JP5360960B2

JP5360960B2 - 組換え植物における目的遺伝子産物の高生産方法

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Publication number: JP5360960B2
Application number: JP2008282252A
Authority: JP
Inventors: 浩江面; 剛溝口; 直也福田; 京子棚瀬; 正良平井; めぐむ矢野
Original assignee: 国立大学法人筑波大学
Priority date: 2008-10-31
Filing date: 2008-10-31
Publication date: 2013-12-04
Anticipated expiration: 2028-10-31
Also published as: JP2010104339A

Description

本発明は、ターミネーターを利用した目的の遺伝子産物の植物における高生産方法に関する。

近年、遺伝子の高発現化及びタンパク質の高蓄積化に関わる技術の開発が行われている。例えば、改変プロモーターの開発や新規プロモーターの単離に基づき、目的の遺伝子を高発現化し、さらに安定的発現や組織特異的発現を図る技術が報告されている（例えば、特許文献１〜３）。また、単離されたプロモーターの５'上流配列を外来遺伝子と連結して組換え導入することにより、その導入遺伝子の発現を安定化する技術についても報告されている（非特許文献１、特許文献４）。一方、単離されたターミネーター配列やその改変配列が遺伝子発現量やタンパク質生産量に及ぼす影響についてはほとんど報告がない。

一般に、遺伝子組換え作物の作製には、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）のTiプラスミド由来のノパリン合成酵素遺伝子のターミネーター配列（nosターミネーター）が使われる場合が多い。しかし不都合なことに、このnosターミネーターの遺伝子転写における終止機能は不完全であり、nosターミネーターより下流の塩基配列も転写してしまうリードスルー現象が知られている（非特許文献２、非特許文献３）。また食品・医薬品等の製造のためには、バクテリア由来のターミネーターよりも、植物体での組換え生産により適した植物由来のターミネーターを利用することが好ましいと考えられる。

一方、ミラクルフルーツ（Richadella dulcifica）は、その果実中にミラクリンと呼ばれる食味修飾タンパク質を含んでいることで知られる植物である。ミラクリンは、1968年にミラクルフルーツの機能性成分であることが同定された（非特許文献４）。その後、ミラクリンタンパク質の全アミノ酸配列が決定され（非特許文献５）、その遺伝子の完全長cDNA配列も報告されている（非特許文献６；GenBankアクセッション番号D38598）。しかしその遺伝子発現制御機構についてはほとんど知られていない。

特開２００４−６５０９６特開２００８−１５４４９６特開２０００−４１６８８特開２００１−１４５４９１ Satoh et al., J. Biosci. Bioeng. (2004) 98(1)，p.1-8 Windels et al., Eur. Food Res. Technol. (2001) 213, p.107-112 Rang et al., Eur. Food Res. Technol. (2005) 220, p.438-443 Kurihara and Beidler, Science (1968) 161(847)，p.1241-1243 Theerasilp et al., J Biol Chem. (1989) 264(12), p.6655-6659 Masuda et al., Gene (1995) 161, p.175-177

本発明は、組換え植物において目的のタンパク質を高生産させる方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意検討を重ねた結果、遺伝子産物の組換え生産において、ミラクリン遺伝子ターミネーター領域内の配列を目的遺伝子下流に配置して用いることによりその目的遺伝子の遺伝子産物を高生産させることができることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は以下を包含する。
[1]以下の（ａ）〜（ｃ）のいずれかのDNAからなる、ターミネーター。
（ａ）配列番号３で示される塩基配列からなるDNA
（ｂ）配列番号２の塩基番号１から、塩基番号４５０〜５５０のいずれかまでの塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーターと比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNA
（ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）のDNAの塩基配列において１若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーターと比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNA
[2]プロモーター及び遺伝子挿入部位の下流に連結された上記[1]に記載のターミネーターを含む、発現ベクター。
[3]プロモーターが植物プロモーターである、上記[2]に記載の発現ベクター。
[4]プロモーターがカリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターである、上記[2]に記載の発現ベクター。
[5]遺伝子挿入部位に挿入された遺伝子をさらに含む、上記[2]〜[4]に記載の発現ベクター。
[6]遺伝子の下流に連結された上記[1]に記載のターミネーターを含む、DNA構築物。
[7]前記ターミネーターが、プロモーター及びその制御下に配置された遺伝子の下流に連結されている、上記[6]に記載のDNA構築物。
[8]プロモーターが植物プロモーターである、上記[7]に記載のDNA構築物。
[9]プロモーターがカリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターである、上記[7]に記載のDNA構築物。
[10]上記[2]〜[5]に記載の発現ベクター又は上記[7]〜[9]に記載のDNA構築物を含む、形質転換体。
[11]形質転換植物である、上記[10]に記載の形質転換体。
[12]上記[5]に記載の発現ベクター、又は上記[7]〜[9]に記載のDNA構築物を植物細胞に導入することを特徴とする、植物において前記遺伝子の遺伝子産物を組換え生産させる方法。

本発明によれば、組換え植物において導入遺伝子の遺伝子産物の生産量を効果的に増加させることができる。

以下、本発明を詳細に説明する。
１．本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターとその取得
本発明は、ミラクリンタンパク質をコードする遺伝子（ミラクリン遺伝子）のターミネーター領域内の配列を含むDNA断片が、ターミネーター機能として、転写終結機能と共に、その制御下にある遺伝子から発現される遺伝子産物の生産量を効果的に向上させる発現量調節的な機能を有するという驚くべき知見に基づくものである。

本発明において「ターミネーター」とは、その上流に連結された遺伝子の転写（mRNAの合成）を終結させる機能（転写終結機能）を少なくとも有する核酸を意味する。この転写終結機能は、当業者であれば、例えば、慣用されるプロモーター、構造遺伝子、及び当該ターミネーターの順に連結した核酸構築物を含むベクターを用いて容易に確認することができる。

本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターは、具体的には、ミラクルフルーツ（Richadella dulcifica）由来のミラクリン遺伝子のORF（オープンリーディングフレーム）の下流領域の一部の塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）と比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNAである。

好適な１つの実施形態では、この本発明のミラクリン遺伝子ターミネーターは、より具体的には、以下の（ａ）〜（ｃ）のDNAを含むものである。
（ａ）配列番号３で示される塩基配列からなるDNA。この配列番号３で示される塩基配列は、ミラクルフルーツ（Richadella dulcifica）からミラクリン遺伝子のターミネーター領域として単離されたDNA断片の塩基配列（配列番号２）中の、塩基番号１から塩基番号５０７までの塩基配列に相当する。
（ｂ）配列番号２の塩基番号１から始まり、塩基番号４５０〜５５０のいずれかまで（より好ましくは、塩基番号４８０〜５３０のいずれかまで、さらに好ましくは塩基番号５００〜５１０のいずれかまで）の塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）と比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNA。
（ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）のDNAの塩基配列において１若しくは複数個（２〜４０個、好ましくは数個（２〜９個））の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）と比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNA。

