PL235367B1 - Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi i układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi - Google Patents
Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi i układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi Download PDFInfo
- Publication number
- PL235367B1 PL235367B1 PL411223A PL41122315A PL235367B1 PL 235367 B1 PL235367 B1 PL 235367B1 PL 411223 A PL411223 A PL 411223A PL 41122315 A PL41122315 A PL 41122315A PL 235367 B1 PL235367 B1 PL 235367B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- raman
- signal
- pulse
- blood
- camera
- Prior art date
Links
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 title claims description 33
- 239000008280 blood Substances 0.000 title claims description 33
- 238000005259 measurement Methods 0.000 title claims description 31
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 21
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 title claims description 20
- 239000008103 glucose Substances 0.000 title claims description 20
- 230000005693 optoelectronics Effects 0.000 title claims description 3
- 238000001069 Raman spectroscopy Methods 0.000 claims description 42
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 29
- 239000000306 component Substances 0.000 claims description 27
- 230000001360 synchronised effect Effects 0.000 claims description 23
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims description 20
- 239000000523 sample Substances 0.000 claims description 14
- 238000001237 Raman spectrum Methods 0.000 claims description 9
- 239000012503 blood component Substances 0.000 claims description 6
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 claims description 6
- 230000003595 spectral effect Effects 0.000 claims description 5
- 230000005284 excitation Effects 0.000 claims description 4
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 2
- 230000002123 temporal effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 41
- 238000004847 absorption spectroscopy Methods 0.000 description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 6
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 6
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 6
- 230000006835 compression Effects 0.000 description 5
- 238000007906 compression Methods 0.000 description 5
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 5
- 238000012935 Averaging Methods 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 3
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 3
- 238000003841 Raman measurement Methods 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 2
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 2
- 238000007430 reference method Methods 0.000 description 2
- 238000004611 spectroscopical analysis Methods 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 230000017531 blood circulation Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 206010012601 diabetes mellitus Diseases 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 238000005534 hematocrit Methods 0.000 description 1
- 238000012623 in vivo measurement Methods 0.000 description 1
- 230000002452 interceptive effect Effects 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000010905 molecular spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 230000010363 phase shift Effects 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000001020 rhythmical effect Effects 0.000 description 1
- 230000008054 signal transmission Effects 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 238000004929 transmission Raman spectroscopy Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000036642 wellbeing Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
- A61B5/02—Detecting, measuring or recording for evaluating the cardiovascular system, e.g. pulse, heart rate, blood pressure or blood flow
- A61B5/0205—Simultaneously evaluating both cardiovascular conditions and different types of body conditions, e.g. heart and respiratory condition
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Physiology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Pulmonology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Surgery (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Measurement Of The Respiration, Hearing Ability, Form, And Blood Characteristics Of Living Organisms (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób i układ do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi, w którym nie zachodzi konieczność naruszania ciągłości tkanek, mający zastosowanie zwłaszcza w diagnozowaniu i leczeniu cukrzycy, zwłaszcza dla celów samokontroli.
Znany ze stanu techniki sposób wykrywania i określania koncentracji substancji chemicznych za pomocą zjawiska Ramana polega na tym, że stosuje się laserowe promieniowanie pobudzające i następnie mierzy się promieniowanie rozproszone na próbce w wyniku zjawiska Ramana (rozproszenia ramanowskiego). W rejestrowanym widmie Ramana pojawiają się linie widmowe, charakterystyczne dla wiązań chemicznych oświetlanej substancji o intensywności proporcjonalnej do stężenia tej substancji. Taką metodę stosuje się w badaniach naukowych do oceny składu tkanek biologicznych przez ich oświetlenie promieniowaniem laserowym i analizę rejestrowanego promieniowania rozproszenia ramanowskiego (np. Barman, I., Dingari, N. C., Singh, G. P., Soares, J. S., Dasari, R. R., & Smulko, J. M. (2012). Investigation of noise-induced instabilities in quantitative biological spectroscopy and its implications for noninvasive glucose monitoring. Analytical Chemistry, 84(19), s. 8149-8156). Metoda jest bardzo atrakcyjna, lecz ze względu na różnice w budowie tkanek między badanymi żywymi organizmami (np. różna grubość tkanki tłuszczowej, zawartość wody, wprowadzane zmętnienie itp.) wymaga kalibracji, przez wykorzystanie metody referencyjnej, która jest inwazyjna. Ponadto, intensywność sygnału rozproszenia ramanowskiego w rejestrowanym widmie jest poniżej 0,5% energii całego widma. Konieczne jest więc rozwiązanie umożliwiające identyfikację sygnału ramanowskiego pochodzącego od składników krwi, w szczególności od glukozy zawartej we krwi oraz jego odseparowanie od sygnałów pochodzących od otaczających tkanek.
