JP2005516586A - 癌の処置に対する遺伝子標的を同定するための試薬および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
(発明の背景)
本出願は、2001年7月20日に出願された、米国仮出願の出願番号60/306,730に対する優先権を主張する。
本発明は、腫瘍細胞の成長を阻害するための方法および試薬に関する。具体的には本発明は、薬物開発のための標的として腫瘍細胞の成長に不可欠な遺伝子を同定して、このような遺伝子を阻害し、それによって腫瘍成長を阻害する。本発明は、化合物をスクリーニングして上記の遺伝子のインヒビターを同定するための方法を提供し、そして上記のインヒビターを用いて腫瘍細胞の成長を阻害するための方法を提供する。本発明はまた、本発明の遺伝子抑制因子によってコードされるペプチド、ならびに腫瘍細胞の成長を阻害するためのその模倣物およびアナログを提供する。また本発明によって、1または複数の腫瘍細胞型の腫瘍細胞から調製される均一化されたランダムフラグメントのcDNAライブラリが提供され、このcDNAフラグメントは、生理学的に中性な刺激因子でのレシピエント細胞の処理によって誘導され得る。
ヒトゲノムのドラフト配列の完了は、当該分野で公知のヒト遺伝子および推定のヒト遺伝子の部分的リストを与え、この総数は、30,000と45,000との間であると見積もられる(Venterら、2001、Science 291:1304〜1351;Landerら、2001、Nature 409:860〜921)。これらの遺伝子は、薬物に対する多くの潜在的な標的を提供し、これらのうちのいくつかは、癌の成長の妨げに有用であり得る。しかし臨床的に有用なジーンターゲティング抗癌薬の開発は、このヒト遺伝子のリストを癌の主要な特徴、すなわち制御不能な腫瘍成長に関与するものに絞る能力によって非常に容易になり得る。腫瘍細胞の成長に不可欠な遺伝子を同定し、そしてどの遺伝子が腫瘍特異的役割を果たし、そして正常な細胞成長に必要とされないかを決定することは特に有用である。これらの遺伝子は、腫瘍特異的な抗癌剤の開発に対する特に興味深い標的である。
本発明は、腫瘍細胞の成長を阻害することによって、癌の処置についての薬物開発に対する標的である遺伝子を同定する。このような遺伝子は、インビトロで腫瘍細胞の成長を阻害する遺伝子抑制因子(GSE)の遺伝子選択を通じて、本明細書中で開示されるように同定される。この選択は、複数の遺伝子を明らかにし、このうちのあるものは、以前に細胞増殖における役割を果たすことが公知であったが、一方他のものは、本発明前に細胞増殖に関与することが公知ではなかった。この後者の遺伝子は、新規の薬物標的を構成し、そして表3に示される。
(a)この化合物の存在環境下または非存在環境下で細胞を培養するステップと、
(b)表3に示される1または複数の遺伝子のサンプルにおける発現または活性についてこの細胞をアッセイするステップと、
(c)表3に示される少なくとも1つの遺伝子のサンプルにおける発現または活性が、この化合物の非存在環境下よりもこの化合物の存在環境下においてより低い場合にこの化合物を同定するステップを含む。
(a)表3において同定される遺伝子の発現または活性を阻害する化合物を用いた処置の前および後に、異常な細胞増殖または腫瘍細胞の成長に関連した疾患または状態を有する動物から細胞を含む生物学的サンプルを獲得するステップと、
(b)この化合物を用いた処置後の表3における少なくとも1つの遺伝子の発現または活性をこの化合物を用いた処置前の遺伝子の発現または活性と比較するステップと、
(c)表3における少なくとも1つの遺伝子の発現または活性が、処置前よりも処置後で低い場合に、この化合物を用いた処置が、異常な細胞増殖または新生物形成細胞の成長に関連した疾患または状態の処置に対する有効性を有することを決定するステップを含む。好ましい実施態様において、この細胞は哺乳動物細胞であり、最も好ましくはヒト細胞であり、最も好ましくは腫瘍細胞である。
本発明は、細胞成長(好ましくは腫瘍細胞の成長)に関与する標的遺伝子、これらの遺伝子の発現または活性を阻害する化合物を同定するための方法、およびこれらの遺伝子の発現または活性を阻害することによって腫瘍細胞の成長を特に阻害するための方法を提供する。好ましくは、本発明の方法は、正常な細胞成長に実質的に影響を及ぼさない。
