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JP7321489B2 - がん免疫アジュバント - Google Patents

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Description

[関連出願]
本出願は、日本特許出願2016-147657(2016年7月27日出願)及び2017-079445(2017年4月13日出願)に基づく優先権を主張しており、この内容は本明細書に参照として取り込まれる。
[技術分野]
本発明は、免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物の併用に関する。より詳細には、抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体と、二本鎖RNAと一本鎖ODNから構成される核酸アジュバントを併用することを特徴とする、がん又は感染症の新規な治療に関する。
生体には、細胞ががん化したときや、体内に細菌やウイルスなどの病原体が侵入したときに、これを排除する自然の免疫防御システムが備わっており、その免疫防御システムを制御する分子を免疫チェックポイントと呼ぶ。がん細胞は、しばしば、「免疫チェックポイント」を発現増強することで、免疫防御システムの監視から巧妙に逃れていると考えられる。
PD-1やPD-L1は、代表的な免疫チェックポイント分子であり、この分子を標的とする抗体は、様々ながん種において、顕著な抗がん作用を示すことが確認され、現在医薬として開発されている。しかし、PD-1/PD-L1抗体療法については、50%以上の転移性メラノーマで寛解が見られたとの報告がある一方、固形がんでの寛解は20~30%に留まり、その奏効率は十分なものとは言えない。また、PD-1抗体療法に応答する患者と応答しない患者が存在し、その鑑別や、応答しない患者に対する治療法の開発が求められている。
抗がん免疫ワクチン療法は、手術、抗がん剤、放射線療法で治療できないがんに対する第4の治療法として、近年特に注目されている。抗がん創薬では副作用が問題になることが多いが、免疫ワクチン療法では、がん細胞特異的な抗原を用いてがん細胞を選択的に攻撃するため、侵襲や副作用が少ないという利点がある。免疫ワクチン療法では、しばしば抗原性を補強することで、ワクチンの効果を補助・増強させるアジュバントが使用される。
Toll-like receptor(TLR)の活性化は、樹状細胞に自然免疫応答を引き起こし、サイトカイン産生や細胞性免疫の活性化を誘導する。poly(I:C)などの2重鎖RNAはTLR3リガンドとなり、強い抗がん効果を示すため、ワクチンアジュバントとして有望視されてきたが、炎症、サイトカイン血症などの副作用のために臨床適用は断念されている。
発明者らは、poly(I:C)のTLR3を介したIFN-β発現誘導を阻害するGpCジヌクレオチド含有オリゴデオキシヌクレオチド(GpC ODN)を見出し、このGpC ODNがTLR3を介して細胞内に取り込まれることを報告している(非特許文献1)。また、麻疹ウイルス由来のdiRNA(defective interference RNA)がアジュバント機能を有することを報告している(特許文献1)。
さらに、発明者らは、上記GpC ODNとdiRNAに基づいて設計した核酸が、エンドソーム上のTLR3に到達して、強いアジュバント活性を有することを見出している(特許文献2)。このアジュバントは、過剰な炎症性サイトカイン産生を誘導することなく、マウス移植がんモデルにおいてNK/CTL依存的な抗がん活性を誘導することから(特許文献3及び非特許文献2)、副作用の少ない非炎症性の核酸免疫アジュバントとして抗がん免疫ワクチンへの適用が期待される。
WO2008/065752 WO2012/014945 WO2016/088784
Itoh et al., The Journal of Immunology, 2008, vol.181, No.8, pp5522-5529 Matsumoto et al., Nature Communications, 2015, 6:6280
本発明の課題は、安全性を維持しつつ、PD-1/PD-L1抗体療法の奏効率を改善し、新たながん免疫療法を提供することにある。
上記課題を解決するために、抗PD-L1抗体単独では効果がない腫瘍に対し、二本鎖RNAと一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸アジュバントを併用することで、CTL依存性の顕著な腫瘍退縮を誘導できることを確認した。
本発明は、上記の知見に基づいて完成されたもので、以下の(1)~(17)に関する。
(1)免疫チェックポイント阻害剤、及びアジュバント組成物を組み合わせて含む、がん又は感染症を治療するための医薬であって、前記免疫チェックポイント阻害剤が、抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体を含み、前記アジュバント組成物が、二本鎖RNAと、CpG ODNにおいてCpGがGpC、TpC、又はCpCに置換された配列又はその5塩基長以上の部分配列からなる一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸アジュバントを含む、前記医薬(二本鎖RNAはTLR3リガンドとして機能し、一本鎖ODNはエンドソームへの送達分子として機能する);
(2)免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物が併用されることを特徴とする、(1)に記載の医薬;
(3)免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物が同時又は順次に投与されることを特徴とする、(2)に記載の医薬;
(4)二本鎖RNAと、CpG ODNにおいてCpGがGpC、TpC、又はCpCに置換された配列又はその5塩基長以上の部分配列からなる一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸アジュバントを含むアジュバント組成物と併用することを特徴とする、抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体を含む免疫チェックポイント阻害剤を有効成分とするがん又は感染症を治療するための医薬;
(5)アジュバント組成物が、細菌抗原、ウイルス抗原、及びがん抗原から選ばれる抗原分子を含む、(1)~(4)のいずれかに記載の医薬;
(6)核酸アジュバントを構成する核酸の末端がリン酸化されていない、(1)~(5)のいずれかに記載の医薬;
(7)二本鎖RNAが、配列番号1に示される塩基配列の連続した30塩基以上、好ましくは40塩基以上の塩基配列を有し、かつ、全長が100~160塩基長、好ましくは110~150塩基長、より好ましくは120~140塩基長の塩基配列を有する核酸か、あるいは前記配列と80%の配列同一性を有し、かつTLR3活性化能を有する核酸である、(1)~(6)のいずれかに記載の医薬;
上記核酸には、二本鎖RNAが、配列番号1に示される塩基配列の連続した30~80塩基長の塩基配列を2~4回繰り返し含む核酸、好ましくは配列番号1に示される塩基配列の連続した30~50塩基長の塩基配列を3回繰り返し含む核酸が含まれる。
(8)二本鎖RNAが配列番号2~11のいずれかに示される塩基配列を有する核酸か、その連続した100塩基以上、好ましくは110塩基以上、より好ましくは120塩基以上の塩基配列を有する核酸、あるいは前記配列と80%の配列同一性を有し、かつTLR3活性化能を有する核酸である、(1)~(7)のいずれかに記載の医薬;
(9)二本鎖RNAが配列番号11に示される塩基配列を有する核酸か、その連続した100塩基以上、好ましくは110塩基以上、より好ましくは120塩基以上の塩基配列を有する核酸、あるいは前記配列と80%の配列同一性を有し、かつTLR3活性化能を有する核酸である、(1)~(8)のいずれかに記載の医薬;
(10)一本鎖ODNが配列番号19~39のいずれかに示される塩基配列又はその5塩基以上の長さを有する部分配列からなる核酸である、(1)~(9)のいずれかに記載の医薬;
(11)一本鎖ODNが配列番号19~24のいずれかに示される塩基配列又はその5塩基以上の長さを有する部分配列からなる核酸である、(1)~(9)のいずれかに記載の医薬;
(12)一本鎖ODNが15~28塩基長である、(1)~(11)のいずれかに記載の医薬;
(13)一本鎖ODNを構成するヌクレオチドがフォスフォロチオエート修飾されている(1)~(12)のいずれかに記載の医薬;
(14)核酸アジュバントが、配列番号40で示されるセンス鎖と配列番号41で示されるアンチセンス鎖を含む核酸、配列番号42で示されるセンス鎖と配列番号43で示されるアンチセンス鎖を含む核酸、又は前記配列とそれぞれ80%の配列同一性を有するセンス鎖とアンチセンス鎖を含み、かつアジュバント活性を有する核酸である、(1)~(13)のいずれかに記載の医薬;
(15)核酸アジュバントが、
1)配列番号40で示されるセンス鎖と配列番号41で示されるアンチセンス鎖を含む、
2)配列番号42で示されるセンス鎖と配列番号43で示されるアンチセンス鎖を含む、
3)配列番号44で示されるセンス鎖と配列番号45で示されるアンチセンス鎖を含む、又は
4)配列番号46で示されるセンス鎖と配列番号47で示されるアンチセンス鎖を含む
