RU2389792C2 - Method for preparing immobilised lipase - Google Patents
Method for preparing immobilised lipase Download PDFInfo
- Publication number
- RU2389792C2 RU2389792C2 RU2008126752/13A RU2008126752A RU2389792C2 RU 2389792 C2 RU2389792 C2 RU 2389792C2 RU 2008126752/13 A RU2008126752/13 A RU 2008126752/13A RU 2008126752 A RU2008126752 A RU 2008126752A RU 2389792 C2 RU2389792 C2 RU 2389792C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- lipase
- solution
- particles
- separated
- mixture
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к нанотехнологиям и может быть использовано в медицинской, пищевой и сельскохозяйственной отраслях промышленности.The invention relates to nanotechnology and can be used in the medical, food and agricultural industries.
В настоящее время известны многочисленные методы иммобилизации различных ферментов, включая и липазы, самыми разнообразными способами, например их включением в различные биополимеры (см. Неклюдов А.Д., Иванкин А.Н. Экологические основы биотехнологии. - М.: МГУЛ, 2006. - С.105-106). Ближайшим аналогом к предлагаемому способу является способ получения иммобилизованной липазы, предусматривающий смешивание 1 мг липазы из поджелудочной железы (фирма Сигма) или микробной липазы из Mucor javanicus (фирма Сигма) и полистиролсульфоната натрия в соотношении 1:1-100 при комнатной температуре, рН 7,6-8,2 в течение 10-20 мин (патент РФ №2308486 С1, 20.10.2006 г.).Currently, numerous methods are known for immobilizing various enzymes, including lipases, in a variety of ways, for example, by incorporating them into various biopolymers (see Neklyudov A.D., Ivankin A.N. Ecological fundamentals of biotechnology. - M.: MGUL, 2006. - S.105-106). The closest analogue to the proposed method is a method for producing immobilized lipase, which involves mixing 1 mg of lipase from the pancreas (Sigma company) or microbial lipase from Mucor javanicus (Sigma company) and sodium polystyrene sulfonate in a ratio of 1: 1-100 at room temperature, pH 7, 6-8.2 for 10-20 minutes (RF patent No. 2308486 C1, 10.20.2006).
Основным недостатком всех этих способов является использование в качестве носителя преимущественно синтетических полимеров, которые невозможно использовать в пищевой и медицинской промышленностях. Кроме того, в результате получения подобных биокатализаторов размер частиц обычно составляет 100-200 мкм, что не позволяет использовать их в медицинской практике, так как с их помощью нельзя получать истинные растворы, необходимые для инфузионной и других видов терапии.The main disadvantage of all these methods is the use as a carrier of predominantly synthetic polymers, which cannot be used in the food and medical industries. In addition, as a result of obtaining such biocatalysts, the particle size is usually 100-200 microns, which does not allow their use in medical practice, since they cannot be used to obtain the true solutions necessary for infusion and other types of therapy.
Задача, решаемая данным изобретением, заключается в разработке способа включения липаз в частицы размером 250-300 нм, которые дают возможность использовать полученные биокатализаторы в самых разнообразных целях, включая медицину и пищевую промышленность.The problem solved by this invention is to develop a method for incorporating lipases into particles of 250-300 nm in size, which make it possible to use the obtained biocatalysts for a wide variety of purposes, including medicine and the food industry.
Решение поставленной задачи обеспечивается тем, что в способе получения иммобилизованной липазы, заключающемся в растворении носителя в растворе с добавлением порошка фермента с активностью не ниже 100 ед./г, в качестве носителя используют пищевую карбоксиметилцеллюлозу (КМЦ), в качестве фермента - липазу, продуцируемые культурами животных панкреатических клеток и Aspergillus niger в виде порошка, иммобилизацию проводят в буферных растворах или в подщелоченной дистиллированной воде с pH 9,5-10 в присутствии 1-1,5%-ного раствора поверхностно-активного вещества при интенсивном перемешивании со скоростью 4500-5000 об/мин, после чего рН реакционной смеси уменьшают до значения рН 3,0-3, 5, выпавшие частицы липазы вместе с ферментом отделяют и высушивают.The solution of this problem is ensured by the fact that in the method of obtaining immobilized lipase, which consists in dissolving the carrier in a solution with the addition of an enzyme powder with an activity of at least 100 units / g, food carboxymethyl cellulose (CMC) is used as a carrier, and lipase produced as an enzyme cultures of animal pancreatic cells and Aspergillus niger in powder form, immobilization is carried out in buffer solutions or in alkaline distilled water with a pH of 9.5-10 in the presence of a 1-1.5% solution of surface-active substances with vigorous stirring at a speed of 4500-5000 rpm, after which the pH of the reaction mixture is reduced to pH 3.0-3-3, precipitated lipase particles together with the enzyme are separated and dried.
