JP6023082B2 - 精神神経性の疾病を処置するためのプロスタグランジンを含む組成物 - Google Patents
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本明細書での「不安障害」は、任意の病理上の不安な疾病が意図され、事実に基づいていない不合理または非論理的なものとして記載される、異なる形態の異常な、病理学的に不安な、恐れの、恐怖症の、および神経の疾病を含む。不安障害は、限定されないが、全般性不安障害、強迫性障害、心的外傷後ストレス障害(PTSD)、広場恐怖症、特定恐怖症、急性ストレス障害、社会恐怖症、パニック発作、月経前症候群、および月経前不快気分障害を含む、社会的な不安からパニック障害までの広範囲の重症を包含する。
本発明は、双極性障害などの、精神神経性の疾病の処置のための代替療法を提供する。本発明の方法および組成物は、GSK−3を阻害することよって精神神経性の疾病(例えば、双極性障害)を処置する際に、1つ以上のプロスタグランジン、またはその誘導体(例えば、ラタノプロスト)を活用する。
GSK−3は、グリコゲンシンターゼをリン酸化するキナーゼとして最初に確認されたが、複数のシグナル伝達経路に関係すると知られている。GSK−3は、グリコゲンシンターゼをリン酸化する活性を有していると元来確認された、プロリン指向性セリン/トレオニンキナーゼである。GSK−3は、2つのアイソフォーム、GSK−3αおよびGSK−3βを含み、本明細書に使用されるように、その両方は用語「GSK−3」によって包含される。GSK−3の核酸およびタンパク質の配列は、例えば、Genbank ID NM−019884(ヒトGSK−3α)、Genbank IDNM−002093(ヒトGSK−313)、および米国特許出願第2003/0163836号に記載され、これらは、このような教示のために引用によって組み込まれる。
本発明の方法および組成物は、精神神経性の疾病を有する被験体を処置するために使用され得る。特に、本発明は、精神障害(例えば、双極性障害、統合失調症、分裂病様障害、統合失調感情障害、妄想性障害、薬物誘発性の精神障害、鬱病、アルツハイマー病または他の認知症による日没症候群、および外傷後ストレス障害)、認知障害(例えば、健忘障害、加齢関連認知低下、および神経炎症性の疾病に関する認知症(例えば、多発性硬化症)(MS)、ヒト免疫不全ウィルス(HIV)関連の認知症、自閉症、ハンチントン病、ピック病、クロイツフェルト−ヤコブ病、脳卒中、筋萎縮性側索硬化症(ALS)、アルツハイマー病、パーキンソン病、および虚血傷害)、不安障害(例えば、全般性不安障害、強迫性障害、社会恐怖症、パニック発作、月経前症候群、および月経前不快気分障害)、及び/又は注意障害(例えば、注意欠陥多動性障害、トゥーレット症状群、摂食障害、および自閉症)を有する被験体を処置するために使用され得る。
<投与>
本発明の組成物は、被験体において精神神経性の疾病(例えば、双極性障害)を処置する、予防する、改善する、その進行を阻害する、またはその1つ以上の症状の重症度を低下させるために被験体(例えば、ヒト)に投与され得る。例えば、本発明の組成物を使用して処置することができる双極性障害の症状の例は、例えば、鬱病、躁病、精神病、および減量または体重増加などの肉体的変化を含む。これらの症状、および処置中のそれらの消散は、例えば、身体検査中に医師によって又は当該技術分野に既知の他の試験および方法によって測定され得る。
本発明の組成物の用量または本発明の組成物を使用する処置の数は、被験体の精神神経性の疾病の発症、または進行の重症度に基づいて(例えば、双極性障害の1つ以上の症状の重症度に基づいて)増加または減少し得るが、一般的に、一週間当たりで、1回以上、1回当たり各々の薬剤の約0.00001%から約0.2%(w/v)までの範囲に及ぶ(例えば、一週間当たり、2、3、4、5、6、または7回、またはそれ以上))。好ましい投与量は、約0.001%から約0.02%(w/v)のラタノプロストまたはトラボプロストおよび約0.01%から約0.2%(w/v)までのビマトプロストを含む。
本発明の組成物は、プロスタグランジン、およびその誘導体(例えば、ラタノプロスト)を含む。本発明の組成物の治療上の製剤は、所望の程度の純度を有している活性成分を、随意の生理学的に許容可能な担体、賦形剤、または安定剤と混合することによって、当該技術分野に既知の標準方式を使用して調製される(Remington's Pharmaceutical Sciences, 21th ed., A. Gennaro, 2005, Lippincott, Williams & Wilkins, Philadelphia, PA)。許容可能な担体は、食塩、またはリン酸塩、クエン酸塩、および他の有機酸などのバッファー;アスコルビン酸を含む抗酸化剤;低分子量(約10未満の残基)ポリペプチド;血清アルブミン、ゼラチンまたは免疫グロブリンなどの、タンパク質;ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー、グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニンまたはリジンなどの、アミノ酸;単糖類、二糖類、およびグルコース、マンノースまたはデキストリンを含む他の炭水化物;EDTAなどのキレート剤;マンニトールまたはソルビトールなどの糖アルコール;ナトリウムなどの、塩を形成するカウンターイオン;及び/又はTWEEN(商標)、PLURONICS(商標)、またはPEGなどの、非イオン性界面活性剤を含む。
