Validacion Tinidazol

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE NICARAGUA, MANAGUA
RECINTO UNIVERSITARIO RUBÉN DARÍO

FACULTAD DE CIENCIAS E INGENIERÍAS
DEPARTAMENTO DE QUÍMICA
MONOGRAFÍA PARA OPTAR AL TÍTULO DE

LICENCIATURA EN QUÍMICA FARMACÉUTICA
TEMA: VALIDACIÓN DEL MÉTODO ESPECTROFOTOMÉTRICO UV-

VISIBLE PARA LA CUANTIFICACIÓN Y DISOLUCIÓN DE TINIDAZOL
TABLETA DE 500 MG, EN EL LABORATORIO NACIONAL DE
CONTROL DE CALIDAD DE MEDICAMENTOS, ABRIL-NOVIEMBRE
2015.
AUTORES
Br. Yeltsin Ramón Ruiz Blandón
Br. Moisés David Paizano Hernández
TUTORA
PhD. Carla Martínez Algaba
Managua, febrero 2016

ÍNDICE DE CONTENIDO
DEDICATORIA
AGRADECIMIENTOS
OPINIÓN DEL TUTOR
DECLARACIÓN DE AUTENTICUDAD
RESUMEN
CAPÍTULO I ASPECTOS GENERALES

1.1 INTRODUCCIÓN .................................................................................................................................. 1
1.2 OBJETIVOS .......................................................................................................................................... 2
1.2.1 OBJETIVO GENERAL ..................................................................................................................... 2
1.2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS .............................................................................................................. 2
1.3 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ..................................................................................................... 3
1.4 JUSTIFICACIÓN.................................................................................................................................... 4
1.5 ANTECEDENTES .................................................................................................................................. 5
1.5.1 INTERNACIONALES ...................................................................................................................... 5
1.5.2 NACIONALES ................................................................................................................................ 6
CAPÍTULO II MARCO TEÓRICO
2.1 GENERALIDADES DE VALIDACIÓN ...................................................................................................... 7
2.1.1 DEFINICIÓN DE VALIDACIÓN ....................................................................................................... 7
2.1.2 RAZONES QUE JUSTIFICAN LA VALIDACIÓN DE MÉTODOS ANALÍTICOS .................................... 7
2.1.3 CARACTERÍSTICAS ANALÍTICAS PARA VALIDACIÓN DE MÉTODOS.............................................. 7
2.1.3.1 Especificidad ............................................................................................................................. 8
2.1.3.1.1 Ámbito de aplicación, especificidad ...................................................................................... 8
2.1.3.2 Linealidad e intervalo ............................................................................................................... 8
2.1.3.2.1 Ámbito de aplicación, linealidad ........................................................................................... 9
2.1.3.2.2 Análisis de varianza en UV-Visible......................................................................................... 9
2.1.3.3 Precisión ................................................................................................................................... 9
2.1.3.3.1.1 Determinación de repetibilidad ....................................................................................... 10
2.1.3.3.1.2 Criterios de aceptación de repetibilidad .......................................................................... 10
2.1.3.3.2 Precisión intermedia ........................................................................................................... 10
2.1.3.3.2.1 Determinación de precisión intermedia .......................................................................... 10
2.1.3.3.2.2 Criterios de aceptación de precisión intermedia ............................................................. 10
2.1.3.4 Exactitud................................................................................................................................. 10
2.1.3.4.1 Determinación de exactitud ................................................................................................ 11
2.1.3.4.2 Procedimiento de la determinación de exactitud ............................................................... 11
2.1.3.4.3 Comparación de los resultados obtenidos de un estándar o material de referencia
certificado .......................................................................................................................................... 12
2.1.3.4.4 Criterio de aceptación de exactitud .................................................................................... 12
2.1.3.5 Límite de detección (LOD) ...................................................................................................... 12
2.1.3.6 Límite de cuantificación (LOQ) ............................................................................................... 13
2.1.3.7. Robustez ................................................................................................................................ 13
2.1.3.7.1. Ámbito de aplicación, robustez.......................................................................................... 13
2.2 DISOLUCIÓN ..................................................................................................................................... 14
2.2.1 FUNDAMENTO .......................................................................................................................... 14
2.2.2 ASPECTOS TEÓRICOS DE LA PRUEBA DE DISOLUCIÓN .............................................................. 14
2.2.2.1 Aplicación de la prueba de disolución.................................................................................... 14
2.2.2.2 Aparato 2 (Aparato con Paleta).............................................................................................. 14
2.3 CLASES DE ENSAYOS ANALÍTICOS .................................................................................................... 16
2.3.1. DATOS REQUERIDOS PARA LA VALIDACIÓN ............................................................................ 16
2.4 FUNDAMENTO DE LA ESPECTROFOTOMETRÍA (UV-VISIBLE) ........................................................... 17
2.4.1 DEFINICIÓN DE ESPECTROFOTOMETRÍA (UV-VISIBLE).............................................................. 17
2.4.2 ESPECTROFOTÓMETRO ............................................................................................................. 18
2.4.3 COMPONENTES DEL ESPECTROFOTÓMETRO ........................................................................... 18
2.4.3.1 Fuente de luz .......................................................................................................................... 18
2.4.3.2 Rendija de entrada ................................................................................................................. 18
2.4.3.3 Monocromadores................................................................................................................... 18
2.4.3.4 Rendija de salida .................................................................................................................... 19
2.4.3.5 Cubeta .................................................................................................................................... 19
2.4.3.6 Detector ................................................................................................................................. 19
2.4.3.7 Medidor .................................................................................................................................. 20
2.5 GENERALIDADES FARMACOLÓGICAS DE LA MOLÉCULA TINIDAZOL ............................................... 21
2.5.1 PROPIEDADES FÍSICO QUÍMICAS DEL TINIDAZOL (Moffat, 2005) ............................................. 21
2.5.2 MECANISMO DE ACCIÓN........................................................................................................... 22
2.5.3 FARMACOCINÉTICA ................................................................................................................... 22
2.5.4 INDICACIONES TERAPÉUTICAS .................................................................................................. 23
2.5.5 REACCIONES SECUNDARIAS Y ADVERSAS ................................................................................. 23
2.5.6 INTERACCIONES MEDICAMENTOSAS Y DE OTRO GÉNERO ....................................................... 23
CAPÍTULO III HIPÓTESIS
3.1 HIPÓTESIS ......................................................................................................................................... 24
CAPÍTULO IV DISEÑO METODOLÓGICO
4.1 DESCRIPCIÓN DEL ÁMBITO DE ESTUDIO .......................................................................................... 25
4.2 TIPO DE ESTUDIO.............................................................................................................................. 25
4.2.1 TIPO DE DISEÑO ........................................................................................................................ 25
4.3 POBLACIÓN Y MUESTRA ................................................................................................................... 25
4.3.1 POBLACIÓN DE ESTUDIO ........................................................................................................... 25
4.3.2 MUESTRA................................................................................................................................... 25
4.3.2.1 Criterio de inclusión ............................................................................................................... 25
4.3.2.2 Criterio de exclusión............................................................................................................... 25
4.4 VARIABLES Y OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES........................................................................ 26
4.4.1 VARIABLE INDEPENDIENTE........................................................................................................ 26
4.4.2 VARIABLES DEPENDIENTES ....................................................................................................... 26
4.5 MATERIAL Y MÉTODO ...................................................................................................................... 29
4.5.1 MATERIALES PARA RECOLECTAR LA INFORMACIÓN ................................................................ 29
4.5.2 MATERIALES PARA PROCESAR LA INFORMACIÓN .................................................................... 29
4.5.2.1 Tipos de fuentes de información primaria ............................................................................. 29
4.6. DISEÑO EXPERIMENTAL (METODOLOGÍA ANALÍTICA GENERAL) .................................................... 30
4.6.1 MÉTODO ANALÍTICO POR ESPECTROFOTOMETRÍA UV-VISIBLE ............................................... 30
4.6.1.1 Condiciones del espectrofotómetro ...................................................................................... 30
4.6.1.2 Condiciones del ensayo de disolución (disolutor) .................................................................. 30
4.6.2. PROGRAMACIÓN DEL EQUIPO DE DISOLUCIÓN ...................................................................... 30
4.7 PREPARACIÓN DE LAS SOLUCIONES DE TRABAJO ............................................................................ 31
4.7.1 PREPARACIÓN DE SOLUCIONES REACTIVAS.............................................................................. 31
4.7.1.1 Ácido clorhídrico (HCL 0.1 N) ................................................................................................. 31
4.7.1.2 Preparación del estándar de tinidazol para la curva de calibrado ......................................... 31
4.7.1.3 Preparación de las muestras de tinidazol tabletas de 500 mg .............................................. 33
4.7.1.3.1 Preparación de solución madre de tinidazol tabletas de 500 mg ....................................... 33
4.8 PREPARACIÓN DEL MEDIO DE DISOLUCIÓN Y MUESTRAS PARA EL TEST DE DISOLUCIÓN ............. 34
4.8.1 ÁCIDO CLORHÍDRICO (HCl 0.1 N)............................................................................................... 34
4.8.2 Preparación de la solución muestra tinidazol para el ensayo de disolución ............................ 34
4.9 VALIDACIÓN DEL MÉTODO DE CUANTIFICACIÓN DEL PRINCIPIO ACTIVO ...................................... 35
4.9.1 PARÁMETROS DE VALIDACIÓN DEL SISTEMA PARA LA CUANTIFICACIÓN DEL PRINCIPIO
ACTIVO TINIDAZOL ............................................................................................................................. 35
4.9.1.1 Linealidad del sistema ............................................................................................................ 35
4.9.1.1.1 Criterio de aceptación de linealidad del sistema ................................................................ 35
4.9.1.2 Precisión del sistema .............................................................................................................. 36
4.9.1.2.1 Repetibilidad del sistema .................................................................................................... 36
4.9.1.2.1.1 Criterio de aceptación ...................................................................................................... 36
4.9.1.3 Limite de detección y límite de cuantificación ....................................................................... 36
4.9.1.4 Exactitud................................................................................................................................. 36
4.9.1.4.1 Criterio de aceptación de exactitud .................................................................................... 36
4.10 PARÁMETROS DE VALIDACIÓN DEL MÉTODO PARA LA CUANTIFICACIÓN DEL ACTIVO TINIDAZOL
500 MG ................................................................................................................................................... 37
4.10.1 LINEALIDAD DEL MÉTODO ...................................................................................................... 37
4.10.2 PRECISIÓN DEL MÉTODO ........................................................................................................ 37
4.10.2.1 Repetibilidad del método ..................................................................................................... 37
4.10.2.1.1 Criterios de aceptación de repetibilidad ........................................................................... 38
4.10.2.2 Precisión intermedia ............................................................................................................ 38
4.10.2.2.1 Criterios de aceptación de la precisión intermedia .......................................................... 38
4.10.3 ROBUSTEZ................................................................................................................................ 38
4.10.3.1 Criterios de aceptación ........................................................................................................ 39
4.11 TEST DE DISOLUCIÓN ..................................................................................................................... 39
4.11.1 CRITERIO DE ACEPTACIÓN ...................................................................................................... 39
4.12 REACTIVOS, EQUIPO Y MATERIALES .............................................................................................. 39
CAPÍTULO V ORGANIZACIÓN Y ANÁLISIS DE LOS RESULTADOS
5.1 TÉCNICA ESPECTROFOTOMÉTRICA UV-VISIBLE CON DETECTOR DE ARREGLO DE DIODO (DAD) Y
CELDA DE CUARZO DE 1 CM ................................................................................................................... 42
5.1.1 PARÁMETROS DEL SISTEMA ...................................................................................................... 42
5.1.1.1 Adecuación del sistema.......................................................................................................... 42
5.1.1.2 Linealidad del sistema ............................................................................................................ 43
5.1.1.2.2 Ecuación de la recta de la linealidad en espectrofotometría UV-visible ............................ 45
5.1.1.2.3 Test de linealidad: test de student para la pendiente (b) en UV-visible ............................. 49
5.1.1.2.4 Test de proporcionalidad: test de Student para el intercepto (a) en UV-visible ................ 51
5.1.1.2.5 Test G de Cochran varianza de los factores de respuesta .................................................. 53
5.1.1.2.5.1 Prueba de homogeneidad de las varianzas...................................................................... 54
5.1.1.2.6 Coeficientes de variación de los factores de respuestas .................................................... 55
5.1.1.2.7 Análisis de varianza ............................................................................................................. 56
5.1.1.3 Precisión del sistema en espectrofotometría UV-VIS ............................................................ 60
5.1.1.3.1 Repetibilidad del sistema en espectrofotometría UV-VIS................................................... 60
5.1.1.3.1.1.1 Evaluación estadística para la repetibilidad del sistema en espectrofotometría UV-
visible.................................................................................................................................................. 61
5.1.1.3.2 Límite de detección (LOD) ................................................................................................... 62
5.1.1.3.3 Límite de cuantificación (LOQ) ............................................................................................ 62
5.1.1.4 Exactitud del sistema por espectrofotometría UV-visible ..................................................... 63
5.1.1.4.1.1 Evaluación estadística de exactitud del sistema en UV-Vis ............................................. 64
5.1.1.5 Exactitud del método de tinidazol en Espectrofotometría .................................................... 65
5.1.2 PARÁMETROS DEL MÉTODO ..................................................................................................... 68
5.1.2.1 Linealidad del Método Tinidazol tableta 500 mg ................................................................... 68
5.1.2.2 Ecuación de la recta de la linealidad del método espectrofotométrico UV-visible ............... 71
5.1.2.3 Test de linealidad: test de student para la pendiente (b) en UV-Vis ..................................... 74
5.1.2.4 Test de proporcionalidad: test de student para el intercepto (a) en UV-VIS......................... 75
5.1.2.5 Test G de Cochran varianza de los factores de respuesta ..................................................... 77
5.1.2.6. Coeficiente de variación de los factores de respuesta ......................................................... 79
5.1.2.8 Precisión del método en espectrofotometría UV-visible ....................................................... 83
5.1.2.8.1. Repetibilidad del Método en espectrofotometría UV-visible ............................................ 83
5.1.2.8.1.1.1 Evaluación estadística de la repetibilidad del método espectrofotométrico UV-vis .... 84
5.1.2.8.2 Precisión intermedia del método en espectrofotometría UV-visible ................................. 85
5.1.2.9 Robustez ................................................................................................................................. 89
5.1.2.10 Test de disolución................................................................................................................. 91
CAPÍTULO VI CONCLUSIONES
6.1 CONCLUSIONES ................................................................................................................................ 93
CAPÍTULO VII RECOMENDACIONES
7.1 RECOMENDACIONES ........................................................................................................................ 94
BIBLIOGRAFÍA ......................................................................................................................................... 95
GLOSARIO ............................................................................................................................................... 97
ABREVIATURAS ..................................................................................................................................... 101
ANEXOS
Validación del Método Espectrofotométrico para la Cuantificación Tinidazol tabletas de 500 mg
DEDICATORIA
A DIOS Por darme la vida, por reconfórtame en los momentos de tribulación, por
estar presente durante los años de mi formación profesional y permitirme llegar hasta
acá.
A mi madre Edda Hernández por todo su amor, por su entero sacrificio que hoy
se ve premiado en mí, por ser el motor que me inspiraba cada día en seguir adelante
y ser mejor cada día, gracias mamá.
A mi abuelita Teresa Cruz (q.e.p.d) aunque no estás conmigo, sé que estarías

orgullosa de mi al ver este sueño hecho realidad; gracias por tus consejos, por instarme
a superarme y por ser mi segunda mamá.
A mi hermanita Adriana Garay por estar conmigo cuando me sentí triste y

desanimado, por decirme “todo estará bien”, cuando no sabía qué hacer, y sobre todo
por estar en mis alegrías, enojos y tristezas.
A todas esas personas que de manera desinteresada me apoyaron durante toda

mi carrera universitaria en especial a Francisco, Ignacio, Bertha, Petrona, Noé que
hicieron que este reto fuera aún más fácil de superar, gracias.
Moisés David Paizano Hernández
Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

DEDICATORIA
A DIOS por darme vida, por ser mi ayuda en todo momento, por cuidarme de todo
peligro y darme las fuerzas para salir adelante y superarme; y si he llegado hasta esta
etapa de mi formación ha sido nada más que por su gran voluntad.
A mi abuela Ángela Bejarano quien siempre ha estado a mi lado cuidándome,

ayudándome, preocupándose por mí y lo ha hecho incondicionalmente nunca dejare
de estar agradecido por todo lo que ha hecho por mí.
A mi madre Marta Blandón que me ha dado la herencia que no se puede perder,

que no se puede acabar y no me pueden robar, pues con mucho sacrificio me ha
apoyado para que yo pudiera culminar mis estudios universitarios.
A mi tía Milagro Blandón, aunque la distancia nos ha separado por estos años,
siempre como a tu propio hijo me has cuidado, ayudado y apoyado y sé que estas
orgullosa de mi.
A todas las personas que de manera directa o indirecta me han apoyado porque
todo lo que he logrado ha sido resultado de su ayuda en especial a mi mamá Mirna
Cabrera, La Familia Pavón Centeno, Los Tercero Abaunza, Manuel, Claudia, Jessling,
Moisés, a todos ustedes gracias.
Yeltsin Ramón Ruiz Blandón.

AGRADECIMIENTOS
A Dios por darnos la vida, por ser nuestra fuerza, nuestro guía, y sobre todo por
acompañarnos durante estos años de formación profesional. A nuestros padres por
ser nuestros principales apoyos, por sus enteros esfuerzos para que nuestros sueños
de ser profesionales sean hoy realidad.
A nuestra tutora PhD. Carla Martínez Algaba por haber asumido con tanto
empeño y dedicación la conducción de este trabajo y por su valiosa orientación para
culminar este estudio. Nuestro respeto y admiración.
Al Laboratorio Nacional de Control de Calidad de Medicamentos (MINSA) en

especial a la Lic. Nubia Blanco, Directora General, al Lic. Francisco Álvarez, Jefe del
área Físico-Química, a los analistas, Lic. Julio Mercado, Lic. Rogelio Machado por
abrirnos las puertas para que nosotros pudiéramos realizar nuestro estudio, por brindar
sus conocimientos, su apoyo y colaboración en la realización de esta monografía. A
ustedes gracias.
Finalmente a todas aquellas personas que durante nuestros largos cinco años de
formación nos brindaron su apoyo de manera desinteresada para que hoy lográramos
culminar una de nuestras mayores metas que hemos tenido en la vida.
De todo corazón gracias.

OPINIÓN DEL TUTOR

El trabajo monográfico presentado por los bachilleres Yeltsin Ramón Ruiz Blandón y
Moisés David Paizano Hernández, cuyo tema es: “VALIDACIÓN DEL MÉTODO
ESPECTROFOTOMÉTRICO ULTRAVIOLETA VISIBLE PARA LA
CUANTIFICACIÓN Y DISOLUCIÓN DE TINIDAZOL TABLETA DE 500 MG, EN EL
LABORATORIO NACIONAL DE CONTROL DE CALIDAD DE MEDICAMENTOS”,
presenta los siguientes aportes en el campo científico técnico:
 Es un tema cuya implementación se está iniciando en la industria farmacéutica, en

el contexto del Reglamento Técnico Centroamericano (RTCA 11.03.39:06).
 Su ejecución se ha llevado a cabo insertándose dentro del flujo real de procesos del
laboratorio nacional de control de calidad de medicamentos, lo cual permitió la
evaluación de la variabilidad del sistema en tiempo real.
 Fue utilizado un espectrofotómetro ultravioleta visible Agilent 8453 series con un
detector de arreglo de diodo lo cual permitió garantizar la cuantificación del analito.
 Se utilizaron herramientas estadísticas para el procesamiento de los datos,
siguiendo el flujograma de la marcha analítica.
 Los resultados responden a la hipótesis planteada inicialmente, obteniéndose un
método debidamente validado que se está utilizando actualmente para la realización
de control de calidad de los medicamentos en el laboratorio nacional de control de
medicamentos del Ministerio de Salud.
Atentamente,
PhD. Carla Martínez Algaba

Doctora en Farmacia
Tutora

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONÓMA DE NICARAGUA

UNAN-MANAGUA
RECINTO UNIVERSITARIO “RUBÉN DARÍO”
FACULTAD DE CIENCIAS E INGENIERÍAS
DEPARTAMENTO DE QUÍMICA
DECLARACIÓN DE AUTENTICIDAD
Nosotros, Yeltsin Ramón Ruíz Blandón, mayor de edad, soltero, identificado con cédula
número 401-051093-0008d, y número de carnet universitario 10043461, de domicilio
Masaya y Moisés David Paizano Hernández, mayor de edad, soltero, identificado con
cédula número 570-090693-0002T, y número de carnet universitario 10043428 y del
domicilio de Altagracia, Isla de Ometepe, ambos egresados de la Carrera de Química
Farmacéutica, plan 1999, ofertada por la Facultad de Ciencias e Ingenierías de la
Universidad Nacional Autónoma de Nicaragua, Managua (UNAN-Managua) a través
del Departamento de Química, damos fe y veracidad de la autoría y originalidad de la
presente Monografía que lleva por título “Validación del método espectrofotométrico
UV-Visible para la cuantificación y disolución de tinidazol tableta de 500 mg, en el
Laboratorio Nacional de Control de Calidad de Medicamentos, Abril-Noviembre 2015”,
en la cual se presentan datos experimentales reales única y exclusivamente obtenidos
por los suscritos, durante el período de realización de esta investigación.
Dado en la ciudad de Managua a los quince días del mes de Febrero del año dos mil
dieciséis,
Yeltsin Ramón Ruíz Blandón, Br. Moisés David Paizano Hernández, Br.
Aspirantes al título de Licenciados en Química Farmacéutica UNAN-Managua.

RESUMEN
Palabras clave: Tinidazol, Espectrofotometría UV-Visible, Validación, Disolución.
Tinidazol, nombre químico 1-[2-(Etilsulfonil)etil]-2-metil-5-nitro-1H-imidazol,

indicado en amebiasis, giardiasis y Tricomoniasis intestinales, genitourinarias del
hombre y la mujer, así como en la profilaxis de infecciones post operatorias en cirugía
gastrointestinal, ginecológicas y de colon. Es uno de los antiparasitarios demandados
por el Ministerio de Salud de Nicaragua.
El trabajo que a continuación se muestra se realizó en el Laboratorio Nacional de

Control de Calidad de Medicamentos del Ministerio de Salud (LNCCM), con el
propósito de validar el método Analítico por Espectrofotometría UV-Visible, para la
cuantificación de tinidazol, en la forma farmacéutica tableta 500 mg, según
metodología interna del laboratorio.
Se utilizó un espectrofotómetro UV-Visible Agilent, modelo 8453 series, con

detector de arreglo de diodo a una longitud de onda analítica de 276 nm, trabajando
en un rango de concentración de 32 µg/mL a 48 µg/mL, usando como disolvente HCl
0.1 N.
Se evaluaron parámetros de desempeño analíticos que incluyen Linealidad,

Precisión, Exactitud, Robustez y Disolución con el objetivo de cumplir los requisitos del
Reglamento Técnico Centroamericano (RTCA 11.03.39:06); Productos
Farmacéuticos. Validación de métodos analíticos para la evaluación de la calidad de
los medicamentos.
La curva de calibración demostró ser lineal 𝑟2 = 0.9994, obteniéndose un

porcentaje de recuperación de 100.27%. En los estudios de repetibilidad y precisión
intermedia los coeficientes de variación fueron menores al 2%. El método resultó ser
lineal, preciso y exacto por lo tanto puede usarse como método de rutina para el control
de calidad de productos farmacéuticos.

