口腔致病菌多重PCR检测引物组和探针组及其应用
技术领域
本发明属于分子生物学领域,特别涉及一种对于五种口腔常见致病菌牙龈卟啉单胞菌、幽门螺旋杆菌、具核梭杆菌、变形链球菌、金黄色葡萄球菌多重PCR快速检测方法。
背景技术
人体口腔微生物群是一个极其复杂的生态系统,包括病毒,真菌,原生动物和细菌,其中以细菌数量多的,统计表明,每毫升唾液中约有1亿个细菌,整个口腔中的细菌种类超过600种,目前认为牙龈卟啉单胞菌是慢性牙周炎的主要致病菌之一,入血后黏附和侵入动脉血管壁所引起的局部炎症反应,被认为是加速心血管疾病(cardiovascular disease,CVD)动脉粥样硬化发生发展的重要原因之一;幽门螺旋杆菌作为人体口臭的重要原因,该菌与人体的胃炎、消化性溃疡及胃癌等疾病有密切联系;具核梭杆菌是口腔共生菌,但它有潜力致病,有时会引起牙周病,该菌也可能转移到肠道中,且其在肠道中的丰度与诱发性结直肠癌相关。变形链球菌的过度生长容易引发牙髓炎、尖周炎、牙周炎,其患者也可因菌血症而并发脑栓塞或者细菌性心内膜炎,金黄色葡萄球菌是口腔外感染一种主要致病菌,能够引起包括误吸性肺炎、感染性心内膜炎等口腔外感染疾病。
细菌的分离和培养是针对上述五种口腔致病菌最为传统的检测及鉴定方法,这种方法存在明显的缺陷,不仅培养条件和操作复杂,检测周期长,且特异性敏感性都受到很大的限制;随着分子诊断技术的发展,为人们提供多种特异、灵敏和快速的微生物检测方法,例如基于蛋白质水平发展起来酶联免疫吸附剂测定法(enzyme linkedimmunosorbentassay,ELISA)和蛋白质印迹法(Western Blot,WB),针对特定微生物制备特异抗体,从而实现对微生物的高效灵敏检测,该方法较传统方法有一定的提高,但是存在较高的假阳性率风险,临床效果不佳;随着近年来PCR诊断技术的进步和成熟,PCR应用于微生物定性和定量检测领域越来越受到临床研究的重视,在传统PCR系统中,针对特异靶序列设计的寡核苷酸引物进而扩增特异产物并且结合应用于凝胶鉴定、测序分析,或者与限制性酶切技术或者RAPD技术结合可以对特定微生物进行准确、灵敏的鉴定分析,但该类型PCR不仅操作复杂,而且需要对PCR产物进行开管操作,容易引发污染,造成假阳性现象,而且这些类型PCR仅限于单次反应鉴定单个特异靶序列,并且如果需要实现多种口腔致病菌的检测则需要浪费大量的试剂和时间。
发明内容
为解决上述现有技术操作复杂、检测周期长、特异性灵敏性受限、假阳性出现率高、需开管操作、易引发污染、检测效率低、成本高等问题,本发明采用如下技术方案:
一种口腔致病菌多重PCR检测引物组和探针组,包括引物混合物和探针混合物,所述引物混合物成分如下:
牙龈卟啉单胞菌的上游引物为5’-gtcgtttacgagcagccttc-3’
牙龈卟啉单胞菌的下游引物为5’-tttggcttccgttctattgg-3’
幽门螺旋杆菌的上游引物为5’-ggaaaccgattgccttcata-3’
幽门螺旋杆菌的下游引物为5’-tgatgaacagcaccagaagc-3’
具核梭杆菌的上游引物为5’-ccagctggcattcccttt-3’
具核梭杆菌的下游引物为5’-ttttatcggttggaggcaag-3’
变形链球菌的上游引物为5’-ctaaggattccaggggaagg-3’
变形链球菌的下游引物为5’-tggtggcacagaactaagca-3’
金黄色葡萄球菌的上游引物为5’-gctcacatgcctgtggacta-3’
金黄色葡萄球菌的下游引物为5’-agagccttgctgtgggatta-3’,
所述引物混合物中,每一个引物其5’端均增加一段共同的核酸序列CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC,其作用在于提高PCR的灵敏度,特异性,减少引物二聚体的产生(Brownie J,et al.Nucleic acids research,1997,25(16):3235-3241.),更为重要的是提高PCR体系的退火温度使其高于寡核苷酸探针Tm值,导致该探针在PCR退火过程探针不易于结合于靶序列,不易被TaqPolymerase切割,保证期在熔解曲线分析中具有足量探针参与反应;
所述探针混合物成分如下:
牙龈卟啉单胞菌的探针为5’-catcaccacataccacagatg-3’
幽门螺旋杆菌的探针为5’-ctgcaacgtgaccattagcag-3’
具核梭杆菌的探针为5’-aaaatagcatactttacatattcatttt-3’