Jednym z rozwiązań jest mechaniczna modulacja naświetlanej tkanki przez delikatny ucisk (np. Chaiken, J., Goodisman, J., Deng, B., Bussjager, R. J., & Shaheen, G. (2009). Simultaneous, noninvasive observation of elastic scattering, fluorescence and inelastic scattering as a monitor of blood flow and hematocrit in human fingertip capillary beds, Journal of Biomedical Optics, 14(5), 050505-050505), które znane jest również z amerykańskiego opisu patentowego US6377828. Rozwiązanie przyjmuje, że uciskając tkanki zmieniamy zawartość krwi, której markerem jest liczba czerwonych ciałek, w oświetlanym obszarze tkanek i uzyskujemy sygnał o składowej zależnej od ucisku tkanek, mimo że zawartość czerwonych ciałek krwi nie przekracza pojedynczych procent objętości oświetlanych tkanek. Taki efekt, powodowany uciskiem, jest możliwy ponieważ wartość współczynnika rozpraszania (μι- = 300 cm-1) dla czerwonych ciałek krwi jest ponad dwadzieścia razy większa niż dla pozostałych elementów składowych oświetlanych tkanek, jak plazma (μ = 0,6 cm-1), czy tkanka łączna (μρ = 12 cm-1). Dzięki temu niewielka zmiana zawartości czerwonych ciałek krwi w oświetlanych tkankach wpływa znacząco na zmiany intensywności składowych widma rejestrowanego promieniowania rozproszenia ramanowskiego.
Podane rozwiązanie nie jest niestety pozbawione wad. Sygnał rozproszenia ramanowskiego jest nadal bardzo słaby. Dodatkowo, na wyniki pomiarów wpływają indywidualne cechy naświetlanych tkanek, co powoduje nadal konieczność kalibracji za pomocą metody referencyjnej. Zastosowanie wielokrotnego delikatnego ucisku (modulacja zawartości czerwonych ciałek krwi w oświetlanych tkankach) powinno pozwolić na wykorzystanie detekcji synchronicznej i poprawę stosunku sygnału (promieniowania rozproszenia ramanowskiego) do szumów i wpływów cech osobniczych badanych tkanek.
Detekcja synchroniczna (fazoczuła) jest znaną w obecnym stanie techniki metodą detekcji słabych sygnałów w obecności silnych sygnałów zakłócających. Opis metody detekcji synchronicznej wraz z zastosowaniem filtracji dolnoprzepustowej przedstawiony jest w: Bielecki Z., Rogalski A., Detekcja sygnałów optycznych, Wydawnictwa Naukowo-Techniczne PWN-WNT 1991, str. 364-373.
Konieczność przetwarzania sygnału pomiarowego, tj. mnożenia sygnału użytecznego przez sygnał synchronizujący oraz filtracji dolnoprzepustowej wynika z metody, czyli z istniejącego stanu techniki. Przetwarzanie sygnałów można zrealizować sprzętowo - za pomocą dedykowanych układów elektronicznych lub programowo - poprzez operacje obliczeniowe na macierzach wykonane za pomocą komputera sterującego. Drugie rozwiązanie jest szybsze i łatwiejsze do implementacji przy wykorzystaniu detekcji synchronicznej w pomiarach spektroskopowych, gdy przetwarzanie sygnału trzeba wykonywać dla każdej długości fali (kanału detekcji) oddzielnie.