ÍNDICE DE GRÁFICOS
N0 Especificaciones Página
Gráfico No 5.1.1.2.1.1 Gráfico de curva de calibración en 44
Absorbancias de tinidazol en UV-Visible
Gráfico No 5.1.1.2.2.1.1 Gráfico de análisis de los residuales de la 47

linealidad del sistema
Gráfico No 5.1.1.2.2.1.2 Gráfico de linealidad del sistema de tinidazol 49

en espectrofotometría UV-Visible
Gráfico No 5.1.2.1.1 Gráfico de linealidad del método de tinidazol 70

tableta 500 mg
Gráfico No 5.1.2.2.1.1 Gráfico de análisis de los residuales de la 72

linealidad del método de tinidazol

ÍNDICE DE FIGURAS
No Especificaciones Página
Figura 2.2.2.2.1 Esquema del aparato 2 de disolución 15
Figura 2.4.3.8 Esquema de espectrofotometría UV-Visible 20
Figura 4.7.1.2.1 Mecanismo de acción de tinidazol 22
Figura 4.7.1.2.1 Presentación esquemática de la preparación de 32

la curva de calibrado de estándar de tinidazol
Figura 4.7.1.3.2 Presentación esquemática de la preparación de 34
la curva de calibrado de tinidazol tabletas de
500 mg

ÍNDICE DE TABLAS
NO Especificaciones Página
Tabla No 2.3.1 Parámetros requeridos para la validación 17
Tabla No 4.4.3 Operacionalización de variables 26
Tabla No 4.9.1.1.1 Criterios de aceptación de la linealidad del 35

sistema
Tabla No 4.10.1.1 Criterios de aceptación de la linealidad del 37
método
Tabla No 4.12.1 Reactivos 39
Tabla No 4.12.2 Materiales 40
Tabla No 4.12.3 Equipos 41
Tabla No 5.1.1.1.1 Tratamiento estadístico de la aptitud del 42

sistema
Tabla N° 5.1.1.2.1 Evaluación de la curva de calibración del 43
sistema de tinidazol
Tabla N° 5.1.1.2.2.1 Análisis de los mínimos cuadrados en los 46
datos de la linealidad del sistema de tinidazol
Tabla No 5.1.1.2.5.1 Test de G de Cochran Varianza de los factores 54
de respuesta del sistema de tinidazol
Tabla No 5.1.1.2.7.1 Análisis de la varianza de los factores de 57

respuesta del sistema de tinidazol en
espectrofotometría UV-Visible.
Tabla No 5.1.1.3.1.1 Evaluación estadística de repetibilidad del 60

sistema de tinidazol
Tabla No 5.1.1.4.1 Evaluación de la Exactitud del sistema de 63

tinidazol
Tabla No 5.1.1.5.1 Porcentaje de recuperación de tinidazol 66

tableta 500 mg
Tabla No 5.1.1.5.1.1 Test G de Cochran para el porcentaje de 67

recuperación de tinidazol tableta 500 mg

NO Especificaciones Página
Tabla No 5.1.2.1.1 Evaluación de la linealidad del método de 69
Tinidazol tab 500 mg
Tabla No 5.1.2.2.1 Análisis de mínimos cuadrados en los datos 71
de linealidad del método
Tabla No 5.1.2.5.1 Test G de Cochran varianza de los factores de 78

respuestas del método de tinidazol tableta 500
mg
Tabla No 5.1.2.7 Análisis de varianza de los factores de 80

respuesta del método de tinidazol tab 500 mg
Tabla No 5.1.2.8.1.1 Evaluación de repetibilidad del método de 83

tinidazol tableta 500 mg
Tabla No 5.1.2.8.2.1 Evaluación de la precisión intermedia interdía 86
e interanalista
Tabla No 5.1.2.8.2.1.1 Evaluación estadística para la precisión 87

intermedia en espectrofotometría UV-Visible
de tinidazol tableta 500 mg
Tabla N° 5.1.2.8.2.1.2 Precisión intermedia analista A 88
Tabla N° 5.1.2.8.2.1.3 Precisión intermedia analista B 88
Tabla N° 5.1.2.8.2.1.4 Precisión intermedia analista A vs B Día 1 88
Tabla N° 5.1.2.8.2.1.5 Precisión intermedia analista A vs B Día 2 89
Tabla No 5.1.2.8.2.2 Precisión intermedia interdía e interanalista 89

t estadígrafo Student
Tabla No 5.1.2.9.1 Evaluación de la robustez de tinidazol tableta 90

500 mg
Tabla No 5.1.2.10.1 Evaluación del Test de Disolución de tinidazol 91

tableta 500 mg
Tabla No 5.2 Resumen de resultados de validación de 92

tinidazol tableta 500 mg en espectrofotometría
UV-visible

ÍNDICE DE ANEXOS
ÍNDICE DE ECUACIONES
Nº Ecuación Página
3.3 𝜎
Ecuación 1 𝐿𝑂𝐷 = 12
𝑚
10 𝜎
Ecuación 2 𝐿𝑂𝑄 = 13
𝑚
∑𝑛𝑖[(𝑥𝑖 − 𝑥̅ )(𝑦𝐼 − 𝑦̅)]

Ecuación 3 𝑟 = 44
2 2
√∑𝑖(𝑥𝑖 − 𝑥̅ ) ∑𝑖(𝑦𝐼 − 𝑦̅)
Ecuación 4 𝑟2 44
Ecuación 5 𝑦̂ = 𝑏 ∗ 𝑥 + 𝑎 47
(∑ 𝑥𝑖 )2
Ecuación 6 𝑆𝑥𝑥 = ∑(𝑥𝑖 − 𝑥̅ )2 = ∑ 𝑥𝑖2 − 47
𝑁
(∑ 𝑦𝑖 )2
Ecuación 7 𝑆𝑦𝑦 = ∑(𝑦𝑖 − 𝑦̅)2 = ∑ 𝑦𝑖2 − 48
𝑁
∑ 𝑥𝑖 ∑ 𝑦𝑖
Ecuación 8 𝑆𝑥𝑦 = ∑(𝑥𝑖 − 𝑥̅ , )(𝑦𝑖 − 𝑦̅ ) = ∑ 𝑥𝑖 𝑦𝑖 − 48
𝑁
𝑆𝑥𝑦
Ecuación 9 𝑏= 48
𝑆𝑥𝑥
Ecuación 10 𝑎 = 𝑦̅ − 𝑏𝑥̅ 48
|𝑏|
Ecuación 11 𝑡𝑒𝑥𝑝 (𝑏) = 50
𝑆𝑏
𝑆𝑦𝑦 − 𝑏 2 𝑆𝑥𝑥
𝑆𝑟 = √
Ecuación 12 𝑁−2 50

2
Ecuación 13 𝑆𝑏 = √𝑆𝑟 ⁄𝑆 50
𝑥𝑥
Ecuación 14 ICb= b ± t * Sb 51
|𝑎|
Ecuación 15 𝑡𝑒𝑥𝑝 (𝑎) = 52
𝑆𝑎
1
Ecuación 16 𝑆𝑎 = 𝑆𝑟 ∗ √ 52
𝑁 − (∑ 𝑥𝑖 )2 / ∑ 𝑥𝑖2
Ecuación 17 ICa= a ± t * Sa 53
𝑆 2 𝑚á𝑥𝑖𝑚𝑎
Ecuación 18 𝐺𝑒𝑥𝑝 = 53
∑ 𝑆𝑖2
𝑆
Ecuación 19 𝐶𝑉 = ∗ 100 55
𝑋̅
2 ∑(𝑦𝑖 −Ӯ)2
Ecuación 20 VRES = Sy,x = 58
n−2
Ecuación 21 SCT = SCRES + SCREG 58
2
∑(y𝑖 − 𝑦̂)2
Ecuación 22 Sy,x = 58
n−2
VREG
Ecuación 23 F= 59
VRES
∑ 𝑥𝑖
Ecuación 24 𝑥̅ = 61
𝑛
Ecuación 25 61
s = √∑(xi − x)2 /(n − 1)
i

No Especificaciones Páginas
Anexo 1 Carta declaratoria del Laboratorio Nacional de Control de 1

Calidad de Medicamentos
Anexo 2 Idoneidad del método espectrofotométrico UV-Visible 2
Anexo 3 Calibrado del sistema en espectrofotometría UV-Visible 3
Anexo 4 Cálculos para las concentraciones 4
Anexo 5 Espectros de la linealidad del sistema y del método 5
Anexo 6 Espectros de la precisión en condiciones de repetibilidad 6

del sistema y del método
Anexo 7 Espectros de la precisión intermedia del método de 7
muestras de tinidazol tableta 500 mg Interanalista-Día1
Anexo 8 Espectros de la precisión intermedia del método de 8
muestras de tinidazol tableta 500 mg Interanalista-Día 2
Anexo 9 Espectros de la exactitud del Sistema y del Método 9
Anexo 10 Partes del Disolutor HANSON RESORD 10
Anexo 11 Partes del Espectrofotómetro AGILENT 8453 SERIES 11
Anexo 12 Partes de la Balanza Analítica OHAUS EXPLORER 12
Anexo 13 Monografía individual de Tinidazol, materia prima USP-

13
37
Anexo 14 Reglamento Técnico Centroamericano 11.03.39:06 14
Anexo 15 Capítulo general de Espectrofotometría y Dispersión de

15
la luz USP-37
Anexo 16 Capítulo general de Disolución USP-37 16

Anexo 17 Capítulo general de Validación de procedimientos

17
farmacopéicos USP-37
Anexo 18 Tablas Estadísticas 18

CAPÍTULO I
ASPECTOS GENERALES
1.1 INTRODUCCIÓN
En Nicaragua es muy bien conocido el problema de las infecciones parasitarias;
a medida que la mayoría de la población las padece, el uso de los antiparasitarios es
esencial para el tratamiento de dichas infecciones, siendo el Tinidazol uno de los
fármacos utilizados en este tipo de afecciones.
La industria farmacéutica nacional en la actualidad fabrica el tinidazol en tableta,

por razones económicas no todos cuentan con el equipo necesario que algunos
métodos modernos exigen para el análisis del producto terminado. Es por ello que los
laboratorios nacionales tienen que disponer de métodos de análisis alternativos, que
sean rápidos, seguros, confiables y económicos.
El Reglamento Técnico Centroamericano RTCA 11.03.39:06 “Validación de

Métodos Analíticos para la Evaluación de la Calidad de los Medicamentos”, indica las
directrices que deben aplicarse a todos los métodos analíticos no oficiales y oficiales
utilizados para el control de calidad de medicamentos.
La Farmacopea de los Estados Unidos de América (USP 36), no contemplan

ninguna monografía de producto terminado de tinidazol, por lo que este trabajo
pretende validar el método espectrofotométrico UV-visible para la cuantificación de
Tinidazol tabletas 500 mg, mediante la evaluación de los parámetros de desempeño,
exactitud, precisión, linealidad e intervalo, con la única finalidad de garantizar la calidad
y la seguridad del medicamento.
Yeltsin Ramón Ruiz Blandón- Moisés David Paizano Hernández Página 1

1.2 OBJETIVOS
1.2.1 OBJETIVO GENERAL
 Validar el método espectrofotométrico para la cuantificación y disolución de

tinidazol tableta de 500 mg realizado en el Laboratorio Nacional de Control de Calidad
de Medicamentos (LNCCM) Abril-Noviembre 2015.
1.2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS
 Comprobar la idoneidad del método analítico, para la cuantificación de tinidazol

tabletas de 500 mg, por espectrofotometría UV-visible.
 Evidenciar los parámetros del desempeño para la validación del sistema:

linealidad, precisión, exactitud, límite de detección, límite de cuantificación, robustez,
para la cuantificación de tinidazol tableta 500 mg por espectrofotometría UV-visible.
 Aplicar el ensayo de disolución para la cuantificación de tinidazol tabletas 500

mg, por espectrofotometría UV-visible.

1.3 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

La validación de los métodos de cuantificación, es una de las exigencias de las
Buenas Prácticas de Manufactura y las Buenas Prácticas de Laboratorio, que deben
cumplirse en la Industria Farmacéutica, para garantizar que la evaluación de la calidad
de los productos se realiza dentro de un sistema de calidad confiable.
El Ministerio de Salud de Nicaragua, como garante de la calidad de los

medicamentos en uso de sus facultades orienta que todos los laboratorios deben tener
validado sus métodos analíticos, tomando como referencia las monografías oficiales
de la farmacopea de los Estados Unidos de América (USP) y el Reglamento Técnico
Centroamericano RTCA 11.03.39:06, en la cuales se orienta la validación de los
nuevos métodos de análisis, para verificar la calidad de los medicamentos para uso
humano.
Los métodos presentados para algunas moléculas (cromatografía líquida de alta

presión y cromatografía de gases) resultan costosos, especialmente para los
laboratorios nacionales y gubernamentales que se dedican a la fabricación de estos
productos y que no cuentan con estos equipos.
Con el presente trabajo se pretende validar este método analítico no oficial, para
la cuantificación y disolución de tinidazol, requisito necesario orientado por el ente
regulador para cumplir con los controles de registro sanitario del producto terminado.
Por tal razón surge la pregunta:
¿Es el método de espectrofotometría UV-visible idónea para la cuantificación y

disolución de tinidazol tableta de 500 mg?

1.4 JUSTIFICACIÓN
La industria farmacéutica nacional, en vías de ampliar sus fronteras comerciales,
ha estado en constantes cambios tomando como eje el cumplimiento de las normativas
de calidad internacionales como son el Reglamento Técnico Centroamericano y
farmacopea de los Estados Unidos de América, donde la validación de los métodos
analíticos de los productos farmacéuticos es fundamental para garantizar la calidad de
los productos, estas usualmente resultan ser costosas por los recursos tecnológicos
modernos a utilizar, por lo que comúnmente es preciso adaptar métodos de análisis
alternativos que garanticen la calidad de los medicamentos y el cumplimientos de
todas y cada una de las normas establecidas.
La importancia de la realización de este trabajo de investigación se debe al aporte

que suministra el método empleado, al reunir condiciones idóneas para la obtención
de resultados precisos, exactos, confiables, con menos tiempo y costo en su
aplicación, proporcionando vías alternativas ante metodologías analíticas que
usualmente son costosas para el laboratorio. De la misma manera ser útil para el
fortalecimiento del conocimiento farmacéutico relacionado con la validación de
métodos analíticos
La molécula de tinidazol fue seleccionada por el interés del Laboratorio Nacional

de Control de Calidad de Medicamentos del Ministerio de Salud, por lo que es utilizada
frecuentemente en enfermedades parasitarias, así mismo al no contemplarse la
metodología analítica en la farmacopea de los Estados Unidos de América (USP 36),
y no estar validado este método utilizado por el ente regulador, se procede a validar el
método a través de espectrofotometría UV-Visible, para convertirse en un método
oficial para la industria nacional.

1.5 ANTECEDENTES
Al realizar investigaciones documentales sobre estudios relacionados a

validaciones de métodos espectrofotométricos para tinidazol, internacionalmente
encontramos trabajos reportados en diferentes revistas sobre validaciones de métodos
espectrofotométricos en diversos preparados farmacéuticos y en algunos de ellos en
tinidazol.
En Nicaragua no se encontró estudio alguno que demuestre el uso de la técnica

de Espectrofotometría UV-visible, para la cuantificación de tinidazol y la evaluación de
los parámetros de desempeño analíticos.
1.5.1 INTERNACIONALES
2012 “Application of UV spectrophotometric methods for simultaneus estimation

of norfloxacin and tinidazole in bulk and tablet dosage forms”. Pant Mayank, Dadare
Khemchand and Khatri, N.C. Der Pharma Chemica, 2012, 4 (3):1041-1046.
2011 “Method for Determination of Tinidazole using Direct UV Visible

Spectrophotometric and Differencial Spectrophotometric in pure and Tablet Dosage
Forms. Singh L. and Nanda S. East and Central African Journal of Pharmaceutical
Sciences 2011, Vol. 14: 75-80.
2011 “A Validated UV-Spectrophotometric Method for the Estimation of Tinidazole

in Bulk and Famaceutical Dosage Form. Umadevi Kothapalli, et al. International Journal
of Pharmaceutical & Biological Archives 2011; 2(4):1152-1156.
2008 “Determinação de Tinidazol por Cromatografia em Camada Delgada e

Espectrofotometría”. Lissandra Glusczak, Denia Mendes de Sousa Valladão, Ricardo
López Tortorela. Sociedade Brasileira de Química (SBQ).

1999 “Validación de Método Espectrofotométrico para Cuantificación de

Metronidazol, Mebendazol, Albendazol y Tinidazol (Tabletas y Suspensión)”,
Valenzuela Mejía, Ana C.
1.5.2 NACIONALES
2012 “Validación de metodología analítica para la cuantificación de Levofloxacino
500 mg capleta recubierta por espectrofotometría ultravioleta visible durante el periodo
de Septiembre 2012 en UNAN-León”. Brs. Vázquez Hernández W. A. y Villegas
Marcias T.
2012 “Validación de Famotidina de 40 mg por espectrofotometría ultravioleta

visible UNAN-León”. Br. Sevilla Bonilla A. J.
2008 “Validación de un método espectrofotométrico UV-visible para la

determinación de Ciprofloxacina en formulaciones sólidas producidas por laboratorios
Bengochea de Managua, UNAN-Managua”. Brs. García Tálenos G. M y Gutiérrez
Obando B. A.
2003 “Validación de un método analítico por espectrofotometría ultravioleta

visible para el ensayo de disolución de tabletas de Metocarbamol (Turel-AX),
Elaborado por laboratorios PANZYMA, UNAN-LEON”. Brs. Rugama Narváez E. R. y
Silva C. A.

CAPÍTULO II
MARCO TEÓRICO
2.1 GENERALIDADES DE VALIDACIÓN

2.1.1 DEFINICIÓN DE VALIDACIÓN
La validación de un procedimiento analítico, es el proceso que establece,
mediante estudios en laboratorios, que las características de desempeño del
procedimiento cumplan los requisitos para las aplicaciones analíticas previstas. El
objetivo de la validación de un procedimiento analítico es demostrar que es apto para
el propósito indicado. (USP 36 <1225>, 2013)
Mediante la validación del método se establece si los parámetros de calidad

satisfacen los requisitos de una aplicación analítica concreta. Para ello, se requiere
experimentación y comparación con valores de referencia bien conocidos.
2.1.2 RAZONES QUE JUSTIFICAN LA VALIDACIÓN DE MÉTODOS ANALÍTICOS
 Demostrar que los métodos son adecuados a los análisis propuestos en las
condiciones descritas.
 Trabajar con métodos que ofrezcan confianza y seguridad en los resultados, lo cual
a su vez minimiza el número de fallos y repeticiones permitiendo un importante
ahorro de costos.
 Trabajar con métodos validados permite no solo el conocimiento del método
analítico sino también cumplir con las exigencias legales tanto del registro de
especialidades farmacéuticas como de las Buenas Prácticas de Laboratorio, con el
fin de asegurar la calidad y eficacia del producto. (Aguirre, 2001)
2.1.3 CARACTERÍSTICAS ANALÍTICAS PARA VALIDACIÓN DE MÉTODOS
Para que un método de análisis pueda ser validado, es necesaria la

determinación y evaluación de una serie de parámetros que definen la calidad del
método que describen la Farmacopea USP 36 NF-31, a continuación se mencionan:
(USP 36 <1225>, 2013)

 Especificidad
 Linealidad del sistema
 Precisión expresada en sus 2 formas: repetitividad y precisión intermedia.
 Exactitud
 Límite de detección
 Límite de cuantificación
 Robustez
2.1.3.1 Especificidad
Capacidad de un método analítico para medir o identificar simultánea o
separadamente los analítos de interés, de forma inequívoca, en presencia de otras
sustancias químicas que puedan estar presentes en la muestra. (Aguirre, 2001)
2.1.3.1.1 Ámbito de aplicación, especificidad

En el análisis farmacéutico la tendencia mayoritaria es la utilización de métodos
lo más selectivos posibles, en los que la presencia de otros compuestos tienen escasa
influencia en los resultados.
Para efectuar estudios de selectividad se precisa la máxima información de

impurezas y productos de degradación potencialmente presentes en la muestra, así
como posibles interferencias debido a excipientes u otros componentes. (Aguirre,
2001)
2.1.3.2 Linealidad e intervalo

Capacidad para obtener resultados de prueba que sean proporcionales ya sea
directamente o por medio de una transformación matemática bien definida, a la
concentración de analito en muestras en un intervalo dado. (COMIECO, 2006)
Intervalo: es la amplitud entre la concentración inferior y superior del analito

(incluyendo esos niveles), en la cual se puede determinar el analito con un nivel

adecuado de precisión, exactitud y linealidad utilizando el método según se describe.

(COMIECO, 2006)
2.1.3.2.1 Ámbito de aplicación, linealidad

Según la guía ICH Q2A se recomienda estudiar la linealidad en todos los
métodos de tipo cuantitativo.
Valoración del contenido de principio activo.
Velocidad de disolución.
Cuantificación de impurezas.
2.1.3.2.2 Análisis de varianza en UV-Visible

El análisis de la varianza de la regresión (ANOVA) es un método que se emplea
para comparar resultados obtenidos por distintos métodos, laboratorios, analistas etc.,
cuando el número de medias obtenidas es superior a dos. También permite separar
las contribuciones de uno más factores a la varianza global de sistema. (Aguirre, 2001)
2.1.3.3 Precisión
Expresa el grado de concordancia entre una serie de mediciones individuales
obtenidas de múltiples muestreos de una misma muestra homogénea original o bien a
partir de varias muestras obtenidas por dilución de la muestra bajo condiciones
establecidas.
Existen tres formas diferentes de evaluar la precisión: repetibilidad, precisión

intermedia y reproducibilidad. (COMIECO, 2006)
2.1.3.3.1 Repetibilidad
Estudia la variabilidad del método efectuando una serie de análisis sobre la
misma muestra en las mismas condiciones operativas (por un mismo analista, con los
mismos aparatos y reactivos, etc.). En un mismo laboratorio y en un período de tiempo
corto. (Aguirre, 2001)

2.1.3.3.1.1 Determinación de repetibilidad

La Conferencia Internacional sobre Armonización de los Requisitos Técnicos
para el Registro de Productos Farmacéuticos para Uso Humano (ICH), recomienda
llevar a cabo un total de nueve determinaciones, que cubran el intervalo especificado
para el procedimiento, se trabaja con el punto medio de la calibración, con sus nueve
determinaciones repetidas de esta concentración. (ICH, 2002)
2.1.3.3.1.2 Criterios de aceptación de repetibilidad

Existen diferentes criterios de aceptación, sin embargo se puede generalizar que
en el caso de la repetibilidad y la precisión intermedia; la desviación estándar relativa
para evaluar la precisión del sistema o del método debe ser menor o igual al 3 %, la
reproducibilidad, puede ser 2 ó 3 veces la repetibilidad. (Aduanera, 2004)
2.1.3.3.2 Precisión intermedia

Estudia la variabilidad del método efectuando una serie de análisis sobre la
misma muestra homogénea, pero en condiciones operativas diferentes (diferentes
analistas, días y aparatos, etc.) en un mismo laboratorio. (Aguirre, 2001)
2.1.3.3.2.1 Determinación de precisión intermedia

Se determina preparando una muestra a la concentración considerada como el
100% ó a la concentración de análisis rutinario, haciendo análisis por triplicado. El
ensayo se realiza por dos analistas, en días diferentes. (USP 36 <1225>, 2013)
2.1.3.3.2.2 Criterios de aceptación de precisión intermedia

La estimación de la precisión intermedia se realiza con el cálculo del Coeficiente
de Variación global. (Aduanera, 2004)
2.1.3.4 Exactitud
Es la proximidad entre los resultados de la prueba obtenidos mediante ese
método y el valor verdadero. (COMIECO, 2006)

2.1.3.4.1 Determinación de exactitud

Existen diferentes maneras de determinar la exactitud, los siguientes son los más
frecuentes y pueden ser utilizados en todos los tipos de análisis:
 Prueba de un Estándar de Referencia.
 Mezcla con excipientes (placebo con una cantidad agregada conocida).
 Agregado de estándar (muestra con cantidad agregada conocida).
 Se deduce a partir de los datos de especificidad y linealidad.
 Comparación con un método reconocido como exacto. (ICH, 2002)
2.1.3.4.2 Procedimiento de la determinación de exactitud

Se recomienda que la exactitud se evalué un mínimo de nueve determinaciones,
sobre un mínimo de tres niveles de concentraciones y tres determinaciones repetidas
de cada concentración, que podrían ser la concentración central y las concentraciones
de los extremos del rango. En función del tipo de método a validar y de cada caso
concreto se deberá tener en cuenta el rango de concentraciones de trabajo:
 Riquezas de un principio activo de materia prima o en producto acabado (80-
120%).
 Ensayo de disolución: si se trata de un producto de liberación inmediata seria de
que Q - 20 % a Q + 20 %, si se trata de un producto de liberación controlada sobre
cada límite de disolución en cada período de tiempo se aplicaría (± 20%). (Aguirre,
2001)
La exactitud se expresa como porcentaje de recuperación en la valoración de una

cantidad conocida de analito añadido sobre la muestra o como la diferencia entre la
media obtenida y el valor aceptado como verdadero junto a los intervalos de confianza.

