JP2009050272A - 安定化されたザルコシンオキシダーゼ - Google Patents

Abstract

【課題】ザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質を蛋白工学的手法により改変することにより得られる、液状での安定性が向上したザルコシンオキシダーゼ、その製造法および用途を提供する。
【解決手段】特定な配列からなるアミノ酸配列の１６６位のアスパラギンがリジンに置換されていることを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼ。
【選択図】なし

Description

本発明は、ザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質を蛋白工学的手法により改変することにより得られる、液状での安定性が向上したザルコシンオキシダーゼ、その製造法および用途に関する。

ザルコシンオキシダーゼ（ＥＣ１．５．３．１）は、臨床的に筋疾患，腎疾患の診断の指標となっている体液中のクレアチン，クレアチニンの測定用酵素として、他の酵素、例えばクレアチニナーゼ、クレアチナーゼ、ペルオキシダーゼと共に使用されている。ザルコシンオキシダーゼは基質であるザルコシンに水、酸素の存在下で作用して、グリシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素を生成する。

このようなザルコシンオキシダーゼは、バチルス属、コリネバクテリウム属、シリンドロカルポン属、シュードモナス属、アースロバクター属等の細菌が生産することが知られている（例えば、特許文献１〜５および非特許文献１参照。）。また、これら生産菌のザルコシンオキシダーゼ遺伝子を、遺伝子工学的手法に
より、大腸菌等の宿主を用いた大量生産する技術についても報告されている（例えば、特許文献６〜８参照。）。
特開昭５４−５２７８９号公報 特開昭６１−１６２１７４号公報 特開昭５６−９２７９０号公報 特開昭６０−４３３７９号公報 特開平２−２６５４７８号公報 特開平５−１１５２８１号公報 特開平６−１１３８４０号公報 特開平８−２３８０８７号公報 「Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．」，１９８１年， ８９巻， ｐ．５９９

近年の臨床診断試薬の液状化に伴い、試薬成分の液状での安定化法が種々検討されているが、クレアチニンやクレアチン測定試薬に用いられるザルコシンオキシダーゼについても液状での安定性に優れたものが望まれている。我々のグループは、以前に野生型ザルコシンオキシダーゼを蛋白質工学的に改変し、金属イオンに対して安定性の向上した変異型ザルコシンオキシダーゼを報告した（例えば、特許文献９参照。）が、診断薬試薬中での長期保存安定性については更なる改良が期待されている。
本発明は、液状での安定性が向上した改変型ザルコシンオキシダーゼを提供することを目的とする。
特開平７−１６３３４１号公報

本発明者らは、上記目的を達成するために鋭意検討した結果、ザルコシンに対する作用性を損なわずに、液状での安定性が向上した改変型ザルコシンオキシダーゼを造成できることを見出し、本発明を完成させるに至った。

すなわち、本発明は以下のような構成から成る。
[項１] 配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の１６６位のアスパラギンがリジンに置換されていることを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼ。
[項２]項１に記載される改変型ザルコシンオキシダーゼをコードする遺伝子。
[項３]項２に記載の遺伝子を含むベクター。
[項４]項３に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
[項５]項４に記載の形質転換体を培養し、該培養物からザルコシンオキシダーゼを採取することを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼの製造法。
[項６]項１に記載されるザルコシンオキシダーゼを含むクレアチン測定用試薬。
[項７]項１に記載されるザルコシンオキシダーゼを含むクレアチニン測定用試薬。

本発明によって、ザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質を蛋白工学的手法により改変し、液状安定性が改良された改変型ザルコシンオキシダーゼを供給することが可能となった。本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼを、臨床的に筋疾患，腎疾患の診断の指標となっている体液中のクレアチン，クレアチニンの測定用酵素として使用することで、該試薬の液状安定性を向上させることができる。

本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは、臨床検査分野におけるクレアチン、クレアチニンの分析に有用である。

