Nothing Special   »   [go: up one dir, main page]

JPH10160735A - Sandwich measuring method - Google Patents

Sandwich measuring method

Info

Publication number
JPH10160735A
JPH10160735A JP1774997A JP1774997A JPH10160735A JP H10160735 A JPH10160735 A JP H10160735A JP 1774997 A JP1774997 A JP 1774997A JP 1774997 A JP1774997 A JP 1774997A JP H10160735 A JPH10160735 A JP H10160735A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
antibody
antigen
human
antibodies
animal species
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP1774997A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Akira Yano
朗 矢野
Minehiko Yokoyama
峰彦 横山
Shinya Ikematsu
真也 池松
Munehiro Oda
宗宏 小田
Takashi Muramatsu
喬 村松
Toshiko Muramatsu
寿子 村松
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Meiji Dairies Corp
Original Assignee
Meiji Milk Products Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Meiji Milk Products Co Ltd filed Critical Meiji Milk Products Co Ltd
Priority to JP1774997A priority Critical patent/JPH10160735A/en
Publication of JPH10160735A publication Critical patent/JPH10160735A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain a sandwich measuring method in which a high-sensitivity measuring system can be constructed by a method wherein two kinds of polychlonal antibodies are used as a first antibody and a second antibody for a sandwich method. SOLUTION: A sandwich method is constructed in such a way that human MK is used as an antigen and that a rabbit and a chicken are used an immune animals. When epitopes on MK molecules recognized by two kinds of polyclonal antibodies derived from the rabbit and the chicken are compared, the two kinds of polyclonal antibodies recognize respectively different epitope groups on identical antigen molecules. When the polyclonal antibodies are used as a first antibody and a second antibody for the sandwich method, it is possible to establish the sandwich method similar to that of monoclonal antibodies. In addition, an antigen is a protein which is originally owened by an animal species, different animal species are immunized, and polyclonal antibodies are obtained from them. In addition, two kinds of animal species which are immunized are not limited to the rabbit and the chicken, and a combination of animal species in which epitopes are not overlapped can be used arbitrarily.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、免疫測定法におけ
るいわゆるサンドイッチ測定法に関する。
[0001] The present invention relates to a so-called sandwich assay in an immunoassay.

【0002】[0002]

【従来の技術】免疫測定法(immunoassay)は、抗原抗体
反応を利用した抗原または抗体の定量測定法である。こ
のうち、酵素をトレーサーとして用いる免疫測定法を
「酵素免疫測定法」または「エンザイムイムノアッセ
イ」と呼んでいる。一般的にはenzyme immunoassayと総
称され、略語としてEIAが定着している。
2. Description of the Related Art An immunoassay is a method for quantitatively measuring an antigen or antibody using an antigen-antibody reaction. Among them, the immunoassay using the enzyme as a tracer is called "enzyme immunoassay" or "enzyme immunoassay". It is generally called enzyme immunoassay, and EIA has been established as an abbreviation.

【0003】EIAには、酵素標識抗体(または抗原)の
非結合遊離分画F(Free form)を抗原抗体結合物B(bound
form)から分離するBF分離操作を必要とするものと、そ
うでないものとの2種類がある。前者はheterogenous E
IA、後者はhomogeneous EIAとよばれている。ホモジニ
アス法は、操作が簡単で短時間で結果が得られる利点が
あるが、測定感度が低く、測定範囲が狭いという欠点が
ある。ヘテロジニアス法には、競合法と非競合法の2種
類がある。前者は、一定量の抗体に対して、一定量の標
識抗原と被標識抗原とを競合的に結合させ、結合型(ま
たは遊離型)に含まれる酵素活性を測定する方法であ
る。この方法は、測定できる濃度範囲が狭く、感度が悪
く、血中干渉物質の影響を受けやすいことなどによりあ
まり用いられていない、そのため後者のいわゆるサンド
イッチ法または2点測定法で測定するのが一般的であ
る。その原理は固相上に不溶化した抗体、液相中の測定
すべき抗原、酵素標識抗体の3者からなる免疫複合体を
固相上に形成させ、固相上の酵素活性を測定して測定す
べき抗原の量を知る方法である。
[0003] For EIA, an unbound free fraction F (free form) of an enzyme-labeled antibody (or antigen) is combined with an antigen-antibody conjugate B (bound
form) which requires a BF separation operation, and those which do not. The former is heterogenous E
IA, the latter is called homogeneous EIA. The homogeneous method has the advantage that the operation is simple and results can be obtained in a short time, but has the disadvantage that the measurement sensitivity is low and the measurement range is narrow. There are two types of heterogeneous methods, a competitive method and a non-competitive method. The former is a method in which a fixed amount of a labeled antigen and a labeled antigen are competitively bound to a fixed amount of an antibody, and the enzyme activity contained in the bound (or free) form is measured. This method is not widely used due to its narrow measurable concentration range, poor sensitivity, and susceptibility to blood interfering substances. Therefore, the latter method is generally used for the so-called sandwich method or two-point measurement method. It is a target. The principle is that an immune complex consisting of an antibody insolubilized on a solid phase, an antigen to be measured in a liquid phase, and an enzyme-labeled antibody is formed on the solid phase, and the enzyme activity on the solid phase is measured and measured. This is a method to know the amount of antigen to be used.

【0004】サンドイッチ法において、固相化抗体(第
1抗体ともいう)および液相中の抗体(第2抗体ともい
う)にポリクロ−ナル抗体を用いた場合、一般的にポリ
クローナル抗体は、抗原分子上の様々な異なるエピトー
プとそれぞれ反応するいくつかのモノクローナル抗体の
集団であるために、抗原液と液相中のポリクローナル抗
体とをあらかじめ反応させておくと、抗原分子上のエピ
トープのほとんどが液相のポリクローナル抗体と反応
し、反応できるエピトープが極端に減少する。その結果
この複合体に固相化抗体を反応させても正確な抗原量の
測定が行われないことになる。すなわち、一般的に液相
中の抗体がモノクローナル抗体でない場合には、測定す
べき抗原と液相中の抗体とを操作上の制約なく前もって
反応させることは出来ない。
[0004] In the sandwich method, when a polyclonal antibody is used as an immobilized antibody (also referred to as a first antibody) and an antibody in a liquid phase (also referred to as a second antibody), generally, the polyclonal antibody is composed of an antigen molecule. Since the antigen solution is a population of several monoclonal antibodies that react with the various different epitopes above, most of the epitopes on the antigen molecules will be in the liquid phase if the antigen solution and polyclonal antibodies in the liquid phase are reacted in advance. And the number of epitopes that can be reacted is extremely reduced. As a result, even if this complex is reacted with an immobilized antibody, an accurate measurement of the amount of antigen cannot be performed. That is, in general, when the antibody in the liquid phase is not a monoclonal antibody, the antigen to be measured and the antibody in the liquid phase cannot be reacted in advance without any operational restrictions.

【0005】そのため、まず一次反応として固相化抗体
に抗原を結合させ、二次反応として酵素等で標識した液
相抗体を測定系に添加し、固相化抗体にトラップされた
抗原分子上で固相化抗体が結合していないエピトープに
対して液相抗体を結合させるサンドイッチ法が行われて
いる。あるいは、抗原、液相抗体、固相抗体の3者をほ
とんど同時に混合して反応を開始し、エピトープの奪い
合いを行わせてサンドイッチ法を成立させる方法も行わ
れている。この場合は、操作性が悪いと同時にエピトー
プの奪い合いが起こっていることに変わりはないため、
次に述べるモノクローナル抗体を組み合わせた場合より
も反応効率は低下している。
[0005] Therefore, first, an antigen is bound to an immobilized antibody as a primary reaction, and a liquid phase antibody labeled with an enzyme or the like is added to a measurement system as a secondary reaction, and the antigen is trapped on the antigen molecule trapped by the immobilized antibody. A sandwich method in which a liquid phase antibody is bound to an epitope to which no immobilized antibody is bound has been used. Alternatively, there is also a method in which an antigen, a liquid-phase antibody, and a solid-phase antibody are almost simultaneously mixed to initiate a reaction, and a sandwich method is established by competing for epitopes. In this case, the operability is poor and the scramble for epitopes is still occurring.
The reaction efficiency is lower than when the following monoclonal antibodies are combined.

【0006】これに対して、抗体として抗原分子上の互
いに異なる二つのエピトープを認識する2種類のモノク
ロ−ナル抗体を組み合わせるか、あるいは固相化抗体か
液相中の抗体(標識抗体)のいずれかにモノクロ−ナル
抗体を用い、抗原と標識抗体を混合した後、固相化抗体
と反応させる方法が、特公平2-39747に開示されてい
る。ここで示されている方法は抗原と標識抗体を混合し
た後に、特に時間の制限なく固相化抗体を反応させてい
るので免疫反応の効率が良いだけでなく、操作性が良好
であるという点でも優れているといえる。
On the other hand, two kinds of monoclonal antibodies recognizing two different epitopes on an antigen molecule are combined as an antibody, or either an immobilized antibody or an antibody in a liquid phase (labeled antibody). A method of using a crab monoclonal antibody, mixing an antigen and a labeled antibody, and reacting the mixed antibody with an immobilized antibody is disclosed in Japanese Patent Publication No. 2-39747. In the method shown here, after the antigen and the labeled antibody are mixed, the immobilized antibody is reacted without any particular time limitation, so that not only the efficiency of the immune reaction is high but also the operability is good. But it can be said that it is excellent.