本明細書に記載される実験は、以下の物質および方法を使用して実行され得る。
株W1118ハエ(Bloomington Stock Center, Bloomington, IN, USA)を、標準のコーンミール寒天の食物上で25℃で育てた。
薬物化合物の貯蔵溶液を、ジメチルスルホキシド(DMSO)細胞培養勾配中で10mMの濃度で製剤した(Sigma Aldrich, St. Louis, MO, USA)。羽の成虫原基の培養物について、合計30の三齢(産卵の72時間後)の羽の成虫原基を、鋭いタングステン針を使用して解剖した。その後、成虫の組織を、処置化合物(例えば、ラタノプロスト、PGE2、PGF2α、ウノプロストン、ビマトプロスト、フルプロステノール)またはDMSOのビヒクル対照で補足した、X培地の1mLの溶液中に置いた(Davis and Shearn, Science, 196: 438−440, 1977)。その後、成虫原基を、下記に述べられるように様々な実験のためにさらに処理した。
Dll lacZ成虫原基(Sullivan et al., Drosophila Protocols, 212, 2000)における発現をアッセイするために、羽の原基を、グルタルアルデヒド中で固定し、X−gal溶液を、インサイツでのベータ−ガラクトシダーゼ活性に関してアッセイするために使用した。原基の免疫蛍光染色を、記載されるように実行した(Basler and Struhl, Nature, 368: 208−214, 1994)。Dllに対する抗体(Duncan et al., Genes Dev., 12: 1290−1303, 1998)およびGFP(Molecular Probes Inc., Eugene, OR, USA)および二次抗体(Vector Labs, Burlington, ON, Canada)を、標識化のために使用した。その後、標識化した成虫原基を、DAPI封入剤(Vector Labs, Burlington, ON, Canada)中に置き、LSM Zeissソフトウェアを有する二光子のZeiss共焦点顕微鏡を使用して画像化した。
ヒト胎生腎293T(HEK293T)細胞、U87MG星細胞腫およびヒト乏突起膠細胞の細胞株MO3−13を、5%の加熱不活性化したウシ胎児血清で補足した、Dubelco Minimal Eagle Media(DMEM)(Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)中で成長させた。細胞を、処置前に70%のコンフルエンスまで成長させた。HEK293T細胞を、無血清のDMEM中で、10mMのラタノプロスト、ウノプロストン、ビマトプロスト、フルプロステノール、PGE2、およびPGF2αによって個々に処置した。細胞を、5%のCO2インキュベーター中で37℃で3時間、薬物に曝した。U87MG細胞を、処置前に70%のコンフルエンスまで成長させた。細胞を、ウシ胎児血清を欠くDMEM中で、DMSOビヒクル(NT)によって、または1、5および10μMのラタノプロストによって個々に処置した。細胞を、5%のCO2インキュベーター中で37℃で6時間、処置に曝した。ヒト乏突起膠細胞の細胞株MO3−13を、McLaurin et al.に記載される方法に従って成長させ、分化した( McLaurin, J., Trudel, G.C., Shaw, I.T., Antel, J.P., and Cashman, N.R., J. Neurobiol., 26: 283−293, 1995)。血清飢餓の三日目に、細胞を、DMSOビヒクル(NT)によって、または1、5および10μMのラタノプロストによって個々に処置した。細胞を、5%のCO2インキュベーター中で37℃で6時間、処置に曝した。
