JP2594241B2 - 酸化開環サッカライドによるヘモグロビンの選択的架橋 - Google Patents
酸化開環サッカライドによるヘモグロビンの選択的架橋Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
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Description
【発明の詳細な説明】 発明の分野 本発明は、血液代用品、ならびに、その製造方法に関
するものである。さらに詳しくは、本発明は、ヘモグロ
ビンを基質とする血液代用品、ならびに、その血液代用
品の基質としての使用適性を改善するための、ヘモグロ
ビンの化学的修飾方法に関するものである。
するものである。さらに詳しくは、本発明は、ヘモグロ
ビンを基質とする血液代用品、ならびに、その血液代用
品の基質としての使用適性を改善するための、ヘモグロ
ビンの化学的修飾方法に関するものである。
発明の背景 自然界における血液中酸素運搬成分としてのヘモグロ
ビンは、例えば水溶液などとして、血液代用品の基質を
形成させるための明かな候補物質である。血液代用品と
して作用する満足すべきヘモグロビン溶液を提供しよう
とする試みについて、幅広い学術研究がこれまで行わ
れ、報告されている。しかし、赤血球外におけるヘモグ
ロビンの化学的性質は、例えばその酸素親和性などにつ
いて、赤血球内におけるその性質とは著しく異なる。ヘ
モグロビンを何らか化学的に修飾して、血液代用品とし
ての使用に適したものにする必要性は長らく認識されて
おり、きわめて幅広く研究の対象とされてきた。
ビンは、例えば水溶液などとして、血液代用品の基質を
形成させるための明かな候補物質である。血液代用品と
して作用する満足すべきヘモグロビン溶液を提供しよう
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れ、報告されている。しかし、赤血球外におけるヘモグ
ロビンの化学的性質は、例えばその酸素親和性などにつ
いて、赤血球内におけるその性質とは著しく異なる。ヘ
モグロビンを何らか化学的に修飾して、血液代用品とし
ての使用に適したものにする必要性は長らく認識されて
おり、きわめて幅広く研究の対象とされてきた。
ヘモグロビンが、4個の小単位(sub−unit)、すな
わち、それぞれグロビン・ペプチド鎖を有する2個のα
小単位、及びそれぞれグロビン・ペプチド鎖を有する2
個のβ小単位、の四量体からなることはよく知られてい
る。この四量体は約64キロドールトン(kilodalton)の
分子量を有し、各小単位はほぼ同じ分子量を有する。四
量体ヘモグロビンは、希薄水溶液中で容易にα−β二量
体に解離し、ある条件のもとではさらにα−小単位単量
体及びβ−小単位単量体にまで解離する。二量体及び単
量体は、あまりにも分子量が低いために身体の循環器系
に停留することができず、腎臓で濾過されて尿中に排泄
される。その結果、このような物質の身体における半減
寿命は容認し難いほど短くなる。さらに、非架橋ヘモグ
ロビンは顕著な腎毒性を招くので、製品中の非架橋ヘモ
グロビンの濃度を減じる必要がある。小単位同士を化学
的に結合させて四量体形式を維持させる必要性(「分子
内架橋」)がこれまで認識されてきた。また、2個ある
いはそれ以上の四量体単位を互いに結合させて64キロド
ールトンより大きい分子量のヘモグロビンオリゴマー又
はポリマーを形成させること(「分子間架橋」)も、多
くの事例において望ましいものと認識されてきた。
わち、それぞれグロビン・ペプチド鎖を有する2個のα
小単位、及びそれぞれグロビン・ペプチド鎖を有する2
個のβ小単位、の四量体からなることはよく知られてい
る。この四量体は約64キロドールトン(kilodalton)の
分子量を有し、各小単位はほぼ同じ分子量を有する。四
量体ヘモグロビンは、希薄水溶液中で容易にα−β二量
体に解離し、ある条件のもとではさらにα−小単位単量
体及びβ−小単位単量体にまで解離する。二量体及び単
量体は、あまりにも分子量が低いために身体の循環器系
に停留することができず、腎臓で濾過されて尿中に排泄
される。その結果、このような物質の身体における半減
寿命は容認し難いほど短くなる。さらに、非架橋ヘモグ
ロビンは顕著な腎毒性を招くので、製品中の非架橋ヘモ
グロビンの濃度を減じる必要がある。小単位同士を化学
的に結合させて四量体形式を維持させる必要性(「分子
内架橋」)がこれまで認識されてきた。また、2個ある
いはそれ以上の四量体単位を互いに結合させて64キロド
ールトンより大きい分子量のヘモグロビンオリゴマー又
はポリマーを形成させること(「分子間架橋」)も、多
くの事例において望ましいものと認識されてきた。
ヘモグロビンは、赤血球中に存在する際、その分子中
の特定の個所において天然の配位子、ジホスホグリセレ
ート(DPG)と結合している。この特定個所はDPG裂ある
いはDPGポケットとして知られている。赤血球の細胞膜
を除去すると、DPGはヘモグロビンから解離し、その結
果、ヘモグロビン分子の立体的転移が起こり、それによ
ってヘモグロビンの酸素親和性は望ましからぬほど増大
する。ヘモグロビンを基質とする満足すべき血液代用品
は、ヘモグロビンが天然の全血液中に存在したときとほ
ぼ同じように、同じ条件で、酸素と結合し、酸素を運搬
し、放出する能力を備えているべきであろう。この問題
に対処すべく、これまでにも、ピリドキサール−5′−
ホスフェートPLPのようなDPG類似体をヘモグロビンに共
有結合的に結合させて、血液代用品の基質を形成させる
ことが行われた。
の特定の個所において天然の配位子、ジホスホグリセレ
ート(DPG)と結合している。この特定個所はDPG裂ある
いはDPGポケットとして知られている。赤血球の細胞膜
を除去すると、DPGはヘモグロビンから解離し、その結
果、ヘモグロビン分子の立体的転移が起こり、それによ
ってヘモグロビンの酸素親和性は望ましからぬほど増大
する。ヘモグロビンを基質とする満足すべき血液代用品
は、ヘモグロビンが天然の全血液中に存在したときとほ
ぼ同じように、同じ条件で、酸素と結合し、酸素を運搬
し、放出する能力を備えているべきであろう。この問題
に対処すべく、これまでにも、ピリドキサール−5′−
ホスフェートPLPのようなDPG類似体をヘモグロビンに共
有結合的に結合させて、血液代用品の基質を形成させる
ことが行われた。
先行技術の簡単な説明 シャー(Hsia)の合衆国特許第4,857,636号(1989年
8月15日発行)には、化学的に修飾したヘモグロビンを
基質とする血液代用品が記述されている。そこでは、ポ
リアルデヒドとの反応によってヘモグロビンを分子内架
橋結合させている。シャー特許で使用が勧奨されている
特定のポリアルデヒドは、トリサッカライドの一種であ
るラフィノースなどのサッカライド類の開環的酸化生成
物である。この反応は、小単位のグロビン鎖を互いに非
部位特異的に架橋することによって、ヘモグロビン小単
位が四量体に結合し、この四量体ヘモグロビンがT−構
造あるいはR−構造に安定化され、得られた四量体の酸
素親和性が制御されるものと言われている。この反応は
また、安定化された四量体のほかに、所定量の分子間架
橋によってヘモグロビンのオリゴマーを形成させるべく
制御可能であると言われている。シャー特許によれば、
グロビン鎖の非部位特異的架橋は、化学量的な反応剤を
通常必要とする部位特異的架橋とは異なり、架橋安定化