【0007】しかしながら、測定対象の抗原がヒトや他
の動物が本来持っている抗原(例えばアルブミン)であ
る場合、これらの抗原はアミノ酸の1次構造の相同性が
動物種間で非常に高いものも多く、例えばマウスの抗原
と相同性の高い抗原に対しては力価の高いモノクローナ
ル抗体を作製するのは困難な場合があることが知られて
いる。一方、ポリクロ−ナル抗体の場合には、このよう
な抗原の相同性を考慮して抗原の相同性の低い免疫動物
を選択することが出来るため、ポリクローナル抗体の方
がモノクロール抗体より力価の高い抗体が得られる場合
が多い。このような考えで作製された2種類のポリクロ
ーナル抗体が同一抗原分子上の互いに異なるエピトープ
を認識することが判明した場合には、これらのポリクロ
ーナル抗体を固相化抗体と液相抗体とに用いてモノクロ
ーナル抗体を組み合わせた場合と比較して、抗原とのよ
り強固な結合性が期待でき、しかも操作性の点でも優れ
たサンドイッチ法を組み上げることができるものと考え
られる。そこで、本発明者らは測定対象の抗原が動物が
本来持っている抗原である場合、ポリクローナル抗体の
組み合わせでもモノクローナル抗体と同様に抗原と液相
抗体をあらかじめ混合し、その後固相抗体と反応させる
方法が可能かどうかを検討した結果、本発明に到達し
た。
However, when the antigen to be measured is an antigen originally possessed by humans or other animals (for example, albumin), these antigens have very high homology in the primary structure of amino acids among animal species. For example, it is known that it may be difficult to produce a high-titer monoclonal antibody against an antigen highly homologous to a mouse antigen, for example. On the other hand, in the case of polyclonal antibodies, immunized animals with low antigen homology can be selected in consideration of such antigen homology, so that polyclonal antibodies have higher titers than monoclonal antibodies. High antibodies are often obtained. If it is found that two types of polyclonal antibodies prepared based on such a concept recognize different epitopes on the same antigen molecule, these polyclonal antibodies are used as an immobilized antibody and a liquid phase antibody. Compared to the case where a monoclonal antibody is combined, stronger binding to an antigen can be expected, and it is considered that a sandwich method excellent in operability can be assembled. Therefore, when the antigen to be measured is an antigen originally possessed by the animal, the antigen and the liquid-phase antibody are mixed in advance in the same manner as the monoclonal antibody even in the case of the combination of the polyclonal antibodies, and then reacted with the solid-phase antibody. As a result of studying whether the method is feasible, the present invention has been reached.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、測定対象の
抗原が生体が本来持っている蛋白質である場合、第1抗
体と第2抗体にポリクローナル抗体を用い、測定すべき
抗原と第2抗体(標識抗体)とを前もって反応させ得ら
れた複合体を第1抗体と反応させることが出来るサンド
イッチ法を提供することを目的とする。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention is directed to a method for measuring an antigen to be measured using a polyclonal antibody as the first antibody and the second antibody when the antigen to be measured is a protein originally possessed by a living body. It is an object of the present invention to provide a sandwich method by which a complex obtained by reacting with a (labeled antibody) in advance can be reacted with a first antibody.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、動物が本
来共通に持っている蛋白質抗原の多くは動物種間でアミ
ノ酸の1次構造の相同性が高い部分を持つが、相同性の
ない部分に着目すると動物種間で一致していないことが
多い為に、そのような蛋白質抗原を2種類の異なる動物
に免疫して得られた2種類のポリクローナル抗体は、そ
れぞれの抗体の認識するエピトープが完全には一致しな
い筈であるとの予測の元にそれぞれの抗体のエピトープ
を比較したところ、本発明者の考えたとおり、当該蛋白
質抗原分子上のそれぞれ異なるエピトープを認識するこ
とを確認し、このような2種類のポリクローナル抗体を
サンドイッチ法の第1抗体と第2抗体に用いることによ
り当該蛋白質抗原に対する優れたサンドイッチ系を組み
立てることが可能であることを見い出し、本発明を完成
させた。
Means for Solving the Problems The present inventors have found that most of the protein antigens that animals originally have in common have a high homology in the primary structure of amino acids among animal species. When focusing on the non-existent parts, there is often no agreement between animal species, so two types of polyclonal antibodies obtained by immunizing two different animals with such a protein antigen recognize the respective antibodies. When the epitopes of the respective antibodies were compared based on the prediction that the epitopes would not completely match, it was confirmed that they recognized different epitopes on the protein antigen molecule as considered by the present inventors. By using such two kinds of polyclonal antibodies for the first antibody and the second antibody of the sandwich method, it is possible to assemble an excellent sandwich system for the protein antigen. It found that there was the completion of the present invention.

【0010】すなわち、本発明は、特許請求の範囲の各
請求項記載の発明からなる。
That is, the present invention comprises the invention described in each claim.

【0011】[0011]

【発明の実施の形態】本発明に適用可能な抗原とは、動
物が本来持っている蛋白質がその対象であり、ウイルス
等の外来の抗原は含まれない。具体的には、アルブミン
やグロブリン等の血清蛋白、インターロイキン1や2の
サイトカイン、G-CSFや後で詳細に述べるミッドカイン
(MK)等の成長因子等である。ウイルス、細菌、原虫等は
これらを有しない動物種に対して完全なる異物となり、
得られる抗体は様々な特異性と親和力を持つそれぞれ異
なる抗体を含む不均一なポリクローナル抗体となってし
まうため、免疫動物を2種類用いてもそれぞれから得ら
れたポリクローナル抗体の認識する抗原分子上のエピト
ープは重なり合いモノクローナル抗体と同様な測定系を
組み上げることは出来ない。また、生体内で産生された
蛋白質であっても、そのエピトープが糖鎖部分にある場
合は本発明を適用することは出来ない。具体的にはCA19
-9等のいわゆる糖鎖抗原に対して本発明を適用すること
は出来ない。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Antigens applicable to the present invention include proteins originally possessed by animals and do not include foreign antigens such as viruses. Specifically, serum proteins such as albumin and globulin, cytokines of interleukins 1 and 2, G-CSF and midkine described in detail below.
Growth factors such as (MK). Viruses, bacteria, protozoa, etc. are completely foreign to animal species that do not have these,
Since the resulting antibodies will be heterogeneous polyclonal antibodies containing different antibodies having various specificities and affinities, even if two types of immunized animals are used, the antigenic molecules recognized by the polyclonal antibodies obtained from each will be Epitopes overlap and a similar assay cannot be assembled with a monoclonal antibody. In addition, the present invention cannot be applied to a protein produced in a living body if its epitope is in the sugar chain portion. Specifically, CA19
The present invention cannot be applied to so-called sugar chain antigens such as -9.

【0012】本発明法のように1種類の抗原を2種類の
動物種に免疫し、得られた抗体を用いて測定を行ってい
る先行例はいくつか報告されている。例えば特公平6-92
972にはHTLV-IIIウイルスを測定する免疫検定法におい
て、固相側の抗体と標識抗体とをそれぞれ異なった動物
種に免疫して得た抗体を使用している例が開示されてい
る。この場合、第一に、測定対象の抗原が外来の抗原で
あるため本発明法のようなモノクローナル抗体と同様な
用い方ができる抗体は得ることが出来ない。また、実際
の使用形態も、抗原と固相化抗体を反応させた後に洗浄
を行ういわゆる2ステップサンドイッチ法が行われてい
る。さらに、該発明で固相側の抗体と、標識抗体とを異
なった動物種に免疫して得たものを用いているのは、一
種類の動物種から得られた抗体のみを用いた場合、その
動物種の抗体に対する非特異的な反応が問題となる場合
があるため、その非特異反応を回避する方法として行わ
れているのである。つまり、この先行例の発明の主体は
非特異的な反応の除去を行う方法であり、反応操作の軽
減等を目的としていないため、先に述べたように得られ
た二種の抗体を最終的に共存した状態では用いていな
い。
There have been reported several prior examples in which one kind of antigen is immunized to two kinds of animal species as in the method of the present invention, and measurement is performed using the obtained antibodies. For example, Tokuhei 6-92
972 discloses an example in which an antibody obtained by immunizing a different animal species with an antibody on a solid phase and a labeled antibody is used in an immunoassay for measuring HTLV-III virus. In this case, first, since the antigen to be measured is a foreign antigen, an antibody that can be used in the same manner as the monoclonal antibody as in the method of the present invention cannot be obtained. In addition, a so-called two-step sandwich method in which washing is performed after reacting an antigen with an immobilized antibody is performed in an actual usage form. Further, in the present invention, the antibody obtained by immunizing the antibody on the solid phase side and the labeled antibody with a different animal species is used, when using only an antibody obtained from one kind of animal species, Since a non-specific reaction to the antibody of the animal species may be a problem, it is performed as a method for avoiding the non-specific reaction. In other words, the subject of the invention of the preceding example is a method for removing a non-specific reaction and is not aimed at reducing the reaction operation or the like, so that the two kinds of antibodies obtained as described above are ultimately used. Not used in coexistence.

