JP5030292B2 - ポリマーを基にした持続放出性装置 - Google Patents
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Description
本明細書中で集合的にポリペプチドとして称される、多くのタンパク質及びペプチドはin vivoで生物学的活性を示し、医薬として有用である。多くの病気または状態が持続レベルの医薬投与を必要とし、最も効果的な予防及び/又は治療効果を提供する。持続レベルはしばしば、頻繁な皮下注射による生物学的活性ポリペプチドの投与で達成され、これがしばしば医薬及び不十分な患者のコンプライアンスのレベルの変動を起こす。
本発明は優れた放出プロフィール(約3以下のCaveに対するCmaxの比率で特徴付けられるもの等)が、製造方法におけるポリマーに対するシリコーン油の比率を最適化することによって少数の成分を含む製剤で達成され得、そこで低細孔容積を達成するという発見に関する。本発明は生物学的活性ポリぺプチド等の薬剤の持続放出性のための組成物、並びに生物学的活性ポリペプチドの持続放出性のための、かかる組成物を形成及び使用する方法に関する。本発明の持続放出性組成物は、生体適合性ポリマー、生物学的活性ポリペプチド等の薬剤、及び糖を含む。ポリペプチド及び糖は好ましくはポリマー中で分散される。ポリペプチド及び糖は別々にまたは好ましくは一緒に分散され得る。持続放出性組成物は所望かつ一定の放出プロフィールを提供する。特定の態様において、プロフィールは約3以下のCaveに対するCmaxの比率を有するものとして特徴づけられる。好ましい態様において、生物学的活性ポリペプチドは、GLP-1、GLP-2、エキセンディン(exendin)-3、エキセンディン-4またはそのアナログ、誘導体若しくはそのアゴニスト、好ましくはエキセンディン-4等の、抗糖尿病性または糖調節性ポリペプチドである。糖は好ましくは、スクロース、マンニトールまたはその組み合わせである。好ましい組み合わせとしては、エキセンディン-4並びにスクロース及び/またはマンニトールが挙げられる。
本発明は、生物学的活性ポリペプチドの持続放出性用組成物、並びに生物学的活性ポリペプチドの持続放出性のための、前記組成物を形成及び使用する方法に関する。本発明の持続放出性組成物は、生体適合性ポリマー、及び生物学的活性ポリペプチド等の薬剤、及び糖を含む。薬剤及び糖は生体適合性ポリマーにおいて別々に、又は好ましくは一緒に分散される。特定の態様において、持続放出性組成物は、約3以下の平均血清濃度(Cave)に対する最大血清濃度(Cmax)の比率を有する放出プロフィールによって特徴付けられる。本明細書中で使用される場合、用語a又はanは1以上を指す。
好ましい態様において、薬剤は、GLP-1、GLP-2、エキセンディン-3、エキセンディン-4若しくはそのアナログ、誘導体若しくはアゴニストを含む、抗糖尿病性又は糖調節性ポリペプチド等の生物学的活性ポリペプチドである。最も具体的には、ポリペプチドはエキセンディン-4である。しかし、他の薬剤は本明細書中に記載の発見を利用し得る。
本明細書中に定義される場合、糖は単糖類、二糖類又はオリゴ糖(約3〜約10の単糖)又はその誘導体である。例えば、単糖類の糖アルコールは糖の本定義に含まれる適切な誘導体である。したがって、例えば、単糖類マンノース由来である糖アルコールのマンニトールは、本明細書中に使用される場合、糖の定義に含まれる。
本発明の持続放出性組成物を形成する適切なポリマーは、生物分解性若しくは非生物分解性ポリマー又はその混合物若しくはコポリマーのいずれかであり得る生体適合性ポリマーである。ポリマーが生体適合性であるのは、ポリマー及び任意のポリマーの分解産物が被移植者に非毒性であり、注射部位で実質的な免疫学的反応等の、被移植体に重大な有毒又は有害作用をも有さない場合である。