本願発明の一実施態様は、ザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質を構成するアミノ酸配列の少なくとも１個のアミノ酸を付加、欠失挿入あるいは置換により変換した蛋白質であって、ザルコシンオキシダーゼ活性を有し、液状での安定性が変換前に比べて向上していることを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼである。

本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは、液状での安定性が改変前に比べて向上していることを特徴とする。本発明における液状での安定性とは、例えば適当な緩衝液中に該改変型酵素を溶解して、適当な温度で一定期間保存した後の残存酵素活性の比率を意味する。
「適当な緩衝液」は、ザルコシンオキシダーゼの至適ｐＨであるｐＨ７〜８付近で十分な緩衝能を持つよう、その種類と濃度を選べば特に限定されないが、好ましくは５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）、または、５０ｍＭのＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．５）が選択される。緩衝液には、さらに必要により界面活性剤、塩類、キレート剤、防腐剤などを含んでいてもよい。
「適当な温度で一定期間保存」の条件は特に限定されないが、好ましくは、液状診断薬試薬中での長期保存安定性を念頭に置いた加速（苛酷）試験の条件が選択される。具体的には、「４０℃、３日間保存」、または、「６０℃、３０分間保存」などが挙げられる。時間が許せば、液状診断薬中が実際に長期保存される温度として汎用される２℃〜１０℃の冷蔵条件下で６ヶ月以上の保存を選択してもよい。
保存における、ザルコシンオキシダーゼの濃度は、特に限定されないが、通常の診断試薬に使用される濃度を想定した１〜３０Ｕ／ｍｌが好ましく選択される。さらに好ましくは５〜２０Ｕ／ｍｌである。
「安定性が改変前に比べて向上している」とは、一定期間保存後の活性保持率が、同条件で測定した改変前酵素の活性保持率と比べて高いことをいう。

本発明の一実施態様としては、５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）中で６０℃、３０分間保存した後の残存酵素活性率が、改変前に比べて向上した改変型ザルコシンオキシダーゼである。別な実施態様としては、２ｍＭのＥＤＴＡ、５０ｍＭのＮａＣｌ、０．１％（Ｗ／Ｖ）の２−メチルイソチアゾロン、０．１％（Ｗ／Ｖ）のトリトンＸ−１００を含む５０ｍＭのＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．５）中で４０℃、３日間保存した後の残存酵素活性率が、改変前に比べて向上した改変型ザルコシンオキシダーゼである。

本発明の改変に使用するザルコシンオキシダーゼは特に限定されるものではなく、例えば公知のバチルス属やシュードモナス属、コリネバクテリウム属等に由来するザルコシンオキシダーゼを用いることができる。

本発明では一例として、アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６（微工研菌寄第１０６３７号）のザルコシンオキシダーゼを用いた（例えば、特許文献１０参照。）。本発明者らのグループは、既に、アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６より抽出した染色体ＤＮＡよりザルコシンオキシダーゼ遺伝子の単離に成功し、そのＤＮＡの全構造を決定し（例えば、非特許文献２参照。）、本ザルコシンオキシダーゼを遺伝子工学的手法によって形質転換体に高生産させることに成功し、高純度なザルコシンオキシダーゼを安価に大量供給することを可能にしている（例えば、特許文献１１参照。）。アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６のザルコシンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列表の配列番号１に示す。また、これらのアミノ配列をコードするＤＮＡ配列を、配列表の配列番号２に示す。
但し、本発明は配列番号１に記載されるアミノ酸配列を有するザルコシンオキシダーゼを改変したものに限定されるものでなく、他のザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質を改変したものであってもよい。他のザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質の好適な例として、配列番号１に記載されるアミノ酸配列を有するザルコシンオキシダーゼと立体構造が類似したザルコシンオキシダーゼ、具体的にはアミノ酸配列の相同性が５０％以上である、更に好ましくはアミノ酸配列の相同性が８０％以上である、他のザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質が挙げられる。これはアミノ酸配列において５０％乃至は８０％以上の相同性を有し、同じ触媒活性を示す酵素蛋白質の場合、立体構造においても通常、類似性が高く、基質特異性に関与するアミノ酸残基や反応メカニズムが同じである場合が多いことを根拠とする。
また、本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは、本願発明の酵素特性の本質である安定性が損なわれない範囲で、更に１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたものであっても良い。具体例には、ザルコシンオキシダーゼの精製を簡素化するためにアミノ酸配列のＮ末端側、又はＣ末端側にヒスチジンタグを付加したものが例示される（例えば、非特許文献３参照）。
なお、本発明におけるアミノ酸配列の相同性は、公知の遺伝子解析ソフトなどを用いて求めることができる。ここで相同性とは比較対象とするアミノ酸配列と類似性を有する範囲において、一致するアミノ酸残基のパーセンテージをいう。

