JP5283814B2 - Ssii活性が低下したオオムギならびにアミロペクチン含有量が低下したデンプンおよびデンプン含有生成物 - Google Patents
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Description
栄養科学における1つの所見は、難消化性デンプンが腸の健康、特に大腸の健康に重要な意味を有することである。難消化性デンプンの有益な効果は栄養素の大腸への供給により生じ、ここで、腸内フローラにエネルギー源が与えられ、このエネルギー源は発酵して特に短鎖脂肪酸を形成する。これらの短鎖脂肪酸は、大腸粘膜細胞に栄養素を供給し、大腸を横切るある種の栄養素の取り込みを増強し、結腸の生理学的活性を促進する。一般に難消化性デンプンまたは他の食物繊維が提供されない場合、結腸は代謝的に比較的不活性である。
本発明は、オオムギ植物のSSII変異体の単離および特性化から生じ、この変異体の穀粒は、アミロペクチン含有量の低下、および、それ故の高い相対レベルのアミロースを有し、それ故に食物繊維のレベルが増大しているデンプンを含有することが見出されている。
定義
グリセミック指数は、血中グルコース濃度の変動に対する白パンおよびグルコースなどの試験食物の効果の比較である。グリセミック指数は、食後の血清グルコース濃度に関する食物の予想される効果および血中グルコースホメオスタシスのためのインシュリンに対する要求の指標となり得る。
RS1 物理的に接近不能なデンプン。このデンプンの形態の例は、デンプンがタンパク質または同様なマトリックス内かもしくは植物細胞壁内に補足される場合に生じ、または穀粒の粉砕が部分的であるかもしくは冷却後の豆果中にあるために生じ得る。
RS2 難消化性顆粒。これらは、一般に、生ポテトまたは青いバナナから生じるデンプンなどの生のデンプン、いくつかの豆果および高アミロースデンプンである。
RS3 老化デンプン。これらは、デンプンまたはデンプン食物の熱/蒸気処理によって生じ、調理され冷えたポテト、パンおよびコーンフレークにおいて認められる。
RS4 化学修飾されたもの。これらは、置換または架橋などの化学修飾により生じる。この形態のデンプンは、しばしば加工食品において使用される。
背景
高等植物の内乳でのデンプンの合成は、4つの重要な工程を触媒する1組の酵素によって行われる。第1に、ADPグルコースピロホスホリラーゼは、G−1−PおよびATPからのADPグルコースの合成によってデンプンのモノマー前駆体を活性化する。第2に、活性化されたグルコシル供与体であるADPグルコースは、デンプンシンターゼによって、既存のα−1、4結合の非還元末端に転移される。第3に、デンプン分枝酵素は、α−1,4結合グルカンの領域の切断、続いて、切断された鎖の受容鎖への転移で新たなα−1,6結合を形成することによって、分岐点を導入する。最後に、遺伝研究は、デンプン脱分枝酵素が、高等植物における通常量のデンプンの合成に必須であることを実証しているが、脱分枝酵素が作用する機構については解明されていない(Myersら、2000)。
変異誘発およびスクリーニング
ZwarおよびChandler(1995)に従って、アジ化ナトリウムを使用して、外皮を欠くオオムギ変種ヒマラヤ(Himalaya)を変異誘発した。改変された穀粒形態を有する変種の選抜は、Greenら、(1997)に従って行った。Greenら、(1997)に従って、皺形(shrunken)内乳表現型を有する合計で75種の系統を同定し、維持した。
Schulmanら(1991)の方法を使用して、オオムギ穀粒からデンプンを単離した。
脱分枝されたデンプンを分離するためのHPLC法によるアミロース/アミロペクチン比の決定、およびヨウ素結合法は、BateyおよびCurtin、(1996)による記載の通りに行った。非脱分枝デンプンに関する分析によるアミロース/アミロペクチン比の分析は、Caseら、(1998)に従って行った。
デンプンは、Megazyme(Bray,Co Wicklow,Republic of Ireland)より供給される全デンプン分析キットを使用して決定した。
