JP4852683B2 - 大麦を発酵に付したものを有効成分とする血管新生阻害の作用を有する組成物 - Google Patents
大麦を発酵に付したものを有効成分とする血管新生阻害の作用を有する組成物 Download PDFInfo
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- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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Description
(1)大麦焼酎蒸留残液を分画して得られた組成物、大麦焼酎蒸留残液を培地とした乳酸菌培養液および発酵大麦ファイバーアルカリ抽出物からなる群より選ばれる、大麦を発酵に付したもの由来の成分を血管新生阻害作用の有効成分とすることを特徴とする血管新生を阻害するための組成物。
(2)上記大麦焼酎蒸留残液を分画して得られた組成物が、大麦焼酎蒸留残液合成吸着材処理非吸着画分、大麦焼酎蒸留残液合成吸着材処理吸着画分、および大麦焼酎蒸留残液エタノール沈殿画分からなる群より選ばれる1以上の組成物である上記(1)の血管新生を阻害するための組成物。
(3)上記血管新生を阻害するための組成物が、腫瘍もしくは癌、慢性炎症または網膜症における異常な血管新生が原因となる疾患を治療または予防するための組成物である上記(1)または(2)の血管新生を阻害するための組成物。
なお、大麦を発酵に付す際に,使用する微生物は特に限定されないが,酵母,乳酸菌,納豆菌,あるいは麹菌等を用いることができる。特に,発酵大麦エキスを調製する際の発酵工程に用いる酵母としては、ビール酵母、清酒酵母、焼酎酵母、ワイン酵母、パン酵母などがあげられるが、焼酎酵母を用いることが望ましい。
すなわち、本発明の血管新生を阻害するための組成物は、血管新生を阻害すべき疾患を治療または予防するための組成物である。血管新生を阻害すべき疾患とは、血管新生が病態の発生に重要な働きをしている疾患であれば、どのようなものでも対象となる。したがって、血管新生を阻害すべき疾患は、腫瘍もしくは癌、慢性炎症または網膜症における異常な血管新生が原因となる疾患である。より具体的には、血管新生を阻害すべき疾患は例えば、種々の組織に発生する固型腫瘍、骨髄腫、血管腫などの腫瘍もしくは癌;慢性関節性リウマチ、乾癬、変形性関節症などの慢性炎症;または加齢性黄斑変性症、糖尿病性網膜症、新生血管緑内障などの網膜症;などの疾患をあげることができるが、これらのものには限定されない。本発明においては、血管新生を阻害すべき疾患として、種々の腫瘍または癌を標的とすることが好ましい。
まず、大麦麹を製造する。大麦を40%(w/w)吸水させ、40分間蒸した後、40℃まで放冷し、大麦トンあたり1kgの種麹(白麹菌)を接種し、38℃、RH95%で24時間、32℃、RH92%で20時間保持することにより、大麦麹は製造することができる。前記方法で製造した大麦麹に、水および焼酎酵母の培養菌体を加えて1次もろみを得、得られた1次もろみを5日間の発酵(1段目の発酵)に付す。次いで、2次仕込みでは、上記1段目の発酵を終えた1次もろみに、水と前記方法で製造した大麦麹とを加えて11日間の発酵(2段目の発酵)に付す。発酵温度は1次仕込み、2次仕込みとも25℃とする。上記2段目の発酵を終えた2次もろみを常法により単式蒸留に付し、麹歩合100%の大麦焼酎と大麦焼酎蒸留残液を得る。
すなわち、上記飲食品が、血管新生を阻害するための、機能性食品、栄養補助食品または健康飲食品である。上記飼料が、血管新生を阻害するための、家畜、家禽、ペット類の飼料である。具体的には、上述した大麦を発酵に付したもの、大麦焼酎蒸留残液を含む食品素材を、食品形態、飲料形態または飼料形態のいずれの形態で使用することができる。
