JP2010538662A - 新規鳥類サイトカインおよびそれをコードする遺伝子配列 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、概して、鳥類サイトカイン特性を持つ新規組換えポリペプチドおよびそれをコードする遺伝子配列に関する。より具体的には、本発明は、組換え鳥類III型インターフェロンポリペプチド、およびそれをコードする遺伝子配列、ならびにそのための細胞発現系およびその用途を対象とする。さらに具体的には、本発明は、鳥類インターフェロン-λ(IFN-λ)ならびにその機能的誘導体、ホモログおよびフラグメント、ならびにその使用方法を対象とする。本発明の分子および細胞は、例えば限定するわけではないが、疾患状態(特に鳥類の疾患状態)を処置および予防するための手段の提供、または免疫応答調整物質としての使用を含む、広範な応用例に有用である。免疫応答に関するスクリーニングのための診断手段、およびIFN-λタンパク質または核酸機能の調整物質を同定するためのスクリーニング手段も提供する。
本明細書において著者名で言及される刊行物の書誌詳細は、明細書の最後に、アルファベット順にまとめられている。
本明細書および後述する特許請求の範囲の全体を通して、文脈上別段の必要がある場合を除き、「含む(comprise)」という単語とその活用形(例えば「comprises」「comprising」)は、明記した要素もしくは完全体(integer)または要素もしくは完全体群の包含を含意するが、他のどの要素もしくは完全体または要素もしくは完全体群についても、その除外を含意するわけではないと理解されるだろう。
(i)実質的に配列番号2もしくは4に記載されているアミノ酸配列またはその機能的誘導体、フラグメントもしくは鳥類ホモログ、または配列番号2もしくは4に対し、その配列の全長にわたって、少なくとも50%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の配列同一性を持つアミノ酸配列、をコードする、または、をコードする配列に相補的な、ヌクレオチド配列を含む、単離核酸分子またはその機能的フラグメント、誘導体もしくは鳥類ホモログ、または低ストリンジェンシー条件下で前記核酸分子にハイブリダイズする能力を持つ核酸配列を含む、単離核酸分子またはその機能的フラグメント、誘導体もしくは鳥類ホモログ;
(ii)あるヌクレオチド配列またはその配列に相補的なヌクレオチド配列を含む、単離核酸分子またはその機能的フラグメント、誘導体もしくは鳥類ホモログであって、前記ヌクレオチド配列が、実質的に配列番号1もしくは3に記載されているとおりであるか、その配列の全長にわたって少なくとも約50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を持つヌクレオチド配列であるか、低ストリンジェンシー条件下で配列番号1もしくは3またはその相補型にハイブリダイズする能力を持つヌクレオチド配列であるもの;
(iii)配列番号1または3に記載のヌクレオチド配列を含む、単離核酸分子またはその機能的誘導体、フラグメントもしくは鳥類ホモログ。
(i)適切なプロモーター配列の制御下に置かれた前記鳥類III型インターフェロンをコードする核酸分子、または、前記鳥類III型インターフェロンをコードする核酸分子に相補的な核酸分子を含む遺伝子コンストラクトを前記細胞中に導入するステップ;
(ii)前記核酸分子が発現されるのに十分な時間、十分な条件下で、前記細胞を培養するステップ;および
(iii)前記発現産物を単離するステップ。
本発明は、一つには、新規鳥類III型インターフェロン遺伝子、より具体的にはニワトリIFN-λ遺伝子に相当する核酸分子の単離および配列決定に基づいている。この知見は、とりわけ免疫調整に使用するための、新規タンパク質および核酸分子を提供する。ウイルスで攻撃された細胞では、細胞をニワトリIFN-λ遺伝子の発現産物の存在下で培養すると、ウイルス誘発性細胞溶解からの防御が観察される。したがって、この新規鳥類サイトカイン遺伝子の同定により、とりわけ病原性生物への曝露または病原性生物による感染に関連する鳥類疾患状態の、処置、予防および診断/モニタリングに使用するための物品および方法の開発が、特に容易になった。