【0013】また、特開昭63-118656や特開平5-203647
には、本発明と同様に、異なる動物種由来の抗体を組み
合わせ、それらを共存した状態で用いている例が示され
ている。これらの先行例の場合も測定対象抗原としてウ
イルス等の外来の抗原が挙げられており、本発明で述べ
られている、生体が元来有している蛋白質抗原を2種類
の動物種に免疫した場合にモノクローナル抗体と同様の
用い方ができるポリクローナル抗体を得ることができる
ことを想定していないことは明らかである。また、本発
明法の様に、抗原と液相抗体を反応させた後に固相抗体
と反応させる例は示されておらず、すべて抗原、液相抗
体、固相抗体の3者を同時に反応させる例が示されてい
るだけである。ここで、先の3者を同時に反応させて共
存させる場合と、抗原と液相抗体を予め反応させておい
てから、任意の時間に固相抗体と反応させて最終的に3
者が共存する場合はその内容に大きな隔たりがある。先
の3者を同時に反応させる方法は、ほとんどの抗体で実
施することができるが、後の抗原と液相抗体を反応させ
た後、任意の時間に固相抗体と反応させても全く問題の
ない測定が行われる抗体は、エピトープの重なりが実質
的にない抗体の組み合わせに限られるからである。
Further, Japanese Patent Application Laid-Open Nos. 63-118656 and 5-203647
Shows an example in which antibodies derived from different animal species are combined and used in the same state as in the present invention. In the case of these prior examples, foreign antigens such as viruses are also mentioned as antigens to be measured, and two kinds of animal species were immunized with the protein antigen originally contained in the living body described in the present invention. Obviously, in this case, it is not assumed that a polyclonal antibody which can be used in the same manner as a monoclonal antibody can be obtained. Furthermore, there is no example of reacting an antigen with a liquid phase antibody and then reacting with a solid phase antibody as in the method of the present invention, and all three antigens, liquid phase antibodies and solid phase antibodies are reacted simultaneously. Examples are only shown. Here, the above three cases are allowed to react at the same time to coexist, and after the antigen and the liquid phase antibody are reacted in advance, they are reacted with the solid phase antibody at an arbitrary time, and finally,
When people coexist, there is a big gap in the content. The method of simultaneously reacting the above three can be carried out with most antibodies. However, even if the later antigen is reacted with the liquid phase antibody and then reacted with the solid phase antibody at any time, there is no problem at all. This is because the antibody for which no measurement is performed is limited to a combination of antibodies having substantially no epitope overlap.

【0014】従って、ポリクロ−ナル抗体のみの組み合
わせで、モノクロ−ナル抗体を組み合わせた場合と同様
の測定系を組むことが出来ることについては、何ら主張
されていないばかりか、それぞれの実施例に示されてい
るのは、マウスモノクローナル抗体を固相か液相のいず
れかに用いたもののみである。このことは、マウスモノ
クローナル抗体のエピトープの重なりがない性質を利用
して反応効率を上げているものと考えられ、マウスモニ
クローナル抗体以外の動物抗体を用いた場合にエピトー
プの重なりがない組み合わせが存在することを確認して
いないことは明白である。
[0014] Therefore, it is not claimed that a combination of a polyclonal antibody alone and a measurement system similar to that in the case of a combination of a monoclonal antibody can be constructed. Only those using mouse monoclonal antibodies in either the solid or liquid phase have been described. This is thought to be due to the fact that the efficiency of the reaction is improved by utilizing the non-overlapping property of the mouse monoclonal antibody, and there is a combination without overlapping epitopes when using an animal antibody other than the mouse monoclonal antibody. It is clear that we have not confirmed that.

【0015】すなわち、生体由来の同一の抗原を異なっ
た動物種に免疫した場合、モノクローナル抗体のように
エピトープが重なり合わない場合があり、そのようにな
る2種類の動物種を選択することによってポリクローナ
ル抗体同士であっても、モノクローナル抗体を用いた場
合と同様な測定系を組み上げることができることについ
ては、これらの発明は何ら言及していない。
That is, when the same antigen derived from a living body is immunized to different animal species, the epitopes may not overlap as in the case of a monoclonal antibody. These inventions do not mention that the same measurement system as in the case of using a monoclonal antibody can be assembled between antibodies.

【0016】抗原の測定対象として、ミッドカイン(mid
kine: MK)およびプレイオトロフィン(pleiotrophin: PT
N)を例に挙げて本発明をさらに詳細に説明する。MKはレ
チノイン酸による胚性腫瘍細胞の分化過程で早期に発現
が誘導される遺伝子の発現産物として発見された(Kadom
atsu, K. et al.: Biochem. Biophys. Res. Commun.,15
1: 1312-1318, 1988)。PTNは、神経突起伸長能をもつヘ
パリン結合性蛋白質として新生ラットの脳に発見された
(Rauvala, H.: EMBO J., 8: 2933-2941, 1989)。MKとPT
Nは一次構造において45%の相同性を示した。MKとPTNは
ヘパリン結合性成長因子として独立のファミリーを形成
する(Muramatsu, T. et al.: Dev. Growth Differ., 3
6: 1-8, 1994)。ヒトMKとマウスMKはアミノ酸の1次構
造の相同性が87%であり、またヒトMKとニワトリMKとは
相同性が65%と、種によってアミノ酸の1次構造に違い
を持っている。ヒトMKをマウスあるいはニワトリに免役
した場合、それぞれの動物種の持つMKと同じアミノ酸の
1次構造を持った部分に対する抗体は産生されず、異な
った1次構造を持った部分に対する抗体が産生されると
考えられる。その結果、抗体作製の手法としては、通常
のポリクローナル抗体を作製する方法と何ら変わること
のない方法を用いても、それぞれの動物種から得られる
ポリクローナル抗体は当該抗原分子上のそれぞれ異なる
エピトープを認識すると考えられる。
As an object of antigen measurement, midkine (mid
kine: MK) and pleiotrophin: pleiotrophin: PT
The present invention will be described in more detail by taking N) as an example. MK was discovered as an expression product of a gene whose expression is induced early during the differentiation process of embryonic tumor cells by retinoic acid (Kadom
atsu, K. et al .: Biochem. Biophys. Res. Commun., 15
1: 1312-1318, 1988). PTN found in neonatal rat brain as a heparin-binding protein capable of neurite outgrowth
(Rauvala, H .: EMBO J., 8: 2933-2941, 1989). MK and PT
N showed 45% homology in primary structure. MK and PTN form independent families as heparin-binding growth factors (Muramatsu, T. et al .: Dev. Growth Differ., 3
6: 1-8, 1994). Human MK and mouse MK have an amino acid primary structure homology of 87%, and human MK and chicken MK have a homology of 65%, indicating a difference in amino acid primary structure between species. When human MKs are immunized to mice or chickens, antibodies against the same amino acid primary structure as the MK of each animal species are not produced, and antibodies against different primary structure parts are produced. It is thought that. As a result, polyclonal antibodies obtained from each animal species recognize different epitopes on the antigen molecule, even if a method that does not differ from a normal polyclonal antibody production method is used as a method for producing antibodies. It is thought that.

【0017】以上のような考えに基づいて抗原として特
願平7-255354の実施例1に記載の方法で得られたヒトMK
を用い、免疫動物には、ウサギとニワトリを用いてサン
ドイッチ法の組立てを行った。得られたウサギおよびニ
ワトリ由来のポリクローナル抗体の認識するMK分子上の
エピトープを比較したところ、本発明者らの考えたとお
り、2種類のポリクローナル抗体は同一抗原分子上のそ
れぞれ異なるエピトープ群を認識していることを見いだ
した。このようなポリクローナル抗体をサンドイッチ法
の第1抗体および第2抗体に用いてモノクローナル抗体
と同様のサンドイッチ法を確立した。また、PTNをウサ
ギとニワトリに同様に免疫した場合でも、それぞれから
得られたポリクローナル抗体の認識するPTN分子上のエ
ピトープは互いに異なっていた。
Based on the above concept, human MK obtained by the method described in Example 1 of Japanese Patent Application No. 7-255354 was used as an antigen.
The rabbits and chickens were used to assemble the sandwich method for immunized animals. Comparison of the epitopes on the MK molecules recognized by the obtained rabbit and chicken polyclonal antibodies revealed that the two types of polyclonal antibodies recognized different epitope groups on the same antigen molecule as thought by the present inventors. Was found. Using such a polyclonal antibody as the first and second antibodies in the sandwich method, a sandwich method similar to the monoclonal antibody was established. Even when rabbits and chickens were similarly immunized with PTN, the epitopes on the PTN molecules recognized by the polyclonal antibodies obtained from each were different from each other.