Z metod spektroskopowych, które można zastosować i stosowano do pomiaru poziomu glukozy we krwi z wykorzystaniem detekcji synchronicznej, wyróżnić można spektroskopię absorpcyjną VIS oraz spektroskopię Ramana.
PL 235 367 B1
Spektroskopia absorpcyjna jest zastosowana w rozwiązaniu przedstawionym w zgłoszeniu patentowym US2013/0267799 A1. Metoda ta jest stosowana standardowo w glukometrach, pracujących z nakłuwaniem pacjenta, natomiast w przypadku pomiarów in-vivo jest wrażliwa na zmienność osobniczą. Ujawniona w tej dokumentacji sonda dotyczy innej metody niż w rozwiązaniu według wynalazku. W naszym rozwiązaniu spektroskopia absorpcyjna jest wykorzystana jedynie do odtworzenia przebiegu czasowego sygnału pulsu, który jest sygnałem pomocniczym (referencyjnym), a nie do bezpośredniego pomiaru poziomu glukozy. W naszym rozwiązaniu odzyskiwany jest ze spektroskopii absorpcyjnej jedynie przebieg czasowy, a nie widmo. Twórca rozwiązania opisanego w zgłoszeniu US2013/0267799 A1 nie odnosi też sygnału spektroskopii absorpcyjnej do sygnału ze spektroskopii Ramana, jak ma to miejsce w naszym wniosku. Przedstawiona tam odmienna metoda i odmienny układ (brak lasera, filtrów optycznych, toru referencyjnego i spektroskopu z matrycą detekcyjną) nie zapewniają uwzględnienia wpływu zmienności osobniczej, głównie ze względu na problem zmodulowania sygnału pomiarowego przez puls krwi. Czułość pomiaru metodą spektroskopii absorpcyjnej jest ograniczona. Z uwagi na szerokie pasma widmowe występuje poważne ryzyko przekłamań wyników, jako związanych z wpływem innych składników krwi lub otaczających tkanek (sygnał może pochodzić z różnych źródeł).
Spektroskopia Ramana, jako metoda spektroskopii molekularnej, zapewnia pomiar poziomu glukozy bezpośrednio, a nie korelacyjnie, czyli z mniejszym prawdopodobieństwem przekłamań i wyższą czułością. Problemem jest jednak niski poziom sygnału pomiarowego od glukozy we krwi, przez co może on być trudny do wykrycia na tle sygnału oświetlenia zewnętrznego i sygnału pochodzącego od otaczających krew tkanek. Rozwiązaniem jest zastosowanie detekcji synchronicznej, które eliminuje składowe stałe i quasistatyczne z sygnału pomiarowego.
Przedstawione w publikacji Chaiken et al. rozwiązanie to pomiar poziomu glukozy we krwi metodą spektroskopii Ramana z wykorzystaniem detekcji synchronicznej, w której sygnałem referencyjnym jest sygnał związany z okresowo powtarzanym uciskaniem mechanicznym tkanki. Nie został jednak w pełni wyjaśniony problem wpływu zmienności osobniczej - na ile ucisk mechaniczny jest powtarzalny przy różnej grubości tkanek (różna głębokość modulacji dla różnych osób) i jakie jest w związku z tym przesunięcie fazowe pomiędzy sygnałem Ramana a sygnałem stymulującym ucisk, co może obniżyć czułość pomiaru u niektórych pacjentów. Ponadto wprowadzanie ucisku też jest wprowadzaniem inwazyjności do pomiaru i nie wyjaśniono, jaki jest wpływ częstego powtarzania procedury na dobrostan pacjenta. Ponadto nie zweryfikowano wzajemnego sprzęgania sygnału pulsu i sygnału ucisku, które mogą dać rozsynchronizowany sygnał wypadkowy (puls oraz modulacja wiązki optycznej lub ucisk tkanki).