ヘモグロビンの収量を増すために大過剰モル量のポリア
ルデヒドを用いることができる点で有利である、とそこ
では述べられている。
8月15日発行)には、化学的に修飾したヘモグロビンを
基質とする血液代用品が記述されている。そこでは、ポ
リアルデヒドとの反応によってヘモグロビンを分子内架
橋結合させている。シャー特許で使用が勧奨されている
特定のポリアルデヒドは、トリサッカライドの一種であ
るラフィノースなどのサッカライド類の開環的酸化生成
物である。この反応は、小単位のグロビン鎖を互いに非
部位特異的に架橋することによって、ヘモグロビン小単
位が四量体に結合し、この四量体ヘモグロビンがT−構
造あるいはR−構造に安定化され、得られた四量体の酸
素親和性が制御されるものと言われている。この反応は
また、安定化された四量体のほかに、所定量の分子間架
橋によってヘモグロビンのオリゴマーを形成させるべく
制御可能であると言われている。シャー特許によれば、
グロビン鎖の非部位特異的架橋は、化学量的な反応剤を
通常必要とする部位特異的架橋とは異なり、架橋安定化
ヘモグロビンの収量を増すために大過剰モル量のポリア
ルデヒドを用いることができる点で有利である、とそこ
では述べられている。
しかし、シャー特許に開示されている方法及び生産物
についてさらに調査研究を進めた結果、反応条件及びそ
の他の要因の一部を変更することによって、方法工程の
制御及び再現性において、また、最終生産物の性質及び
一貫性において、予期せざる改善の達成が可能であるこ
とが明らかになった。動物生体に投与することを目指し
た血液代用品などの生産物は、成分組成が制御可能であ
り、再現可能であって、従ってその効果及び副作用が適
切に監視できるようなものであるべきであろう。
についてさらに調査研究を進めた結果、反応条件及びそ
の他の要因の一部を変更することによって、方法工程の
制御及び再現性において、また、最終生産物の性質及び
一貫性において、予期せざる改善の達成が可能であるこ
とが明らかになった。動物生体に投与することを目指し
た血液代用品などの生産物は、成分組成が制御可能であ
り、再現可能であって、従ってその効果及び副作用が適
切に監視できるようなものであるべきであろう。
発明の要約 本発明の目的は、ヘモグロビンを基質とする血液代用
品を製造する新規な方法を提供することにある。
品を製造する新規な方法を提供することにある。
本発明がさらに目的とするところは、ヘモグロビン
を、サッカライド類の酸化的開環によって誘導されるポ
リアルデヒドと反応させる、改善させた方法及び条件を
提供することにある。
を、サッカライド類の酸化的開環によって誘導されるポ
リアルデヒドと反応させる、改善させた方法及び条件を
提供することにある。
本発明は、ある程度、ジ/トリ−サッカライド(本明
細書では、ジサッカライド及びトリサッカライド意味す
るためにこの言葉を用いる)の酸化的開環によるポリア
ルデヒド生産物が、ヘモグロビンの2,3−ジホスホグリ
セレート結合(DPG)裂における特定の個所で反応し
て、二つのβ−グロビン鎖を架橋結合させ、しかもポリ
アルデヒド生成物自体は実質的に均質であると言う点
で、高度に特異的である、という発見に基づいている。
開環し、酸化されたジ/トリ−サッカライドは、アルカ
リ性条件下で加水分解的分解を受ける。開環され、酸化
されたラフィノース(o−ラフィノース)の溶液は、例
えばpH>7で貯蔵した場合、顕著なアルカリ加水分解を
受けて、酸化トリサッカライドとの混合物として、酸化
ジサッカライド(例えばo−スクロール)及び酸化モノ
サッカライド(例えばo−ガラクトース)を生じる。o
−ラフィノース溶液は、貯蔵溶液をpH<7、好ましくは
pH<6に維持することによって安定に保たれる。
細書では、ジサッカライド及びトリサッカライド意味す
るためにこの言葉を用いる)の酸化的開環によるポリア
ルデヒド生産物が、ヘモグロビンの2,3−ジホスホグリ
セレート結合(DPG)裂における特定の個所で反応し
て、二つのβ−グロビン鎖を架橋結合させ、しかもポリ
アルデヒド生成物自体は実質的に均質であると言う点
で、高度に特異的である、という発見に基づいている。
開環し、酸化されたジ/トリ−サッカライドは、アルカ
リ性条件下で加水分解的分解を受ける。開環され、酸化
されたラフィノース(o−ラフィノース)の溶液は、例
えばpH>7で貯蔵した場合、顕著なアルカリ加水分解を
受けて、酸化トリサッカライドとの混合物として、酸化
ジサッカライド(例えばo−スクロール)及び酸化モノ
サッカライド(例えばo−ガラクトース)を生じる。o
−ラフィノース溶液は、貯蔵溶液をpH<7、好ましくは
pH<6に維持することによって安定に保たれる。
しかしながら、本発明方法では、ラフィノースなど、
開環酸化ジ/トリ−サッカライドの溶液のpHをpH5.0−
7.0に維持することによって、実質的に均質なポリサッ
カライドを調製する。この生成物を、ヘモグロビンと、
約1:1−4:1の化学量(ジ/トリ−サッカライド対ヘモグ
ロビン四量体のモル数として)で反応させて、高収量で
架橋安定化ヘモグロビン生成物を得ることができる。前
述のシャー特許で推奨されているような、高収量で製品
を得るのに20:1程度のきわめて大過剰の架橋剤を用いる
必要はもはやなくなったのである。しかも、そのように
大過剰の架橋剤を用いることによって経験する副次的影
響、すなわち、得られる架橋生成物の性質又は組成の制
御あるいは再現性の困難さなどは大幅に回避される。高
分子量凝集物の形成は、限られた化学量の架橋剤を使用
することによって回避される。
開環酸化ジ/トリ−サッカライドの溶液のpHをpH5.0−
7.0に維持することによって、実質的に均質なポリサッ
カライドを調製する。この生成物を、ヘモグロビンと、
約1:1−4:1の化学量(ジ/トリ−サッカライド対ヘモグ
ロビン四量体のモル数として)で反応させて、高収量で
架橋安定化ヘモグロビン生成物を得ることができる。前
述のシャー特許で推奨されているような、高収量で製品
を得るのに20:1程度のきわめて大過剰の架橋剤を用いる
必要はもはやなくなったのである。しかも、そのように
大過剰の架橋剤を用いることによって経験する副次的影
響、すなわち、得られる架橋生成物の性質又は組成の制
御あるいは再現性の困難さなどは大幅に回避される。高
分子量凝集物の形成は、限られた化学量の架橋剤を使用
することによって回避される。
このようにして、本発明の一つの側面としては、水溶
液中で血液代用品として用いるにこれまでより適したも
のとなるように、ヘモグロビンを化学的に修飾する方法
が提供される。すなわち、その方法は: (a)ジ/トリ−サッカライドを酸化的開環工程に付し
て、それからポリアルデヒドを生成させ、 (b)得られた生成物の溶液のpHを、約pH5.0ないしpH
7.0の範囲内の値に調整し、維持することによって、生
成したポリアルデヒドの実質的加水分解を阻止し、 (c)この工程(b)の生成物を、ジ/トリ−サッカラ
イド及びヘモグロビン四量体を基準にして、約1:1−4:1
の化学量比で、溶液中のヘモグロビンと反応させ、 (d)形成されたシッフ塩基結合を第2級アミン結合に
まで還元し、かつ、 (e)形成された修飾ヘモグロビンを回収することを包
含する。
液中で血液代用品として用いるにこれまでより適したも
のとなるように、ヘモグロビンを化学的に修飾する方法
が提供される。すなわち、その方法は: (a)ジ/トリ−サッカライドを酸化的開環工程に付し