(1)~(14)のいずれかに記載の医薬。
(16)二本鎖RNAと、CpG ODNにおいてCpGがGpC、TpC、又はCpCに置換された配列又はその5塩基長以上の部分配列からなる一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸アジュバントを含むアジュバント組成物であって、
二本鎖RNAが、配列番号1に示される塩基配列の連続した30~80塩基長の塩基配列を2~4回繰り返して含む核酸、好ましくは配列番号1に示される塩基配列の連続した30~50塩基長の塩基配列を3回繰り返し含む核酸である、アジュバント組成物。
(17)(16)に記載のアジュバント組成物を含む、がん又は感染症を治療するための医薬。
本発明によれば、PD-1/PD-L1抗体療法の効果や奏効率を改善することができる。本発明のアジュバントは、樹状細胞に効率よく取り込まれ、全身性の炎症性サイトカイン産生を誘導することなく、TLR3を特異的に活性化するとともに、NK・CTLを誘導する。したがって、他の免疫複合療法とは異なり、サイトカイン血症などの副作用を生じることなく、PD-1/PD-L1抗体の効果を温和に向上させ、腫瘍退縮をもたらす。
図1aは、PBS(対照)、OVA、又OVA+ARNAXを皮下投与したマウス(野生型(WT)及び各種ノックアウト(KO)マウス)の脾臓及び膝下リンパ節における腫瘍特異的CTLの発現誘導(%)を示す。 図1bは、PBS(対照)、OVA、又OVA+ARNAXを皮下投与したマウス(野生型(WT)及び各種ノックアウト(KO)マウス)の脾臓細胞におけるIFN-γ産生(pg/ml)を示す。 図1cは、PBS(対照)、OVA、又OVA+ARNAXを皮下投与したマウス(野生型(WT)及び各種ノックアウト(KO)マウス)の脾臓由来の腫瘍特異的CTLをフローサイトメトリーで解析した結果を示す。 図2は、生食(対照)、poly(I:C)、又ARNAXを皮下投与(a)及び静脈投与(b)したときの、サイトカインの誘導を示す。 図3aは、EG7細胞株のPD-L1発現を示す。 図3bは、実施例3(ARNAXと抗原の投与による抗腫瘍効果)の実験プロトコルの概要を示す。 図3cは、Day0でEG7細胞を皮下移植したマウスの腫瘍体積の経時変化を示す。Day7でOVA+ARNAXを皮下投与したマウスでは顕著な腫瘍退縮が見られるが(-●-)、PBSを投与したマウス(対照)では腫瘍退縮は見られない(-■-)。 図3dは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXを皮下投与したマウスの腫瘍内におけるCD8陽性T細胞(左)、OVA tetramer陽性/CD8陽性T細胞(中)、CD11c陽性/CD8陽性T細胞(右)の割合を示す。 図3eは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXを皮下投与したマウスにおけるGzmb、Ifng、Prf1、Cxcl9、Cxcl10、Cxcl11の発現誘導の定量PCRによる解析結果を示す。 図3fは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXを皮下投与したマウスの腫瘍組織におけるDAPIとCD8αに対する免疫染色を示す。 図4aは、PD-L1高発現EG7細胞株(実線)と通常株(破線)のPD-L1発現を比較して示す。 図4bは、実施例4(ARNAXと抗αPD-L1抗体の併用)の実験プロトコルの概要を示す。 図4cは、Day0でEG7細胞を皮下移植し、day 7にPBS(対照)またはOVA+ARNAXの皮下投与後、抗マウスPD-L1 抗体またはアイソタイプ抗体を静脈投与したマウスの腫瘍体積の経時変化を示す。PD-L1抗体単独投与(-■-)では腫瘍退縮は見られないが、PD-L1抗体にOVA+ARNAXを併用投与(-x-)することで顕著な腫瘍退縮が見られ、その効果はOVA+ARNAXのみの投与(-▲-)よりも高い。 図4dは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXの皮下投与後、抗マウスPD-L1抗体又はアイソタイプ抗体を静脈投与したマウスの脾臓及び腫瘍におけるCD8陽性T細胞(左)、OVA tetramer陽性/CD8陽性T細胞(中左)、CD11c陽性/CD8陽性T細胞(中右)、PD-1陽性/CD8陽性T細胞(右)の割合を示す(上段は脾臓、下段は腫瘍内)。 図4eは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXを皮下投与後、抗マウスPD-L1抗体又はアイソタイプ抗体を静脈投与したマウスの腫瘍におけるGzmb、Ifng、Prf1、Cxcl9、Cxcl10、Cxcl11の発現誘導のRT-PCRによる解析結果を示す。 図5は、本発明に係るアジュバント核酸(ARNAX)と抗PD-L1抗体の作用機序を示す。 図6aは、MO5細胞株(実線)のPD-L1発現を示す。 図6bは、実施例5(ARNAXと抗αPD-L1抗体の併用)の実験プロトコルの概要を示す。 図6cは、Day0でMO5細胞を皮下移植し、day 10にPBS(対照)またはOVA+ARNAXの皮下投与後、抗マウスPD-L1 抗体またはアイソタイプ抗体を静脈投与したマウスの腫瘍体積の経時変化を示す。PD-L1抗体単独投与(-■-)及びOVA+ARNAX投与(-▲-)に比べて、PD-L1抗体とOVA+ARNAX併用投与(-X-)では顕著に高い腫瘍退縮が見られる。 図6dは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXの皮下投与後、抗マウスPD-L1抗体又はアイソタイプ抗体を静脈投与したマウスの脾臓及び腫瘍におけるCD8陽性T細胞(左)、OVA tetramer陽性/CD8陽性T細胞(中左)、CD11c陽性/CD8陽性T細胞(中右)、PD-1陽性/CD8陽性T細胞(右)の割合を示す(上段は脾臓、下段は腫瘍内)。 図6eは、PBS(対照)又はOVA+ARNAXを皮下投与後、抗マウスPD-L1抗体又はアイソタイプ抗体を静脈投与したマウスの腫瘍におけるGzmb、Ifng、Prf1、Cxcl9、Cxcl10の発現誘導のRT-PCRによる解析結果を示す。 図6fは、腫瘍浸潤免疫細胞の割合を示す。CD45陽性細胞でゲーティングした腫瘍浸潤リンパ球の割合(上)、CD45陽性細胞でゲーティングした樹状細胞(DC)サブセットの割合、CD45陽性細胞でゲーティングした腫瘍浸潤単球、CD11b陽性骨髄細胞サブセット及びマクロファージの割合。 図7は、ARNAX120#1、ARNAX#2、ARNAX130、ARNAX140の構造を示す。 図8は、ARNAX120#2のTLR3を介したIFN-βプロモーター活性化能を示す。 図9は、ARNAX120#1、ARNAX130のTLR3を介したIFN-βプロモーター活性化能を示す。 図10は、ARNAX140のin vivoクロスプライミング活性(用量を変量)を示す。 図11は、ARNAX120#2のin vivoクロスプライミング活性(用量を変量)を示す。 図12は、ARNAX120#1の抗腫瘍効果(EG7)を示す。
本発明は、免疫チェックポイント阻害剤(抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体)と、二本鎖RNAと一本鎖ODNから構成される核酸アジュバントを組み合わせて含む、がん又は感染症を治療するための医薬に関する。
1.免疫チェックポイント阻害剤
がん細胞、細菌やウイルスなどの病原体に対する自然の免疫防御システムを制御する分子を免疫チェックポイントと言い、たとえば、エフェクターT細胞表面に発現するPD-1や、腫瘍細胞表面に発現するPD-L1やPD-L2、活性化T細胞あるいは抑制性T細胞Tregの表面に発現するCTLA-4、樹状細胞表面に発現するCD80やCD86が挙げられる。これらのうち、CTLA-4/CD80/CD86は、感作されたT細胞がナイーブT細胞からTH1、TH2、TFH細胞等に分化するプライミングフェースで機能し、PD-1/PD-L1/PD-L2は、エフェクター細胞が腫瘍細胞等を攻撃するエフェクターフェースで機能する。
「免疫チェックポイント阻害剤」とは、「免疫チェックポイント」を阻害し、自然の免疫防御システムを制御する物質・分子を意味する。例えば、上記免疫チェックポイントに特異的な抗体(抗PD-1抗体、抗PD-L1抗体、抗CTLA-4抗体等)が「免疫チェックポイント阻害剤」の代表例として挙げられる。
本発明で使用される「免疫チェックポイント阻害剤」は、エフェクターフェースで機能する免疫チェックポイント阻害剤、すなわち、PD-1/PD-L1/PD-L2を阻害する物質・分子である。好ましくは、「免疫チェックポイント阻害剤」は抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体である。
「抗PD-1抗体」
本発明で使用される「抗PD-1抗体」は、PD-1に結合し、その免疫チェックポイントとしての機能を阻害できるものであれば特に限定されない。抗PD-1抗体としては、既に医薬として承認販売されているものや、開発中のものがあり、これらを好適に利用することができる。そのような「抗PD-1抗体」としては、ニボルマブ(オプジーボ(GSK/小野薬品))、ヒト化IgG4型抗体であるペムブロリズマブ(MK-3475(Merck))、ジピリズマブ(CT-011(CureTech))が挙げられるが、これらに限定されない。
「抗PD-L1抗体」
