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CN112430613A - 一种宽编辑范围的SpG基因及其应用 - Google Patents

一种宽编辑范围的SpG基因及其应用 Download PDF

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CN112430613A
CN112430613A CN202011443163.9A CN202011443163A CN112430613A CN 112430613 A CN112430613 A CN 112430613A CN 202011443163 A CN202011443163 A CN 202011443163A CN 112430613 A CN112430613 A CN 112430613A
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gene
callus
rice
spg
culture medium
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许蓉芳
秦瑞英
刘小双
李娟�
单调风
魏鹏程
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Rice Research Institute of Anhui Academy of Agricultural Sciences
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Rice Research Institute of Anhui Academy of Agricultural Sciences
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Abstract

本发明提供了一种SpG基因及其应用。本发明在OsSpCas9的基础上突变6个氨基酸获得SpG基因。并且本发明提供一种表达盒和一种表达载体,以及该表达盒和表达载体在水稻基因编辑方面的应用。本发明利用突变的SpG基因构建植物表达载体,进而构建水稻打靶载体,导入水稻细胞后造成水稻特异基因位点的DNA双链剪切。本发明实现了水稻基因打靶,这是因为经突变后的SpG适用于水稻的基因组剪切。

Description

一种宽编辑范围的SpG基因及其应用
技术领域
本发明涉及生物技术和植物基因工程技术领域。具体而言,本发明涉及一种宽编辑范围的SpG基因在水稻基因打靶方面的应用。
背景技术
CRISPR-核酸酶技术是近几年发展出的一种真核生物特异位点基因编辑技术。该技术所涉及的核酸酶目前发现的主要有两种:Cas9核酸酶和Cpf1核酸酶。CRISPR-Cas9技术自2012年发现以来,由于其操作简单、高效,已经被广泛应用于斑马鱼、小鼠、大鼠等动物和拟南芥、烟草、甜橙、玉米、水稻等植物的基因编辑中。而常用的CRISPR/SpCas9由于其特异识别序列为NGG的PAM而限制了其在全基因组的应用范围。因此围绕着如何扩展基因组靶向编辑范围这一问题,衍生出了许多基于SpCas9的变体。但这些变体或多或少的存在一些问题,比如靶向效率不足,脱靶等。因此挖掘新的更广适的基因编辑突变体很有必要。
发明内容
针对上述问题,本发明希望通过对SpCas9进行各种突变尝试,然后获取新的具有高剪切效率的基因。实验中,发明人发现对SpCas9的6个特定氨基酸突变后可以获得一种新的具有高剪切效率、宽编辑范围的SpG蛋白。本发明旨在使用植物密码子优化后的OsSpCas9作为基础,将突变后获得的OsSpG基因整合到表达载体中,在此基础上构建相应的打靶载体,而后通过水稻遗传转化实现对水稻特异基因编辑。
具体而言,在第一个方面,本发明在OsSpCas9基础上突变6个氨基酸位点,获得新的基因,命名为OsSpG,所述OsSpG基因至少包含如序列表中SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。
在第二个方面,本发明提供一种含有所述OsSpG基因的植物表达载体。该植物表达载体的构建方法是利用PstII/SacI酶切位点,用PstI/SacI酶切pHUC载体并回收,由于突变的OsSpG序列两端加有PstI/SacI酶切位点,可以利用T4连接酶将OsSpG连接到pHUC载体,得到植物表达载体pHUC411-SpG。
另一方面,在表达载体的基础上,根据实验的实际需要,构建相应的基因打靶载体。
另一方面,本发明还提供一种表达盒,其特征在于,所述表达盒中包含上述的OsSpG基因。
另一方面,本发明还提供一种上述基因、表达盒或载体的应用,其特征在于,所述应用包括利用所述OsSpG基因完成水稻体内DNA双链的剪切,并在自身修复系统的作用下,获得带有突变位点的转基因植物或植物部分。
在另一个方面,本发明提供一种利用pHUC411-SpG表达载体,在表达载体的基础上只需进行简单的退火、酶切连接作用即可获得特异基因的打靶载体(pHUC411-SpG-PDS),将打靶载体导入水稻细胞的方法,包括下述步骤:
(1)将水稻种子去壳、灭菌后将胚分离出来,置于愈伤组织诱导培养基上以产生次级愈伤组织;
(2)将次级愈伤组织转移至新的愈伤组织诱导培养基预培养;