特開平２−２６５４７８号公報 特開平６−１１３８４０号公報 「Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ」，１９９３年， ７５巻４号，ｐ．２３９−２４４ 「実験医学」，２００２年，２０巻，ｐ４７９−４８２

本願発明の別の実施態様は、配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の少なくとも１個のアミノ酸が他のアミノ酸に置換していることを特徴とする、液状での安定性が変換前に比べて向上している改変型ザルコシンオキシダーゼである。

本願発明の別の実施態様は、配列表の配列番号１に記載されるアースロバクター・エスピーＴＥ１８２６のアミノ酸配列の１５５位〜２５０位、若しくは、アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６以外のザルコシンオキシダーゼにおいて配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の１５５位〜２５０位に対応する部位の少なくとも１つのアミノ酸が他のアミノ酸に置換されていることを特徴とする、液状での安定性が変換前に比べて向上している改変型ザルコシンオキシダーゼである。

本願発明の別の実施態様は、配列表の配列番号１に記載されるアースロバクター・エスピーＴＥ１８２６のアミノ酸配列の８２位〜９２位、もしくは、アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６以外のザルコシンオキシダーゼにおいて配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の８２位〜９２位に対応する部位の少なくとも１つのアミノ酸が他のアミノ酸に置換されていることを特徴とする、液状での安定性が変換前に比べて向上している改変型ザルコシンオキシダーゼである。
Ｘ線結晶解析により立体構造が明らかにされているザルコシンオキシダーゼの報告がある（例えば、非特許文献４参照）。その報告によれば、該ザルコシンオキシダーゼは配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列と相同性を有し、アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６のザルコシンオキシダーゼのアミノ酸配列である配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の８２位〜９２位、若しくは、アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６以外のザルコシンオキシダーゼにおいて配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の８２位〜９２位に対応する部位が、ザルコシンオキシダーゼの触媒ドメインとＦＡＤ結合ドメインの連結部位を構成すると推察される。

本願発明の別の実施態様は、配列表の配列番号１に記載されるアースロバクター・エスピーＴＥ１８２６のアミノ酸配列の３６４位を含むαへリックスを構成すると推察される３５４位〜３６６位若しくはアースロバクター・エスピーＴＥ１８２６以外のザルコシンオキシダーゼにおいて配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の３５４位〜３６６位に対応する部位の間の少なくとも１つのアミノ酸が他のアミノ酸に置換されていることを特徴とする液状での安定性が変換前に比べて向上している改変型ザルコシンオキシダーゼである。
「Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ」，１９９９年， ７巻３号，ｐ．３３１−３４５

好ましくは、配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の８９位、１５５位、１６６位、２０４位、２１３位、２３３位、２４０位、２５０位、３６４位、若しくは他のザルコシンオキシダーゼの対応する部位からなる群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸が他のアミノ酸に置換されている改変型ザルコシンオキシダーゼである。

更に好ましくは、次の群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸が他のアミノ酸に置換されている改変型ザルコシンオキシダーゼである。配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の８９位のリジンがアルギニンに置換、１５５位のシステインがイソロイシンに置換、１６６位のアスパラギンがリジンに置換、２０４位のメチオニンがアラニンに置換、２１３位のセリンがプロリンに置換、２３３位のシステインがセリンに置換、２４０位のアスパラギンがチロシンに置換、２５０位のグルタミン酸がグルタミンに置換、３６４位のアラニンがバリンに置換。