(i)実質的に配列番号2もしくは4に記載されているアミノ酸配列またはその機能的誘導体、フラグメントもしくは鳥類ホモログ、または配列番号2もしくは4に対し、その配列の全長にわたって、少なくとも50%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の配列同一性を持つアミノ酸配列、をコードする、または、をコードする配列に相補的な、ヌクレオチド配列を含む、単離核酸分子またはその機能的フラグメント、誘導体もしくは鳥類ホモログ、または低ストリンジェンシー条件下で前記核酸分子にハイブリダイズする能力を持つ核酸配列を含む、単離核酸分子またはその機能的フラグメント、誘導体もしくは鳥類ホモログ;
(ii)あるヌクレオチド配列またはその配列に相補的なヌクレオチド配列を含む、単離核酸分子であって、前記ヌクレオチド配列が、実質的に配列番号1もしくは3に記載されているとおりであるか、その配列の全長にわたって少なくとも約50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を持つヌクレオチド配列であるか、低ストリンジェンシー条件下で配列番号1もしくは3またはその相補型にハイブリダイズする能力を持つヌクレオチド配列であるもの;
(iii)配列番号1または3に記載のヌクレオチド配列を含む、単離核酸分子またはその機能的誘導体、フラグメントもしくは鳥類ホモログ、または前記分子の機能的フラグメント。
(i)転写および/または翻訳調節配列および/またはコード領域および/または非翻訳配列(すなわち5'-および3'-非翻訳配列)からなる古典的ゲノム遺伝子;
(ii)場合によっては遺伝子の5'-または3'-非翻訳配列を含む、コード領域(すなわちエキソン)に相当するmRNAまたはcDNA;および/または
(iii)前駆体型のタンパク質に付随する配列、例えばシグナル配列と、場合によっては、5'-または3'-非翻訳配列とを、伴うかまたは伴わない、コード領域に相当するmRNAまたはcDNA。
(3)BLASTXは、クエリヌクレオチド配列(両鎖)の6フレーム概念翻訳産物をタンパク質配列データベースと比較する;(4)TBLASTNは、クエリタンパク質配列を、6つの読み枠すべてで翻訳されたヌクレオチド配列データベースと比較する;そして(5)TBLASTXはヌクレオチドクエリ配列の6つのフレームの翻訳物を、ヌクレオチド配列データベースの6フレーム翻訳物と比較する。BLASTプログラムは、クエリアミノ酸または核酸配列と試験配列(好ましくはタンパク質または核酸配列データベースから得られるもの)の間に類似するセグメント(これを本明細書では「高スコアセグメントペア(high-scoring segment pairs)」という)を同定することによって、相同配列を同定する。高スコアセグメントペアは、好ましくは、スコア行列を使って同定(すなわち整列)され、当技術分野では多くのスコア行列が知られている。好ましくは、使用されるスコア行列は、BLOSUM62行列である(Gonnetら, Science 256:1443-1445, 1992;HenikoffおよびHenikoff, Proteins 17:49-61, 1993)。好ましさでは劣るが、PAM行列またはPAM250行列も使用することができる(例えばSchwartzおよびDayhoff編、1978「Matrices for Detecting Distance Relationships: Atlas of Protein Sequence and Structure」Washington: National Biomedical Research Foundation参照)。
「Filter for low complexity:ON
Word Size:3
Matrix:Blosum62
Gap Costs:Existence:11
Extension:1」
が含まれる。
(i)適切なプロモーター配列の制御下に置かれた前記鳥類III型インターフェロンをコードする核酸分子、または、前記鳥類III型インターフェロンをコードする核酸分子に相補的な核酸分子を含む遺伝子コンストラクトを前記細胞中に導入するステップ;
(ii)前記核酸分子が発現されるのに十分な時間、十分な条件下で、前記細胞を培養するステップ;および
(iii)前記発現産物を単離するステップ。
表2:アミノ酸置換のための適切な残基
材料および方法