また、本発明で使用される「抗PD-L1抗体」は、PD-L1に結合し、その免疫チェックポイントとしての機能を阻害できるものであれば特に限定されない。抗PD-L1抗体としては、既に医薬として承認(販売)されているものや、開発中のものがあり、これらを好適に利用することができる。そのような「抗PD-L1抗体」としては、アテゾリズマブ(MPDL3280A/RG-7446(Roche/中外)、Durvalumab(MEDI4736(アストラゼネカ))、アベルマブ(MSB0010718C(Merck))、MED10680/AMP-514が挙げられるが、これらに限定されない。
抗体は、常法に基づいて作製してもよい。その場合、抗体は、ヒトに対する異種抗原性を低下させるために、キメラ(Chimeric)抗体、ヒト化(Humanized)抗体であるか、あるいは完全ヒト抗体であることが好ましい。抗体は免疫チェックポイント阻害剤としての機能を有する限り、抗体断片でもよい。抗体断片としては、F(ab')、Fab'、Fab、Fv、scFvを挙げることができる。
本発明の「免疫チェックポイント阻害剤」は、薬理学上許容される担体や添加物を含むものであってもよい。そのような担体や添加物としては、例えば界面活性剤、賦形剤、着色料、着香料、保存料、抗酸化剤、安定剤、緩衝剤、懸濁剤、等張化剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、流動性促進剤、矯味剤等が挙げられるが、これらに制限されず、その他常用の担体が適宜使用できる。
具体的には、水性担体としては、水、エタノール、ポリオール(グリセロール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール等)、オリーブオイルなどの植物油、及びエチルオレイン酸などの有機エステルが含まれる。
非水性担体としては、軽質無水ケイ酸、乳糖、結晶セルロース、マンニトール、デンプン、カルメロースカルシウム、カルメロースナトリウム、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルアセタールジエチルアミノアセテート、ポリビニルピロリドン、ゼラチン、中鎖脂肪酸トリグリセライド、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油60、白糖、カルボキシメチルセルロース、コーンスターチ、無機塩類等を挙げることができる。
抗酸化剤としては、水溶性抗酸化剤であるアスコルビン酸、システインハイドロクロライド、重硫酸ナトリウム、メタ重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、脂溶性抗酸化剤であるアスコルビルパルミテート、ブチル化ハイドロキシアニソール(BHA)、ブチル化ハイドロキシトルエン(BHT)、レシチン、プロピルガレート、α-トコフェロール、及び金属キレート剤であるクエン酸、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、ソルビトール、酒石酸、リン酸が挙げられる。
本発明の「免疫チェックポイント阻害剤」の投与経路は特に限定されないが、非経口投与が好ましく、具体的には、注射投与、経鼻投与、経肺投与、経皮投与などが挙げられる。注射投与としては、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射が例示できる。投与方法は、患者の年齢、症状により適宜選択することができる。
本発明の「免疫チェックポイント阻害剤」の投与量は、その使用目的、投与経路等によって適宜決定される。目的とする最適な応答(例えば、治療応答)をもたらすように調整される。有効成分は抗体であるため、投与量は、約0.0001~100mg/kg、一般的には0.01~5mg/kg患者体重の範囲である。例えば、投与量は、約0.3mg/kg体重、1mg/kg体重、3mg/kg体重、5mg/kg体重又は10mg/kg体重であるか又は1~10mg/kgの範囲である。典型的な治療方法には、例えば、週1回投与、2週間おきに1回投与、3週おきに1回投与、4週おきに1回投与、月1回投与、3ヶ月おきに1回投与又は3~6ヶ月おきに1回投与などである。例えば、静注投与の場合、1mg/kg体重又は3mg/kg体重である。投与回数は、症状に応じて適宜設定され、単回のボーラスで投与してもよいし、数回に分けて時間をかけて投与してもよい。例えば、投与6回を4週おきに、次に3週おきで投与する場合もあれば、3週おきに投与する場合もあれば、3mg/kg体重を1回、次に3週おきに1mg/kg体重で投与される場合もある。
2.アジュバント組成物
2.1 核酸アジュバント
本発明にかかる「アジュバント組成物」は、二本鎖RNAとエンドソームに送達される一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸(核酸アジュバント)を含む。
(1)「二本鎖RNA」
微生物由来の二本鎖RNAは、Toll-like receptor 3(TLR3)のリガンドとして自然免疫を活性化することが知られている。同様の現象は人工合成した二本鎖RNAでも見られる(Matsumoto M., and T. Seya. 2008. TLR3: Interferon induction by double-stranded RNA including poly(I:C). Adv. Drug Del. Rev. 60: 805-812.)。TLRは1型の膜タンパク質であり、ウイルスや細菌由来の成分を認識し生体防御の応答を誘起する。TLR3は、TLRファミリーの1つであり、細胞外の二本鎖RNAをリガンドとして、TICAM-1を介して多彩な細胞応答を誘導する。TLR3は骨髄系樹状細胞ではエンドソームに、上皮系細胞の一部やマクロファージでは細胞表面とエンドソームに局在しているが、いずれの細胞でもTLR3を介したシグナルはエンドソームから伝達されるため、二本鎖RNAが細胞内へと取り込まれることが必要となる。
微生物由来の二本鎖RNAは、ヒトの遺伝子には作用しないため、TLR3リガンドとして、自然免疫を制御することで、ワクチンアジュバントとして利用する研究も進められている。本発明で使用される「二本鎖RNA」は、そのような外因性(例えば、ウイルスや細菌由来)の二本鎖RNAであって、ヒトの内在性遺伝子に影響を与えることなく、TLR3リガンドとして(TLR3活性化能を有し)、自然免疫を活性化する。
本発明の「二本鎖RNA」は、たとえば、RNAウイルス由来のdsRNAを単離し、これを鋳型として合成することができる。対象となるRNAウイルスは特に限定されず、マイナス鎖一本鎖RNAウイルス、プラス鎖一本鎖RNAウイルス、二本鎖RNAウイルスのいずれであってもよい。具体的には、麻疹ウイルス、センダイウイルス、RSウイルス、C型肝炎ウイルス、ポリオウイルス、ロタウイルスなどが挙げられる。好ましくは、マイナス鎖一本鎖RNAウイルスの麻疹ウイルス、センダイウイルス及びRSウイルスであり、より好ましくは、麻疹ウイルス、センダイウイルス及びRSウイルスのワクチン株である。
馴化麻疹ウイルス株であるEdmonston(ED)株由来のdiRNA(defective interference RNA:配列番号1)は従来よりワクチンに含まれ(Shingai ey al., J Immunol. 2007; 179: 6123-6133)、ヒトに対する安全性が確立している。発明者らは、このED株由来のdiRNAがアジュバントの機能を有することを見出し(前掲 Itoh et al., The Journal of Immunology, 2008; Matsumoto et al. Nat. Commun. 2015)、これを基に作製した59塩基長~140塩基長の二本鎖RNAが、後述する一本鎖ODNと連結させることで、効率よくエンドソームに送達され、細胞内RNAセンサーRIG-I、MDA5を活性化することなくTLR3のみを活性化させ、腫瘍退縮効果を有することを確認している(WO2012/014945及びWO2016/088784)。このED株由来のdiRNAに基づく「二本鎖RNA」は、5’末端をキャップすることで他の免疫系(例えば、MDA5/RIG-1)を活性化することなく、TLR3のみを特異的に活性化するため、全身性の炎症性サイトカインの誘導を引き起こす心配がなく、ワクチンアジュバントとして優れている。したがって、本発明で使用される「二本鎖RNA」の好ましい一形態として、このED株由来のdiRNAに基づく二本鎖RNAを挙げることができるが、他のウイルスや細菌由来の二本鎖RNAも、TLR3リガンドとして、本発明の核酸アジュバントに利用することができる。
「二本鎖RNA」の長さは特に限定されないが、TLR3活性化能のためには約50塩基対以上が好ましく、約60塩基対以上がより好ましく、約90塩基対以上、約100塩基長以上、約110塩基以上がさらに好ましく、約120塩基長以上が特に好ましい。上限も特に限定されないが、合成の容易さから、約160塩基対までの長さにすることが好ましい。したがって、本発明の「二本鎖RNA」の長さとしては、約50~160塩基対が好ましく、約90~150塩基対、約100~150塩基対、約110~140塩基対がより好ましく、約120~140塩基対が特に好ましい。