CREBおよびセリン−133(S133)リン酸化したCREBの検出のために、セロトニン受容体5HT2A、TCF/LEF1、BDNFおよびTNFの総タンパク質抽出物を、pH7.5、3Mの尿素の、リン酸緩衝食塩水(PBS)中で、焼結ガラスの組織ホモジェナイザー(Wheaton, Millville, NJ, USA)を使用して、細胞培養物から調製した。β−カテニンの検出のために、細胞培養物を、PBSで洗浄し、トリプシン処理し、4分間1,000rpmでペレットにした。細胞ペレット剤を、洗浄し、5分間氷浴中で、10mMのHEPES(pH7.5)、1.5mMのMgCl2、10mMのKCl、0.5mMのDTT、およびEDTAのないプロテアーゼインヒビター(Roche, Laval, QC, Canada)から成る冷たい低張性のバッファーで再懸濁した。その後、混合物を、ダンス型ホモジェナイザーを使用して均質化し、細胞残屑を、4℃で遠心分離によってペレットにした。細胞質分画を、β−カテニンをアッセイするために回収し、使用した。
DMSO、1、5または10μMのラタノプロストによって処置されていない又は処置された細胞からの細胞培養培地を、細胞培養皿から15mLのスクリューキャップのポリプロピレンチューブに収集した。培養物からの細胞残屑を、臨床用遠心機を使用して、4℃で5分間、2000rpmで遠心分離によってペレットにした。U87MG星細胞腫およびMO3−13乏突起膠細胞の細胞株によって分泌されたBDNFの相対量を、免疫スロットブロットの方法によって測定し、該方法において、200μLの順化培地を、真空下でBiodot(SF)限外濾過ユニット(Bio−Rad Laboratories, Mississauga, ON, Canada)において水中で予め湿らされたニトロセルロース膜に三連で加えた。各サンプルを、湿ったニトロセルロース膜上に加えた。ろ過濃縮水を含有しているニトロセルロース膜を、室温で1時間、0.01%のTween20(PBST)を含有するリン酸緩衝食塩水で可溶性にした、2%のAdvance ECL遮断溶液(GE Healthcare)の溶液によって遮断した。膜を、遮断溶液中で主要な抗BDNF抗体(Abcam, Cambridge, MA)によって4℃で一晩インキュベートし、その後、PBSTによって3回洗浄した(それぞれ15分)。遮断溶液中で希釈したホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)によって共役された二次的なIgGを、膜に加え、1時間室温でインキュベートした。上記のように膜を洗浄した後に、結合された二次抗体を、ChemiDoc(商標)MP Imaging System (Bio−Rad Laboratories)を使用して、ECL Advance(商標)ウエスタンブロットHRP基質(GE Healthcare)によって検出した。BDNFの相対量を、ImageLab(商標)ソフトウェア(BioRad)を使用することによって測定した。平均値間の統計的有意差を、スチューデントt検定によって評価した。統計的有意差を、5%に設定し、エラーバーは、単一基準の偏差を示した。
およそ8週目にさしかかる年齢である且つ25.9gの平均体重を有する、DBA/2J株マウス(Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME, USA)を得た。マウスを、研究開始前の少なくとも3日間慣らせ、貧弱な状態の動物を、順応期間の間には除いた。すべてのマウスを、70°F+/−5°Fの温度および50%+/−20%の相対湿度で、HEPA濾過空気で満たした動物飼育室に、同一の条件下で収容した。動物飼育室では、12時間の明/暗サイクルがある状態、および薄明かりなしでの12時間の明/暗サイクルのない状態で、毎時最低12〜15回の換気を維持した。無菌のBed−O−Cobs(登録商標)ベッディング(bedding)を使用し、1週当たり最低1回変更した。すべての動物に、無菌のPurina Labdiet(登録商標)5053齧歯類の食事を与え、水を無制限に与えた。
研究の開始時に、60のマウスを、10の動物の6つの群に無作為に分けた。各動物を、マウスの尾の上の印によって識別した。試験セッションの開始前に、表1に概説されるように、マウスに、ラタノプロスト、アンフェタミン、リチウム、または食塩水を投与した。すべての薬液を、単一の急性用量として投与した。薬液を、無菌の食塩水(0.9%)中で調製し、5mL/kgの容量で、腹腔内(IP)のキャビティーを介して投与した。その後、マウスを、拡散した白色光で照らされたオープンフィールドチャンバー(22x22x15cm)において、単一の20分のセッションに曝した。この間に、移動した距離を、TopScan(Clever Sys, Reston, VA, USA)のビデオトラッキングソフトウェアを使用して、自動的に記録した。
<ショウジョウバエの羽の成虫原基におけるDistalless LacZ発現>