本発明の血管新生を阻害するための組成物が有する上述した機能性を生かして用いる場合は、その含量は、特に制限されないが、目的とする機能の度合い、使用態様、使用量等により適宜調整することができ、例えば0.001〜100質量%である。本血管新生を阻害するための組成物は、人体やその他飲食物、医薬品、飼料や皮膚外用剤に使用することができる。また、経口等により内服することも、皮膚等に塗布することもできる。常法にしたがって経口、非経口の製品に配合することができ、調味料、食品添加物、食品素材、飲食品、健康飲食品、皮膚外用剤、医薬品および飼料等の様々な分野で利用することができる。例えば、飲食物に配合した場合には、血管新生を阻害すべき疾患を治療または予防するための飲食物を提供することができる。予防等の効果からは、健康食品、栄養食品等として用いられることも期待できる。その他、家畜および/または、魚類の飼料、餌料に利用することができる。人体やその他飲食物、医薬品、肥料、飼料や皮膚外用剤に使用することにより、血管新生を阻害すべき疾患を治療または予防する効果を得ることができる。
さらに、大麦を発酵に付したもの、大麦焼酎蒸留残液から容易に得ることができ、コスト面からみても、資源の有効活用という面からみても好ましい。
乳液状形態のものは、例えば、油相部に組成物を添加し、更にグリセリン脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステル、グリセロール、デキストリン、ナタネ油、大豆油、コーン油などの液状の脂肪を加え、水相部にL−アスコルビン酸或いはそのエステルまたは塩、例えばローカストビーンガム、アラビアガムまたはゼラチンなどのガム質、例えばヘスペリジン、ルチン、ケルセチン、カテキン、チアニジンなどのフラボノイド類またはポリフェノール類或いはその混合物などを添加し、乳化することによって調製できる。
これらの治療剤および予防剤は、ヒト以外の動物、例えば、牛、馬、豚、羊などの家畜用哺乳類、鶏、ウズラ、ダチョウなどの家禽類、は虫類、鳥類或いは小型哺乳類などのペット類、養殖魚類などにも用いることができる。
〈サンプル名称〉
No. 1-1 : 発酵大麦エキス粉末(50%デキストリン)
No. 1-2 : 発酵大麦エキスS粉末(50%デキストリン)
No. 1-3 : 発酵大麦エキスP粉末
No. 1-4 : 発酵大麦エキスEI
No. 1-5 : 発酵大麦エキスEI-C
No. 1-6 : 発酵大麦エキスU
No. 1-7 : 発酵大麦エキスEI-CU
No. 1-8 : 発酵大麦エキスCU
No. 1-9 : 乳酸菌培養液
No. 1-10 : 納豆菌培養液(75%デキストリン)
No. 1-11 : 発酵大麦ファイバーアルカリ抽出
本実験に用いたサンプルについては、他の実験との兼ね合いがあり、粉末化したサンプルを再溶解して実験に用いているが、液状のまま、実験に用いても何ら問題はない。なお、下記したように粉末化する際に、賦形材としてエキスと等量のデキストリンを添加したものもある。なおデキストリン含量は重量パーセント濃度 (W/W)である。
原料としては、大麦(70%精白)を用いた。
麹の製造:大麦を40%(w/w)吸水させ、40分間蒸した後、40℃まで放冷し、大麦トンあたり1kgの種麹(白麹菌)を接種し、38℃、RH95%で24時間、32℃、RH92%で20時間保持することにより、大麦麹を製造した。
大麦焼酎及び大麦焼酎蒸留残液の製造:1次仕込みでは前記方法で製造した大麦麹(大麦として3トン)に、水3.6キロリットル及び酵母として焼酎酵母の培養菌体1kg(湿重量)を加えて1次もろみを得、得られた1次もろみを5日間の発酵(1段目の発酵)に付した。次いで、2次仕込みでは、上記1段目の発酵を終えた1次もろみに、水11.4キロリットル、前記方法で製造した大麦麹(大麦として6トン)とを加えて11日間の発酵(2段目の発酵)に付した。発酵温度は1次仕込み、2次仕込みとも25℃とした。上記2段目の発酵を終えた2次もろみを常法により単式蒸留に付し、麹歩合100%の大麦焼酎10キロリットルと大麦焼酎蒸留残液15キロリットルを得た。得られた大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して、大麦焼酎蒸留残液液体分5Lを得た。該液体の固型含量と等量のデキストリンを混合し、凍結乾燥した。