【0018】ここでいう「同一抗原分子上のそれぞれ異
なったエピトープを認識する或いはエピトープが実質的
に重なり合わない」という表現は、反応溶液中に共存す
る各動物種からのポリクローナル抗体の濃度が、通常、
抗原量の測定に用いる際に用いられる範囲の濃度では、
それぞれのポリクローナル抗体が、他の抗体の抗原との
反応を、ほとんど阻害しないで測定が問題なく行われる
という意味であり、まったく重なり合う部分を持たない
ことまで意味しているものではない。
The expression "recognizing different epitopes on the same antigen molecule or not substantially overlapping epitopes" as used herein means that the concentration of polyclonal antibody from each animal species coexisting in the reaction solution is: Normal,
In the concentration range used when measuring the amount of antigen,
This means that each polyclonal antibody can perform the measurement without any inhibition of the reaction of the other antibody with the antigen without any problem, and does not mean that there is no overlapping portion at all.

【0019】また、ここでいう抗原は、動物種が本来持
っている蛋白であって、異なった動物種に免疫してそれ
ぞれからポリクローナル抗体を得ることができ、かつエ
ピトープの測定上の重なりの有無を確認することによ
り、本発明のサンドイッチ法の確立が可能となるもので
あればよく、アミノ酸の1次構造に関する情報の有無に
よって規定されるものではない。
The term "antigen" as used herein refers to a protein originally possessed by an animal species, and can be used to immunize different animal species to obtain polyclonal antibodies from each species, and to determine the presence or absence of overlap in epitope measurement. It is sufficient that the sandwich method of the present invention can be established by confirming the above, and is not limited by the presence or absence of information on the primary structure of the amino acid.

【0020】さらに、免疫に用いる二種類の動物種も、
ウサギとニワトリに限定されるものではなく、エピトー
プの重なりが実質的にない動物種の組み合わせが見い出
せればその組み合わせを任意に用いることができる。
Furthermore, two kinds of animal species used for immunization are also
The combination is not limited to rabbits and chickens, and any combination of animal species having substantially no overlapping epitopes can be used.

【0021】このような二種類の動物種の組み合わせの
中でも、一種類の動物種をニワトリとすることが特に好
ましく、本発明を実施するに当たって、最初に使用を考
慮すべき動物種である。なぜならば、ニワトリの持つ抗
原は一般的に哺乳類の動物の持つ抗原との一次構造上の
相違が大きいと考えられることと、その母子免疫を利用
してニワトリ卵の卵黄から比較的安価かつ大量にIgG抗
体(IgY)を得ることができ、さらにIgY抗体はリュウマ
チ因子との結合性が無いなど、臨床診断薬の材料として
のメリットが大きいからである。
Among such combinations of two animal species, it is particularly preferable to use one animal species as a chicken. In practicing the present invention, it is an animal species to be considered for use first. This is because chicken antigens are generally considered to have a large difference in primary structure from mammalian animal antigens. This is because an IgG antibody (IgY) can be obtained, and further, the IgY antibody has no merits for rheumatoid factor, and thus has a great merit as a material for a clinical diagnostic agent.

【0022】これに対して従来は、そのような認識が無
いために、エピトープの重なりが無いことを目的とした
免疫動物の選択は行われていないことに注目すべきであ
る。
On the other hand, it should be noted that conventionally, no immunized animal has been selected for the purpose of eliminating the overlapping of epitopes because of the lack of such recognition.

【0023】さらに、例えば、ヒト抗原を測定対象とし
た場合でも、他の動物種由来の抗原を免疫して得られた
ポリクローナル抗体の組み合わせでヒト抗原が測定でき
るならば、他の動物種由来の抗原を免疫原に選ぶことも
可能である。例えば、ヒトの抗原を測定するためにマウ
スの抗原を免疫原として選ぶことも可能である。
Furthermore, for example, even when a human antigen is to be measured, if a human antigen can be measured by a combination of polyclonal antibodies obtained by immunization with an antigen derived from another animal species, the human antigen derived from another animal species can be measured. It is also possible to select an antigen as the immunogen. For example, mouse antigens can be selected as immunogens to measure human antigens.

【0024】その際に、少なくとも固相に用いるポリク
ローナル抗体は反応の特異性や反応効率を向上させるた
め、免疫に用いた抗原を用いてアフィニティ精製を行っ
てから用いることが望ましいが、液相に用いるポリクロ
ーナル抗体は必ずしもアフィニティ精製まで行う必要は
なく、例えば第3抗体を用いるサンドイッチ法では抗血
清のまま用いることも可能である。ただし、液相のポリ
クローナル抗体を標識して用いるような場合にはこのポ
リクローナル抗体もアフィニティ精製まで行って用いた
方が良いことは言うまでもない。
At this time, at least the polyclonal antibody used for the solid phase is preferably used after affinity purification using the antigen used for immunization in order to improve the specificity and reaction efficiency of the reaction. The polyclonal antibody to be used does not necessarily need to be subjected to affinity purification. For example, in a sandwich method using a third antibody, the antiserum can be used as it is. However, when a liquid-phase polyclonal antibody is labeled and used, it goes without saying that it is better to use this polyclonal antibody after affinity purification.

【0025】液相のポリクローナル抗体をラジオアイソ
トープや酵素等で直接標識した場合には、免疫反応を1
段階で行う、いわゆる1ステップサンドイッチ法が本発
明の抗体の組み合わせにおいては可能である。
When the liquid-phase polyclonal antibody is directly labeled with a radioisotope, an enzyme, or the like, the immune reaction is reduced to 1%.
A so-called one-step sandwich method, which is performed in stages, is possible with the antibody combination of the present invention.

【0026】さらに、液相抗体を標識しない場合には、
前記した固相化抗体と抗原、液相の抗体を共存させて反
応を行い、その後、液相の抗体に対する標識された第3
抗体をさらに反応させる方法を用いることができる。
Further, when the liquid phase antibody is not labeled,
The reaction is carried out in the coexistence of the solid-phased antibody, the antigen, and the antibody in the liquid phase.
A method for further reacting the antibody can be used.

【0027】本発明のポリクローナル抗体を用いた場
合、1ステップサンドイッチ法を用いるか、あるいは第
3抗体(標識抗体)を組み合わせた場合かは問わずに、
抗原と液相抗体は、予め混合した後、すぐに固相化抗体
と反応させても、一定時間インキュベーションした後に
固相化抗体と反応させても実質的に同じ結果を与えるこ
とが出来る。
When the polyclonal antibody of the present invention is used, regardless of whether the one-step sandwich method is used or the third antibody (labeled antibody) is used,
The antigen and the liquid phase antibody can be mixed with each other and then reacted with the immobilized antibody immediately, or can be incubated for a certain period of time and then reacted with the immobilized antibody to give substantially the same results.

【0028】固相に用いる不溶固体としては、無機担
体、例えば、ガラス、シリカゲル、ベントナイトのよう
な珪酸塩担体、磁性体など、および有機担体、例えば、
プラスチック、高分子ゲル(デキストラン、アガロース
などの多糖あるいはポリアクリルアミドゲルなど)、濾
紙等があげられる。これらのうち、好ましいものは、簡
便かつ安定して抗体が結合でき、さらに取り扱いが容易
なガラス(ガラスビーズおよびガラス管)、およびプラ
スチック(プラスチックビーズ、プラスチックチュー
ブ、プラスチックトレイ)である。
Examples of the insoluble solid used in the solid phase include inorganic carriers such as glass, silica gel, silicate carriers such as bentonite, magnetic substances, and organic carriers such as
Examples include plastics, polymer gels (polysaccharides such as dextran and agarose or polyacrylamide gels), filter paper, and the like. Among these, preferred are glass (glass beads and glass tubes) to which antibodies can be easily and stably bound, and easy to handle, and plastic (plastic beads, plastic tubes, plastic trays).

【0029】不溶性固体上に第1抗体を結合させる方法
としては、ガラスと該抗体を化学的に結合させる方法、
例えば、シランカップリング剤および必要により架橋剤
を用いる方法(特開昭54-108696)、または、物理吸着
させる方法(米国特許第4280992および第36827617)、
プラスチックに抗体を物理吸着させる方法(ピー・ティ
ジセン著「エンザイムイムノアッセイ」)、あるいは固
相上に固定化したアビジンと抗体を化学的に結合したビ
オチンとを反応させることによって、効率的に固定する
方法等がある。
As a method of binding the first antibody to the insoluble solid, a method of chemically binding glass to the antibody,
For example, a method using a silane coupling agent and, if necessary, a crosslinking agent (JP-A-54-108696), or a method of physical adsorption (US Pat. Nos. 4,289,092 and 3,682,617),
A method of physically adsorbing antibodies to plastic ("Enzyme Immunoassay" by P. Tidsen) or a method of efficiently immobilizing antibodies by reacting avidin immobilized on a solid phase with biotin chemically bound to antibodies. Etc.

