Practica 5 Molecular
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Practica 5 Molecular
I. INTRODUCCIÓN
La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) fue desarrollada por Kary Mullis en los
años ochenta.
Debemos esta técnica a Kary Mullis, quien, como él mismo relata en su autobiografía,
tuvo la genial idea cuando conducía de regreso a casa con un amigo en abril de 1983,
época en que buscaba una modificación del procedimiento de secuenciación de
Sanger-Coulson («didesoxi» o enzimático). Mullis dio a conocer la PCR en una reunión
científica en 1984, y en 1993 recibió el Premio Nobel de Química por este
descubrimiento.
Una vez realizada la PCR debemos confirmar la amplificación. El método más habitual
es la electroforesis en la que comprobamos si el tamaño del producto es adecuado.
Esto no es suficiente si queremos por primera vez establecer una PCR como prueba
clínica. Hay que confirmar la especificidad del producto mediante enzimas de
restricción (al menos 2), PCR “nested”, secuenciación o hibridación.
II. OBJETIVOS
Guantes esteriles
Puntas esterilles
Tubos de PCR estériles
Gradillas para tubos de PCR.
Termociclador
Micro pipetas
Cámara de bioseguridad
Congeladores
H2O destilada
Buffer (tampón)
dNTPs
Cebadores (Primers, IS 3/4)
MgCl2 (ion divalente)
Taq polimerasa
ADN molde (muestra de Mycobacterium tuberculosis).
→ METODO
Estas tres fases tienen lugar en el mismo tubo y constituyen un ciclo completo de
PCR, que se realiza en menos de dos minutos. Teóricamente, el ciclo de PCR se
puede repetir sin límite, pero la polimerasa, los nucleótidos y los cebadores suelen
renovarse al cabo de unos 30 ciclos. Estos 30 ciclos, que duran menos de tres horas,
bastan para producir más de mil millones de copias de ADN.
En cada ciclo de PCR se duplica todo el ADN presente en la reacción, de manera que
en unas pocas horas se obtienen millones de copias de un solo fragmento.
V. PROCEDIMIENTO
1. Rotular cada uno de los tubos de Eppendorf (4 de 0.6 ml para los ADN moldes
y 1 de 2 ml para mix) con sus respectivos códigos, según las muestras
obtenidas de ADN de Mycobacterium tuberculosis.
2. Preparar el mix:
2.1. Se toma una micropipeta con punta y se colocan 126 µL de H2O destilada
en el tubo de Eppendorf de 2 mL.
2.2. Luego colocar 50 µL de Buffer en el mismo tubo de Eppendorf, lo mismo
con los siguientes reactivos y sus respectivas cantidades:
MgCl2 18 µL
dNTP’s 20 µL
Cebador (IS 3/4) 10 µL
Taq polimerasa 1 µL
VII. CONCLUSIONES
VIII. CUESTIONARIO
1. ¿Qué sucede con el exceso o déficit de los reactantes, sobre todo MgCl2?
Se utiliza esta denominación para aceites obtenidos por refinación del petróleo
y cuyo uso es el de lubricantes. Se usan ampliamente en la industria
metalmecánica y automotriz. Estos aceites se destacan por su viscosidad, su
capacidad de lubricación frente a la temperatura y su capacidad de disipar el
calor, como es el caso de los aceites.
IX. BIBLIOGRAFÍA
http://www.biotools.eu/esp/pdf/Boletines%20de%20Producto/Enzimas/Enzimas
%20Tiempo%20Final/Hotsplit%20DNA%20Polimerasa%201U.esp.ed04.mar10.
pdf
http://biologiamolecularinteractiva.files.wordpress.com/2013/01/prc3a1ctica-no-
6-pcr.pdf
http://www.bioted.es/bioted%20protocolos/PCR%20gen%2018S%20rRNA.pdf