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JP2535426B2 - How to measure chondrocalcin - Google Patents

How to measure chondrocalcin

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Publication number
JP2535426B2
JP2535426B2 JP1502121A JP50212189A JP2535426B2 JP 2535426 B2 JP2535426 B2 JP 2535426B2 JP 1502121 A JP1502121 A JP 1502121A JP 50212189 A JP50212189 A JP 50212189A JP 2535426 B2 JP2535426 B2 JP 2535426B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
chondrocalcin
antibody
labeled
measuring
solution
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP1502121A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
公彦 松沢
和彦 伊藤
仁美 本田
了一 長谷川
直美 岡本
健治 細田
正由 新名
重雄 松山
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Teijin Ltd
Original Assignee
Teijin Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
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Expired - Lifetime legal-status Critical Current

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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 技術分野 本発明は、酵素で標識した哺乳動物のコンドロカルシ
ン又は抗コンドロカルシン抗体を用いる免疫学的測定方
法において、検体として哺乳動物の体液を用い、かつ溶
液中における免疫反応を利用して該哺乳動物のコンドロ
カルシンの量を測定することを特徴とするコンドロカル
シンの測定方法に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to an immunological assay method using an enzyme-labeled mammalian chondrocalcin or anti-chondrocalcin antibody, which uses a mammalian body fluid as a sample and is in solution. And a method for measuring chondrocalcin in the mammal, which comprises measuring the amount of chondrocalcin in the mammal.

また、上記測定方法に用いる測定試薬及びキットに関
する。
Further, the present invention relates to a measurement reagent and a kit used in the above measurement method.

コンドロカルシンは、1983年にエッチ・ユー・チョイ
らによってウシ胎仔の骨端軟骨から始めて分離・精製さ
れた蛋白質であって、分子量35,000の2つのサブユニッ
トからなる分子量69,000の分子であることが知られてい
る(H.U.Choi,et al.,J.Biol.Chem.,258,655−661,(19
83)参照)。その後の部分的アミノ酸配列の研究によっ
てコンドロカルシンは2型プロコラーゲンのC−プロペ
プチドと同じであることが報告されている(M.V.D.Res
t,et al.,Biochem.J.,237,923−925,(1986)参照)。
この蛋白質の生体内分布についてはエー・アール・プー
ルらによって主にウシを対象とした組織化学的研究が報
告されている(A.R.Poole et al.,J.Cell Biol.,98,54
−65(9184);Clinical Orthopaedics and Related Res
earch,208,114−118(1986))。それによれば、石灰化
が進展しつつある軟骨、特に軟骨深層部位に最も多く存
在し、成熟した骨・歯・その他の組織には存在しないと
されている。その生理的作用は、このような生体内分布
の特徴と、この蛋白質がカルシュウム・イオンおよびハ
イドロオキシ・アパタイトと結合することなどから、軟
骨での石灰化に深く関与することが推定されている。こ
れらの組織化学的研究過程での実験手段として、組織染
色などの免疫学的手法が利用され、そこではウシ・コン
ドロカルシンをウサギに免疫して得たポリ・クローナル
抗体を用いて、ウシの組織が研究されている。
Chondrocalcin is a protein that was isolated and purified in 1983 from Etch Choi et al., Starting from fetal bovine epiphyseal cartilage, and is a molecule with a molecular weight of 69,000 consisting of two subunits with a molecular weight of 35,000. Known (HU Choi, et al., J. Biol. Chem., 258 , 655-661, (19
See 83)). Subsequent partial amino acid sequence studies reported that chondrocalcin is identical to the C-propeptide of type 2 procollagen (MVDRes
t, et al., Biochem. J., 237 , 923-925, (1986)).
Regarding the biodistribution of this protein, a histochemical study mainly on cattle has been reported by AR Poole et al. (ARPoole et al., J. Cell Biol., 98 , 54).
−65 (9184); Clinical Orthopaedics and Related Res
earch, 208 , 114-118 (1986)). According to it, it is said that the most abundant is cartilage where calcification is progressing, especially in the deep cartilage region, and is not present in mature bones, teeth and other tissues. It is presumed that its physiological action is deeply involved in calcification in cartilage due to the characteristics of such biodistribution and the binding of this protein with calcium ions and hydroxyapatite. As an experimental means in these histochemical research processes, immunological techniques such as tissue staining are used, in which polyclonal antibodies obtained by immunizing rabbits with bovine chondrocalcin were used to The organization is being studied.

一方、コンドロカルシンの病理学的研究の報告は少な
く、今後の発展が期待される。エー・アール・プールら
は、発育,軟骨内骨化及び異常な石灰化などと関係する
疾患における病理との関連でコンドロカルシンに注目し
ていると記載している(A.R.Poole et al., Clinical O
rthopaedics and Related Research208,114−118(198
6))。したがって、コンドロカルシンを測定すること
は、コンドロカルシンの基礎医学,臨床医学の研究にお
いて果す役割は非常に大きい。
On the other hand, there are few reports of pathological studies on chondrocalcin, and future development is expected. AR Poole et al. State that they are focusing on chondrocalcin in relation to pathology in diseases related to development, endochondral ossification, and abnormal calcification (ARPoole et al., Clinical O
rthopaedics and Related Research 208 , 114−118 (198
6)). Therefore, the measurement of chondrocalcin plays a very important role in the study of basic medicine and clinical medicine of chondrocalcin.

エー・ハイネクらは、1987年に軟骨抽出液,軟骨細胞
培養上清中のコンドロカルシンをラジオ・イムノアッセ
イによって測定した(A.Hinek et al.,J.Cell Biol.104
1435−1441(1987))。しかしながら、ここに記載され
ている測定下限は、検体1ml当り100ngであり、この感度
では体液(血液,関節液など)中のコンドロカルシンを
測定するには不充分であった。また、測定に供した試料
は、軟骨を4Mグアニジン塩酸塩水溶液(pH 5.8)で抽出
した液並びに軟骨細胞をDME培地で培養した培養上清液
であり、特異反応を妨害したり、非特異的反応を起こさ
せる様な要因を含む体液の測定については記載されてい
ない。したがって、体液中のコンドロカルシンの測定を
可能にする高感度な測定方法,測定試薬及びキットの開
発は疾患の診断及び治療のモニタタリングなどの点で臨
床検査上極めて重要である。
In 1987, A. Heinek et al. Measured chondrocalcin in cartilage extract and chondrocyte culture supernatant by radio immunoassay (A. Hinek et al., J. Cell Biol. 104) .
1435-1441 (1987)). However, the lower limit of measurement described here was 100 ng per 1 ml of the sample, and this sensitivity was insufficient for measuring chondrocalcin in body fluids (blood, joint fluid, etc.). In addition, the samples used for the measurement were a liquid in which cartilage was extracted with a 4M guanidine hydrochloride aqueous solution (pH 5.8) and a culture supernatant liquid in which chondrocytes were cultured in DME medium, which interfered with the specific reaction or was nonspecific. It does not describe the measurement of body fluids containing factors that cause a reaction. Therefore, development of a highly sensitive measurement method, measurement reagent, and kit that enables the measurement of chondrocalcin in body fluids is extremely important in clinical examinations in terms of diagnosis of diseases and monitoring of treatment.

抗原抗体反応を利用した免疫学的測定法は多くの成分
を含む体液の中で抗原と抗体が特異的に反応することを
利用している。しかし、実際には体液を検体として測定
する場合には目的とする抗原抗体反応以外の非特異的な
反応や妨害反応が起こるために、検体に既知量の測定対
象物質である抗原を添加した場合、その添加した量が正
しく測定できなかったり、該抗原を測定するのに必要な
測定感度が十分に得られないという問題点がある。この
様な特異的反応以外の反応が起こる原因については必ず
しも十分解明されているわけではないが、次の様に考え
られる。すなわち、体液中に目的とする測定対象物質と
抗原性において類似した物質が存在することによって起
こる場合や、非特異的に抗体であるIgGのFc部分と反応
するリウマトイド因子などが存在することによって起こ
る場合などである。従って、臨床検査上、体液中の目的
とする物質を正しく測定することは常に極めて重要な課
題である。
The immunological measurement method utilizing the antigen-antibody reaction utilizes the fact that the antigen and the antibody specifically react in the body fluid containing many components. However, in practice, when a body fluid is measured as a sample, a non-specific reaction other than the intended antigen-antibody reaction or an interfering reaction occurs, so if a known amount of the antigen to be measured is added to the sample However, there is a problem that the added amount cannot be measured correctly, or the measurement sensitivity necessary for measuring the antigen cannot be obtained sufficiently. The cause of reactions other than such specific reactions is not always fully understood, but it is considered as follows. That is, it occurs due to the presence of a substance similar in antigenicity to the target substance to be measured in the body fluid, or due to the presence of a rheumatoid factor that reacts nonspecifically with the Fc portion of IgG, which is an antibody. Such is the case. Therefore, in clinical tests, it is always a very important task to correctly measure a target substance in body fluid.

本発明者らは、上記問題点を解決し、体液中のコンド
ロカルシンを測定できる本発明を完成するに至った。
The present inventors have solved the above problems and completed the present invention capable of measuring chondrocalcin in body fluids.

発明の開示 すなわち本発明は、酵素で標識した哺乳動物のコンド
ロカルシン又は抗コンドロカルシン抗体を用いる免疫学
的測定方法において、検体として哺乳動物の体液を用
い、かつ溶液中における免疫反応を利用して該哺乳動物
のコンドロカルシンの量を測定することを特徴とするコ
ンドロカルシンの測定方法である。
DISCLOSURE OF THE INVENTION That is, the present invention relates to an immunological assay method using an enzyme-labeled mammalian chondrocalcin or anti-chondrocalcin antibody, which uses a mammalian body fluid as a sample and utilizes an immune reaction in the solution. Then, the amount of chondrocalcin in the mammal is measured to measure chondrocalcin.

また、本発明は、不溶性担体に固定された抗コンドロ
カルシン抗体試薬と酵素で標識した抗コンドロカルシン
抗体試薬とからなる、検体としての哺乳動物の体液中に
存在するコンドロカルシンの量を免疫学的に測定するた
めのコンドロカルシンの測定試薬、及び不溶性担体に固
定された抗コンドロカルシン抗体,標識した抗コンドロ
カルシン抗体,溶解剤,洗浄剤,酵素活性を測定するた
めの基質およびその反応停止剤とからなる、検体として
の哺乳動物の体液中に存在するコンドロカルシンの量を
免疫学的に測定するためのキットである。
Further, the present invention comprises an anti-chondrocalcin antibody reagent immobilized on an insoluble carrier and an anti-chondrocalcin antibody reagent labeled with an enzyme, and determines the amount of chondrocalcin present in the body fluid of a mammal as a sample. Reagent for measuring chondrocalcin for immunological measurement, anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier, labeled anti-chondrocalcin antibody, lysing agent, detergent, substrate for measuring enzyme activity A kit for immunologically measuring the amount of chondrocalcin present in the body fluid of a mammal as a specimen, which comprises a reaction-terminating agent.

さらにまた、本発明は、哺乳動物のコンドロカルシン
を認識することを特徴とするモノクローナル抗体を含む
ものである。
Furthermore, the present invention includes a monoclonal antibody characterized by recognizing mammalian chondrocalcin.

図面の簡単な説明 第1図は、モノクローナル抗体“Chon−5G"とHRP標識
したモノクローナル抗体“Chon−8G"を用いた測定試薬
によるウシ・コンドロカルシンの検量線である。
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a calibration curve of bovine chondrocalcin by a measurement reagent using the monoclonal antibody “Chon-5G” and the HRP-labeled monoclonal antibody “Chon-8G”.

第2図は、モノクローナル抗体“Chon−3F"とHRP標識
したポリクローナル抗体を用いた測定試薬によるウシ・
コンドロカルシンの検量線である。
Fig. 2 shows the results of measurement using bovine thyroid gland using the monoclonal antibody "Chon-3F" and HRP-labeled polyclonal antibody.
It is a calibration curve of chondrocalcin.

第3図は、ポリクローナル抗体とHRP標識したモノク
ローナル抗体“Chon−4H"を用いた測定試薬によるウシ
・コンドロカルシンの検量線である。
FIG. 3 is a calibration curve of bovine chondrocalcin by a measuring reagent using a polyclonal antibody and an HRP-labeled monoclonal antibody “Chon-4H”.

第4図は、検体中のヒト・コンドロカルシンの測定の
ための検量線である。
FIG. 4 is a calibration curve for measuring human chondrocalcin in a sample.

第5図は、抗コンドロカルシン・ポリクローナル抗体
とHRP標識した該ポリクローナル抗体を用いた本発明の
測定試薬によるウシ・コンドロカルシン検量線である。
FIG. 5 is a bovine chondrocalcin calibration curve using the measurement reagent of the present invention using the anti-chondrocalcin polyclonal antibody and the HRP-labeled polyclonal antibody.

第6図は、コンドロカルシン測定系におけるスキムミ
ルク添加の効果を示したものである。第6図中−●−,
−○−は、それぞれ最終ウシ・コンドロカルシン濃度5n
g/ml,Ong/mlを示す。
FIG. 6 shows the effect of adding skim milk in the chondrocalcin assay system. In Fig. 6-●-,
− ○ − is the final bovine chondrocalcin concentration of 5n
Indicates g / ml and Ong / ml.

第7図は抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナル
抗体とパーオキシダーゼ標識した抗ウシ・コンドロカル
シン・ポリクローナル抗体のFab′を用いた測定試薬に
よるウシ・コンドロカルシンの検量線である。
FIG. 7 is a calibration curve of bovine chondrocalcin with a measurement reagent using anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody and peroxidase-labeled anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody Fab ′.

第8図は、抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナ
ル抗体とパーオキシダーゼ標識した抗ウシ・コンドロカ
ルシン・モノクローナル抗体の“Chon−4H"のFab′を用
いた測定試薬によるウシ・コンドロカルシンの検量線で
ある。
Fig. 8 shows the calibration of bovine chondrocalcin with the measurement reagent using anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody and peroxidase-labeled anti-bovine chondrocalcin monoclonal antibody "Chon-4H" Fab '. It is a line.

第9図は、Fab′を用いたコンドロカルシン測定系に
おけるスキムミルク添加の効果を示したものである。図
中−●−,−○−は、それぞれ最終ウシ・コンドロカル
シン濃度1ng/ml,Ong/mlを示す。
FIG. 9 shows the effect of skim milk addition in the chondrocalcin assay system using Fab ′. In the figure,-●-and-○-indicate the final bovine chondrocalcin concentrations of 1 ng / ml and Ong / ml, respectively.

第10図は、抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナ
ル抗体とパーオキシダーゼ標識した抗ウシ・コンドロカ
ルシン・ポリクローナル抗体のFab′を用いた測定試薬
による。検体中のヒト・コンドロカルシンの測定のため
の検量線である。
FIG. 10 shows a measurement reagent using anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody and peroxidase-labeled anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody Fab ′. It is a calibration curve for the measurement of human chondrocalcin in a sample.

