JP2020530852A - 抗体コンジュゲーション方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、抗体-ポリペプチドコンジュゲートを作製するための方法および組成物に関する。
抗体には、診断用途と治療用途の両方がある。モノクローナル抗体は、単一のエピトープに対して作られており、無制限の量で生成することができるため、特に有用である。抗体のその標的への特異的結合を検出するには、付加的な試薬および/または抗体の化学修飾が必要である。抗体、試薬、および/または修飾に応じて、そのような検出システムは抗体の性能に潜在的に影響を及ぼし得る。抗体のその標的への特異的結合を検出する方法の開発が継続的に必要である。
好ましい態様の本説明は、本発明の明細書全体の一部と見なされるべき添付図面と関連して読まれるよう意図されている。描画図は必ずしも一定の縮尺ではなく、本発明のある特定の特徴は、明瞭および簡潔となるように、縮尺の上でまたはある程度模式的形式で誇張して示される場合がある。説明において、「水平の」、「垂直の」、「上方へ」、「下方へ」、「最上部の」、および「底部の」などの相対的用語、ならびにそれらの派生語(例えば、「水平に」、「下向きに」、「上向きに」等)は、その時に説明される、または議論中の描画図において示される方向を指すと解釈されるべきである。これらの相対的用語は説明の利便性のためのものであり、通常は特定の方向を要求することは意図されない。「内向きに」と「外向きに」、「縦方向の」と「横方向の」、および同様のものを含む用語は、必要に応じて、互いに対して、あるいは伸長軸または回転軸もしくは回転中心に対して解釈されるべきである。「接続された」および「相互接続された」などの、付着、連結、および同様のものに関する用語は、特に明確に記載されていない限り、構造物が、直接的に又は介在構造を通じて間接的に互いに固定されているまたは付着している関係、および可動性のまたは強固な付着または関係の両方を指す。「動作可能に接続された」という用語は、関連構造がその関係のおかげで意図通りに動作できるようにするような付着、連結、または接続である。単一の機械のみが図示される場合、「機械」という用語はまた、本明細書で議論される方法論のうちの任意の1つまたは複数を実施するための1組の(または複数組の)指示を個々にまたは共同して実行する機械の任意の集合を含むと捉えられるものとする。特許請求の範囲において、ミーンズ・プラス・ファンクション・クローズが使用される場合には、構造的同等物ばかりでなく同等の構造をも含む、列挙された機能を実施するために明細書または図面によって説明された、示唆された、または明らかとされた構造を包含することが意図される。
抗体-ポリペプチドコンジュゲートを作製するための材料および方法が、本明細書において提供される。抗体-ポリペプチドコンジュゲートは、共有結合によって連結された抗体およびポリペプチドを含み得る。いくつかの態様において、コンジュゲートは、抗体に連結された2つまたはそれ以上のポリペプチドを含み得る。いくつかの態様において、抗体-ポリペプチドコンジュゲートは、非共有結合、例えばイオン結合によって連結された抗体およびポリペプチドを含み得る。
本発明者らは、免疫グロブリンベースの結合分子を広く指すために抗体という用語を使用し、本用語は、通常の抗体(例えば、Gクラスの四量体抗体(例えば、IgG1))、それらの意図された標的と結合する能力を保持するそれらの断片(例えば、Fab'断片)、および一本鎖抗体 (scFv) を包含する。抗体は、ポリクローナル性またはモノクローナル性であってよく、ヒト、マウス、ウサギ、ヒツジ、もしくはヤギ細胞によって、またはこれらの細胞に由来するハイブリドーマによって産生され得る。いくつかの態様において、抗体はヒト化されてよく、またはキメラであってよい。
本発明の組成物は、ポリペプチド、例えば抗体のその標的への特異的結合を検出できるようにするポリペプチドを含み得る。「ペプチド」、「ポリペプチド」、および「タンパク質」という用語は、典型的には様々なサイズのペプチド配列を指すが、本明細書において互換的に用いられる。本発明のアミノ酸ベースの組成物を、それらがアミノ酸残基の直鎖状ポリマーであることを伝えるために、およびそれらを全長タンパク質と区別するのを助けるために、「ポリペプチド」と称する場合がある。本発明のポリペプチドは、抗体のその標的への特異的結合を検出できるように十分な活性を保持する限り、ポリペプチドの断片を「構成する」または「含む」ことができる。ポリペプチドは、例えば組換え技法または化学合成を含む種々の方法によって作製することができる。