て、それからポリアルデヒドを生成させ、 (b)得られた生成物の溶液のpHを、約pH5.0ないしpH
7.0の範囲内の値に調整し、維持することによって、生
成したポリアルデヒドの実質的加水分解を阻止し、 (c)この工程(b)の生成物を、ジ/トリ−サッカラ
イド及びヘモグロビン四量体を基準にして、約1:1−4:1
の化学量比で、溶液中のヘモグロビンと反応させ、 (d)形成されたシッフ塩基結合を第2級アミン結合に
まで還元し、かつ、 (e)形成された修飾ヘモグロビンを回収することを包
含する。
本発明を用いて得られる架橋反応生成物の性質及び組
成は、単に制御可能であり、再現可能であるばかりでな
く、また優れてもいる。本製品は非修飾ヘモグロビンを
ほとんど含まず、ごくわずかな量も必要に応じて膜濾過
によって容易に除去することができる。このものは、高
分子量(600,000ドールトンより大きい)のヘモグロビ
ン凝集物を含まない。このものは、主として、約40%の
四量体ヘモグロビン、5%未満の二量体ヘモグロビンか
らなり、残余は分子量64,000ないし500,000ドールトン
のオリゴマーである。
成は、単に制御可能であり、再現可能であるばかりでな
く、また優れてもいる。本製品は非修飾ヘモグロビンを
ほとんど含まず、ごくわずかな量も必要に応じて膜濾過
によって容易に除去することができる。このものは、高
分子量(600,000ドールトンより大きい)のヘモグロビ
ン凝集物を含まない。このものは、主として、約40%の
四量体ヘモグロビン、5%未満の二量体ヘモグロビンか
らなり、残余は分子量64,000ないし500,000ドールトン
のオリゴマーである。
これまでは、メトヘモグロビンの過剰形成のおそれか
ら、pH7.4より低いところでのヘモグロビンの架橋反応
は避ける必要があるものと考えられていた。本発明のさ
らに予期せざる、有利な特徴は、ここに記述するような
架橋剤を用いれば、メトヘモグロビンを過剰に生成する
ことなく、pH5.0−7.0の範囲内で、ヘモグロビンの架橋
反応を実施できることにある。いうまでもなく、これは
o−サッカライド(ポリアルデヒド)を安定に保つため
のpH範囲であり、従って、架橋反応に先立ってpHを調整
するなどの余分な工程が避けられる点で有利である。
ら、pH7.4より低いところでのヘモグロビンの架橋反応
は避ける必要があるものと考えられていた。本発明のさ
らに予期せざる、有利な特徴は、ここに記述するような
架橋剤を用いれば、メトヘモグロビンを過剰に生成する
ことなく、pH5.0−7.0の範囲内で、ヘモグロビンの架橋
反応を実施できることにある。いうまでもなく、これは
o−サッカライド(ポリアルデヒド)を安定に保つため
のpH範囲であり、従って、架橋反応に先立ってpHを調整
するなどの余分な工程が避けられる点で有利である。
図面の簡単な説明 第1図は、ラフィノースの酸化的開環によってヘキサ
−アルデヒドを生じる化学反応、及びアセタール化合物
によるその後の化学的平衡関係の形成を示す模式図であ
る。
−アルデヒドを生じる化学反応、及びアセタール化合物
によるその後の化学的平衡関係の形成を示す模式図であ
る。
第2図は、ポリアルデヒドのヘモグロビンとの化学反
応、及びその後の化学的還元工程を示す模式図である。
応、及びその後の化学的還元工程を示す模式図である。
第3図は、以下の実施例1による生成物のHPLC分析曲
線である。
線である。
第4図は、以下の実施例3に述べる反応の動力学の模
式図である。
式図である。
第5図は、以下の実施例4における非修飾ヘモグロビ
ンのC4グロビン鎖分析を示すクロマトグラムであり、ヘ
ム、ベータ鎖、及びアルファ鎖を示す。
ンのC4グロビン鎖分析を示すクロマトグラムであり、ヘ
ム、ベータ鎖、及びアルファ鎖を示す。
第6図は、以下の実施例4における架橋ヘモグロビン
のC4グロビン鎖分析を示す、第5図と同様のクロマトグ
ラムである。
のC4グロビン鎖分析を示す、第5図と同様のクロマトグ
ラムである。
好ましい実施態様の説明 本発明で使用するに好ましいジ/トリ−サッカライド
は、トリサッカライドであるラフィノースであり、従っ
て、説明を明解にするために、特にラフィノースの使用
に関して以下本発明を説明する。ただし、これはジ/ト
リ−サッカライドの好ましい一つの選択肢であって、本
発明がこれに限定されるものと解釈してはならないもの
と理解すべぎである。その他の適切なトリサッカリドに
は、プランテオース、マンニノトリオース、ガラクトト
リオース、ゲンチアノース、メレジトース、o−アルフ
ァ−D−ガラクトピラノシル−(1−6′)−マンノビ
オース、マルトトリオース、及びセロトリオースが含ま
れる。適切なジサッカライドには、スクロース、ラクト
ース、マルトース、イソマルトース、セラビオース、メ
リビオース、プランテオビオース、ガラクトビオース、
ゲンチアビオース、ツラノース及びマンノビオースが含
まれる。本発明は、ここに具体的に述べたジ/トリ−サ
ッカライドの使用に限定されるものと解釈されてはなら
ない。
は、トリサッカライドであるラフィノースであり、従っ
て、説明を明解にするために、特にラフィノースの使用
に関して以下本発明を説明する。ただし、これはジ/ト
リ−サッカライドの好ましい一つの選択肢であって、本
発明がこれに限定されるものと解釈してはならないもの
と理解すべぎである。その他の適切なトリサッカリドに
は、プランテオース、マンニノトリオース、ガラクトト
リオース、ゲンチアノース、メレジトース、o−アルフ
ァ−D−ガラクトピラノシル−(1−6′)−マンノビ
オース、マルトトリオース、及びセロトリオースが含ま
れる。適切なジサッカライドには、スクロース、ラクト
ース、マルトース、イソマルトース、セラビオース、メ
リビオース、プランテオビオース、ガラクトビオース、
ゲンチアビオース、ツラノース及びマンノビオースが含
まれる。本発明は、ここに具体的に述べたジ/トリ−サ
ッカライドの使用に限定されるものと解釈されてはなら
ない。
好ましくは、例えば過ヨウ素酸ナトリウム、過ヨウ素
酸カリウムなど、過ヨウ素酸塩のような強酸化剤を用い
る溶液反応によって、ラフィノースを酸化的に開環させ
る。この酸化反応は非常に低いpHで起こる。この反応が
行われた後、適当な緩衝液によって溶液をpH5.0−7.0、
好ましくはpH6.0−6.5に調整する。pH調整によって塩類
が生じる場合、これがその後のヘモグロビンとの反応を
邪魔するかも知れないので、これをこの階段で、例えば
結晶化、混合床イオン交換、ゲル透過クロマトグラフィ
ー、逆浸透膜などによって除去することが好ましい。燐
酸緩衝液は効果的ではあるが、避ける方が好ましい。な
ぜなら、溶液中に残留する燐酸イオンがその後の架橋反
応を妨げることが有り得るからである。得られた生成物
は、好ましくは緩衝液で約pH6.0にした水溶液中に蓄え
て、使用に備えることができる。適切な緩衝液は、pH6
−7の範囲に緩衝するものであり、それには、MES(2
−[N−モルホリノ]エタンスルホン酸);BIS−TRIS
(ビス[2−ヒドロキシエチル]イミノ−トリス[ヒド
ロキシメチル]メタン);ADA(N−[2−アセタミド]
−2−イミノジ酢酸);ACES(2−[(2−アミノ−2
−オキソエチル)アミノ]エタンスルホン酸);PIPES
(ピペラジン−N,N′−ビス[2−エタンスルホン
酸]);MOPSO(3−[N−モルホリノ]−2−ヒドロキ
シプロパンスルホン酸);BIS−TRIS PROPANE(1,3−ビ
ス[トリス(ヒドロキシメチル)メチルアミノ]プロパ