当該分野で周知であるように、添加賦形剤が請求された発明の製剤に添加され得ることが可能である一方で、本発明の驚くべき発見は、優れた放出プロフィールが本明細書中に記載の単純な製剤で達成され得るということである。かかる添加賦形剤が薬剤の放出速度を増大又は低下し得る。実質的に放出速度を増大し得る成分としては、ポリマー分解を容易にする細孔形成薬剤及び賦形剤が挙げられる。例えば、ポリマー加水分解の速度は、非中性pHで増大する。それゆえに、無機酸若しくは無機塩基等の酸性賦形剤又は塩基性賦形剤がポリマー溶液に添加され、微粒子を形成するために使用され、ポリマー腐食速度を変更し得る。実質的に放出速度を低下し得る成分としては、薬剤の水溶性を低下させる賦形剤が挙げられる。
本発明の組成物を、当該分野にて一般に公知の方法にしたがって投与し得る。本発明の組成物を患者(例えば、薬剤を必要とするヒト)または他の動物に、注射、移植(例えば、皮下、筋肉内、腹膜内、頭蓋内、および皮内)、粘膜への投与(例えば、鼻腔内、膣内、肺内または坐剤による)、またはインサイチュ送達(例えば、浣腸剤もしくはエアゾール噴霧)によって投与し得る。
いくつかの方法が、本発明の持続放出性組成物(ポリマー/生物学的活性ポリペプチドマトリクス)、本明細書中に記載されるように特に低多孔性を有する組成物を形成し得ることによって知られている。微粒子形成のいくつかの方法に対する詳細な手順が実施例に示される。好ましい態様において、生物学的活性ポリペプチドの持続放出性のための組成物を形成する本発明の方法は、水、水溶性ペプチド等の薬剤および糖を含む水相と、生体適合性ポリマーおよびポリマー溶媒を含む油相とを合わせることによって混合物を形成すること;油中水滴型エマルジョンを形成すること;コアセルベーション剤、例えばシリコーン油、植物油または鉱油を混合物に添加して初期微粒子を形成すること;初期微粒子をクエンチ溶媒へ移し微粒子を硬化させること;硬化した微粒子を回収すること;ならびに硬化した微粒子を乾燥させることを含む。このプロセスは本明細書中にて水中油中油滴プロセス(W/O/O)と一般によぶ。
微粒子調製物I
本明細書中に記載される持続放出性組成物を相分離プロセスによって調製した。1kgバッチサイズのエキセンディン-4およびスクロースを含有する微粒子に対する一般的なプロセスを以下に記載する。
ホモジナイザーを用いて油中水滴型エマルジョンを生成した。好適なホモジナイザーとしては、インライン(in-line)MegatronホモジナイザーMT-V 3-65 F/FF/FF、Kinematica AG、Switzerlandが挙げられる。エキセンディン-4およびスクロース等の賦形剤を水に溶解させることによってエマルジョンの水相を調製した。得られる溶液における薬物の濃度は約50mg/g〜約100mg/gであり得る。例えば薬物がエキセンディン-4である場合、溶液中の薬物の濃度は水600gにつき約30g〜約60gであり得る。特定の態様において、50gのエキセンディン-4および20gのスクロースを600gの灌注(irrigation)用水(WFI)に溶解した。上記で指定した量は、使用される多くのエキセンディン-4に対して特異的なペプチド含量(content)の強度を補正する(compensate)ための調整をしていない、名目上の負荷を表す。PLGAポリマー(例えば、930gの精製された50:50のDL4A PLGA(Alkermes,Inc.)を塩化メチレン(14.6kgまたは6% w/w)中に溶解させることによって、エマルジョンの油相を調製した。
次いで、約5分間にわたりシリコーン油(21.8kgのジメチコーン(Dimethicone)、NF、350cs)を内部エマルジョンに添加することでコアセルベーション工程を行った。これはシリコーン油と塩化メチレン、1.5:1の比率に相当する。ポリマー溶液からの塩化メチレンはシリコーン油中に分配され、エキセンディン-4を含有する水相の周りにポリマーを沈殿させ始め、微小カプセル化をもたらす。かくして形成された初期ミクロスフェアは軟らかく硬化を必要とする。しばしば、初期ミクロスフェアは短時間、例えばミクロスフェア硬化工程を進める前の約1分〜約5分放置させ得る。