前記抗体と前記ポリペプチドは、連続流装置、例えば連続流反応器中でコンジュゲートさせる。種々のコンジュゲーション化学を用いることができる。概して、抗体とポリペプチドとの間で共有結合を形成するために、抗体もしくはポリペプチドのいずれか一方またはその両方を活性化する。活性化試薬は、抗体とポリペプチドの連結を開始するのに適した任意の試薬であってよい。概して、生化学的コンジュゲーションは、ポリペプチド内の4つの標的:1) ポリペプチドのN末端において、およびリジン残基の側鎖中に見出される一級アミン (-NH2);2) C末端において、ならびにアスパラギン酸およびグルタミン酸残基の側鎖中に見出されるカルボキシル (-COOH);3) システイン残基の側鎖において見出されるスルフヒドリル (-SH);ならびに4) 糖タンパクにおいて炭水化物基を酸化することによって作出されるカルボニル (-CHO) において、共有結合を介して起こり得る。種々の試薬を用いて、これらの残基においてポリペプチドを架橋することができる。
抗体の調製および活性化 抗CA 125抗体をFujirebio Diagnosticsから入手した。抗体を50 mMリン酸ナトリウム緩衝液、pH 7.0の溶液に対して透析し、次いでシリンジフィルター(Gelman Acrodisc、25 mm、0.2μフィルター)を通して濾過した。抗体濃度を分光光度法により決定した。抗体濃度をAb緩衝液で10 mg/mlに調整した。Amicon撹拌式セルを用いて抗体を濃縮し、最終濃度を分光光度法により決定した。活性化のため、抗体をビーカーに分注し、20℃の温度制御ウォーターバス内で撹拌した。活性化試薬、スクシンイミジル4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサン-1-カルボン酸 (SMCC) を、8.9 mg/mLの濃度になるようにジメチルホルムアミド (DMF) 中に溶解した。SMCCの最終濃度が約1 mg/mlになるように、撹拌しながら、SMCC/DMF溶液を抗体に1滴ずつ添加した。抗体-SMCC溶液を、22℃で60分間穏やかに撹拌した。活性化抗体を、1つまたは複数のシリンジフィルターを通して濾過し、清潔な琥珀色ガラス容器に入れた。脱塩緩衝液(100 mMリン酸ナトリウム緩衝液、pH 6.0)で予め平衡化した活性化抗体溶液を脱塩した。活性化抗体を抗体緩衝液に対して16〜24時間透析し、琥珀色のまたはホイルで覆ったガラスボトルに移した。次いで透析済みの抗体を、1つまたは複数のシリンジフィルターを通して濾過し、最終濃度を分光光度法により決定した。活性化抗体を、高速タンパク質液体クロマトグラフィー (FPLC)(ATKA、GE Healthcare Life Sciences)を用いてSephadex G25カラムにてクロマトグラフした。活性化抗体を含有する適切な画分をプールし、プールされた抗体を、1つまたは複数のシリンジフィルターを通して濾過した。抗体濃度を分光光度法により決定した。活性化を含有する画分をプールし、プールされた活性化抗体を、活性化HRPの添加時まで、20℃の温度制御ウォーターバス内で、蓋をきつく閉めて貯蔵した。
CA 125抗体および西洋ワサビペルオキシダーゼを用いる抗体コンジュゲーション反応を、30秒間、1分間、2分間、5分間、6.7分間、および10分間の滞留時間を用いて、実施例1に記載される通りに実施した。反応産物を分析用HPLCカラムでのサイズ排除クロマトグラフィーによって解析し、280 nmにおける吸光度を決定した。各条件に関する反応産物の比較を図2に示す。図2に示されるように、より長い滞留時間は、高分子量成分の生成の増加と相関した。
CA 125抗体および西洋ワサビペルオキシダーゼを用いる抗体コンジュゲーション反応を、1:1、2:1、4:1、5:1、および6:1のHRP:抗体比を用いて、実施例1に記載される通りに実施した。コンジュゲーションは、1分間、2分間、5分間、および10分間の滞留時間で行った。各条件に関する高分子量産物の収量の比較を図3に示す。図3に示されるように、より低いHRP:抗体比は、より高いHRP:抗体比よりも、より高レベルの高分子量産物をもたらした。