リンパ球の単離および細胞培養
4週齢の特定病原体フリー(SPF)ニワトリから脾臓を収集し、個々の脾臓から、DMEMが入ったペトリ皿に70μm濾過器を通して分散させることにより、白血球の単細胞懸濁液を調製した。懸濁液をリンフォプレップ(lymphoprep)(Nicomed Pharma AS、オスロ)に重層し、1500gmaxで15分間遠心分離した。界面の単核球を集め、洗浄し、再懸濁し、10%FCSを補足したDMEM中で培養した。連続ニワトリマクロファージ様細胞株HD11を、6%FCS、2mMグルタミン、ペニシリン(100U/ml)およびストレプトマイシン(100μg/ml)を補足したRPMI中で維持した。HD11細胞を必要に応じて継代し、IFN処置に先だって、80%コンフルエンスになるまで終夜播種した。
合成dsRNAアナログ、ポリ(I:C)(Invivogen)、およびssRNAアナログポリC(Invivogen)は、製造者の指示に従って製造し、保存した。ニワトリIL6(chIL6)(Asifら、投稿準備中)およびChIFNγ(ChIFNγ)(DigbyおよびLowenthal 1995)はどちらも我々の研究室で作製された。核酸は-80℃で保存し、サイトカインは4℃で保存した。
H1N1型の一つ、インフルエンザウイルスA/PR/8/34(PR8)(Talonら, 2000)を、10日齢の発育鶏卵の尿膜腔中で、48時間培養した。次に、ウイルスを含有する尿膜腔液を収集し、小分けして、-80℃で保存した。次に、ウイルスをHD11ニワトリマクロファージ中で5回継代し、組織培養感染量の50%エンドポイント(TCID50)を決定することによって、これらの細胞の単層で、感染性をタイトレートした。
Tri試薬(Sigma-Aldrich)を製造者の指示に従って使用することにより、RNAを収集した。抽出したRNAを、DNase1(Sigma-Aldrich)を製造者の指示に従って使用することにより、DNase処理に付した。次に、DNase処理したRNAを、逆転写キット(Promega)を使って、相補DNA(cDNA)に逆転写した。
完全長ChIFNλ、ChIFNα、およびChIFNβを増幅するためにIFN特異的プライマーを設計した。それらを表3に記載する。合成されたcDNAを、遺伝子特異的プライマーと一緒に、標準的PCR増幅(これは、94℃で1分間、55℃で1分間および72℃で1分間の35サイクルと、最後のサイクル後に72℃でさらに15分間の伸張とを使って行なわれる)に使用した。ゲル抽出キット(Qiagen)を使って関心対象のDNA産物をゲル精製し、配列解析のためにpGemT-Easy(Promega)中にライゲートした。これらのベクターをpGemIFNλ、pGemIFNαおよびpGemIFNβと名付けた。
プライマーλ3およびλ4(表3)はそれぞれBamHIおよびHindIII制限部位を含み、標準的PCRでpGemIFNλからChIFNλ成熟ORFを増幅するために使用した。PCRフラグメントを精製し、制限消化した後、BamHIおよびHindIIIで制限消化したpQE50(Qiagen)発現ベクターの6×Hisタグ配列の下流にライゲートすることで、pQE50IFNλを作製した。プライマーα3およびα4(表3)を使って、ChIFNαを、発現ベクターpQE30(Qiagen)中に、同様にサブクローニングすることにより、pQE30IFNαを作製した。プライマーβ3およびβ4(表3)を使って、ChIFNβを、発現ベクターpET32(Novagen)中に、同様にサブクローニングすることにより、pET32IFNβを作製した。BamHIおよびHindIIIを使った制限消化ならびにDNA配列決定を使って、3つの発現ベクターをすべて確認した。
ニワトリIFNのそれぞれを標準的な発現手法を使って発現させた(Qiagen, 1997)。大腸菌TOP10F'(pQE30IFNα)、TOP10F'(pET32IFNβ)またはTOP10F'(pQE50IFNλ)の培養物を培養し、イソプロピルβ-D-チオガラクトシド(IPTG)で誘導してから、遠心分離によって収集した。超音波処理した細胞溶解物をトリトンX-100で処理し、金属アフィニティクロマトグラフィーを使ってタンパク質を固定化してから、イミダゾールで溶出させた。分析用の試料を各精製ステップで集め、12%SDS-PAGEゲルに流した。Detoxiゲル(Pierce、米国)を使って精製試料からLPSをすべて除去することにより、試料の毒性を除去した。