次いで初期ミクロスフェアを、即座にヘプタン/エタノール溶媒混合物中に移した。必要とされるヘプタン/エタノール混合物の容量は、ミクロスフェアのバッチサイズに基づいて決定され得、典型的に塩化メチレンとヘプタン/エタノール溶媒の16:1の比率となる。本実施例において、3℃の冷却された攪拌水槽に約210kgのヘプタンおよび23kgのエタノールを使用した。この溶媒混合物は、ミクロスフェアからのさらなる塩化メチレンを抽出することによってミクロスフェアを硬化させた。この硬化工程はまたクエンチングともよばれ得る。3℃にて1時間クエンチした後、溶媒混合物はデカントされて、新鮮なヘプタン(13kg)を3℃にて添加し1時間保持してミクロスフェア表面上の残留シリコーン油、エタノールおよび塩化メチレンを洗浄するか、または回収工程に対して直接的に汲み出される(pump)かのいずれかである。
クエンチまたはデカント/洗浄工程の終わりに、ミクロスフェアを12インチのSweco Pharmasep Filter/Dryer Model PH12Y6に移し、回収した。濾過器/乾燥器としては20ミクロン多層式回収ふるいを使用し、回収および乾燥の間ふるいを振動させるモーターに接続される。最大ライン(maximum line)移動を確保しかつ任意の過剰なシリコーン油を除去するため、ヘプタン(3℃にて6Kg)を用いる最終洗浄処理を行った。次いで、以下のスケジュール:3℃にて6時間;41℃までの勾配で6時間;および41℃にて84時間に従って、調節された速度での窒素ガスの一定パージを伴う真空状態でミクロスフェアを乾燥させた。
A.内部油中水滴型エマルジョンの形成
ソニケーターを用いて油中水滴型エマルジョンを生成した。好適なソニケーターとしては、モデルCV33プローブヘッドを有するVibracell VCX 750、Sonics and Materials Inc., Newston、 CTが挙げられる。エキセンディン-4およびスクロース等の賦形剤を水に溶解させることによってエマルジョンの水相を調製した。得られる溶液における薬物の濃度は約50mg/ml〜約100mg/mlであり得る。例えば薬物がエキセンディン-4である場合、溶液中の薬物の濃度は水65.5gにつき約3.28g〜約6.55gであり得る。特定の態様において、5.46gのエキセンディン-4および2.18gのスクロースを65.5gの灌注用水またはWFIに溶解させた。上記に指定した量は、成分の濾過滅菌の際の損失分を補正するために、標的負荷に対する4%の余分量を表す。PLGAポリマー(例えば、97.7gの精製された50:50のDL4A PLGA(Alkermes,Inc.))を塩化メチレン(1539gまたは6% w/v)中に溶解させることによって、エマルジョンの油相を調製した。
次いで、約3〜5分間にわたりシリコーン油(2294gのジメチコーン、NF、350cs)を内部エマルジョンに添加することでコアセルベーション工程を行った。これはシリコーン油と塩化メチレン1.5:1の比率に相当する。ポリマー溶液からの塩化メチレンはシリコーン油中に分配され、エキセンディン-4を含有する水相の周りにポリマーを沈殿させ始め、微小カプセル化をもたらす。かくして形成された初期ミクロスフェアは軟らかく硬化を必要とする。しばしば、初期ミクロスフェアは短時間、例えばミクロスフェア硬化工程を進める前の約1分〜約5分放置させ得る。
次いで初期ミクロスフェアを、即座にヘプタン/エタノール溶媒混合物中に移した。必要とされるヘプタン/エタノール混合物の容量は、ミクロスフェアのバッチサイズに基づいて決定され得る。本実施例において、3℃の冷却された攪拌水槽(350〜450rpm)に約22kgのヘプタンおよび2448gのエタノールを使用した。この溶媒混合物は、ミクロスフェアからのさらなる塩化メチレンを抽出することによってミクロスフェアを硬化させた。この硬化工程はまたクエンチングともよばれ得る。3℃にて1時間クエンチした後、溶媒混合物はデカントされて、新鮮なヘプタン(13kg)を3℃にて添加し1時間保持してミクロスフェア表面上の残留シリコーン油、エタノールおよび塩化メチレンを洗浄した。