Изобретение поясняется следующими примерами:The invention is illustrated by the following examples:
Пример 1. 10 г пищевой карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ) добавляют к 50 мл боратного буфера, имеющего рН 9,5, и реакционную смесь перемешивают до максимального растворения КМЦ. Полученный раствор фильтруют и добавляют к фильтрату 1 г панкреатической липазы с активностью 150 ед./г и 3 мл 1,5%-ного раствора ПАВ, например твин 40. Раствор интенсивно перемешивают при помощи вибротуракса со скоростью 4500-5000 об/мин в течение 60 мин и образовавшуюся эмульсию охлаждают до 5-10°С, после чего подкисляют ее соляной кислотой до значения рН 3,0-3,5. Эмульсию помещают на сутки в холодильник, через каждые 3-3,5 ч снова подвергают всю смесь перемешиванию при помощи вибротуракса. Спустя сутки раствор вновь перемешивают при помощи вибротуракса. Полученные частицы отделяют от реакционной массы центрифугированием со скоростью 5000 об/мин, после чего отделившийся раствор сливают, а к оставшимся частицам добавляют по 10 мл ацетатного буфера с рН 4-4,5. Операцию повторяют 2-3 раза, каждый раз подвергая реакционную массу перемешиванию вибротураксом. После этого раствор снова центрифугируют. Оставшуюся массу переносят в колбы или пенициллиновые флаконы по 1 мл во флакон и высушивают на сублимационной сушилке.Example 1. 10 g of edible carboxymethyl cellulose (CMC) is added to 50 ml of borate buffer having a pH of 9.5, and the reaction mixture is stirred until the CMC is completely dissolved. The resulting solution was filtered and 1 g of pancreatic lipase with an activity of 150 units / g and 3 ml of a 1.5% surfactant solution, for example tween 40, was added to the filtrate. The solution was vigorously mixed with a vibroturax at a speed of 4500-5000 rpm for 60 minutes and the resulting emulsion is cooled to 5-10 ° C, after which it is acidified with hydrochloric acid to a pH of 3.0-3.5. The emulsion is placed in a refrigerator for a day, every 3-3.5 hours the whole mixture is again mixed using vibroturax. After a day, the solution was again stirred using vibroturax. The resulting particles are separated from the reaction mass by centrifugation at a speed of 5000 rpm, after which the separated solution is drained, and 10 ml of acetate buffer with a pH of 4-4.5 are added to the remaining particles. The operation is repeated 2-3 times, each time subjecting the reaction mass to stirring with vibroturax. After that, the solution is centrifuged again. The remaining mass is transferred into flasks or penicillin vials of 1 ml per vial and dried on a freeze dryer.
Выход полученных частиц составляет 80%, активность нейтральной липазы составляет 130-142 ед./г. Размер полученных частиц биокатализатора равен 250-260 нм.The yield of the obtained particles is 80%, the activity of neutral lipase is 130-142 units / g The size of the obtained biocatalyst particles is 250-260 nm.
Пример 2. Опыт проводят аналогично примеру 1, но вместо буфера используют подщелоченную дистиллированную воду, в качестве фермента берут микробную липазу из культуры Aspergillus niger с активностью 200 ед./г, в качестве ПАВ 1 мл 1%-ного раствора твин 20. Выход частиц вместе с включенным в них ферментом составляет 75%. Активность протеаз составляет 179-190 ед./г, размер частиц 260-270 нм.Example 2. The experiment is carried out analogously to example 1, but instead of a buffer, alkalized distilled water is used, a microbial lipase from an Aspergillus niger culture with an activity of 200 units / g is used as an enzyme, and 1 ml of a 1% tween 20 solution is a surfactant. Particle yield together with the enzyme included in them is 75%. The activity of proteases is 179-190 units / g, particle size 260-270 nm.
Пример 3. Опыт проводят аналогично примеру 1, но в качестве фермента используют смесь липаз обоих видов, взятых в соотношении 1:1, а в качестве ПАВ-Спан-85. Выход биокатализатора составляет 80%. Активность 90 ед./г. Размер частиц 280-300 нм.Example 3. The experiment is carried out analogously to example 1, but as an enzyme using a mixture of lipases of both types, taken in a ratio of 1: 1, and as a surfactant-Span-85. The biocatalyst yield is 80%. Activity 90 units / g. Particle size 280-300 nm.