ショウジョウバエを使用し、GSK−3機能を、発達する羽の組織においてWnt/Wg標的遺伝子のDistalless(Dll)の転写を使用して、インビボで明白に且つ高特異性を有してアッセイした。GSK−3は、この組織においてDllの阻害に必要である。GSK−3活性の損失は、異所性のDll発現につながる。最初に、双極性障害などの、精神神経性の障害の処置のために、2つの既知の薬物(リチウムおよびバルプロエート)と比較して、ラタノプロストの効果を試験するためのこのアッセイを使用した。「野生型の」(すなわち、突然変異でない)正常な三齢の幼虫からの成虫原基のDMSO処置は、Dll発現に対する最小の効果を明らかにしたが、1mMのリチウムまたは1mMのバルプロエートのいずれかによる原基の処置は、結果としてDll発現の活性化をもたらした(図1Aおよび1B)。ラタノプロスト(20μM)は、結果的にDll発現の増加をもたらし(図1Aおよび1B)、これは、リチウムおよびバルプロエートに類似して、ラタノプロストがGSK−3シグナル伝達も阻害したことを示している。このアッセイを使用することで、プロスタグランジンF2α誘導体、ラタノプロストの増加する用量(1μM、5μM、10μM、および20μM)を用いた羽の成虫原基の処置が、すべて結果的に、Dllの有意な活性化をもたらし、故に、DMSO対照ビヒクルによる処置と比較して、インビボでのGSK−3活性の阻害をもたらしたことが分かった(図2Aおよび2B)。次に、他のプロスタグランジン(PG)およびPG誘導体(ウノプロストン、フルプロステノール、ビマトプロスト、プロスタグランジンF2−α、およびプロスタグランジンE2)が、ラタノプロストの効果と類似した有意な効果を示すことを確認した(図3Aおよび3B)。これらの実験では、羽の成虫原基を、12時間かけて、1μMのPGまたはPG誘導体(例えば、ウノプロストン、ビマトプロスト、フルプロステノール)によって処置した。一緒に、これらのデータは、リチウムおよびバルプロエートに類似して、PGおよびPG誘導体がインビボでGSK−3を阻害することを示している。
GSK−3はまた、Wnt/Wgシグナル伝達経路のグリコーゲン沈着に対する独立した経路を介してグリコーゲン沈着において機能する。GSK−3は、グリコーゲン合成の律速段階を触媒する、グリコゲンシンターゼのリン酸化および不活性化によってグリコーゲン沈着経路で機能する。PGおよびPG誘導体がGSK−3活性を阻害することをさらに確認するために、三齢のキイロショウジョウバエの幼虫からの脂肪体組織を、ビヒクル(DMSO)または10および20μMのラタノプロストによって処置し、グリコーゲン蓄積に対する薬物療法の効果をモニタリングした。ラタノプロストによる脂肪体組織の処置は、GSK−3活性を阻害するラタノプロストと一致して、投与量依存の方法で、グリコーゲン蓄積の増加を結果的にもたらした(図4)。
<β−カテニン安定化>
GSK−3阻害が、結果的に、哺乳動物細胞にもたらされることを確認するために、HEK293T細胞を、DMSOビヒクル、10μMのPG(例えば、PGF2α、PGE2)、または10μMのPG誘導体(例えば、ラタノプロスト)によって処置した。PGまたはPG誘導体で処置された細胞からのタンパク質抽出物のウエスタンブロット解析は、DMSOで処置された細胞からのレベルと比較して、細胞質のβ−カテニンの増加したレベルを示した(図5)。GSK−3によってリン酸化されると、生体沈殿媒介性の分解が原因で、細胞質のβ−カテニンレベルは低い。それ故、細胞質のβ−カテニンの基礎レベルは低い。PGおよびPG誘導体は、細胞質のβ−カテニンレベルを安定させ、これは、これらの化合物が哺乳動物細胞におけるGSK−3を阻害することも示している。
多くの精神神経性の疾病を、(例えば、CREB転写因子の活性化によって)細胞生存に関係する多くの経路を制御する、気分安定薬および抗鬱薬によって処置する。CREBは、S133でリン酸化によって活性化されることによって、CREB結合タンパク質との相互作用および遺伝子発現の制御が可能となる。それ故、CREBリン酸化は、双極性の疾患などの精神神経性の疾病のための関連する臨床的代用薬と考えられ得る。
増殖因子ファミリーのメンバーである、脳由来神経栄養因子(BDNF)は、精神神経性の疾病(例えば、双極性障害)に関連して神経可塑性の変化に寄与するのに重要であり得る。特に、双極性障害の被験体は、鬱病及び/又は躁病のエピソード中に血清において低下したレベルのBDNFを有し、BDNFレベルは、気分正常において正常に戻ることが分かった(de Oliveira, G.S., Cereser, K.M., Fernandes, B.S., Kauer−Sant'Anna, M. , Fries, G.R., Stertz, L., Aguiar, B., Pfaffenseller, B., and Kapczinski, F. J., Psychiatr Res., 43: 1171−1174, 2009; Tramontina, J.F., Andreazza, A.C., Kauer−Sant'anna, M., Stertz, L., Goi, J., Chiarani, F., and Kapczinski, F., Neurosci Lett., 452: 111−113, 2009; Lin, P.Y., Neurosci Lett., 466: 139−143, 2009; Fernandes, B.S., Gama, C.S., Cereser, K.M., Yatham, L.N., Fries, G.R., Colpo, G., de Lucena, D., Kunz, M., Gomes, F.A., およびKapczinski, F., J. Psychiatr. Res. 45: 995−1004, 2011)