洗浄処理の終わりにミクロスフェアを、内側が一端の閉じた濾過器としての機能を果たす円錐型乾燥室である直径6インチ、20ミクロン多層式回収ふるいに移し、回収した。ヘプタン(4℃にて6Kg)を用いる最終洗浄処理を行って、最大ライン移動を確保した。次いで、以下のスケジュール:3℃にて18時間;25℃にて24時間;35℃にて6時間;および38℃にて42時間に従って、調節された速度での窒素ガスの一定パージでミクロスフェアを乾燥させた。
使用に適する具体的なPLGポリマーの例を以下のリストに示す。以下の実施例で用いたポリマーはすべて、そのリストに示し、リストに示したポリマーはすべて、Cincinnati,OHのAlkermes、Inc.から入手し、以下のように記載され得る。
ポリマー2A: ポリ(ラクチド-コ-グリコリド); 50:50 ラクチド:グリコリド比; 12.3 kD Mol. Wt.; IV=0.15 (dL/g)
ポリマー4A: ポリ(ラクチド-コ-グリコリド); 50:50 ラクチド:グリコリド比; Mol. Wt. 45- 64 kD; IV=0.45-0.47 (dL/g)
下記のキャラクタライゼーション方法が、活性剤の所望の放出プロフィールをもたらす微粒子の同定に好適であることが確定された。
SEMを、微粒子の粒径、形状および表面特徴を評価するために使用した。SEMイメージングは、Personal SEM(登録商標)システム(ASPEXTM、LLC)において行なった。すべての試料は、スパチュラにより、カーボン両面テープで被覆した標準SEMスタッブ(stub)上に堆積させた。試料をAuで約90秒間18 mA 放出電流により、Model SC 7620 “Mini” Sputter Coater (Energy Beam Sciences)を用いてスパッターコートした。すべてのSEMイメージングは、20 KeV電子ビームを用い、およそ250〜2500×の拡大範囲で行なった。
微粒子の断面を、極低温(cryogenic)SEMを用いて調べた。微粒子試料を、HISTO PREP(登録商標)Solution (Fischer)と混合し、-20℃のクリオスタット内に一晩維持した。硬化した微粒子をガラスカバースリップ上に置き、次いで、金属ナイフを用いて細分した。細分した粒子をアルミニウムスタッブ上に置き、パラジウムおよび白金でスパッターコートし、走査電子顕微鏡(Phillips 525M)下で観察した。切片の目視観察は、微粒子の多孔度の測定方法を提供する。
微粒子内の細孔容積分布を、SutoPor IV型9500 Moden Mercury Intrusion Porosimeter (Micromeritics、Norcross、GA)を用いて測定した。簡単には、針入度計(penetrometer)にて、段階的に最大圧力60,000 Psiaまで圧力を負荷することにより、水銀を既知量の微粒子内に押し込んだ。細孔内に圧入された水銀の容量を種々の圧力で測定した。この方法は、微粒子内の細孔分布を定量する。すなわち、圧入された細孔の径は、負荷した圧力に反比例する。液体-固体-気体系における内力と外力の平衡は、ウォシュバーン式で示され得る。負荷された圧力と水銀が押し込まれる細孔径との関係は、
式中: D = 細孔直径
γ = 表面張力(定数)
θ = 接触角 (定数)
P = 圧力
で示される。
ヘプタン、エタノールおよび塩化メチレンの定量には単一の方法を用いた。装置は、Rtx 1301、30 cm×0.53 mm カラムを有するHP 5890 Series 2ガスクロマトグラフから構成された。約130 mgの微粒子を10 ml N,N-ジメチルホルムアミドに溶解した。酢酸プロピルを内部標準として用いた。試料調製は、0.03%という低い塩化メチレンの濃度が定量され得るように調整した。