(3)将步骤(2)中获得的愈伤组织与携带OsSpG的打靶载体(pHUC411-SpG-PDS)的农杆菌接触15分钟;
(4)将步骤(3)的愈伤组织转移到上垫上三张无菌滤纸(加入2.5-3.5mL农杆菌悬浮培养基)的培养皿中,21-23℃培养48小时;
(5)将步骤(4)的愈伤组织置于前筛选培养基上培养5-7天;
(6)将步骤(5)的愈伤组织转移筛选培养基上,以获得抗性愈伤组织;
(7)将抗性愈伤组织转移到分化再生培养基中分化成苗;和
(8)将步骤(7)的苗转移到生根培养基中生根。
其中所述步骤(1)中的种子是成熟种子;所述步骤(1)、(2)中的诱导培养基是说明书表1所列出的诱导培养基;所述步骤(3)中的与农杆菌接触是将愈伤组织浸泡在所述农杆菌悬浮液中;所述步骤(4)中的农杆菌悬浮培养基是说明书表1所列出的悬浮培养基;所述步骤(5)中的前筛选培养基是说明书表1所列出的前筛选培养基;所述步骤(6)中的筛选培养基是说明书表1所列出的筛选培养基;所述步骤(7)中的分化再生培养基是说明书表1所列出的分化再生培养基;所述步骤(8)中的生根培养基是说明书表1所列出的生根培养基。
在优选的实施方案中,其中所述水稻是粳稻,更优选地,所述水稻是粳稻日本晴。
Figure BDA0002823153520000031
Figure BDA0002823153520000041
表1培养基的示例性配方
表格中所提到的“优化的N6大量元素”指的是,该N6大量元素中[NO3-]/[NH4+]=40mM/10mM。
在优选的实施方案中,所述OsSpG的核苷酸序列为SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列,具体如:
GCCACCATGgccccaaagaagaagcgcaaggtcgacaagaagtactccatcggcctcgctatcggcaccaattctgttggctgggccgtgatcaccgacgagtacaaggtgccgtccaagaagttcaaggtcctcggcaacaccgaccgccactccatcaagaagaatctcatcggcgccctgctgttcgactctggcgagacagccgaggctacaaggctcaagaggaccgctagacgcaggtacaccaggcgcaagaaccgcatctgctacctccaagagatcttctccaacgagatggccaaggtggacgacagcttcttccacaggctcgaggagagcttcctcgtcgaggaggacaagaagcacgagcgccatccgatcttcggcaacatcgtggatgaggtggcctaccacgagaagtacccgaccatctaccacctccgcaagaagctcgtcgactccaccgataaggccgacctcaggctcatctacctcgccctcgcccacatgatcaagttcaggggccacttcctcatcgagggcgacctcaacccggacaactccgatgtggacaagctgttcatccagctcgtgcagacctacaaccagctgttcgaggagaacccgatcaacgcctctggcgttgacgccaaggctattctctctgccaggctctctaagtcccgcaggctcgagaatctgatcgcccaacttccgggcgagaagaagaatggcctcttcggcaacctgatcgccctctctcttggcctcaccccgaacttcaagtccaacttcgacctcgccgaggacgccaagctccagctttccaaggacacctacgacgacgacctcgacaatctcctcgcccagattggcgatcagtacgccgatctgttcctcgccgccaagaatctctccgacgccatcctcctcagcgacatcctcagggtgaacaccgagatcaccaaggccccactctccgcctccatgatcaagaggtacgacgagcaccaccaggacctcacactcctcaaggccctcgtgagacagcagctcccagagaagtacaaggagatcttcttcgaccagtccaagaacggctacgccggctacatcgatggcggcgcttctcaagaggagttctacaagttcatcaagccgatcctcgagaagatggacggcaccgaggagctgctcgtgaagctcaatagagaggacctcctccgcaagcagcgcaccttcgataatggctccatcccgcaccagatccacctcggcgagcttcatgctatcctccgcaggcaagaggacttctacccgttcctcaaggacaaccgcgagaagattgagaagatcctcaccttccgcatcccgtactacgtgggcccgctcgccaggggcaactccaggttcgcctggatgaccagaaagtccgaggagacaatcaccccctggaacttcgaggaggtggtggataagggcgcctctgcccagtctttcatcgagcgcatgaccaacttcgacaagaacctcccgaacgagaaggtgctcccgaagcactcactcctctacgagtacttcaccgtgtacaacgagctgaccaaggtgaagtacgtgaccgaggggatgaggaagccagctttccttagcggcgagcaaaagaaggccatcgtcgacctgctgttcaagaccaaccgcaaggtgaccgtgaagcagctcaaggaggactacttcaagaaaatcgagtgcttcgactccgtcgagatctccggcgtcgaggataggttcaatgcctccctcgggacctaccacgacctcctcaagattatcaaggacaaggacttcctcgacaacgaggagaacgaggacatcctcgaggacatcgtgctcaccctcaccctcttcgaggaccgcgagatgatcgaggagcgcctcaagacatacgcccacctcttcgacgacaaggtgatgaagcagctgaagcgcaggcgctataccggctggggcaggctctctaggaagctcatcaacggcatccgcgacaagcagtccggcaagacgatcctcgacttcctcaagtccgacggcttcgccaaccgcaacttcatgcagctcatccacgacgactccctcaccttcaaggaggacatccaaaaggcccaggtgtccggccaaggcgattccctccatgagcatatcgccaatctcgccggctccccggctatcaagaagggcattctccagaccgtgaaggtggtggacgagctggtgaaggtgatgggcaggcacaagccagagaacatcgtgatcgagatggcccgcgagaaccagaccacacagaagggccaaaagaactcccgcgagcgcatgaagaggatcgaggagggcattaaggagctgggctcccagatcctcaaggagcacccagtcgagaacacccagctccagaacgagaagctctacctctactacctccagaacggccgcgacatgtacgtggaccaagagctggacatcaaccgcctctccgactacgacgtggaccatattgtgccgcagtccttcctgaaggacgactccatcgacaacaaggtgctcacccgctccgacaagaacaggggcaagtccgataacgtgccgtccgaagaggtcgtcaagaagatgaagaactactggcgccagctcctcaacgccaagctcatcacccagaggaagttcgacaacctcaccaaggccgagagaggcggcctttccgagcttgataaggccggcttcatcaagcgccagctcgtcgagacacgccagatcacaaagcacgtggcccagatcctcgactcccgcatgaacaccaagtacgacgagaacgacaagctcatccgcgaggtgaaggtcatcaccctcaagtccaagctcgtgtccgacttccgcaaggacttccagttctacaaggtgcgcgagatcaacaactaccaccacgcccacgacgcctacctcaatgccgtggtgggcacagccctcatcaagaagtacccaaagctcgagtccgagttcgtgtacggcgactacaaggtgtacgacgtgcgcaagatgatcgccaagtccgagcaagagatcggcaaggcgaccgccaagtacttcttctactccaacatcatgaatttcttcaagaccgagatcacgctcgccaacggcgagattaggaagaggccgctcatcgagacaaacggcgagacaggcgagatcgtgtgggacaagggcagggatttcgccacagtgcgcaaggtgctctccatgccgcaagtgaacatcgtgaagaagaccgaggttcagaccggcggcttctccaaggagtccatcctcccaaagcgcaactccgacaagctgatcgcccgcaagaaggactgggacccgaagaagtatggcggcttcCTCTGGccgaccgtggcctactctgtgctcgtggttgccaaggtcgagaagggcaagagcaagaagctcaagtccgtcaaggagctgctgggcatcacgatcatggagcgcagcagcttcgagaagaacccaatcgacttcctcgaggccaagggctacaaggaggtgaagaaggacctcatcatcaagctcccgaagtacagcctcttcgagcttgagaacggccgcaagagaatgctcgcctctgctAAGCagcttcagaagggcaacgagcttgctctcccgtccaagtacgtgaacttcctctacctcgcctcccactacgagaagctcaagggctccccagaggacaacgagcaaaagcagctgttcgtcgagcagcacaagcactacctcgacgagatcatcgagcagatctccgagttctccaagcgcgtgatcctcgccgatgccaacctcgataaggtgctcagcgcctacaacaagcaccgcgataagccaattcgcgagcaggccgagaacatcatccacctcttcaccctcaccaacctcggcgctccagccgccttcaagtacttcgacaccaccatcgaccgcaagCAGtacCGCtctaccaaggaggttctcgacgccaccctcatccaccagtctatcacaggcctctacgagacacgcatcgacctctcacaactcggcggcgatTCCGGCGGCAGCccaaagaagaagcggaaggtgTCTGGAGGTTCTcctaagaaaaagagaaaagtgTCCGGCGGCTCCccgaagaagaagcgcaaggtgTGA