本発明において、本発明に係るDNA（ターミネーター）についての「ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）と比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能」とは、当該DNA（ターミネーター）による転写終結作用を受けるように当該ターミネーターの上流に連結された目的の遺伝子をさらにその上流にプロモーターを連結して発現誘導させた場合に、その目的の遺伝子から発現される遺伝子産物（mRNA、rRNA等のRNA又はタンパク質、より好ましくはタンパク質）の量を、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）を同条件で使用した場合と比較して増加させるように転写翻訳機構を調節する機能を意味する。本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターは、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）を同条件で使用した場合と比較して、例えば1.2倍〜50倍、典型的には2倍〜10倍、より一般的には5倍〜7倍の発現産物（遺伝子産物）が目的の遺伝子から生産（又は蓄積）されるように、遺伝子の転写翻訳機構を制御することができる。この本発明に係るターミネーターによる目的の遺伝子の発現産物量を増加させる効果は、例えば、目的の遺伝子として、当業者に公知のレポーター遺伝子（例えば、β-グルクロニダーゼ（GUS）遺伝子）を使用し、後述の実施例に記載の手順に従って、そのレポーター活性を測定する手法を用いて好適に調べることができる。

このような本発明に係るターミネーターによる遺伝子の発現産物量の増加は、遺伝子から転写されるmRNAの安定性をそのターミネーターが調節して分解を抑制することにより、もたらされると考えられた。本発明に係るターミネーターが有する、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させる機能は、好ましくは、植物（より好ましくは、被子植物、さらに好ましくはナス科植物、特に好ましくはトマト）の細胞においてより顕著に発揮される。

本発明のミラクリン遺伝子ターミネーターは、上記のミラクリン遺伝子ターミネーターの塩基配列（例えば、配列番号３の塩基配列）に基づいて、常法により単離することができる。例えば、ミラクルフルーツの葉から常法により抽出されたゲノムDNA等の核酸を鋳型とし、本発明のミラクリン遺伝子ターミネーターの塩基配列に基づいて設計されるプライマーセットを用いたPCR法によってDNA増幅断片として取得することができる。得られたDNA増幅断片は、常法により抽出・精製することが好ましい。あるいは、本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターであるDNA又はその一部を用いてプローブを作製し、それをミラクルフルーツから抽出されたゲノムDNA断片等に対してハイブリダイズさせることにより、本発明に係るターミネーターを取得することもできる。本発明のミラクリン遺伝子ターミネーターはまた、化学合成法を利用して合成してもよい。

本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターは、具体的には、実施例に記載のようにしてミラクルフルーツ（Richadella dulcifica）から単離することもできる。例えば、ミラクルフルーツから抽出したゲノムDNAを鋳型とし、3'側プライマー（5'-TTT GAA TTC CTA CAA CGT TAC GAA ACG-3'（配列番号１９））と、5'側プライマー（5'-TTT GAG CTC TTG GGT TTG GGG GTG GTT TTT CCA-3'（配列番号２０））を用いたPCR増幅により、本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを含むDNA断片を取得することができる。

また本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターは、天然源から単離されたミラクリン遺伝子ターミネーターの塩基配列を、部位特異的突然変異誘発法等の変異導入法を用いて改変することにより作製してもよい。変異導入には、Kunkel法、Gapped duplex法等の公知の手法又はこれに準ずる方法を採用することができる。これらの変異導入は、例えば市販の部位特異的突然変異誘発キット（例えばMutan^(R)-K、Mutan^(R)-Super Express Km、PrimeSTAR^(R) Mutagenesis Basal Kit（いずれもTAKARA BIO INC.社製））などを用いて当業者であれば容易に行うことができる。

なお、得られたミラクリン遺伝子ターミネーターについては、塩基配列決定によりその配列を確認することが好ましい。塩基配列決定はマキサム-ギルバートの化学修飾法、ジデオキシヌクレオチド鎖終結法等の公知手法により行うことができるが、通常は自動塩基配列決定装置（例えばABI社製DNAシークエンサー）を用いて行えばよい。

２．本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを含むベクター、DNA構築物及びそれらを含む形質転換体
本発明は、本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを組み込んだベクターも提供する。本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターは、任意の組換えベクター中にクローニングすることにより容易に複製可能な形態とすることができる。

このために使用可能なベクターとしては、宿主細胞中で複製可能なものであれば特に限定されず、例えば、プラスミドDNA、ファージDNA等が挙げられる。例えばプラスミドDNAとしては、大腸菌由来のプラスミド（例えばpET22b(+)、pBR322、pBR325、pUC118、pUC119、pUC18、pUC19、pBluescript、pET100/D-TOPO等）、枯草菌由来のプラスミド（例えばpUB110、pTP5等)、酵母由来のプラスミド（例えばYEp13、YCp50、pPICZαA等）などが挙げられ、ファージDNAとしてはλファージ（Charon4A、Charon21A、EMBL3、EMBL4、λgt10、λgt11、λZAP、λZAPII等）などが挙げられる。さらに、レトロウイルス又はワクシニアウイルスなどの動物ウイルス、バキュロウイルスなどの昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。ベクター中に本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを組み込むには、例えば、そのターミネーターを含むDNA断片の末端を適当な制限酵素で切断し、ベクターDNAの制限酵素部位又はマルチクローニングサイトに挿入し連結すればよい。

本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターは、各種プロモーター（限定するものではないが、植物プロモーターがより好ましい）と組み合わせて用いることにより、任意の遺伝子の発現をもたらすことができる。

特に、本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを、プロモーター及びその制御下にある遺伝子挿入部位の下流に連結して含む発現ベクターは、目的の遺伝子にコードされる遺伝子産物を宿主細胞（好ましくは、植物細胞）で効率良く生産させるために当該遺伝子を宿主細胞に導入し組換え法により発現させるために用いる、導入遺伝子発現用ツールとして好適である。本発明に係るこれらの発現ベクターは、その遺伝子挿入部位（例えば、制限酵素切断部位）に挿入された目的の遺伝子をさらに含んでもよい。目的の遺伝子は特に限定されず、タンパク質をコードする遺伝子であっても、RNAをコードする遺伝子であってもよいし、２種以上のタンパク質の融合タンパク質をコードする遺伝子でもよい。

本発明に係る発現ベクターは、さらに、ベクターが細胞内に保持されていることを示す選択マーカーやベクター内に簡単に正しい向きで遺伝子を挿入するためのポリリンカー、エンハンサーなどのシスエレメント、スプライシングシグナル、ポリA付加シグナル、分泌シグナル配列、精製用のヒスチジンタグ配列等の有用な配列を必要に応じて含んでいてもよい。選択マーカーとしては、例えばジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、クロラムフェニコール耐性遺伝子（CAT遺伝子）等が挙げられる。