HRP:抗体の様々な比および様々な滞留時間を用いて調製されたコンジュゲートについて、HRP取り込みパーセントおよびRz値(403 nmにおける吸光度/280 nmにおける吸光度)を決定した。これらの値を、標準的なバッチ法を用いて調製された対照コンジュゲートと比較した。HRP取り込みパーセントは、HPLCトレースからのAUC値を用いて推定した。この解析の結果を以下の表に示す。表に示されるように、推定されるHRP取り込みおよびRZ値は、以前のバッチ反応に匹敵した。HRP取り込みパーセントは、A403 nm/A280 nmの比に基づいて決定した。
マウス抗ヒトMUC1抗体 (DF3) 抗体をFujirebio Diagnosticsから入手した。抗体を100 mMリン酸カリウム緩衝液、pH 8.5の溶液に対して透析した。抗体濃度を分光光度法により決定した。抗体濃度を、100 mMリン酸カリウム緩衝液、pH 8.5で10 mg/mLに調整した。ビオチン化のため、抗体をビーカーに分注し、25℃の温度制御ウォーターバス内で撹拌した。ビオチン-e-アミノカプロン酸N-ヒドロキシ-スクシンイミド-エステル (ビオチン-X-NHS) を、3.47 mg/mlの濃度でジメチルスルホキシド (DMSO) 中に溶解した。ビオチン-X-NHSの最終濃度が約0.18 mg/mlになるように、撹拌しながら、ビオチン-X-NHS/DMSO溶液を抗体溶液に1滴ずつ添加した。抗体/ビオチン-X-NHS溶液を、25℃で90分間穏やかに撹拌した。リジンの最終濃度が約3 mg/mLになるように、撹拌しながら、1 Mリジン溶液、pH 8.5を抗体/ビオチン-X-NHSに1滴ずつ添加することにより、反応をクエンチした。抗体/ビオチン-X-NHS/リジン溶液を、25℃で30分間穏やかに撹拌した。次いで抗体/ビオチン-X-NHS/リジン溶液を2 mMリン酸カリウム緩衝液、pH 7.5の溶液に対して透析して、ビオチン化抗体を精製した。
アビジン-ビオチン化抗体コンジュゲーションは、セットアップされ、100 mMリン酸カリウム緩衝液、pH 6.8で22℃にて平衡化された(Advance-Flowシリーズの反応器からの)Corning Low-Flow(商標)反応器で実施した。立体配置は、プレート型および注文に応じて作製された:LFSIH、LFR*H、LFR*H、LFR*H、およびLFSHH。ポンプAを用いてスーパーループAにおいて、ビオチン化抗体溶液を反応器に負荷した。ポンプBを用いてスーパーループBにおいて、アビジン溶液 (Sigma Aldrich) を反応器に負荷した。ポンプCを用いてスーパーループCにおいて、非コンジュゲート化ビオチンクエンチ溶液を反応器に負荷した。コンジュゲーション反応は、AKTA Unicornシステムコントロールソフトウェアプログラムを用いて実行した。反応を280 nmにおいてモニターした。ビオチン化抗体およびアビジンは、以下で指定される時間にわたって、コンジュゲーション反応器ブロックを通過できるようにした。コンジュゲート溶液は次いで、ポンプCを用いて非コンジュゲート化ビオチンで平衡化されたクエンチ反応器ブロックを通過した。
ビオチン化抗体およびアビジンを用いる抗体コンジュゲーション反応を、20秒間、40秒間、60秒間、および120秒間の滞留時間を用いて、上記の通りに実施した。反応産物を分析用UPLCカラムでのサイズ排除クロマトグラフィーによって解析し、280 nmにおける吸光度を決定した。各条件に関する反応産物の比較を図2に示す。図4に示されるように、より長い滞留時間は、高分子量コンジュゲートの生成の増加と相関した。
抗体コンジュゲーション反応を、1:4、1:6、1:8、および1:10のアビジン:ビオチン化抗体比を用いて、上記の実施例5〜7に記載される通りに実施した。各条件に関する高分子量産物の比較を図6に示す。図6に示されるように、より低いアビジン:ビオチン化抗体比は、より高いアビジン:ビオチン化抗体比よりも、より高レベルの高分子量コンジュゲートをもたらした。
Claims (32)
- (a) 活性化抗体を含む第1溶液を提供する段階;
(b) 活性化ポリペプチドを含む第2溶液を提供する段階;
(c) 該第1溶液および第2溶液を、該活性化抗体が該活性化ポリペプチドと接触する連続流反応器に通し、それによって該抗体と該ポリペプチドとの間で共有結合を形成する段階
を含む、抗体-ポリペプチドコンジュゲートを作製する方法。 - 前記抗体がIgGである、請求項1に記載の方法。