附图说明
图1为pHUC411-SpG载体质粒示意图。
图2为pHUC411-SpG介导PDS基因的突变示例,PAM序列均为NG。
具体实施方式
以下结合附图叙述本发明的实施例。应该说明,下述实施例仅用于对本发明的示例性实现方式进行说明,而并非对本发明进行任何限制。本领域技术人员可以对本发明作出某些等同的改动和显而易见的改进。
在没有其他具体说明的情况下,下述具体实施方式中的操作均采用本领域通用的常规操作来进行。本领域技术人员可以很容易地从现有技术中获得关于这样的常规操作的教导,例如可以参照教科书Sambrook and David Russell,Molecular Cloning:ALaboratory Manual,3rd ed.,Vols1,2;Charles Neal Stewart,Alisher Touraev,VitalyCitovsky and Tzvi Tzfira,Plant Transformation Technologies等。下述实施例中所用的药材原料、试剂、材料等,如无特殊说明,均为市售购买产品。
实施例1——OsSpG的获得
本发明在植物密码子优化的OsSpCas9基因基础上,进行各种突变尝试,然后获取新的基因。实验中,发明人发现对SpCas9的6个特定氨基酸突变后可以获得一种新的具有高剪切效率的SpG蛋白。具体而言,发明人设计点突变引物,利用全式金公司的多点突变试剂盒连续突变D1135L/S1136W/G1218K/E1219Q/R1335Q/T1337R,得到OsSpG。设计含有PstI/SacI酶切位点的引物进行TA克隆,获得T-OsSpG的中间载体。
本发明的OsSpG基因5’端添加GCCACC的kozrk序列,有利于基因高效表达,同时在5’和3’端分别添加1×和3×的核定位信号NLS,有利于基因入核。
实施例2——含有OsSpG基因植物靶向载体的构建
从上面含有T-OsSpG载体的大肠杆菌XL-blue,用Axygen质粒提取试剂盒中提取质粒,用PstI/SacI酶切,回收OsSpG片段。同时利用PstI/SacI酶对pHUC(现有片段)进行线性化处理,回收pHUC,将上述的OsSpG片段和pHUC片段用T4连接酶(购于TaKaRa公司)进行连接,得到植物表达载体pHUC411-OsSpG(图1)。
选择水稻PDS基因(LOC_Os03g0184000)中的ACATTGCCTGCACCCTTAAATGGTCGGTTGCAATGGAAGGAACACT、GCCGGTTTGATTTTCCTGAAACA、ACTCCATGATATTTGCCATGCCA
(下划线部分为所述NG PAM的部分),作为打靶位点。将靶位点序列与pHUC411-OsSpG融合分别形成pHUC411-OsSpG-PDS-1/2/3/4。利用冻融法将植物表达载体转入根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)EHA105菌株中(安徽省农业科学院水稻研究所保存),用于遗传转化。
实施例3——以pHUC411-OsSpG-PDS-1/2/3/4为打靶载体的水稻遗传转化及突变体的获得。
1、成熟胚愈伤组织的诱导和预培养
将日本晴(安徽省农业科学院水稻研究所保存)的成熟种子去壳,选取外观正常、洁净无霉斑的种子,用70%酒精,摇晃90sec,倒掉酒精;再用含Tween20的50%次氯酸钠(原液有效氯浓度大于4%,每100毫升加入1滴Tween20)溶液清洗种子,在摇床上晃动45min(180r/min)。倒掉次氯酸钠,无菌水洗5-10遍至无次氯酸钠气味,最后加入无菌水,30℃浸泡过夜。用手术刀片沿糊粉层分离胚,盾片朝上放置在诱导培养基(成分见表1)上,12粒/皿,30℃暗培养以诱导愈伤组织。
两周后出现球形、粗糙、浅黄色的次级愈伤组织,可以进行预培养操作,即将次级愈伤转至新的愈伤组织诱导培养基上,30℃暗培养预培养5天。预培养结束后,将状态良好、分裂旺盛的小颗粒用勺收集至50mL的无菌离心管中,用于农杆菌侵染。
2、农杆菌菌株的培养和悬浮液准备
将含有pHUC411-OsSpG-PDS-1/2/3/4载体的农杆菌菌株EHA105在含有50mg/L卡那霉素的LB平板上划线(成分见表1),28℃黑暗培养,24h后用无菌接种环将活化的农杆菌接种至新鲜的50mg/L卡那霉素的LB平板上,进行第二次活化,28℃黑暗培养过夜。在50mL的无菌离心管中加入20-30mL农杆菌悬浮培养基(成分见表1),用接种环将活化2次的农杆菌刮下,调整OD660(Optical density660nm,660nm吸光值)至约0.10-0.25,室温静置30min以上。
3、侵染和共培养