IFN活性は、既述のように(Lowenthalら, 1995)、SFV媒介細胞溶解の効果を阻害するその能力によって決定した。ニワトリ胚線維芽細胞(CEF)を96ウェルプレートに5×104細胞/ウェルの割合で播種し、10%FCSを補足したDMEM中、37℃で終夜インキュベートした。次に培地を捨て、二つ一組にして試料を加えた。細胞を試料と共に18時間インキュベートしてから、SFV(103TCID50/ml)を含有する100μlのDMEMで培地を置き換え、37℃で終夜インキュベートした。ニュートラルレッド色素の取り込みおよび吸光度(OD540)の測定によって細胞生存度を決定した。
ニワトリ細胞株(HD11)を使って、Greissアッセイ(Miglioriniら, 1991)によって決定される亜硝酸の蓄積を測定し(Greenら, 1982;Sungら, 1991)、次に吸光度(OD540)を測定することにより、一酸化炭素産生を決定した。
HD11細胞を80%コンフルエンスまで成長させてからIFNを加えた。PR8を、トリプシン(5μg/ml)を含有するRPMIに加えてから、ウェルに加え(moi0.1)、1時間インキュベートした。次に、ウイルスを含有する培地を、1%FCSおよび5μg/mlトリプシンを補足したRPMIで置き換え、37℃で90時間までインキュベートした。次に、赤血球凝集活性により、上清をウイルスの存在について試験した。
赤血球凝集(HA)アッセイは、マイクロタイタープレート(Thermo)で行なった。PBS中のウイルス試料の2倍段階希釈液を、SPFニワトリから収集した等量の0.5%(vol/vol)懸濁新鮮ニワトリ赤血球と混合した。混合したウイルスと赤血球とを室温で30分間インキュベートした。付着した均一な赤血球層を含んでいるウェルを凝集したとみなし、陽性と評価した。陽性凝集を示す最も低いウイルス希釈液を1mlあたりのHA単位(HAU)として記録した(Liら, 2005)。
処置後の遺伝子発現量の相対的定量を、ABI Prism 7700配列決定システムで、比較閾値サイクル(comparative threshold cycle;Ct)法を使って行なうことにより、製造者の指示(Applied Biosystems)に従って、遺伝子発現量の変化倍率を導き出した。既述(Karpalaら、印刷中)のように算術式ΔΔCt(Applied Biosystems)で得られる平均値を使って、相対的遺伝子発現量を算出した。
ChIFNλの分子クローニングおよびバイオインフォマティック解析
ポリ(I:C)で2時間刺激したニワトリ脾臓白血球由来のcDNAを、ニワトリIFNλのPCR増幅のためのテンプレートとして使用した。561塩基対(bp)のバンドが同定された(データ未掲載)。ChIFNαおよびChIFNβのクローニングについても、それぞれ582bpおよび612bpのDNAバンドを、同様にして得た(データ未掲載)。3つのIFNすべての配列を得た。ChIFNαおよびβ配列は先に記載されている(Sekellickら, 1994)。したがって新たに同定されたニワトリ遺伝子をChIFNλと名付けた。ChIFNλのゲノム構造は、5つのエキソン領域に変性されているらしく、21kDaの分子量を持つ186aaの予測タンパク質を与えた(図3)。ChIFNλのシグナルペプチド解析(Bendtsenら, 2004)により、残基21と残基22の間の切断部位が明らかになった(図3)。ChIFNλはHuIFNλIIに対して比較的高いアミノ酸(aa)同一性を持つ(36%)が、他のニワトリサイトカインとの比較で見いだされるaa同一性は比較的低かった(表4)。翻訳されたChIFNλを先に定義された他のIFNλIIと比較し、保存された残基を同定した(図2)。
各ChIFNの成熟タンパク質をコードするORFをその発現ベクターにサブクローニングし、発現させ、精製した後、SDS-PAGEを使って解析した。発現されたChIFNαおよびChIFNλの予想分子量は約22kDaだった(図5AおよびC)。ChIFNβに使用したpET32a発現系は、約34kDaの予想分子量をもたらした(図5B)。