ン);BES(N,N−ビス[2−ヒドロキシエチル]−2−
アミノエタンスルホン酸);MOPS(3−[N−モルホリ
ノ]プロパンスルホン酸);TES(N−トリス[ヒドロキ
シメチル]メチル−2−アミノエタンスルホン酸);HEP
ES(N−[2−ヒドロキシエチル]ピペラジン−N′−
[2−エタンスルホン酸])が含まれ、これらの内でBI
S−TRIS及びBIS−TRIS PROPANEが最も好ましい。
酸カリウムなど、過ヨウ素酸塩のような強酸化剤を用い
る溶液反応によって、ラフィノースを酸化的に開環させ
る。この酸化反応は非常に低いpHで起こる。この反応が
行われた後、適当な緩衝液によって溶液をpH5.0−7.0、
好ましくはpH6.0−6.5に調整する。pH調整によって塩類
が生じる場合、これがその後のヘモグロビンとの反応を
邪魔するかも知れないので、これをこの階段で、例えば
結晶化、混合床イオン交換、ゲル透過クロマトグラフィ
ー、逆浸透膜などによって除去することが好ましい。燐
酸緩衝液は効果的ではあるが、避ける方が好ましい。な
ぜなら、溶液中に残留する燐酸イオンがその後の架橋反
応を妨げることが有り得るからである。得られた生成物
は、好ましくは緩衝液で約pH6.0にした水溶液中に蓄え
て、使用に備えることができる。適切な緩衝液は、pH6
−7の範囲に緩衝するものであり、それには、MES(2
−[N−モルホリノ]エタンスルホン酸);BIS−TRIS
(ビス[2−ヒドロキシエチル]イミノ−トリス[ヒド
ロキシメチル]メタン);ADA(N−[2−アセタミド]
−2−イミノジ酢酸);ACES(2−[(2−アミノ−2
−オキソエチル)アミノ]エタンスルホン酸);PIPES
(ピペラジン−N,N′−ビス[2−エタンスルホン
酸]);MOPSO(3−[N−モルホリノ]−2−ヒドロキ
シプロパンスルホン酸);BIS−TRIS PROPANE(1,3−ビ
ス[トリス(ヒドロキシメチル)メチルアミノ]プロパ
ン);BES(N,N−ビス[2−ヒドロキシエチル]−2−
アミノエタンスルホン酸);MOPS(3−[N−モルホリ
ノ]プロパンスルホン酸);TES(N−トリス[ヒドロキ
シメチル]メチル−2−アミノエタンスルホン酸);HEP
ES(N−[2−ヒドロキシエチル]ピペラジン−N′−
[2−エタンスルホン酸])が含まれ、これらの内でBI
S−TRIS及びBIS−TRIS PROPANEが最も好ましい。
ラフィノース反応溶液の燐酸による緩衝は、反応効率
の点から最も避けるべきである。開環ラフィノースポリ
アルデヒド生成物によるその後のヘモグロビンの架橋反
応に際して、架橋剤は特定的にDPG結合個所で反応する
が、燐酸塩もまたこの個所で作用するであろう。従っ
て、燐酸塩を避けることによって、種間の反応競合が避
けられ、得られる化学生成物について収量が高くなり、
反応が早く、制御が優れることになる。
の点から最も避けるべきである。開環ラフィノースポリ
アルデヒド生成物によるその後のヘモグロビンの架橋反
応に際して、架橋剤は特定的にDPG結合個所で反応する
が、燐酸塩もまたこの個所で作用するであろう。従っ
て、燐酸塩を避けることによって、種間の反応競合が避
けられ、得られる化学生成物について収量が高くなり、
反応が早く、制御が優れることになる。
この反応の化学的な進行過程を、添付図面における第
1図に模式的に示す。pHを適切に制御しない場合は、o
−ラフィノースは部分的に加水分解されて、o−スクロ
ース及びo−ガラクトースの混合物を形成し、ある条件
のもとではさらに小さな酸化断片となる。生じるジアル
デヒド及びテトラアルデヒドの混合生成物は、その非均
質性及び非再現性から望ましからぬ混合物であるばかり
でなく、また、ヘモグロビンに対して反応性が低く、従
って、良好な物質収量を得るためには大量の使用が必要
となる。o−スクロースを用いるヘモグロビンの架橋
は、本発明の範囲内で効果的であり、有用ではあるが、
o−ラフィノースの場合よりも緩慢に、異なる特異性を
もって進む。
1図に模式的に示す。pHを適切に制御しない場合は、o
−ラフィノースは部分的に加水分解されて、o−スクロ
ース及びo−ガラクトースの混合物を形成し、ある条件
のもとではさらに小さな酸化断片となる。生じるジアル
デヒド及びテトラアルデヒドの混合生成物は、その非均
質性及び非再現性から望ましからぬ混合物であるばかり
でなく、また、ヘモグロビンに対して反応性が低く、従
って、良好な物質収量を得るためには大量の使用が必要
となる。o−スクロースを用いるヘモグロビンの架橋
は、本発明の範囲内で効果的であり、有用ではあるが、
o−ラフィノースの場合よりも緩慢に、異なる特異性を
もって進む。
本発明方法に用いるヘモグロビンは、ヒトの赤血球か
ら導かれたヘモグロビンであることが好ましい。しか
し、本発明は、動物のヘモグロビン、特にウシのヘモグ
ロビン、ヒツジのヘモグロビン、及びそれらに類する他
の種類のヘモグロビンに適用して、血液代用品の基質と
することもできる。ヒトの患者に投与するための血液代
用品の基質を形成させるためには、現在のところ、ヒト
のヘモグロビンを選択することが好ましい。
ら導かれたヘモグロビンであることが好ましい。しか
し、本発明は、動物のヘモグロビン、特にウシのヘモグ
ロビン、ヒツジのヘモグロビン、及びそれらに類する他
の種類のヘモグロビンに適用して、血液代用品の基質と
することもできる。ヒトの患者に投与するための血液代
用品の基質を形成させるためには、現在のところ、ヒト
のヘモグロビンを選択することが好ましい。
本発明で使用するには、ヘモグロビンは既知の標準技
法に従って回収し、調製することができる。すなわち、
赤血球を溶解せしめ、遠心分離、濾過などの標準技法に
よって細胞の残屑及び間質を除去する。最も好ましい組
成及び総合的性質を備えた製品を得るためには、ヘモグ
ロビン濃度が2−14重量%のヘモグロビン溶液を用いる
ことが好ましい。最終製品の毒性を回避するためには、
ヘモグロビンの純度は実質的に達成可能な高さとするべ
きであろう。最終の精製はクロマトグラフィーによって
行うことが適当である。
法に従って回収し、調製することができる。すなわち、
赤血球を溶解せしめ、遠心分離、濾過などの標準技法に
よって細胞の残屑及び間質を除去する。最も好ましい組
成及び総合的性質を備えた製品を得るためには、ヘモグ
ロビン濃度が2−14重量%のヘモグロビン溶液を用いる
ことが好ましい。最終製品の毒性を回避するためには、
ヘモグロビンの純度は実質的に達成可能な高さとするべ
きであろう。最終の精製はクロマトグラフィーによって
行うことが適当である。
ヘモグロビンは、通常デオキシヘモグロビンと名付け
られるT−構造(tight conformation)、あるいは、オ
キシヘモグロビンと名付けられるR−構造(relaxed co
nformation)で自然界に存在する。デオキシヘモグロビ
ンの酸素結合特質の方がいっそう望ましい特質である。
なぜなら、これは、自然の血液赤血球内のヘモグロビン
が自然にとる構造だからである。従って、本発明の方法
はデオキシヘモグロビンについて行うことが好ましく、
ラフィノースの開環によって誘導されるポリアルデヒド
による架橋反応は、ヘモグロビンをT−構造に安定化さ
せるに役立つ。しかし、何らかの理由でR−構造のヘモ
グロビンを用いて出発することを選ぶ場合は、本発明に
よる架橋反応は、ヘモグロビンを一貫してR−構造に安
定化する。
られるT−構造(tight conformation)、あるいは、オ