窒素はケルダール法によって決定し、タンパク質含有量は係数5.7を使用して算出した。
β−グルカンは、Megazyme(Bray,Co Wicklow, Republic of Ireland)より供給されるキットを使用して決定した。
デンプンを脱分枝し、Morellら(1998)に従い、キャピラリー電気泳動を使用する蛍光ラベル糖鎖電気泳動(FACE)を使用して、鎖長分布を分析した。
ゼラチン化は、Pyris 1示差走査熱量計(Perkin Elmer, Norwalk CT,USA)中で測定した。デンプンを、水2部:デンプン1部の比率で水と混合し、この混合物(40〜50mg、正確に秤量する)をステンレス製天秤皿中に置き、密閉した。サンプルを、空のステンレス製天秤皿を対照として、20℃から140℃まで、1分間当たり10℃で走査した。Pyrisソフトウェアを使用して、ゼラチン化温度およびエンタルピーを決定した。
粘度は、Bateyら、1997により全麦粉について報告された条件を使用し、ラピッドビスコアナライザー(Rapid−Visco−Analyser)(RVA,Newport Scientific Pty Ltd,Warriewood,Sydney)で測定した。α−アミラーゼを阻害するために、すべてのアッセイに12mMの濃度で硝酸銀を含めた。測定したパラメータは、最高粘度(最大熱糊化粘度)、最低粘度、最終粘度および糊化温度であった。さらに、ブレークダウン(最高粘度−最低粘度)およびセットバック(最終粘度−最低粘度)を算出した。
粉膨潤体積は、Konik−Roseら(2001)に従って決定した。
標準的な技術(Buleonら、1998)を使用して、X線回折データを回収した。
Joel JSM 35C装置上で走査電子顕微鏡観察を行った。精製したデンプンを金でスパッタコートし、15kV、室温で走査した。
半数体倍加は、Dr P.Davies,Waite Institute,Adelaide,Australiaにより、292とホルデウム・バルガレのタンタンガラ品種(Hordeum vulgare cv Tantangara)との間、および342とH.バルガレのタンタンガラ品種(H. vulgare cv Tantangara)との間の交雑から誘導されるF1植物から生成された。
MapManagerを使用して、遺伝子連結データを算出した。
プロトコル(Life Technology)に従い、開花10、12および15日後のオオムギ内乳組織由来の5mgのポリ(A)+mRNAをcDNA合成に使用した。NotI−(dT)18プライマー(Pharmacia Biotech)を、cDNA合成の第1鎖に使用した。二本鎖cDNAをSalI−XhoIアダプター(Stratagene)に連結させ、NotIによるcDNAの消化、続いてサイズ分画(Pharmacia Biotech製SizeSep 400スパンカラム)の後にZipLox(Life Technology)のSalI−NotIアームにクローン化した。連結したcDNAをGigapack III Goldパッケージング抽出(Stratagene)でパッケージングした。ライブラリーの力価は、大腸菌(E.coli)のY1090(ZL)株による試験で2×106pfuであった。
cDNAクローン、wSSIIp1を、オオムギのcDNAライブラリーのスクリーニングに使用した。cDNAクローン、wSSIIp1を、プライマーssIIa(TGTTGAGGTTCCATGGCACGTTC 配列表の配列番号9)およびssIIb(AGTCGTTCTGCCGTATGATGTCG 配列表の配列番号10)を使用するPCRにより作製し、wSSIIA(GenBank受託番号AF155217)のヌクレオチド1,435位〜1,835位の領域を増幅した。
オオムギヒマラヤcv(cv Himalaya)品種の内乳由来のRNAから構築したcDNAライブラリーを、先に記載のハイブリダイゼーション条件(Rahmanら、1998)で、347bpのcDNAフラグメントでスクリーニングした。ハイブリダイゼーションは、50%ホルムアルデヒド、6×SSPE、0.5%SDS、5×デンハルト溶液および1.7μg/mLサケ精子DNA中で、42℃、16時間行い、次いで、0.1%SDSを含有する2×SSCで、65℃、1回の洗浄あたり1時間で3回洗浄した。