表1に示す微粒子バッチを上記のようにして、100グラム規模で、4Aポリマーおよびシリコーン油の塩化メチレンに対する比1.5:1または1:1のいずれかを用いて調製した。シリコーン油は、350 csの粘度を有した。製剤化に用いたエキセンディン-4および賦形剤の量もまた表1に示す。
水銀圧入法から得られた全圧入容積および計算した平均細孔直径を表2に示す。平均細孔直径とインビトロ放出との関係を図1に示す。
極低温SEM解析を、上記のようにして、表1の形式2、3および5の製剤において行なった。図3A〜3Bは、選択した製剤形式2(製剤2-2、図3A)および形式5(5%エキセンディン-4、2%スクロース、図3B)の顕微鏡写真のスキャンである。図4A〜Dは、それぞれ、表1の製剤3-4、3-5、3-6および3-7の顕微鏡写真のスキャンである。この場合も、硫酸アンモニウムの使用で示された初期放出の変動に寄与し得る多孔性の変動が、図4A〜Dの極低温SEM断面において見られ得る。
ある所定の製剤中の残留溶媒のレベルは、該製剤のTgに影響を与え得る。残留溶媒レベルを、表1の形式2および5の微粒子製剤について調べた。ヘプタン、エタノールおよび塩化メチレンの定量には単一の方法を用いた。装置は、Rtx 1301、30 m×0.53 mm カラムを有するHP 5890 Series 2ガスクロマトグラフから構成された。約130 mgの微粒子を10 ml N,N-ジメチルホルムアミドに溶解した。酢酸プロピルを内部標準として用いた。試料調製は、0.03%という低い塩化メチレンの濃度が定量され得るように調整した。
微粒子製剤における硫酸アンモニウムの存在によって導入される多孔性が変動することおよび多孔性が初期放出に有意に影響を与える特徴であると確認されたことに鑑み、さらなる知見において硫酸アンモニウムは追求しなかった。
以下の試験は、内部エマルジョンの形成ならびに得られるエマルジョンおよび作製されたミクロスフェアで得られる24時間インビトロ放出の安定性に対するプロセスパラメーターの影響を調べるために、異なるプロセスパラメーターを用いて行なった。水相および溶媒相の内部エマルジョンが、100g規模について上記のような超音波処理、または36/4発電機(Kinematica AG、Switzerland)を備えたMT5000ホモジナイザーを低速(10,800 rpm)もしくは高速(21,300 rpm)のいずれかで用いた均質化のいずれかによって形成された。種々の手法による内部エマルジョン形成後、エマルジョンは、アリコートを取り出す前に、オーバーヘッドスターラーで5、15または60分間穏やかに攪拌しながら反応器内に保持した。指定の保持時間後、内部エマルジョンを、さらに、上記のようにして微粒子に加工し、次いで、24時間インビトロ放出を、各バッチについて、以下に記載のようにして測定した。
内部エマルジョンのアリコートを反応器からガラスピペットを用いて抜き出した。トランスファーピペットを用い、約30滴の内部エマルジョンを、20cc容スクリューキャップシンチレーションバイアル内に、約10 mlの6%Medisorb(登録商標)50:50 4A PLGポリマー溶液に添加した後、混合した。また、6%Medisorb(登録商標)50:50 4A PLGポリマー溶液を参照ブランク溶液とした。次いで、約9 mlのこの希釈エマルジョン試料を、洗浄した10 ml容Horiba試料ホルダーに移した。試料ホルダー上にカバーを置き、ポリマー溶媒の急速な蒸発を防いだ。調製された試料は、青いライン(blue bar)(ランプ)の0.65%〜0.90%の目盛範囲の許容透過率%内であった。0.94〜0.00iの相対屈折率設定を、プログラムのセットアップに選択した。試料を、次いで、小滴サイズ用LA 910型などのHoriba 粒径解析装置によって測定した。プロセスパラメーターおよび5、15および60分にわたる保持時間で得られた内部エマルジョンサイズ、ならびに得られた24時間インビトロ放出結果(かっこ内)に対応するデータを図9に示す。