ED株由来のdiRNAは配列番号1に示される塩基配列を有し、ループ構造を有する二本鎖RNA(diRNA)を形成する(Shingai et al., J Immunol. 2007 Nov 1;179(9):6123-6133)。ED株由来のdiRNAを基に「二本鎖RNA」を設計する場合、配列番号1に示されるED株のdiRNAのいずれの部分を、「二本鎖RNA」として使用してもよいが、AU Richな領域が合成効率の面からは好ましい。そのようなAU Richな領域としては、たとえば、センス鎖側配列としては、配列番号1の17位~78位、101位~164位、及び216位~269位等が挙げられるが、いずれも合成効率の面から好ましい領域であって、TLR3リガンドとしての機能はこれらの領域に限定されない。
前述した特許出願(WO2012/014945)では、配列番号1に示されるED株のdiRNAにおいて、以下の塩基配列を有する二本鎖RNAを調製し、その活性を確認している。
第1017位~第1074位の塩基配列(配列番号2)、
第1077位~第1152位の5’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号3)
第1017位~第1152位の5’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号4)
第1077位~第1152位の3’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号5)
第1017位~第1152位の3’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号6)
第1057位~第1152位の3’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号7)
第1046位~第1152位の3’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号8)
第1037位~第1152位の3’末端にシトシンを3個付加した塩基配列(配列番号9)
第1017位~第1089位の塩基配列(配列番号10)。
また、特許出願(WO2016/088784)では、配列番号1に示されるED株のdiRNAにおいて、第1位~第140位の塩基配列(配列番号11)を有する二本鎖RNAを調製し、その活性を確認している。diRNAがステムループを形成することを考慮すれば、配列番号11に示される配列は、配列番号2~9に示される配列と相補鎖をなす領域であることが理解できる。
したがって、本発明の「二本鎖RNA」としては、配列番号1に示される塩基配列の連続した30~160塩基長の塩基配列を有する核酸(二本鎖RNA)を使用できる。また、合成効率の点からは、配列番号1に示される塩基配列の17位~78位、101位~164位、及び216位~269位中の連続した30塩基以上、好ましくは40塩基以上を含む(繰り返し含むものでもよい)、全長が100~160塩基長、好ましくは110~150塩基長、より好ましくは120~140塩基長の核酸(二本鎖RNA)を好適に使用することができる。なお、「二本鎖RNA」は、配列番号1の部分配列を2~4回繰り返し含むものであってもよい。例えば、配列番号1の17-136位の連続した120塩基長を含むもののほか(配列番号42(センス)、配列番号43(アンチセンス))、配列番号1の17-56位の連続した40塩基長を3回繰り返して含むもの(配列番号44(センス)、配列番号45(アンチセンス))も使用することができる。
配列番号2~11のいずれかに示される塩基配列を有する核酸はその一例であり、このうち配列番号11で示される塩基配列とその部分配列を有する核酸について、発明者らはin vivoでの腫瘍退縮効果を確認している。
本発明の「二本鎖RNA」とED株由来のdiRNAの機能・構造を考慮すれば、配列番号2~11に示される塩基配列を有する核酸(二本鎖RNA)に限定されず、その連続した100塩基以上、好ましくは110塩基以上、より好ましくは120塩基以上の塩基配列を有する二本鎖RNAも使用できる。また、前記配列と80%の配列同一性、好ましくは85%、より好ましくは90%、さらに好ましくは95%の配列同一性を有する塩基配列を有する二本鎖RNAも、TLR3活性化能を有する限り、本発明の「二本鎖RNA」として利用できる。なお、「二本鎖RNA」が、部分配列を繰り返し含むものである場合、配列同一性は部分配列と当該部分配列に対応する配列とを比較した数値とする。
また、配列番号2~11に示される塩基配列、その連続した100塩基以上、好ましくは110塩基以上、より好ましくは120塩基以上の塩基配列において、1~10個、好ましくは1~6個、より好ましくは1~3個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加された塩基配列を有する二本鎖RNAも、TLR3活性化能を有する限り、本発明の「二本鎖RNA」として利用できる。
TLR3活性化能は、WO2012/014945の実施例2に記載されているように、ヒトTLR3発現プラスミドを、IFN-βプロモーターを含むレポータープラスミドとともにトランスフェクトした細胞を作製し、その培養液中に二本鎖RNAを添加し、レポーター活性の上昇を見ることにより容易に確認することができる。したがって、配列番号2~11で示される「二本鎖RNA」に限定されず、当業者であれば、配列番号1に示されるようなウイルスや細菌由来のdsRNAの塩基配列と、WO2012/014945及びWO2016/088784の記載、ならびに当該分野の技術常識から、本発明で使用される他の「二本鎖RNA」を容易に取得できる。
(2)一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)
TLR9はウイルスDNAやバクテリアDNAの非メチル化CpGモチーフを認識する。TLR9を介したシグナリングは短い合成オリゴデオキシヌクレオチド(ODN)により高効率に行われる。このODNには細菌やウイルスの遺伝子に特有のCpGモチーフが含まれており、「CpG ODN」として当該分野で周知である。CpG ODNは、樹状細胞のエンドソームに送達され、TLR9リガンドとして機能するため、強いワクチンアジュバンドや抗体産生増強剤として有用であることが知られている。一方で、MyD88依存性のサイトカイン(特にIFN-γ)を強く誘導し、Th2応答を引き起す。CpG ODNは3つのタイプに分類され、AタイプはIFNαを強力に誘導するNK細胞のアクチベーターであり、BタイプはIFNαの誘導は弱いB細胞のアクチベーターであり、CタイプはBタイプの作用とAタイプの作用を併せ持つ。本発明の「一本鎖ODN」は、CpGのサイトカイン誘導活性を除去したGpC型とし、Bタイプ又はCタイプのGpC ODNに基づくものが好ましい。
前述した特許出願(WO2012/014945)では、上記CpG ODNにおいて、CpGをGpCに変換したODN(GpC ODN)や、前記GpCをTpC又はCpCに変換したODNもエンドソームに送達されることが、本発明者らにより確認されている。さらに上記ODNの5塩基以上の長さを有する部分配列からなる核酸も、エンドソームに送達されることが、本発明者らにより確認されている。
CpGをGpC、TcP、CPCに変換したODNは、樹状細胞のエンドソームに送達されるが、TLR9アゴニスト活性を有さないため、不必要な免疫応答を誘導しない。すなわち、本発明で使用される「一本鎖ODN」は、TLR9アゴニスト活性を有しないエンドソームに送達される一本鎖ODNである。
CpG ODNはTLR9アゴニストとして、GpC ODNはそのControl(TLR9アゴニスト活性を有しないため)として、市販されており、本発明ではこれらのODNを好適に利用することができる。以下に、Invivogenから販売されているCpG ODN(Bタイプ又はCタイプ)及びそのGpC ODN(Control)とその配列を記載する(http://www.invivogen.com/tlr9-agonist)。
Figure 0007321489000001
本発明の「一本鎖ODN」は、CpG ODNにおいてCpGジヌクレオチドがGpC、TpC又はCpCジヌクレオチドに置換された塩基配列を有するODN、あるいはエンドソーム送達機能を有するその部分配列を挙げることができる。
そのような「一本鎖ODN」の具体例として、配列番号19~39に示される塩基配列を有するODN、又はその5塩基以上の長さを有する部分配列からなる核酸を挙げることができる。
なお、配列番号19~39に示される配列において、1~3個、好ましくは1又は2個、より好ましくは1個の欠失、置換、挿入もしくは付加を有する塩基配列を有するODNも、TLR9アゴニスト活性を有さずエンドソームに送達される限り、本発明の「一本鎖ODN」として利用できる。
本発明の「一本鎖ODN」は、エンドソームへの送達機能の点から、15塩基長以上であることが好ましく、15~28塩基長であることがより好ましい。
エンドソームへの送達能力は、WO2012/014945の実施例5に記載されているように、ヒトTLR3を、IFN-βプロモーターを含むレポータープラスミドとともにトランスフェクトした細胞を作製し、その培養液中に二本鎖RNAに一本鎖ODNを連結した核酸を添加し、レポーター活性をコントロールと比較することにより容易に確認することができる。したがって、配列番号19~39で示される塩基配列を有する一本鎖ODNだけでなく、当業者であれば、市販のCpG ODNやGpC ODN(control)の塩基配列と、WO2012/014945及びWO2016/088784の記載から、本発明で使用される他の「一本鎖ODN」を容易に取得できる。