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液の液体分を得、該液体分25Lと脱イオン水10Lをこの順番にオルガノ社製の合成吸着剤アンバーライトXAD-16を充填したカラム(樹脂容量10L)に通して吸着分離処理することにより、該カラムの合成吸着剤に対して非吸着性を示す素通り液からなる非吸着画分を分取した。得られた該非吸着画分の固型含量と等量のデキストリンを混合し、真空凍結乾燥機を用いて凍結乾燥に付し、凍結乾燥物2400gを得た。
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液の液体分を得、得られた液体分25Lをオルガノ社製の合成吸着剤アンバーライトXAD-16を充填したカラム(樹脂容量10L)に接触させ、当該カラムに吸着する吸着画分を得、さらに前記吸着画分を吸着した該カラムに脱イオン水10Lを接触させて得られた溶出液を除去後、該カラムに1(wt/vol)%の水酸化ナトリウム溶液10Lと脱イオン水10Lをこの順番に接触させることにより吸着画分からなる溶出液20Lを分取した。該溶出液20Lをオルガノ社製強酸性陽イオン交換樹脂IR-120Bを充填したカラム(樹脂容量10L)に接触させた後に、該液体を凍結乾燥に付した。
〈発酵大麦エキスEI〉
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液液体分5Lを得、得られた液体分をBrix度が25になるまで真空蒸留機で濃縮後、3倍容量のエタノールを加え、8000rpm、10minの条件で遠心分離してエタノール不溶性画分を分取し、該エタノール不溶性画分を凍結乾燥に付した。
〈発酵大麦エキスEI-C〉
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液液体分を得、該液体分25Lと脱イオン水10Lをこの順番にオルガノ社製の陽イオン交換樹脂アンバーライト200CT Naを充填したカラム(樹脂容量10L)に通して吸着分離処理することにより、該カラムの陽イオン交換樹脂に対して非吸着性を示す素通り液からなる非吸着画分を分取した。得られた液体分をBrix度が60になるまで真空蒸留機で濃縮し、3倍容量のエタノールを加え、8000rpm、10minの条件で遠心分離してエタノール不溶性画分を分取し、該エタノール不溶性画分を凍結乾燥に付した。
〈発酵大麦エキスEI-CU〉
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液液体分を得、得られた液体分をBrix度10に調整後、このBrix度10に調整した液体分1Lを500 ml容量のオルガノ社製アンバーライト200CT Na(強酸性陽イオン交換樹脂)を充填したカラムに通して、イオン交換樹脂に非吸着の画分を得、得られたイオン交換樹脂に非吸着の画分を日本ポール(株)製の限外濾過膜セントラメイト オメガ 10K(分画分子量1万)による濃縮処理に付して濃縮液を得、得られた液体分をBrix度が40になるまで真空蒸留機で濃縮し、3倍容量のエタノールを加え、8000rpm、10minの条件で遠心分離してエタノール不溶性画分を分取し、該エタノール不溶性画分を凍結乾燥に付した。
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液液体分を得、得られた液体分を日本ポール(株)製の限外濾過膜セントラメイト オメガ 10K(分画分子量1万)による濃縮処理に付して濃縮液を得、得られた液体分を凍結乾燥に付した。
[発酵大麦エキスCU]
大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液液体分をオルガノ社製アンバーライト200CT Na(強酸性陽イオン交換樹脂)を充填したカラムに通して、イオン交換樹脂に非吸着の画分を得、得られたイオン交換樹脂に非吸着の画分を日本ポール(株)製の限外濾過膜セントラメイト オメガ 10K(分画分子量1万)による濃縮処理に付して濃縮液を得、得られた液体分を凍結乾燥に付した。