- 前記抗体が抗CA125抗体である、請求項1に記載の方法。
- 前記ポリペプチドが検出ポリペプチドである、請求項1に記載の方法。
- 前記検出ポリペプチドが、酵素、ビオチン結合ポリペプチド、または蛍光タンパク質である、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、およびウレアーゼからなる群より選択される、請求項4に記載の方法。
- 前記抗体が、スクシンイミジルエステル、ヘテロ二官能性試薬、カルボジイミド、または過ヨウ素酸ナトリウムにより活性化される、請求項1に記載の方法。
- 前記スクシンイミジルエステルがスクシンイミジル4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサン-1-カルボン酸である、請求項6に記載の方法。
- 前記ポリペプチドがN-スクシンイミジル-S-アセチルチオ-酢酸により活性化される、請求項1に記載の方法。
- 活性化抗体:活性化ポリペプチドの比が1:1〜約1:4である、請求項1に記載の方法。
- 約0.1 mL/min〜約10.0 mL/minの流速で前記溶液が前記連続流反応器に通される、請求項1に記載の方法。
- 約1.0 mL/min〜約5.0 mL/minの流速で前記溶液が前記連続流反応器に通される、請求項10に記載の方法。
- 前記流速が約30秒間〜約15分間の滞留時間を提供する、請求項11に記載の方法。
- 前記流速が約1分間〜約5分間の滞留時間を提供する、請求項11に記載の方法。
- 前記抗体-ポリペプチドコンジュゲートが1:1〜約1:3の抗体:ポリペプチド比を含む、請求項1に記載の方法。
- 段階 (c) の後に、停止溶液、クエンチャー、またはそれらの組み合わせを連続流反応器に添加する段階をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記抗体-ポリペプチドコンジュゲートを精製する段階をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- (a) 修飾型抗体を含む第1溶液を提供する段階;
(b) 該修飾型抗体に特異的に結合する検出ポリペプチドを含む第2溶液を提供する段階;
(c) 該溶液を、該修飾型抗体が該ポリペプチドと接触する連続流反応器に通し、それによって該抗体と該検出ポリペプチドとの間で非共有結合を形成する段階
を含む、抗体-ポリペプチドコンジュゲートを作製する方法。 - 抗体の修飾が、ビオチン化、カルボキシル化、リン酸化、メチル化、アセチル化、ニトロシル化、シトルリン化、および脱アミノ化からなる群より選択される、請求項18に記載の方法。
- 前記抗体がIgGである、請求項18に記載の方法。
- 前記抗体が抗CA125抗体である、請求項18に記載の方法。
- 前記検出ポリペプチドが、酵素、ビオチン結合ポリペプチド、または蛍光タンパク質である、請求項18に記載の方法。
- 前記酵素が、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、およびウレアーゼからなる群より選択される、請求項22に記載の方法。
- 前記ビオチン結合ポリペプチドが、ストレプトアビジン、アビジン、ニュートラアビジン、または抗ビオチン抗体である、請求項22に記載の方法。
- 活性化抗体:検出ポリペプチドの比が1:1〜約1:4である、請求項18に記載の方法。
- 約0.1 mL/min〜約10.0 mL/minの流速で前記溶液が前記連続流反応器に通される、請求項18に記載の方法。
- 約1.0 mL/min〜約5.0 mL/minの流速で前記溶液が前記連続流反応器に通される、請求項26に記載の方法。
- 前記流速が約30秒間〜約15分間の滞留時間を提供する、請求項26に記載の方法。
- 前記流速が約1分間〜約5分間の滞留時間を提供する、請求項26に記載の方法。
- 前記抗体-ポリペプチドコンジュゲートが1:1〜約1:3の抗体:ポリペプチド比を含む、請求項18に記載の方法。
- 段階 (c) の後に、停止溶液、クエンチャー、またはそれらの組み合わせを連続流反応器に添加する段階をさらに含む、請求項18に記載の方法。
- 前記抗体-ポリペプチドコンジュゲートを精製する段階をさらに含む、請求項18に記載の方法。
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