植物に遺伝子導入するためにアグロバクテリウム法を用いる場合には、アグロバクテリウム由来のバイナリーベクターなどのアグロバクテリウム法に適した発現ベクター又はその改変ベクター（例えば、pBI121、pBIN19、pSMAB704、pCAMBIA、pGreenなど）中のターミネーター（例えば、ノパリン合成酵素遺伝子（nos）ターミネーター）を、本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターで置換することによって、本発明に係る発現ベクターを作製してもよい。このような発現ベクターも、プロモーター及びその制御下にある遺伝子挿入部位の下流に連結された本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを含む限り、本発明の好ましい態様である。

本発明は、目的の遺伝子の下流に連結された本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを含むDNA構築物も提供する。このようなDNA構築物を、任意の発現ベクター（好ましくは、植物用の発現ベクター）中のプロモーターの制御下（下流）に組み込むことにより、目的の遺伝子の遺伝子産物をより効率よく生産できる発現ベクターを製造することができる。本発明はまた、プロモーター及び目的の遺伝子の下流に連結された本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターを含むDNA構築物にも関する。

本発明において「DNA構築物」とは、２以上の機能単位（遺伝子、プロモーター、ターミネーターなど）のDNAを連結して作製される自律複製能を有しないDNA断片（例えば、遺伝子発現カセット）をいう。

本発明でミラクリン遺伝子ターミネーターと組み合わせて用いるプロモーターは、任意のプロモーターであってよいが、植物プロモーターであることがより好ましい。本発明において「植物プロモーター」とは、植物細胞においてプロモーター活性（転写誘導活性）を発揮できるプロモーターをいい、例えばカリフラワーモザイクウイルス（CaMV）35Sプロモーター、ユビキチンプロモーター、トマト果実特異的発現プロモーターE8などが挙げられる。本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーターと組み合わせて用いるプロモーターは、構成性プロモーターであっても誘導性プロモーターであってもよいし、組織特異的プロモーター又は時期特異的プロモーターなどの特異的プロモーターであってもよい。遺伝子産物の生産量向上の点では、CaMV 35Sプロモーターとの組み合わせが特に好適である。

本発明では、上記発現ベクター又は上記DNA構築物を宿主に導入することにより形質転換体（形質転換細胞、形質転換植物など）を作製することができる。具体的には、例えば、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を宿主細胞に導入することにより形質転換細胞を作製することができる。なお本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を宿主細胞（好ましくは、植物細胞）へ導入することにより、発現ベクター中のDNA構築物（プロモーター及びその制御下にある目的の遺伝子の下流に連結されたミラクリン遺伝子ターミネーターを含むDNA断片）又は単離されたDNA構築物は、宿主細胞のゲノム中に組み込まれうる。あるいは、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を宿主細胞へ導入した形質転換体では、その発現ベクター又はDNA構築物が染色体外（細胞質など）で維持されることにより、目的の遺伝子が染色体外で一過性発現されるものでもよい。

宿主細胞には、大腸菌や枯草菌等の細菌、酵母細胞、昆虫細胞、動物細胞（例えば、哺乳動物細胞）、植物細胞等、いずれを使用してもよい。本発明においては、目的の遺伝子産物をより高効率に生産する目的では、植物細胞、特に被子植物細胞、より好ましくはナス科植物細胞、さらに好ましくはトマトの細胞を宿主細胞として使用することがより好ましい。

本発明では、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を植物細胞に導入することにより形質転換植物を作製することも好ましい。

本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を導入する植物としては、特に限定されないが、例えば、ナス科［ナス（Solanum melongena L.）、トマト（Solanum lycopersicum）、ピーマン（Capsicum annuum L. var. angulosum Mill.）、トウガラシ（Capsicum annuum L.）、タバコ（Nicotiana tabacum L.）等］、イネ科［イネ（Oryza sativa）、コムギ（Triticum aestivum L.）、オオムギ（Hordeum vulgare L.）、ペレニアルライグラス（Lolium perenne L.）、イタリアンライグラス（Lolium multiflorum Lam.）、メドウフェスク（Festuca pratensis Huds.）、トールフェスク（Festuca arundinacea Schreb.）、オーチャードグラス（Dactylis glomerata L.）、チモシー（Phleum pratense L.）等］、アブラナ科［シロイヌナズナ（Arabidopsis thaliana）、アブラナ（Brassica campestris L.）、ハクサイ（Brassica pekinensis Rupr.）、キャベツ（Brassica oleracea L. var. capitata L.）、ダイコン（Raphanus sativus L.）、ナタネ（Brassica campestris L., B. napus L.）等］、マメ科［ダイズ（Glycine max）、アズキ（Vigna angularis Willd.）、インゲン（Phaseolus vulgaris L.）、ソラマメ（Vicia faba L.）等］、ウリ科［キュウリ（Cucumis sativus L.）、メロン（Cucumis melo L.）、スイカ（Citrullus vulgaris Schrad.）、カボチャ（C. moschata Duch., C. maxima Duch.）等］、ヒルガオ科［サツマイモ（Ipomoea batatas）等］、ユリ科［ネギ（Allium fistulosum L.）、タマネギ（Allium cepa L.）、ニラ（Allium tuberosum Rottl.）、ニンニク（Allium sativum L.）、アスパラガス（Asparagus officinalis L.）等］、シソ科［シソ（Perilla frutescens Britt. var. crispa）等］、キク科［キク（Chrysanthemum morifolium）、シュンギク（Chrysanthemum coronarium L.）、レタス（Lactuca sativa L. var. capitata L.）等］、バラ科［バラ（Rose hybrida Hort.）、イチゴ（Fragaria x ananassa Duch.）等］、ミカン科［ミカン（Citras unshiu）、サンショウ（Zanthoxylum piperitum DC.）等］、フトモモ科［ユーカリ（Eucalyptus globulus Labill）等］、ヤナギ科［ポプラ（Populas nigra L. var. italica Koehne）等］、アカザ科［ホウレンソウ（Spinacia oleracea L.）、テンサイ（Beta vulgaris L.）等］、リンドウ科［リンドウ（Gentiana scabra Bunge var. buergeri Maxim.）等］、ナデシコ科［カーネーション（Dianthus caryophyllus L.）等］の植物が挙げられる。とりわけナス科植物、中でもトマトがより好ましい。