均一化cDNAフラグメントライブラリを、MCF−7乳癌細胞系統(エストロゲンレセプターポジティブのp53に対する野生型;ATCC受託番号HTB22、米国菌培養収集所、Manassas,VA)から作製した。MCF−7細胞からのポリ(A)+RNAを使用して、GudkovおよびRoninson(1997)に記載される手順の改変を通じて、均一化されたcDNAフラグメントの集団を調製した。手短に言えば、RNAを、100℃で9分間の加熱によって断片化した。二重鎖cDNAを、逆転写プライマー(5’−GGATCCTCACTCACTCANNNNNNNN−3’;配列番号1)を用いてGibco Superscriptキットを使用してこの熱断片化RNAから作製した。このプライマーは、ランダムプライミングについてその3’末端にランダムオクタマー配列を含み、そしてこれは、BamHI制限部位とともに、すべての3つのオープンリーディングフレームにおいてTGA停止コドンを提供するタグ(その二重鎖形態において「停止アダプター」と称される)を保有する。PCRアッセイを使用して、このcDNA調製物におけるβ2−ミクログロブリン、β−アクチンおよびエストロゲンレセプターのmRNA配列の存在を確立した。二重鎖cDNAフラグメントを、以下のアダプターと連結した:
5’GTACCTGAGTTATAGGATCCCTGCCATGCCATGCCATG3’(配列番号2)
3’CCTAGGGACGGTACGGTACGGTAC5’(配列番号3)
後者のアダプター(「開始アダプター」)は、BamHI部位とともにすべての3つのフレームにおいて翻訳開始部位を含んだ。二重鎖cDNAを、開始アダプターおよび停止アダプターにアニーリングするプライマーを用いたPCRによって増幅した。この開始アダプターは、cDNAフラグメントの両方の末端で最初に連結されるが、このPCR産物は、2つの異なるプライマーによって支配的に作製され、そして開始アダプターを3’末端ではなく5’末端にのみ含んだ。この望ましい結果は、逆方向反復によって隣接される配列の再生の際に形成されるフライパンの柄のような構造によるPCR阻害に起因した「PCR抑制効果」によって説明された(Siebertら、1995、Nucleic Acids Res.23:1087〜1088)。さらに、3’末端での任意の残りの開始アダプターを、クローニングの前にBamHI消化によって引き続いて除去した。増幅されたcDNAフラグメント集団を、β2−ミクログロブリン、β−アクチンおよびエストロゲンレセプターの配列の存在について再び試験した。この手順は、ランダムに開始し、そして終結する二重鎖cDNAフラグメント(100〜400bpサイズ)の集団を産生し、これは、元のmRNAの5’方向および3’方向に対応する末端で異なるアダプターによってタグ化された。この5’アダプターは、3つのオープンリーディングフレームにおいて翻訳開始コドンを含み、そしてこの3’アダプターは、すべての3つのリーディングフレームにおいて停止コドンを含んだ。このようなフラグメントは、センス配向でクローニングされる場合に、親タンパク質に由来するペプチドの合成を指向するか、またはアンチセンス配向でクローニングされる場合に、アンチセンスRNA分子を生じさせた。
実施例1に記載される均一化腫瘍ライブラリを、MCF−7ヒト乳癌細胞から調製した。GSE選択についてのレシピエント細胞として、異なる乳癌細胞系統、MDA−MB−231(ATCC受託番号HTB26)を選択した。この系統は、MCF−7に比べて乳癌のより悪性なクラスを代表し、これはエストロゲンレセプターネガティブであり、そしてp53欠損であった。RNA供給源およびレシピエントとしての異なる細胞系統の選択は、異なる型の乳癌に対してより有効であるような成長阻害GSEの単離に向けられた。
LNXCO3ベクターにおけるMCF−7由来の均一化腫瘍ライブラリを、Roninsonら(1998、Methods Enzymol.292:225〜248)に記載されるように、BOSC23パッケージング細胞系統(Pearら、1993、同書)を用いて、同種指向性レトロウイルスの形質導入によってMDA−MB231 3’SS31細胞系統に形質導入した。2億(2×108)のレシピエント細胞を感染し、そしてG418で選択した。この感染率(G418耐性コロニーの頻度によって決定されるように)は36%であった。8千万(8×107)のG418選択されたインフェクタントを、以下のようなBrdU自殺に対するIPTG依存性の耐性についての選択に供した。細胞を、P150当たり106細胞でプレーティングし、そして50μM IPTGで36時間処理し、次いで50μM IPTGおよび50μM BrdUで48時間処理した。細胞をその後10μM ヘキスト33342とともに3時間インキュベートし、そしてライトボックス上で15分間蛍光白色光で照らして、IPTGの存在環境下で成長しそしてBrdUを取り込んだ細胞を破壊した。