オオムギ(オオムギモレックス(Morex)品種)ゲノムライブラリーを構築し、プローブとしてオオムギSSII cDNAを使用して、基本的にGublerら(2000)に記載の通りにスクリーニングした。
モレックス(Morex)SSII遺伝子をプラスミドベクターにサブクローン化し、配列決定した。292およびMK6827遺伝子を、モレックス(Morex)の配列に基づいて設計したプライマーを使用して、遺伝子の重複領域のPCR増幅によって配列決定した。PCRフラグメントは、直接配列決定するか、またはサブクローン化して、プラスミドから配列決定した。
cDNA中に存在することが推定される292およびMK6827ゲノム配列の領域を、ヒマラヤ(Himalaya)cDNA配列およびモレックス(Morex)ゲノム配列を参考にして決定した。
292において同定されるG→Aトランジション変異を含有する領域を増幅するPCRプライマーを設計した。プライマー配列は、ZLSS2P4(CCTGGAACACTTCAGACTGTACG 配列表の配列番号11)およびZLBSSII5(CTTCAGGGAGAAGTTGGTGTAGC 配列表の配列番号12)である。増幅は、FTS−1サーマルシークエンサー(Corbett,Australia)を使用して、95℃で2分間を1サイクル;95℃で30秒間、60℃で1分間、72℃で2分間を35サイクルおよび25℃で1分間を1サイクルとして実施した。
オオムギならびにコムギの発育および成熟内乳からデンプンを調製し、記載(Rahmanら、1995)のように、プロテイナーゼKで表面タンパク質を除去した。50mMのTris pH6.8、10%のSDSおよび10%の2−メルカプトエタノールを含有する0.5mlの抽出緩衝液を使用して、乾燥重量20mgのデンプンからデンプン顆粒タンパク質を抽出した。10分間の煮沸によるゼラチン化、および遠心分離によるデンプンの回収後、15マイクロリットルの上清を各レーンにロードした。
半数体倍加は、Dr P.Davies,Waite Institute,Adelaide,Australiaにより、292とホルデウム・バルガレのタンタンガラ品種(Hordeum vulgare cv Tantangara)との間、および342とH.バルガレのタンタンガラ品種(H.vulgare cv Tantangara)との間の交雑から誘導されるF1植物から生成された。
292とホルデウム・バルガレのスループ品種(Hordeum vulgare cv Sloop)との間で交雑を行い、F1種子を作製した。F1種子由来の植物を自殖させて、F2種子の集団を作製した。これらのF2種子から成長する植物を、PCRアッセイを使用して試験し、292変異に対してホモ接合の植物をスループ(Sloop)に戻し交雑させた(BC1)。BC1から生じるF1植物を再度PCRで試験し、292変異に対してヘテロ接合の植物を選抜し、スループ(Sloop)に戻し交雑させた(BC2)。BC2由来のF1植物を再度PCRにより分析し、292変異に対してヘテロ接合の植物を選抜した。これらの植物を自殖させてBC2F2集団を作製するか、または再度スループ(Sloop)に戻し交雑させた(BC3)。BC3由来のF1植物を再度PCRにより分析し、292変異に対してヘテロ接合の植物を選抜した。これらの植物を自殖させてBC3F2集団を作製した。これらの種子由来の植物をPCRにより試験し、単粒法および種子増加のために292変異に対してホモ接合の植物を選抜した。
変異体の選抜