第11図は、鏡面化されたポリスチレンビーズに固定さ
れた抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナル抗体と
パーオキシダーゼで多標識した抗ウシ・コンドロカルシ
ンのF(ab′)2を用いた測定試薬による、液体中のヒ
ト・コンドロカルシン測定のための検量線である。
FIG. 11 shows a measurement reagent using anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody immobilized on mirror-polished polystyrene beads and anti-bovine chondrocalcin F (ab ′) 2 multilabeled with peroxidase. FIG. 3 is a calibration curve for measuring human chondrocalcin in liquid.

発明を実施するための最良の形態 まず、本発明のコンドロカルシンの測定試薬について
説明する。本発明の測定試薬は、不溶性担体に固定され
た抗コンドロカルシン抗体試薬と酵素で標識した抗コン
ドロカルシン抗体試薬からなるが、かかる抗コンドロカ
ルシン抗体としては、抗コンドロカルシン・ポリクロー
ナル抗体,抗コンドロカルシン・モノクローナル抗体が
あげられる。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION First, the reagent for measuring chondrocalcin of the present invention will be described. The assay reagent of the present invention comprises an anti-chondrocalcin antibody reagent immobilized on an insoluble carrier and an anti-chondrocalcin antibody reagent labeled with an enzyme. , Anti-chondrocalcin monoclonal antibody.

本発明で使用されるポリクローナル抗体を得るための
抗原としてのコンドロカルシンは、原則としては天然の
材料から抽出した天然型のものが用いられるが、天然型
のコンドロカルシンと同等の免疫学的性質をもつもので
あれば蛋白工学的又は遺伝子工学的手法によって得られ
るものでもよい。その例として、例えばハプテンすなわ
ち天然型のコンドロカルシンの抗原決定部位を含むペプ
チドであってもよい。
As a principle, chondrocalcin as an antigen for obtaining the polyclonal antibody used in the present invention is a naturally-occurring chondrocalcin extracted from a natural material. Those having properties may be obtained by protein engineering or genetic engineering techniques. For example, it may be a hapten, that is, a peptide containing the antigenic determinant site of natural chondrocalcin.

天然型のコンドロカルシンを得るための材料として
は、例えば哺乳動物の胎仔,発育期の哺乳類の軟骨が挙
げられるが、入手が比較的容易な点から好ましくはウシ
胎仔の軟骨である。分離・精製は、通常用いられる蛋白
分離技術、例えば塩析,抽出,遠心分離,限外濾過,各
種のクロマトグラフィー等を組み合せて行うことができ
るが、前記したエッチ・ユー・チョイらの文献記載の方
法は、その1例である。
Examples of the material for obtaining natural chondrocalcin include, for example, mammalian fetal cartilage and developing mammalian cartilage, but fetal bovine cartilage is preferred because it is relatively easy to obtain. Separation / purification can be carried out by a combination of commonly used protein separation techniques, such as salting out, extraction, centrifugation, ultrafiltration and various chromatographies. The above method is one example.

モノクローナル抗体は、ケーラーとミルシュタインに
よる細胞融合法(G.Khler and Milstein,Nature(Lon
don).256,495−497(1975))により作製されたハイ
ブリドーマを培養して分泌させ、その培養液から分離す
ることにより調製された。すなわち、哺乳動物由来のコ
ンドロカルシンでマウスを免疫した後、このマウスのリ
ンパ球をマウス・ミエローマ細胞と融合させハイブリド
ーマを作製した。このようにして得たハイブリドーマ
は、融合された種々のリンパ球のそれぞれに応じて種々
のモノクローナル抗体を産生するので、目的とするモノ
クローナル抗体を産生するハイブリドーマをクローニン
グによってクローン化されたハイブリドーマとして単離
した。このクローン化ハイブリドーマをイン・ビトロで
培養してモノクローナル抗体を分泌させた。この培養上
清から抗コンドロカルシン・モノクローナル抗体を分離
した。
Monoclonal antibodies were obtained using the cell fusion method of Koehler and Milstein (G. Khler and Milstein, Nature (Lon
don). 256 , 495-497 (1975)), which was prepared by culturing the hybridoma, secreting it, and separating it from the culture solution. That is, after immunizing a mouse with mammalian-derived chondrocalcin, lymphocytes of this mouse were fused with mouse myeloma cells to prepare a hybridoma. The hybridoma thus obtained produces various monoclonal antibodies depending on each of various fused lymphocytes, and thus the hybridoma producing the desired monoclonal antibody is isolated as a cloned hybridoma by cloning. did. This cloned hybridoma was cultured in vitro to secrete the monoclonal antibody. The anti-chondrocalcin monoclonal antibody was separated from this culture supernatant.

また、ポリクローナル抗体は通常行われている方法、
たとえば「日本生化学会編,続生化学実験講座,5巻,1−
10頁,東京化学同人,1986」記載の方法によって得られ
る。
In addition, the polyclonal antibody is a commonly used method,
For example, "The Biochemical Society of Japan, Second Biochemistry Laboratory, Vol. 5, 1-
P. 10, Tokyo Kagaku Dojin, 1986 ”.

免疫動物としては、抗原としてのコンドロカルシンの
材料とした哺乳動物と異種であれば特に限定されるもの
ではないが、例えばウシ・コンドロカルシンを抗原とす
る場合、山羊,ウサギ,モルモット,ラットあるいはマ
ウスなどが好んで挙げられる。
The immunized animal is not particularly limited as long as it is different from the mammal used as the material of chondrocalcin as an antigen. For example, when bovine chondrocalcin is used as an antigen, goat, rabbit, guinea pig, rat Or a mouse etc. are mentioned preferably.

本発明の測定試薬に用いられている抗ウシ・コンドロ
カルシン・ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗
体を用いて常法により、人胎仔の関節軟骨と正常人関節
軟骨を組織染色すると、前者は染色像が得られたが、後
者は得られなかった。この結果から本発明の抗体はヒト
・コンドロカルシンを認識することが判る。
The histological staining of human fetal articular cartilage and normal human articular cartilage was performed by a conventional method using the anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody and the monoclonal antibody used in the assay reagent of the present invention, and the former gave a stained image. However, the latter was not obtained. From these results, it can be seen that the antibody of the present invention recognizes human chondrocalcin.

本発明においては、上記ポリクローナル抗体,モノク
ローナル抗体を少なくとも標識した抗コンドロカルシン
抗体に用いるが、更に不溶性担体に固定した、あるいは
不溶性担体に固定せしめられる抗コンドロカルシン抗体
を用いる場合には、その組合せは、ポリクローナル抗体
どおし、モノクローナル抗体どおし、あるいは、一方を
ポリクローナル抗体とし他方をモノクローナル抗体とす
ることができる。
In the present invention, the above polyclonal antibody, the monoclonal antibody is used as at least a labeled anti-chondrocalcin antibody, but when using an anti-chondrocalcin antibody further immobilized on an insoluble carrier or immobilized on an insoluble carrier, The combination may be a polyclonal antibody, a monoclonal antibody, or one may be a polyclonal antibody and the other a monoclonal antibody.

特に、標識した抗体としては、次の理由により、 Fab′,F(ab′)2又はFacbフラグメントが好ましい場合
がある。すなわち第1に、測定対象である体液中には、
しばしば抗体のFc部分に結合する成分たとえばリューマ
トイド因子などが存在し、かかる成分によって目的とす
る抗原抗体反応以外の非特異的な抗体への反応を起こ
す。その結果、体液中のコンドロカルシンを正しく測定
することが困難な場合があるが、該フラグメントを標識
化して用いるとき、該反応はおきず、正確な値を得るこ
とが出来る。第2に、体液を検体としてコンドロカルシ
ンを測定するに必要な測定感度を得るためには、出来る
だけ不溶性担体への非特異的反応を少なくすることが求
められるが、該フラグメントを標識化して用いるとき、
該反応は抑制され好ましい。
In particular, Fab ', F (ab') 2 or Facb fragment may be preferable as the labeled antibody for the following reasons. That is, firstly, in the body fluid to be measured,
Often, there is a component that binds to the Fc portion of an antibody, such as a rheumatoid factor, and such a component causes a reaction to a nonspecific antibody other than the desired antigen-antibody reaction. As a result, it may be difficult to correctly measure chondrocalcin in body fluid, but when the fragment is labeled and used, the reaction does not occur and an accurate value can be obtained. Secondly, in order to obtain the measurement sensitivity necessary for measuring chondrocalcin using a body fluid as a sample, it is required to reduce the nonspecific reaction to the insoluble carrier as much as possible. When using
The reaction is suppressed and preferable.

かかるフラグメントは、F(ab′)2やFab′の場合に
は、上述のようにして得られたポリクローナル抗体また
はモノクローナル抗体を公知の方法、たとえば該抗体を
ペプシンで分解してF(ab′)2フラグメントとなす
か、更にF(ab′)2フラグメントを還元処理すること
によってFab′フラグメントとなすことにより得られる
(A.Nisonoff et al.,Arch.Biochem.Biophys.,89,230
(1960):P.Parham.,J.Immunol.,131,2895(1983)な
ど)。
In the case of F (ab ′) 2 or Fab ′, such a fragment is obtained by digesting the polyclonal antibody or monoclonal antibody obtained as described above by a known method, for example, by cleaving the antibody with pepsin to obtain F (ab ′) 2. 2 fragment, or by further reducing the F (ab ') 2 fragment to give a Fab' fragment (A. Nisonoff et al., Arch. Biochem. Biophys., 89 , 230).
(1960): P. Parham., J. Immunol., 131 , 2895 (1983), etc.).

標識物質としては、ラジオアイソトープが良く知られ
ているが、工業的な生産を考えると、公害に結びつく可
能性がある点、使用期限がある点、また使用者の特殊訓
練が必要な点で、これらの欠点がなくかつ増巾作用のあ
る酵素が適している。
As a labeling substance, radioisotopes are well known, but considering industrial production, there is a possibility that it may lead to pollution, there is a deadline for use, and special training of users is required, Enzymes that do not have these drawbacks and have a broadening effect are suitable.

またかかる抗コンドロカルシン抗体と結合させる酵素
としては、例えばリゾチーム,マレート・デヒドロゲナ
ーゼ,グルコース−6−フォスフェート・デヒドロゲナ
ーゼ,パーオキシダーゼ,グルコース・オキシダーゼ,
アルカリフォスファターゼ,ルシフェラーゼ,β−ガラ
クトシダーゼ,アルコール・デヒドロゲナーゼ,インベ
ルターゼなどを例示することが出来る。これら酵素と前
記抗コンドロカルシン抗体との結合抗体の結合方法は、
グルタルアルデヒド法,過ヨーソ酸法,マレイミド法な
ど通常の方法に従うことが出来る。例えばマレイミド化
された抗体又は抗体のフラグメントとSH化された酵素を
溶液中で反応することにより行うことができる。抗体又
は抗体のフラグメントのマレイミド化は、例えばサクシ
ンイミジル4−(N−マレイミドメチル)シクロヘキサ
ンカーボネート(SMCC),スルホサクシンイミジル4−
(N−マレイミドメチル)シクロヘキサンカーボネート
(スルホSMCC),サクシンイミジル−メタマレイミドベ
ンゾエート(MBS),サクシンイミジル6−マレイミド
ヘキサノエート(EMCS)などによりマレイミド化するこ
とができる。酵素へのSH基の導入は公知の方法(石川編
「酵素免疫測定手法」医学書院)に従うことができる。
例えば酵素とS−アセチルメルカプト無水コハク酸(AM
SA)又はN−サクシンイミジル−3−(2−ピリジルチ
オ)プロピオネート(SPDP)などと反応することにより
得られる。
Examples of the enzyme bound to the anti-chondrocalcin antibody include lysozyme, malate dehydrogenase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, peroxidase, glucose oxidase,
Examples thereof include alkaline phosphatase, luciferase, β-galactosidase, alcohol dehydrogenase, invertase and the like. The binding method of the binding antibody between these enzymes and the anti-chondrocalcin antibody is
Conventional methods such as the glutaraldehyde method, the periodate method, and the maleimide method can be followed. For example, it can be carried out by reacting the maleimidated antibody or antibody fragment with the SH-enzyme in a solution. Maleimidation of an antibody or antibody fragment is performed by, for example, succinimidyl 4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane carbonate (SMCC), sulfosuccinimidyl 4-.
It can be maleimidized with (N-maleimidomethyl) cyclohexane carbonate (sulfo SMCC), succinimidyl-metamaleimidobenzoate (MBS), succinimidyl 6-maleimidohexanoate (EMCS) and the like. The SH group can be introduced into the enzyme according to a known method (Ishikawa, "Enzyme-linked immunosorbent assay", Medical Institute).
For example, enzyme and S-acetylmercaptosuccinic anhydride (AM
SA) or N-succinimidyl-3- (2-pyridylthio) propionate (SPDP) and the like.

かくして得られた酵素と抗コンドロカルシン抗体との
結合抗体、すなわち酵素標識抗体における酵素の標識数
は、分子量の測定や吸光度,酵素活性などの測定などに
より求めることができる。たとえば、酵素がペルオキシ
ダーゼの場合には、抗体とペルオキシダーゼに由来する
280nmの吸光度と、ペルオキシダーゼに由来する403nmの
吸光度を測定することにより標識数を求めることができ
る(E.Ishikawa et al.,J.Immunoassay.,,209−327,
(1983),p243参照)。
The number of labels of the enzyme in the binding antibody of the enzyme thus obtained and the anti-chondrocalcin antibody, that is, the enzyme-labeled antibody can be determined by measuring the molecular weight, the absorbance, the enzyme activity, or the like. For example, when the enzyme is peroxidase, it is derived from antibody and peroxidase.
The number of labels can be determined by measuring the absorbance at 280 nm and the absorbance at 403 nm derived from peroxidase (E. Ishikawa et al., J. Immunoassay., 4 , 209-327,
(1983), p243).

すなわち403nmでは抗体の吸光度はなく、ペルオキシ
ダーゼのみ由来の吸光度である故に、該吸光度からペル
オキシダーゼの濃度を算出する。280nmでは抗体,ペル
オキシダーゼ両者由来の吸光度であることから、抗体の
濃度は測定された280nmの吸光度から、403nmの吸光度に
よって算出されたペルオキシダーゼの濃度と280nmでの
ペルオキシダーゼの分子吸光係数から算出されるペルオ
キシダーゼの280nmの吸光度の寄与分を引いた値と、280
nmでの抗体の分子吸光係数から算出する。かくして得ら
れたペルオキシダーゼと抗体の濃度から抗体へのペルオ
キシダーゼの標識数を求めることが出来る。
That is, at 403 nm, there is no absorbance of the antibody, and since the absorbance is derived from only peroxidase, the concentration of peroxidase is calculated from the absorbance. Since the absorbance at 280 nm is derived from both the antibody and peroxidase, the concentration of the antibody is calculated from the measured absorbance at 280 nm, the concentration of peroxidase calculated by the absorbance at 403 nm, and the molecular extinction coefficient of peroxidase at 280 nm. The value obtained by subtracting the contribution of the absorbance at 280 nm from
Calculated from the molecular extinction coefficient of the antibody at nm. The number of peroxidase labeled on the antibody can be determined from the concentration of peroxidase and antibody thus obtained.