【0030】本発明において標識に用いられる酵素とし
て、例えば、β−D−ガラクトシダーゼ、ペルオキシダ
ーゼ、グルコースオキシダーゼ、アルカリフォスファタ
ーゼ、カタラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、グル
コアシラーゼ、リンゴ酸脱水素酵素、グルコース−6−
リン酸脱水素酵素、ウレアーゼ等があげられる。
The enzymes used for labeling in the present invention include, for example, β-D-galactosidase, peroxidase, glucose oxidase, alkaline phosphatase, catalase, acetylcholinesterase, glucoacylase, malate dehydrogenase, glucose-6-
Phosphate dehydrogenase, urease and the like.

【0031】酵素標識法としてはグルタルアルデヒド
法、過ヨウ素酸化法、マレイミド法、ピリジル・ジスル
フィド法、カルボジイミド法、混酸無水物法など多くの
ものが開発されているが、マレイミド法は酵素と抗体に
それぞれ導入したマレイミド基とチオール基が温和な条
件下で効率よく反応して安定な架橋を形成するので好ま
しい。
Many enzyme labeling methods such as glutaraldehyde method, periodic oxidation method, maleimide method, pyridyl disulfide method, carbodiimide method, mixed anhydride method and the like have been developed. It is preferable because the maleimide group and the thiol group respectively introduced efficiently react under mild conditions to form a stable crosslink.

【0032】[0032]

【実施例】以下に本発明を実施例により詳細に説明する
が、本発明はこれらの実施例に限定されない。
EXAMPLES The present invention will be described below in detail with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

【0033】実施例1 ウサギ及びニワトリ抗ヒトMK抗
体の作製及びニワトリ抗ヒトMK抗血清の作製 特願平7-255354の実施例に記載の方法に従って得た組換
えヒトMK(以下ヒトMK)を、ウサギの場合は、2週間お
きに計6回、ニワトリの場合は2週間おきに計8回免疫
することによって、ウサギ抗ヒトMK抗血清及びニワトリ
抗ヒトMK抗血清を得た。
Example 1 Preparation of rabbit and chicken anti-human MK antibodies and preparation of chicken anti-human MK antiserum Recombinant human MK (hereinafter referred to as human MK) obtained according to the method described in Example of Japanese Patent Application No. 7-255354. Rabbit anti-human MK antiserum and chicken anti-human MK antiserum were obtained by immunizing rabbits 6 times in total every 2 weeks and immunizing chickens in total 8 times every 2 weeks.

【0034】ヒトMKの免疫に際しては、ウサギの場合は
初回の免疫に400μgのヒトMKをフロイント完全アジュバ
ントと等量混合して用い、2回目以降は、1回あたり40
0μgのヒトMKをフロイント不完全アジュバントと混合し
たものを用いた。ニワトリの場合は、1回あたり100μg
のヒトMKを用いた他は、ウサギと同様の処置を行った。
For immunization with human MK, in the case of rabbits, 400 μg of human MK is mixed with an equal amount of Freund's complete adjuvant for the first immunization, and the second and subsequent times are used in an amount of 40 μg / hour.
A mixture of 0 μg of human MK and Freund's incomplete adjuvant was used. 100 μg per chicken
, Except that human MK was used.

【0035】ウサギおよびニワトリからの抗血清は、硫
安で塩析した後、プロテインAカラムでIgG画分を得、さ
らにヒトMKをアフィゲル10(Bio Rad社)に固定化した
ヒトMKアフィニティカラムにより、アフィニティ精製し
た。
Antisera from rabbits and chickens were salted out with ammonium sulfate, and then an IgG fraction was obtained with a protein A column. Further, a human MK affinity column in which human MK was immobilized on Affigel 10 (Bio Rad) was used. Affinity purified.

【0036】実施例2 ウサギ抗ヒトMK抗体プレートの
作製 実施例1で作製したウサギ抗ヒトMK抗体を10μg/mlの濃
度にPBS 0.1%アジ化ナトリウム(pH7.2)に溶解し、Pol
ysorpプレート(NUNC社)に50μl/wellずつ分注して室
温で16時間吸着させた。PBS-Tween20洗浄液で洗浄の
後、該抗体希釈液にBSAを0.5%添加した緩衝液を150μl/
wellずつ分注して37℃で2時間ブロッキング操作を行っ
た後、測定まで4℃下で保存した。
Example 2 Preparation of rabbit anti-human MK antibody plate The rabbit anti-human MK antibody prepared in Example 1 was dissolved in PBS 0.1% sodium azide (pH 7.2) to a concentration of 10 μg / ml, and
The solution was dispensed at 50 μl / well into a ysorp plate (NUNC) and adsorbed at room temperature for 16 hours. After washing with PBS-Tween 20 washing solution, a buffer solution containing 0.5% BSA added to the antibody diluent was added at 150 μl /
After performing a blocking operation at 37 ° C. for 2 hours by dispensing each well, the solution was stored at 4 ° C. until measurement.

【0037】実施例3 ウサギ抗ヒトMK抗体およびニワ
トリ抗ヒトMK抗体のペルオキシダーゼ(以下POD)標識 実施例1で作製したウサギ抗ヒトMK抗体を、0.1Mリン酸
緩衝液5mM EDTA(pH6.0)に対して透析し、1mg/mlの抗
体濃度に調節の後、200μlを分け取った。2-メルカプト
エチルアミン(以下2MEAという)を最終濃度10mMとなる
よう前記の抗体液に加え37℃で2時間反応を行いチオー
ル基を生成させた後、G25カラムを用いて脱塩操作を行
った。
Example 3 Peroxidase (hereinafter referred to as POD) labeling of rabbit anti-human MK antibody and chicken anti-human MK antibody The rabbit anti-human MK antibody prepared in Example 1 was conjugated with 0.1 M phosphate buffer, 5 mM EDTA (pH 6.0). After dialysis against 200 mg / ml of antibody, 200 μl was aliquoted. 2-mercaptoethylamine (hereinafter referred to as 2MEA) was added to the above antibody solution to a final concentration of 10 mM, reacted at 37 ° C. for 2 hours to generate a thiol group, and then desalted using a G25 column.

【0038】一方、ペルオキシダーゼ(POD)(Boehrin
ger Mannheim社、EIA Grade)1mgを0.1Mリン酸緩衝液
(pH7.5)200μlに溶解し、その後 Sulfo-SMCC(PIERCE
社)を0.3mg加え、室温で90分間緩やかに混和して反応
させPODにマレイミド基を導入した後、G25カラムで脱塩
操作を行った。
On the other hand, peroxidase (POD) (Boehrin
Ger Mannheim (EIA Grade) 1 mg was dissolved in 200 μl of 0.1 M phosphate buffer (pH 7.5), and then Sulfo-SMCC (PIERCE
Was added and gently mixed at room temperature for 90 minutes for reaction to introduce a maleimide group into the POD, followed by desalting with a G25 column.

【0039】チオール基を生成させたウサギ抗ヒトMK抗
体とマレイミド基を導入したPODとのカップリング反応
を室温で2時間行った。その後Centriplus50(AMICON
社)による濃縮とBuffer交換を行い、AcA34カラムによ
り未反応のPODを除いた後、Centriplus50で1mlに濃縮し
ウサギ抗ヒトMK抗体-POD標識抗体を得た。
A coupling reaction between a rabbit anti-human MK antibody having a thiol group and a POD having a maleimide group introduced was performed at room temperature for 2 hours. Then Centriplus50 (AMICON
After unconcentrated POD was removed with an AcA34 column, the mixture was concentrated to 1 ml with Centriplus50 to obtain a rabbit anti-human MK antibody-POD labeled antibody.

【0040】ニワトリ抗ヒトMK抗体-POD標識抗体の作製
も前記と同様の方法で行った。
Preparation of a chicken anti-human MK antibody-POD labeled antibody was carried out in the same manner as described above.

【0041】実施例4 ウサギ抗ヒトMK抗体及びニワト
リ抗ヒトMK抗体の認識するエピトープとが互いに実質的
に異なることの確認 (その1)固相にウサギ抗ヒトMK抗体プレートを用い、
ニワトリ抗ヒトMK抗血清があらかじめ1,000倍から10,00
0倍に希釈添加されている抗原希釈液でヒトMKを500pg/m
lになるように調製して測定に用いた。この抗原液をウ
サギ抗ヒトMK抗体プレートに50μl/wellずつ分注し、室
温で60分間反応を行った。PBS-Tween20で洗浄の後、ウ
サギ抗ニワトリIgG-POD(PIERCE社)を5,000倍に希釈し
たものを50μl/well分注し、室温で30分間反応を行っ
た。洗浄の後、TMB発色基質(DAKO社S1600)を100μl/w
ell分注し、室温で30分間反応の後、2N硫酸100μlで反
応を止め、波長450nmの吸光度を測定した。その結果
を、図1に示す。
Example 4 Confirmation that the epitopes recognized by the rabbit anti-human MK antibody and the chicken anti-human MK antibody are substantially different from each other (1) Using a rabbit anti-human MK antibody plate as a solid phase,
Chicken anti-human MK antiserum is 1,000 to 10,000 in advance
500 pg / m of human MK with antigen dilution diluted 0 times
and used for measurement. This antigen solution was dispensed at 50 μl / well into a rabbit anti-human MK antibody plate and reacted at room temperature for 60 minutes. After washing with PBS-Tween 20, a 5,000-fold dilution of rabbit anti-chicken IgG-POD (PIERCE) was dispensed at 50 μl / well and reacted at room temperature for 30 minutes. After washing, 100 µl / w of TMB chromogenic substrate (DAKO S1600)
After the reaction was performed at room temperature for 30 minutes, the reaction was stopped with 100 μl of 2N sulfuric acid, and the absorbance at a wavelength of 450 nm was measured. The result is shown in FIG.