本発明の「GpC ODN」を構成する一本鎖ヌクレオチドは、安定性(ヌクレアーゼ耐性)の点から修飾されていることが好ましい。そのような修飾としては、フォスフォロチオエート修飾を挙げることができる。フォスフォロチオエート修飾されることで、一本鎖ODNはヌクレアーゼで分解されることなく、効率よく核酸をエンドソームに送達できる。
(3)アジュバント核酸の合成
本発明のアジュバント核酸は、上記した「二本鎖RNA」と「一本鎖ODN」から構成される。「二本鎖RNA」と「一本鎖ODN」の連結される順番や、連結様式は特に限定されず、「一本鎖ODN」の3’側に「二本鎖RNA」の5’側が結合しても、「一本鎖ODN」の5’側に「二本鎖RNA」の3’側が結合していてもよいが、「一本鎖ODN」の3’側に「二本鎖RNA」の5’側が結合していることが好ましく、「一本鎖ODN」の3’末端が「二本鎖RNA」のセンス鎖の5’末端と結合していることがさらに好ましい。
「二本鎖RNA」と「一本鎖ODN」は直接連結されてもよいし、適当なリンカーを介して連結されてもよい。リンカー配列の長さ(塩基数)は限定されない。リンカー配列以外に、いずれか一方の末端又は両末端に、さらに他の核酸を連結していてもよいが、この場合、RNAの3’側に他の核酸を連結していることが好ましい。
本発明の核酸を形成する各一本鎖核酸は、いずれの末端にもリン酸基が結合していないことが好ましい。5’末端にリン酸基が残っていると、生体内での大量投与により細胞質内RIG-I経路を活性化し、大量のサイトカイン産生が誘導され副作用の原因となるからである(Robinson RA, DeVita VT, Levy HB, Baron S, Hubbard SP, Levine AS. A phase I-II trial of multiple-dose polyriboinosic-polyribocytidylic acid in patients with leukemia or solid tumors. J Natl Cancer Inst. 1976 Sep;57(3):599-602)。インビトロ転写により合成されたRNA鎖の5’末端には、3リン酸が付加されるが、本発明の核酸は化学合成により製造できるため、5’末端及び3’末端のいずれにもリン酸基が結合していない核酸として合成することができる。
「一本鎖ODN」の3’末端が「二本鎖RNA」のセンス鎖の5’末端と直接共有結合している場合、本発明の核酸アジュバントは、一本鎖核酸A(「一本鎖ODN」と「二本鎖RNA」センス鎖とのキメラ核酸)と、一本鎖核酸B(「二本鎖RNA」アンチセンス鎖)からなる核酸として合成することができる。
一例として、WO2016/088784には、配列番号40で示されるセンス鎖(一本鎖核酸A)と配列番号41で示されるアンチセンス鎖(一本鎖核酸B)から構成される核酸とその合成方法が記載されている。この例では、「二本鎖RNA」と「一本鎖ODN」は直接連結されているが、核酸の安定性とアジュバント活性に負の影響を与えない限り、両者の間にリンカーが含まれていてもよい。本明細書においては、この配列番号40で示されるセンス鎖と配列番号41で示されるアンチセンス鎖から構成される核酸アジュバントを「ARNAX」と呼ぶこともある。
本発明の核酸は、上記センス鎖とアンチセンス鎖に限定されるものではなく、前記配列とそれぞれ80%、好ましくは85%、より好ましくは90%、さらに好ましくは95%の配列同一性を有するセンス鎖とアンチセンス鎖から構成される核酸も、それがアジュバント活性を有する限り、本発明の核酸として利用することができる。なお、前述したように、「二本鎖RNA」が特定の部分配列を繰り返し含む場合には、上記配列同一性は、当該繰り返し部分に関しては、部分配列と当該部分配列に対応する配列とを比較した数値とする。
核酸のアジュバント活性は、WO2012/014945及びWO2016/088784の実施例の記載にしたがい、たとえば、一次的にはヒトTLR3発現プラスミドを、IFN-βプロモーターを含むレポータープラスミドとともにトランスフェクトした細胞を作製し、その培養液中に核酸アジュバントを添加し、レポーター活性の上昇を見ることにより、より厳密には、in vivoでの腫瘍退縮効果等をみることにより確認することができる。
上記したセンス鎖とアンチセンス鎖からなる核酸は、たとえば、WO2016/088784の記載された方法にしたがい、部分配列を合成し、順次ライゲーションすることで合成することができる。もちろん、上記方法に限定されず、使用される二本鎖RNAと一本鎖ODNの長さや構造に応じて、常法にしたがい、合成方法は適宜最適化してよい。
腫瘍の微小環境では、腫瘍細胞以外に腫瘍に浸潤した骨髄系細胞による免疫抑制状態が生じている。腫瘍関連マクロファージ(Tumor-associated macrophage:TAM)は腫瘍の増殖・維持・浸潤を強くサポートしており、腫瘍に都合の良い微小環境の形成に寄与し、myeloid-derived suppressor cell(MDSC)は抗原特異的T細胞の活性を抑制する。こうした抑制性マクロファージが腫瘍内に浸潤するマウス移植がんでpoly(I:C)治療を行うと、腫瘍が退縮する(Shime et al. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109(6): 2066-2071.2012)。腫瘍退縮の要因は、poly(I:C)に応答したTAMからのTLR3-TICAM-1依存的なTNF-α産生による腫瘍の出血性壊死であるが、同時に、腫瘍内のマクロファージは抑制型のM2タイプからエフェクター型のM1タイプに変換しており、TLR3シグナルでエピジェネティックな変化が誘導される。TLR3特異的アジュバントである本発明のアジュバント組成物の投与により、腫瘍内のがん抑制細胞をがん攻撃型に転換し、腫瘍内微小環境を制御することで腫瘍の増殖を阻害できると考えられる。
本発明の核酸アジュバントは、1)樹状細胞に効率よく取り込まれる、2)TLR3のみ活性化しMDA5/RIG-1を活性化しない、3)全身的な炎症性サイトカイン/タイプI IFN産生を誘導しない、4)樹状細胞を活性化し、NK細胞、CTLを誘導する、5)強い抗腫瘍活性を示す、6)腫瘍内微小環境を制御することで腫瘍の増殖を阻害できる、7)GMP基準による化学合成が可能である、という特徴を有する。したがって、がん免疫療法におけるアジュバントとして極めて有用である。
(4)製剤化
本発明の「アジュバント組成物」は、薬理学上許容される担体や添加物を含むものであってもよい。そのような担体や添加物としては、例えば界面活性剤、賦形剤、着色料、着香料、保存料、抗酸化剤、安定剤、緩衝剤、懸濁剤、等張化剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、流動性促進剤、矯味剤等が挙げられるが、これらに制限されず、その他常用の担体が適宜使用できる。これらの具体例は、「免疫チェックポイント阻害剤」において記載したとおりである。
本発明の「アジュバント組成物」の投与経路は特に限定されないが、非経口投与が好ましく、具体的には、注射投与、経鼻投与、経肺投与、経皮投与などが挙げられる。注射投与としては、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射が例示できる。投与方法は、患者の年齢、症状により適宜選択することができる。
本発明の「アジュバント組成物」の投与量は、その使用目的、投与経路等によって適宜決定される。ヒトに投与する場合は、例えば、一回の投与につき体重1kgあたり0.00001mgから10mgの範囲で投与量が選択できる。あるいは、例えば、患者あたり1~100 mg/bodyの範囲で投与量が選択できる。しかしながら、本発明の「アジュバント組成物」の投与量は上記投与量に制限されるものではない。
2.2 抗原分子
本発明は、アジュバント組成物は、抗原分子を含んでいてもよい。がん患者や細菌感染者の体内には、内因性の抗原が存在するため、アジュバント核酸のみでも免疫効果は得られる。もっとも、アジュバント核酸のみで十分な効果が得られない場合には、治療対象とする疾患に応じて、抗原分子をアジュバントとともに投与することが好ましい。抗原分子としては、ウイルス抗原、細菌抗原、がん抗原、及びこれらの抗原性成分等が挙げられる。
ウイルス抗原としては、例えば、アデノウイルス、レトロウイルス、ピコルナウイルス、ヘルペスウイルス、ロタウイルス、ハンタウイルス、コロナウイルス、トガウイルス、フラビウイルス、ラブドウイルス、パラミクソウイルス、オルソミクソウイルス、ブニヤウイルス、アレナウイルス、レオウイルス、パピローマウイルス、パルボウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、海綿状ウイルス、HIV、CMV、A型肝炎ウイルス、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、インフルエンザウイルス、麻疹ウイルス、ポリオウイルス、天然痘ウイルス、風疹ウイルス、単純ヘルペスウイルス、水痘帯状疱疹ウイルス、エプスタイン-バーウイルス、日本脳炎ウイルス、狂犬病ウイルス、インフルエンザウイルス等のウイルス抗原又はこれらの組み合わせが挙げられる。
細菌抗原としては、例えば、バチルス属、エスケリキア属、リステリア属、ナイセリア属、ノカルジア属、サルモネラ属、スタフィロコッカス属、ストレプトコッカス属等の細菌抗原又はこれらの組み合わせが挙げられる。