向准备好的愈伤组织中(见步骤1),加农杆菌悬浮液,浸泡15min,其间不时轻轻晃动。浸泡结束后倒掉液体(尽量将液体滴净),用无菌滤纸吸去愈伤组织表面的多余的农杆菌菌液,并在超净台中用无菌风吹干。在100×25mm的一次性无菌培养皿垫上三张无菌滤纸,加入2.5mL农杆菌悬浮培养基,将吸干后的愈伤组织均匀分散在滤纸上,23℃黑暗培养48h。
4、前筛选和筛选培养
共培养结束后,将经共培养的愈伤组织均匀散布于前筛选培养基(成分见表1)中,30℃黑暗培养5天。前筛选培养结束后,将愈伤组织转至筛选培养基上(成分见表1),每个培养皿接25粒愈伤组织,30℃黑暗培养,2-3周后,抗性愈伤组织生长明显,可进行分化再生操作。
5、分化再生
每个独立转化体挑选2-3颗生长状态良好、新鲜的小颗粒,转至分化再生培养基上(成分见表1)。每培养皿接5个独立转化体。28℃光照培养,光照周期为16h光照8h黑暗,光强度为3000-6000lx。
6、生根与移栽
当抗性愈伤组织分化的芽长至约2cm时,每个独立转化体只取一株生长良好的苗,移至生根培养基上(成分见表1),28℃光照培养,光照周期为16h光照8h黑暗,光强度为3000-6000lx。两周后,选择根系发达的小苗,用水洗去培养基,移栽入土。
7、分子鉴定
对转基因分别所得的48棵植株全部进行叶片DNA提取,将所得基因组DNA样品用于PCR分析。用于扩增OsPDS基因各片段的PCR引物分别为5’-TTGGTATTAATGATCGGTTGCA-3’及5’-TACTTCTGGGAATCTTGGTTTA-3’,产生长度为172bp的片段。将PCR组分首先在95℃保持5分钟,然后进行32个循环:94℃30秒、60℃30秒、72℃20秒,最后在72℃延伸10分钟。将PCR产物回收后TA克隆,对TA克隆的阳性单克隆进行测序。所测结果与野生型序列进行比对。在所测的48株转基因植株中分别有41株、38株、28株和44株发生突变,突变效率分别为85.4%、79.2%、58.3%和91.2%。由此可得,突变后的OsSpG基因能够高效的介导水稻基因组切割,从而获得高效的突变体植株。具体突变类型部分见图2。
因此,从上面可以看出,本发明扩展了编辑范围。野生型的SpCas9只能在NGG为PAM的基因组位点实现高效切割,而本发明的SpG基因能够在NG为PAM的位点实现切割,减少了位点的限制性。
序列表
<110> 安徽省农业科学院水稻研究所
<120> 一种宽编辑范围的SpG 基因及其应用
<160> 1
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 4236
<212> DNA
<213> OsSpG
<400> 1
gccaccatgg ccccaaagaa gaagcgcaag gtcgacaaga agtactccat cggcctcgct 60
atcggcacca attctgttgg ctgggccgtg atcaccgacg agtacaaggt gccgtccaag 120
aagttcaagg tcctcggcaa caccgaccgc cactccatca agaagaatct catcggcgcc 180
ctgctgttcg actctggcga gacagccgag gctacaaggc tcaagaggac cgctagacgc 240
aggtacacca ggcgcaagaa ccgcatctgc tacctccaag agatcttctc caacgagatg 300
gccaaggtgg acgacagctt cttccacagg ctcgaggaga gcttcctcgt cgaggaggac 360
aagaagcacg agcgccatcc gatcttcggc aacatcgtgg atgaggtggc ctaccacgag 420
aagtacccga ccatctacca cctccgcaag aagctcgtcg actccaccga taaggccgac 480
ctcaggctca tctacctcgc cctcgcccac atgatcaagt tcaggggcca cttcctcatc 540
gagggcgacc tcaacccgga caactccgat gtggacaagc tgttcatcca gctcgtgcag 600
acctacaacc agctgttcga ggagaacccg atcaacgcct ctggcgttga cgccaaggct 660
attctctctg ccaggctctc taagtcccgc aggctcgaga atctgatcgc ccaacttccg 720
ggcgagaaga agaatggcct cttcggcaac ctgatcgccc tctctcttgg cctcaccccg 780
aacttcaagt ccaacttcga cctcgccgag gacgccaagc tccagctttc caaggacacc 840
tacgacgacg acctcgacaa tctcctcgcc cagattggcg atcagtacgc cgatctgttc 900
ctcgccgcca agaatctctc cgacgccatc ctcctcagcg acatcctcag ggtgaacacc 960
gagatcacca aggccccact ctccgcctcc atgatcaaga ggtacgacga gcaccaccag 1020