本願発明の別の実施態様は、上記の改変型ザルコシンオキシダーゼをコードする遺伝子、該遺伝子を含むベクター、該ベクターで形質転換された形質転換体、さらには、該形質転換体を培養し、該培養物からザルコシンオキシダーゼを採取することを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼの製造法である。

本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼの製造方法は、特に限定されないが、以下に示すような手順で製造することが可能である。ザルコシンオキシダーゼ活性を有するタンパク質を構成するアミノ酸配列を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿入または欠失させることにより、改変蛋白質の遺伝情報を有するＤＮＡが作成される。ＤＮＡ中の塩基を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキット（ＴｒａｎｓｆｏｒｍｅｒＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ；Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ製，ＥＸＯＩＩＩ／Ｍｕｎｇ Ｂｅａｎ Ｄｅｌｅｔｉｏｎ Ｋｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製，ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅ Ｓｉｔｅ Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製など）の使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法（ＰＣＲ）の利用が挙げられる。

作製された改変タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡは、プラスミドと連結された状態にて宿主微生物中に移入され、改変タンパク質を生産する形質転換体となる。この際のプラスミドとしては、例えば、エシェリヒア・コリー（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）を宿主微生物とする場合にはｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ，ｐＵＣ１８などが使用できる。宿主微生物としては、例えば、エシェリヒア・コリーＷ３１１０、エシェリヒア・コリーＣ６００、エシェリヒア・コリーＪＭ１０９、エシェリヒア・コリーＤＨ５αなどが利用できる。宿主微生物に組換えベクターを移入する方法としては、例えば宿主微生物がエシェリヒア属に属する微生物の場合には、カルシウムイオンの存在下で組換えＤＮＡの移入を行なう方法などを採用することができ、更にエレクトロポレーション法を用いても良い。更には、市販のコンピテントセル（例えば、コンピテントハイＪＭ１０９；東洋紡績製）を用いても良い。

こうして得られた形質転換体である微生物は、栄養培地で培養されることにより、多量の改変タンパク質を安定して生産し得る。形質転換体である宿主微生物の培養形態は宿主の栄養生理的性質を考慮して培養条件を選択すればよく、通常多くの場合は液体培養で行うが、工業的には通気撹拌培養を行うのが有利である。培地の栄養源としては微生物の培養に通常用いられるものが広く使用され得る。炭素源としては資化可能な炭素化合物であればよく、例えば、グルコ−ス，シュークロース、ラクトース、マルトース、フラクトース、糖蜜、ピルビン酸などが使用される。窒素源としては利用可能な窒素化合物であればよく、例えばペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物などが使用される。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミンなどが必要に応じて使用される。培養温度は菌が発育し、改変蛋白質を生産する範囲で適宜変更し得るが、エシェリヒア・コリーの場合、好ましくは２０〜４２℃程度である。培養時間は条件によって多少異なるが、改変タンパク質が最高収量に達する時期を見計らって適当時期に培養を終了すればよく、通常は６〜４８時間程度である。培地ｐＨは菌が発育し改変タンパク質を生産する範囲で適宜変更し得るが、特に好ましくはｐＨ６．０〜９．０程度である。

培養物中の改変タンパク質を生産する菌体を含む培養液をそのまま採取し利用することもできるが、一般には常法に従って改変タンパク質が培養液中に存在する場合は、濾過，遠心分離などにより、改変タンパク質含有溶液と微生物菌体とを分離した後に利用される。改変タンパク質が菌体内に存在する場合には、得られた培養物から濾過または遠心分離などの手段により菌体を採取し、次いでこの菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また必要に応じてＥＤＴＡ等のキレート剤及びまたは界面活性剤を添加して改変タンパク質を可溶化し、水溶液として分離採取する。

この様にして得られた改変タンパク質含有溶液を、例えば、減圧濃縮、膜濃縮、更に硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、或いは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈澱法により沈澱せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。吸着剤或いはゲル濾過剤などによるゲル濾過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィーにより、精製された改変タンパク質を得ることができる。