アジ化ナトリウム処理によって誘導される外皮を欠くかまたは裸性のオオムギの変種“ヒマラヤ(Himalaya)”の多数の変異体の同定については、先にZwarおよびChandler(1995)により報告されている。本発明者らは、75の皺形(shrunken)穀粒変異のグループを同定し、皺形(shrunken)種子由来のデンプンのアミロース含有量をHPLCにより決定した(図1)。2つの系統292および342は、それぞれ71および62.5%のアミロース含有量を示すことが見出された(表1)。292および342のアミロース含有量は、従来の良く特性化されたAC38系統(47%アミロース、表1を参照のこと)よりも有意に高かった。本研究では、292および342によって表される新規の高アミロース表現型の遺伝的基礎を規定し、穀粒ならびにデンプンの構造および機能性に対する原因変異の効果について説明する。
穀粒のサイズおよび形態:
穀粒の重量および形態に対する変異の効果について記す(表2)。穀粒の重量は、親系統ヒマラヤ(Himalaya)の51mgから292の32mgおよび342の35mgに減少する。変異体は、野生型の長さおよび幅を保持するが、比較すると(ヒマラヤ(Himalaya)の平均2.82mmの厚さから、292および342のそれぞれ1.58および1.75mmへ)平坦になっており、基本的に非充填の中心領域を有する。図2は、変異体および野生型穀粒の写真を示す。穀粒の寸法については、図2に宗すように穀粒の長さ(L)、最も幅が広い点での穀粒の幅(W)、および厚さ(T)を定期的に測定した。穀粒の長さ(L)対厚さ(T)の比は、変異の診断に有用であり、292または342変異をもつ種子では典型的に>3.5の値が見出され、非変異オオムギでは<3.5の値が見出される。
変異系統のデンプン含有量は、ヒマラヤ(Himalaya)の49.0%から292および342のそれぞれ17.7および21.9%に減少する(表1を参照のこと)。穀粒の全重量からデンプンの重量を差し引いて穀粒の非デンプン分の全量を求めたところ、非デンプン重量は、ヒマラヤ(Himalaya)、292および342でそれぞれ26.0、26.3および27.3であり、穀粒重量の消失の原因がデンプン含有量の消失であることが示された。
アミロースおよびアミロペクチン含有量
2つの技術、第1に、90%(v/v)DMSO中でのサイズ排除HPLC、および、第2に、ヨード呈色度(iodine blue value)を使用して、アミロース含有量を決定した。それぞれの方法によって決定されたアミロース含有量は同様であったが、HPLCのデータを表1に示す。
イソアミラーゼ脱分枝後のデンプンの鎖長分布を、蛍光ラベル糖鎖電気泳動(FACE)を使用して行った。292および342変異体、ならびにヒマラヤ(Himalaya)の鎖長分布を図3aに示す。図3bは、292および342変異体について正規化した鎖長分布をヒマラヤ(Himalaya)の正規化した分布から差し引いた差分プロットを示す。DP6〜11、DP12〜30およびDP31〜65からの鎖長の百分率(percentages)を算出し、表3に示す。鎖長分布において292および342では顕著なシフトが認められ、例えば、DP12〜30と比較して、DP6〜11由来の領域のほうが、鎖の百分率が高い。
示差走査熱量測定を使用して、変異体のゼラチン化温度について調べたが、そのデータを表4に示す。292および342の両方とも、ゼラチン化ピーク開始(onset)、ピークおよび最終温度に関し、ヒマラヤ(Himalaya)デンプンより顕著に低いゼラチン化温度を有するデンプンを生じる。292および342変異体のゼラチン化ピークのエンタルピーも、野生型と比較して劇的に減少している。アミロース/脂質ピークの開始温度(onset temperature)も292および342では減少するが、しかし、変異体のアミロース含有量の増加にあわせて、エンタルピーは増加する。