かくして本発明の標識した抗コンドロカルシン抗体の
標識数を求め、測定感度との相関を研究した結果、 Fab′,F(ab′)2又はFacbフラグメントに酵素が、抗体
1分子当り平均1.0分子以上結合のものが一般に用いら
れるが、なかでも1.5分子以上結合したもの(多標識抗
体)がより好ましい結果を生ずることが明らかとなっ
た。体液中のコンドロカルシンを測定するに充分な測定
感度を得るためには、該多標識抗体は酵素がFab′,F(a
b′)2又はFacbフラグメント1分子当り平均1.5分子以
上結合したものがよく、より好ましくは2分子以上であ
る。しかし、これは該フラグメントに限定されるもので
ない。
Thus, the labeled number of the labeled anti-chondrocalcin antibody of the present invention was determined, and the correlation with the measurement sensitivity was investigated. As a result, the Fab ', F (ab') 2 or Facb fragment was found to have an enzyme at an average of 1.0 molecule per antibody molecule. Although those having the above-mentioned binding are generally used, it has been clarified that the binding of 1.5 molecules or more (multi-labeled antibody) produces more preferable results. In order to obtain sufficient measurement sensitivity for measuring chondrocalcin in body fluids, the multi-labeled antibody should have an enzyme Fab ', F (a
An average of 1.5 or more molecules is preferably bound to one molecule of b ′) 2 or Facb fragment, more preferably 2 or more molecules. However, this is not limited to the fragment.

かかる多標識抗体は、たとえば前記マレイミド化抗体
又は抗体フラグメントとSH化された酵素とを反応させる
ことによって製造される。該反応条件としては、たとえ
ば該抗体のフラグメントと該酵素とのモル比1:1以上、
好ましくは1:3以上、反応温度4〜40℃、好ましくは4
〜30℃、反応pH5.5〜7.5、反応時間5〜48時間の条件に
従うことができるが、本発明の多標識抗体が得られれば
前記反応条件に限定されるものではない。この様にして
得られた多標識抗体は例えば、ゲルクロマトグラフィー
を用いて反応液より分離精製することができる。
Such a multi-labeled antibody is produced, for example, by reacting the maleimidated antibody or antibody fragment with an SH-enzyme. The reaction conditions include, for example, a molar ratio of the antibody fragment to the enzyme of 1: 1 or more,
Preferably 1: 3 or more, reaction temperature 4 to 40 ° C, preferably 4
The conditions can be as follows: -30 ° C, reaction pH 5.5-7.5, reaction time 5-48 hours, but not limited to the above reaction conditions as long as the multilabeled antibody of the present invention can be obtained. The multi-labeled antibody thus obtained can be separated and purified from the reaction solution by using, for example, gel chromatography.

かくして得られた本発明の酵素で標識した抗体は、体
液を検体として用いる時に起こる目的とする抗原抗体反
応以外の非特異的反応や妨害反応を抑制し、体液中のコ
ンドロカルシンを測定するに必要な測定感度で正しく測
定することが出来る。
The thus-obtained enzyme-labeled antibody of the present invention suppresses non-specific reactions or interfering reactions other than the intended antigen-antibody reaction that occurs when a body fluid is used as a sample, and is useful for measuring chondrocalcin in the body fluid. It can be measured correctly with the required measurement sensitivity.

一方、不溶性担体に固定化された抗コンドロカルシン
抗体は以下のようにして得ることができる。
On the other hand, the anti-chondrocalcin antibody immobilized on the insoluble carrier can be obtained as follows.

不溶性担体としては、天然から得られる重合体とその
誘導体、合成重合体とその誘導体を挙げることが出来
る。前者には、多糖類とその誘導体、例えばセルロー
ス,セファデックス,セファロース,カルボキシメチル
セルロース,ニトロセルロース,酢酸セルロース,デキ
ストランなど、あるいはガラス,シルカゲルなどの無機
重合体などがある。また後者にはビニル系重合体、例え
ばポリスチレン,ポリエチレン,ポリプロピレン,ABS,
ポリフッ化ビニル,ポリアミン−メチルビニルエーテル
−マレイン酸共重合体,エチレン−マレイン酸共重合体
など;縮合系重合体、例えば6−ナイロン,6,6−ナイロ
ンなどのポリアミド,ポリエチレン・テレフタレートな
どのポリエステル,アミノ酸重合体などがある。また、
その形状は試験管,マイクロタイタープレート,ビーズ
あるいはメンブレンなど特に限定されない。かくなる不
溶性担体に固定される抗体としては、前述の如き抗コン
ドロカルシン抗体の抗体分子,抗原結合能が失われない
そのフラグメント例えばF(ab′)2,Fab′,Fab,Facbな
ど;あるいは抗原結合能が失われない抗体分子またその
フラグメントの誘導体である。これらの抗体を不溶性担
体へ固定する方法は、物理的吸着法、例えばポリスチレ
ンの担体を抗コンドロカルシン抗体の溶液に浸漬する方
法など;イオン結合法、例えばイオン交換樹脂あるいは
アミノ基,カルボン酸基,スルホン酸基,リン酸基など
のイオン化する官能基をもった担体を用いる方法など;
あるいは化学反応による共有結合法、例えばカルボキシ
・クロライド法,カルボジイミド法,無水マレイン酸誘
導体法,イソシアネート誘導体法,臭化シアン活性化多
糖法,ジアゾ法,活性エステル法,架橋試薬による担体
結合法(架橋試薬としてグルタールアルデヒド,ヘキサ
メチレンイソシアネート,コハク酸イミド,マレイミド
化合物など)など;更には、コンドロカルシンに対して
は結合能はないが抗コンドロカルシン抗体に対し生物学
的反応により結合しえる物質を介して結合する方法、例
えばプロテインA結合担体を用いる方法などである。
Examples of the insoluble carrier include polymers obtained from nature and derivatives thereof, and synthetic polymers and derivatives thereof. The former includes polysaccharides and their derivatives such as cellulose, sephadex, sepharose, carboxymethyl cellulose, nitrocellulose, cellulose acetate, dextran, and inorganic polymers such as glass and silk gel. The latter includes vinyl polymers such as polystyrene, polyethylene, polypropylene, ABS,
Polyvinyl fluoride, polyamine-methyl vinyl ether-maleic acid copolymer, ethylene-maleic acid copolymer, etc .; condensation type polymer, for example, polyamide such as 6-nylon, 6,6-nylon, polyester such as polyethylene terephthalate, There are amino acid polymers and the like. Also,
The shape is not particularly limited, such as a test tube, microtiter plate, beads or membrane. As the antibody immobilized on the insoluble carrier which becomes fragile, the antibody molecule of the anti-chondrocalcin antibody as described above, a fragment thereof which does not lose the antigen binding ability, for example, F (ab ') 2 , Fab', Fab, Facb etc .; or It is a derivative of an antibody molecule or a fragment thereof that does not lose its antigen-binding ability. A method for immobilizing these antibodies on an insoluble carrier is a physical adsorption method, for example, a method in which a polystyrene carrier is immersed in a solution of an anti-chondrocalcin antibody; an ionic bond method, for example, an ion exchange resin or an amino group or a carboxylic acid group. , A method of using a carrier having an ionizable functional group such as a sulfonic acid group or a phosphoric acid group;
Alternatively, a covalent bond method by a chemical reaction, for example, a carboxy chloride method, a carbodiimide method, a maleic anhydride derivative method, an isocyanate derivative method, a cyanogen bromide activated polysaccharide method, a diazo method, an active ester method, a carrier bonding method by a crosslinking reagent (crosslinking As reagents, glutaraldehyde, hexamethylene isocyanate, succinimide, maleimide compounds, etc.); Furthermore, it has no binding ability for chondrocalcin but can bind to anti-chondrocalcin antibody through biological reaction. A method of binding via a substance, for example, a method of using a protein A binding carrier and the like.

該不溶性担体として、特にその表面が鏡面化された材
質の不溶性担体を用いると、非特異的吸着が低く、測定
感度が向上するので好ましい。かかる鏡面化された不溶
性担体としてはその表面の中心線平均粗さ(Ra)が1.5
μm以下のものがあげられる。該中心線平均粗さは、表
面粗さ形状測定機、例えばSurfcom570A(東京精密社
製)によって測定できる。
As the insoluble carrier, it is preferable to use an insoluble carrier having a material whose surface is mirror-finished, because non-specific adsorption is low and the measurement sensitivity is improved. Such a mirror-finished insoluble carrier has a center line average roughness (Ra) of 1.5 on its surface.
Examples include those having a size of μm or less. The center line average roughness can be measured by a surface roughness profile measuring device, for example, Surfcom570A (manufactured by Tokyo Seimitsu Co., Ltd.).

かかる鏡面化された不溶性担体としては、前述の各種
重合体又はその誘導体で、上記Raが1.5μm以下のもの
であれば特に制限はないが、例えばポリスチレン等が好
ましく用いられる。
The mirror-finished insoluble carrier is not particularly limited as long as it is the above-mentioned various polymers or derivatives thereof and has Ra of 1.5 μm or less, but polystyrene or the like is preferably used.

かくして得られた本発明の不溶性担体に固定された抗
コンドロカルシン抗体を用いる時、体液を検体として正
確に微量なコンドロカルシンを測定することが出来る。
When the thus obtained anti-chondrocalcin antibody immobilized on the insoluble carrier of the present invention is used, a minute amount of chondrocalcin can be accurately measured using a body fluid as a sample.

次に、このようにして得られる測定試薬を用いて検体
として哺乳動物の体液を用い、該哺乳動物のコンドロカ
ルシンの量を溶液中における免疫反応を利用して測定す
ることを特徴とする本発明のコンドロカルシンの測定方
法について説明する。
Next, a book characterized by using a body fluid of a mammal as a sample using the measurement reagent thus obtained, and measuring the amount of chondrocalcin of the mammal by utilizing an immune reaction in the solution The method for measuring chondrocalcin of the invention will be described.

本発明の免疫学的測定方法としてはいわゆる競争法と
サンドイッチ法等があげられる。
Examples of the immunological measurement method of the present invention include so-called competition method and sandwich method.

サンドイッチ法としては大きく1ステップサンドイッ
チ法と2ステップサンドイッチ法とがある。1ステップ
サンドイッチ法は、測定しようとする抗原を含む検体、
不溶性担体に固定された固相抗体及び酵素を標識した標
識抗体を同一反応系で抗原・抗体行なわせ、固相抗体・
抗原・標識抗体複合体を形成せしめ、洗浄操作の後、標
識物質の量を測定する方法である。この場合、検体と固
相抗体と標識抗体とを同時に存在させて反応させてもよ
いし、先ず検体と固相抗体とを反応させてから標識抗体
を添加して反応させてもよい。また、検体と標識抗体と
を反応させてから固相抗体を添加してもよい。いずれに
しても洗浄操作前に固相抗体・抗原・標識抗体複合体を
形成しさえすればよい。一方、2ステップサンドイッチ
法は、検体と固相抗体とを先ず反応して固相抗体・抗原
複合体を形成せしめ、しかる後検体を除去,洗浄してか
ら標識物質を添加して固相抗体・抗原・標識抗体複合体
を形成せしめる。次いで洗浄操作の後、標識物質の量を
測定する方法である。
The sandwich method is roughly classified into a one-step sandwich method and a two-step sandwich method. The one-step sandwich method is a sample containing an antigen to be measured,
The solid-phase antibody immobilized on the insoluble carrier and the labeled antibody labeled with the enzyme are allowed to perform antigen / antibody in the same reaction system.
This is a method of forming an antigen-labeled antibody complex, washing the mixture, and then measuring the amount of the labeling substance. In this case, the sample, the solid phase antibody and the labeled antibody may be allowed to react at the same time, or the sample and the solid phase antibody may be reacted first and then the labeled antibody may be added and reacted. Alternatively, the solid phase antibody may be added after reacting the sample with the labeled antibody. In any case, it is only necessary to form the solid phase antibody / antigen / labeled antibody complex before the washing operation. On the other hand, in the two-step sandwich method, a sample and a solid phase antibody are first reacted to form a solid phase antibody / antigen complex, and then the sample is removed and washed, and then a labeling substance is added to the solid phase antibody / antigen complex. Allows formation of the antigen-labeled antibody complex. Then, after the washing operation, the amount of the labeling substance is measured.

本発明においては、体液中に測定を誤らせる原因とな
るような妨害物質や非特異反応を起こす物質などが含ま
れる場合には、2ステップサンドイッチ法を用いること
ができる。この方法では、一旦検体中の抗原と固相抗体
とを反応させた後、検体を除去し洗浄してから標識抗体
を反応させるために標識抗体の反応は上記物質の影響を
受けることがなく、精度,感度の点で優れているが、一
方、1ステップサンドイッチ法と比べると洗浄回数が増
えることから操作が煩雑であったり、操作時間が長くな
るといった難点もある。これに対し1ステップサンドイ
ッチ法も用いることができる。この方法は操作が簡単で
反応時間も短くしやすいために好ましい態様であるが一
般に体液の影響を受け易い難点がある。すなわち、非特
異反応や免疫反応が抑制されるために測定感度が低下し
て不十分になったりする。
In the present invention, the two-step sandwich method can be used when the body fluid contains an interfering substance that causes an erroneous measurement or a substance that causes a nonspecific reaction. In this method, once the antigen in the sample is reacted with the solid phase antibody, the sample is removed and washed, and then the labeled antibody is reacted so that the reaction of the labeled antibody is not affected by the above substance, It is excellent in terms of accuracy and sensitivity, but on the other hand, compared to the one-step sandwich method, the number of times of washing increases, so that the operation is complicated and the operation time becomes long. On the other hand, the one-step sandwich method can also be used. This method is a preferred embodiment because it is easy to operate and the reaction time is easily shortened, but it is generally susceptible to body fluids. That is, the nonspecific reaction or immune reaction is suppressed, so that the measurement sensitivity is lowered and becomes insufficient.

本発明においては、例えば不溶性担体として鏡面化さ
れた不溶性担体、なかでも表面の中心線平均粗さが1.5
μm以下のビーズを用い、又標識抗体として多標識 F(ab′)2抗体を用いた場合、該ビーズへの非特異吸
着が妨げられかつ多標識F(ab′)2により感度の上昇
をはかることができるため、特に1ステップサンドイッ
チ法が可能となる。
In the present invention, for example, a mirror-finished insoluble carrier as the insoluble carrier, especially the center line average roughness of the surface is 1.5
When beads with a size of μm or less are used and a multi-labeled F (ab ') 2 antibody is used as a labeled antibody, non-specific adsorption to the beads is hindered and the sensitivity is increased by the multi-labeled F (ab') 2 In particular, a one-step sandwich method is possible.