・大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液の液体分を得、該液体分を水で希釈してそのBrix度4に調整し、グルコースを3.6重量%添加し、水酸化ナトリウムを用いてpH5.5に調整後121℃、15分間の条件で滅菌処理を行い乳酸菌培養用培地を得た。
・ナイシン生産能を有する乳酸菌の前培養
Lactococcus lactis IO-1の保存株50μlを10mlのTGC培地に接種し、37℃で18時間静置培養することにより培養液を得、該培養液10mlをCMG培地100mlに接種し、37℃ で3時間、100rpmで振とう培養することにより乳酸菌前培養液を得た。
・ナイシン生産能を有する乳酸菌の本培養
2L容ジャーファーメンターに、上記乳酸菌培養用培地500mlと上記乳酸菌前培養液25mlを導入し、攪拌速度250rpm、培養温度30℃、培養時間24時間、pH5.5の条件で回分培養を行った。該乳酸菌培養液を凍結乾燥に付した。
・大麦焼酎製造の蒸留工程で得られた前記大麦焼酎蒸留残液を8000rpm、10minの条件で遠心分離して大麦焼酎蒸留残液の液体分を得、該液体分に水酸化ナトリウムを加えてそのpH値を7.0に調整した。得られた調製液を滅菌処理して納豆菌培養用の培地を得た。
・納豆菌の前培養
肉エキス10gとペプトン10gを蒸留水1Lに溶解し、得られた溶液に水酸化ナトリウムを添加してそのpH値を7.0に調整後、121℃、15分間の条件で滅菌処理を行い肉エキス培地を得た。該肉エキス培地5mlと市販納豆菌の宮城野菌1白金耳を試験管に導入して攪拌し、42℃で15時間振とう培養して納豆菌前培養液を得た。
・納豆菌の本培養
2L容ジャーファーメンターに、上記納豆菌培養用培地1Lと上記納豆菌前培養液5mlを導入し、通気量0.2vvm、攪拌速度300rpm、培養温度42℃の条件で、14日間培養を行った。該納豆菌培養液の固型含量の3倍量のデキストリンを混合し、凍結乾燥に付した。
70%精麦の大麦1トンを使用して大麦焼酎もろみを製造し、常法に従って約2週間発酵/熟成させ、単式蒸留機によりアルコールを分離し、大麦焼酎蒸留残液1.5kLを得た。得られた大麦焼酎蒸留残液1kLをスクリュープレスを用いて固液分離し、得られた固体分から大麦溝条約50kgを得た。得られた大麦溝条をドラムドライヤーで乾燥後、ロールミルにより粉砕し、大麦溝条粉末(組成物)5.5kgを得た。該大麦溝条粉末50gを、2%Ca(OH) 2水溶液1Lに懸濁し、常温で6時間攪拌後、HCLでpH7.0に調整し、ろ紙ろ過した。ろ液を凍結乾燥に付した。
1.実験試料
1-1 サンプル調製
1-1-1 血管新生阻害実験用
上述したサンプルNo.1-1ないし1-11を1000μgずつ秤量後、それぞれ別に1mlの培地で溶解し、ろ過滅菌(0.22μm)後、10倍希釈(2回)を行い、10μg/mlから100μg/mlの濃度のサンプルを調製した。
1-1-2 TOF-MS測定試験用
上述したサンプルNo.1-1ないし1-4のサンプルを10mg/mlの濃度で水に溶解させた後、1mg/ml、100μg/ml、10μg/ml、1μg/ml、0.1μg/mlの濃度に希釈。
*1-11は溶解性低い。
2-1 血管新生阻害実験
ヒト血管内皮細胞と繊維芽細胞を最適濃度で共培養し、管腔形成初期段階の増殖状態にあるものに各サンプル(1-1-1)を添加し、11日間培養(4、7、9日後にサンプルを含む培地を交換)後、管腔形成をMouse anti-human CD31とGoat anti-mouse IgG AlkP Conjugateを用いて染色後、顕微鏡観察した。血管新生阻害効果について、形成された管腔様網目構造を評価した。得られた結果を図1に示す。図1から明らかな通り,発酵大麦ファイバーアルカリ抽出物ならびに発酵大麦エキスPは有意に管腔形成を阻害した。
2-2-1 測定条件