オオムギ全麦サンプルの糊化粘度を検討するために、オオムギ全麦サンプルのRVA分析を行った。従来の研究では、全麦サンプルの分析は、単離されたデンプンの分析と強く相関することが明らかにされている(Bateyら、1997)。分析は、研究したオオムギ遺伝子型の間に大きな差異があることを示した(表5および図4を参照のこと)。野生型デンプンであるヒマラヤ(Himalaya)およびナモイ(Namoi)を含有する2つのオオムギ変種は、顕著な最高粘度、これに続く最低粘度への粘度の低下、これに続く冷却時の最終粘度への粘度の増加が認められる典型的なRVAプロフィールを示した。オオムギデンプンについて一般に観察されるように、野生型の最終粘度は、最高粘度に等しいか、またはそれ未満であった(表5)。AC38では、はっきりした最高粘度が観察されたが、この系統はアミロース含有量が高いため、観察された最終粘度は最高粘度よりも高かった。しかし、292、342およびMK6827では、極めて異なるプロフィールが観察された。他のオオムギデンプンで示されたような最高粘度に対応する初期の粘度の顕著な増加は観察されず、従って、ブレークダウンの値は算出されなかった。292、342およびMK6827については、表5に示す最高粘度の値は、ヒマラヤ(Himalaya)において最高粘度を示した時間に記録された粘度であり、粘度は、分析全体を通して、他の全麦サンプルに匹敵する最終粘度に到達するまで増加した。デンプン含有量に基づいて正規化した場合、292および342デンプンは、極めて高い最終粘度を有した(表5を参照のこと)。
X線結晶解析を使用して、デンプンの構造をさらに調べた(表6および図5を参照のこと)。ヒマラヤ(Himalaya)は、主として「A」型結晶を有する穀類デンプンの予想されるパターンを示し、AC38およびワキシロ(Waxiro)は互いに極めて類似なX線回折パターンを示したが、結晶性のレベルは、AC38のほうが低く、ワキシロ(Waxiro)の方が高かった。292および342変異体では、X線回折パターンはVおよびBパターンの混合型にシフトした。回折パターンのシフトに加えて、結晶の量は、292および342において、それぞれ9および12%まで急激に低下した。との結果は、292および342の低いアミロペクチン含有量に一致する。
走査電子顕微鏡を使用して、デンプンの顆粒形態について調べた(図6)。ヒマラヤ(Himalaya)(図6、パネルA)、モチ性オオムギ(ワキシロ(Waxiro)、図6、パネルb)、ならびにAC38(図6、パネルc)由来の顆粒のサイズおよび形状は、通常のオオムギ系統のデンプン顆粒について従来公開されている観察と一致した。変異系統である292(図6、パネルd)、342(図6、パネルe)、およびMK6827(図6、パネルf)の「A」型デンプン顆粒の形態は、通常のオオムギの平滑なレンズ状形状と比較して、回旋状の表面を有する顆粒に明らかに改変されている。
AOACの手順に従って食物繊維分析を行ったところ、292および342に食物繊維の増加があることが示され、食物繊維のこの増加は、可溶性食物繊維よりもむしろ不溶性食物繊維の増加によるものであることが示され(表1)、これは食物繊維の成分が難消化性デンプンおよびβ−グルカンであることと一致した。食物繊維のこの測定は化学的に決定されるものであって、栄養学的な見地に関連する生理学的測定とはかなり異なることに留意すべきである。
分離比
292または342の皺形(shrunken)内乳表現型を示さないオオムギ変種への変異の交雑により、この変異は、他殖集団のF2種子において通常3:皺形(shrunken)1の比および単一の他殖後に発育した半数体倍加集団の種子において通常1:皺形(shrunken)1の比を示す明白な劣性変異であることが実証された(表6を参照のこと)。通常種子を<3.5のL/T比を有する種子と規定し、皺形(shrunken)種子を>3.5のL/T比を有する種子と規定する。
292および342変異は、292および342の交雑由来の子孫の分析により、対立的(allelic)であることを明らかにした。相反交雑由来のすべてのF1種子は、親292および342系統について観察されるサイズならびに形状の範囲内であり、かつ親ヒマラヤ(Himalaya)系統について見いだされる種子サイズならびに形状の範囲外である穀粒重量および穀粒形態表現型を示した。さらに、292×342F1植物由来のすべてのF2種子は、292および342変異体に典型的な皺形(shrunken)種子表現型を示した。
292と市販の醸造用オオムギ変種、タンタンガラ(Tantangara)との間の交雑から半数体倍加集団を作製し、90子孫系統を継代させた(表8)。