次いで細胞を、リン酸緩衝化生理食塩水で2回洗浄し、そして7〜10日間IPTGまたはBrdUを含まないG418含有培地において回収した。次いでこの生存細胞を、同じ条件下でBrdU選択の第二ステップに供した。コントロールプレートを、IPTGの非存在環境下で選択し、そして代表的なプレートを染色して、コロニーを計数した(これらの結果を図4に示す)。IPTGの存在環境下における第二ステップの選択後の生存コロニー数は、IPTGの非存在環境下における対応する数よりもおよそ3倍多かった。対照的に、インサートを含まないLNXCO3ベクターで感染されたコントロール細胞は、IPTGの存在環境下または非存在環境下においてBrdU自殺における差異は見られなかった。ポジティブコントロールとして、細胞をp21発現性LNp21CO3で感染したが、IPTGの存在環境下における生存細胞数は多すぎて計数できなかった。これらの結果は、IPTG誘導性の成長阻害GSEの首尾良い選択と一致して、BrdU自殺選択を生き残るライブラリ感染細胞の頻度は、IPTG依存性様式で増大したことを実証した。
富化遺伝子を代表する個々に選択されたクローンを、GSE活性についての機能的試験によって分析した。これらのアッセイの結果を、表1に要約した。第一のアッセイは、MDA−MB−231−3’SS31細胞への個々の推定GSEクローン(LNXCO3ベクターにおける)の形質導入、その後の感染集団(LNXCO3のneo遺伝子についての)のG418選択、およびBrdU自殺のIPTG依存性生存についての形質導入集団の試験を含んだ。後者のアッセイは、以下の通りに行われた。感染細胞(P100当たり200,000、三部で)を、50μM IPTGで72時間処理し、次いで50μM IPTGおよび50μM BrdUで48時間処理した。平行した一組の細胞を、同じ様式(ただしIPTGを含まず三部で)で処理した。次いで細胞を、白色光で照射し、そしてBrdUおよびIPTGの非存在環境下において12〜14日間回収した。結果を、P100当たりの平均のコロニー数として、標準偏差で表した。各々の組のアッセイにおいて、インサートを含まないLNXCO3ベクターを、ネガティブコントロールとして使用した。ポジティブコントロールとして、CDKインヒビターp21を発現するLNXCO3ベクターを使用したが、このコントロールは、過剰にポジティブな値の生存コロニーを矛盾なく与えた。別のポジティブコントロールは、増殖関連の転写因子Stat3由来のGSEを含み、これは、複数のアッセイにおいて、中位であるが再現可能にポジティブな結果を生じた。表1は、IPTGの存在環境下および非存在環境下において生存するコロニー数の差異のt試験分析が、P<0.05という有意性値を提供する場合に、ポジティブであるとして(機能的アッセイの行において「A」)このアッセイ(BrdU自殺のIPTG依存性生存)の結果を列挙した。ポジティブGSEの亜集団に対するこの分析の結果を、図5に示した。
選択遺伝子のいくつかは、癌の薬物開発に対する潜在的な新規の標的としての考慮を保証した。非限定的な例は、以下の通りであった。
表3に示される遺伝子の発現または活性を阻害する効能は、以下のようにインビボで試験された。
Claims (23)
- 哺乳動物細胞の成長を阻害する化合物を同定するための方法であって、
(a)該化合物の存在環境下または非存在環境下で細胞を培養するステップと、
(b)表3に示される1または複数の遺伝子の発現または活性について該細胞をアッセイするステップと、
(c)表3に示される少なくとも1つの遺伝子の発現または活性が、該化合物の非存在環境下よりも該化合物の存在環境下において低い場合に該化合物を同定するステップと、
を含む方法。 - 前記細胞が腫瘍細胞であることを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記細胞がヒト腫瘍細胞であることを特徴とする請求項2に記載の方法。