Według przeprowadzonej analizy istniejącego stanu techniki, nie istnieją rozwiązania detekcji synchronicznej, w których sygnał użyteczny jest wymnażany nie przez sygnał synchronizujący generowany/wymuszany przez urządzenie pomiarowe, ale przez biosygnał, np. odzyskiwany z organizmu za pomocą pulsoksymetru.
W rzeczywistości nawet po zastosowaniu detekcji synchronicznej, ale z wymnażaniem sygnałem wygenerowanym sztucznie (czyli tak jak w pracy Chaiken et al.), a nie sygnałem pulsu można oczekiwać tylko niewielkiej poprawy w stosunku do detekcji bezpośredniej, ponieważ skuteczność detekcji synchronicznej jest ograniczona nieznajomością przebiegu sygnału modulującego zmiany w tkankach, który powinien być proporcjonalny do zmian w zawartości krwi w oświetlonym obszarze, a nie do intensywności ucisku (np. przebiegu zmian w czasie siły uciskającej tkanki, który jest rejestrowany).
W związku z tymi niedogodnościami proponuje się inną metodę eliminacji wpływu różnic osobniczych przez określenie sygnału odniesienia zależnego od zawartości krwi (liczby czerwonych ciałek) w badanych tkankach.
Wynalazek obejmuje sposób działania i budowę układu pomiarowego do wyznaczania stężenia glukozy we krwi bez naruszania ciągłości tkanek (bezinwazyjnie) za pomocą detekcji synchronicznej wykorzystującej sprzężone wzajemnie pomiary widm Ramana i pomiary pulsoksymetrem, gdzie pomiar pulsoksymetrem jest źródłem sygnału synchronizującego pomiar ramanowski przy implementacji algorytmów detekcji synchronicznej.
Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi polegający na oświetlaniu fragmentu badanej tkanki promieniowaniem laserowym, gromadzeniu zwrotnie promieniowania rozproszenia ramanowskiego przez sondę Ramana, rozkładaniu przez spektrometr na składowe widmowe i rejestrowaniu kamerą charakteryzuje się według wynalazku tym, że fragment badanej tkanki oświetla się wiązką promieniowania laserowego przepuszczoną przez sondę Ramana. Następnie zwrotnie uzyskane promieniowanie rozproszenia ramanowskiego doprowadza się do spektrometru i sprzęgniętej z nim ka
PL 235 367 B1 mery rejestrującej dalej połączonej z komputerem sterującym, do którego przyłączony jest także pulsoksymetr. Za pomocą pulsoksymetru równocześnie mierzy się puls i rejestruje się zmiany czasowe ilości krwi w badanym obszarze tkanek zbliżonym objętościowo do obszaru, z którego rejestrowane jest promieniowanie rozproszenia ramanowskiego. Otrzymany sygnał odpowiadający przebiegowi czasowemu pulsu oraz zarejestrowane w kamerze rejestrującej sygnały odpowiadające przetworzonemu w spektrometrze widmu Ramana przetwarza się w komputerze sterującym za pomocą algorytmów detekcji synchronicznej w ten sposób, że za pomocą zaimplementowanego programowo układu mnożącego w czasie rzeczywistym i filtru dolnoprzepustowego eliminuje się składowe zmienne o częstotliwości pulsu, dwukrotnej częstotliwości pulsu i wyodrębnia się składową stałą w sygnale ramanowskim powodowaną rozpraszaniem na składnikach krwi od składowych powodowanych rozpraszaniem na innych składnikach badanej tkanki, która jest proporcjonalna do zawartości glukozy we krwi. Jako sygnał referencyjny stosuje się sygnał z pulsu krwi.
Układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi zawierający laser promieniowania pobudzającego połączony z sondą Ramana, która połączona jest ze spektrometrem oraz kamerą charakteryzuje się według wynalazku tym, że spektrometr rejestrujący światło rozproszone na badanej tkance i przepuszczone przez sondę Ramana jest sprzęgnięty z kamerą rejestrującą przetworzone widmo rozproszenia ramanowskiego. Kamera podłączona jest do komputera sterującego programowo realizującego detekcję synchroniczną sygnału ramanowskiego z wykorzystaniem sygnału odpowiadającego przebiegowi pulsu pochodzącego od pulsoksymetru. Pulsoksymetr również jest przyłączony do komputera sterującego.
Zastosowanie pulsoksymetru pozwala uzyskać sygnał proporcjonalny do modulowanej pulsem zawartości czerwonych ciałek krwi. To z kolei pozwala na synchronizację pomiaru ramanowskiego i zastosowanie algorytmu detekcji synchronicznej (opisany w literaturze, np. Kotarski, M., & Smulko, J. (2009, September) Assessment of synchronic detection at low frequencies through DSP-based board and PC sound card. In XIX IMEKO World Congress, s. 960-963), co umożliwia częściowe odseparowanie (rozróżnienie) w dziedzinie czasu sygnałów pochodzących od krwi od składowych pochodzących od otaczających tkanek, albowiem w poszczególnych fazach cyklu pulsu zawartość krwi w oświetlonym obszarze jest różna, a także redukcję, w wyniku uśredniania, szumów w rejestrowanych widmach Ramana oraz wpływu zjawisk rozpraszania w tkankach o właściwościach różnych dla poszczególnych osób.
Wynalazek jest bliżej objaśniony w przykładzie wykonania na rysunku, na którym fig, 1 przedstawia schemat blokowy układu do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi, gdzie strzałki z liniami ciągłymi oznaczają kierunki przepływu sygnałów pomiarowych, a strzałki z liniami przerywanymi - sygnały sterujące pomiarem, a fig. 2 przedstawia przebiegi czasowe sygnałów: A - sygnału ramanowskiego dla wybranej, przykładowej długości fali (pasma w widmie Ramana), powstający w tkance TK, składającego się ze składowej pochodzącej od krwi, zmodulowanej sygnałem powodowanym pulsem oraz niezmodulowanej składowej pochodzącej od otaczających tkanek, powodowanej zmiennością osobniczą; oraz B - sygnału rejestrowanego przez pulsoksymetr.
W sposobie według wynalazku, promieniowanie pobudzające z lasera LR jest filtrowane (filtr optyczny pasmowo-przepustowy na długość fali lasera) celem wyeliminowania z niego niepożądanych składowych widmowych, skupiane przez sondę Ramana SR i oświetla badaną tkankę TK. Sonda Ramana SR skupia część sygnału rozproszonego i doprowadza go zwrotnie do spektrometru SP. Promieniowanie rozproszenia ramanowskiego jest tam rozdzielane widmowo, a następnie rejestrowane przez kamerę KR i zapisywane jako widmo Ramana w komputerze sterującym KS. Przebiegi czasowe najważniejszych sygnałów przedstawiono na fig. 2. Sygnał ramanowski A zawiera składową zmienną od krwi, modulowaną częstotliwością pulsu oraz składową stałą, pochodzącą głównie od otaczając ych tkanek, którą należy wyeliminować, gdyż jest ona silnie zależna od cech osobniczych. Pomiar widma ramanowskiego realizowany jest przez serię krótkotrwałych pomiarów powtarzanych z częstotliwością co najmniej dwa razy większą od pulsu, poddawaną następnie w komputerze sterującym KS operacjom detekcji synchronicznej (mnożenia przez sygnał z pulsoksymetru i filtracji dolnoprzepustowej). Pozwala to na odtworzenie przebiegu czasowego także składowej zmiennej, która przenosi informację użyteczną o poziomie glukozy we krwi.