本発明の測定方法においては、免疫反応溶液に分子量
1.6万〜5.0万及び等電点1.0〜5.0である蛋白質又はそれ
を含む混合物を存在せしめ、これらの免疫反応溶液にお
ける最終濃度が0.02〜0.9重量%となるように調整する
のが、非特異的吸着が抑制され、したがってバックグラ
ンドが著しく低くなり高感度が得られやすいので好まし
い。かかる蛋白質又はそれを含む混合物は、本発明の免
疫測定試薬に免疫反応溶液中に前記所定の量となるよう
に含有せしめることもできる。かかる蛋白質としては、
例えばカゼイン,ペプシン,オボグリコプロティン,オ
ロソムコイドなどがあげられる。このような混合物とし
ては、例えば主成分として前記タンパク質10〜60重量
%、好ましくは20〜50重量%、糖(例えば乳糖)30〜80
重量%、好ましくは40〜60重量%、その他脂肪(例えば
0.5〜2重量%)、灰分(例えば5〜12重量%)、水分
(例えば2〜8重量%)などを含むことができる。この
ような混合物として典型的なのはスキムミルクである。
スキムミルクはタンパク質としてカゼインを含むもので
あるが、カゼインを単独で使用した場合に比べて、スキ
ムミルクは、免疫反応溶液中における分散性が良く、タ
ンパク質単位重量当りのNBS(Non−specific binding)
効果が高く、温度4℃における保存性が良い(沈澱が生
じにくい)という特徴を有する。なお、本発明に用いる
スキムミルクとしては、脱脂したミルクであれば、何の
由来の乳であっても良い。一番典型的なもののひとつと
しては、市販されているDifco社製のスキムミルクであ
る。
In the measuring method of the present invention, the molecular weight of the immune reaction solution is
It is non-specific to adjust the final concentration of these immunoreaction solutions to be 0.02 to 0.9% by weight by allowing the presence of a protein having 16,000 to 50,000 and an isoelectric point of 1.0 to 5.0 or a mixture containing it. Adsorption is suppressed, so that the background is remarkably lowered and high sensitivity is easily obtained, which is preferable. Such a protein or a mixture containing the protein may be contained in the immunoassay reagent of the present invention in the immunoreaction solution so that the predetermined amount is obtained. Such proteins include
Examples include casein, pepsin, ovoglycoprotein, orosomucoid and the like. Examples of such a mixture include 10 to 60% by weight, preferably 20 to 50% by weight, of the above-mentioned protein as a main component, and 30 to 80% sugar (eg, lactose).
% By weight, preferably 40-60% by weight, other fats (eg
0.5 to 2% by weight), ash (eg 5 to 12% by weight), water (eg 2 to 8% by weight) and the like can be contained. A typical example of such a mixture is skim milk.
Skim milk contains casein as a protein, but skim milk has better dispersibility in an immune reaction solution, and NBS (Non-specific binding) per unit weight of protein, as compared with the case of using casein alone.
It is characterized by high effect and good storage stability at a temperature of 4 ° C (precipitation does not easily occur). The skim milk used in the present invention may be milk of any origin as long as it is defatted milk. One of the most typical is the commercially available skim milk from Difco.

なお本発明において、タンパク質の「分子量」は浸透
圧法によって測定した分子量を意味し、具体的には高分
子溶液と純溶媒と溶媒分子は自由に透すが、溶出高分子
は透さない半透膜を境として接した際に両液の浸透圧差
が高分子の分子量のパラメータとなることを利用してタ
ンパク質の分子量を測定するもので、本発明では6.66M
尿素溶液を用いて4℃で測定した値である。また「等電
点」はタンパク質をその等電点に従って分離するクロマ
トフォーカシング法によって測定した値をいい、具体的
にはPBE94(ファルマシア製)ゲルを充填したカラム
(0.5cmφ×45cm)を用い溶出液0.025Mイミダゾール塩
酸(pH7.4)で測定した値をいう。
In the present invention, the "molecular weight" of a protein means a molecular weight measured by an osmotic pressure method. Specifically, a polymer solution, a pure solvent and a solvent molecule are freely permeable, but an eluting polymer is not permeable. The osmotic pressure difference between both solutions when contacting with a membrane as a boundary is used to measure the molecular weight of a protein by utilizing the fact that it serves as a parameter of the molecular weight of a polymer.
It is a value measured at 4 ° C. using a urea solution. The "isoelectric point" refers to the value measured by the chromatofocusing method that separates proteins according to their isoelectric point. Specifically, a column (0.5 cmφ x 45 cm) packed with PBE94 (Pharmacia) gel is used as the eluent. The value measured with 0.025M imidazole hydrochloric acid (pH 7.4).

上記における免疫反応に用いられる溶媒としては、反
応に悪影響を与えない通常の各種のものいずれであって
もよい。例えばリン酸緩衝液,トリス・塩酸緩衝液,酢
酸緩衝液などのpHが6.0から8.0程度のものを用いるのが
好ましい。
The solvent used in the above-mentioned immune reaction may be any of various ordinary solvents that do not adversely affect the reaction. For example, it is preferable to use a phosphate buffer solution, a Tris / hydrochloric acid buffer solution, an acetate buffer solution or the like having a pH of about 6.0 to 8.0.

測定に際しての免疫反応温度条件は、構成要素である
蛋白質の性質を変性させず、かつ免疫反応を著しく抑制
しない限り特に制限はないが、一般には50℃以下、好ま
しくは約4℃〜45℃程度の温度条件下に約5分から20時
間程度を要して反応を行えばよい。
There are no particular restrictions on the temperature of the immune reaction during the measurement as long as it does not denature the properties of the protein as a constituent and does not significantly suppress the immune reaction, but it is generally 50 ° C or lower, preferably about 4 ° C to 45 ° C. The reaction may be performed under the temperature conditions of about 5 minutes to 20 hours.

また本発明測定法における哺乳動物の体液としては、
生体の生の液状成分すなわち特異反応を妨害したり非特
異的反応を起こさせる様な要因を含む哺乳動物、たとえ
ばヒト,馬などの体液をいい、通常の臨床サンプル、例
えば血清あるいは血漿形態の血液,関節液,リンパ液,
胸腺水,腹水,羊水,細胞組織液,骨髄液,尿などの体
液のいずれであってもよい。
Further, as the body fluid of the mammal in the measuring method of the present invention,
A living liquid component of a living body, that is, a body fluid of a mammal, such as a human or a horse, which contains a factor that interferes with a specific reaction or causes a non-specific reaction, and is a normal clinical sample such as blood in a serum or plasma form. , Joint fluid, lymph,
It may be any body fluid such as thymus fluid, ascites fluid, amniotic fluid, cell tissue fluid, bone marrow fluid, and urine.

また、本発明においては、不溶性担体に固定された抗
コンドロカルシン抗体,標識した抗コンドロカルシン抗
体に、免疫学的測定に際し必要なその他のものを組み合
せて、コンドロカルシンの量を測定するためのキットを
構成することができる。かかるものとして溶解剤,洗浄
剤,酵素活性を測定するため基質およびその反応停止剤
など公知のものがある。
Further, in the present invention, the amount of chondrocalcin is measured by combining the anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier and the labeled anti-chondrocalcin antibody with other substances necessary for immunological measurement. A kit for can be configured. As such substances, there are known ones such as a lysing agent, a detergent, a substrate for measuring an enzyme activity and a reaction terminator thereof.

かくして、本発明の免疫測定方法等によれば、臨床サ
ンプルなどの微量の哺乳動物のコンドロカルシンを含む
試料を検体として、該検体中のコンドロカルシンを高感
度,高精度に、しかも簡便な操作で定量することができ
る。
Thus, according to the immunoassay method or the like of the present invention, a sample containing a minute amount of mammalian chondrocalcin such as a clinical sample is used as a specimen, and chondrocalcin in the specimen is highly sensitive, highly accurate, and simple. It can be quantified by operation.

産業上の利用可能性 本発明の免疫学的測定方法及び試薬による体液中のコ
ンドロカルシンの測定値は、哺乳動物の軟骨性疾患たと
えば馬の関節疾患,ヒトの軟骨細胞が関与する疾患など
の診断及び治療のモニタリングなどに有用である。特
に、ヒトの変形性関節症の診断及び治療のモニタリン
グ、また変形性関節症と慢性関節リューマチとの鑑別診
断などに有用である。
INDUSTRIAL APPLICABILITY The measurement value of chondrocalcin in body fluids by the immunological measurement method and reagent of the present invention can be used to measure cartilage diseases in mammals such as horse joint disease and human chondrocyte-related diseases. It is useful for diagnosis and treatment monitoring. Particularly, it is useful for diagnosis and treatment monitoring of human osteoarthritis, and for differential diagnosis of osteoarthritis and rheumatoid arthritis.

以下実施例,参考例により本発明を詳細に説明する。 The present invention will be described in detail below with reference to examples and reference examples.

実施例中、%表示は重量%を示す。 In the examples, "%" indicates "% by weight".

実施例1 (1)ウシ・コンドロカルシンの調製 前記エッチ・ユー・チョイらの方法に従い、ウシ胎仔
の四肢の長管骨20本の軟骨からウシ・コンドロカルシン
10.0mgを得た。SDS−PAGE電気泳動法によって調べた結
果分子量35,000の位置に単一なバンドを示した。
Example 1 (1) Preparation of bovine chondrocalcin According to the method of Etch You Choi et al., Bovine chondrocalcin was extracted from cartilage of 20 long bones of fetal limbs of fetal bovines.
I got 10.0 mg. As a result of examination by SDS-PAGE electrophoresis, a single band was shown at a position of a molecular weight of 35,000.

(2)抗原刺激リンパ球の調製 雄Balb/cマウスの腹腔内に、ウシ・コンドロカルシン
90μgとフロイント完全アジュバントとのエマルジョン
を投与した。その後3〜4週間間隔で5回、ウシ・コン
ドロカルシン40〜50μgと不完全アジュバントとのエマ
ルジョンを腹腔内投与した。5回目投与後10日目にコン
ドロカルシン60μgを生理食塩水1.0mlに溶かし静脈内
投与し、その4日後に無菌的にマウスから脾臓を取り出
し、ステンレス製メッシュを通過させることにより、L
−グルタミン0.39g/l,硫酸カナマイシン0.2g/l及びNaHC
O32.0g/lを補充したRPMI−1640培地(GIBCO製)中に浮
遊させた脾細胞懸濁液を調製した。該浮遊細胞を前記培
地3回洗浄後、脾細胞懸濁液を調製した。
(2) Preparation of antigen-stimulated lymphocytes Male Balb / c mice were intraperitoneally injected with bovine chondrocalcin.
An emulsion of 90 μg and Freund's complete adjuvant was administered. Thereafter, an emulsion of 40 to 50 μg of bovine chondrocalcin and incomplete adjuvant was intraperitoneally administered 5 times at 3 to 4 week intervals. Ten days after the fifth administration, 60 μg of chondrocalcin was dissolved in 1.0 ml of physiological saline and administered intravenously. Four days later, the spleen was aseptically removed from the mouse and passed through a stainless mesh to obtain L.
-Glutamine 0.39 g / l, kanamycin sulfate 0.2 g / l and NaHC
A splenocyte suspension suspended in RPMI-1640 medium (GIBCO) supplemented with O 3 2.0 g / l was prepared. The suspension cells were washed three times with the medium described above, and then a splenocyte suspension was prepared.

(3)細胞融合 マウス骨髄腫細胞P3U1は、硫酸カナマイシン0.2g/lを
補充したGIT合成培地(大五栄養化学(株)製)中で培
養した。骨髄腫細胞は細胞融合の時点に細胞分裂の対数
期にあった。該脾細胞と該骨髄腫細胞とを細胞数3対1
の比率で無血清RPMI−1640培地中に懸濁し、5分間1300
rpmで遠心分離した。上記培地を除去した後、沈降細胞
に平均分子量1,500の50%ポリエチレングリコール溶液
(pH7.2)1mlを静かに加えつつ懸濁液とした。その後無
血清RPMI−1640培地9mlを加え、細胞を注意深く振盪し
た。その後5分間1,000rpmで遠心分離して上清培地を除
去した後、細胞を沈降物として集めHAT培地40mlに懸濁
した。
(3) Cell fusion Mouse myeloma cells P3U1 were cultured in a GIT synthetic medium (manufactured by Daigo Nutrition Chemical Co., Ltd.) supplemented with kanamycin sulfate 0.2 g / l. Myeloma cells were in the exponential phase of cell division at the time of cell fusion. The spleen cells and the myeloma cells have a cell number of 3: 1
Suspended in serum-free RPMI-1640 medium for 5 minutes at 1300
Centrifuge at rpm. After removing the medium, 1 ml of a 50% polyethylene glycol solution (pH 7.2) having an average molecular weight of 1,500 was gently added to the precipitated cells to form a suspension. Then 9 ml of serum free RPMI-1640 medium was added and the cells were shaken carefully. After that, the mixture was centrifuged at 1,000 rpm for 5 minutes to remove the supernatant medium, and the cells were collected as a precipitate and suspended in 40 ml of HAT medium.

(4)クローン化ハイブリドーマの取得 融合細胞液を96マイクロプレート上に分配した(ウエ
ル1個につき200μl)。このプレートを37℃,5%CO2
囲気で培養した。1日後及び2日後に、それ以後2日間
隔で半分量の培地を新たなHAT培地と交換して培養し
た。11日後にハイブリドーマの培養上清中のウシ・コン
ドロカルシンに対する抗体について酵素免疫定量法によ
りスクリーニングを行った。スクリーニングに用いられ
た抗原はウシ・コンドロカルシン,第2抗体はアルカリ
フォスファターゼ標識したヤギ抗マウスIgG抗体であっ
た。
(4) Acquisition of cloned hybridoma The fused cell solution was distributed on a 96-microplate (200 μl per well). The plate was incubated at 37 ° C. in a 5% CO 2 atmosphere. After 1 day and 2 days, half of the medium was replaced with a new HAT medium and cultured at intervals of 2 days thereafter. After 11 days, screening was performed for the antibody against bovine chondrocalcin in the culture supernatant of the hybridoma by the enzyme immunoassay. The antigen used for the screening was bovine chondrocalcin, and the second antibody was goat anti-mouse IgG antibody labeled with alkaline phosphatase.

ハイブリドーマを分配した192ウエルのうち102ウエル
中に融合細胞のコロニーを認め、その内7ウエルが抗体
陽性であった。
In 102 wells out of 192 wells into which the hybridomas were distributed, colonies of fused cells were observed, and 7 wells thereof were antibody-positive.

かくして得られた抗体陽性の各ウエル中のハイブリド
ーマを96マイクロプレートの1ウエル当り0.9細胞にな
るよう希釈し、Balb/cマウスの胸腺細胞をフィーダー細
胞として加えプレートに分配し硫酸カナマイシン0.2g/l
を補充したGIT培地で培養した。顕微鏡下で観察し確実
にシングル・コロニーであることを認めた。ハイブリド
ーマの培養上清中のウシ・コンドロカルシンに対する抗
体について酵素免疫定量法によりスクリーニングを行っ
た。各ウエルともに抗体陽性であり、抗ウシ・コンドロ
カルシン・モノクローナル抗体を産生していた。
The hybridoma thus obtained in each antibody-positive well was diluted to 0.9 cells per well of 96 microplate, and thymocytes of Balb / c mice were added as feeder cells and distributed to the plate and kanamycin sulfate 0.2 g / l
The cells were cultured in GIT medium supplemented with. Observation under a microscope confirmed that it was definitely a single colony. Screening was carried out by an enzyme immunoassay for antibodies to bovine chondrocalcin in the culture supernatant of hybridomas. Each well was antibody-positive and produced anti-bovine chondrocalcin monoclonal antibody.