がん抗原としては、例えば、白血病、リンパ腫、星状細胞腫、神経膠芽腫、メラノーマ、乳癌、肺癌、頭頸部癌、消化器系腫瘍、胃癌、結腸癌、肝癌、膵癌、子宮癌、卵巣癌、膣癌、精巣癌、前立腺癌、陰茎癌、骨腫瘍、血管腫瘍、食道癌、直腸癌、大腸癌、膵臓癌、胆嚢癌、胆管癌、喉頭癌、気管支癌、膀胱癌、腎臓癌、脳腫瘍、甲状腺癌、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫、多発骨髄腫等のがん抗原又はこれらの組み合わせが挙げられる。
本発明のアジュバント組成物は、単独でも、がん又は感染症の治療効果を有し、本発明は、アジュバント組成物を含むがん又は感染症を治療するための医薬も提供する。
3.がん又は感染症を治療するための医薬
本発明は、上記した免疫チェックポイント阻害剤、及びアジュバント組成物を組み合わせて含む、がん又は感染症を治療するための医薬を提供する。
本発明の医薬は、抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体を含む免疫チェックポイント阻害剤に、アジュバント組成物を同時に、別々に、又は、順次に投与するために組み合わせた(併用投与する)医薬を意味する。
免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物は、別々に提供されてもよいし、免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物から構成されるキットとして提供されてもよい。
本発明の医薬の治療対象となる疾患としては、免疫チェックポイント阻害剤の対象となりうる疾患(癌、感染症等)である。癌としては、例えば、骨癌、膵癌、皮膚癌、頭頚部癌、メラノーマ、子宮癌、卵巣癌、直腸癌、肛門部癌、胃癌、精巣癌、子宮癌、卵管カルシノーマ、子宮内膜カルシノーマ、子宮頚部カルシノーマ、膣カルシノーマ、外陰部カルシノーマ、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫、食道癌、小腸癌、内分泌系癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、副腎癌、柔組織肉腫、尿道癌、陰茎癌、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、急性リンパ芽球性白血病、慢性白血病、急性白血病、小児固形癌、リンパ球性リンパ腫、膀胱癌、腎臓癌、尿管癌、腎盂カルシノーマ、中枢神経系(CNS)腫瘍、原発性CNSリンパ腫、腫瘍新脈管形成、脊椎腫瘍、脳幹グリオーム、下垂体アデノーマ、カポシ肉腫、扁平上皮癌、扁平細胞癌、T細胞リンパ腫、環境誘発腫瘍等が挙げられる。とくに、PD-L1を発現する転移性癌に好適に適用することができる。
感染症としては、例えば、HIV感染(AIDS)、肝炎、ヘルペス、マラリア、リューシュマニア症、インフルエンザ、赤痢、肺炎、結核、敗血症等を挙げることができる。とくに、重篤な免疫不全を生じるHIV感染に好適に適用することができる。
前述したように抗PD-1抗体や抗PD-L1抗体は、免疫防御機構のエフェクターフェースで作用するのに対し、本発明の核酸アジュバントは、樹状細胞のエンドソームに送達され、TLR3を活性化し、NK細胞、CTLを誘導するなどプライミングフェースで作用すると考えられる。したがって、本発明のアジュバント核酸を抗PD-1抗体や抗PD-L1抗体と併用することで、プライミングフェースとエフェクターフェースの両方を通じて免疫防御機構を活性化することができる(図5参照)。
上記した作用機序により、本発明の医薬は、アジュバント組成物と抗PD-1抗体及び抗PD-L1抗体を併用することで、抗PD-1抗体や抗PD-L1抗体が単独では奏功しない癌に対しても効果を奏し、かつ、より強力にCTL依存性の腫瘍退縮を誘導する。アジュバント組成物と抗PD-1抗体や抗PD-L1抗体は、併用することにより、それぞれ単独で投与するよりも、相乗的に抗腫瘍効果が増大する。
さらに、アジュバント組成物と併用することにより、抗PD-1抗体やPD-L1抗体単独では達成しえない抗体産生やNK細胞活性化と言う効果、腫瘍微小環境の改善という効果も奏される。本発明の医薬は安全性が高く、高齢者にも安全に投与することができ、抗PD-1抗体や抗PD-L1抗体を用いた治療対象を広げ、その効果を高めることができる。
以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例1:ARNAXと抗原の投与によるCTLの誘導
1.材料及び方法
8-11週齢の野生型(C57BL/6)及びB57BL/6バックグラウンドのノックアウト♂マウス(MAVS KO, MyD88 KO, TLR3 KO, TICAM-1 KO, IRF3 KO, IRF3/7 DKO)を実験に用いた。PBS、OVA(100 μg)、又はOVA(100 μg)+ARNAX(60 μg)をday0, day7にマウス皮下投与し、day11に脾臓と膝下リンパ節を採取し、CD8+ T 細胞中のOVA特異的CD8+T細胞の割合をOVA-tetramer (MBL社製)で測定した。Tetramer assayは添付文書に従って行った。具体的には、脾臓及びリンパ節細胞(1x 107/ml)を50倍希釈のH2-Kb OVA tetramer(PE)で20分間染色し、洗浄後、anti-CD3e mAb(APC)、anti-CD8a mAb(FITC)で染色し、CD8+T細胞中のOVA 特異的CD8+T細胞の割合をFACS Aria(BD社)で解析した。また、脾細胞(1x 107/ml)を100 nMのOVA特異的ペプチド(SL8:SIINFEKL)あるいはコントロールWT1ペプチド(Db126: RMFPNAPYL)で3日間刺激し、培養上清中のIFN-γをCytokine bead assay(CBA; BD社)で測定した。
2.結果
野生型マウスにおいてPBSあるいはOVA単独投与では、脾臓及び膝下リンパ節で、OVA特異的CTLは誘導されないが、OVA+ARNAX投与で誘導された。RIG-I-like receptor(RLR)の下流のアダプター分子であるMAVSのノックアウトマウス、TLR3以外のTLRのアダプター分子であるMyD88ノックアウトマウスは野生型マウスと同様の結果であった。TLR3, TLR3のアダプター分子であるTICAM-1, Type I IFN誘導に必須の転写因子IRF3, IRF7のノックアウトマウスでは、OVA+ARNAXによるOVA特異的CTLは全く誘導されなかった(図1a,c)。また、野生型マウスとMAVSノックアウトマウスの脾細胞では、OVA特異的ペプチド刺激で大量のIFN-γが産生されたが、TLR3, TICAM-1, IRF3, IRF3/7ノックアウトマウスでは全くIFN-γ産生は見られなかった(図1b)。
3.考察
抗原特異的CTLは、抗原単独では誘導されず、抗原+ARNAX投与により誘導されることが明らかとなった。ノックアウトマウスの結果から、ARNAXによる抗原特異的CTL誘導はTLR3-TICAM-1-IRF3経路に依存し、RLR-MAVS経路やTLR3以外のTLR-MyD88経路は関与しないことが判明した。ARNAXのプライミングアジュバント活性はTLR3-TICAM-1シグナルとして定義できる。
実施例2:投与経路によるARNAXのサイトカイン産生効果及び安全性の比較
1.材料及び方法
8週齢の野生型(C57BL/6)♀マウスの皮下にsaline, poly(I:C)(150 μg),ARNAX(150 μg)を、あるいは静脈中にsaline, poly(I:C)(50 μg), ARNAX(50 μg)を投与し、3時間及び6時間後の血中のサイトカイン量を測定した(図2)。IL-6, TNF-α, IL-12p40はCBAで、IFN-β, IP-10はELISAにて測定した。
2.結果
ARNAX皮下投与において、血中の炎症性サイトカインIL-6, TNF-αはpoly(I:C)投与より少なく、IFN-γも非常に少なかった。一方、Th1型サイトカインであるIL-12p40はpoly(I:C)より多く産生誘導され、NK細胞、NKT細胞、T細胞を呼び寄せるケモカインのIP-10はpoly(I:C)と同等に誘導された。静脈内投与では、poly(I:C)はTNF-α, IL-6,IFN-βを強く誘導するが、ARNAXは殆ど誘導しなかった。
3.考察
ARNAXは投与経路に拘らず、全身的な炎症性サイトカインやタイプI IFN産生を殆ど誘導しないことから、poly(I:C)で見られる副作用が軽減された非炎症性アジュバントといえる。一方、Th1型サイトカインのIL-12はpoly(I:C)より多く産生誘導される。抗原特異的CTL誘導では第3のシグナルとしてIL-12やtype I IFNなどのサイトカインが必要であるが、IL-12で誘導されたCTLはtype I IFNで誘導されたCTLより、腫瘍内でのPD-1の発現が低く、より長く生存するという報告もあり、ARNAXのIL-12high/IFN-βlowのサイトカインプロフィールは、腫瘍内での機能的な抗原特異的CD8T細胞の誘導に適している。
実施例3:ARNAXと抗原の投与による抗腫瘍効果(胸腺腫)
1.材料及び方法