本願発明の別の実施態様は、上記の改変型ザルコシンオキシダーゼを含むクレアチン測定用試薬、および、クレアチニン測定試薬である。本願発明のクレアチン測定用試薬、および、クレアチニン測定試薬は、液状安定性を向上させた改変型ザルコシンオキシダーゼを用いることにより、該試薬の有効期間の延長、或いは測定精度を向上させることができる。

本発明のクレアチン測定試薬は、上記の液状での安定性が向上した改変型ザルコシンオキシダーゼ、クレアチンアミジノヒドロラーゼ、ペルオキシダーゼ、および過酸化水素検出試薬を含む。また、クレアチニン測定試薬は、上記の液状での安定性が向上した改変型ザルコシンオキシダーゼ、クレアチニンアミドヒドロラーゼ、クレアチンアミジノヒドロラーゼ、ペルオキシダーゼ、および過酸化水素検出試薬を含む。過酸化水素検出試薬とは、改変型ザルコシンオキシダーゼにより生成する過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下で、生成色素として測定する試薬であり、酸化系発色試薬及び必要に応じて４−アミノアンチピリンや３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンなどのカップラーである。本発明の過酸化水素測定試薬は、各種の市販のものなどを用いることができるが、特に限定されるものではない。更に上記のクレアチンまたはクレアチニン測定試薬は、金属塩、蛋白質、アミノ酸、糖類、有機酸などを安定化剤として使用することもできる。また通常、試薬性能に悪影響を及ぼさない範囲で防腐剤や界面活性剤を添加し、適当な緩衝液と共に使用される。緩衝液の種類、濃度およびｐＨは、各試薬成分の保存および酵素反応など目的に応じて一種もしくは複数が選択されるが、いずれの緩衝液を用いるに際しても、酵素反応時のｐＨとしては５．０〜１０．０の範囲で使用されることが好ましい。

本発明において、ザルコシンオキシダーゼ活性の測定は以下の条件で行う。
＜試薬＞
１００ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）（２００ｍＭ ザルコシンおよび
０．１％ トリトンＸ−１００を含む）
０．１％ ４−アミノアンチピリン
０．１％ フェノール
２５Ｕ／ｍｌ ペルオキシダーゼ
＜測定条件＞
上記トリス塩酸緩衝液、４−アミノアンチピリン溶液、フェノール溶液、ペルオキシダーゼ溶液を５：１：２：２の比率で混合し反応混液を調製する。反応混液１ｍｌを試験管に採り、３７℃で約５分間中予備加温した後、酵素溶液０．０５ｍｌを添加し、反応を開始させる。３７℃で正確に１０分間反応させた後、０．２５％ＳＤＳ水溶液２．０ｍｌを加えて反応を停止させ、この液の５００ｎｍの吸光度を測定する。盲検は酵素溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様の操作で吸光度を測定する。上記条件下で１分間に１マイクロモルの過酸化水素を生成する酵素量を１単位とする。また、プロリンに対する反応性は、上記試薬中のザルコシンを同じ濃度のＬ−プロリンに置き換えた場合の活性の相対比として測定した。

以下、本発明を実施例により具体的に説明する。
しかし、本発明はこれらに限定されるものではない。たとえば、後述の実施例３で示された１３種類の改変型ザルコシンオキシダーゼのうち、ＳＡＯＭ１は、配列表・配列番号１に記載されたアミノ酸配列の８９位のリジンがアルギニンに置換された変異体であるが、該変異体の性能に実質的な影響を与えない範囲で、さらに、１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されていてもさしつかえない。ＳＡＯＭ１以外の変異体についても同様である。
実施例１ ザルコシンオキシダーゼの発現プラスミドの構築
アースロバクター・エスピーＴＥ１８２６由来ザルコシンオキシダーゼの発現プラスミドｐＳＡＯＥＰ３は、特開平７−１６３３４１記載の方法に従って構築した。本発現プラスミドは、ＰＵＣ１８のマルチクローニングサイトに、ＴＥ１８２６のザルコシンオキシダーゼをコードする遺伝子を含む約１．７Ｋｂｐの挿入ＤＮＡ断片を含む。その塩基配列を配列表の配列番号２に、また該塩基配列から推定されるザルコシンオキシダーゼアミノ酸配列を配列表の配列番号１に示す。

実施例２ 改変型ザルコシンオキシダーゼ遺伝子の作製
ザルコシンオキシダーゼ遺伝子を含む発現プラスミドｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号３記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅＴＭＳｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ製）を用いて、そのプロトコールに従って変異処理操作を行い、更に塩基配列を決定して、配列番号１記載のアミノ酸配列の８９番目のリジンがアルギニンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ１）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号４記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅＴＭ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ ＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＫｉｔ（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ製）を用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の１５５番目のシステインがイソロイシンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ２）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号５記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の１６６番目のアスパラギンがリジンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ３）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号６記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の２０４番目のメチオニンがアラニンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ４）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号７記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の２１３番目のセリンがプロリンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ５）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号８記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の２３３番目のシステインがセリンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ６）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号９記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の２４０番目のアスパラギンがチロシンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ７）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号１０記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の２５０番目のグルタミン酸がグルタミンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ８）を取得した。
ｐＳＡＯＥＰ３と、配列表の配列番号１１記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の３６４番目のアラニンがバリンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ９）を取得した。
ｐＳＡＯＭ１と、配列表の配列番号７記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の８９番目のリジンがアルギニン、２１３番目のセリンがプロリンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ１０）を取得した。
ｐＳＡＯＭ１０と、配列表の配列番号１０記載の合成オリゴヌクレオチドおよびこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作により、配列番号１記載のアミノ酸配列の８９番目のリジンがアルギニン、２１３番目のセリンがプロリン、２５０番目のグルタミン酸がグルタミンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ１１）を取得した。
ｐＳＡＯＭ１１と、配列表の配列番号４、５、１１記載の各合成オリゴヌクレオチドおよびこれらと相補的な各合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作の繰り返して、配列番号１記載のアミノ酸配列の８９番目のリジンがアルギニン、１５５番目のシステインがイソロイシン、１６６番目のアスパラギンがリジン、２１３番目のセリンがプロリン、２５０番目のグルタミン酸がグルタミン、３６４番目のアラニンがバリンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ１２）を取得した。
ｐＳＡＯＭ１１と、配列表の配列番号６、８、９記載の各合成オリゴヌクレオチドおよびこれらと相補的な各合成オリゴヌクレオチドを用いて、上記と同様の操作の繰り返して、配列番号１記載のアミノ酸配列の８９番目のリジンがアルギニン、２０４番目のメチオニンがアラニン、２１３番目のセリンがプロリン、２３３番目のシステインがセリン、２４０番目のアスパラギンがチロシン、２５０番目のグルタミン酸がグルタミンに置換された変異型ザルコシンオキシダーゼをコードする組換えプラスミド（ｐＳＡＯＭ１３）を取得した。