反応性酸素および窒素種(ROS)の産生は、ウイルスの重要な細胞性阻害機序である(Schroderら, 2004)。ChIFNγは、一酸化窒素レベルに影響を及ぼす代謝産物の産生を刺激することが示されている(Lowenthalら, 1995)。ChIFNλの一酸化窒素強化活性を調べるために、HD11細胞を組換え(r)ChIFNλの2倍希釈系列で処理し、rChIFNγおよびrChIFNβと比較した。rChIFNλはrChIFNβと同様に一酸化窒素の産生を強化した(図6)。rChIFNγは試験したIFNのなかで最も高い一酸化窒素活性を示した(図6)。
ChIFNλのウイルス阻害剤特性を評価するために、rChIFNαおよびrChIFNλをSFVバイオアッセイで比較した。CFE細胞における後続のウイルス誘発細胞溶解は各rChINFによって減少した(図7)。
ChIFNλはSFVに対してウイルス阻害効果を示したので、インフルエンザに関する阻害効果を決定した。rChIFNα、rChIFNβまたはrChIFNλで前処理してからPR8に感染させたHD11細胞は、HAアッセイで決定したところ、PR8に対して、さまざまな濃度依存的防御レベルを示した(図8)。高いrChIFNλ用量(100ng/ml)では、ウイルス価は、感染後(pi)40時間時点のウイルスなしから90時間piにおける320HAUまで、すべての時点にわたって、無処理細胞よりも低かった(図8)。最も低い用量(25ng/ml)は多少の防御をもたらし、中間用量(50ng/ml)からは中間的効果が得られた(図8)。これにより、IFNλはニワトリマクロファージにおいてインフルエンザを阻害することが明確に証明された。rChIFNαの適用は、90時間(pi)において、最高用量(100ng/ml)でのウイルスの検出なしから、最低用量(25ng/ml)での1280HAU/mlまでの範囲の、最も強い陽性効果を持っていた(図8)。ChIFNβも、90時間piにおいて、高用量(100ng/ml)でのウイルス検出なしから、低用量(25ng/ml)での5120HAU/mlまでの範囲の防御を与えた(図8)。総合すると、試験したすべてのIFNが、インフルエンザ価を用量依存的に抑制した。
IFNλは抗ウイルス応答に関して1型IFNと同様に機能するようだったので、ChIFNλが1型IFN、ChIFNαおよびChIFNβと同じような形で誘導されうるかどうかを決定した。したがって、ポリ(I:C)を使って脾臓白血球を刺激し、ChIFNα、ChIFNβ、およびChIFNλのmRNAレベルをqRT-PCRによって測定した。3つのChIFNはすべて、刺激の2時間後にアップレギュレートされることがわかった(図9)。ChIFNα mRNAは86倍、ChIFNβは52倍、そしてChIFNλは15倍増加した(図9)。IFNアップレギュレーションの程度は、刺激後4時間の時点で、どのIFNでも減少した(図9)。ChIFNλはChIFNαまたはChIFNβほどにはアップレギュレートされなかった。
1型IFN誘導性遺伝子がChIFNλによって同様に誘導されうるかどうかを調べた。先の研究により、抗ウイルス関連受容体であるTLR3は1型ISGであることが示されている(Tissariら, 2005)。そこで、ニワトリ脾臓白血球をrChIFNα、rChIFNβまたはrChIFNλと共に培養したところ、1型IFN(rChIFNα、rChIFNβ)だけがTLR3を有意に誘導することが明らかになった(図10)。rChIFNαおよびrChIFNβはTLR3を、50ng/mlを2時間適用した後にそれぞれ6.6倍および7.5倍、より高用量の100ng/mlでは11.3倍および12.3倍、有意に誘導したが(図10)、rChIFNλはTLR3誘導に対してほとんど効果がなかった。
H5N1ウイルスA/ベトナム/1203/04(V/1203)インフルエンザウイルスを10日齢発育特定病原体フリー(SPF)鶏卵の尿膜腔液中で継代した。尿膜腔液を収集し、接種のために小分けして、-80℃で保存した。SPF白色レグホンニワトリ(4週齢)の眼内に50%発育鶏卵感染量(50 egg infectious dose;EID50)のV/1203を接種した。感染後(p.i.)24時間でニワトリを安楽死させ、RNA抽出とその後のIFNλのqRT-PCR解析のために、組織試料を直ちに収集した。