gacctcacac tcctcaaggc cctcgtgaga cagcagctcc cagagaagta caaggagatc 1080
ttcttcgacc agtccaagaa cggctacgcc ggctacatcg atggcggcgc ttctcaagag 1140
gagttctaca agttcatcaa gccgatcctc gagaagatgg acggcaccga ggagctgctc 1200
gtgaagctca atagagagga cctcctccgc aagcagcgca ccttcgataa tggctccatc 1260
ccgcaccaga tccacctcgg cgagcttcat gctatcctcc gcaggcaaga ggacttctac 1320
ccgttcctca aggacaaccg cgagaagatt gagaagatcc tcaccttccg catcccgtac 1380
tacgtgggcc cgctcgccag gggcaactcc aggttcgcct ggatgaccag aaagtccgag 1440
gagacaatca ccccctggaa cttcgaggag gtggtggata agggcgcctc tgcccagtct 1500
ttcatcgagc gcatgaccaa cttcgacaag aacctcccga acgagaaggt gctcccgaag 1560
cactcactcc tctacgagta cttcaccgtg tacaacgagc tgaccaaggt gaagtacgtg 1620
accgagggga tgaggaagcc agctttcctt agcggcgagc aaaagaaggc catcgtcgac 1680
ctgctgttca agaccaaccg caaggtgacc gtgaagcagc tcaaggagga ctacttcaag 1740
aaaatcgagt gcttcgactc cgtcgagatc tccggcgtcg aggataggtt caatgcctcc 1800
ctcgggacct accacgacct cctcaagatt atcaaggaca aggacttcct cgacaacgag 1860
gagaacgagg acatcctcga ggacatcgtg ctcaccctca ccctcttcga ggaccgcgag 1920
atgatcgagg agcgcctcaa gacatacgcc cacctcttcg acgacaaggt gatgaagcag 1980
ctgaagcgca ggcgctatac cggctggggc aggctctcta ggaagctcat caacggcatc 2040
cgcgacaagc agtccggcaa gacgatcctc gacttcctca agtccgacgg cttcgccaac 2100
cgcaacttca tgcagctcat ccacgacgac tccctcacct tcaaggagga catccaaaag 2160
gcccaggtgt ccggccaagg cgattccctc catgagcata tcgccaatct cgccggctcc 2220
ccggctatca agaagggcat tctccagacc gtgaaggtgg tggacgagct ggtgaaggtg 2280
atgggcaggc acaagccaga gaacatcgtg atcgagatgg cccgcgagaa ccagaccaca 2340
cagaagggcc aaaagaactc ccgcgagcgc atgaagagga tcgaggaggg cattaaggag 2400
ctgggctccc agatcctcaa ggagcaccca gtcgagaaca cccagctcca gaacgagaag 2460
ctctacctct actacctcca gaacggccgc gacatgtacg tggaccaaga gctggacatc 2520
aaccgcctct ccgactacga cgtggaccat attgtgccgc agtccttcct gaaggacgac 2580
tccatcgaca acaaggtgct cacccgctcc gacaagaaca ggggcaagtc cgataacgtg 2640
ccgtccgaag aggtcgtcaa gaagatgaag aactactggc gccagctcct caacgccaag 2700
ctcatcaccc agaggaagtt cgacaacctc accaaggccg agagaggcgg cctttccgag 2760
cttgataagg ccggcttcat caagcgccag ctcgtcgaga cacgccagat cacaaagcac 2820
gtggcccaga tcctcgactc ccgcatgaac accaagtacg acgagaacga caagctcatc 2880
cgcgaggtga aggtcatcac cctcaagtcc aagctcgtgt ccgacttccg caaggacttc 2940
cagttctaca aggtgcgcga gatcaacaac taccaccacg cccacgacgc ctacctcaat 3000