【0042】ヒトMK抗原分子中のエピトープ部位がニワ
トリ抗ヒトMK抗血清中の抗体によって飽和されてしまえ
ば、固相のウサギ抗ヒトMK抗体との反応は起きず、発色
レベルは低下する。しかしながら、図1に示すごとく、
抗原濃度が500pg/mlと比較的低いにもかかわらず、ニワ
トリ抗ヒトMK抗血清の濃度が実際の使用濃度より濃い1,
000倍希釈で添加された場合でも発色レベルはほとんど
低下していないことが明らかである。
If the epitope site in the human MK antigen molecule is saturated with the antibody in the chicken anti-human MK antiserum, no reaction occurs with the solid phase rabbit anti-human MK antibody, and the color development level decreases. However, as shown in FIG.
Despite the relatively low antigen concentration of 500 pg / ml, the concentration of chicken anti-human MK antiserum was higher than the actual concentration used 1,
It is evident that the color development level hardly decreases even when added at a 000-fold dilution.

【0043】(その2)固相に、ウサギ抗ヒトMK抗体プ
レートを用い、測定用抗原として、ヒトMKを50ng/ml含
む抗原希釈液を50μl/well分注の後、室温で15分間反応
を行った。洗浄の後、ウサギ抗ヒトMKPOD標識抗体を600
倍に希釈した抗体液、或いは、該標識抗体液中に抗ヒト
MKニワトリ抗血清を50倍希釈と100倍希釈の割合で含む
抗体液をウサギ抗ヒトMK抗体プレートに50μl/well分
注し、それぞれを室温で15分間反応を行った。洗浄の
後、TMB発色基質(DAKO社S1600)100μl/wellをそれぞ
れ分注し、室温で15分間反応を行った。2N硫酸100μlで
反応を止め、波長450nmでの吸光度を測定した。その結
果、図2に示すように、ニワトリ抗ヒトMK抗血清は、ウ
サギ抗ヒトMKPOD標識抗体の抗原との反応に何ら影響を
与えなかった。
(Part 2) Using a rabbit anti-human MK antibody plate as a solid phase, dispensing 50 μl / well of an antigen diluent containing 50 ng / ml of human MK as an antigen for measurement, and reacting at room temperature for 15 minutes. went. After washing, a rabbit anti-human MKPOD-labeled antibody was
Anti-human in the diluted antibody solution or the labeled antibody solution
An antibody solution containing MK chicken antiserum at 50-fold dilution and 100-fold dilution was dispensed into a rabbit anti-human MK antibody plate at 50 μl / well, and each was reacted at room temperature for 15 minutes. After washing, 100 μl / well of TMB chromogenic substrate (DAKO S1600) was dispensed, and the reaction was carried out at room temperature for 15 minutes. The reaction was stopped with 100 μl of 2N sulfuric acid, and the absorbance at a wavelength of 450 nm was measured. As a result, as shown in FIG. 2, the chicken anti-human MK antiserum had no effect on the reaction of the rabbit anti-human MKPOD-labeled antibody with the antigen.

【0044】(その3)ニワトリ抗ヒトMK抗血清を2,00
0倍に希釈添加してある抗原希釈液でヒトMKを0.25、0.
5、1.0ng/mlになるように調製した。これらの液をウサ
ギ抗ヒトMK抗体プレートに50μl/well分注後、室温で30
分間反応を行った。その際、調製後直ちに反応を開始し
た場合と、調製後室温で90分間インキュベートした後反
応を開始したもの、との比較を行った。洗浄の後、ウサ
ギ抗ニワトリIgG-POD(PIERCE社)を5,000倍希釈し、50
μl/well分注し室温で15分間反応を行った。洗浄の後、
TMB溶液(DAKO社S-1600)を100μl/well分注し室温で15
分間反応を行った。2N硫酸100μlで反応を止め、波長45
0nmでの吸光度を測定した。結果を表1に示す。
(Part 3) Chicken anti-human MK antiserum was added to 2,000
Human MK was diluted to 0.25, 0.
5, prepared to be 1.0 ng / ml. After dispensing 50 μl / well of these solutions to a rabbit anti-human MK antibody plate,
The reaction was performed for minutes. At that time, a comparison was made between the case where the reaction was started immediately after the preparation and the case where the reaction was started after incubation at room temperature for 90 minutes after the preparation. After washing, rabbit anti-chicken IgG-POD (PIERCE) was diluted 5,000-fold,
μl / well was dispensed and reacted at room temperature for 15 minutes. After washing
Dispense 100 μl / well of TMB solution (DAKO S-1600) at room temperature
The reaction was performed for minutes. Stop the reaction with 100 μl of 2N sulfuric acid,
The absorbance at 0 nm was measured. Table 1 shows the results.

【0045】[0045]

【表1】 [Table 1]

【0046】表1から抗原と液相抗体とのインキュベー
ト時間の有無に関係なく吸光度について同一の結果が得
られることが確認できた。この結果は、抗ヒトMKニワト
リ抗血清の認識する抗原決定基と抗ヒトMKウサギ抗体の
認識する抗原決定基が実質的に重なっていないことを示
している。
From Table 1, it was confirmed that the same result was obtained for the absorbance regardless of the presence or absence of the incubation time between the antigen and the liquid phase antibody. This result indicates that the antigenic determinant recognized by the anti-human MK chicken antiserum does not substantially overlap the antigenic determinant recognized by the anti-human MK rabbit antibody.

【0047】このように、本発明によれば同一抗原分子
上の異なるエピトープを互いに認識する2種の動物由来
のポリクローナル抗体を用いて、モノクローナル抗体と
同様に1ステップサンドイッチ法を組立てることが可能
である。
As described above, according to the present invention, a one-step sandwich method can be assembled in the same manner as a monoclonal antibody using polyclonal antibodies derived from two animals that mutually recognize different epitopes on the same antigen molecule. is there.

【0048】実施例5 ヒトMKの測定についての従来方
法との比較 ウサギ抗ヒトMK抗体のみを使用して組み立てられた測定
系(=比較例)と、ウサギ抗ヒトMK抗体及びニワトリ抗
ヒトMK抗体の二種類で組み立てられた測定系(本発明方
法)とを用いて、ヒトMK測定における発色感度について
比較検討した。
Example 5 Comparison with Conventional Method for Measurement of Human MK A measurement system assembled using only rabbit anti-human MK antibody (= comparative example), rabbit anti-human MK antibody and chicken anti-human MK antibody The colorimetric sensitivity in human MK measurement was compared and examined using the two types of measurement systems (the method of the present invention).

【0049】比較例及び本発明において、それぞれ次の
抗原希釈用液を用いてMKを希釈して10.0、2.0、0.2及び
0ng/mlの各段階の抗原希釈液を作製した。
In Comparative Examples and the present invention, MK was diluted using the following antigen diluting solutions to obtain 10.0, 2.0, 0.2 and
Antigen dilutions at each stage of 0 ng / ml were prepared.

【0050】・比較例:50mM Tris-HCl、0.3M NaCl、0.
5%BSA及び0.1%アジ化ナトリウム(pH8.0)からなる溶
液。 ・本発明:上記溶液に5,000倍の希釈倍率でニワトリ抗
ヒトMK抗血清を含む溶液。
Comparative Example: 50 mM Tris-HCl, 0.3 M NaCl, 0.
A solution consisting of 5% BSA and 0.1% sodium azide (pH 8.0). -The present invention: a solution containing chicken anti-human MK antiserum at a 5,000-fold dilution ratio in the above solution.

【0051】前記各段階の抗原希釈液を、ウサギ抗ヒト
MK抗体プレートに、50μl/wellずつ分注して反応を開始
した。室温で30分間反応を行い、PBS-Tween20で4回洗浄
の後、本発明と比較例とで、それぞれ以下の標識抗体溶
液を添加し、さらに室温で15分間反応を行った。
The antigen diluent in each of the above steps was used as a rabbit anti-human
The reaction was started by dispensing 50 μl / well into the MK antibody plate. The reaction was performed at room temperature for 30 minutes, and after washing four times with PBS-Tween 20, the following labeled antibody solutions were added to the present invention and the comparative example, respectively, and the reaction was further performed at room temperature for 15 minutes.