キシヘモグロビンと名付けられるR−構造(relaxed co
nformation)で自然界に存在する。デオキシヘモグロビ
ンの酸素結合特質の方がいっそう望ましい特質である。
なぜなら、これは、自然の血液赤血球内のヘモグロビン
が自然にとる構造だからである。従って、本発明の方法
はデオキシヘモグロビンについて行うことが好ましく、
ラフィノースの開環によって誘導されるポリアルデヒド
による架橋反応は、ヘモグロビンをT−構造に安定化さ
せるに役立つ。しかし、何らかの理由でR−構造のヘモ
グロビンを用いて出発することを選ぶ場合は、本発明に
よる架橋反応は、ヘモグロビンを一貫してR−構造に安
定化する。
架橋剤との反応に先だって、既知の技法に従って、ヘ
モグロビン溶液を窒素などの非酸化性ガスで処理するこ
とによって、ヘモグロビンの脱酸素化を実施してデオキ
シヘモグロビンを形成させることが好ましい。前述のシ
ャー特許に述べられているものを含めて、一部の先行技
術の方法工程では、オキシヘモグロビンの最後の痕跡を
除去するために、ヒドロ亜硫酸ナトリウムのような還元
剤の使用が教示されている。このような技法は本発明で
は好ましくない。なぜなら、残存ヒドロ亜硫酸塩の存在
が四量体ヘモグロビン単位のo−ラフィノース誘導オリ
ゴマー化を阻止することが知られたからである。従っ
て、このようにしてデオキシヘモグロビンへの完全な変
換が行われるに十分な長期間、窒素気流下にこの処理を
継続し、その後に適切な脱ガスを行うことが好ましい。
モグロビン溶液を窒素などの非酸化性ガスで処理するこ
とによって、ヘモグロビンの脱酸素化を実施してデオキ
シヘモグロビンを形成させることが好ましい。前述のシ
ャー特許に述べられているものを含めて、一部の先行技
術の方法工程では、オキシヘモグロビンの最後の痕跡を
除去するために、ヒドロ亜硫酸ナトリウムのような還元
剤の使用が教示されている。このような技法は本発明で
は好ましくない。なぜなら、残存ヒドロ亜硫酸塩の存在
が四量体ヘモグロビン単位のo−ラフィノース誘導オリ
ゴマー化を阻止することが知られたからである。従っ
て、このようにしてデオキシヘモグロビンへの完全な変
換が行われるに十分な長期間、窒素気流下にこの処理を
継続し、その後に適切な脱ガスを行うことが好ましい。
デオキシヘモグロビン水溶液を、このようにして形成
されたポリアルデヒド架橋剤と反応させるには、水溶液
中で、4−40℃の範囲内の温度で、2−96時間、好まし
くは約24時間の期間、行うのが適当である。ヘキサアル
デヒドの加水分解及び分解の危険を避けるために、反応
溶液は、好ましくはBIS−TRIS緩衝溶液系を用いて、7.5
を越えないpH、好ましくは5.0−7.0の範囲内に調整す
る。先にも述べたように、ポリアルデヒドのヘモグロビ
ンに対するモル比は、o−ラフィノース対ヘモグロビン
を基準にして、1:1−4:1、好ましくは約2.5:1−3.51の
化学量である。デオキシヘモグロビンの濃度は、1−15
%(W/V)が適当であり、5−10% (W/V)の範囲内が
好ましい。
されたポリアルデヒド架橋剤と反応させるには、水溶液
中で、4−40℃の範囲内の温度で、2−96時間、好まし
くは約24時間の期間、行うのが適当である。ヘキサアル
デヒドの加水分解及び分解の危険を避けるために、反応
溶液は、好ましくはBIS−TRIS緩衝溶液系を用いて、7.5
を越えないpH、好ましくは5.0−7.0の範囲内に調整す
る。先にも述べたように、ポリアルデヒドのヘモグロビ
ンに対するモル比は、o−ラフィノース対ヘモグロビン
を基準にして、1:1−4:1、好ましくは約2.5:1−3.51の
化学量である。デオキシヘモグロビンの濃度は、1−15
%(W/V)が適当であり、5−10% (W/V)の範囲内が
好ましい。
ヘモグロビンのヘキサアルデヒドとの反応では、ヘモ
グロビン鎖のアミノ基が架橋剤のアルデヒド基と反応す
るが、その結果、シッフ塩基結合が形成される。このも
のは可逆的結合である。この結合生成物は、効果的に、
非架橋ヘモグロビン及び架橋剤との平衡状態に入る。こ
れを、添付図面の第2図に模式的に示す。ここで、この
結合は、安定かつ非可逆的な第1級アミン結合に還元し
て、血液代用品を目的とするヘモグロビンの架橋結合を
完成させる必要がある。還元剤は、架橋反応が実質的に
完了した後に反応混合物に加えることが好ましい。例え
ば前述のシャー特許のような先行技術では、この還元剤
として水素化ホウ素ナトリウムの使用が推奨されている
が、本発明の好ましい態様では、この還元剤としてボラ
ン・ジメチルアミンを用いる。これは、先行技術に比べ
て、水素化ホウ素ナトリウムを用いる場合に生じるよう
な、また、方法の制御及び一般的実施における難点を招
くようなガス状水素の発生を回避できる点で、著しく有
利である。ボラン・ジメチルアミンの使用は、この点に
関して顕著な改善である。その他の水溶性ボラン・低級
アルキルアミン系還元剤として、ボラン−tert−ブチル
アミン、ボラン−アンモニア、ボラン−ジメチルアミ
ン、ボラン−トリメチルアミン、及びボラン−トリエチ
ルアミンなどを用いることもできるが、これらに限定さ
れるものではない。その他の使用可能な、ただし好まし
さにおいて劣る還元剤に、ナトリウム・シアノボロハイ
ドライドがある。
グロビン鎖のアミノ基が架橋剤のアルデヒド基と反応す
るが、その結果、シッフ塩基結合が形成される。このも
のは可逆的結合である。この結合生成物は、効果的に、
非架橋ヘモグロビン及び架橋剤との平衡状態に入る。こ
れを、添付図面の第2図に模式的に示す。ここで、この
結合は、安定かつ非可逆的な第1級アミン結合に還元し
て、血液代用品を目的とするヘモグロビンの架橋結合を
完成させる必要がある。還元剤は、架橋反応が実質的に
完了した後に反応混合物に加えることが好ましい。例え
ば前述のシャー特許のような先行技術では、この還元剤
として水素化ホウ素ナトリウムの使用が推奨されている
が、本発明の好ましい態様では、この還元剤としてボラ
ン・ジメチルアミンを用いる。これは、先行技術に比べ
て、水素化ホウ素ナトリウムを用いる場合に生じるよう
な、また、方法の制御及び一般的実施における難点を招
くようなガス状水素の発生を回避できる点で、著しく有
利である。ボラン・ジメチルアミンの使用は、この点に
関して顕著な改善である。その他の水溶性ボラン・低級
アルキルアミン系還元剤として、ボラン−tert−ブチル
アミン、ボラン−アンモニア、ボラン−ジメチルアミ
ン、ボラン−トリメチルアミン、及びボラン−トリエチ
ルアミンなどを用いることもできるが、これらに限定さ
れるものではない。その他の使用可能な、ただし好まし
さにおいて劣る還元剤に、ナトリウム・シアノボロハイ
ドライドがある。
架橋反応及び未反応アルデヒド基の還元反応に際して
形成されるシッフ塩基の還元は、水溶液中で、2−25℃
の温度で、2−36時間、好ましくは24時間適切に行う必
要がある。反応混合物は、緩衝溶液によってpH5−8、
好ましくは6.5−7.0に調整することが適当である。還元
剤の、イミン基及びアルデヒド基の合計に対するモル比
は、還元剤の、架橋結合反応を開始させるために加える
アルデヒド基に対する化学量を基準にして、2:1ないし
5:1、好ましくは2.5:1ないし3.5:1の範囲内である。
形成されるシッフ塩基の還元は、水溶液中で、2−25℃
の温度で、2−36時間、好ましくは24時間適切に行う必
要がある。反応混合物は、緩衝溶液によってpH5−8、