エキセンディン-4ミクロスフェアを、ラットにおける薬物含量、粒径、残留溶媒、初期インビトロ放出、およびPK特性に関して慣用的にキャラクタライズした。薬物を抜き取り、選択したバッチにおいて、カプセル化後のエキセンディン-4純度の予備評価を得た。
エキセンディン-4の初期放出は、放出バッファー (10 mM HEPES、100 mM NaCl、pH 7.4)中に1時間後のエキセンディン-4の濃度を測定することにより測定した。150±5 mgのミクロスフェアを、5.0 mLの10mM HEPES、100mM NaCl、pH 7.4バッファー中に室温で入れ、約30秒間ボルテックスして溶液を懸濁し、次いで、37℃のエアチャンバ室内に1時間入れた。1時間後、試料をエアチャンバ室から取り出し、数回上下逆さにして混合した後、3500 rpmで10分間遠心分離した。上清みを取り出し、以下の条件: カラム: TSK-GEL(登録商標)、7.8 mm x 30 cm、5 m (TSOH BIOSEP PART #08540); カラムオーブン温度: 周囲温度; 自動試料採取装置温度: 6℃; 流速: 0.8 mL/分; 検出: 280 nm; インジェクション容量: 10 L; 移動相:アセトニトリル35%/0.1%TFAを含む水65%/リットル(v/v); 実行時間: およそ20分を用いたHPLCによって直接解析した。30 mM酢酸バッファー、pH 4.5中で調製したエキセンディン-4バルク薬物質、0.2 mg/mLを標準として使用した。
本明細書に記載するすべての薬物動態(PK)試験は、およそ500±50 gの重量の成体雄Sprague-Dawleyラットにおいて行なった。
血漿中のエキセンディン-4の定量方法は、サンドイッチイムノアッセイとし、検体は、固相モノクローナル抗体EXE4:2-8.4により捕捉し、放射性ヨウ化モノクローナル抗体GLP-1:3-3によって検出する。結合分の計測数を、標準較正曲線から定量する。このアッセイは、完全長または完全エキセンディン-4に特異的であり、エキセンディン-4(3-39)を検出しない。典型的な標準曲線範囲は、トレーサー抗体の寿命(age)に応じて30 pg/mL〜2000 pg/mLである。
製剤2、2-1および2-2(3%エキセンディン-4および2%スクロース)を、インビトロ初期放出について上記のようにして試験した。インビトロ放出は、それぞれ、0.4%、0.4%および0.5%であった。また、すべての3つのバッチは、0-1日で1154〜1555 pg/mLの範囲のCmaxの比較的低いインビボ初期放出を有した。図6は、3%エキセンディン-4および2%スクロース_(2-l)を有する製剤、また、3%エキセンディン-4単独(1) ならびに3%エキセンディン-4および0.5%硫酸アンモニウム(4)に関する代表的な薬物動態曲線である。シリコーン油の塩化メチレンに対する比1.5:1を用い、シリコーン油の粘度は350 csとした。
表1の製剤2-3、2-4および2-5 (3%エキセンディン-4、2%スクロース)を、1:1のシリコーン油の塩化メチレンに対する比を用いて調製した。これらの製剤の初期放出は、表1の製剤2、2-1および2-2(3%エキセンディン-4、2%スクロースで1.5:1のシリコーンの塩化メチレンに対する比)の場合よりも高かった。具体的には、1.5:1比の製剤は、平均初期放出約0.4%をもたらしたが、1:1比の製剤は、平均初期放出約1.0%をもたらした。同じ傾向がインビボで観察され、1:1比の場合のラットにおける第0日〜第1日のCmaxは2288±520pg/mLであったが、1.5:1比の場合のラットにおける第0日〜第1日のCmaxは1300±221 pg/mLであった。
スクロースを2%に維持したまま、エキセンディン-4負荷を4%に増加させると、インビトロおよびインビボで3%負荷と同じ範囲の初期放出がもたらされた。
Claims (9)
- a) 水溶性エキセンディン-4およびスクロースを含む水相を、50:50のDL PLG 4Aポリマーを塩化メチレン中に含む油相と合わせることにより、混合物を形成する工程;