2.1.3.4.3 Comparación de los resultados obtenidos de un estándar o material de

referencia certificado
Verificación
El material de referencia puede ser obtenido en el mercado por algún suplidor o
puede ser preparado internamente en el laboratorio.
Se analiza por replicado el material, por el método a validar y se compara el

resultado obtenido con el valor verdadero declarado, este método se encuentra
limitado por la disponibilidad y la estabilidad del material de referencia, así como por
el grado de incertidumbre que se tenga del valor verdadero de la concentración del
material de referencia. (OMS, 2006)
2.1.3.4.4 Criterio de aceptación de exactitud

En la exactitud el criterio de aceptación es 90% - 110% de recuperación o 2% de
error relativo. (USP 36 <1225>, 2013)
2.1.3.5 Límite de detección (LOD)

Es la cantidad mínima de analito en una muestra que puede detectarse por una
única medición, aunque no necesariamente cuantificarse, en las condiciones
experimentales indicadas, expresadas habitualmente en forma de concentración de
analito (porcentajes, partes por billón) en la muestra. (USP 36 <1225>, 2013)
Se determina mediante el análisis de muestras con concentraciones conocidas

de analito, estableciendo el nivel mínimo que puede detectarse confiablemente. El
límite de detección se calcula mediante la fórmula:
3.3 𝜎
𝐿𝑂𝐷 = 𝑚 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏)
Dónde:
es la desviación estándar de la respuesta de la muestra.
m = es la pendiente de la curva de calibración para la linealidad.

2.1.3.6 Límite de cuantificación (LOQ)

Mínima cantidad del analito en una muestra que puede ser cuantitativamente
determinada con precisión y exactitud aceptable. Es un parámetro del análisis
cuantitativo para niveles bajos de compuestos en matrices de muestra y se usa
particularmente para la determinación de, impurezas y productos de degradación.
(COMIECO, 2006)
10𝜎
𝐿𝑂𝑄 = 𝑚 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐)
Dónde:
σ = Es la desviación estándar de la respuesta de la muestra.
m = Es la pendiente de la curva de calibración para la linealidad.
2.1.3.7. Robustez
La guía ICH, Q2A define la robustez de un método analítico como la media de su
capacidad para permanecer inalterado, ante pequeñas pero deliberadas variaciones
en ciertos parámetros proporcionando idea de su fiabilidad o estabilidad durante su
empleo en rutina. Es por la tanto la capacidad que demuestra el procedimiento de
análisis para proporcionar datos validos en presencia de pequeños cambios respecto
de las condiciones descritas en el método susceptible de producirse durante su
utilización. (Aguirre, 2001)
2.1.3.7.1. Ámbito de aplicación, robustez

La guía ICH recomienda incluir la robustez en un método, en una fase apropiada
del desarrollo de este, no se comprueba con anterioridad a iniciar la validación, puede
suceder que se intente validar un método poco robusto, con los consiguientes malos
resultados y pérdida de tiempo y dinero. (Aguirre, 2001)

2.2 DISOLUCIÓN
2.2.1 FUNDAMENTO
La disolución se emplea para determinar el comportamiento de la disolución de
los principios activos contenidos en una forma farmacéutica sólida de uso oral,
estableciendo un criterio de evaluación de las propiedades físicas y biofarmacéuticas
del producto. Los métodos descritos se aplican en las monografías que establecen un
límite de principio activo disuelto bajo el título Disolución. La disolución de tabletas es
una prueba que se utiliza para la determinación del principio activo, que se encuentra
en la solución, después de cierto tiempo de agitación. (USP 36 <711>, 2013)
El procedimiento de disolución requiere de un aparato, un medio de disolución y

condiciones de prueba que provean un método discriminatorio lo suficientemente
resistente y reproducible para las operaciones diarias y capaz de ser transferido entre
laboratorios.
Los criterios de aceptación deben ser representativos de varios lotes con la

misma composición nominal y el mismo proceso de fabricación, que usualmente
incluyen los lotes de mayor relevancia usados en estudios claves, y deben también ser
representativos del desempeño en estudios de estabilidad. (USP 36 <711>, 2013)
2.2.2 ASPECTOS TEÓRICOS DE LA PRUEBA DE DISOLUCIÓN

2.2.2.1 Aplicación de la prueba de disolución
La disolución es una prueba físico química que determina la cantidad de fármaco
que se disuelve por unidad de tiempo bajo condiciones estandarizadas de la interfase
líquida/sólida, la temperatura y la composición del solvente. (USP 36 <711>, 2013)
2.2.2.2 Aparato 2 (Aparato con Paleta)

Emplear el Aparato 2 usando como elemento de agitación una paleta compuesta
por un aspa y un eje. Colocar el eje propulsor de forma tal que su eje central guarde
una distancia máxima de 2 mm con respecto a cualquier punto del eje vertical del vaso
y rote suavemente sin fluctuaciones que pudieran afectar los resultados. La línea

central vertical del aspa está alineada con el eje propulsor de forma tal que el extremo
inferior del aspa esta nivelado con el extremo inferior del eje propulsor. La paleta
cumple con las especificaciones que se indican en la siguiente figura:
Figura 2.2.2.2.1 Esquema del aparato 2 de Disolución
Fuente: (USP 36 <711>, 2013)
La distancia entre el fondo interno del vaso y el aspa se mantiene en 25 ± 2 mm

durante la prueba. El aspa metálica o de otro material inerte adecuado y el eje forman
una unidad. En algunos casos, se puede usar un dispositivo desmontable de dos
partes, siempre y cuando las partes permanezcan firmemente ajustadas durante la
prueba.
El eje y el aspa de la paleta pueden estar recubiertos con un material inerte

adecuado. Dejar que la unidad de dosificación se hunda hasta el fondo del vaso antes
de empezar a rotar el aspa. A las unidades de dosificación se les puede agregar una
pieza pequeña, suelta, de algún material no reactivo, como por ejemplo un par de
vueltas de alambre, para evitar que floten. (USP 36 <711>, 2013)

2.3 CLASES DE ENSAYOS ANALÍTICOS

La Organización Mundial de la Salud (OMS) clasifica, en cuatro clases principales
con sus respectivas especificaciones para la validación de métodos analíticos, que se
nombran en: (OMS, 2006)
Clase A: Para establecer identidad.

Clase B: Para detectar y cuantificar impurezas.
Clase C: Para determinar cuantitativamente la concentración.
Clase D: Para evaluar las características, disolución, uniformidad de contenido.
2.3.1. DATOS REQUERIDOS PARA LA VALIDACIÓN

Los requisitos de las pruebas farmacopéicos varían dependiendo de la naturaleza
de la prueba específica, considerando esta amplia variedad es lógico que diferentes
procedimientos requieran diferentes esquemas de validación, que a continuación se
detallan: (USP 36 <1225>, 2013)
Categoría I: procedimientos analíticos para la cuantificación de los componentes

principales de fármacos a granel o ingredientes activos (incluyendo conservantes) en
productos farmacéuticos terminados.
Categoría II: para la determinación de impurezas en fármacos a granel o

producto de degradación en productos farmacéuticos.
Categoría III: para la determinación de las características de desempeño (ej.

disolución, liberación de fármacos).
Categoría IV: pruebas de identificación.

Tabla N0 2.3.1 Parámetros requeridos para la validación
Categoría II
Características de Categoría Categoría
Categoría I Prueba de Prueba de
Desempeño Analítico III IV
Límite Límite
Cuantitativa Cualitativa
Exactitud Si Si * * No
Precisión Si Si No Si No
Especificidad Si Si Si * Si
Límite de detección No No Si * No
Límite de cuantificación No Si No * No
Linealidad Si Si No * No
Intervalo Si Si * * No
Fuente: (USP 36 <1225>, 2013) Pueden requerirse, dependiendo de la naturaleza de la
prueba específica.
2.4 FUNDAMENTO DE LA ESPECTROFOTOMETRÍA (UV-VISIBLE)

2.4.1 DEFINICIÓN DE ESPECTROFOTOMETRÍA (UV-VISIBLE)
La espectrofotometría ultravioleta visible es una técnica analítica que permite
determinar la concentración de un compuesto en solución. Se basa la medición de una
interacción entre una radiación electromagnética y las moléculas o átomos de una
sustancia química. Las técnicas que se emplean frecuentemente en el análisis
farmacéutico incluyen la espectroscopia de absorción atómica, en el espectro UV, en
el visible y en el IR. (USP 36 <851>, 2013)
Para hacer este tipo de medidas se emplea un espectrofotómetro, en el que se

puede seleccionar la longitud de onda de la luz que pasa por una solución y medir la
cantidad de luz absorbida por la misma.

2.4.2 ESPECTROFOTÓMETRO
La palabra espectrofotómetro se deriva de la palabra latina spectrum, que
significa imagen, y de la palabra griega phos o photos, que significa luz. Utiliza las
propiedades y su interacción con otras sustancias, para determinar la naturaleza de
las mismas. En general, la luz de la lámpara de características especiales es guiada a
través de un dispositivo que selecciona y separa la luz de una determinada longitud de
onda y la hace pasar por una muestra. La intensidad de la luz que sale de la muestra
es captada y comparada con la intensidad de la luz que incidió en la muestra y a partir
de esto se calcula la transmitancia de la muestra, que depende de factores como la
concentración de la sustancia. (López I, 1999)
2.4.3 COMPONENTES DEL ESPECTROFOTÓMETRO

2.4.3.1 Fuente de luz
Dependiendo del tipo de espectrofotometría la fuente luminosa, puede ser una
lámpara con filamentos de tungsteno para luz visible, o una lámpara de arco de
deuterio para luz ultravioleta. (López I, 1999)
2.4.3.2 Rendija de entrada

Tiene como función reducir al máximo la luz difusa y evitar que la luz dispersa
entre en el sistema de selección de longitud de ondas.
2.4.3.3 Monocromadores
Está compuesto por un conjunto de elementos. En general, dispone de una rendija
o ranura de entrada que limita la radiación lumínica producida por la fuente y la confina
en un área determinada, un conjunto de espejos para pasar la luz a través del sistema
óptico, un elemento para separar las longitudes de ondas de la radiación lumínica.
Pueden ser: Prismas o Redes de difracción (López I, 1999)

 Prismas: son fragmentos con forma de cuña de un material que permite el paso
de la luz, como por ejemplo: vidrio para trabajar en el espectro visible o cuarzo
para trabajar en el ultravioleta lejano.
 Redes de difracción: son un gran número de líneas paralelas situadas a

distancias iguales entre sí y son hendiduras sobre un vidrio o una superficie
metálica. Cada una de estas hendiduras se comporta como un pequeño prisma.
2.4.3.4 Rendija de salida

Tiene como función impedir que la luz difusa atraviese la cubeta de la muestra,
que provocaría desviaciones a la Ley de Beer.
2.4.3.5 Cubeta
Está fabricado con un material que permite el paso de la radiación en la región del
espectro de interés. Suelen ser de vidrio, plástico o cuarzo. El espesor de la cubeta
más habitual es de 1 cm. (Hernández, 2002)
2.4.3.6 Detector
El diseño depende de los rangos de longitud de onda, de la sensibilidad y de la
velocidad de repuesta requerida. Recibe la energía lumínica proveniente de la muestra
y la convierte en una señal eléctrica proporcional a la energía recibida y puede ser de
dos tipos:
 Fotocélulas o células fotovoltaica

Es una lámina de Cobre sobre la que se extiende una capa de Selenio o de Óxido de
Cobre. La luz incide sobre el Selenio y éste desprende electrones, que pasan a la placa
de Cobre originando una diferencia de potencial por existir carga negativa sobre el
Cobre y positiva sobre el Selenio. El conjunto se conecta a un amperímetro que señala
el paso de corriente.

 Fototubos multiplicadores
Un fototubo multiplicador es un tubo que contiene un cátodo que emite electrones de
forma proporcional a la energía que incide sobre él. Tiene un ánodo que recoge los
electrones y la corriente se multiplica varias veces al chocar los electrones sobre
sucesivos ánodos que van teniendo un voltaje superior al precedente. La señal se
amplifica en cientos o miles de veces. (Hernández, 2002)
2.4.3.7 Medidor
La señal que sale del detector recibe diversas transformaciones. Se amplifica y
se transforma para que su intensidad resulte proporcional al porcentaje de
Transmitancia/Absorbancias. Existen sistemas de lectura de tipo análogo (muestra la
magnitud leída sobre una escala de lectura) o digital.
Los indicadores de tipo análogo reciben tradicional el nombre de metros. Su

exactitud depende, entre otros factores, de la longitud de la escala y del número de
divisiones que tenga (mientras más divisiones, más exacto). Los indicadores digitales,
usualmente presentan los resultados en una pantalla, en forma de caracteres
alfanuméricos luminosos. Esto lo hace menos propensos a que se cometan errores de
lectura. (Hernández, 2002)
Figura 2.4.3.8 Esquema de la espectrofotometría UV-Visible
Fuente: (López I, 1999)

2.5 GENERALIDADES FARMACOLÓGICAS DE LA MOLÉCULA TINIDAZOL

El tinidazol es un antimicrobiano, derivado imidazólico (similar al metronidazol)
con actividad bactericida frente a anaerobios y antiprotozooarios. Es activo frente a
Entamoeba hystolítica, Trichomona vaginalis, Giardia lambia y las bacterias gram-
negativas son las más sensibles.
2.5.1 PROPIEDADES FÍSICO QUÍMICAS DEL TINIDAZOL (Moffat, 2005)

Nombre propio: Tinidazol
Nombre químico: 1-[2-(Etilsulfonil)etil]-2–metil–5–nitro–1H-imidazol
Fórmula estructural:
Fórmula molecular: C8H13N3O4S
Peso molecular: 247.3 g/mol
Descripción: Polvo cristalino, blanco o amarrillo claro.
Solubilidad: Prácticamente insoluble en agua, soluble en acetona y en cloruro de

metileno, ligeramente soluble en metanol.
Pka: 3.1
pH: 5
Punto de fusión: 125º-128

2.5.2 MECANISMO DE ACCIÓN

Actúa al ser reducido su grupo nitro por los extractos de células de tricomonas,
el radical libre nitro generado como resultado de esta reducción puede ser responsable
de la actividad antiprotozoaria. El tinidazol químicamente reducido es capaz de liberar
nitritos que alteran el ADN bacteriano, si bien también ocasionan la ruptura del ADN
en las especies de Giardia y Entamoeba. (Chéry, 2010)
Figura 2.5.2.1 Mecanismo de acción de tinidazol
Fuente: (Chéry, 2010)
2.5.3 FARMACOCINÉTICA
La biodisponibilidad del Tinidazol es del 100%, a las 2 horas alcanza la
concentración plasmática máxima. En forma amplia se distribuye por tejidos y líquidos
corporales. Se difunde fácilmente incluso a través de la barrera hematoencefálica y
placentaria. Se liga en un 16% a las proteínas plasmáticas. Se metaboliza
parcialmente en el hígado y se elimina parcialmente por la orina en buena proporción
en forma activa, también se elimina a través de la leche materna; la vida media es de
aproximadamente 13 horas. (Chéry, 2010)

2.5.4 INDICACIONES TERAPÉUTICAS

Tinidazol está indicado en:
• El absceso hepático amebiano; infestaciones duales de Candida albicans y
tricomonas.
• Amebiasis intestinal, vaginitis inespecífica, gingivitis ulcerosa, Tricomoniasis
genitourinarias de la mujer y el hombre, giardiasis intestinal
• Infecciones por anaerobios (infecciones ginecológicas, óseas, infecciones
respiratorias: neumonía, sinusitis, septicemia bacteriana, infecciones de la piel y tejidos
blandos).
• Profilaxis de infecciones postoperatorias por bacterias anaerobias en cirugía
gastrointestinal, ginecológica y del colon. (Chéry, 2010)
2.5.5 REACCIONES SECUNDARIAS Y ADVERSAS

El tinidazol produce reacciones indeseables leves y transitorias. Entre las más
frecuentemente reportadas tenemos: alteraciones digestivas, náuseas, vómito,
alteración del gusto, anorexia, sequedad de la boca, diarrea, dispepsias, dolor
abdominal, estreñimiento.
Ocasionalmente se han reportado alteraciones dermatológicas: urticaria, prurito,

y otros como fiebre, cefalea, parestesias y mareos. Raramente alteraciones
sanguíneas: leucopenia, trombocitopenia y confusión, depresión e insomnio.
(Gónzalez, 1995)
2.5.6 INTERACCIONES MEDICAMENTOSAS Y DE OTRO GÉNERO

Se puede producir una reacción tipo desulfuran cuando se ingiere alcohol durante
el tratamiento con Tinidazol y hasta 72 horas después de haber ingerido Tinidazol y
otras drogas de estructura similar.
Terapia anticoagulante oral, tipo warfarina, puede potenciar los efectos de los
fármacos anticoagulantes. (Gónzalez, 1995)

CAPÍTULO III
HIPÓTESIS
3.1 HIPÓTESIS
El método propuesto por espectrofotometría UV-visible para la cuantificación y

disolución de tinidazol tabletas de 500 mg, proporciona resultados que cumplen con
los parámetros de desempeño analítico de exactitud, precisión, límite de detección,
límite de cuantificación, linealidad e intervalo requeridos para la validación de un
método analítico, según RTCA 11.03.39:06.

CAPÍTULO IV
DISEÑO METODOLÓGICO
4.1 DESCRIPCIÓN DEL ÁMBITO DE ESTUDIO

El estudio se realizó en el Laboratorio Nacional Control de Calidad de
Medicamentos del Ministerio de Salud de Nicaragua (MINSA), Gasolinera UNO
Xolotlán 2 Cuadras y media abajo, antigua calle 15 de Septiembre.
4.2 TIPO DE ESTUDIO

Descriptivo, univariado y corte transversal. Es descriptivo porque se realizó un
análisis estadístico, es univariado porque describe y estima parámetros en la población
de estudio a partir de una muestra. Es transversal ya que implican la recolección de
datos en un sólo corte en el tiempo.
4.2.1 TIPO DE DISEÑO

Experimental debido a que se desea comprobar la idoneidad del método
espectrofotométrico UV-visible para la cuantificación de tinidazol tableta 500 mg.
4.3 POBLACIÓN Y MUESTRA

4.3.1 POBLACIÓN DE ESTUDIO
La población de estudio proporcionada por el Laboratorio Nacional de Control
de Calidad de Medicamentos (LNCCM) fue de 480 tabletas de tinidazol 500 mg.
4.3.2 MUESTRA
Se tomó una muestra usando un muestreo aleatorio simple, de acuerdo a los
criterios de inclusión seleccionando 120 tabletas de 500 mg correspondiendo al 25%
de la población de estudio
4.3.2.1 Criterio de inclusión

Para el estudio solamente se tomaron, tabletas de tinidazol de 500 mg
4.3.2.2 Criterio de exclusión

Se tomaron como criterios de exclusión las tabletas de tinidazol de 1g,
suspensión de 335mg / 5mL y 1g / 5mL.

4.4 VARIABLES Y OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES

4.4.1 VARIABLE INDEPENDIENTE
Concentración (variable no sujeta a errores indeterminados).
4.4.2 VARIABLES DEPENDIENTES

Absorbancias (sujeta a errores indeterminados). Linealidad, precisión en condiciones de repetibilidad y precisión
intermedia, exactitud, límite de detección, límite de cuantificación, para tinidazol mediante los métodos validados por UV-
visible.
Tabla No 4.4.3 Operacionalización de variables
TIPO DE
VARIABLE CONCEPTO INDICADOR ESCALA DE MEDICIÓN
VARIABLE
Es su capacidad (dentro  Coeficiente de variación (CV) CV de la pendiente  2 %
de un rango dado) para  Coeficiente de correlación (r) r ≥ 0,9950
obtener resultados de  Coeficiente de determinación (r2) r2 ˃ 0,9980
análisis que son  Test de regresión treg˃ ttab
Linealidad directamente  Test de linealidad de la pendiente tpend˃ ttab Categórica
proporcionales a la tpend
concentración (cantidad)  Test del intercepto tint tint< ttab
de un analito en la
muestra.

TIPO DE
VARIABLE
Expresa la precisión  El coeficiente de variación (CV) de
bajo las mismas los resultados, tanto para los datos
condiciones de correspondientes a la repetibilidad
operación a través de un como para la precisión intermedia CV ≤ 2% para ambos
Precisión Categórica
corto intervalo de no debe ser mayor de 2%. analistas
tiempo. También
significa una precisión
entre ensayos.
Es la proximidad entre  Test de Cochran Gexp < Gtab
los resultados de las  Ensayo de hipótesis de t de Student: texp < ttab
Exactitud prueba obtenidos  Recuperación de muestra por Categórica
mediante ese método y concentración en el procedimiento % Recuperación
el valor verdadero analítico. 90.0% a 110.0%

TIPO DE
VARIABLE
Según USP 36 La
robustez se puede
analizar durante la
selección y optimización
 Cambio de lámpara el
de los medios y fuerzas
coeficiente de variación (CV)
de dispersión. El cambio
Robustez de los resultados no debe ser CV ≤ 2% Categórica
de la energía
mayor de 2%.
dispersante se puede
monitorear por el
cambio en la
distribución del tamaño
de las partículas.
Aclaración, tanto el RTCA 11:03.39.06 y USP 36 no exigen la realización de la robustez, pero se realizó cambiando
la lámpara para demostrar que no existen cambio en las absorbancias.

4.5 MATERIAL Y MÉTODO

4.5.1 MATERIALES PARA RECOLECTAR LA INFORMACIÓN
Consulta de USP 36 NF-31 Farmacopea de Estados Unidos Americano,
Reglamento Técnico Centroamericano RTCA 11:03.39.06 Productos Farmacéuticos:
Validación de Métodos Analíticos para la Evaluación de la calidad de los Medicamento,
ICH 2002, Validación de Métodos Analíticos, Asociación Española de Farmacéuticos
de la Industria (AEFI 2001) Validación de Métodos Analíticos, FDA (2010) Guía para
la industria: Pruebas de Disolución de Formas de Dosificación oral Solidas de
liberación Inmediata, Unión Aduanera 2004: Guía de Validación de Métodos Analíticos,
Hach Company 1999: Spectrophotometer, Instrument Manual, Farmacología: Manual
de Farmacología Básica y Clínica; y sitios web de internet
4.5.2 MATERIALES PARA PROCESAR LA INFORMACIÓN

El análisis se realizó haciendo uso de hojas de cálculo en Excel 2010 diseñadas
específicamente para tal fin, presentando la información obtenida a través de cuadros
y gráficos.
4.5.2.1 Tipos de fuentes de información primaria

Generada por el programa ChemStation versión B.04.02 Espectrofotómetro
Agilent 8453.

