando se
encuentran en peligro. Se procede a golpear la vegetación
arbustiva en varias plantas (o las plantas bajo estudio) por
periodos cortos de tiempo y se revisa la red, los insectos
pequeños y de cuerpo blando pueden ser colectados con
el aspirador (succionando) y luego depositarlos (soplando)
en un frasco colector.
También se usa cualquier superficie análoga a la red de
golpeo, que sirva para retener y hacer evidente a los
organismos que, al mover las plantas, caigan en esa
superficie, tales como sábanas o paraguas invertidos.
Cuando se usa un tipo de “paraguas”, se apoya el golpeo
de la vegetación con un palo o tubo de metal, dando
mayor precisión en la planta y sitio específico del
muestreo. Si es necesario el muestreo de plantas altas, se
pueden tender mantas blancas (para hacer evidentes los
organismos) en su base y proceder a mover lo más posible
la planta.
http://sea-entomologia.org/PDF/GeneraInsectorum/GE-
0056.pdf
Objetivo
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de:
• Aplicar la metodología necesaria para capturar organismos de interés en un terreno específico.
Materiales
• Libreta de campo, lápiz, gps, cámara fotográfica, cámara letal, pala, bolsa plástica de 1 lb. Pantalla de polietileno amarilla,
aceite mineral, soportes y grapas o rafia.
• Metodología
• Se recorre la parcela, al identificar la especie de interés, se toman los organismos auxiliándose de manos o pinzas, se
fotografía y se colectan en cámara letal, se hará observación del organismo para considerar similitudes con el organismo
buscado. Se puede hacer uso de una manga o red entomológica.
• Se identificará un punto dentro de la parcela y se tomara con ayuda de la pala y manos una libra del suelo superficial de la
zona, que arrastre M.O. y material mineral. Se colectara en una bolsa plástica y se trasladara a una zona para depositarla en
un recipiente plástico limpio, se colocara por encima una capa de arroz cocido por 20 minutos y enfriado además de drenado,
se cubrirá totalmente de la luz y se regara periódicamente para mantener la humedad, se realizaran monitoreos diarios del
crecimiento de organismos y caracterizar los de interés.
• Se colocará en un punto representativo de la parcela una trampa de color amarillo, impregnada de aceite mineral levemente
por encima de la altura del cultivo, diariamente se colectaran los organismos de interés y se trasladaran a cámaras de
incubación.
• Se identifican los organismos observados y colectados. (auxiliarse con las apps mostradas)
• Los datos obtenidos se consignan en una tabla.
 Incidencia y severidad
La cuantificación de las enfermedades es de importancia para la
elaboración de estrategias de manejo de las mismas. Los estudios
para conocer la intensidad y prevalencia de una enfermedad son
el primer paso para comprender la relación entre una
enfermedad y las pérdidas causadas por la misma. Solamente
midiendo la enfermedad se puede demostrar la magnitud de la
pérdida. En tal sentido la Patometría es una ciencia dentro de la
Fitopatología que busca estimar en forma cuantitativa o
cualitativa una enfermedad a campo o en condiciones
controladas (Ivancovich, et al., 1998).
INCIDENCIA: Es el porcentaje o proporción de individuos enfermos en
relación al total. Los individuos pueden ser plantas, hojas, flores, folíolos,
frutos, espigas, etc. Se evalúa en cada individuo, la presencia o ausencia de
enfermedad. No se determinan niveles de enfermedad. El uso de este
parámetro en el cultivo es particularmente útil para estudiar la velocidad y
patrón de avance de las enfermedades. Es un parámetro objetivo, de cálculo
sencillo, y no se necesita un entrenamiento especial de parte del evaluador
para su empleo (Ivancovich, et al., 1998).

%I : (Numero de individuos afectados o

sintomáticos/Población total de
individuos de la población)*100
SEVERIDAD: Es el porcentaje de la superficie del órgano enfermo, ya sea de
hojas, tallos, raíces o frutos afectado por la enfermedad y varía entre 0 y 100. El
ejemplo típico de esta forma de estimar la enfermedad es el que se utiliza para
evaluar manchas foliares. La severidad es un parámetro que refleja con precisión
la relación de la enfermedad con el daño que le provoca al cultivo. Su evaluación
es más compleja que la determinación de la incidencia, porque pude ser
subjetiva y por lo tanto requiere de un entrenamiento previo por parte del
evaluador (Ivancovich, et al., 1998).

%S : (Porcentaje o área de tejido

dañado/ porcentaje total o área total
del individuo enfermo)*100
 Objetivo
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de:
• Calcular la incidencia y severidad causada por una plaga de interés para establecer los parámetros de control
de la misma.
Materiales
• Libreta de campo, lápiz, gps, cámara fotográfica, calculadora.
• Metodología
• Se recorre la parcela, y se establece la parcela mínima de muestreo, se contabilizan las plantas q presenten
sintomatología o daño asociado a la plaga, se fotografía y se calcula el porcentaje de incidencia en función de
la población total de la misma parcela.
• Se identificará dentro de la parcela a las plantas con daño o sintomatología y se medirá el porcentaje de tejido
dañado en área y se calculara en función del área total del individuo su porcentaje de severidad.
• Los datos obtenidos se consignan en una tabla.

https://inta.gob.ar/sites/default/files/inta_pergamino_propuestas_de_escalas_para_la_evaluacion_a_campo_y_en_laborator
io_del_tizon_foliar_y_la_mancha_purpura_de_la_semilla_en_soja.pdf
En equipo la ciencia es mas divertida, cualquier
duda la resolveremos sin problema.