本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を植物に導入する方法としては、植物の形質転換に一般的に用いられる方法、例えばアグロバクテリウム法、パーティクルガン法、エレクトロポレーション法、ポリエチレングリコール（PEG）法、マイクロインジェクション法、プロトプラスト融合法などを用いることができる。これらの植物形質転換法の詳細は、『島本功、岡田清孝監修「新版モデル植物の実験プロトコール遺伝学的手法からゲノム解析まで」（2001）秀潤社』などの一般的な教科書の記載や、Hiei Y. et al., "Efficient transformation of rice (Oryza sativa L.) mediated by Agrobacterium and sequence analysis of the boundaries of the T-DNA." Plant J. (1994) 6, 271-282; Hayashimoto, A. et al., "A polyethylene glycol-mediated protoplast transformation system for production of fertile transgenic rice plants." Plant Physiol. (1990) 93, 857-863等の文献を参照すればよい。

アグロバクテリウム法を用いる場合は、アグロバクテリウム法に適したベクターを用いて作製した本発明に係る発現ベクターを、適当なアグロバクテリウム、例えばアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）にエレクトロポレーション法などにより導入し、この菌株を植物細胞又はカルスに接種して感染させることにより、形質転換細胞を含むカルスを得ることができる。好適なアグロバクテリウムとしては、限定するものではないが、C58、C58C1Rif^R、EHA101、EHA105、AGL1、LBA4404等の株を利用することができ、例えばトマトへ導入する場合には、アグロバクテリウムC58C1Rif^R株を好適に用いることができる。

パーティクルガン法やエレクトロポレーション法には、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物のいずれを使用してもよい。導入対象の宿主試料としては、植物の切片を使用してもよく、プロトプラストを調製して使用してもよい（Christou P, et al., Bio/technology (1991) 9: 957-962）。例えばパーティクルガン法では、遺伝子導入装置（例えばPDS-1000（BIO-RAD社）等）を製造業者の説明書に従って使用して、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物をまぶした金属粒子をこのような試料に打ち込むことにより、植物細胞内に導入させ、形質転換植物細胞を得ることができる。操作条件は、通常は450〜2000psi程度の圧力、4〜12cm程度の距離で行う。

次いで、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を導入した形質転換植物細胞を、例えば従来知られている植物組織培養法に従って選択培地で培養し、生存したカルスを再分化培地（適当な濃度の植物ホルモン（オーキシン、サイトカイニン、ジベレリン、アブシジン酸、エチレン、ブラシノライド等）を含む）で培養することにより、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物により形質転換された植物体を再生することができる。

本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物が植物中に確実に導入されたか否かの確認は、PCR法、サザンハイブリダイゼーション法、ノーザンハイブリダイゼーション法、ウェスタンブロット法等を利用して行うことができる。例えば、形質転換植物の葉から抽出したゲノムDNAについて、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物中のプロモーター／ターミネーターや組み込んだ目的遺伝子に特異的なプライマーを用いてPCR増幅を行えばよい。その増幅産物についてアガロースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動又はキャピラリー電気泳動等を行い、臭化エチジウム、SYBR Green液等により染色し、そして増幅産物を明瞭なバンドとして検出することにより、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物の導入を確認することができる。マイクロプレート等の固相にPCR増幅産物を結合させ、蛍光又は酵素反応等により増幅産物を確認することもできる。作製した形質転換植物において、導入した本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物中の目的の遺伝子の遺伝子産物活性を確認することも好ましい。

３．本発明に係る形質転換体を用いた目的遺伝子の遺伝子産物の生産
以上のようにして得られる本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を導入した形質転換細胞又は形質転換植物は、目的の遺伝子の遺伝子産物（mRNA、rRNA等のRNA、又はタンパク質）を効率よく生産し、好ましくは蓄積することができる。本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を導入した形質転換細胞又は形質転換植物は、特に、プロモーターとその制御下にある目的の遺伝子の下流にノパリン合成酵素遺伝子ターミネーターを連結させたDNA構築物又はそれを含む発現ベクターを導入した形質転換植物における遺伝子発現と比較して、目的の遺伝子の遺伝子産物をより高生産することができる。この形質転換細胞又は形質転換植物においては、例えば目的の遺伝子から発現される遺伝子産物が酵素である場合には、その酵素活性を測定することによって当該遺伝子の発現産物量を測定することができる。

このような形質転換細胞又は形質転換植物からは、目的の遺伝子から合成され蓄積された遺伝子産物を抽出することもできる。従って本発明は、本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を植物細胞に導入し、目的の遺伝子を発現させることにより、その植物において目的遺伝子の遺伝子産物をより高レベルに生産させる方法も提供する。

限定するものではないが、導入した発現ベクター又はDNA構築物中の目的の遺伝子を発現させるためには、通常は、形質転換体である細胞（形質転換細胞）を培養することが好ましい。形質転換細胞の培養は、宿主生物の培養に用いられる通常の方法に従って行えばよい。例えば、大腸菌や酵母細胞等の微生物を宿主細胞として得られた形質転換細胞を、宿主微生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有する培地中に接種して培養すればよい。培地は、形質転換細胞の培養を効率的に行える培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。培地には、必要に応じてアンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を添加してもよい。

誘導性プロモーターを含む発現ベクター又はDNA構築物で形質転換した宿主細胞を培養する場合は、必要に応じてインデューサーを培地に添加するのが一般的である。例えば、Lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した宿主細胞を培養するときにはイソプロピル-１-チオ-β-D-ガラクトシド（IPTG）等を、trpプロモーターを用いた発現ベクター又はDNA構築物で形質転換した宿主細胞を培養するときにはインドール酢酸（IAA）等を培地に添加することができる。培養条件は特に限定されないが、好ましくは形質転換に用いる宿主細胞に適した条件下で行われる。

培養後、発現された遺伝子産物（典型的には、タンパク質）が細胞内に蓄積される場合にはその細胞を破砕して採取することができる。一方、その遺伝子産物が細胞外に分泌される場合には、それを培養物から直接採取することができるし、培養物から遠心分離等により細胞を除去することにより培養上清として採取することもできる。

本発明では、形質転換を行う代わりに、無細胞翻訳系を使用して本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物中に組み込んだ遺伝子由来の遺伝子産物を製造することもできる。「無細胞翻訳系」とは、大腸菌や酵母細胞等の宿主生物の細胞構造を機械的に破壊して得た懸濁液に、翻訳に必要なアミノ酸などの試薬を加え、試験管中などのin vitro転写翻訳系又はin vitro翻訳系を構成したものである。無細胞翻訳系としては、有利に使用可能なキットが各種市販されている。

本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物において、組織特異的プロモーター又は時期特異的プロモーターなどの特異的プロモーター（トマト果実特異的発現プロモーターE8など）や構成性プロモーター（CaMV 35Sプロモーターなど）を用いた場合には、その本発明に係る発現ベクター又はDNA構築物を導入した形質転換植物を成長させ又は栽培することにより、目的の遺伝子の遺伝子産物を植物内で高生産させることができる。例えば、構成性プロモーターを使用する場合には、本発明に係る形質転換植物（植物個体、その種子、器官、組織、カルス等を含む）を成長させて、その葉や果実等の様々な植物組織で目的の遺伝子の遺伝子産物を高生産させることができる。また特異的プロモーターを使用する場合には、そのプロモーターの発現誘導が起こる特異的条件に合致した植物組織で目的の遺伝子の遺伝子産物を高生産させることができる。