Validación del Método Espectrofotométrico para la Cuantificación de Tinidazol tabletas de 500 mg
4.6. DISEÑO EXPERIMENTAL (METODOLOGÍA ANALÍTICA GENERAL)
4.6.1 MÉTODO ANALÍTICO POR ESPECTROFOTOMETRÍA UV-VISIBLE

4.6.1.1 Condiciones del espectrofotómetro
 Equipo : Espectrofotómetro
 Marca : Agilent
 Modelo : 8453
 Detector : Detector de Arreglo de Diodo (DAD)
 Celda : Cuarzo 1 cm.
 Longitud de onda analítica : 276 nm
 Rango de espectro : 200-400 nm
4.6.1.2 Condiciones del ensayo de disolución (disolutor)

 Marca : Hanson Resord
 Medio de Disolución : HCl 0.1 N
 Volumen de Disolución : 900 mL
 Aparato USP : 2 Paletas
 Revoluciones por minuto : 75 RPM
 Temperatura : 37.5º C
 Tiempo de Prueba : 45 min
 Volumen tomado : 10 mL
4.6.2. PROGRAMACIÓN DEL EQUIPO DE DISOLUCIÓN

Para la disolución de tinidazol tableta de 500 mg se utilizó un disolutor Hanson
Resord, de 8 estaciones de las cuales se usaron solamente 6, con vasos de 1000 mL
de capacidad, se programaron las condiciones en el disolutor según el método de
estudio y una vez estabilizada la temperatura en cada una de las estaciones del
disolutor se inicia con el proceso.
Yeltsin Ramón Ruiz Blandón-Moisés David Paizano Hernández Página 30

4.7 PREPARACIÓN DE LAS SOLUCIONES DE TRABAJO

Nota: El Laboratorio Nacional de Control de Calidad de Medicamentos del
Ministerio de Salud, aseguro que el método empleado por ellos para el control de
calidad de la molécula de Tinidazol bajo la presentación de tabletas es muy selectivo,
por lo que las muestras no fueron sometidas a condiciones drásticas como: hidrólisis
ácida HCl 3 N, hidrólisis básica NaOH 3 N, oxidación H2O2, de igual manera no se
realizó el estudio de estabilidad, por falta de reactivos, factores económicos y tiempo
programado para realizar dicha investigación.
4.7.1 PREPARACIÓN DE SOLUCIONES REACTIVAS

4.7.1.1 Ácido clorhídrico (HCL 0.1 N)
Con ayuda de una probeta de 1000 mL se midieron, 1000 mL de agua destilada
que fueron transferidas a un matraz aforado de 2000 mL limpio y seco, al cual se le
adicionaron 17 mL de ácido clorhídrico concentrado medidos con una probeta de 20
mL; se agitó por 5 minutos hasta homogenizar la solución posteriormente se aforó con
agua destilada hasta los 2000 mL.
4.7.1.2 Preparación del estándar de tinidazol para la curva de calibrado

En la preparación de la solución madre; se utilizó un estándar secundario (ES)
tinidazol base procedente de laboratorio Pfizer, con un grado de pureza de 99.9%
según certificado de análisis mostrado por el LNCCM.
Se pesó con exactitud 20.05 mg, multiplicándose por el valor de la pureza

declarada en la etiqueta del estándar para obtener el valor verdadero de tinidazol base
20.03 mg que se transfirió inmediatamente a un matraz volumétrico de 100 mL de color
ámbar, y se disolvió con HCl 0.1 N, hasta la marca de aforo y se sonificó por 5 minutos.

20.05 𝑚𝑔 100% 20.05 𝑚𝑔 𝑥 99.9%

=𝑋= = 22.03 mg de principio activo.
𝑋 99.9% 100.0%
22.03 𝑚𝑔
= 0.2003 𝑚𝑔/𝑚𝐿 Concentración madre
100 𝑚𝐿
Luego se prepararon a partir de la solución madre las cincos concentraciones

para la curva de calibrado, siendo de 32, 36, 40, 44, 48, µg/mL respectivamente. Las
cuáles fueron aforadas en matraces de 25 mL, con el mismo disolvente (HCl 0.1 N) y
se agitaron de forma manual por 5 minutos. Posteriormente fueron leídos uno a uno
en sentido creciente de concentración en el equipo y por triplicado a una longitud de
onda de 276 nm.
Figura 4.7.1.2.1. Presentación esquemática de la preparación de la curva de

calibrado de estándar de Tinidazol
20 𝑚𝑔
≅ 0.2 𝑚𝑔/𝑚𝐿
100 𝑚𝐿
4 𝑚𝐿 4.5 𝑚𝐿 5 𝑚𝐿 5.5 𝑚𝐿 6 𝑚𝐿
25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿
0.032*1000 0.036*1000 0.040*1000 0.044*1000 0.048*1000
= 32 μg/mL = 36 μg/mL = 40 μg/mL = 44 μg/mL = 48 μg/mL

4.7.1.3 Preparación de las muestras de tinidazol tabletas de 500 mg
4.7.1.3.1 Preparación de solución madre de tinidazol tabletas de 500 mg
La cantidad declarada de Tinidazol por cada tableta es de 500 mg, la muestra

se preparó considerando la curva de calibrado, tomando el punto medio de la misma
para obtener una concentración del 100% del principio activo. Para obtener una
muestra representativa se seleccionaron aleatoriamente 10 tabletas de 500 mg, siendo
pesada individualmente cada tableta para obtener su peso promedio, posteriormente
se pulverizó hasta obtener un polvo fino y homogéneo, que facilitó su disolución. De la
muestra pulverizada se pesó en papel parafinado exactamente la cantidad de 24.15
mg equivalente a 20 mg de principio activo, luego se transfirió a un matraz aforado de
100 mL, seguidamente se disolvió con HCl 0.1 N hasta la marca de aforo, posterior a
esto se sonificó por 5 minutos, luego se procedió a filtrar en papel filtro Whatman # 40
desechando los primeros 5 mL del filtrado.
603.75 𝑚𝑔 (𝑐𝑜𝑛𝑡𝑒𝑛𝑖𝑑𝑜) × 20 𝑚𝑔 (𝑝𝑟𝑖𝑛𝑐𝑖𝑝𝑖𝑜 𝑎𝑐𝑡𝑖𝑣𝑜)

𝐶𝑎𝑛𝑡𝑖𝑑𝑎𝑑 𝑑𝑒 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑒𝑛𝑖𝑑𝑜 𝑎 𝑝𝑒𝑠𝑎𝑟 = = 24.15 𝑚𝑔
500 𝑚𝑔 (𝑐𝑜𝑛𝑐𝑒𝑛𝑡𝑟𝑎𝑐𝑖𝑜𝑛 𝑑𝑒𝑐𝑙𝑎𝑟𝑎𝑑𝑎)
Se prepararon a partir de la solución madre 5 soluciones de muestra a las

siguientes concentraciones 32, 36, 40, 44, 48 µg/ mL (80%, 90%, 100%, 110%, 120%),
en matraces aforado de 25 mL, se le agregaron 10 mL de HCl 0.1 N seguidamente se
sonificó por 5 minutos, se dejó enfriar y se terminó de aforar. Posteriormente se analizó
por triplicado cada solución en sentido creciente de concentraciones a una longitud de
onda de 276 nm
.
En la especialidad farmacéutica los límites de especificaciones suelen
establecerse entre 95% - 105% a liberación, 90% - 110% a caducidad, respecto al
valor nominal, en materia prima los límites son de 98% - 102% o 99% - 101%. Debido
a esto se suele evaluar la linealidad de los métodos en un rango más amplio, las ICH
recomiendan del 80% - 120% (Aguirre, 2001)

Figura 4.7.1.3.2 Presentación esquemática de la preparación de la curva de

calibrado de tinidazol tableta de 500 mg
24.15 𝑚𝑔 20
≅ = 0.2 𝑚𝑔/𝑚𝐿
100 𝑚𝐿 100
4 𝑚𝐿 4.5 𝑚𝐿 5 𝑚𝐿 5.5 𝑚𝐿 6 𝑚𝐿
25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿
0.032*1000 0.036*1000 0.040*1000 0.044*1000 0.048*1000
= 32 μg/mL = 36 μg/mL = 40 μg/mL = 44 μg/mL = 48 μg/mL
4.8 PREPARACIÓN DEL MEDIO DE DISOLUCIÓN Y MUESTRAS

PARA EL TEST DE DISOLUCIÓN
4.8.1 ÁCIDO CLORHÍDRICO (HCl 0.1 N)
Con ayuda de una probeta de 1000 mL se midieron, 3000 mL de agua destilada
que fueron transferidas a un bidón plástico de 20 L limpio y seco, al cual se le
adicionaron 66 mL de ácido clorhídrico concentrado, con una probeta de 50 mL; se
agitó vigorosamente por 5 minutos hasta homogenizar la solución posteriormente se
adicionó agua destilada hasta alcanzar un volumen de aforo de 8 L.
4.8.2 Preparación de la solución muestra tinidazol para el ensayo de disolución

Se pesó individualmente 6 tabletas de tinidazol 500 mg en la balanza analítica
para obtener su peso promedio. Cuando el disolutor alcanzó la temperatura deseada
se procedió a colocar cada una de las tabletas en una estación del disolutor con un
minuto de diferencia entre cada una. Al terminar el tiempo de prueba se tomaron de
cada estación 10 mL de muestra filtrada, colocándolas en tubos de ensayo y que fueron
leídas por triplicado a una longitud de onda de 276 nm

4.9 VALIDACIÓN DEL MÉTODO DE CUANTIFICACIÓN DEL

PRINCIPIO ACTIVO
Según la USP 36 el presente trabajo corresponde con la categoría I en el cual se
evaluarán las características de desempeño analítico: especificidad, linealidad,
precisión, exactitud, se incluirán límite de detección (LOD), límite de cuantificación
(LOQ) y robustez. También corresponde a la categoría III, debido que se procede a
aplicar la prueba de disolución. (USP 36 <1225>, 2013)
4.9.1 PARÁMETROS DE VALIDACIÓN DEL SISTEMA PARA LA CUANTIFICACIÓN

DEL PRINCIPIO ACTIVO TINIDAZOL
4.9.1.1 Linealidad del sistema
Para la determinación de la linealidad del sistema, se preparó una curva de
calibrado a partir de 5 soluciones estándar con niveles de concentración diferentes de
32, 36, 40, 44, 48 µg/mL (80%, 90%,100%, 110%, 120%), cada una se analizó por
triplicado en sentido creciente a la concentración a una longitud de onda de 276 nm.
4.9.1.1.1 Criterio de aceptación de linealidad del sistema

Los parámetros que nos permitieron valorar la linealidad del sistema fueron los
siguientes:
Tabla No 4.9.1.1.1 Criterio de aceptación de linealidad del sistema
Parámetro Criterio de aceptación

 Coeficiente de correlación lineal (r) r ≥ 0.9900
 Coeficiente de determinación (r2) r2 ≥ 0.9980
 Pendiente b t pendiente > ttab
 Intercepto a t intercepto < ttab
 Intervalo de confianza para la pendiente El intervalo debe incluir el cero
 Intervalo de confianza para el intercepto El intervalo no debe incluir al cero
 Coeficiente de variación CV ≤ 2%
 Test de Cochran Gexp < Gtab
La distribución de los puntos debe
 Gráfico de residuales ser aleatoria y no debe de reflejar
ninguna tendencia

4.9.1.2 Precisión del sistema

La evaluación de la precisión del sistema se realizó en condiciones de repetibilidad.
4.9.1.2.1 Repetibilidad del sistema

En el caso de la repetibilidad se prepararon 10 diluciones determinando 10
lecturas de la concentración del punto medio del calibrado del estándar siendo de 40
µg/mL.
4.9.1.2.1.1 Criterio de aceptación

 Media.
 Desviación estándar.
 Coeficiente de variación ≤ 2%.
4.9.1.3 Limite de detección y límite de cuantificación

Ambos límites se determinaron matemáticamente según las ecuaciones 1 y 2.
4.9.1.4 Exactitud
La Conferencia Internacional sobre Armonización de los Requisitos Técnicos
para el Registro de Productos Farmacéuticos para Uso Humano (ICH), recomienda
llevar a cabo un total de nueve determinaciones que cubran el intervalo especificado
en el procedimiento.
Para ello se prepararon tres soluciones individuales de estándar, con

concentraciones finales de 32, 40 y 44 µg/mL correspondiente a los dos puntos
extremos y punto medio de la curva de calibrado, las cuales fueron leídas de manera
intercalada por triplicado cada uno de ellos a una longitud de onda de 276 nm.
4.9.1.4.1 Criterio de aceptación de exactitud

 Porcentaje de recuperación: tableta 90.0% - 110.0%
 Homogeneidad de variancias (Test Cochran): Gexp< Gtab
 Test de t Student: texp < ttab

4.10 PARÁMETROS DE VALIDACIÓN DEL MÉTODO PARA LA

CUANTIFICACIÓN DEL ACTIVO TINIDAZOL 500 MG
4.10.1 LINEALIDAD DEL MÉTODO

Al igual que en la linealidad del sistema se preparó una curva de calibrado con 5
disoluciones a partir de las muestras de tinidazol previamente homogenizadas como
en el inciso 4.7.1.3.1 para obtener las concentraciones finales de 32, 36, 40, 44, 48
µg/mL (80, 90, 100, 110, 120 %) . Cada una se analizó por triplicado a una longitud de
onda 276 nm.
Tabla No 4.10.1.1 Criterio de aceptación de linealidad del método

Parámetro Criterio de aceptación
 Coeficiente de correlación lineal (r) r ≥ 0.9900
 Coeficiente de determinación (r2) r2 ≥ 0.9980
 Pendiente b t pendiente > ttab
 Intercepto a t intercepto < ttab
 Intervalo de confianza para la pendiente El intervalo debe incluir el cero
 Intervalo de confianza para el intercepto El intervalo no debe incluir al cero
 Coeficiente de variación CV ≤ 2%
 Test de Cochran Gexp < Gtab
La distribución de los puntos debe

 Gráfico de residuales
ser aleatoria y no debe de reflejar
ninguna tendencia
4.10.2 PRECISIÓN DEL MÉTODO

4.10.2.1 Repetibilidad del método
Esta prueba se realizó analizando la muestra en un mismo laboratorio, bajo la
mismas condiciones de operación por el mismo analista, en un período corto tiempo
con los mismos aparatos y reactivos. Se prepararon 10 soluciones de muestra al 100
%, según como se indica en el inciso 4.7.1.3.1 y se analizaron uno a uno a una longitud
de onda de 276 nm.

4.10.2.1.1 Criterios de aceptación de repetibilidad

 Media
 Desviación estándar
 Coeficiente de variación ≤ 2%
4.10.2.2 Precisión intermedia

La precisión intermedia se realizó por dos analistas en dos días diferentes. Por
cada analista se prepararon 6 soluciones de muestras independientes al 100 % como
se indica en el inciso 4.7.1.3.1.
4.10.2.2.1 Criterios de aceptación de la precisión intermedia

 Coeficiente de variación global ≤ 2%.
 Análisis de la varianza con el test de Fischer Fexp < Ftab
4.10.3 ROBUSTEZ
La evaluación de la robustez se realizó con una sola modificación a las
condiciones normales de trabajo, como fue el cambio de la lámpara
espectrofotométrica, por una nueva. No se realizaron modificaciones de longitud de
onda, medio de disolución, temperatura y concentración, debido que este método fue
desarrollado por el Laboratorio Nacional de Control de Calidad de Medicamentos
(LNCCM) del Ministerio de Salud, el cual durante el desarrollo del método se realizaron
todas las posibles modificaciones, concluyendo que las condiciones evaluadas en
nuestro trabajo son adecuadas para el análisis.
Dentro de las disposiciones del LNCCM, decidieron cambiar la lámpara por una
nueva para verificar que el método sigue siendo robusto y comprobar que no existen
variaciones en los resultados.

Para este parámetro se preparó una solución muestra al 100 % siguiendo el

procedimiento escrito en 4.7.1.3.1. Se determinó el porcentaje promedio recuperado,
el coeficiente de variación y la diferencia absoluta para cada longitud de onda.
4.10.3.1 Criterios de aceptación

 Coeficiente de variación global ≤ 2%
4.11 TEST DE DISOLUCIÓN
Para la prueba de disolución se prepararán las condiciones del método como se

indica en el inciso 4.8.2 posteriormente se procedió a preparar el medio de disolución
como se indica en el inciso 4.8.1.
4.11.1 CRITERIO DE ACEPTACIÓN
 Valor de Q para 45 minutos; Q no debe ser menor del 75 % en 45 min

4.12 REACTIVOS, EQUIPO Y MATERIALES

Tabla No 4.12.1 Reactivos
Reactivos
Fórmula Fecha de
Nº Nombres Marca Grado Lote Procedencia
Química vencimiento
Agua
1 Bidestilada H2O - Analítica - LNCCM -
Ácido
2 HCl Merck Reactivo 121494 SINTER Agosto-2017
Clorhídrico
Estándar
Tinidazol 003120
Base Estándar Laboratorios
3 C8H13N3O4S Pfizer -Qes- Junio -2016
Pureza Secundario Pfizer
17
99.9%

Tabla No 4.12.2 Materiales

Clase/
Cantidad Materiales Capacidad Marca
Tolerancia
Recipiente
1 graduado 20 L Nalgine -
plástico
3 Matraz aforado 2000 mL Pyrex A/ ± 0.4 mL
Matraz ámbar
6 100 mL Pyrex A/ ± 0.1 mL
aforado
Matraz ámbar
6 50 mL Pyrex A/ ± 0.1 mL
aforado
Matraz ámbar
20 25 mL Pyrex A/ ± 0.04mL
aforado
6 Beaker 100 mL Pyrex A
6 Beaker 50 mL A
2 Mortero y pilón - - -
Espátula de
2 - - -
acero inoxidable
Filtro para
6 10 micron Hanson Resord P/N 27/101-091
disolutor
Pipeta
1 10 mL A/±0.01mL
volumétrica
2 Probeta 10 mL Pyrex A

Tabla No 4.12.3 Equipos
Equipos
Muestra de
Nº Nombres Marca Modelo Nº Serie verificación de
calibración
1 Balanza Analítica Ohaus Explorer EX 224 B441115826 3 FEB 2015
2 Ultrasonificador Aquasonic P250T 0802-10-10 .
Espectrofotómetro UV-
Visible
3 Agilent 8453 CN02501472 08 DIC 2014
Detector de arreglo de
Diodo DAD
4 Disolutor Hanson Resord SR8Plus 0802-10-10Z -
Nota: Los equipos instrumentales están verificados y calibrados por la empresa

ORGOMA garantizando el cumplimiento de la norma NTN-04-001-05 “Requisito
Generales para la Competencia de Laboratorios de Ensayo y de Calibración”, Se
anexa en este trabajo la carta extendida por el LNCCM. Anexo No 1.

CAPÍTULO V
ORGANIZACIÓN Y
ANÁLISIS DE LOS
RESULTADOS
5.1 TÉCNICA ESPECTROFOTOMÉTRICA UV-VISIBLE CON

DETECTOR DE ARREGLO DE DIODO (DAD) Y CELDA DE CUARZO
DE 1 CM
Todos los parámetros se evaluaron con un nivel de confianza de 95%.
5.1.1 PARÁMETROS DEL SISTEMA

5.1.1.1 Adecuación del sistema
Se verificó la adecuación del sistema analítico observando su capacidad para
detectar el analito de forma inequívoca sin interferencias de otro compuesto y/o
sustancias que puedan estar presentes en una misma muestra. Para comprobar la
adecuación del sistema, se preparon diez soluciones estándar al 100 % y se realizaron
10 lecturas a una longitud de onda de 276 nm.
Tabla No 5.1.1.1.1 Tratamiento estadístico de la aptitud del sistema

Aptitud del Sistema
No de Concentración 40 µg/mL
Absorbancias
muestra (100%)
1 100 0.95894
2 100 0.95855
3 100 0.95801
4 100 0.95862
5 100 0.95956
6 100 0.96432
7 100 0.95885
8 100 0.95965
9 100 0.95986
10 100 0.95694
Promedio 0.95933
Desviación estándar 0.00195
CV % 0.00203
Fuentes: Chemstation Software Agilent 8453 series y Programa Microsoft Excel 2010
El ensayo de adecuación del sistema cumple con las especificaciones

establecidas, debido a que las absorbancias de las muestras registraron un coeficiente
de variación menor al 2%.

5.1.1.2 Linealidad del sistema

Para la determinación de la linealidad se prepararon 5 soluciones estándar a
concentraciones de 32, 36, 40, 44, 48 µg/mL (80%, 90%, 100%, 110%, 120%), como
se indica en el inciso 4.7.1.2, se realizaron análisis por triplicado de cada solución a
una longitud de onda de 276 nm obteniendo los siguientes resultados:
Tabla N° 5.1.1.2.1 Evaluación de la curva de calibración del sistema de tinidazol
Linealidad del Sistema de Tinidazol Base

F = Y/X
X Y Desviación
Factor de Promedio Varianza
(Concentración) (Abs.) Estándar
Respuesta
0.7743 0.0097
32 µg/mL
0.7821 0.0098 0.00972 0.00005 2.5 x 10-09
(80%)
0.7769 0.0097
0.8673 0.0096
36 µg/mL
0.8740 0.0097 0.00965 0.00005 2.8 x 10-09
(90%)
0.8647 0.0096
0.9614 0.0096
40 µg/mL
0.9650 0.0096 0.00965 0.00003 8.8 x 10-10
(100%)
0.9673 0.0097
1.0616 0.0097
44 µg/mL
1.0611 0.0096 0.00966 0.00002 4.3 x 10-10
(110%)
1.0653 0.0097
1.1578 0.0096
48 µg/mL
1.1555 0.0096 0.00965 0.00002 4.2 x 10-10
(120%)
1.1604 0.0097
Coeficiente Correlación 0.9997
Coeficiente Determinación 0.9994
Intercepto 0.0121
Pendiente 0.0095
En la tabla 5.1.1.2.1 se reflejan los datos proporcionados por el software

Chemstation Agilent 8453 series, para la verificación de estos datos se procedieron a
calcular estadísticamente la pendiente (b), el intercepto (a), el coeficiente de
determinación (r) y el coeficiente de correlación (r2).