nud遺伝子は、オオムギ染色体7H上に位置することが実証されている(図8、Fedakら、1972)。コムギでは、3つのデンプンシンターゼ(GBSS、SSIおよびSSII)、ならびにイソアミラーゼ型脱分枝酵素(S.Rahmanより個人的に入手)は、相同染色体である染色体7の短腕上に位置する(YamamoriおよびEndo、1996、Liら、1999a、Liら、1999b、Liら、2000))。nud座への密接な連結により、最も可能性の高い候補遺伝子はSSII遺伝子であることが示唆された。コムギSSII遺伝子は、cDNAレベル(Liら、1999b;Genbank受託番号AF155217)およびゲノムレベル(Liらより個人的に入手)でクローン化されており、オオムギcDNAは、単離され、クローン化されている(図9)。オオムギおよびコムギSSIIゲノム配列の配列決定は、遺伝子が極めて類似のエキソン/イントロン構造を有するが、イントロン領域の長さは、配列間で異なることを示している(図10)。モレックス(Morex)のゲノム配列とヒマラヤ(Himalaya)由来のcDNAの配列(図9)とを比較することにより、モレックス(Morex)、292およびMK2827由来の推定cDNA配列が同定される。
ゲル電気泳動技術の範囲で、変異体および通常のオオムギ系統におけるデンプン生合成酵素の組成について調べた。発育中の内乳の可溶性画分の分析により、すべての系統がBEI、BEIIa、BEIIb、SSIおよびSSIIIを含有すること、ならびにBEおよびSSにおけるこれらのイソ型の内容物のそれぞれは、本質的に改変されていないことが実証された。しかし、デンプン顆粒の分析により、いくつかのバンドが失われていることが示された。第1に、SDS−PAGE分析(図16、パネルB)は、ヒマラヤ(Himalaya)、タンタンガラ(Tantangara)およびAC38には存在する90kDのバンドが292、342またはMK6827には存在しないことを示した。このバンドは、インムノブロッティングによってSSII(図16、パネルB)ならびにBEIIaおよびBEIIbを含有することが明らかにされた。BEIIaおよびBEIIbが可溶性画分に存在し、顆粒には存在しないという知見は、発現を止める変異があるのではなく、むしろ292、342およびMK6827変異体におけるこれらの酵素の分布に改変があることを示す。対照的に、可溶性または顆粒画分のいずれかにSSII発現が認められるという証拠はなく(図16、パネルAおよびB)、このことは、292、342およびMK6827において観察される表現型にSSII変異を直接結び付ける遺伝的証拠と一致する。
2つの戦略を使用して、292変異を代替のオオムギ遺伝子型に伝達した。
本発明者らは、皺形(shrunken)内乳表現型を有するオオムギの新規の変異体、292および342の単離について述べる。穀粒組成の分析により、皺形(shrunken)表現型はデンプン含有量の有意な減少によるものであることが実証され、デンプン組成の分析により、この減少は、アミロペクチン合成の減少のために生じる高アミロース表現型として出現することが示されている。
ベクターの設計および構築
オオムギSSII遺伝子の領域(図15において規定される)を、形質転換のためのベクターにクローン化した。各標的に対し3つの構築物を調製し、遺伝抑圧戦略に取り組んだ:(1)センスコサプレッション(sense cosuppression)、(2)アンチセンスおよび(3)二重鎖仲介抑制(duplex-mediated suppression)。
示したDNAの領域は、適切な選択マーカー遺伝子配列および他の因子を含有するベクターか、またはこれらの配列を含有するベクターで同時形質転換されるベクターに組み入れられてもよい。
オオムギ(Tingayら、1997;Wanら、1994)、エンバク(Somersら、1992、1994;Glessら、1998;Zhangら、1999,Choら、1999)およびライムギ(Castilloら、、1994;Penaら、1984)の形質転換方法については記載されており、これらを使用してDNA構築物を転移し、トランスジェニック植物を作製することができる。