測定はpositive ion及びnegative ionの両条件で、リフレクターモードにより検出した。測定基準物質としてbeta-cyclodextrin(M. W. 1135.12)を用い、calibrationはDNBAのdimmer (positive ion mode 273、 negative ion mode 307)とbeta-cyclodextrinで行った。
2-2-2 サンプル調製
マトリックスには10 mg/ml 2、5-dihydroxybenzoic acid (DHBA)の水溶液もしくは20%エタノール水溶液を用いた。各濃度のサンプル溶液はマトリックス溶液と1:1もしくは1:2で混合し、1μlの各混合溶液を測定プレート上にapplyし、自然乾燥した後、negative ion modeで測定した。
positive ion modeでの測定において多糖類は一般的に[M+Na]+もしくは[M+K]がメインピークとして観測される。そこでcyckodextrin誘導体のMALDI-TOF MS測定の報告[B. Chankvetadze et al.、 Carbohydrate Research、 287、 139-555(1996)]を参考に、サンプル溶液:マトリックス溶液:30 mM NaCl 水溶液=1:1:1の混合溶液も併せて調製し、positive ion modeでの測定に用いた。
その結果、4つのサンプル共に同様のスペクトルパターンが観測された(図は省略する。)。
positive ion modeでは650Da前後のピークから約210Daの間隔でピークが約3000Da付近まで観測され、ピーク強度は分子量が増加するに連れ減少した。negative ion modeでも約580Daのピークから約210Daの間隔で、同様の挙動が観測された。
positive ion modeでの645Daピークとnegative ion modeでの576Daのピークの様にpositive/negative modeでそれぞれ近い値を示すピーク間隔は約69Daで、69Daはおよそ3Na+に相当し、サンプル調製時のNaCl水溶液の添加によるものと考えられる。
210Daの間隔でピークが観測される可能性としては以下の2点が考えられる。
1) 210Daに相当する糖修飾部分がレーザー照射に伴い切断されている。
2) 210Daに相当する糖で構成されるホモ多糖類の混合物。
上記1)についての可能性を検討したが、210Daに相当する糖修飾は調査した限りで、見つけることはできなかった。一方、2)の可能性についてはカルボキシル基(-COOH)を修飾部に持つ糖の分子量は209Daと非常に近い値を持っていた。
[参考]
-NMR測定
上記2)の可能性を検討するため、サンプル2-1について重水中で7mg/mlでの1H-NMRを測定した(図省略)。測定結果をbeta-cyclodextrinのスペクトルと比較したところ、1-3ppmに糖由来と考えられるシグナルの他に、3-5ppmに非常に複雑なシグナルが観測された。また6.5-7.5ppmにもシグナルが認められアミドプロトンもしくは芳香環をもつ様名化合物が含まれていることが示唆され、多糖類の構造を推定することは困難である。
現時点での結果から分子量、約600から3000Da程度の多糖類と低分子量化合物を含むサンプルと推察される。3000Da以上の化合物についても存在の可能性があるので、測定条件を検討し引き続き測定を行う予定である。
〈サンプル名称〉
表1に示すとおり。
A1、A2:ネガティブコントロール
A3、A4:ポジティブコントロール
D1〜D3:大麦焼酎蒸留残液合成吸着材処理吸着画分粉末(発酵大麦エキスP粉末)
本実験に用いたサンプルについては、他の実験との兼ね合いがあり、粉末化したサンプルを再溶解して実験に用いているが、液状のまま、実験に用いても何ら問題はない。なお、下記したように粉末化する際に、賦形材としてエキスと等量のデキストリンを添加したものもある。なおデキストリン含量は重量パーセント濃度 (W/W)である。
前記段落0045に記載のサンプルを使用した。
1.実験試料
1-1 サンプル調製
1-1-1 血管新生阻害実験用