実施例３ 改変型ザルコシンオキシダーゼの作製
ｐＳＡＯＭ１、ｐＳＡＯＭ２、ｐＳＡＯＭ３、ｐＳＡＯＭ４、ｐＳＡＯＭ５、ｐＳＡＯＭ６、ｐＳＡＯＭ７、ｐＳＡＯＭ８、ｐＳＡＯＭ９、ｐＳＡＯＭ１０、ｐＳＡＯＭ１１、ｐＳＡＯＭ１２、ｐＳＡＯＭ１３の各組み換えプラスミドでエシェリヒアコリーＪＭ１０９のコンピテントセルを形質転換し、該形質転換体をそれぞれ取得した。
４００ｍｌのＴｅｒｒｉｆｉｃ ｂｒｏｔｈを２Ｌ容坂口フラスコに分注し、１２１℃、２０分間オートクレーブを行い、放冷後別途無菌濾過したアンピシリンを１００μｌ／ｍｌになるように添加した。この培地に１００μｌ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地で予め３０℃、１６時間培養したエシェリヒアコリーＪＭ１０９（ｐＳＡＯＭ１）の培養液を５ｍｌ接種し、３０℃で２０時間通気攪拌培養した。培養終了時のザルコシンオキシダーゼ活性は、前記活性測定において、培養液１ｍｌ当たり約９．５Ｕ／ｍｌであった。
上記菌体を遠心分離により集菌し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した後、超音波処理により破砕し、更に遠心分離を行い、上清液を粗酵素液として得た。得られた粗酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸および硫安分画を行い、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．５）で透析した後、ＤＥＡＥセファロースＣＬ−６Ｂ（アマシャムバイオサイエンス製）、更に１時間の熱処理により分離・精製し、精製酵素標品を得た。本方法により得られた標品は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ的にほぼ単一なバンドを示した。また、この変異体をＳＡＯＭ１と命名した。
ｐＳＡＯＭ２、ｐＳＡＯＭ３、ｐＳＡＯＭ４、ｐＳＡＯＭ５、ｐＳＡＯＭ６、ｐＳＡＯＭ７、ｐＳＡＯＭ８、ｐＳＡＯＭ９、ｐＳＡＯＭ１０、ｐＳＡＯＭ１１、ｐＳＡＯＭ１２、ｐＳＡＯＭ１３の各組み換えプラスミドによるエシェリヒアコリーＪＭ１０９形質転換体についても上記方法と同様にして精製酵素標品を取得した。得られた酵素標品をそれぞれＳＡＯＭ２、ＳＡＯＭ３、ＳＡＯＭ４、ＳＡＯＭ５、ＳＡＯＭ６、ＳＡＯＭ７、ＳＡＯＭ８、ＳＡＯＭ９、ＳＡＯＭ１０、ＳＡＯＭ１１、ＳＡＯＭ１２、ＳＡＯＭ１３と命名した。

比較例１ 野生型ザルコシンオキシダーゼの作製
比較例として、ｐＳＡＯＥＰ３によるエシェリヒアコリーＪＭ１０９形質転換体について、上記方法と同様にして、改変前の精製酵素標品を取得した。

実施例４ 改変型ザルコシンオキシダーゼの評価１
実施例３で取得した変異型ザルコシンオキシダーゼ（ＳＡＯＭ１、ＳＡＯＭ２、ＳＡＯＭ３、ＳＡＯＭ４、ＳＡＯＭ５、ＳＡＯＭ７、ＳＡＯＭ８、ＳＡＯＭ１０）および比較例１で取得した各種ザルコシンオキシダーゼをそれぞれ、５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）中に５Ｕ／ｍｌになるように加え、６０℃で３０分間保存した後の残存酵素活性率（％）を測定した。その結果を表１に示す。表１から判るように本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは改変前と比べて液状安定性が向上していることが確認された。

実施例４ 改変型ザルコシンオキシダーゼの評価２
実施例３で取得した変異型ザルコシンオキシダーゼ（ＳＡＯＭ１、ＳＡＯＭ２、ＳＡＯＭ５、ＳＡＯＭ６、ＳＡＯＭ７、ＳＡＯＭ８、ＳＡＯＭ９）および比較例１で取得した各種ザルコシンオキシダーゼをそれぞれ、２ｍＭエチレンジアミン四酢酸ニ水素ニナトリウム、５０ｍＭＮａＣｌ、０．１％（Ｗ／Ｖ）２−メチルイソチアゾロン（ロッシュ・ダイアグノスティックス製）、０．１％（Ｗ／Ｖ）トリトンＸ−１００を含むＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．５）中に５Ｕ／ｍｌになるように加え、４０℃で３日間保存した後の残存酵素活性率（％）を測定した。その結果を表２に示す。表２から判るように本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは改変前と比べて液状安定性が向上していることが確認された。