好ましくは6.5−7.0に調整することが適当である。還元
剤の、イミン基及びアルデヒド基の合計に対するモル比
は、還元剤の、架橋結合反応を開始させるために加える
アルデヒド基に対する化学量を基準にして、2:1ないし
5:1、好ましくは2.5:1ないし3.5:1の範囲内である。
ボラン・ジメチルアミンによる還元によって架橋反応
生成物の安定化が完了した後、この生成物を一酸化炭素
で処理して、貯蔵目的でのヘモグロビンの保護複合体を
形成させることが適当である。この一酸化炭素処理は、
得られた反応溶液中に、反応温度で一酸化炭素を通過さ
せることによって行うことが好都合であるが、この処理
の後、残存還元剤及びその他の残存反応剤を適切に除去
するために、混合物を膜濾過することが好ましい。残存
緩衝液は、ゲル透過クロマトグラフィーによって除去す
ることができる。残存非架橋ヘモグロビンを除去するた
めに必要な場合、塩化マグネシウムを添加して、非架橋
四量体ヘモグロビンを解離させ、続いて残屑を除去する
ために膜濾過することができる。得られた物質は、使用
時まで滅菌条件のもとに貯蔵に備える。
生成物の安定化が完了した後、この生成物を一酸化炭素
で処理して、貯蔵目的でのヘモグロビンの保護複合体を
形成させることが適当である。この一酸化炭素処理は、
得られた反応溶液中に、反応温度で一酸化炭素を通過さ
せることによって行うことが好都合であるが、この処理
の後、残存還元剤及びその他の残存反応剤を適切に除去
するために、混合物を膜濾過することが好ましい。残存
緩衝液は、ゲル透過クロマトグラフィーによって除去す
ることができる。残存非架橋ヘモグロビンを除去するた
めに必要な場合、塩化マグネシウムを添加して、非架橋
四量体ヘモグロビンを解離させ、続いて残屑を除去する
ために膜濾過することができる。得られた物質は、使用
時まで滅菌条件のもとに貯蔵に備える。
最も好ましい具体的態様の詳細な説明 以下、本発明を、具体的な、ただし非限定的な実施例
の記述によってさらに説明する。
の記述によってさらに説明する。
実施例1 過ヨウ素酸酸化ラフィノースの調製 氷浴上で4−10℃に冷却したラフィノース(76グラ
ム、0.128モル)の滅菌水(1リットル)中溶液に、固
体状のm−過ヨウ素酸ナトリウム(181グラム)小量ず
つ加え、添加速度の調整と氷浴冷却とによって温度を<
15℃に維持した。m−過ヨウ素酸ナトリウムの最終添加
の後、酸化反応完結のために溶液を10−15℃に維持し、
2−24時間攪拌した。次いで、溶液を4℃に冷却し、次
いで、重亜硫酸ソーダの注意深い添加によって過剰の過
ヨウ素塩酸を中和した。次に、溶液のpHを10N NaOH(10
0ミリリットル)によって調整し、固体BIS−TRISを加え
(最終濃度を20mMとする)、注意深くpHを5.0に調整し
た。溶液を4℃で16−24時間蓄えて結晶化を促すことに
よって、部分的脱塩を行わせ、酸化ラフィノースを含む
透明な上澄液を傾瀉し、濾過した。溶液の最終pHを注意
深く5.9+/−0.1に調整した。
ム、0.128モル)の滅菌水(1リットル)中溶液に、固
体状のm−過ヨウ素酸ナトリウム(181グラム)小量ず
つ加え、添加速度の調整と氷浴冷却とによって温度を<
15℃に維持した。m−過ヨウ素酸ナトリウムの最終添加
の後、酸化反応完結のために溶液を10−15℃に維持し、
2−24時間攪拌した。次いで、溶液を4℃に冷却し、次
いで、重亜硫酸ソーダの注意深い添加によって過剰の過
ヨウ素塩酸を中和した。次に、溶液のpHを10N NaOH(10
0ミリリットル)によって調整し、固体BIS−TRISを加え
(最終濃度を20mMとする)、注意深くpHを5.0に調整し
た。溶液を4℃で16−24時間蓄えて結晶化を促すことに
よって、部分的脱塩を行わせ、酸化ラフィノースを含む
透明な上澄液を傾瀉し、濾過した。溶液の最終pHを注意
深く5.9+/−0.1に調整した。
反応溶液をpH6.1に21時間蓄えた画、上記工程による
生成物をHPLC分析に付し、その結果を第3図に示す。開
環サッカライド生成物、すなわち、ヘキサアルデヒド体
のo−ラフィノースに関して単一ピークが一つだけ存在
することは注目に値し、生成物の均質性ならびにアルカ
リ加水分解生成物の不存在を示す。クロマトグラム上の
限られたその他の顕著なピークは、塩類とギ酸に関する
もので、これらは容易に除去できる。
生成物をHPLC分析に付し、その結果を第3図に示す。開
環サッカライド生成物、すなわち、ヘキサアルデヒド体
のo−ラフィノースに関して単一ピークが一つだけ存在
することは注目に値し、生成物の均質性ならびにアルカ
リ加水分解生成物の不存在を示す。クロマトグラム上の
限られたその他の顕著なピークは、塩類とギ酸に関する
もので、これらは容易に除去できる。
このo−ラフィノースは、a)混合床イオン交換樹
脂、b)サイズ排除クロマトグラフィー、又はc)逆浸
透膜を用いて脱塩することにより、さらに精製すること
ができる。
脂、b)サイズ排除クロマトグラフィー、又はc)逆浸
透膜を用いて脱塩することにより、さらに精製すること
ができる。
実施例2 混合床イオン交換樹脂クロマトグラフィーによるo−ラ
フィノースの精製 o−ラフィノース溶液(20ミリリットル、pH5.65)に
6N HCLを滴加して、pH1.6に調整し、次いでこの溶液
を、30ミリリットルのBiorad AG 501−8(D)分析純
度混合床樹脂中に通した。溶離液を集め、精製した試料
を凍結乾燥して、白色固体状の結晶性生成物を得た。
フィノースの精製 o−ラフィノース溶液(20ミリリットル、pH5.65)に
6N HCLを滴加して、pH1.6に調整し、次いでこの溶液
を、30ミリリットルのBiorad AG 501−8(D)分析純
度混合床樹脂中に通した。溶離液を集め、精製した試料
を凍結乾燥して、白色固体状の結晶性生成物を得た。
実施例3 ヘモグロビンのo−ラフィノースによる制御された架橋
結合及びそれに続くジメチルアミン・ボランによる還元
のための改良方法 精製したヒトのヘモグロビンの、50mM BIS−TRIS緩衝
溶液(pH6.5)中溶液(8%W/V)30ミリリットルを、室
温で攪拌を続けながら、約4−6時間加湿窒素ガス流を
送ってデオキシヘモグロビンに変換した。脱ガスした開
環酸化ラフィノース(112.5μモル)をこれに加えて、
架橋結合反応及びオリゴマー化反応を開始させた。24時
間後、3M酢酸ナトリウムをこれに加えて最終濃度を30mM
とし、次いで、1.3ミリリットルの脱ガス水に溶解した
2.25ミリモルのジメチルアミン・ボランを用いて還元を
行った。この還元を一夜進行させた。
結合及びそれに続くジメチルアミン・ボランによる還元
のための改良方法 精製したヒトのヘモグロビンの、50mM BIS−TRIS緩衝
溶液(pH6.5)中溶液(8%W/V)30ミリリットルを、室
温で攪拌を続けながら、約4−6時間加湿窒素ガス流を
送ってデオキシヘモグロビンに変換した。脱ガスした開
環酸化ラフィノース(112.5μモル)をこれに加えて、
架橋結合反応及びオリゴマー化反応を開始させた。24時
間後、3M酢酸ナトリウムをこれに加えて最終濃度を30mM
とし、次いで、1.3ミリリットルの脱ガス水に溶解した
2.25ミリモルのジメチルアミン・ボランを用いて還元を
行った。この還元を一夜進行させた。
反応の進行過程はFPLCによって監視した。その結果を
第4図に模式的に示す。ピーク1は、混合物中に存在す
るヘモグロビン二量体小単位(32キロドールトン)に由