gccgtggtgg gcacagccct catcaagaag tacccaaagc tcgagtccga gttcgtgtac 3060
ggcgactaca aggtgtacga cgtgcgcaag atgatcgcca agtccgagca agagatcggc 3120
aaggcgaccg ccaagtactt cttctactcc aacatcatga atttcttcaa gaccgagatc 3180
acgctcgcca acggcgagat taggaagagg ccgctcatcg agacaaacgg cgagacaggc 3240
gagatcgtgt gggacaaggg cagggatttc gccacagtgc gcaaggtgct ctccatgccg 3300
caagtgaaca tcgtgaagaa gaccgaggtt cagaccggcg gcttctccaa ggagtccatc 3360
ctcccaaagc gcaactccga caagctgatc gcccgcaaga aggactggga cccgaagaag 3420
tatggcggct tcctctggcc gaccgtggcc tactctgtgc tcgtggttgc caaggtcgag 3480
aagggcaaga gcaagaagct caagtccgtc aaggagctgc tgggcatcac gatcatggag 3540
cgcagcagct tcgagaagaa cccaatcgac ttcctcgagg ccaagggcta caaggaggtg 3600
aagaaggacc tcatcatcaa gctcccgaag tacagcctct tcgagcttga gaacggccgc 3660
aagagaatgc tcgcctctgc taagcagctt cagaagggca acgagcttgc tctcccgtcc 3720
aagtacgtga acttcctcta cctcgcctcc cactacgaga agctcaaggg ctccccagag 3780
gacaacgagc aaaagcagct gttcgtcgag cagcacaagc actacctcga cgagatcatc 3840
gagcagatct ccgagttctc caagcgcgtg atcctcgccg atgccaacct cgataaggtg 3900
ctcagcgcct acaacaagca ccgcgataag ccaattcgcg agcaggccga gaacatcatc 3960
cacctcttca ccctcaccaa cctcggcgct ccagccgcct tcaagtactt cgacaccacc 4020
atcgaccgca agcagtaccg ctctaccaag gaggttctcg acgccaccct catccaccag 4080
tctatcacag gcctctacga gacacgcatc gacctctcac aactcggcgg cgattccggc 4140
ggcagcccaa agaagaagcg gaaggtgtct ggaggttctc ctaagaaaaa gagaaaagtg 4200
tccggcggct ccccgaagaa gaagcgcaag gtgtga 4236

Claims (7)

1.一种宽编辑范围的SpG基因,其特征在于,所述SpG基因至少包含如序列表中SEQ IDNO.1所示的核苷酸序列。
2.根据权利要求1所述的SpG基因,其特征在于,所述SpG基因由序列表中SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列构成。
3.一种表达盒,其特征在于,所述表达盒中包含权利要求1所述的SpG基因。
4.一种表达载体,其特征在于,所述表达载体包含权利要求1所述的SpG基因或权利要求2所述的表达盒。
5.一种权利要求1所述的基因、权利要求3所述的表达盒或权利要求4所述的载体的应用,其特征在于,所述应用包括利用所述SpG基因对水稻基因组进行剪切,获得含有突变位点的转基因植物或植物部分。
6.一种利用含有权利要求1中所述SpG基因的表达载体构建特异基因打靶载体,将打靶载体导入水稻细胞的方法,包括下述步骤:
(1)将水稻种子去壳、灭菌后将胚分离出来,置于愈伤组织诱导培养基上以产生次级愈伤组织;
(2)将所述次级愈伤组织转移至新的愈伤组织诱导培养基进行预培养,获得愈伤组织;
(3)将步骤(2)中获得的愈伤组织与农杆菌接触15分钟,其中,所述农杆菌中引入了所述打靶载体,所述打靶载体中携带所述SpG基因;
(4)将步骤(3)处理后的愈伤组织转移到其上垫有无菌滤纸的培养皿中,21-23℃培养48小时;
(5)将步骤(4)处理后的愈伤组织置于前筛选培养基上培养5-7天;
(6)将步骤(5)处理后的愈伤组织转移筛选培养基上,以获得抗性愈伤组织;
(7)将所述抗性愈伤组织转移到分化再生培养基中分化成苗;和
(8)将步骤(7)中所获得的苗转移到生根培养基中生根。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,所述水稻是粳稻。
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