Coeficiente de correlación
∑𝑛𝑖[(𝑥𝑖 − 𝑋̅) (𝑦𝑖 − Ӯ)]

𝑟= = 𝟎. 𝟗𝟗𝟗𝟕 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟑)
√ ∑𝑖( 𝑥𝑖 − 𝑋̅ )2 ∑𝑖(𝑦𝑖 − Ӯ )2
Coeficiente de determinación (r2)
𝑟 2 = 0.99972 = 𝟎. 𝟗𝟗𝟗𝟒 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟒)
A continuación se presenta el calibrado y la ecuación de la recta, en ella se

observa una proporcionalidad entre concentración y las absorbancias.
Gráfico No 5.1.1.2.1.1 Curva de calibración en absorbancias de Tinidazol en UV-

visible
Curva de calibración del sistema de tinidazol
1,2000
1,1000
Absorbancias
1,0000
0,9000 y = 0,0095x + 0,0145

R² = 0,9994
0,8000
0,7000
70 80 90 100 110 120 130
Concentración µg/mL
Fuente: Espectrofotómetro UV-Vis Agilent 8453

5.1.1.2.2 Ecuación de la recta de la linealidad en espectrofotometría UV-visible

Por lo tanto la ecuación de la recta de la curva de calibración, se expresa de la
siguiente manera 𝑦 = 0.0095𝑥 + 0.0121 con 𝑟 = 0.99970 y 𝑟2 = 0.9994.
La relación entre ambas variables se expresa matemáticamente como una recta

de regresión del tipo y = b x + a.
Dónde:
b: es la pendiente
x: es la concentración del analito
a: es la ordenada en el origen, obtenida por un método de ajuste. (Aguirre, 2001)
Se utilizó el método de los mínimos cuadrados, que consiste en ajustar estos

parámetros para minimizar la suma de los cuadrados de los residuales y obtener
funciones lineales. (Skoog, 2003)

Tabla N° 5.1.1.2.2.1 Análisis de los mínimos cuadrados en los datos de la linealidad del sistema de tinidazol .
X
Y ̅) ̅ ) (𝒚𝒊 − Ӯ) ei = (ŷ-y )
Conc. (𝒙𝒊 − 𝑿 ̅ )𝟐
( 𝒙𝒊 − 𝑿 (𝒚𝒊 − Ӯ) (𝒚𝒊 − Ӯ)2 (𝒙𝒊 − 𝑿 ∑ 𝒙𝟐𝒊 Ŷ = b* x + a
Abs. residuales
(µg/mL)
32 0.7743 -20.0000 400.0000 -0.1920 0.0369 3.8403 6400 0.7755
32 0.7821 -20.0000 400.0000 -0.1842 0.0339 3.6843 6400 0.7755 0.0012
32 0.7769 -20.0000 400.0000 -0.1894 0.0359 3.7883 6400 0.7755
36 0.8673 -10.0000 100.0000 -0.0990 0.0098 0.9901 8100 0.8709
36 0.8740 -10.0000 100.0000 -0.0923 0.0085 0.9231 8100 0.8709 0.0036
36 0.8647 -10.0000 100.0000 -0.1016 0.0103 1.0161 8100 0.8709
40 0.9614 0.0000 0.0000 -0.0049 0.0000 0.0000 10000 0.9663
40 0.9650 0.0000 0.0000 -0.0013 0.0000 0.0000 10000 0.9663 0.0049
40 0.9673 0.0000 0.0000 0.0010 0.0000 0.0000 10000 0.9663
44 1.0616 10.0000 100.0000 0.0953 0.0091 0.9529 12100 1.0617
44 1.0611 10.0000 100.0000 0.0948 0.0090 0.9479 12100 1.0617 0.0001
44 1.0653 10.0000 100.0000 0.0990 0.0098 0.9899 12100 1.0617
48 1.1578 20.0000 400.0000 0.1915 0.0367 3.8297 14400 1.1572
48 1.1555 20.0000 400.0000 0.1892 0.0358 3.7837 14400 1.1572 -0.0006
48 1.1604 20.0000 400.0000 0.1941 0.0377 3.8817 14400 1.1572
Σ=1500.0 14.4947 0.0000 Σ=3000.00 0.0000 Σ=0.2733 28.6280 Σ=153000
𝑋̅=100.0 0.9663 0.0000 200.00 0.0000 0.0182 1.9085

Gráfico No 5.1.1.2.2.1.1 Análisis de residuales de la linealidad del sistema
Gráfico de los residuales linealidad del sistema de tinidazol

0,01
Residuos
0,005
0
60 70 80 90 100 110 120 130 140
-0,005
-0,01
Concentración %
La distribución de los puntos es aleatoria y no refleja ningún patrón demostrando

que son independientes o no correlacionados, como podemos observar en el gráfico
de residuales se aprecia que para el método analítico por espectrofotometría UV-
visible se ajusta bien a los datos, por lo tanto, el sistema es válido.
La ecuación utilizada para ŷ fue la siguiente

ŷ =𝑏∗𝑥+𝑎 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟓)
Conviene definir los valores de las variables Sxx, Syy y Sxy para encontrar la
pendiente y el intercepto:
1. Sxx = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de los

valores individuales de x.
(∑ 𝒙𝒊 )𝟐 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟔)
̅)𝟐 = ∑ 𝒙𝟐𝒊 −
𝑺𝒙𝒙 = ∑(𝒙𝒊 − 𝒙
𝑵
Dónde:
𝒙𝒊 = pares de datos individuales de x
x= valor medio o promedio de las variables (x)
𝑆𝑥𝑥 = ∑(𝑥𝑖 − 𝑥̅ )2 = 𝟑𝟎𝟎𝟎. 𝟎𝟎𝟎𝟎

2. S yy = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de

los valores individuales de y.
(∑ 𝑦𝑖 )2 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟕)
𝑆𝑦𝑦 = ∑(𝑦𝑖 − 𝑦̅ )2 = ∑ 𝑦𝑖2 −
𝑁
Dónde:
yi = pares de datos individuales de y
̅ = valores medio o promedios de las variables (y)
𝒚
210.0963
𝑆𝑦𝑦 = ∑(𝑦𝑖 − 𝑦̅)2 = 14.2798 − = 𝟎. 𝟐𝟕𝟑𝟑
15
3. Sxy = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de

los valores individuales de x e y.
∑ 𝑥𝑖 ∑ 𝑦𝑖
𝑆𝑥𝑦 = ∑(𝑥𝑖 − 𝑥̅ , )(𝑦𝑖 − 𝑦̅ ) = ∑ 𝑥𝑖 𝑦𝑖 −
𝑁 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟖)
∑ 𝑥𝑖 ∑ 𝑦 𝑖
𝑆𝑥𝑦 = ∑ 𝑥𝑖𝑦𝑖 − 𝑁
21742.05
Sxy= 1478.09 − = 28.6280
15
Para encontrar la ecuación de la recta es necesario encontrar la pendiente y
el intercepto a partir de los datos calculados de la suma de los cuadrados.
Ecuación de la pendiente (b):

𝑆𝑥𝑦
𝑏= (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟗)
𝑆𝑥𝑥
28.6276
𝑏= = 𝟎. 𝟎𝟎𝟗𝟓
3000
Ecuación del intercepto (a):
𝑎 = 𝑦̅ − 𝑏𝑥̅ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟎)
𝑎 = 0.9663 − (0.009543 ∗ 100.0000) = 𝟎. 𝟎𝟏𝟐𝟏

Gráfico No 5.1.1.2.2.1.2 Linealidad del sistema de Tinidazol en espectrofotometría

UV-visible
Linealidad del Sistema de Tinidazol

1,2000
Absorbancias
1,1000
1,0000
0,9000 y = 0,0095x + 0,0145
R² = 0,9994
0,8000
0,7000
70 80 90 100 110 120 130
Concentración µg/mL
Fuentes: Chemstation Software Agilent 8453 series
Según el valor de la pendiente, la sensibilidad del método es de 0.0095 y el

sesgo del método es de 0.0121 indicado por el valor del intercepto con r = 0.9997
y r2 = 0.9994 (Boris Duffau et al., 2010)
5.1.1.2.3 Test de linealidad: test de student para la pendiente (b) en UV-

visible
Para demostrar que existe una pendiente significativamente distinta de cero
se aplicó la prueba de t Student, para n-2 grados de libertad = 13 en un nivel de
confianza del 95% y con un grado de significación α= 0.05 (α/2= t0.975, 13), el valor
crítico en la tabla de la distribución T-Student es 2.160.
Para esta prueba debe de cumplirse que texp > ttab.
Hipótesis:
H0: μ1=0
H1: μ1≠0
Dónde:
µ1= corresponde a la pendiente

Para ello se utilizó la siguiente fórmula:

|𝒃|
𝒕𝒆𝒙𝒑 = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟏)
𝒔𝒃
Dónde:
|b|: Valor absoluto de la pendiente
Sb: Desviación estándar de la pendiente
Para calcular el texp es necesario calcular primero la desviación estándar de la
regresión (Sr) para poder obtener la desviación estándar de la pendiente Sb.
Desviación estándar de la regresión (Sr)
𝑆𝑟 = √ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟐)
𝑁 −2
0.2733 − ((0.0095425)2 ∗ 3000)

𝑆𝑟 = √
15 − 2
0.2733−0.273178
𝑆𝑟 = √
13
0.000122
𝑆𝑟 = √ = √9.3846 𝑥 10−06 = 𝟎. 𝟎𝟎𝟑𝟎𝟔𝟑𝟒 ≅ 𝟑. 𝟎𝟔𝟑𝟒 𝒙 𝟏𝟎−𝟎𝟑
13
Desviación estándar de la pendiente (Sb)

Hipótesis:
H0: texp < ttab
H1: texp > ttab
Para esta prueba debe de cumplirse que texp>ttab

2
𝑆𝑏 = √𝑆𝑟 ⁄𝑆 = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟑)
𝑥𝑥
(0.0030634)2⁄
𝑆𝑏 = √ 3000.000 = √3.12 𝑥 10
−09 = 𝟓. 𝟓𝟗𝟐𝟗 𝒙 𝟏𝟎−𝟎𝟓

Se obtiene:
|𝑏| 0.0095425
𝑡𝑒𝑥𝑝 = = = 𝟏𝟕𝟎. 𝟔𝟏𝟖𝟏
𝑆𝑏 5.5929 𝑥 10−05
Se comprueba estadísticamente que existe una pendiente diferente de cero,

obteniendo el texp mayor que al ttab, siendo el texp de 𝟏𝟕𝟎. 𝟔𝟏𝟖𝟏 > ttab 2.160, lo que
demuestra que existen diferencias significativas.
El intervalo de confianza confirma lo demostrado por el test de Student la

pendiente no incluye el cero. El intervalo de confianza (IC) para la pendiente se calcula:
ICb = b ± t * Sb = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟒)

0.0095425 ± 2.160 *5.5929 𝑥 10−05
0.0095425 ± 1.2081 𝑥 10−04
𝟗. 𝟒𝟐𝟏𝟕 𝒙 𝟏𝟎−𝟎𝟑 a 𝟗. 𝟔𝟑𝟑𝟑 𝒙 𝟏𝟎−𝟎𝟑
5.1.1.2.4 Test de proporcionalidad: test de Student para el intercepto (a) en UV-

visible
Mediante este test se evaluó que la recta pasa por el origen de coordenadas,
determinando que la variable independiente (x) es significativamente distinta de cero.
Cabe mencionar, que el valor crítico en la tabla de la distribución T-Student es 2.160,
para n-2 grados de libertad y un grado de significancia de ά-0.05
Para esta prueba debe de cumplirse que texp(a) < ttab

Hipótesis:
H0: texp(a) > ttab
H1: texp(a) < ttab

|𝑎|
𝑡𝑎 = ( 𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟓)
𝑆𝑎

|𝑎|= valor absoluto del intercepto
𝑆𝑎 =Desviación estándar del intercepto
Se calculó primero la desviación estándar del intercepto:
1
Sa = Sr * √ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟔)
N-(∑ xi )2 / ∑ x2i
1
𝑆𝑎 = 0.0030634 ∗ √15−(2250000/153000)
1
𝑆𝑎 = 0.0030634 ∗ √
15 − 14.70588235
1
𝑆𝑎 = 0.0030634 ∗ √
0.294118
𝑆𝑎 = 0.0030634 ∗ √3.399996
𝑆𝑎 = 0.0030634 ∗ 1.843908
𝑺𝒂 = 𝟎. 𝟎𝟎𝟓𝟔𝟒𝟖𝟔 ≅ 𝟓. 𝟔𝟒𝟖𝟔 𝒙 𝟏𝟎−𝟎𝟑
𝑎 0.0121
𝑡exp(𝑎) = = = 𝟐. 𝟏𝟒𝟐𝟏𝟐𝟒
𝑆𝑎 0.0056486
Se cumplió que texp (a) < ttab. Para calcular el ttab de dos cola, para n-2 grados de
libertad = 13 en un nivel de confianza del 95% y con un grado de significación α = 0.05
(α/2= t0.95, 13), el valor crítico en la tabla de la distribución T-Student es 2.160, siendo
texp (a) 2.142124 < ttab 2.160; se comprueba que la variable x es diferente de cero y que
la recta pasa por el origen de coordenadas.
El intervalo de confianza confirma lo demostrado por el test de Student donde el

intercepto incluye el cero. El intervalo de confianza (IC) para el intercepto se calcula:

ICa = a ± t * Sa (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟕)

0.0121 ± 2.160 * 0.0056486
0.0121 ± 0.01220
−𝟎. 𝟎𝟎𝟎𝟏 a 0.0243
5.1.1.2.5 Test G de Cochran varianza de los factores de respuesta

La prueba de Cochran se realizó para determinar si el factor de concentración
tiene influencia en la variabilidad de las respuestas
𝐺𝑒𝑥𝑝 = ∑ 𝑆𝑖2
(𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟖)
Dónde:
𝑆 2 𝑚á𝑥𝑖𝑚𝑎 : Varianza máxima de los grupos
∑ 𝑆𝑖2 : Sumatoria de la varianza de cada grupo
El valor crítico de Cochran se determina C= (K,)

Dónde:
K; es el número de grupo de datos o números de réplicas
es el número de grados de libertad definido como nmax- 1, donde nmax es el mayor
de los tamaños de la muestra
; el nivel de significancia es usualmente 0.05
El criterio de aceptación: si el 𝐺𝑒𝑥𝑝 < 𝐺 tab significa que las varianzas de las
concentraciones son homogéneas, es decir que el factor de concentración no influye
estadísticamente en la variabilidad de los resultados.

5.1.1.2.5.1 Prueba de homogeneidad de las varianzas

Tabla No 5.1.1.2.5.1 Test G de Cochran Varianza de los factores de respuesta
del sistema de Tinidazol
Desviación
Concentración Absorbancia Factor Promedio Varianza
estándar
(µg/ml) (276 nm) respuest de (S2) de
(S) de
Variable x Variable y a f(y/x) f(y/x) f(y/x)
f(y/x)
0.7743 0.0097
32µg/mL 2.46 x 10-09
0.7821 0.0098 0.00972 0.00005
(80%)
0.7769 0.0097
0.8673 0.0096
36µg/mL
0.8740 0.0097 0.00965 0.00005 2.84 x 10-09
(90%)
0.8647 0.0096
0.9614 0.0096
40µg/mL 8.84 x 10-10
0.9650 0.0096 0.00965 0.00003
(100%)
0.9673 0.0097
1.0616 0.0097
44µg/mL 4.35 x 10-10
1.0611 0.0096 0.00966 0.00002
(110%)
1.0653 0.0097
1.1578 0.0096
48µg/mL 4.17 x 10-10
1.1555 0.0096 0.00965 0.00002
(120%)
1.1604 0.0097
Promedio 0.00967
Desviación Estándar (S) 0.00004 ΣSi2 = 7.0360 x 10-09
CV (%) 0.4136%
Homogeneidad de las varianzas

La homogeneidad de varianza se comprobó aplicando el test de Cochran.
La hipótesis es:
H0 = Gexp < Gtab
H1 = Gexp ˃ Gtab
El valor de Gtab de la distribución de Cochran para un grado de significación (α)=

0.05 a 5 niveles de concentración y 3 grados el valor es de 0.683.

𝑺𝟐 𝒎á𝒙𝒊𝒎𝒂
𝑮𝒆𝒙𝒑 =
∑ 𝑺𝟐𝒊
S2 máxima 2.84 𝑥 10−09

𝐺𝑒𝑥𝑝 ∑ 𝑆𝑖2
= =0.4036
7.0360 𝑥 10−09
Al comparar el valor experimental con el valor crítico, se obtuvo un G exp menor

que el Gtab, por tanto se cumple la hipótesis donde se comprueba que X o factor de
repuesta no tiene influencia en la variabilidad de los resultados de f (y/x) 0.4036 <
0.683.
5.1.1.2.6 Coeficientes de variación de los factores de respuestas
Esta prueba permitió relacionar las lecturas o respuestas en área y la

concentración. Se recomienda obtener valores menores al 2% para ello se aplicó la
siguiente ecuación:
𝑆
𝐶𝑉 = ∗ 100 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟗)
𝑋̅
Dónde:
𝑆 = Desviación estándar
𝑋̅= media de los resultados
Así se tiene que, la desviación estándar de los factores de respuesta es de 0.00004 y

la media global es de 0.00967 por tanto:
0.00004
𝐶𝑉 = ∗ 100 = 𝟎. 𝟒𝟏𝟑𝟔%
0.00967
Al aplicar la prueba de linealidad mediante los coeficientes de variación de los

factores de respuesta CV se obtuvo como resultado un coeficiente de variación CV ˂
2.0%, demostrándose la adecuada linealidad del sistema, de acuerdo con los límites
establecidos.

5.1.1.2.7 Análisis de varianza
El análisis de la varianza de la regresión (ANOVA) es un método que se emplea

para comparar resultados obtenidos por distintos métodos, laboratorios, analistas, etc.,
cuando el número de medias obtenidas es superior a dos. También permite separar
las contribuciones de uno o más factores a la varianza global del sistema (Aguirre,
2001)

Tabla No 5.1.1.2.7.1 Análisis de la varianza de los factores de respuesta del sistema de tinidazol en
espectrofotometría UV-Visible
Análisis de Varianza Análisis de Residual Análisis de la Regresión

̂
𝒚
Concentración ̂ )𝟐
(𝒚𝒊 − 𝒚 ̂ − 𝒚
𝒚 ̅ 𝟐
Absorbancias ̂
𝒚𝒊 − 𝒚 ̂− 𝒚
(𝒚 ̅)
(µg/mL) ̂ = 𝒃 ∗𝒙+𝒂
𝒚
0.7743 0.7755 -0.0012 1.35 x 10-06 -0.19 3.64 x 10-02
32 µg/mL 3.64 x 10-02
0.7821 0.7755 0.0066 4.41 x 10-05 -0.19
(80%)
0.7769 0.7755 0.0014 2.07 x 10-06 -0.19 3.64 x 10-02
0.8673 0.8709 -0.0036 1.29 x 10-05 -0.10 9.11 x 10-03
36 µg/mL
0.8740 0.8709 0.0031 9.69 x 10-06 -0.10 9.11 x 10-03
(90%)
0.8647 0.8709 -0.0062 3.83 x 10-05 -0.10 9.11 x 10-03
0.9614 0.9663 -0.0049 2.41 x 10-05 0.00 0.00
40 µg/mL
0.9650 0.9663 -0.0013 1.72 x 10-06 0.00 0.00
(100%)
0.9673 0.9663 0.0010 9.74 x 10-07 0.00 0.00
1.0616 1.0617 -0.0001 1.96 x 10-08 0.10 9.11 x 10-03
44 µg/mL
(110%) 1.0611 1.0617 -0.0006 4.10 x 10-07 0.10 9.11 x 10-03
1.0653 1.0617 0.0036 1.27 x 10-05 0.10 9.11 x 10-03
1.1578 1.1572 0.0006 4.01 x 10-07 0.19 3.64 x 10-02
48 µg/mL
1.1555 1.1572 -0.0017 2.78 x 10-06 0.19 3.64 x 10-02
(120%)
1.1604 1.1452 0.0152 2.30 x 10-04 0.18 3.20 x 10-02
𝑿 = 100.0 0.97 0.95 SCRES = 3.8144 x 10-04 SCREG = 2.6878 x 10-01
Σ=14.4947 vRES = 2.9342 x 10-05
Fuente: Programa de Microsoft Excel 2010

La ecuación utilizada para calcular ў, fue la siguiente

𝑦̂ = 𝑏 ∗ 𝑥 + 𝑎
Según (Aguirre, 2001), el análisis de la varianza se fundamentó en la suma de

cuadrados totales la cual está conformada por dos componentes la suma de cuadrados
de los residuales y la regresión SCT = SCRES + SCREG
Se calculó la Varianza residual (S2y.x) a partir de los datos de los mínimos

cuadrados, con la siguiente ecuación:
Varianza Residual
2 ∑(𝑦𝑖 −Ӯ)2
VRES = Sy,x = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟎)
n−2
2 0.00038144
VRES= Sy,x =
15−2
2
VRES= Sx,y = 𝟐. 𝟗𝟑𝟑𝟖 𝐱 𝟏𝟎−𝟎𝟓
SCT = SCRES + SCREG (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟏)
SCT = 3.8144 x 10-04 + 2.6878 x 10-01
SCT = 0.2692
Varianza de la Regresión
2 𝛴(𝑌𝑖−Ӯ)2
VREG= Sy∗ = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟐)
𝑁
2 2.6878 𝑥 10−01
VREG= Sy∗ = = 0.01792
15

Una vez realizada la homogeneidad de varianzas y calculó residuales se realizó

el cálculo de Fisher (F), donde debe de cumplirse que Fexp > F tab.
La Hipótesis es:
H0 = Fexp ˃ Ftab
H1 = Fexp < Ftab
VREG
F= (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟑)
VRES
0.01792
F= = 610.8119
2.9338 x 10−04
Por lo tanto Fisher será: 610.8119 > Ftab (0.05, 1, n-2) = 4.67 cumpliendo el criterio
de aceptación, demostrando la existencia de una pendiente diferente de cero.
Se validó la linealidad de la metodología del sistema, para lo cual se partió de

una solución concentrada de estándar de tinidazol, preparando una curva de calibrado
con cinco niveles de concentración del analito en el rango de trabajo de 80%-120%.
Con respecto a la evaluación de los coeficientes de determinación r2 y de
correlación r en el sistema demostraron correlación entre la concentración (%) y la
señal obtenida (Absorbancias).
Se aplicaron diferentes test estadísticos para demostrar la linealidad del sistema,

incluyendo el ajuste de la curva de calibración por el análisis de los mínimos
cuadrados, pudiéndose obtener los valores de la pendiente y el intercepto, aplicando
el t de Student para demostrar que existe diferencia significativa.
Con la aplicación del test de Cochran se demostró la homogeneidad de varianza.

Se realizó el análisis de la varianza de la regresión ANOVA, se evaluaron los residuos
y se determinó que estos son independientes y tienen distribución normal, presentando
homocedasticidad y que la relación entre concentración y absorbancias es lineal.