来するもので、明らかにその数は少ない。ピーク2は、
混合生成物の約40%を構成する四量体(64キロドールト
ン)架橋結合ヘモグロビンに由来する。ピーク3は、二
量体(128キロドールトン)に由来し、ピーク4は、平
均分子量約380キロドールトンのオリゴマー状ヘモグロ
ビン単位に由来する。混合生成物が600キロドールトン
より高い分子量の区分を含んでいないことは注目に値す
る。
第4図に模式的に示す。ピーク1は、混合物中に存在す
るヘモグロビン二量体小単位(32キロドールトン)に由
来するもので、明らかにその数は少ない。ピーク2は、
混合生成物の約40%を構成する四量体(64キロドールト
ン)架橋結合ヘモグロビンに由来する。ピーク3は、二
量体(128キロドールトン)に由来し、ピーク4は、平
均分子量約380キロドールトンのオリゴマー状ヘモグロ
ビン単位に由来する。混合生成物が600キロドールトン
より高い分子量の区分を含んでいないことは注目に値す
る。
実施例4 架橋結合工程の特異性の実証 架橋結合反応の進行を監視するために、それぞれ1時
間、2.5時間及び23時間の架橋反応の後に、o−ラフィ
ノース:Hb溶液を、酢酸ナトリウムの存在下、ジメチル
アミン・ボランで還元した。0.5M塩化マグネシウムの移
動相を用いるSuperdex(Pharmacia)ゲル透過による分
離用サイズ排除クロマトグラフィーによって、安定化さ
れた架橋結合64キロドールトン区分を単離した。
間、2.5時間及び23時間の架橋反応の後に、o−ラフィ
ノース:Hb溶液を、酢酸ナトリウムの存在下、ジメチル
アミン・ボランで還元した。0.5M塩化マグネシウムの移
動相を用いるSuperdex(Pharmacia)ゲル透過による分
離用サイズ排除クロマトグラフィーによって、安定化さ
れた架橋結合64キロドールトン区分を単離した。
塩化マグネシウム溶液の効果は、非架橋結合四量体ヘ
モグロビンをアルファ−ベータ二量体(32キロドールト
ン)に解離させることにある。塩化マグネシウムは架橋
結合ヘモグロビンを解離させない。このようにして、分
析目的のために、架橋ヘモグロビンを非架橋ヘモグロビ
ンから分離することができる。
モグロビンをアルファ−ベータ二量体(32キロドールト
ン)に解離させることにある。塩化マグネシウムは架橋
結合ヘモグロビンを解離させない。このようにして、分
析目的のために、架橋ヘモグロビンを非架橋ヘモグロビ
ンから分離することができる。
架橋結合64キロドールトン化合物のヘム鎖及びグロビ
ン鎖は、孔径330オングストロームのC4 Vydacカラム
(分析用250x4.6ミリメートル、分離用250x10ミリメー
トル;The Separations Group,Hesperia CA)を用いる逆
相PLCによって分離し、分離のためには、0.1%トリフル
オロ酢酸及び、38%から60%に至る種々の濃度勾配のア
セトニトリルを含む展開剤を用いた。流出液は、220ノ
ナメーターで監視し、グロビン鎖は凍結乾燥によって流
出液から回収した。
ン鎖は、孔径330オングストロームのC4 Vydacカラム
(分析用250x4.6ミリメートル、分離用250x10ミリメー
トル;The Separations Group,Hesperia CA)を用いる逆
相PLCによって分離し、分離のためには、0.1%トリフル
オロ酢酸及び、38%から60%に至る種々の濃度勾配のア
セトニトリルを含む展開剤を用いた。流出液は、220ノ
ナメーターで監視し、グロビン鎖は凍結乾燥によって流
出液から回収した。
同様にして、非架橋、非修飾ヘモグロビンのヘム鎖及
びグロビン鎖を分離した。
びグロビン鎖を分離した。
添付図面の第5図は、非修飾ヘモグロビンの逆相グロ
ビン鎖クロマトグラフィーを示し、第6図は、修飾架橋
ヘモグロビンのそれを示す。それぞれの場合、ヘモグロ
ビン分析に精通した人たちに容易に認識できるように、
また、それらの参考刊行物から容易に推論できるよう
に、ピーク1はヘムを示し、ピーク2は非修飾ベータ−
グロビン鎖を示し、ピーク3は非修飾アルファ−鎖を示
し、ピーク4はほとんどが修飾されたベータ−二量体を
示し、ピーク5はほとんどが修飾されたアルファ−二量
体を示す。第5図と第6図とを比較すれば、本発明によ
る架橋結合反応は、ベータ−二量体について、すなわ
ち、ヘモグロビン四量体単位のベータ−鎖において起こ
っていることを容易に知り得る。
ビン鎖クロマトグラフィーを示し、第6図は、修飾架橋
ヘモグロビンのそれを示す。それぞれの場合、ヘモグロ
ビン分析に精通した人たちに容易に認識できるように、
また、それらの参考刊行物から容易に推論できるよう
に、ピーク1はヘムを示し、ピーク2は非修飾ベータ−
グロビン鎖を示し、ピーク3は非修飾アルファ−鎖を示
し、ピーク4はほとんどが修飾されたベータ−二量体を
示し、ピーク5はほとんどが修飾されたアルファ−二量
体を示す。第5図と第6図とを比較すれば、本発明によ
る架橋結合反応は、ベータ−二量体について、すなわ
ち、ヘモグロビン四量体単位のベータ−鎖において起こ
っていることを容易に知り得る。
修飾(架橋)の特定位置を決定するために、第5図の
ピーク(区分)2、第6図のピーク(区分)3及びピー
ク(区分)4で示されるグロビン鎖を、以下のように、
トリプシンによる酵素的加水分解に、続いてペプチド分
析に付した。
ピーク(区分)2、第6図のピーク(区分)3及びピー
ク(区分)4で示されるグロビン鎖を、以下のように、
トリプシンによる酵素的加水分解に、続いてペプチド分
析に付した。
グロビン鎖の酵素的加水分解 単離したグロビン鎖をまず8M尿素に溶解し(加水分解
への感受性を増すために)、室温に2−4時間維持し
た。この溶液を、pH8.5の90mM重炭酸アンモニウムで2M
尿素まで希釈した。トリプシン(全タンパク質の2%)
をこれに加え、溶液を室温で18−20時間消化させた。次
いでトリプシン加水分解物を沸騰水中で2分間加熱し、
80mM重炭酸アンモニウム緩衝液で1M尿素まで希釈し、室
温でさらに18−72時間エンドプロテイナーゼGlu−C
(全タンパク質の1%)で消化させた。加水分解物を遠
心分離にかけ、あるいは濾過した後、HPCLカラムに注入
した。
への感受性を増すために)、室温に2−4時間維持し
た。この溶液を、pH8.5の90mM重炭酸アンモニウムで2M
尿素まで希釈した。トリプシン(全タンパク質の2%)
をこれに加え、溶液を室温で18−20時間消化させた。次
いでトリプシン加水分解物を沸騰水中で2分間加熱し、
80mM重炭酸アンモニウム緩衝液で1M尿素まで希釈し、室
温でさらに18−72時間エンドプロテイナーゼGlu−C
(全タンパク質の1%)で消化させた。加水分解物を遠
心分離にかけ、あるいは濾過した後、HPCLカラムに注入
した。
ペプチド分析 Vydac C18カラム(25x0.46センチメーター;The Separ
ations Group,Hesperia,CA)による逆相HPLCによってペ
プチド片を分離した。分離は、0.1%TFA及び、0%から
100%に至る勾配濃度のアセトニトリルからなる展開剤
を用いて、100分間にわたって行った。ペプチド片を検
知するために、溶離液を220ナノメーターで監視した。
ations Group,Hesperia,CA)による逆相HPLCによってペ
プチド片を分離した。分離は、0.1%TFA及び、0%から
100%に至る勾配濃度のアセトニトリルからなる展開剤
を用いて、100分間にわたって行った。ペプチド片を検