次に、膠芽腫U87細胞株における他の双極性障害のバイオマーカーに対するラタノプロスト処置(1μM、5μM、および10μM)の効果を検査した。処置されていない細胞と比較して、ラタノプロストで処置された細胞は、比較的一定のままであるCREBタンパク質の合計レベルにもかかわらず、増加したレベルのセロトニン受容体5HT2A、転写因子TCF/LEF1、BDNF、およびCREB上のSer133でのリン酸化を有することが分かった(図7)。ラタノプロストによるU87細胞の処置はまた、結果的に、低下したレベルの炎症性のサイトカインTNF−αをもたらした(図7)。これらの結果は、ラタノプロストによって処置されたその膠芽腫細胞が、リチウムによって処置された細胞の膠芽腫に対する多くの反応表現型を共有することを示す。
本明細書のデータは、PGおよびPG誘導体が、双極性障害などの精神神経性の疾病を処置するのに有効であり得ることを示す。それ故、マウスの双極性障害のオープンフィールドモデルにおけるラタノプロストの有効性を評価した。DBA/2Jマウスを、10の動物の6つの群に分けた。マウスを、試験の1時間前に、ビヒクル、ラタノプロスト(40mg/kg)、またはリチウム(6mg/kg)によって処置した。オープンフィールドチャンバーにおける配置の直前に、表1に記載されるように、0.5mg/kgのアンフェタミンまたは食塩のいずれかを群に投与した。
マウスのオープンフィールド試験の行動解析の後に、マウスを安楽死させ、それらの脳を解剖し、大脳縦裂に沿って二分した。ビヒクル(食塩水)、ラタノプロストまたはリチウムによって処置されたマウスからの脳サンプルを、低張性のバッファーでの抽出によるβ−カテニン安定化のために処理した。安定したβ−カテニンのレベルを、ウエスタンブロットよって分析し、(1つの群当たり3匹のマウスの平均相対量として表わされた)β−カテニンの相対量を定量化した。ラタノプロストで処置したマウスおよびリチウムで処置したマウスの両方は、食塩水によって処置されたマウスと比較して、著しく増加したレベルのβ−カテニンを有し(図9)、これは、脳内でのバイオアベイラビリティを示唆している。
本発明は、その具体的な実施形態に関連して記載されているが、さらなる修正が可能であり、一般に、本発明の原理に従い、本発明が関係する当該技術分野内の既知の又は慣習的な実施内で生じ、前に明記された本質的な特徴に適用され得る、本発明の開示からの逸脱を含む、本発明の任意の変更、使用、適応を本出願が包含するように意図されることが理解されるであろう。
Claims (26)
- 双極性障害を有する被験体を処置するための薬剤の製造における、プロスタグランジン、そのエステル又はアミド、またはその薬学的に許容可能な塩を含む治療上有効な量の医薬組成物の使用であって、
プロスタグランジンは、プロパン−2−イル−(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(3R)−3−ヒドロキシ−5−フェニルペンチル]シクロペンチル]−ヘプト−5−エノアート(ラタノプロスト)、プロパン−2−イル−(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E,3R)−3−ヒドロキシ−4−[3−(トリフルオロメチル)フェノキシ]ブテ−1−エニル]シクロペンチル]−ヘプト−5−エノアート(トラボプロスト)、(Z)−7−[(1R,2R,3R)−3−ヒドロキシ−2−[(E)−(3S)−3−ヒドロキシ−1−オクテニル]−5−オキソ−シクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(PGE2)、(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E)−(3S)−3−ヒドロキシ−1−オクテニル]−シクロペンチル]−5−ヘプテン酸(PGF2α)、(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−(3−オキソデシル)シクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(ウノプロストン)、(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E,3S)−3−ヒドロキシ−5−フェニルペンタ−1−エニル]シクロペンチル]−N−エチル−ヘプト−5−エナミド(ビマトプロスト)、(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