(5)ハイブリドーマの培養 これらのクローン化ハイブリドーマを、2週間前にプ
リスタン(和光純薬)0.1mlを腹腔内投与したBalb/cマ
ウスに、細胞数106〜107個/匹腹腔内投与した。その後
7〜10日目に腹水液2〜3ml/匹採取した。
(5) these cloned hybridoma culture of hybridomas, two weeks ago pristane (Wako Pure Chemical) 0.1 ml in Balb / c mice were intraperitoneally administered was administered cell count 10 6 to 10 7 cells / mouse intraperitoneally . Thereafter, on the 7th to 10th day, 2-3 ml / animal ascites fluid was collected.

(6)モノクローナル抗体の精製 採取した腹水液をEyらの方法(P.L.Ey et al.,Immuno
chemistry,15,429−436(1978)参照)により精製し
た。すなわち0.1Mリン酸緩衝液(pH8.0)で平衡化した
プロテインA−セファロース−カラム(ゲル容量5ml)
に、腹水液2〜3mlを流し、その後0.1Mクエン酸ナトリ
ウムのpHが6.0,5.0,4.0及び3.0である緩衝液を順次流し
てカラムからモロクローナル抗体を溶出し、精製モノク
ローナル抗体すなわちChon−3F,Chon−5G,Chon−8Gおよ
びChon−4Hを得た。
(6) Purification of monoclonal antibody The collected ascites fluid was collected by the method of Ey et al. (PLEy et al., Immuno
chemistry, 15 , 429-436 (1978)). That is, Protein A-Sepharose column (gel volume 5 ml) equilibrated with 0.1 M phosphate buffer (pH 8.0)
2 to 3 ml of ascites fluid, and then a buffer solution of 0.1 M sodium citrate having a pH of 6.0, 5.0, 4.0 and 3.0 was sequentially passed to elute the moroclonal antibody from the column, and purified monoclonal antibody, namely Chon-3F , Chon-5G, Chon-8G and Chon-4H were obtained.

(7)精製したモノクローナル抗体のクラス 精製したモノクローナル抗体の特定のクラスを、クラ
ス特異性抗マウス抗血清を使用してオクタローニーゲル
拡散試験で決定した。その結果を下記表1に示した。
(7) Class of Purified Monoclonal Antibody A specific class of purified monoclonal antibody was determined in an Octa Loney gel diffusion test using a class-specific anti-mouse antiserum. The results are shown in Table 1 below.

(8)モノクローナル抗体の認識部位異同の検索 2μg/mlウシ・コンドロカルシンPBS溶液を96マイク
ロプレートにウエル当り150μlづつ分配し4℃で一夜
放置し、PBSで洗浄後0.5%BSA−PBSを加え更に一夜放置
して抗原固定プレートを作製した。このプレートに5μ
g/mlのモノクローナル抗体PBS溶液(第1抗体)をウエ
ル当り150μl加え37℃で75分間放置した。ウエルを洗
浄後、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)標
識したモノクローナル抗体(第2抗体)の0.5%BSA−PB
S溶液をウエル当り150μlづつ加え37℃で60分間反応さ
せた。生食水にて洗浄後、HRP用基質液(0.1Mリン酸/
クエン酸緩衝液(pH4.5)中に2,2′−アジノージ[3−
エチルベンズチアゾリンスルホネート(6)]ジアンモ
ニウム塩50mg/dlと2M H2O250μl/dlを含む)150μlを
加え25℃で6分発色させた。0.1Mシュウ酸水溶液を50μ
l加えて停止反応を行い、415nmでプレート・リーダー
にて測定した。
(8) Search for difference in recognition site of monoclonal antibody 2 μg / ml bovine chondrocalcin PBS solution was distributed to 96 microplate at 150 μl per well, left overnight at 4 ° C., washed with PBS, and added with 0.5% BSA-PBS. Further, the plate was left overnight to prepare an antigen-immobilized plate. 5μ on this plate
150 μl of g / ml monoclonal antibody PBS solution (first antibody) was added to each well, and the mixture was allowed to stand at 37 ° C. for 75 minutes. After washing the wells, 0.5% BSA-PB of horseradish peroxidase (HRP) -labeled monoclonal antibody (second antibody)
150 μl of S solution was added to each well and reacted at 37 ° C. for 60 minutes. After washing with saline, HRP substrate solution (0.1M phosphoric acid /
2,2'-azinodi [3-] in citrate buffer (pH 4.5)
Ethylbenzthiazoline sulfonate (6)] diammonium salt (50 mg / dl and 2 MH 2 O 2 50 μl / dl) (150 μl) was added and color was developed at 25 ° C. for 6 minutes. 50μ of 0.1M oxalic acid solution
Then, the reaction was stopped by adding 1 of each of them, and measured at 415 nm with a plate reader.

表2に示した結果から、得られた4つのモノクローナ
ル抗体は、エピトープをそれぞれ異にする3種の抗体で
あり、Chon−5GとChon−4Hは、エピトープが同じか、あ
るいは近接していて同時に結合できない抗体であること
が明らかである。
From the results shown in Table 2, the obtained four monoclonal antibodies are three types of antibodies having different epitopes, and Chon-5G and Chon-4H have the same epitope or close epitopes at the same time. It is clearly an antibody that cannot bind.

実施例2 家兎の皮下に、実施例1で精製したウシ・コンドロカ
ルシン1mgとフロイント完全アジュバントとのエマルジ
ョンを投与した。19日後にウシ・コンドロカルシン450
μgを同様にして皮下投与した。更に16日後にウシ・コ
ンドロカルシン450μgとフロイント完全アジュバント
とのエマルジョンを皮下に投与し、10日目に採血し、血
清とした後、酵素免疫定量法、すなわちウシ・コンドロ
カルシンを抗原とし第2抗体にホースラディッシュパー
オキシダーゼ標識したヤギ抗ウサギIgG抗体で、ウシ・
コンドロカルシンに対する抗体価を測定し40万倍である
ことを確認した。その後、全血を採取、血清とし、それ
を40%飽和硫安沈澱、プロテインA−セファローズ−4B
カラムで精製してウシ・コンドロカルシンに対するポリ
クローナル抗体を取得した。
Example 2 An emulsion of 1 mg of bovine chondrocalcin purified in Example 1 and Freund's complete adjuvant was subcutaneously administered to a rabbit. 19 days later bovine chondrocalcin 450
μg was subcutaneously administered in the same manner. 16 days later, an emulsion of 450 μg of bovine chondrocalcin and Freund's complete adjuvant was subcutaneously administered, and blood was collected on the 10th day to make serum. Then, an enzyme immunoassay method was conducted, that is, bovine chondrocalcin was used as an antigen. 2 antibody with goat anti-rabbit IgG antibody labeled with horseradish peroxidase.
The antibody titer against chondrocalcin was measured and confirmed to be 400,000 times. After that, whole blood was collected and used as serum, which was precipitated with 40% saturated ammonium sulfate, protein A-Sepharose-4B.
Purification by column was performed to obtain a polyclonal antibody against bovine chondrocalcin.

実施例3 実施例1記載のモノクローナル抗体“Chon−5G"を、
濃度20μg/mlの0.1Mリン酸/クエン酸緩衝液(pH4.0)
の溶液としてマイクロプレートにウエル当り100μlづ
つ分配し、4℃で1昼夜放置して固定化した。これをPB
Sで洗浄後0.5%BSA−PBSをウエル当り100μlづつ加え
て4℃で一夜放置してアフター・コートを行い、ついで
PBSにて洗浄して“Chon−5G"固定プレートを調製した。
Example 3 The monoclonal antibody "Chon-5G" described in Example 1 was
0.1M phosphate / citrate buffer (pH 4.0) with a concentration of 20 μg / ml
As a solution of 100 μl, 100 μl was distributed per well in a microplate, and left at 4 ° C. for one day to be immobilized. PB this
After washing with S, add 100 μl of 0.5% BSA-PBS to each well and leave it at 4 ° C overnight for after-coating.
The plate was washed with PBS to prepare a "Chon-5G" fixed plate.

次に、精製ウシ・コンドロカルシンの15,10,5,1.5,On
g/mlの希釈系列をPBSにて作成し、 “Chon−5G"固定プレートにウエル当り100μlづつ加え
て37℃で1時間反応させた。PBSで洗浄後、ホースラデ
ィッシュパーオキシダーゼ(HRP)標識したモノクロー
ナル抗体“Chon−8G"(実施例1に記載)の0.5%BSA−P
BS溶液をウエル当り100μlづつ分配して37℃で1時間
反応させた。PBSにて洗浄後、HRP用基質液(TMB)100μ
lを加え37℃で30分間発色させ、1N−硫酸溶液100μl
を加えて停止反応を行い450nmでプレート・リーダーに
て吸光度を測定した。
Next, 15,10,5,1.5, On of purified bovine chondrocalcin
A g / ml dilution series was prepared in PBS, 100 μl per well was added to the “Chon-5G” fixed plate, and the mixture was reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBS, 0.5% BSA-P of horseradish peroxidase (HRP) -labeled monoclonal antibody "Chon-8G" (described in Example 1)
100 μl of the BS solution was distributed per well and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBS, HRP substrate solution (TMB) 100μ
Add 1 liter and develop color at 37 ° C for 30 minutes, 100 μl of 1N sulfuric acid solution
Was added to stop the reaction, and the absorbance was measured with a plate reader at 450 nm.

その結果得た検量線を第1図に示した。 The calibration curve obtained as a result is shown in FIG.

実施例4 実施例1記載のモノクローナル抗体“Chon−3F"を蛋
白濃度20μg/mlになるように0.1Mリン酸/クエン酸緩衝
液にて調製し、これにポリスチレンボールを加えて3昼
夜浸漬して固定した。PBSで洗浄後、0.5%PSA−PBSに一
夜浸漬してアフター・コートを行い、更にPBSで洗浄し
て“Chon−3F"固定ボールを得た。
Example 4 The monoclonal antibody "Chon-3F" described in Example 1 was prepared with 0.1 M phosphoric acid / citrate buffer so that the protein concentration was 20 μg / ml, and polystyrene balls were added thereto and immersed for 3 days and nights. Fixed. After washing with PBS, it was immersed in 0.5% PSA-PBS overnight for after-coating, and further washed with PBS to obtain "Chon-3F" fixed balls.

次に、精製ウシ・コンドロカルシンの15,10,5,1.67,O
ng/mlの希釈系列をPBSにて作成し、“Chon−3F"固定ボ
ールと37℃で1時間反応させた。PBSで洗浄後、ホース
ラディッシュパーオキシダーゼ(HRP)標識したポリク
ローナル抗体(実施例2に記載)の0.5%BSA−PBS溶液
を400μl加え37℃で1時間反応させた。PBSにて洗浄
後、HRP用基質液(0.1Mリン酸/クエン酸緩衝液(pH4.
5)中に0.125%3,3′,5,5′−テトラメチルベンジジン
と0.03%過酸化水素を含む)400μlを加え37℃で30分
間発色させた。1N−硫酸1.0mlで停止反応を行い、発色
液の450nmの吸光度を分光光度計で測定した。
Next, purified bovine chondrocalcin 15,10,5,1.67, O
A ng / ml dilution series was prepared in PBS and reacted with "Chon-3F" fixed balls at 37 ° C for 1 hour. After washing with PBS, 400 μl of 0.5% BSA-PBS solution of horseradish peroxidase (HRP) -labeled polyclonal antibody (described in Example 2) was added and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBS, substrate solution for HRP (0.1M phosphate / citrate buffer (pH 4.
(5) containing 0.125% 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine and 0.03% hydrogen peroxide) (400 μl) was added and color was developed at 37 ° C for 30 minutes. The termination reaction was carried out with 1.0 ml of 1N-sulfuric acid, and the absorbance of the color-developing solution at 450 nm was measured with a spectrophotometer.

その結果得た検量線を第2図に示す。 The calibration curve obtained as a result is shown in FIG.

実施例5 実施例4記載の方法によってウシ・コンドロカルシン
に対するポリクローナル抗体(実施例2に記載)を固定
したボールを調製した。
Example 5 A ball to which a polyclonal antibody against bovine chondrocalcin (described in Example 2) was immobilized was prepared by the method described in Example 4.

次に、精製ウシ・コンドロカルシンの15,10,5,1.67,O
ng/mlの希釈系列をPBSにて作成し、各400μlガラス管
に加え、前記固定ボールと37℃で1時間反応させた。PB
Sで洗浄後、ホースラディッシュパーオキシダーゼ(HR
P)標識したモノクローナル抗体“Chon−4H"(実施例1
に記載)の0.5%BSA−PBS溶液を400μl加え37℃で1時
間反応させた。以下、実施例4と同様にして第3図の検
量線を得た。
Next, purified bovine chondrocalcin 15,10,5,1.67, O
A dilution series of ng / ml was prepared in PBS, added to each 400 μl glass tube, and reacted with the fixed balls at 37 ° C. for 1 hour. PB
After washing with S, horseradish peroxidase (HR
P) labeled monoclonal antibody "Chon-4H" (Example 1
Described in 1.), 400 μl of 0.5% BSA-PBS solution was added, and the mixture was reacted at 37 ° C. for 1 hour. Hereinafter, the calibration curve of FIG. 3 was obtained in the same manner as in Example 4.

実施例6 精製ウシ・コンドロカルシンの10.0,5.0,1.0,0.6,0.
4,0.2,0.1,0.0ng/mlの希釈系列をPBSにて作成し、その
各々にウシ・コンドロカルシンに対するポリ・クローナ
ル抗体(実施例2に記載)を固定したセファローズ−4B
カラムに通した正常人血漿を等容量加えて、2倍希釈さ
れた人血漿中に5.0,2.5,0.5,0.3,0.2,0.1,0.05,0.0ng/m
lのウシ・コンドロカルシンを含む希釈系列を調製し
た。
Example 6 Purified bovine chondrocalcin 10.0,5.0,1.0,0.6,0.
Sepharose-4B in which a dilution series of 4,0.2,0.1,0.0 ng / ml was prepared in PBS and a polyclonal antibody against bovine chondrocalcin (described in Example 2) was immobilized on each of them.
5.0, 2.5, 0.5, 0.3, 0.2, 0.1, 0.05, 0.0ng / m in human plasma diluted twice by adding an equal volume of normal human plasma that has passed through the column
A dilution series containing l of bovine chondrocalcin was prepared.

この希釈系列のウシ・コンドロカルシン溶液を実施例
3と同様に作成した“Chon−4H"(実施例1に記載)固
定プレートとHRP標識したポリクローナル抗体(実施例
2に記載)を用いて測定して第4図の検量線を作成し
た。
This diluted series of bovine chondrocalcin solution was measured using "Chon-4H" (described in Example 1) fixed plate prepared in the same manner as in Example 3 and HRP-labeled polyclonal antibody (described in Example 2). Then, the calibration curve of FIG. 4 was created.

次に血清又は関節液の検体にPBSを等容量加えて2倍
希釈の検体液として実施例3と同様にして吸光度を測定
し、第4図の検量線からウシ・コンドロカルシン換算の
ヒト・コンドロカルシン濃度を測定した。その結果を表
3にまとめた。
Next, an equal volume of PBS was added to the sample of serum or synovial fluid, and the absorbance was measured in the same manner as in Example 3 as a sample solution of 2-fold dilution. From the calibration curve of FIG. 4, bovine chondrocalcin-converted human Chondrocalcin concentration was measured. The results are summarized in Table 3.