【0052】・本発明:ウサギ抗ニワトリIgG-POD標識
抗体(PIERCE社カタログNo.31401)を、PBS 0.01% Micr
ocide I 0.5%BSA溶液に4,000倍に希釈したもの。 ・比較例:ウサギ抗ヒトMK抗体-POD標識抗体を、PBS 0.
01% Microcide I 0.5%BSA溶液に400倍に希釈したもの。
The present invention: a rabbit anti-chicken IgG-POD labeled antibody (PIERCE catalog No. 31401) was added to PBS 0.01% Micr
ocide I A 4,000-fold dilution in a 0.5% BSA solution.・ Comparative Example: Rabbit anti-human MK antibody-POD labeled antibody was added to PBS 0.
01% Microcide I 400 times diluted in 0.5% BSA solution.

【0053】反応終了後、PBS-Tween20で4回洗浄の後、
酵素発色液としてTMB溶液(DAKO社S1600)を100μl/wel
lずつ分注し、室温で30分間反応の後、2N硫酸100μl/we
llにより反応を停止させ、波長450nmでの吸光度を比較
した。
After the completion of the reaction, the plate was washed four times with PBS-Tween20.
100µl / wel of TMB solution (DAKO S1600) as enzyme color solution
After the reaction at room temperature for 30 minutes, 2N sulfuric acid 100μl / we
The reaction was stopped with II, and the absorbance at a wavelength of 450 nm was compared.

【0054】結果を表2に示す。Table 2 shows the results.

【0055】[0055]

【表2】 [Table 2]

【0056】実施例6 ニワトリ抗ヒトMK抗体-POD標識
抗体を用いた1ステップサンドイッチ測定系の組み立て OD280の吸光度からヒトMKの濃度を算定し、これを元に
して、抗原(ヒトMK)濃度が10,4,2,1及び0.5ng/mlの標
準液を、50mM Tris-HCl 0.3M NaCl 0.5% BSA 0.01% Mic
rocide I pH 8.0の抗原希釈溶液で希釈することにより
調製した。これらの標準液各20μlに、実施例3で作製
したニワトリ抗ヒトMK抗体-POD標識抗体を含む抗原希釈
用溶液100μlを加えてよく混和した。ウサギ抗ヒトMK抗
体プレートに、先の標準液とPOD標識抗体の混合物50μl
/wellずつ分注し、室温で90分間反応を行った。PBS-Twe
en20で4回洗浄の後、酵素発色液としてTMB溶液(DAKO
社S1600)を100μl/wellずつ分注し、室温で30分間反応
させ、最後に2規定硫酸100μl/wellで反応を停止して
波長450nmでの吸光度を測定した。標準液は反応時に1/6
に希釈されているため、反応液中の抗原濃度は最高濃度
1.67ng/mlと低い濃度であるにもかかわらず図3に示す
ような良好な検量線が得られた。
Example 6 Assembly of One-Step Sandwich Measurement System Using Chicken Anti-Human MK Antibody-POD Labeled Antibody The concentration of human MK was calculated from the absorbance of OD280, and based on this, the antigen (human MK) concentration was determined. 10, 4, 2, 1, and 0.5 ng / ml of the standard solution were added to 50 mM Tris-HCl 0.3 M NaCl 0.5% BSA 0.01% Mic
It was prepared by dilution with an antigen dilution solution of rocide I pH 8.0. To each of the standard solutions (20 μl), 100 μl of the antigen dilution solution containing the chicken anti-human MK antibody-POD labeled antibody prepared in Example 3 was added and mixed well. Rabbit anti-human MK antibody plate, 50 μl of the mixture of the above standard solution and POD-labeled antibody
The reaction was carried out at room temperature for 90 minutes. PBS-Twe
After washing four times with en20, a TMB solution (DAKO
S1600) was dispensed in 100 μl / well portions, and allowed to react at room temperature for 30 minutes. Finally, the reaction was stopped with 100 μl / well of 2N sulfuric acid, and the absorbance at a wavelength of 450 nm was measured. Standard solution is 1/6 at the time of reaction
The antigen concentration in the reaction solution is the highest concentration
Although the concentration was as low as 1.67 ng / ml, a good calibration curve as shown in FIG. 3 was obtained.

【0057】実施例7 ヒトPTNのサンドイッチ法によ
る測定系の組み立て 特願平7-255354の実施例1に記載の方法に準じてヒトPT
N cDNA(Yue-Sheng, L., et al.(1990) Science 250, 1
690-1694)を発現させ組換えヒトPTN(ヒトPTN)を得
た。PTNによるウサギ及びニワトリの免疫は実施例1と
同様の方法で実施した。ニワトリからの抗血清は硫安で
の塩析の後、ヒトPTNをアフィゲル10(BioRad社)に固定
化して作製したヒトPTNアフィニティカラムによりアフ
ィニティ精製したものを使用した。一方、ウサギからの
抗血清はそのまま使用した。
Example 7 Assembly of a measurement system for human PTN by the sandwich method According to the method described in Example 1 of Japanese Patent Application No. 7-255354, human PTN was used.
N cDNA (Yue-Sheng, L., et al. (1990) Science 250, 1
690-1694) to obtain recombinant human PTN (human PTN). Immunization of rabbits and chickens with PTN was performed in the same manner as in Example 1. The antiserum from chicken was used after affinity precipitation with a human PTN affinity column prepared by immobilizing human PTN on Affigel 10 (BioRad) after salting out with ammonium sulfate. On the other hand, the antiserum from the rabbit was used as it was.

【0058】ヒトPTNをOD280の吸光度から濃度を算出
し、それに基づき、抗原希釈溶液(50mM Tris-HCl 0.15
M NaCl 0.5%BSA 0.1%アシ゛化ナトリウム pH8.0にウサギ抗ヒトP
TN血清を200倍に希釈添加してある溶液)100, 50, 25,
0 ng/mlの各段階のrヒトPTN溶液をそれぞれ作製し30分
間放置した。上記各段階濃度の標準抗原液と抗ヒトPTN
ウサギ抗血清を混合した後、各々の濃度のヒトPTN溶液
を実施例2と同様の方法で作製したニワトリ抗ヒトPTN抗
体プレートに、50μl/wellずつ分注して37℃で60分間反
応を行った。PBS-Tween20で4回洗浄の後、ヤギ抗ウサギ
IgG-POD標識抗体(DAKO社No.448)をPBS 0.01%MicrocideI
0.5%BSA溶液中に3000倍に希釈添加したものを50μl/wel
lずつ分注し、さらに室温で20分間反応を行った。反応
後、PBS-Tween 20で4回洗浄を行い、さらにTMB発色液
(DAKO社S1600)を1OOμl/wellずつ分注し、室温で30分
間反応を行った。2規定硫酸100μl/wellで反応を停止し
て波長450nmでの吸光度を測定した。得られた結果を表
3に示す。実施例6の場合と同様に、PTNの場合も、抗
原と抗血清を予め混合しておいても問題のない標準曲線
が得られた(図4)。
The concentration of human PTN was calculated from the absorbance of OD280, and based on the concentration, an antigen dilution solution (50 mM Tris-HCl 0.15
Rabbit anti-human P to M NaCl 0.5% BSA 0.1% sodium acid chloride pH 8.0
Solution with TN serum diluted 200 times) 100, 50, 25,
Each human PTN solution at 0 ng / ml at each stage was prepared and left for 30 minutes. Standard antigen solutions at each of the above concentrations and anti-human PTN
After mixing rabbit antiserum, human PTN solutions of each concentration were dispensed at 50 μl / well into chicken anti-human PTN antibody plates prepared in the same manner as in Example 2 and reacted at 37 ° C. for 60 minutes. Was. After washing 4 times with PBS-Tween20, goat anti-rabbit
IgG-POD labeled antibody (DAKO No.448) was added to PBS 0.01% Microcide I
What was diluted 3000 times in 0.5% BSA solution was added at 50μl / wel
The reaction was further performed at room temperature for 20 minutes. After the reaction, the plate was washed four times with PBS-Tween 20, and a TMB color developing solution (S1600, DAKO) was dispensed in 100 μl / well portions and reacted at room temperature for 30 minutes. The reaction was stopped with 100 μl / well of 2 N sulfuric acid, and the absorbance at a wavelength of 450 nm was measured. Table 3 shows the obtained results. As in the case of Example 6, in the case of PTN, a standard curve was obtained without any problem even if the antigen and the antiserum were mixed in advance (FIG. 4).

【0059】以上の結果から、本発明方法によれば、ポ
リクローナル抗体の組み合わせであっても、第1抗体と
第2抗体とをモノクローナル抗体同様になんの制約もな
く共存させることができ、また3次抗体を組み合わせる
ことによってさらに高感度な測定系を組み立てることが
可能である。
From the above results, according to the method of the present invention, even in the case of a combination of polyclonal antibodies, the first antibody and the second antibody can coexist without any restrictions as in the case of the monoclonal antibody. It is possible to construct a more sensitive measurement system by combining the following antibodies.