E,3R)−3−ヒドロキシ−4−[3−(トリフルオロメチル)フェノキシ]ブテ−1−エニル]シクロペンチル]−ヘプタ−5−エン酸(フルプロステノール)、(Z)−7−[(1R,3R)−2−[(E,3R)−3−ヒドロキシ−4,4−ジメチルオクト−1−エニル]−3−メチル−5−オキソシクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(トリモプロスチル)、(Z)−7−[(1R,3R,5S)−2−[(E,3R)−4−(3−クロロフェノキシ)−3−ヒドロキシブテ−1−エニル]−3,5−ジヒドロキシシクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(クロプロステノール)、(Z)(−7−[(1S,2R,3R,5S)−2−[(2S)−3−(3−クロロフェノキシ)−2−ヒドロキシプロピル]スルファニル−3,5−ジヒドロキシシクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(ルプロスチオール)、(Z)−7−[(2R)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E)−2−[2−(フェノキシメチル)−1,3−ジオキソラン−2−イル]エテニル]シクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(エチプロストン)、(E)−7−[3,5−ジヒドロキシ−2−[(E)−3−ヒドロキシ−4−チオフェン−3−イルオキシブテ−1−エニル]シクロペンチル]−ヘプト−5−エン酸(チアプロスト)、プロパン−2−イル−(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−(3−オキソデシル)シクロペンチル]−ヘプト−5−エノアート(イソプロピルウノプロストン)、(Z)−7−[(1R,2R,3R)−3−ヒドロキシ−2−[(E,3R)−3−ヒドロキシ−4−(フェノキシ)ブテ−1−エニル]−5−オキソシクロペンチル]−N−メチルスルホニルヘプト−5−エナミド(スルプロストン)、メチル(Z)−7−[(1R,3R,5S)−2−[(3S)−5−シクロヘキシル−3−ヒドロキシペンタ−1−イニル]−3,5−ジヒドロキシシクロペンチル]ヘプト−5−エノアート(アルファプロストール)、およびメチル(2Z,5Z)−7−[(2R)−2−[(E,3R)−4−(3−クロロフェノキシ)−3−ヒドロキシブテ−1−エニル]−3,5−ジヒドロキシシクロペンチル]ヘプタ−2,5−ジエノアート(デルプロステネート)からなる群から選択されることを特徴とする、使用。 - 薬剤が、約1pg/mlから約10ng/mlまでの、プロスタグランジン、またはそのエステル又はアミドの安定状態の血漿濃度をもたらすのに十分な量での使用のために製剤されることを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- プロスタグランジン、そのエステル又はアミド、またはその薬学的に許容可能な塩は、重水素濃縮されることを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- プロスタグランジン、またはそのエステル又はアミドは、ニトロシル化されることを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- プロスタグランジン、またはそのエステル又はアミドは、プロパン−2−イル−(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(3R)−3−ヒドロキシ−5−フェニルペンチル]シクロペンチル]−ヘプト−5−エノアート(ラタノプロスト)であることを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- ラタノプロストは、約0.00001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項5に記載の使用。
- ラタノプロストは、約0.0001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項6に記載の使用。
- ラタノプロストは、約0.001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項7に記載の使用。
- ラタノプロストは、約0.001%から約0.02%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項8に記載の使用。