実施例7 実施例2記載の抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクロ
ーナル抗体を、濃度20μg/mlの0.1Mリン酸/クエン酸緩
衝液(pH4.0)の溶液としてマイクロプレートにウエル
当り100μlづつ分配し、4℃で一昼夜放置して固定化
した。これをPBSで洗浄後0.5%BSA−PBSをウエル当り10
0μlづつ加えて4℃で一夜放置してアフター・コート
を行い、ついでPBSにて洗浄して抗ウシ・コンドロカル
シン・ポリクローナル抗体固定プレートを調製した。
Example 7 The anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody described in Example 2 was dispensed as a solution of 0.1 M phosphate / citrate buffer (pH 4.0) at a concentration of 20 μg / ml into a microplate at 100 μl per well. It was left to stand overnight at 4 ° C. for immobilization. After washing this with PBS, add 0.5% BSA-PBS to each well for 10
After adding 0 μl of each, the mixture was left to stand at 4 ° C. overnight for after-coating, and then washed with PBS to prepare an anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody-immobilized plate.

次に、精製ウシ・コンドロカルシンの15,10,5,1.5,On
g/mlの希釈系列を1%BSA−終濃度0.065%スキムミルク
−PBSにて作成し、該抗体固定プレートにウエル当り100
μlづつ加えて37℃で1時間反応させた。PBSで洗浄
後、HRP標識した抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクロ
ーナル抗体の0.5%BSA−0.1%スキムミルク−PBS溶液を
ウエル当り100μlづつ分配して37℃で1時間反応させ
た。PBSにて洗浄後、HRP用基質液(2.5mM H2O2,0.0225
%3,3′.5,5′−テトラベンジジン)100μlを加え37℃
で30分間発色させ、1N−硫酸溶液100μlを加えて停止
反応を行い450nmでプレート・リーダーにて吸光度を測
定した。
Next, 15,10,5,1.5, On of purified bovine chondrocalcin
A dilution series of g / ml was prepared with 1% BSA-final concentration 0.065% skim milk-PBS, and 100 per well was added to the antibody-immobilized plate.
Each μl was added and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBS, a 0.5% BSA-0.1% skimmed milk-PBS solution of HRP-labeled anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody was distributed in 100 µl per well and reacted at 37 ° C for 1 hour. After washing with PBS, HRP substrate solution (2.5 mM H 2 O 2 , 0.0225
% 3,3'.5,5'-Tetrabenzidine) 100 μl was added at 37 ° C.
Color was developed for 30 minutes, 100 μl of 1N-sulfuric acid solution was added to stop the reaction, and the absorbance was measured with a plate reader at 450 nm.

その結果得た検量線を第5図に示した。 The calibration curve obtained as a result is shown in FIG.

測定下限は1ng/mlであって、エー・ハイネクらのラジ
オイムノアッセイによる測定下限100ng/ml(A.Hinek et
al,J.Cell Biol.,104,1435−1441(1987)に比べ、著
しく高感度であった。
The lower limit of measurement is 1 ng / ml, and the lower limit of measurement by the radioimmunoassay of A. Heinek et al.
The sensitivity was remarkably higher than that of al, J. Cell Biol., 104 , 1435-1441 (1987).

実施例8 免疫測定用緩衝液(1%BSA含有0.01Mリン酸、0.85%
Nacl緩衝液pH=7.2以後1%BSA−PBSと略記する)で、
ウシ・コンドロカルシンを希釈し、0,10ng/ml溶液を作
成し、その50μlと同上緩衝液で終濃度0,0.00625,0.01
25,0.025,0.05,0.1,0.2,0.4及び0.8%となる様に調整し
たスキムミルク含有溶液50μlを加えよく混和し、実施
例2記載の抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナル
抗体を固定したマイクロプレートに同上溶液100μlを
入れ、37℃で2時間反応させた(一次反応)。次いで、
PBS−0.05%Tween−20で洗浄後、実施例3の記載と同様
に調整して得られたHRP標識抗ウシ・コンドロカルシン
抗体を終濃度が一次反応と同じ濃度となるスキムミルク
を含む免疫測定用緩衝液で希釈し、各ウエルに100μl
入れ37℃で1時間反応させた(二次反応)。PBS−0.05
%Tween−20にて洗浄後実施例3記載のHRP用基質液を10
0μl加え、37℃で0.5時間発色させ、1N−硫酸溶液25μ
lを加えて停止反応を行ない、450nmでプレート・リー
ダーにて吸光度を測定した。その結果を第6図に示し
た。この図から明らかな如く、スキムミルク濃度0.0062
5%以上のスキムミルク濃度で非特異的吸着が防止出来
る。
Example 8 Buffer for immunoassay (0.01M phosphoric acid containing 1% BSA, 0.85%
Nacl buffer solution pH = 7.2 and later abbreviated as 1% BSA-PBS),
Bovine chondrocalcin was diluted to make a 0,10 ng / ml solution, and 50 μl of it was added to the same buffer solution to give a final concentration of 0,0.00625,0.01.
50 μl of skim milk-containing solution adjusted to 25, 0.025, 0.05, 0.1, 0.2, 0.4 and 0.8% was added and mixed well, and the mixture was added to the anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody-immobilized microplate described in Example 2. 100 μl of the same solution was added and reacted at 37 ° C. for 2 hours (primary reaction). Then
After washing with PBS-0.05% Tween-20, HRP-labeled anti-bovine chondrocalcin antibody obtained by adjusting in the same manner as in Example 3 was immunoassayed with skim milk to give the same final concentration as the primary reaction. Dilute with buffer solution for 100 μl to each well
The mixture was allowed to react at 37 ° C. for 1 hour (secondary reaction). PBS-0.05
After washing with 10% Tween-20, 10% of the HRP substrate solution described in Example 3 was used.
Add 0 μl, develop color at 37 ℃ for 0.5 hours, and add 1N-sulfuric acid solution 25μ
The reaction was terminated by adding 1 and the absorbance was measured with a plate reader at 450 nm. The results are shown in FIG. As can be seen from this figure, skim milk concentration 0.0062
Non-specific adsorption can be prevented with a skim milk concentration of 5% or more.

実施例9 実施例2に記載の抗ウシ・コンドロカルシン・ポリク
ローナル抗体(抗コンドロカルシンPCA)のFab′フラグ
メントを、ニソノフの方法に準じた調整常法によりパー
オキシダーゼと結合してパーオキシダーゼ標識Fab′を
得た(日本生化学会編,続生化学実験講座,5巻,109−11
2頁,東京化学同人,1986年)。すなわち、抗コンドロカ
ルシンPCAの1250μgを0.2M酢酸ナトリウム緩衝液(pH
4.5)1.25mlに溶解し、同緩衝液に対して透析した。25
μgのペプシンを加え37℃で24時間消化分解した。反応
液に1N−NaOHを滴下し、pHを8として反応を停止した。
TSKgel3000SWカラム−HPLCで溶出液に5 mM EDTA−0.1M
リン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)を用いて、この反応
液から分子量92,000のF(ab′)2フラグメントを分離
した。これを限外濾過器により濃縮し、F(ab′)2
濃度が122.3μg/mlである液2.2mlを得た。これに0.1M2
−メルカプトエチルアミン245μlを加え、37℃で時間
還元処理した。この反応液を限外濾過器によって濃縮
後、F(ab′)2と同様にしてHPLCによって分子量46,00
0のFab′フラグメントを分離した。83.7μg/mlのFab′
フラグメントの液を2.0ml得た。
Example 9 The Fab ′ fragment of the anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody (anti-chondrocalcin PCA) described in Example 2 was bound to peroxidase by binding to peroxidase by a conventional method according to the method of Nisonov. Obtained Fab '(edited by The Biochemical Society of Japan, sequel to biochemistry experimental course, Volume 5, 109-11)
2 pages, Tokyo Kagaku Dojin, 1986). That is, 1250 μg of anti-chondrocalcin PCA was added to 0.2 M sodium acetate buffer (pH
4.5) Dissolved in 1.25 ml and dialyzed against the same buffer. twenty five
μg of pepsin was added and digested and decomposed at 37 ° C. for 24 hours. 1N-NaOH was added dropwise to the reaction solution to adjust the pH to 8 to stop the reaction.
TSKgel3000SW column-HPLC eluate 5 mM EDTA-0.1M
A sodium phosphate buffer (pH 6.0) was used to separate an F (ab ') 2 fragment having a molecular weight of 92,000 from this reaction solution. This was concentrated by an ultrafilter to obtain 2.2 ml of a liquid having a F (ab ') 2 concentration of 122.3 µg / ml. 0.1M2 to this
-245 μl of mercaptoethylamine was added and reduction treatment was carried out at 37 ° C. for an hour. The reaction solution was concentrated by an ultrafilter and then subjected to HPLC in the same manner as F (ab ') 2 to give a molecular weight of 46,00.
The Fab 'fragment of 0 was isolated. 83.7 μg / ml Fab ′
2.0 ml of the liquid of the fragment was obtained.

一方西洋ワサビパーオキシダーゼ(東洋紡(株)製
(以下、HRP))の4.0mgを0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液
(pH7.0)0.6mlに溶解し、N−サクシンイミジル−3−
マレイミドベンゾエートのジメチルホルムアミド液を40
μl(31.4mg/ml濃度)滴下し、30℃で1時間反応し
た。この反応液をセファクリルS−200カラムに添加、
0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)を流してマレイ
ミド−HRPを分離した。
On the other hand, 4.0 mg of horseradish peroxidase (manufactured by Toyobo Co., Ltd. (hereinafter, HRP)) was dissolved in 0.6 ml of 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 7.0), and N-succinimidyl-3-
40 parts of maleimidobenzoate in dimethylformamide
μl (31.4 mg / ml concentration) was added dropwise, and the mixture was reacted at 30 ° C. for 1 hour. Add this reaction solution to a Sephacryl S-200 column,
Maleimide-HRP was separated by flushing with 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 6.0).

かくして得られた3.10mg/mlのマレイミド−HRP470μ
lを上記のFab′フラグメント液に滴下4℃20時間反応
した。この反応液を限外濾過器で濃縮した後、TSK gel
3000 SWカラム−HPLCでPBS(pH7.2)を溶出液として
分離し、分子量86,000のHRP標識したFab′を得た。この
標識Fab′を以下の検量線作成に用いた。
3.10 mg / ml maleimide-HRP 470μ thus obtained
1 was added dropwise to the above Fab ′ fragment solution and reacted at 4 ° C. for 20 hours. After concentrating the reaction solution with an ultrafilter, TSK gel
PBS (pH 7.2) was separated as an eluent by 3000 SW column-HPLC to obtain HRP-labeled Fab 'having a molecular weight of 86,000. This labeled Fab 'was used for preparing the following calibration curve.

実施例2記載の抗コンドロカルシンPCAを、濃度20μg
/mlの0.1Mリン酸/クエン酸緩衝液(pH3.5)の溶液とし
てマイクロプレートにウエル当り100μlづつ分配し、
4℃で一昼夜放置して固定化した。これをPBSで洗浄後
1.0%BSA−PBSをウエル当り100μlづつ加えて4℃で一
昼夜放置してアフター・コートを行い、ついでPBSにて
洗浄して抗コンドロカルシンPCA固定プレートを調製し
た。
The anti-chondrocalcin PCA described in Example 2 was added at a concentration of 20 μg.
Dispense 100 μl per well into a microplate as a solution of 0.1 M phosphate / citrate buffer (pH 3.5) / ml,
It was left to stand overnight at 4 ° C. for immobilization. After washing this with PBS
After adding 100 μl of 1.0% BSA-PBS per well and leaving it at 4 ° C. for one day to perform after-coating, the plate was washed with PBS to prepare an anti-chondrocalcin PCA-fixed plate.

次に、精製ウシ・コンドロカルシンの0,10,50,100,50
0,1000,5000,10000pg/mlの希釈系列を1%BSA−終濃度
0.1%スキムミルク−PBS(pH7.2)にて作成し、該抗体
固定プレートにウエル当り100μlづつ加えて37℃で5
時間、その後4℃で一夜反応させた。PBS−0.05%Tween
−20で洗浄後、HRP標識した抗コンドロカルシンPCAのFa
b′のFab′成分の濃度が60ng/mlとなるように1.0%BSA
−終濃度0.1%スキムミルク−PBS(pH7.2)で希釈、調
製した該標識Fab′液をウエル当り100μlづつ分配して
20℃で4時間反応させた。PBS−0.05Tween−20にて洗浄
後、HRP用基質液(2.5mM H2O2,0.0225%3,3′,5,5′−
テトラメチルベンジン)100μlを加え20℃で2時間発
色させ、1N−硫酸溶液25μlを加えて停止反応を行い45
0nmでプレート・リーダーにて吸光度を測定した。
Next, 0,10,50,100,50 of purified bovine chondrocalcin
Dilute 0,1000,5000,10000 pg / ml with 1% BSA-final concentration
Prepare with 0.1% skimmed milk-PBS (pH7.2), add 100 μl per well to the antibody-immobilized plate, and add 5 μl at 37 ° C.
The reaction was allowed to proceed for 4 hours and then overnight at 4 ° C. PBS-0.05% Tween
After washing with −20, Fa of HRP-labeled anti-chondrocalcin PCA
Adjust the concentration of Fab ′ component of b ′ to 60ng / ml with 1.0% BSA.
-Final concentration of 0.1% skim milk-diluted with PBS (pH7.2), the prepared Fab 'solution was distributed in 100 μl per well
The reaction was carried out at 20 ° C for 4 hours. After washing with PBS-0.05Tween-20, HRP substrate for liquid (2.5mM H 2 O 2, 0.0225 % 3,3 ', 5,5'-
Tetramethylbenzidine) (100 μl) was added and color was developed for 2 hours at 20 ° C, and 25 μl of 1N sulfuric acid solution was added to stop the reaction.
Absorbance was measured with a plate reader at 0 nm.

その結果得た検量線を第7図に示した。 The calibration curve obtained as a result is shown in FIG.

第7図から明らかな如く、測定下限は10pg/mlであっ
て、エー・ハイネクらのラジオ・イミノアッセイによる
測定下限100ng/ml(A.Hinek et al.,J.Cell.Biol.104,1
435−1441(1987))より著しく高感度であった。
As it is clear from FIG. 7, the measurement lower limit is a 10 pg / ml, measured by er-Haineku et radio Iminoassei lower 100ng / ml (A.Hinek et al. , J.Cell.Biol. 104, 1
430-1441 (1987)) and was significantly more sensitive.