各試料を1000μgずつ秤量後、それぞれ別々に1mlの培地で溶解し、ろ過滅菌(0.22μm)後、10倍希釈(3回)を行い、表1(血管新生阻害効果評価試験サンプル内訳)に示す10μg/mlから1000μg/mlの濃度のサンプルを調製した。同様に表1に示すネガティブコントロール、ポジティブコントロールのサンプルを調製した。
2.実験方法、及び結果
2-1 血管新生阻害実験
ヒト血管内皮細胞と繊維芽細胞を最適濃度で共培養し、管腔形成初期段階の増殖状態にあるものに各サンプル(1-1-1、ネガティブコントロール、ポジティブコントロール)を添加し、11日間培養(4、7、9日後にサンプルを含む培地を交換)後、管腔形成をMouse anti-human CD31とGoat anti-mouse IgG AlkP Conjugateを用いて染色後、顕微鏡観察した。血管新生阻害効果について、形成された管腔様網目構造を評価した。
得られた結果を表2および図2および図3に示す。血管組織の写真をデジタルデータとして取り込み、ランダムに選択した数箇所の血管部分(黒色部分)の面積を測定することによって血管新生阻害の効果を求めた。即ち表2のAREAの欄の数値が小さいほど血管新生阻害の効果が高いサンプルであることを示している。
〈サンプル名称〉
表3に示すとおり。
本件に用いたサンプルについては、他の実験との兼ね合いがあり、粉末化したサンプルを再溶解して実験に用いているが、液状のまま、実験に用いても何ら問題はない。なお、下記したように粉末化する際に、賦形材としてエキスと等量のデキストリンを添加したものもある。なおデキストリン含量は重量パーセント濃度 (W/W)である。
前記段落0044を参照。
1.実験試料
1-1 サンプル調製
1-1-1 血管新生阻害実験用
各試料を1000μgずつ秤量後、それぞれ別々に1mlの培地で溶解し、ろ過滅菌(0.22μm)後、10倍希釈(3回)を行い、10μg/mlから1000μg/mlの濃度のサンプルを調製した。
2-1 血管新生阻害実験
ヒト血管内皮細胞と繊維芽細胞を最適濃度で共培養し、管腔形成初期段階の増殖状態にあるものに各サンプルを添加し、11日間培養(4、7、9日後にサンプルを含む培地を交換)後、管腔形成をMouse anti-human CD31とGoat anti-mouse IgG AlkP Conjugateを用いて染色後、顕微鏡観察した。評価基準として、管腔形成を促進するVEGF-Aを10ng/ml、管腔形成を阻害するSuraminを50μMを同様に添加し、controlは無添加とした。血管新生阻害効果について、形成された管腔様網目構造を評価した。
方法:クラボウ社製のキットにより測定した。4つのポイントにおける管腔形成状態(面積、長さ、枝分れの数)を観察した。血管新生因子であるVEGFと血管新生抑制剤であるSuraminを共存させた系を対照とし、VEGFと各サンプル共存下の管腔形成状態を比較した。
(Suraminとサンプルの血管新生阻害活性を比較)
・サンプル添加濃度; 10、100、1000μg/mL
(Suraminは全て一定濃度;50μM)
結果:得られた結果を表3(血管新生阻害効果の数値データ)および図4に示した。
Claims (3)
- 大麦焼酎蒸留残液を分画して得られた組成物、大麦焼酎蒸留残液を培地とした乳酸菌培養液および発酵大麦ファイバーアルカリ抽出物からなる群より選ばれる、大麦を発酵に付したもの由来の成分を血管新生阻害作用の有効成分とすることを特徴とする血管新生を阻害するための組成物。
- 上記大麦焼酎蒸留残液を分画して得られた組成物が、大麦焼酎蒸留残液合成吸着材処理非吸着画分、大麦焼酎蒸留残液合成吸着材処理吸着画分、および大麦焼酎蒸留残液エタノール沈殿画分からなる群より選ばれる1以上の組成物である請求項1の血管新生を阻害するための組成物。
- 上記血管新生を阻害するための組成物が、腫瘍もしくは癌、慢性炎症または網膜症における異常な血管新生が原因となる疾患を治療または予防するための組成物である請求項1または2の血管新生を阻害するための組成物。
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