b) 工程a)の混合物の油中水型エマルジョンを形成する工程、ここで内部エマルジョンの小滴の大きさが0.5ミクロン未満である;
c) コアセルベーション剤をエマルジョンに添加して初期(embryonic)微粒子を形成する工程、ここで、前記コアセルベーション剤は、1:1〜1.5:1のシリコーン油:ポリマー溶媒の比を得るのに充分な量で添加されたシリコーン油であり、シリコーン油が3〜5分でエマルジョンに添加され、コアセルベーション剤とエマルジョンとの混合物が1分以下の間維持される;
d) 初期微粒子をクエンチ溶媒に移して前記微粒子を硬化する工程、ここでクエンチ溶媒はヘプタン/エタノール混合物であり、移す時間が3分以下である;
e) 硬化された微粒子を回収する工程;ならびに
f) 硬化された微粒子を乾燥する工程;
を含む、エキセンディン-4の持続放出のための組成物の調製方法。 - a) 硫酸アンモニウムの非存在下で水溶性エキセンディン-4ポリペプチドおよびスクロースを含む水相を、精製された50:50のDL PLG 4Aポリマーを塩化メチレン中に含む油相と合わせ、混合物を形成する工程、ここで前記精製されたポリマーは0.3〜0.5 dL/gの固有粘度を有する;
b) 工程a)の混合物の油中水型エマルジョンを形成する工程、ここで内部エマルジョンの小滴の大きさが0.5ミクロン未満である;
c) コアセルベーション剤をエマルジョンに添加して初期(embryonic)微粒子を形成する工程、ここで、前記コアセルベーション剤は、1:1〜1.5:1のシリコーン油:ポリマー溶媒の比を得るのに充分な量で添加されたシリコーン油であり、シリコーン油が3〜5分でエマルジョンに添加され、コアセルベーション剤とエマルジョンとの混合物が1分以下の間維持される;
d) 16:1(v/v)の塩化メチレン:クエンチ溶媒の比で、初期微粒子をクエンチ溶媒に移して前記微粒子を硬化する工程、ここでクエンチ溶媒はヘプタン/エタノール混合物であり、移す時間が3分未満である;
e) 硬化された微粒子を回収する工程;ならびに
f) 硬化された微粒子を乾燥する工程;
を含む、エキセンディン-4の持続放出のための薬学的に許容され得る組成物の調製方法であって、ここで前記組成物の全細孔容積が、水銀圧入ポロシメトリー(mercury intrusion porosimetry)を用いて測定した場合、0.1mL/g以下であり、放出期間中のエキセンディン-4の平均血清濃度(Cave)に対する放出期間中のエキセンディン-4の最高血清濃度(Cmax)の比が3以下である放出プロフィールを示す、方法。 - 3〜5重量%のエキセンディン-4および2重量%のスクロースが内部に分散された50:50のDL PLG 4Aポリマーを含む、エキセンディン-4の持続放出のための組成物であって、前記組成物は、請求項1または2記載の方法によって得られたものであり、前記組成物の全細孔容積が、水銀圧入ポロシメトリー(mercury intrusion porosimetry)を用いて測定した場合、0.1mL/g以下であり、放出期間中のエキセンディン-4の平均血清濃度(Cave)に対する放出期間中のエキセンディン-4の最高血清濃度(Cmax)の比が3以下である放出プロフィールを示す、組成物。
- エキセンディン-4の量が5重量%である、請求項3記載の組成物。
- 前記組成物が、前記組成物からのエキセンディン-4の放出速度を変更するさらなる成分を含まない、請求項3または4記載の組成物。
- エキセンディン-4のインビトロ初期放出が、0.5%未満である、請求項3〜5いずれか記載の組成物。
- 前記組成物が、糖尿病の治療のためにヒトに投与するのに適切な薬学的に許容され得る組成物である、請求項3〜6いずれか記載の組成物。
- 2型糖尿病を有する患者を治療するための医薬の製造における、請求項3〜6いずれか記載の組成物の使用。
- 該組成物が注射によって投与される、請求項8記載の使用。
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