実施例10 実施例1に記載の抗ウシ・コンドロカルシンMCA“Cho
n−4H"のFab′フラグメントを、パーハムの方法に準じ
て調製し(日本生化学会編,続生化学実験講座,5巻,100
頁,東京化学同人,1986年)、実施例8と同様にしてHRP
標識Fab′を得た。すなわち、“Chon−4H"の480μgを
0.1Mクエン酸ナトリウム緩衝液(pH4.1)に溶解し2.0ml
として、同緩衝液に対して透析した。56.25μgのペプ
シンを加え37℃で90分間消化分解した。反応液に1N−Na
OHを滴下しpHを8として反応を停止した。TSK gel 3000
SWカラム−HPLCで溶出液に5mM EDTA−0.1Mリン酸ナト
リウム緩衝液(pH6.0)を用いてこの反応液から分子量9
2,000のF(ab′)2フラグメントを分離した。これを濃
縮し、F(ab′)2濃度が19.6μg/mlである液7.5mlを得
た。これに0.1M 2−メルカプトエタノールアミン835μ
lを加え、37℃で2時間還元処理した。この反応液か
ら、実施例9と同様にして9.5μg/mlのFab′フラグメン
トの液を5.5ml得た。
Example 10 The anti-bovine chondrocalcin MCA "Cho described in Example 1
The Fab 'fragment of n-4H "was prepared according to the method of Parham (edited by the Biochemical Society of Japan, ed.
Page, Tokyo Kagaku Dojin, 1986), and HRP in the same manner as in Example 8.
Labeled Fab 'was obtained. That is, 480 μg of "Chon-4H"
2.0 ml dissolved in 0.1M sodium citrate buffer (pH 4.1)
As a result, it was dialyzed against the same buffer solution. 56.25 μg of pepsin was added and digested and decomposed at 37 ° C. for 90 minutes. 1N-Na in the reaction solution
OH was added dropwise to adjust the pH to 8 to stop the reaction. TSK gel 3000
Using SW column-HPLC, 5mM EDTA-0.1M sodium phosphate buffer (pH 6.0) was used as the eluent, and the molecular weight was 9
2,000 F (ab ') 2 fragments were isolated. This was concentrated to obtain 7.5 ml of a liquid having an F (ab ') 2 concentration of 19.6 μg / ml. To this, 0.1M 2-mercaptoethanolamine 835μ
1 was added and reduction treatment was carried out at 37 ° C. for 2 hours. From this reaction solution, 5.5 ml of a 9.5 μg / ml Fab 'fragment solution was obtained in the same manner as in Example 9.

該Fab′フラグメント液に実施例9で得た3.10mg/mlの
マレイミド−HRP146μlを滴下し、4℃で20時間反応し
た。この反応液から実施例8と同様にして、HRP標識し
たFab′を得た。この標識Fab′を以下の検量線作成に用
いた。
To the Fab ′ fragment solution, 146 μl of 3.10 mg / ml maleimide-HRP obtained in Example 9 was added dropwise and reacted at 4 ° C. for 20 hours. From this reaction solution, HRP-labeled Fab 'was obtained in the same manner as in Example 8. This labeled Fab 'was used for preparing the following calibration curve.

固定プレートとしては、実施例9のものを用いた。 The fixing plate used in Example 9 was used.

次に、精製ウシ・コンドロカルシンの0,10,50,100,50
0,1000,5000,10000pg/mlの希釈系列を1%BSA0.1%スキ
ムミルク−PBS(pH7.2)にて作成し、該抗体固定プレー
トにウエル当り100μlづつ加えて37℃で2時間反応さ
せた。PBS−0.05%Tween20で洗浄後、上述した“Chon−
4H"から得たHRP標識Fab′のFab′成分の濃度が300ng/ml
であるように1%BSA−終濃度0.1%スキムミルク−PBS
(pH7.2)で希釈、調製した該標識Fab′液をウエル当り
100μlづつ分配して37℃で1時間反応させた。PBS−0.
05%Tween20にて洗浄後、HRP用基質液2.5mM H2O2,0.022
5%)3,3′,5,5′−テトラメチルベンジン)100μlを
加え20℃で30分間発色させ、1N−硫酸溶液20μlを加え
て停止反応を行い450nmでプレート・リーダーにて吸光
度を測定した。
Next, 0,10,50,100,50 of purified bovine chondrocalcin
Make a dilution series of 0,1000,5000,10000 pg / ml with 1% BSA 0.1% skim milk-PBS (pH7.2), add 100 µl per well to the antibody-immobilized plate, and allow to react at 37 ° C for 2 hours. It was After washing with PBS-0.05% Tween20, "Chon-"
The concentration of Fab 'component of HRP-labeled Fab' obtained from 4H "is 300ng / ml
1% BSA-final concentration 0.1% skim milk-PBS as
The labeled Fab 'solution diluted with (pH7.2) was prepared per well
The solution was distributed in 100 μl portions and reacted at 37 ° C. for 1 hour. PBS-0.
After washing with 05% Tween 20, substrate solution for HRP 2.5 mM H 2 O 2 , 0.022
5%) 3,3 ', 5,5'-Tetramethylbenzidine) 100 μl was added and color was developed for 30 minutes at 20 ° C, 20 μl of 1N-sulfuric acid solution was added to stop reaction, and the absorbance was measured with a plate reader at 450 nm did.

その結果得た検量線を第8図に示した。測定下限は50
pg/mlであって、エー・ハイネクらの方法による100ng/m
lの測定下限より著しく高感度であった。
The calibration curve obtained as a result is shown in FIG. Lower limit of measurement is 50
pg / ml, 100 ng / m by the method of A Heinek et al.
The sensitivity was significantly higher than the lower limit of measurement of l.

実施例11 免疫測定用緩衝液(1%BSA含有0.01Mリン酸、0.85%
NaCl緩衝液pH=7.2以後1%BSA−PBSと略記する)で、
ウシ・コンドロカルシンを希釈し、0.2ng/ml溶液を作成
し、その50mlと同上緩衝液で終濃度0,0.00625,0.0125,
0.025,0.05,0.1,0.2,0.4及び0.8%となる様に調製した
スキムミルク含有溶液50μgを加えよく混和し、実施例
8と同様に調製した抗コンドロカルシンPCA固定プレー
トに同上溶液100mlを入れ、37℃で2時間反応させた
(一次反応)。次いで、PBS−0.05%Tween−20で洗浄
後、実施例8と同様に調製したHRP標識Fab′を終濃度が
一次反応と同じ濃度となるスキムミルクを含む免疫測定
用緩衝液で希釈し、各ウエルに100ml入れ37℃で1時間
反応させた(二次反応)。PBS−0.05%Tween−20にて洗
浄後実施例8記載のHRP用基質液を100μl加え、37℃で
0.5時間発色させ、1N−硫酸溶液25μlを加えて停止反
応を行ない、450nmでプレート・リーダーにて吸光度を
測定した。その結果を第9図に示した。この図から明ら
かな如く、スキムミルク濃度0.00625%以上のスキムミ
ルク濃度で非特異的吸着が防止出来る。
Example 11 Immunoassay buffer (0.01% phosphoric acid containing 1% BSA, 0.85%)
NaCl buffer pH = 7.2 and thereafter abbreviated as 1% BSA-PBS),
Bovine chondrocalcin was diluted to make a 0.2 ng / ml solution, and 50 ml of it was added to the same buffer solution to give a final concentration of 0,0.00625,0.0125
50 μg of skim milk-containing solution prepared to be 0.025, 0.05, 0.1, 0.2, 0.4 and 0.8% was added and mixed well, and 100 ml of the same solution was placed in the anti-chondrocalcin PCA fixed plate prepared in the same manner as in Example 8, The reaction was carried out at 37 ° C for 2 hours (primary reaction). Then, after washing with PBS-0.05% Tween-20, HRP-labeled Fab 'prepared in the same manner as in Example 8 was diluted with an immunoassay buffer containing skim milk to give a final concentration of the same concentration as in the primary reaction, and each well was diluted. Then, 100 ml of the solution was added and reacted at 37 ° C. for 1 hour (secondary reaction). After washing with PBS-0.05% Tween-20, 100 µl of the substrate solution for HRP described in Example 8 was added, and the mixture was incubated at 37 ° C.
Color was developed for 0.5 hour, 25 μl of 1N-sulfuric acid solution was added to stop the reaction, and the absorbance was measured with a plate reader at 450 nm. The results are shown in FIG. As is clear from this figure, non-specific adsorption can be prevented at a skim milk concentration of 0.00625% or more.

実施例12 精製ウシ・コンドロカルシンの0,7.5,37.5,75,375,75
0,3750,7500pg/mlの希釈系列を1%BSA−終濃度0.00625
スキムミルク−PBS(pH7.2)にて作成し、その各々に、
実施例2記載の抗コンドロカルシンPCAを固定したセフ
ァローズ−4Bカラムに通した正常人血漿を1/4容量加え
て5倍希釈された人血清を含有するウシ・コンドロカル
シンの希釈系列を調製した。この希釈系列には、人血清
中1ml当りウシ・コンドロカルシンが0,30,150,300,150
0,3000,15000,30000pg/ml含有されることになる。
Example 12 Purified bovine chondrocalcin 0,7.5,37.5,75,375,75
0,3750,7500 pg / ml dilution series with 1% BSA-final concentration 0.00625
Created with skim milk-PBS (pH7.2),
A dilution series of bovine chondrocalcin containing human serum diluted 5-fold by adding 1/4 volume of normal human plasma passed through a Sepharose-4B column immobilized with anti-chondrocalcin PCA described in Example 2 was used. Prepared. This dilution series contained 0,30,150,300,150 bovine chondrocalcin per ml in human serum.
It will contain 0,3000,15000,30000 pg / ml.

この希釈系列のウシ・コンドロカルシン溶液を実施例
9と同様に作成したポリクローナル抗体固定プレートと
HRP標識Fab′を用いて測定して第10図の検量線を作成し
た。
This diluted series of bovine chondrocalcin solution was used as a polyclonal antibody-immobilized plate prepared in the same manner as in Example 9.
The calibration curve shown in FIG. 10 was prepared by measurement using HRP-labeled Fab ′.

次に血清又は関節液の検体に1%BSA−終濃度0.00625
%スキムミルク−PBS(pH7.2)を4倍容量加えて5倍希
釈の検体液として実施例9と同様にして吸光度を測定
し、第10図の検量線からウシ・コンドロカルシン換算の
ヒト・コンドロカルシン濃度を測定した。その結果を表
4にまとめた。
Next, in serum or joint fluid samples, 1% BSA-final concentration 0.00625
% Skimmed milk-PBS (pH 7.2) was added in a 4-fold volume, and the absorbance was measured as a 5-fold diluted sample solution in the same manner as in Example 9. From the calibration curve in FIG. 10, bovine chondrocalcin-converted human Chondrocalcin concentration was measured. Table 4 summarizes the results.

第10図の検量線から明らかな如く、本実施例による測
定下限は30pg/mlであって、エー・ハイネクらのラジオ
イミノアッセイの測定下限100ng/mlより著しく高感度で
あった。
As is clear from the calibration curve in FIG. 10, the lower limit of measurement according to this example was 30 pg / ml, which was remarkably higher than the lower limit of measurement of 100 ng / ml of the radioimino assay of A. Heinek et al.

実施例13 ペルオキシダーゼ標識抗コンドロカルシンF
(ab′)2標識抗体の作成 1.抗コンドロカルシンウサギポリクローナル抗体のF
(ab′)2フラグメント作成 実施例2に記載の抗コンドロカルシンウサギポリクロ
ーナル抗体(6.0mg)の酢酸緩衝液(pH4.5)2.5mlにペ
プシン0.1mgを加え37℃で一夜インキュベーションした
あと1N NaOHでpH6.0に調整しHPLC(カラム:TSK Gel G−
3000SW,溶離液PBS pH 7.2)でF(ab′)2フラグメント
を3.6mg得た。
Example 13 Peroxidase-labeled anti-chondrocalcin F
Preparation of (ab ′) 2 labeled antibody 1. Anti-chondrocalcin rabbit polyclonal antibody F
Preparation of (ab ′) 2 fragment 0.1 mg of pepsin was added to 2.5 ml of an acetate buffer (pH 4.5) of the anti-chondrocalcin rabbit polyclonal antibody (6.0 mg) described in Example 2 and the mixture was incubated at 37 ° C. overnight, followed by 1N NaOH. PH to 6.0 with HPLC (column: TSK Gel G-
With 3000 SW, eluent PBS pH 7.2), 3.6 mg of F (ab ') 2 fragment was obtained.

2.F(ab′)2フラグメントのマレイミド化 F(ab′)2フラグメント(3.6mg)のPBS溶液にサク
シンイミジル−メタ−マレイミドベンゾエート(MBS)
のDMF溶液(10mg/ml)0.09mlを25℃で滴下した。30分間
攪拌したあとセファデックスG−25のカラム(1cm×45c
m)で溶離液として0.1Mリン酸緩衝液を用いて、ゲル過
しマレイミド化されたF(ab′)2フラグメント4.0mgを
得た。
2.F (ab ') 2 fragments of maleimidated F (ab') succinimidyl in PBS for 2 fragment (3.6 mg) - meta - maleimide benzoate (MBS)
0.09 ml of DMF solution (10 mg / ml) was added dropwise at 25 ° C. After stirring for 30 minutes, the column of Sephadex G-25 (1 cm x 45 c
Using 0.1 M phosphate buffer as the eluent in m), 4.0 mg of gel-passed maleimidated F (ab ') 2 fragment was obtained.

3.ペルオキシダーゼのチオール基導入 ペルオキシダーゼ(東洋紡:54mg)の0.1Mリン酸緩衝
液(pH6.5)溶液5.4mlにS−アセチルメルカプト無水コ
ハク酸のDMF溶液(6.0mg/ml)0.2mlを25℃で、攪拌下、
徐々に滴下し、さらに1.5時間反応させた。この溶液に
0.1Mトリス塩酸緩衝液(pH7.0)2.1mlと0.1M EDTA溶液
0.4ml,1Mヒドロキシルアミン溶液4.3mlを加え30℃で5
分間攪拌した。溶液を透析チューブに入れ0.1Mリン酸緩
衝液pH 6.0−5mM EDTAを外液として4℃で二夜透析し、SH基
の導入されたペルオキシダーゼ溶液(2.54mg/ml)を得
た。
3. Introduction of thiol group of peroxidase To 5.4 ml of 0.1M phosphate buffer (pH6.5) solution of peroxidase (Toyobo: 54 mg), 0.2 ml of DMF solution of S-acetylmercaptosuccinic anhydride (6.0 mg / ml) (25 mg). With stirring,
The mixture was gradually added dropwise and the reaction was continued for another 1.5 hours. In this solution
2.1 ml of 0.1 M Tris-HCl buffer (pH 7.0) and 0.1 M EDTA solution
Add 0.4 ml and 4.3 ml of 1M hydroxylamine solution and add 5 at 30 ℃.
Stir for minutes. The solution was placed in a dialysis tube and dialyzed at 0.1C phosphate buffer pH 6.0-5 mM EDTA as an external solution at 4 ° C for two nights to obtain a SH group-introduced peroxidase solution (2.54 mg / ml).

4.マレイミド化F(ab′)2フラグメントとチオール基
の導入されたペルオキシダーゼの結合 マレイミド化したF(ab′)2フラグメント4.0mgとチ
オール基の導入したペルオキシダーゼ溶液 (2.54mg/ml)2.8mlとを混合し25℃で一夜静置した。反
応混合液をHPLC(カラム TSK Gel G−3000SW,溶離液PB
S pH 7.2)で分離し、ペルオキシダーゼ結合F(ab′)
2フラグメントのフラクションを集め、F(ab′)2フラ
グメントとして3.1mgを得た。
4. maleimidated F (ab ') coupling the maleimide of introduced peroxidase 2 fragments and thiol groups were F (ab') 2 introduced peroxidase solution fragments 4.0mg and thiol group (2.54mg / ml) 2.8ml and Were mixed and left overnight at 25 ° C. The reaction mixture was analyzed by HPLC (column TSK Gel G-3000SW, eluent PB
Separation with S pH 7.2) and peroxidase-bound F (ab ')
Fractions of 2 fragments were collected to give 3.1 mg as F (ab ') 2 fragment.