- プロスタグランジン、またはそのエステル又はアミドは、プロパン−2−イル−(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E,3R)−3−ヒドロキシ−4−[3−(トリフルオロメチル)フェノキシ]ブテ−1−エニル]シクロペンチル]−ヘプト−5−エノアート(トラボプロスト)であることを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- トラボプロストは、約0.00001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項10に記載の使用。
- トラボプロストは、約0.0001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項11に記載の使用。
- トラボプロストは、約0.001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項12に記載の使用。
- トラボプロストは、約0.001%から約0.02%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項13に記載の使用。
- プロスタグランジン、またはそのエステル又はアミドは、(Z)−7−[(1R,2R,3R,5S)−3,5−ジヒドロキシ−2−[(E,3S)−3−ヒドロキシ−5−フェニルペント−1−エニル]シクロペンチル]−N−エチル−ヘプト−5−エナミド(ビマトプロスト)であることを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- ビマトプロストは、約0.00001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項15に記載の使用。
- ビマトプロストは約0.0001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項16に記載の使用。
- ビマトプロストは、約0.001%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項17に記載の使用。
- ビマトプロストは、約0.01%から約0.2%(w/v)までの濃度で医薬組成物中に存在することを特徴とする、請求項18に記載の使用。
- 薬剤が、追加の治療剤との使用のために製剤され、ここで、プロスタグランジン、そのエステル又はアミド、またはその薬学的に許容可能な塩、および追加の治療剤は、各々、共に双極性障害の処置に有効な量で製剤されることを特徴とする、請求項1乃至19のいずれか1項に記載の使用。
- 薬剤が、追加の治療剤を含むことを特徴とする、請求項20に記載の使用。
- 追加の治療剤は、抗不安薬、抗精神病剤、抗うつ薬、神経抑制薬、精神安定剤、メラトニンアゴニスト、メラトニンアンタゴニスト、メラトナジック剤、ベンゾジアゼピン、バルビツル酸塩、5−ヒドロキシトリプタミン(5−HT)アンタゴニスト、モノアミン酸化酵素阻害剤、リチウム、バルプロ酸、バルプロ酸ナトリウム、ラモトリジン、カルバマゼピン、ガバペンチン、トピラマート、選択的セロトニン再吸収阻害剤(SSRI)、特異的モノアミン再吸収阻害剤、抗コリン薬、カテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤、モノアミン酸化酵素−B(MOA−B)阻害剤、抗酸化剤、A2Aアデノシン受容体アンタゴニスト、コリン作動性アゴニスト、セロトニン受容体アンタゴニスト、ドーパミン受容体アゴニスト、抗てんかん薬、抗アルツハイマー剤、ベータセクレターゼ(BACE)阻害剤、ガンマセクレターゼ阻害剤、3−ヒドロキシ−3−メチルグルタリル−コエンザイムA(HMG−CoA)リダクターゼ阻害剤、非ステロイド系抗炎症薬(エヌセイド)、および5−HT1A受容体アゴニストまたは部分アゴニスト、からなる群から選択されることを特徴とする、請求項20または21に記載の使用。
- 双極性障害は、双極1型障害、双極2型障害、気分循環症、混合した双極性障害、急速に循環する双極性障害、軽躁病、気分変調症、または急性躁病であることを特徴とする、請求項1−22のいずれか1項に記載の使用。
- 被験体はヒトであることを特徴とする、請求項1乃至23のいずれか1項に記載の使用。
- 薬剤が、筋肉内に、静脈内に、皮内に、動脈内に、腹腔内に、病巣内に、頭蓋内に、関節内に、前立腺内に、胸膜内に、気管内に、鼻腔内に、硝子体内に、膣内に、直腸内に、局所的に、腫瘍内に、腹膜に、皮下に、結膜下に、血管内に、粘膜に、心膜内に、臍帯内に、眼内に、経口的に、局所的に、局部的に、吸入、注射、注入、持続注入によって、直接的に局所的な灌流を浴びる標的細胞、カテーテル、洗浄によって、クレーム、または脂質組成において使用するために製剤されることを特徴とする、請求項1乃至24のいずれか1項に記載の使用。
- 薬剤が、薬学的に許容可能な担体を含むことを特徴とする、請求項1乃至25のいずれか1項に記載の使用。
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