Таким образом, изобретение позволяет получать иммобилизированные липазы с размером частиц 250-300 нм, которые могут быть с успехом использованы в пищевой и медицинской промышленности.Thus, the invention allows to obtain immobilized lipases with a particle size of 250-300 nm, which can be successfully used in the food and medical industries.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008126752/13A RU2389792C2 (en) | 2008-07-02 | 2008-07-02 | Method for preparing immobilised lipase |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008126752/13A RU2389792C2 (en) | 2008-07-02 | 2008-07-02 | Method for preparing immobilised lipase |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2008126752A RU2008126752A (en) | 2010-01-10 |
RU2389792C2 true RU2389792C2 (en) | 2010-05-20 |
Family
ID=41643732
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008126752/13A RU2389792C2 (en) | 2008-07-02 | 2008-07-02 | Method for preparing immobilised lipase |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2389792C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2813512C1 (en) * | 2023-07-26 | 2024-02-12 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный университет" (ФГБОУ ВО "ВГУ") | Method of producing a heterogeneous biocatalyst based on lipase immobilized on ku-2-8 cation exchange resins in the h-form |
-
2008
- 2008-07-02 RU RU2008126752/13A patent/RU2389792C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
МАРКОНИ В. Промышленное применение свободных и иммобилизованных ферментов. - Успехи химии, 1976, т.45, №11, с.2077-2093. ГРАЧЕВА И.М. Технология ферментных препаратов. - М.: ВО Агропромиздат, 1987, с.138. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2813512C1 (en) * | 2023-07-26 | 2024-02-12 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный университет" (ФГБОУ ВО "ВГУ") | Method of producing a heterogeneous biocatalyst based on lipase immobilized on ku-2-8 cation exchange resins in the h-form |
RU2823329C1 (en) * | 2023-07-26 | 2024-07-22 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный университет" (ФГБОУ ВО "ВГУ") | Method of producing heterogeneous biocatalyst based on lipase immobilized on anion-exchange resins av-16-gs and an-12p in oh-form |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2008126752A (en) | 2010-01-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Homaei | Enzyme immobilization and its application in the food industry | |
Shah et al. | Preparation of cross-linked enzyme aggregates by using bovine serum albumin as a proteic feeder | |
Jegan Roy et al. | Strategies in making cross-linked enzyme crystals | |
Lai et al. | Catalytic performance of cross-linked enzyme aggregates of Penicillium expansum lipase and their use as catalyst for biodiesel production | |
JP2001037475A (en) | Production of immobilized lipase, enzyme catalytic or enantio-selective conversion of such lipase and substrate, production of optically active compound and use of immobilized lipase | |
Mahmoud et al. | Potential application of immobilization technology in enzyme and biomass production | |
BR112013033322B1 (en) | PROCESS TO PRODUCE CHITIN DERIVATIVES | |
CN107034205B (en) | Method for preparing high-esterification-activity lipase by using surfactant | |
Kanwar et al. | Isolation of a Pseudomonas lipase produced in pure hydrocarbon substrate and its application in the synthesis of isoamyl acetate using membrane-immobilised lipase | |
Hrabárová et al. | Insoluble protein applications: the use of bacterial inclusion bodies as biocatalysts | |
Kartal | Enhanced esterification activity through interfacial activation and cross‐linked immobilization mechanism of Rhizopus oryzae lipase in a nonaqueous medium | |
Solanki et al. | A chemically modified lipase preparation for catalyzing the transesterification reaction in even highly polar organic solvents | |
RU2389792C2 (en) | Method for preparing immobilised lipase | |
Sinha et al. | Enzymatic production of glucosamine and chitooligosaccharides using newly isolated exo-β-D-glucosaminidase having transglycosylation activity | |
US20180110868A1 (en) | Reactive and sorbent materials | |
RU2460771C1 (en) | Method of extracting biologically active substances from biomass of unicellular algae of chlorella species | |
RU2689164C1 (en) | Enzymesporine microencapsulation method | |
RU2389794C2 (en) | Method for preparing immobilised collagenase | |
Gupta et al. | Use of high activity enzyme preparations in neat organic solvents for organic synthesis | |
CN112481190B (en) | Complex enzyme digestive juice and preparation method and application thereof | |
RU2389793C2 (en) | Method for preparing immobilised protease | |
RU2388822C2 (en) | Method for production of immobilised cellulase | |
Rajan et al. | Studies on crystallization and cross-linking of lipase for biocatalysis | |
Scollar et al. | Preparative resolution of d, l‐threonine catalyzed by immobilized phosphatase | |
Guncheva et al. | Nanosized tin dioxide—Unexplored carrier for lipase immobilization |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20100703 |