実施例５ 改変型ザルコシンオキシダーゼの評価３
実施例３で取得した変異型ザルコシンオキシダーゼ（ＳＡＯＭ１、ＳＡＯＭ１０、ＳＡＯＭ１１、ＳＡＯＭ１２、ＳＡＯＭ１３）および比較例１で取得した各種ザルコシンオキシダーゼの、クレアチニン測定試薬中の安定性を測定した。１ｍＭエチレンジアミン四酢酸ニ水素ニナトリウム、５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．１％（Ｗ／Ｖ）２−メチルイソチアゾロン（ロッシュ・ダイアグノスティックス製）、０．１％（Ｗ／Ｖ）トリトンＸ−１００、０．０２％（Ｗ／Ｖ）４−アミノアンチピリン、０．０２％（Ｗ／Ｖ）ＴＯＯＳ（同仁化学研究所製）、１００Ｕ／ｍｌクレアチニンアミドヒドロラーゼ（東洋紡製；ＣＮＨ−２１１）、５０Ｕ／ｍｌクレアチンアミジノヒドロラーゼ（東洋紡製；ＣＲＨ−２２１）、１０Ｕ／ｍｌペルオキシダーゼ（東洋紡製；ＰＥＯ−３０１）を含む５０ｍＭＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．５）に、上記のザルコシンオキシダーゼを１０Ｕ／ｍｌになるよう加え、３５℃で２週間保存した後にザルコシンオキシダーゼ活性の残存率を測定した。その結果を表３に示す。表３から判るように本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは改変前と比べて、クレアチニン測定試薬中での液状安定性が向上していることが確認された。

実施例６ 改変型ザルコシンオキシダーゼの評価４
実施例３で取得した変異型ザルコシンオキシダーゼ（ＳＡＯＭ１、ＳＡＯＭ１０、ＳＡＯＭ１１、ＳＡＯＭ１２、ＳＡＯＭ１３）および比較例１で取得した各種ザルコシンオキシダーゼの、クレアチン測定試薬中の安定性を測定した。１ｍＭエチレンジアミン四酢酸ニ水素ニナトリウム、５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．１％（Ｗ／Ｖ）２−メチルイソチアゾロン（ロッシュ・ダイアグノスティックス製）、０．１％（Ｗ／Ｖ）トリトンＸ−１００、０．０２％（Ｗ／Ｖ）４−アミノアンチピリン、０．０２％（Ｗ／Ｖ）ＴＯＯＳ（同仁化学研究所製）、５０Ｕ／ｍｌクレアチンアミジノヒドロラーゼ（東洋紡製；ＣＲＨ−２２１）、１０Ｕ／ｍｌペルオキシダーゼ（東洋紡製；ＰＥＯ−３０１）を含む５０ｍＭＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．５）に、上記のザルコシンオキシダーゼを１０Ｕ／ｍｌになるよう加え、３５℃で２週間保存した後にザルコシンオキシダーゼ活性の残存率を測定した。その結果を表３に示す。表３から判るように本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼは改変前と比べて、クレアチン測定試薬中での液状安定性が向上していることが確認された。

本発明によって、ザルコシンオキシダーゼ活性を有する蛋白質を蛋白工学的手法により改変し、液状安定性が改良された改変型ザルコシンオキシダーゼを供給することが可能となった。本発明の改変型ザルコシンオキシダーゼを、臨床的に筋疾患，腎疾患の診断の指標となっている体液中のクレアチン，クレアチニンの測定用酵素として使用することで、該試薬の液状安定性を向上させることができる。

Claims (7)

1. 配列表の配列番号１に記載されるアミノ酸配列の１６６位のアスパラギンがリジンに置換されていることを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼ。
2. 請求項１に記載される改変型ザルコシンオキシダーゼをコードする遺伝子。
3. 請求項２に記載の遺伝子を含むベクター。
4. 請求項３に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
5. 請求項４に記載の形質転換体を培養し、該培養物からザルコシンオキシダーゼを採取することを特徴とする改変型ザルコシンオキシダーゼの製造法。
6. 請求項１に記載されるザルコシンオキシダーゼを含むクレアチン測定用試薬。
7. 請求項１に記載されるザルコシンオキシダーゼを含むクレアチニン測定用試薬。