トランスジェニック植物の同定は、PCRまたはサザンハイブリダイゼーションによるDNA構築物のDNAの同定によって行われる。個々のオオムギデンプン生合成遺伝子の発現のレベルは、mRNAおよびタンパク質レベルの両方で、それぞれノーザンハイブリダイゼーションおよびウエスタンブロッティングなどの標準的な技術によって測定される。デンプンならびに穀粒の含有量および組成は、実施例1で例示した技術などの標準的な技術を使用して測定される。
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Claims (18)
- 変異SSII遺伝子を備えるオオムギ植物由来の穀粒であって、前記変異SSII遺伝子はコードされるSSIIの活性を低下させ前記穀粒におけるアミロペクチン含有量を低下させる変異遺伝子であり、全デンプン含有量に対してアミロース含有量が少なくとも60重量%である前記穀粒。
- 前記変異SSII遺伝子が配列表の配列番号1に示す配列を備えるとともに、変異が短縮型変異、漏出型変異から選ばれるものであるか、または欠失、逆位、重複または点変異を含むものである、請求項1に記載の穀粒。
- 前記変異SSII遺伝子が、前記変異SSII遺伝子のC末端触媒ドメインが翻訳されない短縮型変異体である、請求項2に記載の穀粒。
- 前記変異SSII遺伝子のcDNA配列が配列表の配列番号4に示す配列を備えるものである、請求項1に記載の穀粒。
- 前記穀粒から作られた粉(flour)または全麦(wholemeal)の膨潤体積が3.2未満である、請求項1〜請求項4のいずれか1項に記載の穀粒。
- 前記穀粒から作製される粉(flour)または全麦(wholemeal)の膨潤体積が少なくとも2である、請求項1〜請求項5のいずれか1項に記載の穀粒。
- 外皮を有さない穀粒(non-hulled grain)の全重量の少なくとも6%のβ−グルカンを含む、請求項1〜請求項6のいずれか1項に記載の穀粒。
- デンプン含有量が裸性穀種の12%を超えること、容易に粉砕可能であること、紫色の色彩を示さないこと、裸性であること、厚さに対する長さの比率が5.8未満であること、からなる群より選択される特性を有する、請求項1〜請求項7のうちいずれか1項に記載の穀粒。
- 厚さに対する長さの比率が5.5未満である、請求項1〜請求項8のうちいずれか1項に記載の穀粒。
- 厚さに対する長さの比率の範囲が4から5である、請求項9に記載の穀粒。
- 前記穀粒中のデンプンが次のうち少なくとも1つによって特徴付けられる、請求項1〜請求項10のいずれか1項に記載の穀粒;
a)示差走査熱量測定による第1の糊化ピークの開始(onset)が53℃未満である、
b)示差走査熱量測定による第1の糊化ピークの頂点が60℃未満である、および、
c)示差走査熱量測定による第1の糊化ピークのエンタルピー(ΔH)が3.5未満である。
- 前記穀粒のデンプンの糊化温度が75℃以上である、請求項1〜請求項11のいずれか1項に記載の穀粒。
- 結晶性を示すデンプンの割合が20%未満である、請求項1〜請求項12のいずれか1項に記載の穀粒。
- 前記穀粒のデンプンに含まれ、デンプン−脂質複合体に特徴的な結晶性形状を示す結晶性デンプンの割合が50%以上である、請求項1〜請求項13のいずれか1項に記載の穀粒。
- 前記穀粒のデンプンに含まれ、31−60残基の範囲の長さをもつアミロペクチン鎖の割合が5%以上である、請求項1〜請求項14のいずれか1項に記載の穀粒。
- 請求項1〜請求項15のいずれか1項に記載の穀粒を産生可能なオオムギ植物。
- 粉砕された、挽かれた、粗挽きされた、精白されたかまたは圧延された、請求項1〜請求項15のいずれか1項に記載の穀粒。
- オオムギ植物のSSII変異体の、全デンプン含有量に対するアミロース含有量が少なくとも60重量%であるオオムギ穀粒を産生するための使用であって、前記変異体においてはSSII活性が低下しており、前記穀粒におけるデンプンのアミロペクチン含有量が低下している、前記使用。
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