Równocześnie jest rejestrowany sygnał z pulsoksymetru PO, informujący o pulsie i zmianach stężenia tlenu, a pośrednio o zmianach koncentracji krwi w obszarze badanej tkanki TK, zbliżonym do obszaru, gdzie następuje rozproszenie promieniowania lasera LR. Dzięki zastosowaniu detekcji synchronicznej uzyskuje się z sygnału ramanowskiego składową proporcjonalną do zmian zawartości krwi
PL 235 367 B1 w oświetlanych tkankach. Pozostałe składowe, w wyniku operacji detekcji synchronicznej i uśredniania, są tłumione.
Na fig. 2 przedstawiono przebiegi czasowe sygnałów: A - sygnał ramanowski dla wybranej, przykładowej długości fali powstający w tkance TK, składający się ze składowej pochodzącej od krwi, zmodulowanej sygnałem powodowanym pulsem oraz niezmodulowanej składowej pochodzącej od otaczających tkanek, powodowaną zmiennością osobniczą; B - sygnał rejestrowany przez pulsoksymetr.
Pulsoksymetr PO wykorzystuje do pomiarów zjawisko absorpcji przy innych długościach fal niż promieniowanie rejestrowane w pomiarach widm Ramana. W stosunku do istniejącego rozwiązania z rytmicznym uciskaniem tkanek uzyskuje się większą skuteczność detekcji synchronicznej, ponieważ rejestruje się sygnał odniesienia proporcjonalny do zawartości krwi w oświetlanych tkankach i dzięki temu można określić w rejestrowanym promieniowaniu rozproszenia ramanowskiego składową powodowaną rozpraszaniem na czerwonych ciałkach krwi, eliminując składowe powodowane rozpraszaniem na innych tkankach.
Komputer sterujący KS realizuje w dwóch operacjach detekcję synchroniczną (modyfikacja metody opisanej w Bielecki Z., Rogalski A., Detekcja sygnałów optycznych, Wydawnictwa Naukowo-Techniczne PWN-WNT 1991, str. 364-373), polegającą na przetwarzaniu wielokanałowym i realizacji operacji mnożenia i filtracji dolnoprzepustowej za pomocą komputera z oprogramowaniem do obliczeń macierzowych. W pierwszej z nich sygnał ramanowski jest mnożony wielokanałowo przez sygnał zmienny B z pulsoksymetru PO. Ponieważ te przebiegi są modulowane takim samym czynnikiem, to na wyjściu uzyskuje się składową stałą i losową, reprezentującą błędy pomiarów i efekty skończonego czasu uśredniania. W trakcie następnej operacji - filtracji dolnoprzepustowej - składowa losowa zostaje odfiltrowana, a na wyjście podawany jest tylko sygnał stały zależny od zjawiska Ramana zachodzącego we krwi.
Do komputera sterującego KS, inicjalizującego procedury pomiarowe oraz realizującego detekcję synchroniczną, podłączona jest kamera KR i pulsoksymetr PO. Komputer sterujący KS realizuje funkcje układu mnożącego w czasie rzeczywistym sygnały z kamery KR oraz pulsoksymertru PO, a także filtru dolnoprzepustowego eliminującego sygnały o częstotliwości pulsu i dwukrotnej częstotliwości pulsu oraz sygnały losowe, reprezentujące błędy pomiarów i efekty skończonego czasu uśredniania. Sygnały uzyskane z kamery KR pochodzą od przyłączonego do niej spektrometru SP, który połączony jest z sondą Ramana SR (transmisja sygnału optycznego - rozpraszania Ramana - w kierunku od SR do SP). Sonda Ramana SR połączona jest ze źródłem promieniowania laserowego LR (transmisja sygnału lasera w kierunku od LR do SR).