De igual manera se aplicó el test estadístico F de Fisher para verificar la

linealidad, bajo la evidencia muestral y con un nivel de confianza de 95%, no se
encontró diferencias significativas entre las concentraciones de los niveles estudiados,
obteniendo un valor de F de Fisher experimental mayor que el valor de F tabulado,
indicando regresión.
5.1.1.3 Precisión del sistema en espectrofotometría UV-VIS

Para la evaluación del parámetro de la precisión se trabajó con muestras de
estándar de Tinidazol con un grado de pureza de 99.9%; mediante la valoración de
condiciones de repetibilidad y precisión intermedia del sistema
5.1.1.3.1 Repetibilidad del sistema en espectrofotometría UV-VIS

La repetibilidad se realizó mediante la evaluación de 10 determinaciones, se
trabajó con la concentración media de trabajo de 40 µg/mL (100%), para ello se
determinaron valores de la media, desviación estándar, y los coeficientes de variación
en función del factor de respuesta
Tabla No 5.1.1.3.1.1 Evaluación estadística de repetibilidad del sistema de tinidazol
Datos del factor de

Concentración Factor de
No de Absorbancias respuesta f(y/x
40µg/mL Respuestas
lecturas (276 nm)
(100%) f=y/x
Media (S)
1 100 0.9714 0.0097
2 100 0.9708 0.0097
3 100 0.9734 0.0097
4 100 0.9737 0.0097
5 100 0.9742 0.0097
0.0097 1.2 x 10-05
6 100 0.9739 0.0097
7 100 0.9745 0.0097
8 100 0.9731 0.0097
9 100 0.9724 0.0097
10 100 0.9724 0.0097
CV% 0.1237%

5.1.1.3.1.1.1 Evaluación estadística para la repetibilidad del sistema en

espectrofotometría UV-visible
Los datos obtenidos se evaluaron con un tratamiento estadísticos con las

siguientes especificaciones, según valores de la tabla 5.1.1.3.1.1
 Media
∑ 𝑋𝑖
𝑋̅ = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟒)
𝑛
0.0973
𝑋̅ =
10
𝑋̅ = 0.0097
 Desviación estándar (S)
∑(𝑋𝑖 −𝑋)2
S=√ 𝒏−𝟏
(𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟓)
1.3362 𝑥 10−09
S= √ 9
S= √1.4846 𝑥 10−10
𝑺 = 0.000012
En la precisión en condiciones de Repetibilidad en función del factor de respuesta

se obtuvo una desviación estándar pequeña con un valor de 0.000012 indicando la
buena precisión del sistema.
 Coeficiente de variación (CV)

El coeficiente de variación (CV) nos indica la relación existente entre la desviación
de una muestra y su media. Al dividir la desviación típica por la media se convierte en
un valor de unidad de medida. (Skoog, 2003)
El coeficiente de variación entre los datos se calcula utilizando la siguiente ecuación

𝑆
𝐶𝑉 = ∗ 100
𝑋̅

0.000012
𝐶𝑉 = ∗ 100 = 0.1237%
0.0097
Se aprecia, que el CV% está por debajo de 2 % obteniendo un valor de 0.1237%,
indicando que la técnica cumple con los parámetros establecidos, siendo el ensayo
repetitivo y a la vez aceptable.
5.1.1.3.2 Límite de detección (LOD)

3.3σ
LOD = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏)
m
σ = es la desviación estándar de la respuesta de la muestra
m = es la pendiente de la curva de calibración para la linealidad
3.3 x 0.000012
LOD =
0.0095425
3.96 x 10−05
LOD =
0.0095425
LOD = 0.0041 µg/mL
5.1.1.3.3 Límite de cuantificación (LOQ)
10σ
LOQ = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐)
m
Dónde:
σ = Es la desviación estándar de la respuesta de la muestra.
m = Es la pendiente de la curva de calibración para la linealidad
10 x 0.000012
LOQ =
0.0095425
1.2 x 10−04
LOQ =
0.0095425
LOQ = 𝟎. 𝟎𝟏𝟐𝟓 μ𝐠/𝐦𝐋

5.1.1.4 Exactitud del sistema por espectrofotometría UV-visible

El parámetro de la exactitud, se evaluó a 3 concentraciones de trabajo de 32, 40 y 48 (µg/mL), con soluciones de
estándar primario de tinidazol, las cuales corresponden a los dos puntos extremos y el medio de la curva de calibración,
realizándose por triplicado cada punto de análisis obteniendo los siguientes resultados.
Tabla No 5.1.1.4.1 Evaluación de la Exactitud del sistema de tinidazol

Desviación
N0 de Concentración Absorbancias Factor de Promedio de Varianza (S2)
estándar (S) de
lectura (%) 276 nm repuesta F=Y/X F(Y/X) de F(Y/X)
F(Y/X)
1 0.7746 0.00968
2 32 µg/mL 0.7710 0.00964 0.00966 2.26 x 10-05 5.0917 x 10-10
3 (80%) 0.7728 0.00966
4 0.9740 0.00974
40 µg/mL
5 0.9714 0.00971 0.00972 1.86 x 10-04 3.4641 x 10-10
(100%)
6 0.9704 0.00970
7 1.1537 0.00961
48 µg/mL
8 1.1548 0.00962 0.00962 5.29238 x10-06 2.8009 x 10-11
(120%)
9 1.1537 0.00961
Promedio 𝒙̅ 0.00967
Desviación Estándar (S) 4.667 x 10-05 ΣSi2 = 8.8359 x 10-10
CV% 0.4828%

5.1.1.4.1.1 Evaluación estadística de exactitud del sistema en UV-Vis

A continuación se presenta los resultados de la tabla 5.1.1.4.1 donde se reflejan
los valores obtenidos con respecto a la media y desviación estándar
 Media
∑ 𝑋𝑖 0.0870
𝑋̅ = = = 𝟎. 𝟎𝟎𝟗𝟔𝟕
𝑛 9
𝐒 = √∑𝐢(𝐱 𝐢 − 𝐱)𝟐 /(𝐧 − 𝟏)
1.74221 x 10−8
𝐒= √
8
𝐒 = 4.667 x 10-05
Test de proporcionalidad: G de Cochran

Dónde: Gexp < Gtab
𝑺𝟐 𝒎á𝒙𝒊𝒎𝒂
𝑮𝒆𝒙𝒑 =
∑ 𝑺𝟐𝒊
Dónde:
S2: varianza máxima de los grupos
∑ Si2 : Sumatoria de la varianza de cada grupo
𝑆 2 𝑚á𝑥𝑖𝑚𝑎 5.0917 x 10−10

= = 0.5762
8.8359 x 10−10
El valor de Gtab de la distribución de G de Cochran para un grado de significación

α= 0.05 a 3 niveles de concentración (k=3) y 2 grados de libertad, el valor crítico es de
0.966.

Al comparar el valor experimental con el valor crítico, se obtuvo un G exp menor que el
Gtab, por tanto se cumple la hipótesis donde se comprueba que X o factor de repuesta
no tiene influencia en la variabilidad de los resultados de f (y/x) 0.5762 < 0.966.
5.1.1.5 Exactitud del método de tinidazol en Espectrofotometría

Cálculos para determinar el porcentaje de recuperación de Tinidazol 500 mg, tableta
Cantidad de principio activo (p.a) que declara cada tableta 500 mg

Peso promedio de las tabletas (mg) 594.4 mg
Cantidad pesada en polvo 23.776 mg
Cantidad de principio activo (p.a) en la muestra pesada (mg) 20 mg
Para la realización de esta tabla se realizaron los siguientes cálculos.
cantidad pesada∗peso promedio de la tableta
Cantidad de p. a. en la muestra =
declaración de p.a en la tableta
20∗ 594.4 mg
Cantidad de p. a. en la muestra = = 𝟐𝟑. 𝟕𝟕𝟔 𝐦𝐠
500 mg
µg cantidad de principio activo en la muestra

Concentración = ∗ 1000
mL volumen
20 mg 5 mL
Concentración μg/mL = ∗ ∗ 1000 = 𝟒𝟎 μ𝐠/𝐦𝐋
100 mL 25 mL
Concentración μg/mL = 𝟒𝟎 μ𝐠/𝐦𝐋
Absorbancias de la muestra
μg/mL encontrado de p. a = ∗ Concentración del estándar
Absorbancias del estándar
0.9566
Concentración μg/mL = ∗ 40 = 𝟑𝟗. 𝟕𝟖𝟑𝟕 μ𝐠/𝐦𝐋
0.9618
µg/mL encontrado
Recuperación % = |∗ 100
µg/mL que se inyectaron
39.7837 µg/mL
Recuperación % = = ∗ 100 = 𝟗𝟗. 𝟒𝟔%
40.000 µg/mL
El procedimiento de cuantificación nos permitió calcular la cantidad de principio activo

en la muestra sometida a análisis, y el promedio del porcentaje de recuperación
obtenido fue de 99.46 % lo que indica que dicho valor está dentro delos rangos
establecidos para el formulado farmacéutico 90.0% - 110.0%.

Tabla No 5.1.1.5.1 Porcentaje de recuperación de Tinidazol Tableta 500 mg
Porcentaje de recuperación de Tinidazol Tableta 500 mg

Declara Cantidad
Cantidad
principio pesada mg de
pesada Concentración Absorbancias Absorbancias mg %
activo polvo (p.a +
principio µg/mL del Estándar de la muestra encontrados Recuperación
en Excipientes)
activo (mg)
Tab/mg (mg)
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9655 40.1539 100.3847
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9553 39.7297 99.3242
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9557 39.7463 99.3658
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9543 39.6881 99.2202
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9515 39.5716 98.9291
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9577 39.8295 99.5737
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9569 39.7962 99.4905
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9531 39.6382 99.0954
500 23.776 20 40.000 0.9618 0.9599 39.9210 99.8025
̅ = 500
𝒙 23.776 20 40.000 0.9618 0.9566 39.7860 99.4651

Tabla No 5.1.1.5.1.1 Test G de Cochran para el porcentaje de recuperación de tinidazol

tableta 500 mg
Concentración Promedio de % Desv.
No Recuperación Varianza
(µg/mL) Recuperación Estándar
1 100.3847
40
2 99.3242 99.6916 0.6006 0.3608
(100%)
3 99.3658
4 99.2202
40
5 98.9291 99.2410 0.3228 0.1042
(100%)
6 99.5737
7 99.4905
40
8 99.0954 99.4628 0.3543 0.1255
(100%)
9 99.8025
Promedio 99.466
Desviación estándar
0.432
(S) ∑ 𝑆𝑖 2 = 0.5905
CV% 0.434%
Test de proporcionalidad
Test de Cochran
Dónde: Gexp < Gtab
S 2 máxima
Gexp =
∑ Si2
S 2 máxima 0.3608
Gexp = = = 𝟎. 𝟔𝟏𝟏𝟎
∑ Si2 0.5905
Al comparar el valor experimental con el valor crítico, se obtuvo un G exp menor

que el Gtab, por tanto se cumple la hipótesis donde se comprueba que X o factor de
repuesta no tiene influencia en la variabilidad de los resultados de f (y/x) Gexp 0.6110<
0.966.

Test de Student
Para esta prueba se utilizó el criterio que texp < ttab en la tabla de t de Student n-1
grados de libertad y 0.05 grados de significación el de ttab = 4.303
Para ello se utilizó la siguiente ecuación

|100−x̅|∗√n
t exp =
CV
Dónde:
x̅ = Media del porcentaje de recuperación
CV = Coeficiente de variación del porcentaje de recuperación
n = Número de muestras 3
|100.00 − 99.466| ∗ √3
t exp =
0.434
0.534 ∗ 1.732 0.924
t exp = =
0.434 0.434
t exp = 𝟐. 𝟏𝟑𝟏
texp < ttab = 2.131 < 2.306, se cumple con el criterio.
El ensayo del t de Student para comparar el valor promedio de las

concentraciones obtenidas con el valor esperado demostró que no hay diferencias
significativas entre la concentración introducida y la recuperada, ya que el texp es menor
al ttab a un nivel de confianza de 95% y n-2 grados de libertad con ttab = 2.306.
5.1.2 PARÁMETROS DEL MÉTODO

5.1.2.1 Linealidad del Método Tinidazol tableta 500 mg
Para la determinación de la linealidad se prepararon 5 soluciones muestras a
concentraciones de 32 µg/mL, 36 µg/mL, 40 µg/mL, 44 µg/mL. 48 µg/mL (80%, 90%,
100%, 110% y 120%). Se realizaron análisis por triplicado de cada solución a una
longitud de onda de 276 nm y los resultados obtenidos fueron los siguientes:

Tabla No 5.1.2.1.1 Evaluación de la linealidad del método de Tinidazol tableta

500 mg
F = Y/X
X Y Desv.
Factor de Promedio Varianza
Conc. Abs. Estándar
Respuesta
0.7643 0.0096
32 µg/mL
0.7592 0.0095 0.00955 5.25 x10-05 2.76 x 10-09
(80 %)
07676 0.0096
0.8659 0.0096
36 µg/mL
0.8575 0.0095 0.00959 5.64 x 10-05 3.18 x 10-09
(90 %)
0.8666 0.0096
0.9622 0.0096
40 µg/mL
0.9689 0.0097 0.00966 3.32 x 10-05 1.10 x 10-09
(100 %)
0.9656 0.0097
1.0683 0.0097
44 µg/mL
1.0602 0.0096 0.00968 3.85 x 10-05 1.48 x 10-09
(110 %)
1.0664 0.0097
1.1622 0.0097
48 µg/mL
1.1570 0.0096 0.00967 2.24 x 10-05 5.03 x 10-10
(120 %)
1.1608 0.0097
C. Correlación 0.9996
C. Determinación 0.9993
Intercepto -0.031
Pendiente 0.0099
En la tabla anterior se refleja los resultados obtenidos de la linealidad del

método para la verificación de estos datos se procedieron a calcular
estadísticamente la pendiente, el intercepto, el coeficiente de determinación (r) y de
correlación (r2).

Coeficiente de correlación (r)

∑𝑛 ̅
𝑖 [(𝑥𝑖 − 𝑋 ) (𝑦𝑖 −Ӯ)]
𝑟= = 𝟎. 𝟗𝟗𝟗𝟔 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟑)
√ ∑𝑖( 𝑥𝑖 −𝑋̅ )2 ∑𝑖(𝑦𝑖 −Ӯ )2
Coeficiente de determinación (r2)

𝑟 2 = 0.99962 = 𝟎. 𝟗𝟗𝟗𝟑 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟒)
A continuación se presenta el calibrado y la ecuación de la recta en ella se

observa una proporcionalidad entre concentración y respuesta espectrofotométrica
Gráfico No 5.1.2.1.1 Linealidad del método de Tinidazol Tableta de 500 mg
Linealidad del método de cuantificación de tinidazol tableta

de 500 mg
1,2000
1,1000
Absorbancias (nm)
1,0000
y = 0.0099x - 0.031
0,9000 R² = 0.9993
0,8000
0,7000
70 80 90 100 110 120 130
Concentración %
Fuentes: Chemstation Software Agilent 8453 series y Microsoft Exel 2010
La ecuación de la recta de la curva de calibración, se expresa: y = 0.0099x –

0.031 con r = 0.9996 y r2= 0.9993

5.1.2.2 Ecuación de la recta de la linealidad del método espectrofotométrico UV-visible
Se utilizó el método de los mínimos cuadrados, que consiste en ajustar estos parámetros para minimizar la suma de
los cuadrados de los residuales y obtener funciones lineales.
Tabla No 5.1.2.2.1 Análisis de mínimos cuadrados en los datos de linealidad del método
X Y ̅ )(𝒚𝒊 − Ӯ)
(𝒙𝒊 − 𝑿 ei = (ŷ-y )
̅)
(𝒙𝒊 − 𝑿 ̅ )𝟐
( 𝒙𝒊 − 𝑿 (𝒚𝒊 − Ӯ) (𝒚𝒊 − Ӯ)2 ∑ 𝒙𝟐𝒊 Ŷ = b* x + a
Conc. Abs. residuales
80.000 0.7643 -20.0000 400.0000 -0.1992 0.0397 3.9843 6400 0.7647
3.67 x 10-04
80.000 0.7592 -20.0000 400.0000 -0.2043 0.0417 4.0863 6400 0.7647
80.000 0.7676 -20.0000 400.0000 -0.1959 0.0384 3.9183 6400 0.7647
90.000 0.8659 -10.0000 100.0000 -0.0976 0.0095 0.9761 8100 0.8641
-1.81 x 10-03
90.000 0.8575 -10.0000 100.0000 -0.1060 0.0112 1.0601 8100 0.8641
90.000 0.8666 -10.0000 100.0000 -0.0969 0.0094 0.9691 8100 0.8641
100.000 0.9622 0.0000 0.0000 -0.0013 0.0000 0.0000 10000 0.9635
1.31 x 10-03
100.000 0.9689 0.0000 0.0000 0.0054 0.0000 0.0000 10000 0.9635
100.000 0.9656 0.0000 0.0000 0.0021 0.0000 0.0000 10000 0.9635
110.000 10683 10.0000 100.0000 0.1048 0.0110 1.0479 12100 1.0629
-5.36 x 10-03
110.000 1.0602 10.0000 100.0000 0.0967 0.0093 0.9669 12100 1.0629
110.000 1.0664 10.0000 100.0000 0.1029 0.0106 1.0289 12100 1.0629
120.000 1.1622 20.0000 400.0000 01987 0.0395 3.9737 14400 1.1624
120.000 1.1570 20.0000 400.0000 0.1935 0.0374 3.8697 14400 1.1624 1.60 x 10-04
120.000 1.1608 20.0000 400.0000 0.1973 0.0389 3.9457 14400 1.1624
1500.0000 14.4528 0.0000 3000 0.0000 0.2967 29.8270 153000
100.0000 0.9635 0.0000 200 0.0000 0.0198 1.9885

Gráfico No 5.1.2.2.1.1 Análisis de los residuales de la linealidad del método

Gráfico de los residuales linealidad del método de tinidazol
0,01
0,005
Residuos
0
60 70 80 90 100 110 120 130 140
-0,005
-0,01
Concentración %
Fuentes: Chemstation Software Agilent 8453 series y Microsoft Excel 2010
La distribución de los puntos es aleatoria y no refleja ninguna tendencia

demostrándose la ausencia de error sistemático, observando el gráfico se aprecia que
la distribución de los residuos es aleatoria, por lo tanto, el sistema es válido.
La ecuación utilizada para ŷ fue la siguiente

ŷ = b∗x+a . (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟓)
Conviene definir los valores de Sxx, Syy y Sxy para encontrar la pendiente y el
intercepto:
1. Sxx = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de los

valores individuales de x.
(∑ 𝒙𝒊 )𝟐 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟔)
̅)𝟐 = ∑ 𝒙𝟐𝒊 −
𝑺𝒙𝒙 = ∑(𝒙𝒊 − 𝒙
𝑵
Dónde:
𝒙𝒊 = pares de datos individuales de x
x= valor medio o promedio de las variables (x)
𝑆𝑥𝑥 = ∑(𝑥𝑖 − 𝑥̅ )2 = 𝟑𝟎𝟎𝟎. 𝟎𝟎𝟎𝟎

2. Syy = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de los

valores individuales de y.
(∑ 𝑦𝑖 )2 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟕)
𝑆𝑦𝑦 = ∑(𝑦𝑖 − 𝑦̅) = 2
∑ 𝑦𝑖2 −
𝑁
Dónde:
yi = pares de datos individuales de y
𝑦̅ = valores medio o promedios de las variables (y)
(∑ 𝑦𝑖 )2 14.45272
𝑆𝑦𝑦 = ∑ 𝑦𝑖2 − = 14.2221 − = 𝟎. 𝟐𝟗𝟔𝟕
𝑁 15
3. Sxy = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de los

valores individuales de x e y.
∑ 𝑥𝑖 ∑ 𝑦𝑖 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟖)
𝑆𝑥𝑦 = ∑(𝑥𝑖 − 𝑥̅ , )(𝑦𝑖 − 𝑦̅ ) = ∑ 𝑥𝑖 𝑦𝑖 −
𝑁
∑ 𝑥𝑖 ∑ 𝑦𝑖 1500 𝑥 14.4527
𝑆𝑥𝑦 = ∑ 𝑥𝑖𝑦𝑖 − = 1475.0970 − = 𝟐𝟗. 𝟖𝟐𝟕𝟎
𝑁 15
Para encontrar la ecuación de la recta es necesario encontrar la pendiente y el

intercepto a partir de los datos calculados de la suma de los cuadrados.
Ecuación de la pendiente (b):

𝑆𝑥𝑦
𝑏=
𝑆𝑥𝑥 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟗)
29.8270
𝑏= = 𝟎. 𝟎𝟎𝟗𝟗
3000.0000
Dónde:
Sxy = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de los valores
individuales de x e y.
Sxx = suma de los cuadrados de las desviaciones respecto a la media de los valores
individuales de x.

Ecuación del intercepto (a):

𝑎 = 𝑦̅ − 𝑏𝑥̅ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟎)
𝑎 = 0.9635 − (0.0099 ∗ 100.0000) = −𝟎. 𝟎𝟎𝟑𝟏
Según el valor de la pendiente, la sensibilidad del método es de 0.0097 y el sesgo

del método es de - 0.0031 indicado por el valor del intercepto con r= 0.9997 y r2 =
0.9994
5.1.2.3 Test de linealidad: test de student para la pendiente (b) en UV-Vis

Para demostrar que existe una pendiente significativamente distinta de cero se
aplicó la prueba de t Student, para un grado de significación (α) de 0.05%, y n-2 grados
de libertad, siendo el valor crítico de 2.160.
Para esta prueba debe de cumplirse que texp > ttab.

|𝒃| (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟏)
𝒕𝒆𝒙𝒑 =
𝑺𝒃
Para calcular el texp es necesario calcular primero la desviación estándar de la

regresión (Sr) para poder obtener la desviación estándar de la pendiente Sb.
Desviación estándar de la regresión (Sr)
𝑆𝑟 = √ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟐)
𝑁 −2
0.2967− ((0.0099) 2 ∗3000.000)

𝑆𝑟 = √
15−2
0.2967− 0.29403
𝑆𝑟 = √
13
0.0026
𝑆𝑟 = √ = √2.0538 𝑥 10−04 = 0.01433
13

Desviación estándar de la pendiente (Sb)

Para esta prueba debe de cumplirse que texp > ttab
Hipótesis:
H0: texp < ttab
H1: texp > ttab
2
𝑆𝑏 = √𝑆𝑟 ⁄𝑆 = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟑)
𝑥𝑥
(0.01433)2⁄
𝑆𝑏 = √ 3000.000 = √6.8449 𝑥 10
−08 = 𝟐. 𝟔𝟏𝟔𝟐𝟖𝟖 𝒙𝟏𝟎−𝟎𝟒
Se obtiene:
|𝑏| 0.0099
𝑡𝑒𝑥𝑝 = = = 𝟑𝟕. 𝟖𝟑𝟗𝟗
𝑆𝑏 2.616288 𝑥 10−04
Se comprueba estadísticamente que existe una pendiente diferente de cero,

obteniendo el texp mayor que al ttab, siendo el texp de 37.8399 > ttab 2.160, lo que
demuestra que existen diferencias significativas.
El intervalo de confianza confirma lo demostrado por el test de Student la

pendiente no incluye el cero.
Intervalo de confianza (IC) para la pendiente se calcula:

IC = b ± t * Sb = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟒)
0.0099 ± 2.160 *2.616288 x 10 -04
0.0099 ± 5.651182 x 10-04
0.0093 a 0.0105
5.1.2.4 Test de proporcionalidad: test de student para el intercepto (a) en UV-

VIS
Para llevar a cabo este test se recurrió a la prueba de significación de t de Student
para n-2 grados de libertad y un grado de significación (α) 0.05. El valor de t Student
de tabla es de 2.160, siendo esta mayor que al experimental lo que demuestra que el
sesgo no es estadísticamente significativo.
Hipótesis:
H0: texp > ttab
H1: texp < ttab

Debe de cumplirse que el test experimental del intercepto debe ser menor al test crítico.
texp (a) < ttab .Para ello se utilizó la siguiente fórmula:
|𝑎 |
𝑡𝑎 =
𝑆𝑎 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟓)
|𝑎|= valor absoluto del intercepto

𝑆𝑎 = Desviación estándar del intercepto
Se calculó primero la desviación estándar del intercepto:
1
𝑆𝑎 = 𝑆𝑟 ∗ √ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟔)
𝑁−(∑ 𝑥 )2 / ∑ 𝑥 2𝑖 𝑖
1
𝑆𝑎 = 0.01433 ∗ √15−(2250000/153000)
1
𝑆𝑎 = 0.01433 ∗ √15−(14.7059)
1
𝑆𝑎 = 0.01433 ∗ √
0.2941
𝑆𝑎 = 0.01433 ∗ √3.4002
𝑆𝑎 = 0.01433 ∗ 1.84396
𝑆𝑎 = 0.0264
|𝑎| | − 0.031|
𝑡exp(𝑎) = = = −𝟏. 𝟏𝟕𝟒𝟐
𝑆𝑎 0.0264
Siendo texp (a) < ttab se comprueba que la variable X es diferente de cero y que la
recta pasa por el origen de coordenadas para 2 grados de libertad = 13 en un nivel de
confianza de 95% y con un grado de significación α = 0.05. El ttab para las condiciones
planteadas anteriormente es de 2.160 siendo texp (a) = -1.1742 < ttab = 2.160

El intervalo de confianza (IC) para el intercepto se calculó:
ICa = a ± t * Sa = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟕)

-0.031 ± 2.160 * 0.02656
-0.031 ± 0.05737
-0.884 a 0.0264
5.1.2.5 Test G de Cochran varianza de los factores de respuesta

La prueba de Cochran se realizó para determinar si el factor de concentración
tiene influencia en la variabilidad de las respuestas
(𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟖)
Dónde:
𝑆 2 𝑚á𝑥𝑖𝑚𝑎: Varianza máxima de los grupos
∑ 𝑆𝑖2 : Sumatoria de la varianza de cada grupo
Dónde:
K; es el número de grupo de datos o números de réplicas
es el número de grados de libertad definido como nmax - 1, donde nmax es el mayor
de los tamaños de la muestra
; el nivel de significancia es usualmente 0.05.
El criterio de aceptación: si el 𝐺𝑒𝑥𝑝 < 𝐺 tab significa que las varianzas de las
concentraciones son homogéneas, es decir que el factor de concentración no influyen
estadísticamente en la variabilidad de los resultados.