C67BL/6マウス (7週齢,♀)の腰背部にOVA発現腫瘍(胸腺腫)株であるEG7 (2x106 /200 μl PBS)を皮下移植し、day7にPBS(n=5)又はOVA(100 μg)+ARNAX(60 μg)(n=5)を皮下投与し、腫瘍の増殖を経時的に測定した(図3c)。 Day14に腫瘍を採取し、腫瘍内のCD8+T 細胞の割合、CD8+ T細胞中のOVA特異的CD8+T細胞及びCD11c陽性CD8+T細胞の割合をフローサイトメトリーで測定した(図3d)。また、腫瘍組織切片を作成し、抗CD8α抗体で免疫染色して腫瘍内のCD8+T細胞の浸潤を共焦点顕微鏡でPBS群20視野、OVA+ARNAX群16視野を観察し数値化した(図3f)。更に、腫瘍組織からRNAをTrizolを用いて精製し、Gzmb, Ifng, Perf1, Cxcl9, Cxcl10, Cxcl11の遺伝子発現を定量PCRで測定した(図3e)。
2.結果
OVA+ARNAX治療でEG7腫瘍内にCD8+T細胞が非常に多く浸潤していた(図3d,f)。CD8+T細胞中のOVA特異的CTLの割合も高く,活性化マーカーのCD11cも発現しており、エフェクターメモリーの腫瘍反応性CTLが誘導されたと考えられる。それに伴い腫瘍の退縮が誘導された(図3c)。腫瘍内では、granzyme(Gzmb), perforin(Prf1), IFN-γ(Ifng), Cxcl9,10,11などの遺伝子がOVA+ARNAXで発現上昇していた(図3e)。
3.考察
ARNAX+がん抗原投与で、腫瘍特異的CTLを効率的に誘導し腫瘍内に浸潤させ、腫瘍退縮を導く事ができると考えられる。腫瘍内では、granzyme, perforin, IFN-γなど細胞傷害関連遺伝子やCxcl9,10,11といったCTLを誘導するケモカイン遺伝子の発現が上昇しており、ARNAXは腫瘍内にTh1型免疫応答を構築することができるアジュバントである。
実施例4:ARNAXとPD-L1抗体の併用投与(胸腺腫)
1.材料及び方法
C67BL/6マウス (7週齢,♀)の腰背部にPD-L1高発現EG7 (Kataoka et al., Nature 534:402,2016)(2x106 /200 μl PBS)を皮下移植し、day7にPBS (isotype Ab群) (n=4), PBS (anti-PD-L1 Ab群)(n=4),OVA(100 μg)+ARNAX(60 μg) (isotype Ab群)(n=6), OVA(100 μg)+ARNAX(60 μg) (anti-PD-L1 Ab群) (n=6)を皮下投与し、day7, 9, 11にisotype Abあるいはanti-PD-L1 Ab(200μg/head) を静脈内投与し腫瘍の増殖を経時的に測定した(図4c)。 Day13に脾臓及び腫瘍を採取し、脾臓及び腫瘍内のCD8+T 細胞の割合、CD8+ T細胞中のOVA特異的CD8+T細胞、CD11c陽性CD8+T細胞、PD-1陽性CD8+T細胞の割合をフローサイトメトリーで測定した(図4d)。更に、腫瘍組織からRNAをTrizolを用いて精製し、Gzmb, Ifng, Perf1, Cxcl9, Cxcl10, Cxcl11の遺伝子発現を定量PCRで測定した(図4e)。
2.結果
PD-L1高発現EG7において、PD-L1抗体単独治療では腫瘍増殖は抑制されなかったが、OVA+ARNAXで腫瘍の退縮が誘導された。更に、PD-L1抗体との併用でより効果的に腫瘍が退縮した(図4c)。OVA+ARNAXで腫瘍内にCD8+ T cellが浸潤しており、抗PD-L1抗体を併用すると更に多くのT細胞が浸潤していた。腫瘍内のOVA特異的CD8+T cell の割合はOVA+ARNAX, OVA+ARNAX+anti-PD-L1 Abいずれも高くなっていた(図4d)。一方脾臓では、抗原特異的CD8+T cell の増殖はPD-L1抗体の併用で著しく増加しており、活性化マーカーのCD11c, PD-1陽性CD8+T細胞の割合も高く、エフェクターメモリーの腫瘍反応性CTLが誘導されていることが判明した。また、腫瘍内のGzmb, Ifng, Perf1, Cxcl9,の遺伝子発現もARNAX+OVAとanti-PD-L1抗体併用で上昇していた(図4e)。
3.考察
PD-L1抗体治療に抵抗性のPD-L1高発現のEG7腫瘍において、OVA+ARNAXで腫瘍の増殖はある程度抑制されるが、抗PD-L1抗体を併用することで効果的に腫瘍退縮を導くことができたことから、併用治療によりPD-1/PD-L1抵抗性を解除できると考えられる。
PD-1経路がブロックされたことにより、プライミング相において多くの腫瘍特異的CTLが誘導されて腫瘍内に浸潤し、エフェクター相での機能抑制解除により効果的にがん退縮を導いたと考えられ、抗PD-1/PD-L1抗体との併用はARNAXの作用強化に有用である(図5参照)。
実施例5:ARNAXとPD-L1抗体の併用投与(メラノーマ)
1.材料及び方法
C67BL/6マウス (7週齢,♀)の腰背部にOVA発現B16メラノーマ株であるMO5(2x106 /200 μl PBS)を皮下移植し、day10にPBS (isotype Ab群) (n=5), PBS (anti-PD-L1 Ab群)(n=4),OVA(100 μg)+ARNAX(60 μg)(isotype Ab群)(n=4), OVA(100 μg)+ARNAX(60 μg) (anti-PD-L1 Ab群)(n=4)を皮下投与し、day10, 12, 14、16にisotype Abあるいはanti-PD-L1 Ab(200μg/head) を静脈内投与し、腫瘍の増殖を経時的に測定した(図6c)。 Day17に脾臓及び腫瘍を採取し、脾臓及び腫瘍内のCD8+T 細胞の割合、CD8+ T細胞中のOVA特異的CD8+T細胞及びCD11c陽性CD8+T細胞、PD-1陽性CD8+T細胞の割合をフローサイトメトリーで測定した(図6d)。また、腫瘍組織からRNAをTrizolを用いて精製し、granzyme(Gzmb), perforin(Prf1), IFN-γ(Ifng), Cxcl10,の遺伝子発現を定量的PCRで測定した(図6e)。さらに、腫瘍浸潤免疫細胞の割合を、リンパ球、樹状細胞、CD11b陽性骨髄細胞のそれぞれについて測定した(図6f)。
2.結果
PD-L1発現MO5において、OVA+ARNAXは、PD-L1抗体単独治療と同程度の腫瘍の退縮を誘導させた。更に、OVA+ARNAXはPD-L1抗体と併用することでより効果的に腫瘍を退縮させた(図6c)。OVA+ARNAXでは腫瘍内にCD8+ T cellが浸潤しており、抗PD-L1抗体を併用すると更に多くのT細胞が浸潤していた。腫瘍内のOVA特異的CD8+T cell の割合はOVA+ARNAX, OVA+ARNAX+anti-PD-L1 Abいずれも高くなっていた(図6d)。一方脾臓では、抗原特異的CD8+T cell の増殖はPD-L1抗体の併用で著しく増加しており、活性化マーカーのCD11c, PD-1陽性CD8+T細胞の割合も高く、エフェクターメモリーの腫瘍反応性CTLが誘導されていることが判明した。また、腫瘍内のGzmb, Ifng, Perf1, Cxcl9,の遺伝子発現もARNAX+OVAとanti-PD-L1抗体併用で上昇していた(図6e)。
3.考察
MO5腫瘍において、ARNAX+がん抗原治療は腫瘍増殖を抑制するが、PD-L1抗体と併用することでより効果的に腫瘍退縮を導くことができる。このことから、メラノーマについても、ARNAX+がん抗原との併用治療によりPD-1/PD-L1免疫チェックポイント阻害剤は高い抗腫瘍効果を発揮できるものと考えられる。
実施例6:ARNAXの構造とTLR3を介したIFNβ活性化能
1.材料及び方法
以下の4種類の二本鎖RNAを合成した。
ARNAX140:配列番号1の1-140位の塩基配列を有する二本鎖RNA
ARNAX120#1:配列番号1の17-136位の塩基配列を有する二本鎖RNA
ARNAX120#2:配列番号1の17-56の塩基配列を3回連結した配列を有する二本鎖RNA
ARNAX130:配列番号1の1-130位の塩基配列を有する二本鎖RNA
配列番号1の17-56位はAUリッチな領域である(図7)。
HEK293細胞に対照プラスミド(pEF/BOS)あるいはヒトTLR3発現プラスミドをIFN-β プロモーターレポータープラスミドと共にトランスフェクトし、24時間後に培地、poly(I:C)、ARNAX140又はARNAX120#2を2, 5, 10 μg/mlの濃度で加えた。6時間後に細胞中のルシフェラーゼ活性を測定した。pEF/BOS発現細胞に陰性対照として培地を加えたときのルシフェラーゼ活性を1として、foldで表した(図8)。
同様の実験を、poly(I:C)、ARNAX140、ARNAX130又はARNAX120#1を2, 5, 10 μg/mlの濃度で加えて実施した(図9)。
2.結果
ARNAX120のTLR3を介したIFN-βプロモーター活性化能はARNAX140の7-8割で、RNA配列の異なるARNAX120#1とARNAX120#2でTLR3活性化能に差は認められなかった。ARNAX130は、ARNAX140と同等のTLR3を介したIFN-βプロモーター活性化能を有することが確認された。
実施例7:ARNAX120のCTLの誘導活性
1.材料及び方法
実施例1にしたがい、8週齢の野生型(C57BL/6)雌性マウスを用いて、PBS、OVA(100 μg)、OVA(100 μg)+poly(I:C)(50 μg)、OVA(100 μg)+ARNAX140 (10 μg)、OVA(100 μg)+ARNAX140 (30 μg), OVA(100 μg)+ARNAX140 (60 μg) の皮下投与による脾臓と膝下リンパ節におけるOVA特異的CD8+T細胞の割合を測定した。