知するために、溶離液を220ナノメーターで監視した。
トリプシンは、遊離第1級アミン基を有するリジン残
基のところでタンパク質鎖を特異的に開裂させる。この
ものは、その反応において、ヘモグロビンではリジン残
基あるいは末端アミノ酸基からのみ誘導され得る第1級
アミン基に対して特異的である。ヘモグロビンのグロビ
ン鎖のアミノ酸配列は既知である。従って、第5図の区
分2及び第6図の区分4についての、逆相HPLCを用いる
トリプシン消化物のペプチド分析から、架橋結合は、ベ
ータ−鎖のリジン−82(その全てが区分4試料から消失
している)、及びベータ−鎖からの末端バリン基(その
半分が区分4から消失している)に対して特異的である
ことが示された。
基のところでタンパク質鎖を特異的に開裂させる。この
ものは、その反応において、ヘモグロビンではリジン残
基あるいは末端アミノ酸基からのみ誘導され得る第1級
アミン基に対して特異的である。ヘモグロビンのグロビ
ン鎖のアミノ酸配列は既知である。従って、第5図の区
分2及び第6図の区分4についての、逆相HPLCを用いる
トリプシン消化物のペプチド分析から、架橋結合は、ベ
ータ−鎖のリジン−82(その全てが区分4試料から消失
している)、及びベータ−鎖からの末端バリン基(その
半分が区分4から消失している)に対して特異的である
ことが示された。
ヘモグロビンのベータ−鎖におけるリジン−82は、先
行技術から、ヘモグロビンの2,3−ジホスホグリセレー
ト結合位置に位置していることが知られている。従っ
て、本発明方法による、ベータ−リジン−82を用いる、
DPG結合位置における架橋結合の特異性が実証され、証
明される。
行技術から、ヘモグロビンの2,3−ジホスホグリセレー
ト結合位置に位置していることが知られている。従っ
て、本発明方法による、ベータ−リジン−82を用いる、
DPG結合位置における架橋結合の特異性が実証され、証
明される。
実施例5 過ヨウ素酸酸化スクロースの調製 実施例1に記載の手順に従って、50ミリリットルの滅
菌水に溶解した3.8グラム(11.1ミリモル)のスクロー
ス、及び10.4グラムの固体状m−過ヨウ素酸ナトリウム
を用いて、過ヨウ素酸酸化ラフィノースの調製を行っ
た。
菌水に溶解した3.8グラム(11.1ミリモル)のスクロー
ス、及び10.4グラムの固体状m−過ヨウ素酸ナトリウム
を用いて、過ヨウ素酸酸化ラフィノースの調製を行っ
た。
実施例6 o−スクロースによるヘモグロの制御された架橋結合反
応及びそれに続くボラン・ジメチルアミン還元 精製したヒトのヘモグロビンの、50mM BIS−TRIS緩衝
溶液(pH6.5)中溶液(8%W/V)30ミリリットルを、攪
拌を続けつつ、室温で加湿窒素ガス気流を約4−6時間
通じながら、デオキシヘモグロビンに変換した。脱ガス
した開環酸化スクロース(115ミリモル)をこれに加え
て架橋反応を開始させた。24時間後、3M酢酸ナトリウム
をこれに加えて、最終濃度を30mMとした。その後、架橋
生成物を、0.8ミリリットルの脱ガス水に溶解した1.44
ミリモルのボラン・ジメチルアミンで還元した。この還
元反応を一夜進行させた。
応及びそれに続くボラン・ジメチルアミン還元 精製したヒトのヘモグロビンの、50mM BIS−TRIS緩衝
溶液(pH6.5)中溶液(8%W/V)30ミリリットルを、攪
拌を続けつつ、室温で加湿窒素ガス気流を約4−6時間
通じながら、デオキシヘモグロビンに変換した。脱ガス
した開環酸化スクロース(115ミリモル)をこれに加え
て架橋反応を開始させた。24時間後、3M酢酸ナトリウム
をこれに加えて、最終濃度を30mMとした。その後、架橋
生成物を、0.8ミリリットルの脱ガス水に溶解した1.44
ミリモルのボラン・ジメチルアミンで還元した。この還
元反応を一夜進行させた。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 エル,ソン スウィー カナダ国、エム1エス 1ダブリュー 4、オンタリオ、スカーボロフ、マナー グレンクレセント 56 (56)参考文献 国際公開92/9630(WO,A)
Claims (16)
- 【請求項1】水溶液中で血液代用品における酸素運搬成
分として用いるにこれまでより適したものとなるように
ヘモグロビンを化学的に修飾する方法において、その方
法が: (a)ジ/トリ−サッカライドを酸化的開環工程に付し
て、それからポリアルデヒドを生成させ、 (b)得られた生成物の溶液のpHを、約pH5.0ないしpH
7.0の範囲内の値に調整し、維持することによって、生
成したポリアルデヒドの実質的加水分解を阻止し、 (c)この工程(b)の生成物を、ジ/トリ−サッカラ
イド及びヘモグロビン四量体を基準にして、約1:1−4:1
の化学量比で、溶液中のヘモグロビンと反応させ、 (d)形成されたシッフ塩基結合を第2級アミン結合に
まで還元し、かつ、 (e)形成された修飾ヘモグロビンを回収する ことを包含する、ヘモグロビンの化学的修飾方法。 - 【請求項2】ジ/トリ−サッカライドがトリサッカライ
ドである、請求項1の方法。 - 【請求項3】トリサッカライドがラフィノースである、
請求項2の方法。 - 【請求項4】ヘモグロビンがデオキシヘモグロビンであ
る、請求項3の方法。 - 【請求項5】有効量の還元剤の不存在下に、ヘモグロビ
ンの脱酸素反応を実質的に完了させるに十分な条件のも
とで、ヘモグロビンを不活性ガスと接触させることによ
って脱酸素反応に付する初期工程を含んだ、請求項4の
方法。 - 【請求項6】デオキシヘモグロビンが実質的完全にヒド
ロ亜硫酸ナトリウム及びその残屑を含まない、請求項5
の方法。 - 【請求項7】ヘモグロビンがヒトのヘモグロビンであ
る、請求項1の方法。 - 【請求項8】ヘモグロビンが最初はT−構造であり、ポ
リアルデヒドとの反応によって前記T−構造に安定化さ
れる、請求項1の方法。 - 【請求項9】高酸性条件のもとで、過ヨウ素酸ナトリウ
ム又は過ヨウ素酸カリウムとの反応によってラフィノー
スの酸化的開環を行わせる、請求項5の方法。 - 【請求項10】反応生成物溶液をその後、燐酸塩不含緩
衝溶液を用いてpH5.0−7.0に調整し、そのpH範囲に維持
してその後の使用に備える、請求項9の方法。 - 【請求項11】緩衝溶液がBIS−TRIS緩衝溶液系であ
る、請求項10の方法。 - 【請求項12】行程(c)においてジ/トリ−サッカラ
イドのヘモグロビン四量体に対する化学量が約2.5:1な
いし3.5:1である、請求項1の方法。 - 【請求項13】第1級アミン結合を形成させるための還
元を、ボラン・ジメチルアミンを用いる還元によって行
わせる、請求項1の方法。 - 【請求項14】ジ/トリ−サッカライドがジサッカライ
ドである、請求項1の方法。 - 【請求項15】ジサッカライドがスクロースである、請
求項14の方法。 - 【請求項16】本質的に約40%の四量体ヘモグロビン単
位、0ないし5%の二量体ヘモグロビン単位からなり、
その残余分が、分子量64,000−500,000ドールトンのオ
リゴマー状ヘモグロビン単位であり、分子量が600,000
ドールトンより大きいポリマー状ヘモグロビン単位を含
まず、四量体及びオリゴマー状のヘモグロビン単位が、
DPG結合位置におけるリジン−82において、それぞれの
β−グロビン鎖の間で化学的に架橋結合しているよう
な、化学的に修飾された架橋結合ヘモグロビン。
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