ニワトリにおけるH5N1(鳥インフルエンザ)感染後にはIFNλ発現が誘導される(図11)。IFNλを適用すると、感染前でも感染後でも、インビトロでインフルエンザからの防御が起こるが、IFNλを感染前に適用した方が、防御は強化されることが、証明された(図12)。これらの知見は、chIFNλ活性の阻害(IFNλに対する抗体によるもの)が卵におけるインフルエンザワクチンの増殖を増強するという事実と合致した(図13)。
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Claims (58)
- 鳥類インターフェロン-ラムダ(IFN-λ)ポリペプチドもしくはその機能的フラグメントをコードする単離核酸分子、または、鳥類インターフェロン-ラムダ(IFN-λ)ポリペプチドもしくはその機能的フラグメントをコードする核酸分子に相補的な単離核酸分子。
- 前記鳥類種がニワトリ、シチメンチョウ、バンタム、ウズラ、ホロホロチョウ、アヒル、ガチョウ、ダチョウ、エミュー、ハト、カナリア、セキセイインコ、オウムまたはフィンチである、請求項1に記載の単離核酸分子。
- 前記鳥類種がニワトリである、請求項2に記載の単離核酸分子。
- 配列番号2もしくは4に記載されているアミノ酸配列またはその機能的フラグメントもしくは鳥類ホモログ、または配列番号2もしくは4に対し、その配列の全長にわたって、少なくとも50%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%もしくはそれ以上の配列同一性を持つアミノ酸配列、をコードするヌクレオチド配列、または、配列番号2もしくは4に記載されているアミノ酸配列またはその機能的フラグメントもしくは鳥類ホモログまたは配列番号2もしくは4に対し、その配列の全長にわたって、少なくとも50%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%もしくはそれ以上の配列同一性を持つアミノ酸配列をコードする配列に相補的なヌクレオチド配列、または低ストリンジェンシー条件下で前記核酸分子にハイブリダイズする能力を持つ核酸配列、を含む、請求項3に記載の単離核酸分子、または該単離核酸分子の機能的フラグメントもしくは鳥類ホモログ。
- あるヌクレオチド配列またはその配列に相補的なヌクレオチド配列を含み、該ヌクレオチド配列が、配列番号1または3に記載されているとおりであるか、配列番号1または3に対し、その配列の全長にわたって、少なくとも約50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を持つヌクレオチド配列であるか、低ストリンジェンシー条件下で配列番号1もしくは3またはその相補型にハイブリダイズする能力を持つヌクレオチド配列である、請求項3に記載の単離核酸分子、または該単離核酸分子の機能的フラグメントもしくは鳥類ホモログ。
- 配列番号1もしくは3に記載のヌクレオチド配列を含む、請求項5に記載の単離核酸分子、または該分子の機能的フラグメント。
- 前記ストリンジェンシー条件が中ストリンジェンシー条件である、請求項4または5に記載の単離核酸分子。
- 前記ストリンジェンシー条件が高ストリンジェンシー条件である、請求項4または5に記載の単離核酸分子。
- 前記配列がcDNA配列である、請求項1〜8のいずれか一項に記載の単離核酸分子。
- 前記配列がゲノム配列である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の単離核酸分子。
- 鳥類インターフェロン-ラムダ(IFN-λ)ポリペプチドまたはその機能的フラグメントである、単離ポリペプチド。
- 前記鳥類種がニワトリ、シチメンチョウ、バンタム、ウズラ、ホロホロチョウ、アヒル、ガチョウ、ダチョウ、エミュー、ハト、カナリア、セキセイインコ、オウムまたはフィンチである、請求項11に記載の単離ポリペプチド。
- 前記鳥類種がニワトリである、請求項12に記載の単離ポリペプチド。
- 配列番号2もしくは4に記載のアミノ酸配列、または配列番号2もしくは4に対し、その配列の全長にわたって、少なくとも約60%、65%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%もしくは99%またはそれ以上の同一性を持つアミノ酸配列を含む、請求項13に記載の単離ポリペプチド、または該単離ポリペプチドの機能的フラグメントもしくは鳥類ホモログ。