得られたフラクションのF(ab′)2フラグメントと
ペルオキシダーゼのモル比は1:2.7であった。
The molar ratio of F (ab ') 2 fragment to peroxidase in the obtained fraction was 1: 2.7.

実施例14 実施例2に記載の抗コンドロカルシンポリクローナル
抗体を0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(以下PBSと略す)に
20μg/mlの濃度に調整し、鏡面化されたポリスチレンビ
ーズ(イムノケミカル:イムノビーズ,Surfcom 570A
(東京精密社製)で測定した表面の中心線平均粗さ(R
a):1.3μm)を浸し4℃で一夜静置した。ビースをPBS
にて3回洗浄後、1%BSA−PBS(pH7.2)で室温で2時
間静置した。PBSで再度3回洗浄し、PBS中に使用するま
で4℃で保存した。
Example 14 The anti-chondrocalcin polyclonal antibody described in Example 2 was added to 0.01 M phosphate buffered saline (hereinafter abbreviated as PBS).
Adjusted to a concentration of 20 μg / ml and mirror-polished polystyrene beads (Immunochemical: Immunobeads, Surfcom 570A
Centerline average roughness of surface (R manufactured by Tokyo Seimitsu Co., Ltd.)
a): 1.3 μm) was soaked and left at 4 ° C. overnight. Bees in PBS
After washing 3 times with, the mixture was allowed to stand at room temperature for 2 hours with 1% BSA-PBS (pH 7.2). It was washed 3 times with PBS again and stored in PBS until use at 4 ° C.

コンドロカルシンの0.75%BSA−0.01%スキムミルク
−PBS(pH7.2)溶液0,0.025,0.3125,0.625,1.25,5ngの
溶液を作成し、この0.2mlをポリプロピレン製プラスチ
ック小試管に入れた。次に実施例13で作成したペルオキ
シダーゼ標識抗コンドロカルシンF(ab′)2フラグメ
ントを0.5%BSA−0.2%スキムミルク−PBS(pH7.2)に
F(ab′)2フラグメント濃度として3μg/mlとして、
各チューブに0.2mlづつ加えたあと、すぐに抗コンドロ
カルシン固定ビーズを各チューブに1ケづつ加え、37℃
で90分間インキュベーションした。
A 0.75% BSA-0.01% skim milk-PBS (pH7.2) solution of chondrocalcin 0, 0.025, 0.3125, 0.625, 1.25, 5 ng was prepared, and 0.2 ml of this solution was placed in a polypropylene plastic test tube. Next, the peroxidase-labeled anti-chondrocalcin F (ab ') 2 fragment prepared in Example 13 was added to 0.5% BSA-0.2% skim milk-PBS (pH 7.2) to give an F (ab') 2 fragment concentration of 3 µg / ml. ,
After adding 0.2 ml each to each tube, immediately add one anti-chondrocalcin-immobilized bead to each tube at 37 ℃.
And incubated for 90 minutes.

PBSにTween20を0.05%溶解した液(PBS−Tと略)で
3回洗浄したあと、発色剤として、2.5mMH2O2−0.025%
3,3′,5,5′テトラメチルベンチジンの溶液を0.4mlづつ
加え、37℃で30分間インキュベーションし、1規定硫酸
1mlを加え発色反応を停止し、450nmの吸光度を測定し
た。
After washing 3 times with a solution containing 0.05% Tween 20 in PBS (abbreviated as PBS-T), 2.5 mM H 2 O 2 -0.025% was used as a color former.
Add 0.4 ml of 3,3 ', 5,5' tetramethylbenzidine solution and incubate at 37 ℃ for 30 minutes.
The color reaction was stopped by adding 1 ml, and the absorbance at 450 nm was measured.

その結果得た検量線を第11図に示した。測定下限は25
pg/mlであって、エー・ハイネクらのラジオ・イムノア
ッセイにより測定下限100ng/ml(A.Hinek et al.,J.Cel
l.Biol.104,1435−1441(1987))より著しく高感度で
あった。
The calibration curve obtained as a result is shown in FIG. The lower limit of measurement is 25
pg / ml, lower limit of 100 ng / ml (A.Hinek et al., J. Cel.
l.Biol. 104 , 1435-1441 (1987)).

次に血清又は関節液の検体に0.75%BSA−0.01%スキ
ムミルク−10mMPBS(pH7.2)を3倍量加えて4倍希釈の
検体液として、前記検量線作成時と同様にして吸光度を
測定し、第11図の検量線からウシ・コンドロカルシン換
算ヒト・コンドロカルシン濃度を測定した。
Next, 0.75% BSA-0.01% skimmed milk-10 mM PBS (pH7.2) was added to the serum or joint fluid sample in a 3-fold amount to prepare a 4-fold diluted sample solution, and the absorbance was measured in the same manner as in the preparation of the calibration curve. The concentration of bovine chondrocalcin-converted human chondrocalcin was measured from the calibration curve in FIG.

その結果を表5に示す。 The results are shown in Table 5.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 細田 健治 埼玉県川越市旭町3丁目3番12号 (72)発明者 新名 正由 埼玉県所沢市中新井4丁目4番4号 (72)発明者 松山 重雄 埼玉県和光市広沢1丁目17番502号 (56)参考文献 特開 昭62−116262(JP,A) 特開 昭62−24149(JP,A) 特開 昭60−130825(JP,A) The Journal of Ce ll Biology,98(1),P. 54−65,(1984) The Journal of Ce ll Biology,104(5),P. 1435−1441,(1987) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Kenji Hosoda, 3-3-12 Asahi-cho, Kawagoe-shi, Saitama Prefecture (72) Masayoshi Shinmei 4--4-4, Nakaarai, Tokorozawa-shi, Saitama Prefecture (72) Inventor Shigeo Matsuyama 1-17502 Hirosawa, Wako-shi, Saitama Prefecture (56) Reference JP 62-116262 (JP, A) JP 62-24149 (JP, A) JP 60-130825 (JP) , A) The Journal of Cell Biology, 98 (1), P. 54-65, (1984) The Journal of Cell Biology, 104 (5), P. 1435-1441, (1987).

Claims (16)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】酵素で標識した哺乳動物のコンドロカルシ
ン又は抗コンドロカルシン抗体を用いる免疫学的測定方
法であり、検体として哺乳動物の体液を用い、かつ溶液
中における免疫反応を利用して該哺乳動物のコンドロカ
ルシンの量を測定することを特徴とするコンドロカルシ
ンの測定方法において、免疫反応溶液に分子量1.6万〜
5.0万及び等電点1.0〜5.0である蛋白質又はそれを含む
混合物を存在せしめ、免疫反応溶液における該蛋白質又
は混合物の最終濃度が0.02〜0.9重量%となるように調
整することを特徴とするコンドロカルシンの測定方法。
1. An immunological assay method using an enzyme-labeled mammalian chondrocalcin or anti-chondrocalcin antibody, which uses a mammalian body fluid as a sample and utilizes an immune reaction in the solution. In the method for measuring chondrocalcin, which comprises measuring the amount of chondrocalcin in the mammal, the immune reaction solution has a molecular weight of 16,000 to
A chondrolide characterized by allowing a protein having a 50,000 and an isoelectric point of 1.0 to 5.0 or a mixture containing the protein to be present and adjusting the final concentration of the protein or the mixture in the immune reaction solution to be 0.02 to 0.9% by weight. How to measure calcin.
【請求項2】不溶性担体に固定された抗コンドロカルシ
ン抗体と標識した抗コンドロカルシン抗体とを用いるサ
ンドイッチ法で、検体として哺乳動物の体液を用いるこ
とを特徴とする請求の範囲第1項記載のコンドロカルシ
ンの測定方法。
2. A sandwich method using an anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier and a labeled anti-chondrocalcin antibody, wherein a body fluid of a mammal is used as a sample. The method for measuring chondrocalcin as described.
【請求項3】免疫反応が、不溶性担体に固定された抗コ
ンドロカルシン抗体,標識した抗コンドロカルシン抗体
及び検体としての哺乳動物の体液を同一反応系に存在せ
しめて反応させるものであることを特徴とする請求の範
囲第2項記載のコンドロカルシンの測定方法。
3. The immune reaction is carried out by allowing an anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier, a labeled anti-chondrocalcin antibody and a body fluid of a mammal as a specimen to exist in the same reaction system and reacting. The method for measuring chondrocalcin according to claim 2.
【請求項4】不溶性担体に固定された抗コンドロカルシ
ン抗体と標識した抗コンドロカルシン抗体の少なくとも
一方は、哺乳動物のコンドロカルシンを免疫原として得
られたヒト・コンドロカルシンを認識するモノクローナ
ル抗体であることを特徴とする請求の範囲第2項記載の
コンドロカルシンの測定方法。
4. At least one of the anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier and the labeled anti-chondrocalcin antibody recognizes human chondrocalcin obtained by using mammalian chondrocalcin as an immunogen. The method for measuring chondrocalcin according to claim 2, which is a monoclonal antibody.
【請求項5】不溶性担体に固定された抗コンドロカルシ
ン抗体と標識した抗コンドロカルシン抗体の少なくとも
一方は、哺乳動物のコンドロカルシンを該哺乳動物とは
異種の哺乳動物に免疫して得られたヒト・コンドロカル
シンを認識するポリクローナル抗体であることを特徴と
する請求の範囲第2項記載のコンドロカルシンの測定方
法。
5. At least one of the anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier and the labeled anti-chondrocalcin antibody is obtained by immunizing a mammal different from the mammal with chondrocalcin. The method for measuring chondrocalcin according to claim 2, which is a polyclonal antibody that recognizes human chondrocalcin.
【請求項6】不溶性担体が鏡面化されたビーズであるこ
とを特徴とする請求の範囲第2項記載のコンドロカルシ
ンの測定方法。
6. The method for measuring chondrocalcin according to claim 2, wherein the insoluble carrier is a mirror-finished bead.
【請求項7】標識した抗コンドロカルシン抗体が抗コン
ドロカルシン抗体のFab′フラグメント又はF(ab′)2
フラグメントであることを特徴とする請求の範囲第1項
記載のコンドロカルシンの測定方法。
7. The labeled anti-chondrocalcin antibody is a Fab ′ fragment or F (ab ′) 2 of the anti-chondrocalcin antibody.
The method for measuring chondrocalcin according to claim 1, which is a fragment.
【請求項8】標識した抗コンドロカルシン抗体が、抗体
1分子当り平均1.5分子以上の酵素で標識されたもので
あることを特徴とする請求の範囲第1項記載のコンドロ
カルシンの測定方法。
8. The method for measuring chondrocalcin according to claim 1, characterized in that the labeled anti-chondrocalcin antibody is labeled with an average of 1.5 molecules or more of enzyme per molecule of antibody. .
【請求項9】該蛋白を含む混合物がスキムミルクである
ことを特徴とする請求の範囲第1〜8項記載のいずれか
のコンドロカルシンの測定方法。
9. The method for measuring chondrocalcin according to any one of claims 1 to 8, wherein the mixture containing the protein is skim milk.
【請求項10】不溶性担体に固定された抗コンドロカル
シン抗体試薬と酵素で標識した抗コンドロカルシン抗体
試薬及び免疫反応溶液におけるその最終濃度が0.02〜0.
9重量%となるように、分子量1.6万〜5.0万及び等電点
1.0〜5.0である蛋白質又はそれを含む混合物とからな
る、検体としての哺乳動物の体液中に存在するコンドロ
カルシンの量を免疫学的に測定するためのコンドロカル
シンの測定試薬。
10. An anti-chondrocalcin antibody reagent immobilized on an insoluble carrier, an anti-chondrocalcin antibody reagent labeled with an enzyme, and its final concentration in an immunoreaction solution of 0.02 to 0.
Molecular weight of 16,000 to 50,000 and isoelectric point of 9% by weight
A reagent for measuring chondrocalcin for immunologically measuring the amount of chondrocalcin present in a body fluid of a mammal as a sample, which comprises a protein of 1.0 to 5.0 or a mixture containing the protein.
【請求項11】不溶性担体に固定された抗コンドロカル
シン抗体と標識した抗コンドロカルシン抗体の少なくと
も一方は、哺乳動物のコンドロカルシンを免疫原として
得られたヒト・コンドロカルシンを認識するモノクロー
ナル抗体であることを特徴とする請求の範囲第10項記載
のコンドロカルシンの測定試薬。
11. At least one of the anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier and the labeled anti-chondrocalcin antibody recognizes human chondrocalcin obtained by using mammalian chondrocalcin as an immunogen. 11. The chondrocalcin assay reagent according to claim 10, which is a monoclonal antibody.
【請求項12】不溶性担体に固定された抗コンドロカル
シン抗体と標識した抗コンドロカルシン抗体の少なくと
も一方は、哺乳動物のコンドロカルシンを該哺乳動物と
は異種の哺乳動物に免疫して得られたヒト・コンドロカ
ルシンを認識するポリクローナル抗体であることを特徴
とする請求の範囲第10項記載のコンドロカルシンの測定
試薬。
12. At least one of an anti-chondrocalcin antibody immobilized on an insoluble carrier and an anti-chondrocalcin antibody labeled with the antibody is obtained by immunizing a mammal different from the mammal with chondrocalcin of a mammal. 11. The assay reagent for chondrocalcin according to claim 10, which is a polyclonal antibody that recognizes the obtained human chondrocalcin.
【請求項13】不溶性担体が鏡面化されたビーズである
ことを特徴とする請求の範囲第10項記載のコンドロカル
シンの測定試薬。
13. The chondrocalcin assay reagent according to claim 10, wherein the insoluble carrier is a bead having a mirror surface.
【請求項14】標識した抗コンドロカルシン抗体が抗コ
ンドロカルシン抗体のFab′フラグメント又はF(a
b′)2フラグメントであることを特徴とする請求の範囲
第10項記載のコンドロカルシンの測定試薬。
14. The labeled anti-chondrocalcin antibody is a Fab ′ fragment or F (a of the anti-chondrocalcin antibody.
11. The chondrocalcin assay reagent according to claim 10, which is b ′) 2 fragment.
【請求項15】標識した抗コンドロカルシン抗体が、抗
体1分子当り平均1.5分子以上の酵素で標識されたもの
であることを特徴とする請求の範囲第10項記載の測定試
薬。
15. The measuring reagent according to claim 10, wherein the labeled anti-chondrocalcin antibody is labeled with an average of 1.5 molecules or more of enzyme per molecule of antibody.
【請求項16】該蛋白を含む混合物がスキムミルクであ
る請求の範囲第10項記載のコンドロカルシンの測定試
薬。
16. The chondrocalcin assay reagent according to claim 10, wherein the mixture containing the protein is skim milk.
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