生産された遺伝子産物がタンパク質であれば、タンパク質の単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲルクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独で又は適宜組み合わせて用いることにより培養液、培養細胞又は発現産物が蓄積した組織（例えば、葉、果実等の植物組織）等から単離精製することができる。遺伝子産物がmRNAなどのRNAであれば、一般的なRNA抽出法を用いて単離精製することができる。しかしながら、場合により、遠心分離や限外濾過型フィルター等を用いて採取又は濃縮した培養上清や溶菌液上清、あるいはそれらの上清をさらに硫安分画後に透析にかけるなどして得た溶液をそのまま使用してもよい。

本発明において用いるDNAの調製、PCR、ベクター中へのライゲーション、細胞の形質転換、DNA塩基配列決定、プライマーの合成、突然変異誘発、タンパク質の抽出などの分子生物学的・生化学的実験操作は、基本的には通常の実験書の記載に従って行うことができる。そのような実験書としては、例えば、SambrookらのMolecular Cloning, A laboratory manual, 2001, Eds., Sambrook, J. & Russell, DW. Cold Spring Harbor Laboratory Pressを挙げることができる。

以下、実施例を用いて本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
［実施例１］ミラクリン遺伝子の転写調節領域（プロモーター領域及びターミネーター領域）の単離
（１）DNAの抽出
ミラクルフルーツ（Richadella dulcifica）の葉からCTAB法にてゲノムDNAの抽出を行った。乳鉢に５gのミラクルフルーツの葉を入れ、液体窒素を加えて完全にすりつぶし、５０mLのチューブに移した。これに１０mLの３％ CTAB 溶液（１００mM Tris-HCl pH８．０、２０ｍM EDTA、１．４M NaCl、３％[w/v] CTAB）を加え混和した後、６５℃で３０分間保温した。１０mLのクロロフォルム／イソアミルアルコール（２４：１）を加え、５分間穏やかに攪拌して、遠心分離（１０，０００回転、２０分、室温）を行った。上層の水層を新しいチューブに回収し、同様にクロロフォルム／イソアミルアルコール（２４：１）抽出を行い、水層を回収した。次に１０mLの冷イソプロピルアルコールを加え、穏やかに転倒混和し、糸状に析出したゲノムDNAを滅菌したガラス棒で巻き取り、５mLの７０％冷エタノールを入れたチューブに移して５分間洗浄した。ゲノムDNAが巻きついたガラス棒を引き上げ、ゲノムDNAを乾燥させ、１mLのRNaseA (１０μg/mL)に入れ３７℃で２時間処理した。１mLのフェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコール（２５：２４：１）を加え、５分間穏やかに撹拌して遠心分離（１０，０００回転、２０分、室温）し、上層の水層を新しいチューブに移した。１mLのイソプロピルアルコールを加え、穏やかに転倒混和し、糸状に析出してきたゲノムDNAをガラス棒で巻き取った。これを５mLの７０％エタノールを入れたチューブに移して５分間洗浄後、ガラス棒ごとゲノムDNAを引き上げて乾燥し、０．４mLの滅菌水に溶解した。単離したゲノムDNAは５０倍希釈して、分光光度計で濃度を測定した（O.D.₂₆₀＝５０μg/mL）。

（２）アダプター付きDNAライブラリーの作成
次に、上記（１）で単離したミラクルフルーツ由来ゲノムDNAを用いて、アダプター付きDNAライブラリーを作製した。
このため、まずアダプターの作製を行った。アダプターはADL（４８mer：5'-GTA ATA CGA CTC ACT ATA GGG CAC GCG TGG TCG ACG GCC CGG GCT GGT-3'（配列番号４））とADS（８mer：5'-ACC AGC CC-NH₂-3'）とを６：１の比率（１１２．７μg：１８．６μg）で混合し、６５℃で５分、３７℃で１０分アニールさせることにより作製した（７５．９μl；１００ pmol/μl）。

一方、ゲノムDNAを消化するため、平滑末端を生じるEcoRV、PvuII、ScaIの制限酵素を、上記（１）で単離したミラクルフルーツ由来ゲノムDNA 各４μgにそれぞれ添加し、３７℃で一晩（約１５時間）反応させた。次いで、消化したゲノムDNAをフェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコール（２５：２４：１）で抽出し、さらにイソプロピルアルコール沈殿を行った。沈殿を乾燥し、２０μlの滅菌水に溶解した。

この消化したゲノムDNA断片とアダプターを結合させるため、T4 DNA Ligase（Promega）を利用した。反応液（DNA断片１０μl、アダプター１μl、５×緩衝液４μl、T4 DNA Ligase ２μl、蒸留水３μl）をよく混合し、１６℃で一晩（約１５時間）反応させた後、６５℃で１０分間処理し、酵素を失活させた。この産物を１０倍希釈した液をゲノムウォーキングに用いるDNAライブラリーとして−２０℃に保存した。

（３）プロモーター領域及びターミネーター領域のクローニング
ミラクリン遺伝子のプロモーター領域及びターミネーター領域のクローニングは、ゲノムウォーキングのための改良型PCR法（Siebert et al., Nucl Acids Res (1995) 23, p.1087-1088）により行った。このPCRには、アダプター特異的プライマーAP1：5'-CCA TCC TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGC-3'（配列番号５）、AP2：5'-CTA TAG GGC ACG CGT GGT-3'（配列番号６）およびミラクリン遺伝子特異的プライマーF1/458：5'-ACC CAG GTC CCG AAA CCA TTA GTA GCT-3'（配列番号７）、F2/551：5'-GTT CCT GCA AAG TAA AAT GCG GAG ATG-3'（配列番号８）、R1/248：5'-ACA ACT CTG GGT GGA CAA ACG AAG CTG CCG TT-3'（配列番号９）、R1/139：5'-GGA GTT TCT CTC CGT CTA TGT CAA GAA CCG GAT TG-3'（配列番号１０）、R2/101：5'-GCC GAA TCC GCT GCA CTA AGC AGT GGT TT-3'（配列番号１１）の７つのプライマーを下記の通りに組み合わせて用いた。なおミラクリン遺伝子の上流領域（5'側）の単離にはプライマーR1又はR2を、下流領域（3'側）の単離にはプライマーF1又はF2を用いた。ミラクリン遺伝子特異的プライマーは、既知のミラクリン遺伝子の塩基配列（非特許文献６）に基づいて設計した。