【0060】また、本実施例は第1抗体にウサギ抗ヒト
MK抗体を用い、第2抗体にニワトリ抗ヒトMK抗体を用い
ているが、その組み合わせを逆にして用いることも可能
である。またその場合は、第3抗体に用いるのは、抗ウ
サギIgG抗体であることは言うまでもない。
In this example, a rabbit antibody was used as the first antibody.
Although the MK antibody is used and the chicken anti-human MK antibody is used as the second antibody, the combination may be reversed. In this case, it is needless to say that an anti-rabbit IgG antibody is used as the third antibody.

【0061】[0061]

【表3】 [Table 3]

【0062】[0062]

【発明の効果】本発明により、ポリクローナル抗体同士
の組み合わせでありながらモノクローナル抗体を組み合
わせた場合と同様な、サンドイッチ法での反応が行え、
かつ高感度な測定系の組み上げが可能となる。
According to the present invention, it is possible to carry out a reaction by the sandwich method similar to the case of combining a monoclonal antibody while being a combination of polyclonal antibodies,
In addition, a highly sensitive measurement system can be assembled.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】ウサギ抗ヒトMK抗体とニワトリ抗ヒトMK抗体の
認識する、MK分子上のエピトープが実質的に重なり合わ
ないことを示す図である。
FIG. 1 is a diagram showing that epitopes on MK molecules recognized by rabbit anti-human MK antibody and chicken anti-human MK antibody do not substantially overlap.

【図2】ニワトリ抗ヒトMK抗体がウサギ抗ヒトMK抗体と
MKとの反応を阻害するかどうかを示す図である。
[Figure 2] Chicken anti-human MK antibody and rabbit anti-human MK antibody
It is a figure which shows whether the reaction with MK is inhibited.

【図3】ウサギ抗ヒトMK固相化抗体とニワトリ抗ヒトMK
POD標識抗体とで1ステップで免疫反応を行った場合の
検量線を示す図である。
FIG. 3. Immobilized rabbit anti-human MK antibody and chicken anti-human MK
It is a figure which shows the calibration curve at the time of performing an immunoreaction with a POD label antibody in one step.

【図4】PTN抗原とウサギ抗PTN抗血清を混合した後にニ
ワトリ抗PTN固相化抗体と反応させ、その後抗ウサギIgG
POD標識抗体を反応させて得られた検量線を示す図であ
る。
[FIG. 4] A PTN antigen and a rabbit anti-PTN antiserum are mixed and reacted with a chicken anti-PTN immobilized antibody.
FIG. 3 is a diagram showing a calibration curve obtained by reacting a POD-labeled antibody.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 小田 宗宏 神奈川県小田原市成田540番地 明治乳業 株式会社細胞工学センター内 (72)発明者 村松 喬 愛知県名古屋市天白区大字平針字黒石2845 番地平針住宅6街区35 (72)発明者 村松 寿子 愛知県名古屋市天白区大字平針字黒石2845 番地平針住宅6街区35 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuing on the front page (72) Munehiro Oda 540, Narita, Odawara-shi, Kanagawa Meiji Dairies Co., Ltd.Cell Engineering Center Co., Ltd. Block 6, Block 35 (72) Inventor, Hisako Muramatsu, Block 2845, Kuroishi, Heijiro, Tenpaku-ku, Nagoya-shi, Aichi Pref.

Claims (5)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 免疫学的に異なる少なくとも二つのエピ
トープを有する蛋白質抗原と1次構造上相同性を有しな
い部分を有する同一種の蛋白質を生来的に生体成分とし
て持つ2つの異なる動物種を当該蛋白質によってそれぞ
れ免疫して得られたポリクローナル抗体であって該ポリ
クローナル抗体の認識する当該蛋白質抗原上のエピトー
プがそれぞれ実質的に異なるポリクローナル抗体を、第
1抗体と第2抗体に用いたことを特徴とするサンドイッ
チ測定法。
The present invention relates to two different animal species which naturally have, as a biological component, the same species of protein having a portion having no primary structural homology with a protein antigen having at least two immunologically distinct epitopes. A polyclonal antibody obtained by immunization with each of the proteins, wherein the polyclonal antibodies which are substantially different from each other in the epitope on the protein antigen recognized by the polyclonal antibody are used as the first antibody and the second antibody. Sandwich measurement method.
【請求項2】 第2抗体に対する第3抗体を用いる請求
項1記載のサンドイッチ測定法。
2. The sandwich assay method according to claim 1, wherein a third antibody against the second antibody is used.
【請求項3】 蛋白質抗原がミッドカイン(midkine)
である請求項1または2記載のサンドイッチ測定法。
3. The protein antigen is midkine.
The sandwich measurement method according to claim 1 or 2, wherein
【請求項4】 蛋白質抗原がプレイオトロフィン(plei
otrophin)である請求項1または2記載のサンドイッチ
測定法。
4. The method according to claim 1, wherein the protein antigen is pleiotrophin (pleitrophin).
otrophin).
【請求項5】 2つの異なる動物種がニワトリとウサギ
との組み合わせである請求項1から4記載のサンドイッ
チ測定法。
5. The method according to claim 1, wherein the two different animal species are a combination of chicken and rabbit.
JP1774997A 1996-01-19 1997-01-16 Sandwich measuring method Pending JPH10160735A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP1774997A JPH10160735A (en) 1996-01-19 1997-01-16 Sandwich measuring method

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2485096 1996-01-19
JP8-281660 1996-10-04
JP8-24850 1996-10-04
JP28166096 1996-10-04
JP1774997A JPH10160735A (en) 1996-01-19 1997-01-16 Sandwich measuring method

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH10160735A true JPH10160735A (en) 1998-06-19

Family

ID=27281956

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP1774997A Pending JPH10160735A (en) 1996-01-19 1997-01-16 Sandwich measuring method

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH10160735A (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000097939A (en) * 1998-07-22 2000-04-07 Santen Pharmaceut Co Ltd Test method and diagnosis kit
JP2002243740A (en) * 2001-02-21 2002-08-28 Morinaga & Co Ltd Immunoassay reagent
WO2006030985A1 (en) * 2004-09-16 2006-03-23 Japan Science And Technology Agency Method of assaying lipid peroxide
WO2009107384A1 (en) 2008-02-29 2009-09-03 国立大学法人名古屋大学 Biomarker for the estimation of acute renal disorder and prognosis of the disorder, and use of the biomarker

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000097939A (en) * 1998-07-22 2000-04-07 Santen Pharmaceut Co Ltd Test method and diagnosis kit
JP2002243740A (en) * 2001-02-21 2002-08-28 Morinaga & Co Ltd Immunoassay reagent
JP4590117B2 (en) * 2001-02-21 2010-12-01 森永製菓株式会社 Immunoassay reagent
WO2006030985A1 (en) * 2004-09-16 2006-03-23 Japan Science And Technology Agency Method of assaying lipid peroxide
WO2009107384A1 (en) 2008-02-29 2009-09-03 国立大学法人名古屋大学 Biomarker for the estimation of acute renal disorder and prognosis of the disorder, and use of the biomarker

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5804391A (en) Elimination of rheumatoid factor interference using anti-FD antibodies
WO2019107279A1 (en) Assay method and assay kit for hepatitis b virus s antigen
JPH0368868A (en) Oxidative denaturation of analyzed protein
JPH1078435A (en) Rise of sensitivity in immunochemical measurement for material to be inspected
JPH05203652A (en) Antibody enzyme immunoassay
WO2001032908A1 (en) Monoclonal antibody, hybridoma, immunoassay method and diagnosis kit
AU4465001A (en) Method of examining cancer by assaying autoantibody against mdm2 and reagent therefor
JP2867325B2 (en) Anti-PIVKA-II antibody producing hybridoma and immunological assay method
US5534431A (en) Hybridomas and monoclonal antibodies specific for unique determinants of nephropathy-related immunoglobulin G and complexes thereof
JPH10160735A (en) Sandwich measuring method
CA2005204C (en) Solid phase immunoassay with lyophilised conjugate
JPH0198968A (en) Method for measuring human insulin
WO1995002612A1 (en) Monoclonal antibodies to egg yolk immunoglobulins (igy)
JPH05188055A (en) Non-specific reaction suppressing method in enzyme immunoassay
JP2001153868A (en) Immunoassay of assaying casein phosphopetide(cpp)
JPH05232109A (en) Method for measuring human osteocalcine pro-proten
JP2558956B2 (en) Immunological assay method for human osteocalcin, reagent and kit therefor, antibody against human osteocalcin, hybridoma producing the same, and method for producing the same
JP2009145362A (en) Immunological measurement method of casein phosphopeptide (cpp)
JP2523171B2 (en) Immunoassay method and reagent kit used therefor
JP2002209579A (en) Anti-human hemoglobin monoclonal antibody, cell line producing the same and kit containing the same for detecting human hemoglobin
JP2535426B2 (en) How to measure chondrocalcin
JP3292937B2 (en) Pesticide residue analysis
JPH08338841A (en) Sandwich immunoassay
JPH06273415A (en) Reagent and method for measuring cholecystokinin
JPH0322945B2 (en)