Claims (2)
1. Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi polegający na oświetlaniu fragmentu badanej tkanki promieniowaniem laserowym, gromadzeniu zwrotnie promieniowania rozproszenia ramanowskiego przez sondę Ramana, rozkładaniu przez spektrometr na składowe widmowe i rejestrowaniu kamerą, znamienny tym, że fragment badanej tkanki oświetla się wiązką promieniowania laserowego przepuszczoną przez sondę Ramana (SR), następnie zwrotnie uzyskane promieniowanie rozproszenia ramanowskiego doprowadza się do spektrometru (SP) i sprzęgniętej z nim kamery rejestrującej (KR) dalej połączonej z komputerem sterującym (KS), do którego przyłączony jest także pulsoksymetr (PO), za pomocą którego równocześnie mierzy się puls i rejestruje się zmiany czasowe ilości krwi w badanym obszarze tkanek (TK) zbliżonym objętościowo do obszaru, z którego rejestrowane jest promieniowanie rozproszenia ramanowskiego, przy czym otrzymany sygnał odpowiadający przebiegowi czasowemu pulsu oraz zarejestrowane w kamerze rejestrującej (KR) sygnały odpowiadające przetworzonemu w spektrometrze (SP) widmu Ramana przetwarza się w komputerze sterującym (KS) za pomocą algorytmów detekcji synchronicznej w ten sposób, że za pomocą zaimplementowanego programowo układu mnożącego w czasie rzeczywistym i filtru dolnoprzepustowego eliminuje się składowe zmienne o częstotliwości pulsu, dwukrotnej częstotliwości pulsu i wyodrębnia się składową stałą w sygnale ramanowskim powodowaną rozpraszaniem na składnikach krwi od składowych powodowanych rozpraszaniem na innych składnikach badanej tkanki, która jest proporcjonalna do zawartości glukozy we krwi, przy czym jako sygnał referencyjny stosuje się sygnał z pulsu krwi.
PL 235 367 Β1
2. Układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi zawierający laser promieniowania pobudzającego połączony z sondą Ramana, która połączona jest ze spektrometrem oraz kamerą, znamienny tym, że spektrometr (SP) rejestrujący światło rozproszone na badanej tkance (TK) i przepuszczone przez sondę Ramana (SR) jest sprzęgnięty z kamerą (KR) rejestrującą przetworzone widmo rozproszenia ramanowskiego, przy czym kamera (KR) podłączona jest do komputera sterującego (KS) programowo realizującego detekcję synchroniczną sygnału ramanowskiego z wykorzystaniem sygnału odpowiadającego przebiegowi pulsu pochodzącego od pulsoksymetru (PO), który również jest przyłączony do komputera sterującego (KS).
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL411223A PL235367B1 (pl) | 2015-02-10 | 2015-02-10 | Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi i układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi |
EP15460074.6A EP3056141A1 (en) | 2015-02-10 | 2015-09-23 | A method of non-invasive measurement of blood glucose and optoelectronic system to non-invasive measurement of blood glucose |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL411223A PL235367B1 (pl) | 2015-02-10 | 2015-02-10 | Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi i układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL411223A1 PL411223A1 (pl) | 2016-08-16 |
PL235367B1 true PL235367B1 (pl) | 2020-06-29 |
Family
ID=54705149
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL411223A PL235367B1 (pl) | 2015-02-10 | 2015-02-10 | Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi i układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP3056141A1 (pl) |
PL (1) | PL235367B1 (pl) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US11026604B2 (en) | 2017-07-13 | 2021-06-08 | Cercacor Laboratories, Inc. | Medical monitoring device for harmonizing physiological measurements |
CN109171694B (zh) * | 2018-07-23 | 2021-04-06 | 北京大学深圳研究生院 | 一种基于脉搏信号的糖尿病病情评估方法及系统 |
US11986289B2 (en) | 2018-11-27 | 2024-05-21 | Willow Laboratories, Inc. | Assembly for medical monitoring device with multiple physiological sensors |