まず、1st PCRとして、上記（２）で作成したアダプター付きライブラリー（EcoRV、PvuII、ScaIでそれぞれ消化したゲノムDNAから作成）を鋳型として、(i) AP1とF1/458、(ii) AP1とR1/248、(iii) AP1とR1/139の３種類のプライマー・セットを用いてPCR反応を行った。1st PCRのサイクル条件では、９４℃で３０秒（変性）、続いて６８℃で５分（アニーリング及び伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクル行った。こうして得られた1st PCR産物を滅菌水で１００倍希釈し、それを次の2nd PCRの鋳型として用いた。その鋳型DNAと、(i) AP2とF2/551、(ii) AP2とR2/101、(iii) AP2とR2/101の各プライマー・セットを用いて、2nd PCR反応を行った。2nd PCRのサイクル条件では、９４℃で３０秒（変性）、続いて６８℃で５分（アニーリング及び伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクル行った。

2nd PCRの終了後、反応液の５μLを１％アガロースゲルでの電気泳動にかけて、増幅断片を確認した。増幅断片のうち特異的増幅と判断された断片をWizard^(R) SV Gel and PCR Clean-Up System（Promega）を用いて精製した。これをpGEM^(R)-T Easy Vector System I （Promega）のプロトコルに従ってクローニングし、塩基配列を決定した。さらに、得られた増幅断片の塩基配列が、アダプター配列と使用した遺伝子特異的プライマー配列を両末端に含むこと、及び遺伝子特異的プライマーに続く配列がミラクリン構造遺伝子の既知配列と一致することも確認した。

このようにして配列決定された、ミラクリン構造遺伝子（ORF）の開始コドンの１塩基上流からアダプター配列の１塩基下流までの上流領域（本明細書ではプロモーター領域と呼ぶ）の塩基配列を、配列番号１に示す。同様に配列決定された、ミラクリン構造遺伝子（ORF）の終止コドンの１塩基下流からアダプター配列の１塩基上流までの下流領域（本明細書ではターミネーター領域と呼ぶ）の塩基配列を、配列番号２に示す。

［実施例２］導入遺伝子発現用の核酸構築物の構築
（１）ベクターの改変
単離したミラクリン遺伝子のプロモーター領域及びターミネーター領域をそれぞれ植物発現用に慣用されているバイナリーベクターpBI121中にクローニングするため、まず、pBI121のプロモーター配列中のクローニングサイトにXhoIとKpnI部位を付加する改変を行った。HindIII、XhoI、及びKpnI認識配列（大文字の配列部分）を付加したプライマーpBI121-F-HXK：5'-TTT AAG CTT CTC GAG GGT ACC gca tgc ctg cag gtc-3'（配列番号１２）と、XbaI認識部位（大文字の配列部分）を付加したプライマーpBI121-R-X：5'-TTT TCT AGA gtc ccc cgt gtt ctc tcc-3'（配列番号１３）を用いて、pBI121（TOYOBO；Chen et al.，Mol Breed (2003) 11, p.287-293；GenBankアクセッション番号AF485783）を鋳型としてPCRを行い、増幅断片をpGEM^(R)-T Easy Vector System I (Promega) のプロトコルに従いクローニングし、塩基配列の決定を行った。次いで、得られた増幅断片とベクターpBI121をそれぞれHindIIIとXbaIで処理し、pBI121中の35Sプロモーター配列を増幅断片で置換することにより、XhoIとKpnI部位が付加された35Sプロモーター配列を有するように改変された植物発現ベクターを作製した。この改変ベクターをpBI121HXKと名付けた。

（２）改変ベクターへのミラクリン遺伝子プロモーターのクローニング
上記でクローニングしたプロモーター領域由来の異なるサイズのプロモーター配列を導入したベクターを作製した。まず、実施例１でクローニングしたプロモーター領域のDNA断片を鋳型とし、3'側プライマーとしてXbaI-T-MIR（5'-TTT TCT AGA TGT TGT AGA GAC TAT AGG GCT-3'；配列番号１４）を、5'側プライマーとして以下の各プライマーを組み合わせてPCRを行った。PCRのサイクル条件は、２２２４bpのミラクリン遺伝子プロモーター配列増幅のために９４℃で３０秒（変性）、５０℃で２５秒（アニーリング）、続いて６８℃で１５０秒（伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクルで実施した。また、１５１２bpおよび１０１２bpのミラクリン遺伝子プロモーター配列増幅のためには、PCRのサイクル条件は、９４℃で３０秒（変性）、５５℃で２５秒、続いて６８℃で９０秒（伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクルで実施した。さらに、PCRのサイクル条件は、５１０bpのミラクリン遺伝子プロモーター配列増幅のためには、９４℃で３０秒（変性）、５５℃で２５秒、続いて６８℃で４０秒（伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクルで実施した。なお各プライマー名に付記した増幅サイズは、プライマーXbaI-T-MIRと組み合わせたPCRで増幅することができる本願のプロモーター領域内の配列（プロモーター配列）のサイズであり、これはXbaI-T-MIR中のXbaI部位の配列を含まない。
1) プライマーP-1/F（増幅サイズ：２２２４bp）：
5'-TTT CTC GAG GAT ATC ATT ATA ATA GTG TGT-3'（配列番号１５）
2) プライマーP-4/F（増幅サイズ：１５１２bp）：
5'-TTT CTC GAG TTA CCA AAC GCT CAA AAA TAA CAG-3'（配列番号１６）
3) プライマーP-7/F（増幅サイズ：１０１２bp)：
5'-TTT CTC GAG TGA CTT AGG ACT TTA ATT TCA CTA-3'（配列番号１７）
4) プライマーP-10/F（増幅サイズ：５１０bp)：
5'-TTT CTC GAG ACT TGG GTT AGT TTG GGT-3'（配列番号１８）。
それぞれの増幅サイズ（２２２４bp、１５１２bp、１０１２bp、５１０bp）のPCR産物を、pGEM^(R)-T Easy Vector System I（Promega）のプロトコルに従ってクローニングし、塩基配列を確認した。