- 請求項4〜10のいずれか一項に記載の核酸配列によってコードされる、請求項14に記載の単離ポリペプチド。
- 請求項11〜15のいずれか一項に記載の鳥類インターフェロン-λポリペプチドと、
i)III型インターフェロン、または
ii)I型もしくはII型インターフェロン、例えばIFN-α、IFN-β、IFN-γ、Ch IFN-α、Ch IFN-β、もしくはCh IFN-γを含むリストから選択されるものなど、
のどちらか一方との融合ポリペプチド。 - 前記I型、II型またはIII型インターフェロンが鳥類I型、II型またはIII型インターフェロンである、請求項16に記載の融合ポリペプチド。
- 前記鳥類種がニワトリ、シチメンチョウ、バンタム、ウズラ、ホロホロチョウ、アヒル、ガチョウ、ダチョウ、エミュー、ハト、カナリア、セキセイインコ、オウムまたはフィンチである、請求項17に記載の融合ポリペプチド。
- 前記鳥類種がニワトリである、請求項18に記載の融合ポリペプチド。
- 請求項16〜19のいずれか一項に記載の融合ポリペプチドをコードする核酸分子。
- 請求項1〜10のいずれか一項に記載の核酸分子である核酸分子を含む遺伝子コンストラクト。
- 請求項21に記載されている核酸分子である核酸分子を含む遺伝子コンストラクト。
- 細胞中で組換え鳥類インターフェロン-λ分子を生産する方法であって、
(i)請求項21または22に記載の遺伝子コンストラクトを前記細胞中に導入するステップ;
(ii)前記核酸分子が発現されるのに十分な時間、十分な条件下で、前記細胞を培養するステップ、
を含む方法。 - 請求項23に記載の方法によって生産される組換え鳥類インターフェロン-λ分子。
- 請求項24に記載の組換え鳥類インターフェロン-λを発現させる単離細胞。
- 請求項1〜10のいずれか一項に記載の核酸分子を含む、単離細胞。
- 請求項21〜22のいずれか一項に記載の遺伝子コンストラクトを含む、単離細胞。
- 真核細胞である、請求項25〜27のいずれか一項に記載の単離細胞。
- 前記真核細胞が鳥類細胞である、請求項28に記載の単離細胞。
- 原核細胞である、請求項25〜27のいずれか一項に記載の単離細胞。
- 細菌である、請求項30に記載の単離細胞。
- 請求項11〜19または24のいずれか一項のポリペプチドに結合する能力を持つ抗体分子。
- 請求項1〜19のいずれか一項に記載の少なくとも1つの核酸および/またはポリペプチド配列が記録されている、コンピュータ可読媒体。
- 鳥類インターフェロン-λ遺伝子配列を同定するための方法であって、核酸試料を、請求項1〜10のいずれか一項に記載のヌクレオチド配列に対する鳥類インターフェロン-λプローブのハイブリダイゼーション有効量と接触させ、次に該ハイブリダイゼーションを検出することを含む方法。
- 前記プローブが、配列番号1もしくは3に記載されているヌクレオチド配列、またはその相補鎖、もしくはそれらの機能的フラグメントに対するか、または由来する、請求項34に記載の方法。
- 第1プライマー分子が配列番号1もしくは3に記載のヌクレオチド配列のセンス鎖またはそのホモログに対するものであり、第2プライマー分子が配列番号1もしくは3に記載されているヌクレオチド配列の相補鎖またはそのホモログに対するものである、請求項35に記載の方法。
- 鳥類における請求項11〜15の鳥類インターフェロン-λポリペプチドのレベルを測定するためのアッセイであって、前記鳥類から得た生物学的試料を、請求項32に記載の抗体と、抗体-インターフェロン-λ複合体を形成させるのに十分な時間、十分な条件下で、接触させるステップ、および次に該複合体形成を検出するステップを含む方法。
- 鳥類における免疫応答を誘発またはアップレギュレートするための方法であって、前記鳥類に、請求項11〜15のいずれか一項に記載のポリペプチドまたはその機能的フラグメントもしくはホモログ、または請求項16〜19のいずれか一項に記載の融合ポリペプチドの有効量を、免疫応答を誘発し、強化し、あるいは維持するのに十分な時間、十分な条件下で、投与することを含む方法。
- 鳥類の処置または予防方法であって、前記鳥類に、請求項11〜15のいずれか一項に記載のポリペプチドまたはその機能的フラグメントもしくはホモログ、または請求項16〜19のいずれか一項に記載の融合ポリペプチドの有効量を、免疫応答を誘発し、強化し、あるいは維持するのに十分な時間、十分な条件下で投与することを含む方法。