US20220022784A1 (en) * | 2018-12-14 | 2022-01-27 | Ecole Polytechnique Federale De Lausanne (Epfl) | Non-invasive Glucose Sensor |
CN111227844B (zh) * | 2020-03-27 | 2022-05-20 | 宁波大学 | 一种基于拉曼散射光谱的无创血糖检测装置及检测方法 |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5737439A (en) * | 1996-10-29 | 1998-04-07 | Smarttouch, Llc. | Anti-fraud biometric scanner that accurately detects blood flow |
DE69836979T2 (de) | 1997-11-12 | 2007-11-08 | Lightouch Medical, Inc. | Verfahren zur nicht invasiven analytenmessung |
WO2005109700A1 (en) * | 2004-05-04 | 2005-11-17 | Stheno Corporation | A double reference lock-in detector |
DE102005024578A1 (de) * | 2005-05-25 | 2006-11-30 | Raumedic Ag | Sonde zur Messung des Sauerstoffgehaltes in biologischem Gewebe sowie Katheter mit einer derartigen Sonde |
PL1912058T3 (pl) * | 2006-10-14 | 2011-05-31 | Hoffmann La Roche | Sposób i urządzenie do wykrywania i oceny sygnałów optycznych |
US8412293B2 (en) * | 2007-07-16 | 2013-04-02 | Optiscan Biomedical Corporation | Systems and methods for determining physiological parameters using measured analyte values |
US20130267799A1 (en) * | 2012-04-06 | 2013-10-10 | Hannu Harjunmaa | Noninvasive measurement of analyte concentration using a fiberless transflectance probe |
-
2015
- 2015-02-10 PL PL411223A patent/PL235367B1/pl unknown
- 2015-09-23 EP EP15460074.6A patent/EP3056141A1/en not_active Withdrawn
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP3056141A1 (en) | 2016-08-17 |
PL411223A1 (pl) | 2016-08-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5372135A (en) | Blood constituent determination based on differential spectral analysis | |
JP3715241B2 (ja) | ラマン分光検査法を使用して体液中の物質を検出する方法および装置 | |
JP3619969B2 (ja) | 複数光源を備えた光センサー | |
US5497769A (en) | Photosensor with multiple light sources | |
KR100762659B1 (ko) | 비관혈 혈액 성분치 측정 장치 및 방법 | |
PL235367B1 (pl) | Sposób bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi i układ optoelektroniczny do bezinwazyjnego pomiaru glukozy we krwi | |
AU5382696A (en) | Methods of minimizing scattering and improving tissue sampling in non-invasive testing and imaging | |
CN110292359A (zh) | 一种无标记全光学神经调控与成像的方法与装置 | |
KR20160024306A (ko) | 스트레스 측정 장치 및 스트레스 측정 방법 | |
EP3095384A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur nicht-invasiven bestimmung einer messgrösse eines analyten in einem biologischen körper | |
Wróbel et al. | Utilizing pulse dynamics for non-invasive Raman spectroscopy of blood analytes | |
Sekar et al. | Broadband diffuse optical characterization of elastin for biomedical applications | |
US20090198113A1 (en) | Dedicated spectral illumination spectroscopy | |
El-Sharkawyi | Detection and characterization of human teeth caries using 2D correlation raman spectroscopy | |
WO2018194056A1 (ja) | 血液の吸収スペクトルを算出する情報処理方法、情報処理装置およびプログラム | |
US20060063991A1 (en) | Method and apparatus for non-invasive measurement of blood analytes with dynamic spectral calibration | |
CN113974618B (zh) | 基于水峰血糖修正的无创血糖测试方法 | |
DE102015009864B4 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur nicht-invasiven Bestimmung einer Messgröße eines Analyten in einem biologischen Körper | |
Bazaev et al. | Noninvasive methods for blood glucose measurement | |
JP2003159239A (ja) | 生体計測装置 | |
DE102013008400A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur nicht-invasiven Bestimmung einer Messgröße eines Analyten in einem biologischen Körper | |
KR102290278B1 (ko) | 비침습 간기능 검사 장치 및 비침습 간기능 검사 방법 | |
WO2023145810A1 (ja) | 体液に含まれる成分の濃度を測定するシステムおよび方法 | |
Bai et al. | PV-MBLL algorithm for extraction of absolute tissue oxygenation information by diffuse optical spectroscopy | |
KR20100075553A (ko) | 생체 조직으로부터 분광 시험 신호를 수집하는 방법 및 측정 장치 |