（３）ミラクリン遺伝子の転写調節領域（プロモーター配列及びターミネーター配列）を組み込んだ、導入遺伝子発現用の核酸構築物の作製
５０７bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列の増幅のために、プライマーEcoRI-T-2：5'-TTT GAA TTC CTA CAA CGT TAC GAA ACG-3'（配列番号１９）と、プライマーSacI-P-MIR：5'-TTT GAG CTC TTG GGT TTG GGG GTG GTT TTT CCA-3'（配列番号２０）を、一方、１０８５bpのターミネーター配列の増幅のためにプライマーEcoRI-T-5：5'-TTT GAA TTC GTC GCT GAA TAA AGG-3'（配列番号２１）と、プライマーSacI-P-MIR：5'-TTT GAG CTC TTG GGT TTG GGG GTG GTT TTT CCA-3'（配列番号２０）を、それぞれ組み合わせて、実施例１でクローニングしたターミネーター領域のDNA断片を鋳型としてPCRを行った。PCRのサイクル条件は、５０７bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列増幅のために９４℃で３０秒（変性）、５５℃で２５秒（アニーリング）、続いて６８℃で４０秒（伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクルで実施した。また１０８５bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列増幅のためには、PCRのサイクル条件は、９４℃で３０秒（変性）、５０℃で２５秒、続いて６８℃で８０秒（伸長反応）を１サイクルとして、計３５サイクルで実施した。得られたPCR産物は、GEM^R-T Easy Vector System I（Promega）のプロトコルに従ってクローニングし、塩基配列の確認を行った。クローニングした５０７bpと１０８５bpのターミネーター配列のDNA断片を、上記で作製したベクターpBI121HXKのSacIとEcoRIの間に導入し（すなわちノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター配列（Tnos）を置換し）、それぞれ、pBI121HXK/T0.5、pBI121HXK/T1.1と名付けた。この２つのベクターpBI121HXK/T0.5、pBI121HXK/T1.1及びpBI121HXKベクター（対照）のXhoIとXbaI部位に、さらに、上記（２）でクローニングした異なるサイズのミラクリン遺伝子プロモーター配列をそれぞれ導入し、植物発現ベクターを作製した。

以下に、このようにしてベクターpBI121HXKをベースに作製した発現ベクター中の、ミラクリン遺伝子のプロモーター配列及びターミネーター配列を含むGUS遺伝子発現誘導性の核酸構築物について記載する（図１も参照されたい）。
1) P2.2/T1.1：
ミラクリン遺伝子プロモーター配列（２２２４bp；P2.2と称する；配列番号１の塩基番号１〜２２２４）の下流に、β-グルクロニダーゼ（GUS）遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（１０８５bp；T1.1と称する；配列番号２の塩基番号１〜１０８５）が連結されている。

2) P2.2/Tnos
ミラクリン遺伝子プロモーター配列（２２２４bp；P2.2と称する；配列番号１の塩基番号１〜２２２４）の下流に、GUS遺伝子、次いでノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）が連結されている。

3) P2.2/T0.5：
ミラクリン遺伝子プロモーター配列（２２２４bp；P2.2と称する；配列番号１の塩基番号１〜２２２４）の下流に、GUS遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（５０７bp；T0.5と称する；配列番号２の塩基番号１〜５０７）が連結されている。

4) P1.5/T1.1：
ミラクリン遺伝子プロモーター配列（１５１２bp；P1.5と称する；配列番号１の塩基番号７１３〜２２２４）の下流に、GUS遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（１０８５bp；T1.1と称する；配列番号２の塩基番号１〜１０８５）が連結されている。

5) P1.0/T1.1：
ミラクリン遺伝子プロモーター配列（１０１２bp；P1.0と称する；配列番号１の塩基番号１２１３〜２２２４）の下流に、GUS遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（１０８５bp；T1.1と称する；配列番号２の塩基番号１〜１０８５）が連結されている。

6) P0.5/T1.1：
ミラクリン遺伝子プロモーター配列（５１０bp；P0.5と称する；配列番号１の塩基番号１７１５〜２２２４）の下流に、GUS遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（１０８５bp；T1.1と称する；配列番号２の塩基番号１〜１０８５）が連結されている。

7) P35S/T1.1：
カリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターの下流に、GUS遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（１０８５bp；T1.1と称する；配列番号２の塩基番号１〜１０８５）が連結されている。

8) P35S/T0.5：
カリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターの下流に、GUS遺伝子、次いでミラクリン遺伝子ターミネーター配列（５０７bp；T0.5と称する；配列番号３；配列番号２の塩基番号１〜５０７に相当する）が連結されている。

9) P35S/Tnos
ベクターpBI121HXK中に含まれる核酸構築物（対照用）。カリフラワーモザイクウイルス（CaMV）35Sプロモーター（以下、35Sプロモーターと称する）の下流に、GUS遺伝子、次いでノパリン合成酵素遺伝子ターミネーター（Tnos）が連結されている。

次に、これらの発現ベクターをアグロバクテリウムC58C1Rif^R株（Deblaere et al., Nucl Acids Res (1985) 13, p.4777-4788）にエレクトロポレーション法により導入し、次の実施例においてトマトの形質転換に用いた。

［実施例３］形質転換トマトの作製と導入遺伝子発現の測定
トマト（Solanum lycopersicum）の形質転換は、実施例２で作製した植物発現ベクターを各々導入したアグロバクテリウムC58C1Rif^R株を用いて、Sun et al.（Plant Cell Physiol., (2006) 47, p.426-431）の方法に従って以下の手順で行った。まず、無菌播種したトマト子葉を、葉脈に垂直に切断し一枚の子葉から２切片を作った。葉切片をアグロバクテリウム懸濁液（MS培地に１００μMのアセトシリンゴンと、４０μMのメルカプトルエタノールを加えたものを使用）に浸し、１０分間感染させた後、懸濁液を除き、共存培地（MS培地、３％ショ糖、０．３％ゲルライト、１．５mg/lゼアチン、pH ５．８)に葉の表が下になるように並べた。シャーレをアルミホイルで完全に包み、２５℃の培養室で３〜４日共存培養を行った。その後、選抜培地（MS培地、３％ショ糖、０．３％ゲルライト、１．５mg/lゼアチン、１００mg/l カナマイシン、ｐH５．８）に葉の表が上になるように移し替え、２〜３週間毎に新しい選抜培地に移しながら、２５℃、１６時間日長で培養した。子葉片からカルスが形成されたら、シュートの生長を速めるためゼアチンの濃度を１mg/Lに下げた。カルスから葉が出てきたら、子葉切片部分から切り落とし、それを新しい培地に移した。伸長したシュートの葉は、根元で切り取り、発根培地（１/２ MS培地、１．５％ショ糖、０．３％ゲルライト、５０mg/l カナマイシン）に移した。発根培地で２週間以内に発根した個体を形質転換体の候補として選抜し、順化した。