- 前記化合物の存在環境下における細胞成長を該化合物の非存在環境下における細胞成長と比較するステップをさらに含むことを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記表3の細胞性遺伝子の発現が、相補的核酸とのハイブリダイゼーションによって検出されることを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記表3の細胞性遺伝子の発現が、免疫学的試薬を用いて検出されることを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記表3の細胞性遺伝子の発現が、該細胞性遺伝子の産物の活性についてアッセイすることによって検出されることを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 表3における細胞性遺伝子の発現が、表3における細胞性遺伝子由来のプロモーターに作動可能に連結されたレポーター遺伝子を含む組み換え哺乳動物細胞を用いて、そして前記化合物の非存在環境下よりも該化合物の存在環境下において該レポーター遺伝子の発現の減少を検出してアッセイされることを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記化合物の存在環境下および非存在環境下における細胞成長をアッセイするステップと、細胞成長および表3において同定される遺伝子を阻害する化合物を同定するステップをさらに含むことを特徴とする請求項8に記載の方法。
- 前記細胞が腫瘍細胞であることを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 前記細胞がヒト腫瘍細胞であることを特徴とする請求項10に記載の方法。
- 前記表3の細胞性遺伝子の発現が、相補的核酸とのハイブリダイゼーションによって検出されることを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 前記表3の細胞性遺伝子の発現が、免疫学的試薬を用いて検出されることを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 前記表3の細胞性遺伝子の発現が、該細胞性遺伝子の産物の活性についてアッセイすることによって検出されることを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 請求項1、4、8または9の方法に従って同定される腫瘍細胞の成長を阻害する化合物であって、RNA合成またはタンパク質合成のインヒビターではない化合物。
- 腫瘍細胞の成長を阻害する化合物を同定するための標的遺伝子であって、表3において同定される遺伝子であり、該遺伝子発現による阻害または該遺伝子の産物の活性による阻害が腫瘍細胞の成長を阻害する標的遺伝子。
- 腫瘍細胞の成長を阻害するための方法であって、表3における遺伝子の発現を阻害する有効量の化合物に腫瘍細胞を接触させるステップを含む方法。
- 腫瘍細胞の成長を阻害するための方法であって、表3における遺伝子の発現を阻害する有効量の化合物に腫瘍細胞を接触させるステップを含み、該化合物が請求項1、4、8または9の方法に従って同定される方法。
- 異常な細胞増殖または腫瘍細胞の成長に関連した疾患または状態の処置の有効性を評価するための方法であって、
(a)請求項15に従った化合物を用いた処置の前および後に、異常な細胞増殖または腫瘍細胞の成長に関連した疾患または状態を有する動物から細胞を含む生物学的サンプルを獲得するステップと、
(b)請求項15に従った化合物を用いた処置後の表3における少なくとも1つの遺伝子の発現を請求項15に従った化合物を用いた処置前の該遺伝子の発現と比較するステップと、
(c)表3における少なくとも1つの遺伝子の発現が、処置前よりも処置後で低い場合に、該請求項15に従った化合物を用いた処置が、異常な細胞増殖または腫瘍細胞の成長に関連した疾患または状態の処置に対する有効性を有することを決定するステップと、
を含む方法。 - 異常な細胞増殖または腫瘍細胞の成長に関連した疾患または状態を処置するための方法であって、該疾患または状態を有する動物に、表3における遺伝子の発現を阻害する請求項1、4、8または9の方法に従って産生される治療有効量の化合物を投与するステップを含む方法。
- 哺乳動物細胞において表3で同定される遺伝子の発現または活性を阻害する化合物であって、請求項1、4、8または9の方法に従って同定され、RNA合成またはタンパク質合成のインヒビターではない化合物。
- 配列番号229〜配列番号314によって同定される配列のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を有するペプチド。
- 請求項22に従ったペプチドのペプチド模倣物、有機模倣物または化学模倣物であって、模倣物である対象のペプチドと実質的に同じ腫瘍細胞の成長阻害活性を有する模倣物。
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