同様に、8週齢の野生型(C57BL/6)雌性マウスを用いて、PBS、OVA(100 μg)、OVA(100 μg)+poly(I:C)(50 μg)、OVA(100 μg)+ARNAX120#2 (10 μg)、OVA(100 μg)+ARNAX120#2(30 μg) の皮下投与による脾臓におけるOVA特異的CD8+T細胞の割合を測定した。また、脾細胞(1x 107/ml)を100 nMのOVA特異的ペプチド(SL8:SIINFEKL)あるいはコントロールWT1ペプチド(Db126: RMFPNAPYL)で3日間刺激し、培養上清中のIFN-γをELISAで測定した。
2.結果
PBSあるいはOVA単独投与ではOVA特異的CTLは誘導されないが、OVA+poly(I:C)、OVA+ARNAX140, OVA+ARNAX120#2投与ではCTLが誘導され、in vivoでのクロスプライミング活性が確認された(図10、図11)。ARNAX140の投与量を変量した結果、10μg/headで充分CTL誘導活性があることが判明した(図10)。ARNAX120はARNAX140と同等のCTL誘導活性(クロスプライミング活性)を有し、10μg/headの投与量で充分CTL誘導活性を示すことが確認された(図11)。
実施例8:ARNAX120の抗腫瘍活性
1.材料及び方法
実施例3に従い、C67BL/6マウス (7週齢,♀)の腰背部にEG7 (2x106 /200 μl PBS)を皮下移植し、day7にPBS(n=5)、ARNAX120#1 (10 μg)(n=4)又はOVA(100 μg)+ARNAX120#1(10 μg)(n=5)を皮下投与し、腫瘍の増殖を経時的に測定した。
2.結果
ARNAX120#1 10μg単独投与でEG7腫瘍の増殖抑制が見られるが、OVA抗原との同時投与で腫瘍を顕著に退縮させることが確認された(図12)。以上の結果から、ARNAXは120塩基長あれば十分に効果を発揮できること、その配列には配列番号1に示される配列中の連続した少なくとも40塩基が含まれていればよいことが確認された。製造効率及びコスト面からは短い核酸のほうが好ましいことから、ARNAX120やARNAX130は実用面で有用なアジュバント候補となり得る。
本発明によれば、PD-1/PD-L1抗体療法の効果や奏効率を改善することができる。したがって、本発明は、がんや感染症など免疫チェックポイント阻害剤(PD-1/PD-L1抗体)を用いた免疫療法が期待される医療分野において有用である。
本明細書中で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書中にとり入れるものとする。
配列番号12:合成DNA(ODN M362)
配列番号13:合成DNA(ODN 2006)
配列番号14:合成DNA(ODN 1668)
配列番号15:合成DNA(ODN 1826)
配列番号16:合成DNA(ODN 2007)
配列番号17:合成DNA(ODN BW006)
配列番号18:合成DNA(ODN 2395)
配列番号19:合成DNA(ODN M362 control)
配列番号20:合成DNA(ODN M362 control_TpC置換体)
配列番号21:合成DNA(ODN M362 control_CpC置換体)
配列番号22:合成DNA(ODN 2006 control)
配列番号23:合成DNA(ODN 2006 control_TpC置換体)
配列番号24:合成DNA(ODN 2006 control_CpC置換体)
配列番号25:合成DNA(ODN 2007 control)
配列番号26:合成DNA(ODN 2007 control_TpC置換体)
配列番号27:合成DNA(ODN 2007 control_CpC置換体)
配列番号28:合成DNA(ODN BW006 control)
配列番号29:合成DNA(ODN BW006 control_TpC置換体)
配列番号30:合成DNA(ODN BW006 control_CpC置換体)
配列番号31:合成DNA(ODN 2395 control)
配列番号32:合成DNA(ODN 2395 control_TpC置換体)
配列番号33:合成DNA(ODN 2395 control_CpC置換体)
配列番号34:合成DNA(ODN 1668 control)
配列番号35:合成DNA(ODN 1668 control_TpC置換体)
配列番号36:合成DNA(ODN 1668 control_CpC置換体)
配列番号37:合成DNA(ODN 1826 control)
配列番号38:合成DNA(ODN 1826 control_TpC置換体)
配列番号39:合成DNA(ODN 1826 control_CpC置換体)
配列番号40:センス鎖用DNA/RNAキメラ分子(ARNAX140)
配列番号41:アンチセンス鎖用合成RNA(ARNAX140)
配列番号42:センス鎖用DNA/RNAキメラ分子(ARNAX120#1)
配列番号43:アンチセンス鎖用合成RNA(ARNAX120#1)
配列番号44:センス鎖用DNA/RNAキメラ分子(ARNAX120#2)
配列番号45:アンチセンス鎖用合成RNA(ARNAX120#2)
配列番号46:センス鎖用DNA/RNAキメラ分子(ARNAX130)
配列番号47:アンチセンス鎖用合成RNA(ARNAX130)

Claims (13)

  1. 免疫チェックポイント阻害剤、及びアジュバント組成物を組み合わせてなる、又は免疫チェックポイント阻害剤、アジュバント組成物、及びがん抗原を組み合わせてなるがんを治療するための医薬であって、
    前記免疫チェックポイント阻害剤が、抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体を含み、
    前記アジュバント組成物が、二本鎖RNAと一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸アジュバントを含み
    前記二本鎖RNAが、配列番号1に示される塩基配列の連続した40塩基以上の配列を含み、全長が100~160塩基長の塩基配列を有する核酸であり、
    前記一本鎖ODNが、CpG ODNにおいてCpGがGpC、TpC、又はCpCに置換された配列又はその15塩基長以上の部分配列からな、前記医薬。
  2. 免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物が併用されることを特徴とする、請求項1に記載の医薬。
  3. 免疫チェックポイント阻害剤とアジュバント組成物が同時又は順次に投与されることを特徴とする、請求項2に記載の医薬。
  4. 二本鎖RNA一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド(一本鎖ODN)から構成される核酸アジュバントを含むアジュバント組成物、又は前記アジュバント組成物及びがん抗原と併用することを特徴とする、抗PD-1抗体又は抗PD-L1抗体を含む免疫チェックポイント阻害剤を有効成分とするがんを治療するための医薬であって、
    前記二本鎖RNAが、配列番号1に示される塩基配列の連続した40塩基以上の配列を含み、全長が100~160塩基長の塩基配列を有する核酸であり、
    前記一本鎖ODNが、CpG ODNにおいてCpGがGpC、TpC、又はCpCに置換された配列又はその15塩基長以上の部分配列からなる、前記医薬
  5. 核酸アジュバントを構成する核酸の末端がリン酸化されていない、請求項1~のいずれか1項に記載の医薬。
  6. 二本鎖RNAが配列番号2~11のいずれかに示される塩基配列を有する核酸か、その連続した100塩基以上の塩基配列を有する核酸である、請求項1~のいずれか1項に記載の医薬。
  7. 二本鎖RNAが配列番号11に示される塩基配列を有する核酸か、その連続した100塩基以上の塩基配列を有する核酸である、請求項1~のいずれか1項に記載の医薬。
  8. 一本鎖ODNが配列番号19~39のいずれかに示される塩基配列又はその15塩基以上の部分配列からなる核酸である、請求項1~のいずれか1項に記載の医薬。
  9. 一本鎖ODNが配列番号19~24のいずれかに示される塩基配列又はその15塩基以上の部分配列からなる核酸である、請求項1~のいずれか1項に記載の医薬。
  10. 一本鎖ODNが15~28塩基長である、請求項1~のいずれか1項に記載の医薬。
  11. 一本鎖ODNを構成するヌクレオチドがフォスフォロチオエート修飾されている請求項1~10のいずれか1項に記載の医薬。
  12. 核酸アジュバントが、配列番号40で示されるセンス鎖と配列番号41で示されるアンチセンス鎖を含む核酸、又は配列番号42で示されるセンス鎖と配列番号43で示されるアンチセンス鎖を含む核酸である、請求項1~11のいずれか1項に記載の医薬。
  13. 核酸アジュバントが、
    1)配列番号40で示されるセンス鎖と配列番号41で示されるアンチセンス鎖を含む、
    2)配列番号42で示されるセンス鎖と配列番号43で示されるアンチセンス鎖を含む、
    3)配列番号44で示されるセンス鎖と配列番号45で示されるアンチセンス鎖を含む、又は
    4)配列番号46で示されるセンス鎖と配列番号47で示されるアンチセンス鎖を含む
    請求項1~12のいずれか1項に記載の医薬。
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