Prueba de homogeneidad de varianzas

Tabla No 5.1.2.5.1 Test de G de Cochran varianza de los factores de respuestas
de tinidazol tableta 500 mg
F = Y/X
X Y Desv.
Factores de Promedio Varianza
Conc. Absorbancias Estándar
respuesta
0.7643 0.0096
32µg/mL
0.7592 0.0095 0.00955 5.25 x 10-05 2.76 x 10-09
(80%)
0.7676 0.0096
0.8659 0.0096
36 µg/mL
0.8575 0.0095 0.00959 5.64 x 10-05 3.18 x 10-09
(90%)
0.8666 0.0096
0.9622 0.0096
40 µg/mL
0.9689 0.0097 0.00966 3.32 x 10-05 1.10 x 10-09
(100%)
0.9656 0.0097
1.0683 0.0097
44 µg/mL
1.0602 0.0096 0.00968 3.85 x 10-05 1.48 x 10-09
(110%)
1.0664 0.0097
1.1622 0.0097
48 µg/mL
1.1570 0.0096 0.00967 2.24 x 10-05 5.03 x 10-10
(120%)
1.1608 0.0097
Promedio (x) 0.00963 ∑ 𝑆𝑖2 =9.03 x 10-09
Desviación estándar (S) 1.3981 x 10-05
La hipótesis es:
H0 = Gexp < Gtab
H1 = Gexp ˃ Gtab
3.18 X 10−09
𝐺𝑒𝑥𝑝 = = 3.52 x 10-01
9.03 X 10−09

Al comparar el valor experimental con el valor critico se obtuvo un 𝐺𝑒𝑥𝑝 menor

que el G de la tabla, por tanto se cumple que f(y/x) no tiene influencia en la variabilidad
de los resultado de f(y/x) 𝐺𝑒𝑥𝑝 3.52x 10-01 ˂ Gtab (α= 0.05, k= 5, n=3) 0.683
5.1.2.6. Coeficiente de variación de los factores de respuesta

Al aplicar la prueba de la linealidad mediante los coeficientes de variación de los
factores de respuesta se obtuvo como resultado un coeficiente de variación de 0.145
% ˂ 2% demostrándose la adecuada linealidad del método.
𝑆
𝑐𝑣 = X̅ (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟏𝟗)
Dónde:
S = desviación estándar
̅ = media de los resultados
X
La desviación estándar global de los factores de respuesta es de 1,3981 x 10-05 y el

promedio global es de 0,00963 por tanto
1.3981 x 10−05
𝑐𝑣 = ∗ 100 = 0.145%
0.00963
Al aplicar la prueba de la linealidad mediante los coeficientes de variación de los

factores de respuesta se obtuvo como resultado un coeficiente de variación de 0.145%
siendo menor al 2% demostrándose la adecuada linealidad del método.

Tabla No 5.1.2.7 Análisis de varianza de los factores de respuesta del método de tinidazol tableta de 500 mg
Análisis de la varianza Análisis de Residual Análisis de la Regresión

𝐲̂
X Y 𝟐
𝐲̂ = 𝐛 ∗ 𝐱 + 𝐚 𝐲𝐢 − 𝐲̂ (𝐲𝐢 − 𝐲̂)𝟐 𝐲̂ − 𝐲̅ (𝐲̂ − 𝐲̅)
Conc Abs
80 0.7643 0.7647 -0.0004 1.34 x 10-07 -0.1988 0.0395

80 0.7592 0.7647 -0.0055 2.99 x 10-05 -0.1988 0.0395
80 0.7676 0.7647 0.0029 8.60 x 10-06 -0.1988 0.0395
90 0.8659 0.8641 0.0018 3.28 x 10-06 -0.0994 0.0099
90 0.8575 0.8641 -0.0066 4.34 x 10-05 -0.0994 0.0099
90 0.8666 0.8641 0.0025 6.30 x 10-06 -0.0994 0.0099
100 0.9622 0.9635 -0.0013 1.72 x 10-06 0.0000 0.0000
100 0.9689 0.9635 0.0054 2.90 x 10-05 0.0000 0.0000
100 0.9656 0.9635 0.0021 4.35 x 10-06 0.0000 0.0000
110 1.0683 1.0629 0.0054 2.88 x 10-05 0.0994 0.0099
110 1.0602 1.0629 -0.0027 7.49 x 10-06 0.0994 0.0099
110 1.0664 1.0629 0.0035 1.20 x 10-05 0.0994 0.0099
120 1.1622 1.1624 -0.0002 2.56.x.10-08 0.1988 0.0395
120 1.1570 1.1624 -0.0054 2.87 x 10-05 0.1988 0.0395
120 1.1608 1.1624 -0.0016 2.43 x 10-06 0.1988 0.0395
̅
𝐗 = 0.97 SCREG = 0.2965
̅ = 100
𝐗 ̅ = 0.99
𝐗 SCRES = 2.0616 x 10-04
Σ=14.4767
Fuentes: Programa Microsoft Excel 2010

La ecuación utilizada para calcular ў, fue la siguiente

𝑦̂ = 𝑏 ∗ 𝑥 + 𝑎 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟓)
Según (Aguirre, 2001), el análisis de la varianza se fundamentó en la suma de

cuadrados totales la cual está conformada por dos componentes la suma de cuadrados
de los residuales y la regresión SCT = SCRES + SCREG
Se calculó la Varianza residual (S2y.x) a partir de los datos de los mínimos

cuadrados, con la siguiente ecuación:
Varianza Residual
2 ∑(𝑦𝑖 −Ӯ)2
VRES = Sy,x = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟎)
n−2
2 2.0616 𝑥 10−04
VRES = Sy,x =
15−2
2
VRES = Sx,y = 1.5859 x 10-05
SCT = SCRES + SCREG (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟏)

SCT= 2.0616 x 10-04 + 0.2965
SCT = 0.2967
Varianza de la Regresión
2 𝛴(𝑌𝑖−Ӯ)2
VREG = Sy∗ = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟐)
𝑁
2 0.2968
VREG = Sy∗ = = 0.0198
15
Una vez realizada la homogeneidad de varianzas y calculó residuales se realizó

el cálculo de Fisher (F), donde debe de cumplirse que Fexp > F tab.

VREG (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟑)

F=
VRES
La hipótesis es:
H0 = Fexp ˃ Ftab
H1 = Fexp < Ftab
0.01978
F= = 1251.8987
1.58−05
Dónde:
SCREG: suma de cuadrados de la regresión.
VRES:1.58 x 10-05
VREG: 0.01978
Por lo tanto Fisher será: 1251.8987 Ftab (0.05, 1, n-2) = 4.667 cumpliendo el
criterio de aceptación, demostrando la existencia de una pendiente diferente de cero.
Se validó la linealidad de la metodología del método, para lo cual se partió de una

solución concentrada de tinidazol, preparando una curva de calibrado con cinco niveles
de concentración del analito en el rango de trabajo de 80% - 120%.
Con respecto a la evaluación de los coeficientes de determinación r2 y de

correlación r en el método demostraron correlación entre la concentración (%) y la
señal obtenida (Absorbancias).
Se aplicaron diferentes test estadísticos para demostrar la linealidad del método,

incluyendo el ajuste de la curva de calibración por el análisis de los mínimos
cuadrados, pudiéndose obtener los valores de la pendiente y el intercepto, aplicando
el t de Student para demostrar que existe diferencia significativa.

Con la aplicación del test de Cochran se demostró la homogeneidad de varianza.

Se realizó el análisis de la varianza de la regresión ANOVA, se evaluaron los residuos
y se determinó que estos son independientes y tienen distribución normal, presentando
homocedasticidad y que la relación entre concentración y absorbancias es lineal.
5.1.2.8 Precisión del método en espectrofotometría UV-visible

Para evaluar la precisión se trabajó con muestras de estándar secundario de
Tinidazol con un grado de pureza de 99.9%. El estudio de la precisión se realizó
mediante la evaluación de la repetibilidad y precisión intermedia del sistema.
5.1.2.8.1. Repetibilidad del Método en espectrofotometría UV-visible

La repetibilidad se analizó mediante la evaluación de 10 determinaciones a una
concentración del 100% se determinaron los valores medios, desviaciones estándar y
los coeficientes de variación en función de los factores de respuesta.
Tabla No 5.1.2.8.1.1 Evaluación de repetibilidad del método de tinidazol tableta

500 mg
f(y/x)
N° de Concentración (%)
Absorbancias Y Factores de
lecturas X
respuestas
1 100.000 0.9655 0.0097
2 100.000 0.9550 0.0096
3 100.000 0.9557 0.0096
4 100.000 0.9543 0.0095
5 100.000 0.9515 0.0095
6 100.000 0.9577 0.0096
7 100.000 0.9569 0.0096
8 100.000 0.9531 0.0095
9 100.000 0.9636 0.0096
10 100.000 0.9617 0.0096
Promedio de f (Y/X) 0.0095
Desviación Estándar f (Y/X) 0.000046
CV% de f (Y/X) 0.485%
Fuentes: Programa Microsoft Excel 2010

5.1.2.8.1.1.1 Evaluación estadística para la repetibilidad del método en

Para la evaluación de la precisión del método en términos de repetibilidad se

evaluaron los siguientes parámetros, en donde se muestran valores obtenidos según
tabla 5.1.2.8.1.1.
 Media
∑ 𝐱𝐢
𝑋̅ = (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟒)
𝐧
0.0958
𝑋̅ =
10
̅
X = 0.0095
𝟐
∑(𝐱𝐢 −𝒙)
𝐒 = √ 𝒏−𝟏 (𝑬𝒄𝒖𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝟐𝟓)
−08
1.9434 x 10
𝐒= √ 9
−08
√1.9434 x 10
𝐒= 9
𝐒 = 𝟎. 𝟎𝟎𝟎𝟎𝟒𝟔
En la precisión en condiciones de Repetibilidad en función del factor de respuesta

se obtuvo una desviación estándar pequeña con un valor de 0.00005 indicando la
buena precisión del sistema donde demuestra que no se observó una diferencia
significativa.

 Coeficiente de variación (CV)

El coeficiente de variación (CV) nos indica la relación existente entre la desviación
de una muestra y su media. Al dividir la desviación típica por la media se convierte en
un valor de unidad de medida.
El coeficiente de variación entre los datos se calcula utilizando la siguiente ecuación:

𝑆
𝐶𝑉 = ∗ 100
𝑋̅
0.000046
𝐶𝑉 = ∗ 100 = 0.484%
0.0095
Se aprecia, que el CV% está por debajo de 2% obteniendo un valor de 0.487%,

indicando que la técnica cumple con los parámetros establecidos, siendo el ensayo
repetitivo y a la misma vez aceptable.
5.1.2.8.2 Precisión intermedia del método en espectrofotometría UV-visible

La precisión intermedia se realizó para evaluar las fuentes de variación en el
análisis inter analista e inter día, se trabajó con concentraciones al 100% (40 μg/mL)
para ambos días.
Se aplicó el estadístico de t student y la prueba de Fisher para determinar si

existían diferencias significativas entre los resultados analíticos obtenidos por ambos
analistas.
Los datos obtenidos están representados en función al factor de respuesta para

determinar si influye en la variabilidad de los resultados.

Tabla No 5.1.2.8.2.1 Evaluación de la precisión intermedia interdía e interanalista

Concentración Factor de respuesta Desviación
Día Analista Abs de la muestra Promedio CV (%) CV global
(%) f(Y/X) Estándar
100 0.9578 0.00958
100 0.9589 0.00959
100 0.9608 0.00961
1 0.0095 3.2 x 10−11 0.2671
100 0.9617 0.00962
100 0.9627 0.00963
100 0.9559 0.00956
1
100 0.9618 0.00962
100 0.9541 0.00954
2 100 0.9612 0.00961
0.0095 1.68 x 10−12 0.3781
100 0.9554 0.00955
100 0.9566 0.00957
100 0.9533 0.00953
0.2852
100 0.9578 0.00958
100 0.9590 0.00959
100 0.9587 0.00959
1 0.0095 3.78 x 10−10 0.1539
100 0.9615 0.00962
100 0.9588 0.00959
100 0.9572 0.00957
2
100 0.9589 0.00959
100 0.9538 0.00954
100 0.9597 0.00980
2 0.0095 1.56 x 10−10 0.3418
100 0.9608 0.00961
100 0.9535 0.00954
100 0.9546 0.00955
Fuente: Programa Microsoft Excel 2010

En la tabla anterior se aprecia que los coeficientes de variación experimentales

en los dos analistas y en diferentes días están por debajo del 2%, cumpliendo con el
criterio de aceptación (CV ≤ 2%).
Tabla No 5.1.2.8.2.1.1 Evaluación estadística para la precisión intermedia en

Análisis de Varianza 100 %

Resumen
Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza
Analista 1 2 0.01918 0.00959 3.2 x 10-11
Analista 2 2 0.01913 0.00956 1.6 x 10-12
Día 1 2 0.01918 0.00959 3.2 x 10-11
Día 2 2 0.01913 0.00956 1.6 x 10-12
Origen de Grados Promedio
Suma de Valor crítico
las de de los F Probabilidad
cuadrados para F
variaciones libertad cuadrados
Filas 5.1001 x 10-10 1 5.1 x 10-10 21.0976 0.13647 161.44763
-12
Columnas 9.5069 x 10-12 1 9.5 x 10 0.3932 0.64341 161.44763
Error 2.4174 x 10-11 1 2.4 x 10-11
Total 5.4369 x 10-10 3
Se realizó un análisis de la varianza de los datos aplicándose el test de Fisher.

Los valores obtenidos demostraron que no existen diferencias significativas entre las
precisiones alcanzadas por los analistas en diferentes días para una probabilidad de
0.05 ya que el valor de Fexp es menor que Ftab (inter analista Fexp 21.0976 < Ftab
161.4476; inter día Fexp 0.3932 < Ftab 161.4476).

Tabla N° 5.1.2.8.2.1.2 Precisión intermedia analista A

Día 1 Día 2 Día1-Día 2 Valor absoluto Analista A
9.580 x 10-3 9.580 x 10-3 0 0 |𝑥̅ |
9.589 x 10-3 9.590 x 10-3 -1.0 x 10 -06 1.0 x 10 -06 𝑡𝑒𝑥𝑝 =
(𝑠√𝑛)
9.608 x 10-3 9.587 x 10-3 2.1 x 10 -05 2.1 x 10 -05
9.617 x 10-3 9.615 x 10-3 2.0 x 10 -06 2.0 x 10 -06 𝑡𝑒𝑥𝑝
9.627 x 10-3 9.588 x 10-3 3.9 x 10 -05 3.9 x 10 -05
9.559 x 10-3 9.570 x 10-3 -1.3 x 10 -05 1.3 x 10 -05 1.27 𝑥 10−05
=
Promedio 1.27 x 10-05 (1.5319 𝑥 10−05 √6)
S 1.5319 x 10-05
2.44948974 =0.3384
√𝟔
Tabla N° 5.1.2.8.2.1.3 Precisión intermedia analista B

Día 1 Día 2 Día1-Día 2 Valor absoluto
9.618 x 10-3 9.589 x 10-3 9.6 x 10-03 9.6 x 10-03 Analista B
9.541 x 10-3 9.538 x 10-3 -4.8 x 10-05 4.8 x 10-05
𝑥̅
9.612 x 10-3 9.797 x 10-3 7.4 x 10-05 7.4 x 10-05 𝑡𝑒𝑥𝑝 =
9.554 x 10-3 9.608 x 10-3 -2.4 x 10-04 2.4 x 10-04 (𝑠√𝑛)
9.566 x 10-3 9.535 x 10-3 -4.2 x 10-05 4.2 x 10-05
9.533 x 10-3 9.546 x 10-3 -2.0 x 10-06 2.0 x 10-06 1.67 𝑥 10−03
𝑡𝑒𝑥𝑝 =
Promedio 1.67 x10-03 (3.894 𝑥 10−03 √6)
S 3.894 x 10-03
= 0.1750
√𝟔 2.44948974
Tabla N° 5.1.2.8.2.1.4 Precisión intermedia analista A vs B Día 1

Analista A Analista B Analista A-B Valor absoluto
Analista A vs B (Día 1)
9.578 x 10-3 9.618 x 10-3 -4.00 x 10-05 4.00 x 10-05
9.589 x 10-3 9.541 x 10-3 4.80 x 10-05 4.80 x 10-05 𝑥̅
𝑡𝑒𝑥𝑝 =
9.608 x 10-3 9.612 x 10-3 -4.00 x 10-06 4.00 x 10-06 (𝑠√𝑛)
9.617 x 10-3 9.554 x 10-3 6.30 x 10-05 6.30 x 10-05
9.627 x 10-3 9.566 x 10-3 6.10 x 10-05 6.10 x 10-05 1.09 𝑥 10−03
9.559 x 10-3 9.533 x 10-3 2.60 x 10-05 2.60 x 10-05
𝑡𝑒𝑥𝑝 =
(2.55 𝑥 10−03 √6)
Promedio 1.09 x10-03
S 2.55 x 10-03 = 0.1745
√𝟔 2.44948974

Tabla N° 5.1.2.8.2.1.5 Precisión intermedia analista A vs B Día 2

Analista A Analista B Analista A-B Valor absoluto Analista A vs B (Día 2)
9.578 x 10-3 9.589 x 10-3 -1.1 x 10-05 1.1 x 10-05 𝑥̅
9.590 x 10-3 9.538 x 10-3 5.2 x 10-05 5.2 x 10-05 𝑡𝑒𝑥𝑝 =
(𝑠√𝑛)
9.587 x 10-3 9.797 x 10-3 -2.1 x 10-04 2.1 x 10-04
9.615 x 10-3 9.608 x 10-3 7.0 x 10-06 7.0 x 10-06
5.98 𝑥 10−05
9.588 x 10-3 9.535 x 10-3 5.3 x 10-05 5.3 x 10-05 𝑡𝑒𝑥𝑝 =
9.572 x 10-3 9.546 x 10-3 2.6 x 10-05 2.6 x 10-05 (7.6129 𝑥 10−05 √6)
Promedio 5.98 x 10-05
S 7.6129 x 10-05 = 0.3206
√𝟔 2.449489743
Tabla N° 5.1.2.8.2.2 Precisión intermedia, interdía e interanalista

t estadígrafo de Student
Analista: A vs. B
Analista: A Analista: B Fórmula
1er día 2do día
texp 0.3384 0.1750 0.1745 0.3206 |𝑥̅ |

𝑡𝑒𝑥𝑝 =
ttab 2.570 2.570 2.570 2.570 (𝑠√𝑛)
Texp < ttab. No existe diferencias significativas
Fuente: Programa de Microsoft Excel 2010
En la tabla 5.1.2.8.2.2 se observa que al realizar la prueba de Student para ambos

analistas, el valor experimental resultó ser menor que el tabulado 2.570, lo cual
demuestra que no existen diferencias significativas entre las medias alcanzadas con
un nivel de significación de un 5%.
5.1.2.9 Robustez
Se realizó el parámetro de robustez como se indica en el inciso 4.10.3. y se
leyeron en el espectrofotómetro que se utilizó para el resto de los estudios (lámpara
A) luego, se cambió la lámpara por una nueva (lámpara B) y se volvieron a leer las
mismas muestras obteniendo los resultados que se presentan en la tabla 5.1.2.9.1.

Tabla No 5.1.2.9.1 Evaluación de la robustez de tinidazol tableta 500 mg

Concentración Absorbancias Absorbancias Desviación %
Cambio Muestra Promedio CV %
(%) de la muestra del estándar estándar Recuperación
1 100 0.95554 0.9646 99.0638
2 100 0.95504 0.9646 99.0120
3 100 0.95568 0.9646 99.0783
Lámpara 4 100 0.95429 0.9646 98.9342
0.9550 0.0020 0.0020
A 5 100 0.95152 0.9646 98.6471
6 100 0.95774 0.9646 99.2919
7 100 0.95689 0.9646 99.2038
8 100 0.95310 0.9646 98.8109
Promedio 99.0053
1 100 0.96792 0.9646 100.3473
2 100 0.96814 0.9646 100.3701
3 100 0.96556 0.9646 100.1026
Lámpara 4 100 0.96626 0.9646 100.1752
0.9663 0.0011 0.0011
B 5 100 0.96531 0.9646 100.0767
6 100 0.96608 0.9646 100.1565
7 100 0.96523 0.9646 100.0684
8 100 0.96574 0.9646 100.1213
Promedio 100.1773
C.V global 0.0022
El método es robusto para el cambio de lámpara, ya que el porcentaje promedio recuperado está entre el 90.0% y el
110.0%, el coeficiente de variación global es menor al 2.00%.

5.1.2.10 Test de disolución

Se realizó el test de disolución para comprobar la cantidad de fármaco que se
libera por unidad de tiempo y evaluar la calidad del producto. Una vez concluido el
tiempo programado para tomar las muestras de las seis estaciones, se realizaron
lecturas por triplicado, obteniéndose los siguientes resultados.
Tabla No 5.1.2.10.1 Evaluación del Test de Disolución de Tinidazol tableta de 500 mg

Concentración Absorbancias Absorbancias
Estaciones % Recuperado
% de la muestras del estándar
100 0.9728 0.9646 100.86
vaso 1
100 0.9740 0.9646 100.98
100 0.9753 0.9646 101.11
100 0.9702 0.9646 100.59
vaso 2
100 0.9690 0.9646 100.46
100 0.9678 0.9646 100.34
100 0.9492 0.9646 98.42
vaso 3
100 0.9505 0.9646 98.54
100 0.9517 0.9646 98.67
100 0.9757 0.9646 101.15
vaso 4
100 0.9769 0.9646 101.28
100 0.9781 0.9646 101.41
100 0.9729 0.9646 100.87
vaso 5
100 0.9574 0.9646 99.26
100 0.9754 0.9646 101.13
100 0.9623 0.9646 99.77
vaso 6
100 0.9636 0.9646 99.90
100 0.9648 0.9646 100.03
Promedio 100.27
Desv. Estándar 0.9806
C.V (%) 0.9780
El test de Disolución cumple con el criterio de aceptación, siendo el valor obtenido

de Q = 100.27% (Q ˃ 80%) y un coeficiente de variación de 0.9780 (CV ≤ 5%).