- 病原性生物に曝露または感染した鳥類の処置方法であって、前記鳥類に、請求項11〜15のいずれか一項に記載のポリペプチドまたはその機能的フラグメントもしくはホモログ、または請求項16〜19のいずれか一項に記載の融合ポリペプチドの有効量を、前記鳥類の免疫応答性を維持し、またはアップレギュレートするのに十分な時間、十分な条件下で投与することを含む方法。
- 前記鳥類が病原体に対して感受性であるか、病原体に感染している、請求項38または39のいずれか一項に記載の方法。
- 前記病原体がウイルス、細菌または寄生虫である、請求項40または41に記載の方法。
- 前記病原体が鳥インフルエンザウイルス、伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス、鳥類伝染性気管支炎ウイルス、鳥類伝染性喉頭気管炎ウイルス、伝染性気管支炎ウイルス、ニューキャッスル病ウイルス、マレック病ウイルス、ニワトリ貧血ウイルス、大腸菌、サルモネラ属種、アイメリア属種、またはマイコプラズマ属種である、請求項42に記載の方法。
- 前記鳥類がニワトリ、シチメンチョウ、バンタム、ウズラ、ホロホロチョウ、アヒル、ガチョウ、ダチョウ、エミュー、ハト、カナリア、セキセイインコ、オウムまたはフィンチである、請求項38〜43のいずれか一項に記載の方法。
- 前記鳥類がニワトリである、請求項44に記載の方法。
- 前記ポリペプチドが、III型インターフェロン、I型またはII型インターフェロンから選択される第2の鳥類サイトカイン分子と組み合わせて投与される、請求項38〜45のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第2の鳥類サイトカイン分子がIFN-α、IFN-β、IFN-γ、Ch IFN-α、Ch IFN-β、またはCh IFN-γである、請求項46に記載の方法。
- 鳥類における、治療のための、請求項11〜19に記載の鳥類インターフェロン-λポリペプチドまたは請求項1〜10に記載の核酸分子の使用。
- 鳥類における免疫応答の維持、刺激または強化に使用するための請求項11〜19に記載の鳥類インターフェロン-λポリペプチドまたは請求項1〜10のいずれか一項に記載の単離核酸分子の使用。
- 鳥類における病原体感染の治療的または予防的処置のための医薬の製造における、請求項11〜19のいずれか一項の鳥類インターフェロン-λポリペプチドまたは請求項1〜10のいずれか一項の核酸分子の使用。
- 前記病原体がウイルス、細菌または寄生虫である、請求項50に記載の使用。
- 前記病原体が鳥インフルエンザウイルス、伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス、鳥類伝染性気管支炎ウイルス、鳥類伝染性喉頭気管炎ウイルス、伝染性気管支炎ウイルス、ニューキャッスル病ウイルス、マレック病ウイルス、ニワトリ貧血ウイルス、大腸菌、サルモネラ属種、アイメリア属種、またはマイコプラズマ属種である、請求項51に記載の使用。
- 前記鳥類がニワトリ、シチメンチョウ、バンタム、ウズラ、ホロホロチョウ、アヒル、ガチョウ、ダチョウ、エミュー、ハト、カナリア、セキセイインコ、オウムまたはフィンチである、請求項48〜52のいずれか一項に記載の使用。
- 前記鳥類がニワトリである、請求項53に記載の使用。
- 前記ポリペプチド、核酸分子または医薬が、摂取による、または卵内注射、孵化後注射、腹腔内注射、皮内注射、筋肉内注射、眼内注射、静脈内注射もしくは皮下注射による鳥類動物への投与に適した形態にある、請求項38〜47のいずれか一項に記載の方法または請求項48〜52のいずれか一項に記載の使用。
- 鳥類による摂取に適した形態にある請求項11〜19のいずれか一項に記載の組換え鳥類インターフェロン-λポリペプチドまたは請求項1〜10いずれか一項の核酸分子を含む、薬用または治療用食糧。
- 請求項11〜19のいずれか一項のポリペプチドと、場合によっては、薬学的に許容できる担体、賦形剤または希釈剤とを含む、アジュバント。
- 請求項11〜19のいずれか一項のポリペプチドと、獣医学的使用に許容できる1つ以上の担体および/または希釈剤とを含む獣医学的医薬組成物。
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