発根順化した個体についてゲノムPCR法による導入遺伝子の確認およびフローサイトメーター（PA-II）により倍数性の確認を行った。２倍体で、かつ導入遺伝子が確認できた個体について、導入遺伝子がコードするGUSの活性測定を蛍光法（Kosugi et al., Plant Sci (1990）70, p.133-140）にて行った。まず、発根順化した個体に由来する、粉砕したトマト果実０．２gを１．５mlチューブに入れ、２５０μLの抽出緩衝液（５０mM リン酸緩衝液（pH ７．０）、１０mM EDTA、０．１％ Triton X-１００、０．１％ラウロイルサルコシンナトリウム、１０mM β-メルカプトエタノール）を加え攪拌し、遠心分離（１２，０００回転、５分、４℃）した。上清５０μLを新しいチューブに移し、５０μL 4-メチルウンベリフェリルグルクロニド（MUG）溶液（３．５mg MUG/１０ml抽出緩衝液）を加え、よく攪拌し、３７℃で６０分静置した。反応液１００μLに１mLの０．２M 炭酸ナトリウムを加えて反応を終了させた後、F4010型分光蛍光光度計（HITACHI）により、励起波長を３６５nmとし、４５５nmの蛍光波長を測定した。抽出液の全可溶性タンパク質定量はProtein Assay Reagent Kit（PIERCE）を用いて行った。GUS活性は4-MU pmol mg^-1 protein min^-1として算出した。

このGUS活性測定の結果を表１及び図２に示す。有意差検定にはFisherのPSLD法を用いた。

表１及び図２に示される通り、５０７bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列（T0.5）は、ミラクリン遺伝子プロモーター配列と35Sプロモーターのいずれを使用した場合でも、１０８５bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列（T1.1）やnosターミネーター（Tnos）と比較して、かなり高いGUS活性値をもたらした。

特に、35Sプロモーター（P35S）と５０７bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列（T0.5）の組み合わせを含む核酸構築物（No.8）をトマトに導入した場合には、既存の35Sプロモーターとnosターミネーターの組み合わせを含む核酸構築物（No.9）と比べて、有意に高いGUS活性を示した（表１及び図２）。例えば、No.8とNo.9の核酸構築物についてそれぞれ得られたGUS活性の最大値を比較すると、No.8の方が約2倍高かった。一方、35Sプロモーター（P35S）と１０８５bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列（T1.1）の組み合わせを含む核酸構築物No.7を導入した場合は、核酸構築物No.9と比較して有意に高いGUS活性を示さなかった（表１及び図２）。

これらの結果は、ミラクリン遺伝子の５０７bpのターミネーター配列（T0.5）が、nosターミネーター（Tnos）や１０８５bpのミラクリン遺伝子ターミネーター配列（T1.1）と比べて、導入遺伝子由来の遺伝子産物の生産量を大きく増加させることを示している。

このミラクリン遺伝子ターミネーター配列（T0.5）とは対照的に、ミラクリン遺伝子プロモーター配列を連結した核酸構築物（No.1〜6）を導入した場合には、組み合わせるターミネーター配列の種類にかかわらず、既存の35Sプロモーター／nosターミネーターの組み合わせを含む核酸構築物（No.9）よりも有意に高いGUS活性を示すことはなかった（図２中、核酸構築物No.1〜6、9）。このことから、ミラクリン遺伝子のプロモーター領域の発現誘導能は比較的弱いと考えられた。

本発明のミラクリン遺伝子ターミネーター配列は、植物でのタンパク質等の組換え生産において遺伝子産物の生産量を増加させるために使用することができる。本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーター配列は、限定するものではないが、35Sプロモーターを用いた核酸構築物の遺伝子発現をとりわけ強化したことから、特に植物において、35Sプロモーターを使用した遺伝子発現系でより効率的な組換え生産を行う上で有用である。例えば、本発明に係るミラクリン遺伝子ターミネーター配列を用いて形質転換トマトを作製することにより、トマト果実で目的タンパク質を従来よりも高蓄積させることができる。

ミラクリン遺伝子の転写調節領域（プロモーター配列及びターミネーター配列）がその制御下にあるGUS遺伝子の発現産物の量に及ぼす効果を調べるために用いた、９種類の核酸構築物の模式図である。図１に示したそれぞれの核酸構築物を導入した形質転換トマトの果実におけるGUS活性を示すグラフである。グラフ中、対照の核酸構築物P35S/Tnosについての活性との比較において有意差がない活性レベルが「a」、有意差がある活性レベル（核酸構築物No.8のみ）が「b」として表されている。

配列番号１：ミラクリン遺伝子のプロモーター領域
配列番号２：ミラクリン遺伝子のターミネーター領域
配列番号３：ミラクリン遺伝子のターミネーターT0.5
配列番号４：アダプターADL
配列番号５：プライマーAP1
配列番号６：プライマーAP2
配列番号７：プライマーF1/458
配列番号８：プライマーF2/551
配列番号９：プライマーR1/248
配列番号１０：プライマーR1/139
配列番号１１：プライマーR2/101
配列番号１２：プライマーpBI121-F-HXK、塩基番号1〜21はHindIII、XhoI及びKpnI部位
配列番号１３：プライマーpBI121-R-HXK、塩基番号1〜9はXbaI部位
配列番号１４：プロモーター・プライマーXbaI-T-MIR
配列番号１５：プライマーP-1/F
配列番号１６：プライマーP-4/F
配列番号１７：プライマーP-7/F
配列番号１８：プライマーP-10/F
配列番号１９：プライマー EcoRI-T-2
配列番号２０：ターミネーター・プライマーSacI-P-MIR
配列番号２１：プライマー EcoRI-T-5

Claims

以下の（ａ）〜（ｃ）のいずれかのDNAからなる、ターミネーター。
（ａ）配列番号３で示される塩基配列からなるDNA
（ｂ）配列番号２の塩基番号１から、塩基番号４５０〜５５０のいずれかまでの塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーターと比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNA
（ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）のDNAの塩基配列において１若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなり、かつ、ノパリン合成酵素遺伝子ターミネーターと比較して、その上流に連結された遺伝子の発現産物量を増加させるターミネーター機能を有するDNA
プロモーター及び遺伝子挿入部位の下流に連結された請求項１に記載のターミネーターを含む、発現ベクター。
プロモーターが植物プロモーターである、請求項２に記載の発現ベクター。
プロモーターがカリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターである、請求項２に記載の発現ベクター。
遺伝子挿入部位に挿入された遺伝子をさらに含む、請求項２〜４のいずれか１項に記載の発現ベクター。
遺伝子の下流に連結された請求項１に記載のターミネーターを含む、DNA構築物。
前記ターミネーターが、プロモーター及びその制御下に配置された遺伝子の下流に連結されている、請求項６に記載のDNA構築物。
プロモーターが植物プロモーターである、請求項７に記載のDNA構築物。
プロモーターがカリフラワーモザイクウイルス35Sプロモーターである、請求項７に記載のDNA構築物。
請求項２〜５のいずれか１項に記載の発現ベクター又は請求項７〜９のいずれか１項に記載のDNA構築物を含む、形質転換体。
形質転換植物である、請求項１０に記載の形質転換体。
請求項５に記載の発現ベクター、又は請求項７〜９のいずれか１項に記載のDNA構築物を植物細胞に導入することを特徴とする、植物において前記遺伝子の遺伝子産物を組換え生産させる方法。