Tabla No 5.2 Resumen de resultados de validación de tinidazol tableta 500 mg

en espectrofotometría UV-visible
Principio Activo: Tinidazol Tipo de Validación Resultados
Prospectiva Validación
Ensayos
Especificaciones Sistema Método
1. Aptitud del sistema
- Interferencia de excipientes No debe presentar
interferencia de
excipientes
Cumple Cumple
- Coeficiente de variación C V CV ≤ 2%
2. Linealidad
- Coeficiente de variación C V CV ≤ 2%
- Coeficiente de correlación r ≥ 0.9950
- Coeficiente de determinación r2 ≥ 0.9980
- Intercepto (a)
- Intervalo de confianza para el El intervalo debe incluir el
intercepto cero
- Test de t para evaluar la
significación estadística de texp< ttab (ttab=2.16)
desviación estándar del
intercepto
- Pendiente (b) Aproximadamente a 1
- Intervalo de confianza de la El intervalo no debe incluir Cumple Cumple
pendiente el cero
- Test de t para evaluar la
significación estadística de texp > ttab (ttab = 2.16)
la desviación estándar de la
pendiente
- Test de Cochran Gexp < Gtab (Gtab = 0.683)

La distribución de los
- Gráfico de residuales puntos debe ser aleatoria y
no debe reflejar ninguna
tendencia.
3. Precisión
- Repetibilidad CV ≤ 2 %
Cumple Cumple
- Precisión intermedia CV global ≤ 2 %
4. Exactitud
- % Recuperado promedio 90.0 % - 110.0 %
- Test de Cochran Gexp < Gtab (Gtab= 0.966) Cumple Cumple
- Test de Student texp < ttab (ttab = 4.303)
5. Robustez
CV ≤ 2 %
- Robustez del método Cumple Cumple
Cambio de lámpara

CAPÍTULO VI
CONCLUSIONES
6.1 CONCLUSIONES
Con los resultados obtenidos de la fase experimental se ha demostrado la Validez

de la metodología para la cuantificación y disolución de Tinidazol tableta de 500 mg,
verificándose los parámetros de aceptación planteados por la USP-36 y el RTCA
11:03:39.06.
 Se comprobó la idoneidad del método analítico, para la cuantificación de

tinidazol tabletas de 500 mg, por espectrofotometría UV-visible cumpliendo con
los criterios de aceptación teniendo como resultado un CV ≤2%.
 La técnica analítica por espectrofotometría UV-visible para la cuantificación de

Tinidazol tableta 500 mg demostró: ser lineal, precisa, exacta, y robusta en el
rango de aceptaciones estudiadas, cumpliendo con la hipótesis planteada, por
lo cual puede ser utilizado para el control de calidad.
 El test de disolución cumple con los criterios establecidos, se obtuvo un

porcentaje de recuperación de 100.27%, con un coeficiente de variación de
0.9780 % proporcionando resultados que comprueban que el producto es
confiable para el consumo humano.

CAPÍTULO VII
RECOMENDACIONES
7.1 RECOMENDACIONES
Se recomienda la realización del estudio de estabilidad y del parámetro de

selectividad ya que por diferentes razones; como el tiempo que se programó para el
estudio, el uso de reactivos y materiales de laboratorio, recursos económicos entre
otros no se realizó y los cuales son parámetros nexos en una validación analítica.
Que la universidad gestione los equipos necesarios con los organismos que
tienen convenio para que los estudiantes lleven la teoría a la práctica para así
desarrollar sus conocimientos y de esta manera adquirir las habilidades necesarias
para el desarrollo en el campo laboral en la industria farmacéutica.
Enviar una copia de la monografía a la jefatura del Laboratorio Nacional de

Control de Calidad del Ministerio de Salud y a la jefatura del departamento de la
dirección General de servicio de salud, para brindar información accesible de consultas
sobre el tema.

BIBLIOGRAFIA
BIBLIOGRAFÍA
 (2013). USP 36 <1225>. En Validación de Procedimientos Farmacéuticos

(págs. 1093-1098). ESTADOS UNIDOS: Rockville MD.
 (2013). USP 36 <711>. En Disolución (págs. 332-338). ESTADOS UNIDOS:

Rockville MD.
 (2013). USP 36 <851>. En Espectrofotometría y Dispersión de Luz (págs. 458-

464). ESTADOS UNIDOS: Rocville MD.
 Administration, S. N. (2007). Estudio de Validación de Métodos Analíticos (Una

guia práctica para laboratorios químicos). New York.
 Aduanera, U. (2004). Guia de Validación Métodos Analíticos. Guatemala.
 Aguirre, L. et al. (2001). Validación de Métodos Analíticos, Asociación Española

de Farmacéuticos de Industria. Barcelona, España.
 Boris Duffau et al. (2010). Validación de métodos y determinación de la

incertidumbre de la medición: "Aspactos generales sobre la validación de los
métodos". Instituto de Salud Pública de Chile, 50-55.
 Chery, P. M. (2010). Faracología Básica y Clínica. En Capítulo V Farmacología

Gastrointestinal (págs. 175-185). 2010: McGRAW-HILL INTERAMERICANA
EDITORES, S A de C. V.
 COMIECO. (2006). RTCA 11:03.39.06. Guatemala.
 Gónzalez, M. et al. (1995). Manual de Terapéutica, Fundamentos de Medicina.

En Capitulo 10-Gastroenterología (págs. 251-268). Medellin, Colombia:
Corporación para Investigaciones Biológicas.
 Gutiérrez, G. et al. (2008). Tesis para obtar al título de Química Farmacéutica.

Validación de un método Espectrofotométrico UV-Visible para la determinación
de Ciprofloxacina en formulaciones sólidas producidas por Laboratorios
Bengochea. Managua Nicaragua.
 Hernández, I. (2002). Introducción al Análisis Instrumental. En Capítulo III,

Espectrofotometría (págs. 238-366). Chile: editorial Ariel ciencia.
 ICH. (2002). Validación de Métodos Analíticos, Buenas Prácticas para

Laboratorios Nacionales de Control Farmacéutico.

 Kothapalli, U. (2011). A Validate UV-Spectrophometric Method for the

Estimation of Tinidazole in Bulk and Farmaceutical Dosage Form. International
Journal of Pharmaceutical & Biological Archives , 1152-1156.
 López I. (1999). Spectrophotometer, Instrument Manual. Hach Company, 32-41.
 Moffat. (2005). Clark´s Analysis of Drugs and Poisons.
 OMS, I. 32. (2006). ANEXO 5 Validación de Procedimientos Analíticos

empleados en el exámen de los materiales farmacéuticos .
 Rugama, N. (2003). Tesis para obtar al título de Química Farmacéutica.

Validación de un método analítico por espesctrofotometría ultravioleta visible
para el ensayo de disolución de tabletas de Metocarbamol (Turel-AX) elaborado
en laboratorios PANZYMA UNAN-León. El Crucero, Managua, Nicaragua.
 Sevilla, A. (2012). Tesis para obtar al titulo de Quimica Farmaceutica. Validacion

de Famotidina de 40 mg por espectrofotometria Ultravioleta-Visible UNAN-
Leon. Leon, Nicaragua.
 Singh, L. (2011). Method for Determination of Tinidazole Using Direct UV-Visible

Spectrophometric and Differential Spectrophometric in Pure and Tablet Dosage
Forms. East and Central Africa Journal of Pharmaceutical Sciences, Vol.14, 75-
80.
 Skoog, D. A. (2003). El método de los mínimos cuadrados para obtener curvas

de calibrado. En Fundamentos de Química Analítica (pág. 56). Barcelona:
Reverté. S. A.
 Valenzuela, A. (Julio de 1999). Tesis para obtar al titulo de Química

Farmacéutica. Validacion de Método Espectrofotométrico para cuantificacion de
Metronidazol, Mebendazol, Albendazol y Tinidazol (Tabletas y Suspensión).
Guatemala.
 Valladao, D. et al. (2008). Determinacao de Tinidazol por Cromatografia em

Camada Delgada e Espectrofotometria . Sociedad Brasileira de Quimica, 34.
 Vásquez, W. (2012). Tesis para obtar al título de Química Farmacéutica.

Validación de metodología analítica para la cuantificación de Levofloxaciono
500 mg cápsula recubierta por espectrofotometría ultravioleta visible durante el
período de Septiembre 2012 en UNAN-León . León, Nicaragua: Editorial
Universitaria.

GLOSARIO
 Amebiasis: Enfermedad intestinal causada por un parasito microscópico llamado
Entamoeba histolytica y en la que a veces puede extenderse a otros órganos.
 Analito: Componente específico de una muestra, a medir en un análisis.
 Autoridad reguladora: Ente responsable de Registro Sanitario y/o vigilancia

Sanitaria de cada Estado.
 Especificaciones: Descripción del material, sustancia o producto, que incluye la

definición de sus propiedades y características, con las tolerancias de variación de
los parámetros de calidad.
 Especificidad o selectividad: Capacidad de evaluar, medir e identificar

simultáneamente o separadamente, los analítos de interés de forma inequívoca sin
interferencias de impurezas, productos de degradación, compuestos relacionados,
excipientes y otras sustancias presentes en la matriz de la muestra.
 Espectrofotometría: Método de análisis óptico que permite comparar la radiación

absorbida o transmitida por una solución que contiene una cantidad desconocida
de soluto y una que contiene una cantidad conocida de la misma sustancia.
 Espectrofotómetro: Instrumento usado en el análisis químico que sirve para medir

en función de la longitud de onda, la relación entre valores de una misma magnitud
fotométrica relativa a 2 haces de radiaciones y la concentración o reacciones
químicas que se miran en una muestra.
 Exactitud o veracidad: Es la proximidad entre los resultados de la prueba

obtenidos mediante ese método y el valor verdadero.

 Homocedasticidad: Multivariable estadística que considera la varianza de la

variable error constante. La Homocedasticidad es que la varianza de los residuos
es constante y no varía en los diferentes niveles del factor.
 Impurezas: Sustancias ajenas a la formula cualicuantitativa que pueden provenir

de los procesos de fabricación y de almacenamiento, incluyendo la degradación de
las materias primas (principios activos y productos farmacéuticos auxiliares) y
formas de dosificación.
 Intervalo: Amplitud entre las concentraciones inferior y superior de analito

(incluyendo esos niveles), en la cual se puede determinar el analito con un nivel
adecuado de precisión, exactitud y linealidad.
 Límite de cuantificación: Mínima cantidad del analito en una muestra que puede
ser cuantitativamente determinada con precisión y exactitud aceptable.
 Límite de detección: Mínima cantidad de analito en una muestra que puede ser
detectada por una única medición, pero no necesariamente cuantificada con un
valor exacto.
 Linealidad: Capacidad para obtener resultados de prueba que sean

proporcionales ya sea directamente o por medio de una transformación matemática
bien definida, a la concentración de analito en muestras en un intervalo dado.
 Matriz: Está conformado por el principio activo y los excipientes que dependerá del
preparado farmacéutico.
 Método Analítico: Adaptación especifica de una técnica analítica para un

propósito de medición seleccionado, en la cual se identifican los recursos
materiales y el procedimiento.

 Muestra: Porción del material a evaluar.
 Parámetros de desempeño analítico, parámetros de mérito o elementos

requeridos para el ensayo de validación: Características de validación que
necesitan ser evaluadas y que típicamente corresponden a la siguiente lista:
exactitud, precisión, especificidad, límite de detección, límite de cuantificación,
linealidad e intervalo de linealidad.
 Precisión Intermedia: Precisión de un método analítico, expresada como la

concordancia relativa obtenida entre determinaciones independientes realizadas
en un mismo laboratorio, por diferentes analistas, en distintos días.
 Precisión: Grado de concordancia entre los resultados analíticos individuales,

cuando el procedimiento se aplica repetidamente a diferentes porciones de una
muestra homogénea del producto o de una referencia.
 Procedimiento analítico: Descripción detallada de los pasos necesarios para

aplicar un método analítico.
 Profilaxis: Conjunto de medidas que se toman para la prevención de una

enfermedad.
 Repetibilidad: Precisión de un método analítico, expresada como la concordancia

entre determinaciones independientes realizadas por diferentes laboratorios.
 Validación de un procedimiento analítico: Procedimientos para establecer

pruebas documentadas que demuestren científicamente que un método analítico
tiene las características de desempeño que son adecuados para cumplir los
requerimientos de las aplicaciones analíticas pretendidas. Implica la demostración
de la determinación de las fuentes de variabilidad y del error sistemático y al azar

de un procedimiento, no solo dentro de la calibración sino en el análisis de muestras

reales.
 Validación del método analítico: Proceso por el cual se demuestra, por estudios
de laboratorio, que la capacidad del método satisface los requisitos para la
aplicación analítica deseada.
 Validación: Establecimiento de la evidencia documental que un procedimiento

analítico conducirá con alto grado de seguridad a la obtención de resultados
precisos y exactos dentro de las especificaciones y atributos de calidad
previamente establecidos.

ABREVIATURAS
 %: Porcentaje
 ̅: Media aritmética de x
𝒙
 ̅: Media aritmética de y
𝒚
 ̂: y ponderada
𝒚
 a: Intercepto
 Abs: Absorbancias
 b: Pendiente
 BPM: Buenas Prácticas de Manufactura
 COMEICO: Consejo de Ministros de Integración Económica de Centroamérica
 Conc.: Concentración
 CV: Coeficiente de variación o desviación estándar relativa
 CVy/x: Coeficiente de variación de regresión
 FDA: Agencia de Alimentos y Medicamentos (Food and Drugs Administration)
 IC: Intervalos de confianza
 ICH: Conferencia Internacional sobre Armonización de los Requisitos Técnicos
para el Registro de Productos Farmacéuticos para Uso Humano.
 IR: Infrarrojo
 LNCCM: Laboratorio Nacional de Control de Calidad de Medicamentos
 LOD: Limite de detección
 LOQ: Limite de cuantificación
 mg: Miligramos
 MINSA: Ministerio de Salud
 mL: Mililitro
 Mta: Muestra
 nm: Nanómetros
 OMS: Organización Mundial de la Salud
 p.a: Principio activo
 r: Coeficiente de correlación
 r2: Coeficiente de determinación

 RTCA: Reglamento Técnico Centroamericano

 S: Desviación estándar
 S2: Varianza
 SCT: Suma de cuadrados total
 SCE: Suma de cuadrados residual
 SCREG: Suma de cuadrados de la regresión
 UNAN: Universidad Nacional Autónoma de Nicaragua
 USP: Farmacopea de los Estados Unidos de América
 UV: Ultra violeta
 Vis: Visible
 µg/mL: Microgramo por mililitro
 µg: Microgramo

ANEXOS
Anexo Nº 1
1. CARTA DECLARATORIA DEL LABORATORIO NACIONAL DE CONTROL
DE CALIDAD DE MEDICAMENTOS
~1~
Anexo N° 2
2 IDONEIDAD DEL MÉTODO EN ESPECTROFOTOMETRÍA UV-VISIBLE
2.1 Idoneidad del método para la cuantificación de tinidazol tableta de 500 mg.
Blanco
Estándar de
tinidazol
Muestra de
tinidazol
Fuente: Chemstation Software Agilent 8453 series
~2~
Anexo Nº 3
3 CALIBRADO DEL SISTEMA EN ESPECTROFOTOMETRIA UV-VISIBLE
3.1 Calibrado del sistema en absorbancias, estándar secundario de tinidazol
Curva de calibrado Std. De Tinidazol Conc. 120%

Std. De Tinidazol Conc. 110%
~3~
Anexo Nº 4
3.2 Cálculos para las concentraciones
40 μ𝑔/𝑚𝐿 100 %
500 mg declara la tableta, para obtener una concentración que se ajuste bien a
la curva de calibración se parte de una concentración 40 µg/ mL y se toma una alícuota
de 5 mL para obtener esta concentración con el siguiente calculo.
24.15 mg tinidazol = 20 mg transferidos en un matraz aforado de 100 mL multiplicado
por el volumen tomado 5 mL entre el volumen del material volumétrico 25 mL por 1000.
20 𝑚𝑔 5 𝑚𝐿
∗ ∗ 1000 = 40 μ𝑔/𝑚𝐿
100 𝑚𝐿 25 𝑚𝐿
Para obtener las concentraciones de la curva de calibración partimos de la
concentración al 100 % utilizando una regla de tres.
100 % 40 μ𝑔/𝑚𝐿
80 % 𝑋
𝑋 = 80 ∗ 400/ 100 = 32 μ𝑔/𝑚𝐿
Para obtener el volumen tomado para llegar a las concentraciones deseadas de
igual manera se parte del volumen del 100 % utilizando una regla de tres.
40 μ𝑔/𝑚𝐿 5 𝑚𝐿
32 μ𝑔/𝑚𝐿 𝑋
𝑋 = 32 ∗ 5/40 = 4 𝑚𝐿
Así respectivamente se realizaron los cálculos para cada concentración para

realizar la curva de calibrado, la linealidad del sistema, linealidad del método y para
las tres concentraciones de la exactitud.
~4~
Anexo Nº 5
4. ESPECTROS DE LA LINEALIDAD DEL SISTEMA Y DEL MÉTODO
4.1 LINEALIDAD DEL SISTEMA
Linealidad del sistema en absorbancia, estándar de Tinidazol.

4.2 LINEALIDAD DEL MÉTODO

Linealidad del método en absorbancia, muestra de tinidazol tableta 500 mg.
Mta. De Tinidazol Conc. 120%

~5~
Anexo Nº 6
5. ESPECTRO DE LA PRECISIÓN EN CONDICIONES DE REPETIBILIDAD DEL
SISTEMA Y DEL MÉTODO
5.1 REPETIBILIDAD DEL SISTEMA
Repetibilidad del sistema en absorbancia, estándar de tinidazol.
Estándar de tinidazol Conc. 100%
5.2 REPETIBILIDAD DEL MÉTODO

Repetibilidad del método en abasorbancia, muestra de tinidazol tableta 500 mg.
Muestra de tinidazol Conc. 100 %
~6~
Anexo Nº 7
5.3 PRECISIÓN INTERMEDIA DEL MÉTODO ESPECTROFOTOMÉTRICO DE
MUESTRA DE TINIDAZOL TABLETA 500 MG INTERANALISTA-DÍA 1
Precisión intermedia INTER-ANALISTA DIA 1
Concentración 100%
Precisión intermedia
Analista Moisés
Primer día
Concentración 100%
Analista Yeltsin
Primer día
~7~
Anexo Nº 8
5.4 PRECISIÓN INTERMEDIA DEL MÉTODO ESPECTROFOTOMÉTRICO DE
MUESTRA DE TINIDAZOL TABLETA 500 MG INTERANALISTA-DÍA 2
Concentración 100%
Analista Moisés
Segundo día
Concentración 100%
Analista Yeltsin
Segundo día
~8~
Anexo Nº 9
6. ESPECTRO DE LA EXACTITUD DEL SISTEMA Y DEL MÉTODO
6.1 EXACTITUD DEL SISTEMA
Exactitud del sistema en absorbancia
Estándar de Tinidazol Conc. 120%

6.2 EXACTITUD DEL MÉTODO
~9~
Anexo Nº 10
PARTES DEL DISOLUTOR HANSON RESORD
Collar
Control del
Panel Principal Sistema
Paletas
Espaciador
Termómetro
Estaciones
Bañera
~ 10 ~
Anexo Nº 11
PARTES DEL ESPECTROFOTÓMETRO AGILENT 8453 SERIES
Monitor
Espectrofotómetro
Lámpara
Botón de
encendido
Teclado
~ 11 ~
Anexo Nº 12
PARTES DE LA BALANZA ANALÍTICA OHAUS EXPLORER
Platillo
Impresora
Sensores
Pantalla y control
de sistema
~ 12 ~
Anexo Nº 13
MONOGRAFÍA INDIVIDUAL DE TINIDAZOL MATERIA PRIMA
USP 36
~ 13 ~
Anexo Nº 14
REGLAMENTO TÉCNICO CENTROAMERICANO 11.03.39:06
~ 14 ~
Anexo Nº 15
CAPÍTULO GENERAL DE ESPECTROFOTOMETRÍA Y DISPERSIÓN DE LA LUZ
USP 36
~ 15 ~
Anexo Nº 16
CAPÍTULO GENERAL DE DISOLUCIÓN
USP 36
~ 16 ~
Anexo No 17
CAPÍTULO GENERAL DE VALIDACIÓN DE PROCEDIMIENTOS
FARMACOPEICOS USP 36
~ 17 ~
Anexo No 18
TABLAS ESTADÍSTICAS
~ 18 ~

Validacion Tinidazol

Cargado por

Copyright:

Formatos disponibles

Validacion Tinidazol

Cargado por

Información del documento

Descripción original:

Título original

Derechos de autor

Formatos disponibles

Compartir este documento

Compartir o incrustar documentos

Opciones para compartir

¿Le pareció útil este documento?

¿Este contenido es inapropiado?

Copyright:

Formatos disponibles

Validacion Tinidazol

Cargado por

Copyright:

Formatos disponibles

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE NICARAGUA, MANAGUA

RECINTO UNIVERSITARIO RUBÉN DARÍO

MONOGRAFÍA PARA OPTAR AL TÍTULO DE

TEMA: VALIDACIÓN DEL MÉTODO ESPECTROFOTOMÉTRICO UV-

Managua, febrero 2016

CAPÍTULO I ASPECTOS GENERALES

A mi abuelita Teresa Cruz (q.e.p.d) aunque no estás conmigo, sé que estarías

A mi hermanita Adriana Garay por estar conmigo cuando me sentí triste y

A todas esas personas que de manera desinteresada me apoyaron durante toda

Moisés David Paizano Hernández

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

A mi abuela Ángela Bejarano quien siempre ha estado a mi lado cuidándome,

A mi madre Marta Blandón que me ha dado la herencia que no se puede perder,

Yeltsin Ramón Ruiz Blandón.

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

Al Laboratorio Nacional de Control de Calidad de Medicamentos (MINSA) en

De todo corazón gracias.

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

OPINIÓN DEL TUTOR

 Es un tema cuya implementación se está iniciando en la industria farmacéutica, en

PhD. Carla Martínez Algaba

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONÓMA DE NICARAGUA

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

Tinidazol, nombre químico 1-[2-(Etilsulfonil)etil]-2-metil-5-nitro-1H-imidazol,

El trabajo que a continuación se muestra se realizó en el Laboratorio Nacional de

Se utilizó un espectrofotómetro UV-Visible Agilent, modelo 8453 series, con

Se evaluaron parámetros de desempeño analíticos que incluyen Linealidad,

La curva de calibración demostró ser lineal 𝑟2 = 0.9994, obteniéndose un

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

Gráfico No 5.1.1.2.2.1.1 Gráfico de análisis de los residuales de la 47

Gráfico No 5.1.1.2.2.1.2 Gráfico de linealidad del sistema de tinidazol 49

Gráfico No 5.1.2.1.1 Gráfico de linealidad del método de tinidazol 70

Gráfico No 5.1.2.2.1.1 Gráfico de análisis de los residuales de la 72

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

Figura 2.4.3.8 Esquema de espectrofotometría UV-Visible 20

Figura 4.7.1.2.1 Mecanismo de acción de tinidazol 22

Figura 4.7.1.2.1 Presentación esquemática de la preparación de 32

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

Tabla No 4.4.3 Operacionalización de variables 26

Tabla No 4.9.1.1.1 Criterios de aceptación de la linealidad del 35

Tabla No 4.12.2 Materiales 40

Tabla No 4.12.3 Equipos 41

Tabla No 5.1.1.1.1 Tratamiento estadístico de la aptitud del 42

Tabla No 5.1.1.2.7.1 Análisis de la varianza de los factores de 57

Tabla No 5.1.1.3.1.1 Evaluación estadística de repetibilidad del 60

Tabla No 5.1.1.4.1 Evaluación de la Exactitud del sistema de 63

Tabla No 5.1.1.5.1 Porcentaje de recuperación de tinidazol 66

Tabla No 5.1.1.5.1.1 Test G de Cochran para el porcentaje de 67

Yeltsin Ramón Ruíz Blandón-Moisés David Paizano Hernández

Tabla No 5.1.2.5.1 Test G de Cochran varianza de los factores de 78

Tabla No 5.1.2.7 Análisis de varianza de los factores de 80

Tabla No 5.1.2.8.1.1 Evaluación de repetibilidad del método de 83

Tabla No 5.1.2.8.2.1.1 Evaluación estadística para la precisión 87

Tabla N° 5.1.2.8.2.1.5 Precisión intermedia analista A vs B Día 2 89

Tabla No 5.1.2.8.2.2 Precisión intermedia interdía e interanalista 89

Tabla No 5.1.2.9.1 Evaluación de la robustez de tinidazol tableta 90

Tabla No 5.1.2.10.1 Evaluación del Test de Disolución de tinidazol 91