变形链球菌的探针为5’-ttggaagagcacgtccaa-3’
金黄色葡萄球菌的探针为5’-cactttagaattagtg-3’。
本发明还公开了利用引物组合探针组在进行口腔致病菌多重PCR检测试剂盒中的用途,采用多重PCR同时扩增口腔致病菌中的牙龈卟啉单胞菌、幽门螺旋杆菌、具核梭杆菌、变形链球菌、金黄色葡萄球菌的特异靶序列,再通过改良Taqman探针熔解曲线分析鉴定,实现对于五种口腔常见致病菌多重检测,具体包括以下三个步骤:
1)在需要检测五种口腔致病菌特异靶序列的区域分别设计并制备五条改良的Taqman探针;
2)在每一个设计好的改良Taqman探针外围分别设计一对引物,包括一条上游引物和下游引物,用该对引物对特异靶序列进行单重单色或多重多色实时荧光定量PCR扩增反应,所述PCR扩增的单重单色反应体系为单重单色PCR反应缓冲液,所述PCR扩增的单重单色反应体系为单重单色PCR反应缓冲液均包括引物混合物和探针混合物;
3)实时荧光PCR扩增反应后进行熔解曲线分析,根据改良Taqman探针熔点的变化来判断待检测核酸序列是否存在以上五种口腔致病菌及其型。
进一步的:在步骤2)中所述单重单色PCR反应缓冲液成分如下:
进一步的:在步骤2)中所述多重单色PCR反应缓冲液成分如下:
进一步的:所述改良Taqman探针是一种在低温状态下会形成颈环结构的荧光探针,长度为16-28个碱基,除环上的序列与靶互补外,其臂上碱基也与靶互补。
进一步的:所述改良Taqman探针在5’末端标记荧光基团或淬灭基团,在没有与靶序列杂交时,改良Taqman探针自身形成颈环结构,使荧光基团和淬灭基团相互靠近,荧光基团发出的荧光被淬灭基团吸收,在与靶序列杂交时,改良Taqman探针颈环结构解离,使荧光基团和淬灭基团被分离,荧光基团发出的荧光不能被淬灭基团吸收。
进一步的:所述荧光基团包括目前各种常用的荧光标记物,但不限于这些荧光标记物,如ALEX-350,FAM,VIC,TET,CAL Gold 540,JOE,HEX,CAL Fluor Orange 560,TAMRA,CAL Fluor Red 590,ROX,CAL Fluor Red 610,TEXAS RED,CAL Fluor Red 635,Quasar670,CY3,CY5,CY5.5,Quasar 705等。
进一步的:所述淬灭基团包括目前各种常用的各种淬灭剂,但不限于这些淬灭剂,如DABCYL、BHQ-1、BHQ-2、ECLIPE等。
本发明的有益效果在于:1)寡核苷酸探针熔解曲线分析可以在实时荧光PCR扩增反应后直接进行,无需开管操作,也可以在普通PCR进行扩增后转移到实时荧光PCR仪进行分析;2)寡核苷酸探针熔解曲线分析属于非消耗性的检测,在分析结束后,样本保持PCR后的状态,并且可以多次重复分析;3)寡核苷酸熔解曲线克服在同一荧光通道仅能对其中一种口腔致病菌分析和检测的限制,根据改良的Taqman探针可以通过熔点的变化可在同一荧光通道来区分多种口腔致病菌特异靶序列;4)在引物设计上其5端采用一段通用的寡核苷酸序列,其目的在于增加PCR的特异性外,还可以提高PCR体系的退火温度使其高于寡核苷酸探针Tm值,导致该探针在PCR退火过程探针不易于结合于靶序列,不易被Taq Polymerase切割,保证期在熔解曲线分析中具有足量探针参与反应,另一方面采用Fast TaqPolymerase,该酶被独特的双链DNA结合蛋白融合修饰,使其具有快速反应的特点使其5’端-3’端外切酶活性变弱,保证期在熔解曲线分析中具有足量探针参与反应。
附图说明
图1为实施例1不同互补的靶序列存在下的改良Taqman探针的熔解曲线。图1a和1b表明改良Taqman探针随着温度变化对应的不同荧光通道变化情况;在图1a中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为荧光强度Fluoresecence采集HEX通道荧光;曲线1加入的为代表具核梭杆菌互补的靶序列,曲线2加入的为代表牙龈卟啉单胞菌互补的靶序列,曲线3加入的为代表幽门螺旋杆菌互补的靶序列。在图1b中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为荧光强度Fluoresecence采集FAM通道荧光;曲线4加入的为代表金黄色葡萄球菌互补的靶序列,曲线5加入的为代表变形链球菌互补的靶序列。
图2为实施例1为不同互补的靶序列存在下的经过仪器分析处理后的改良Taqman探针的熔解曲线图。图2a和2b是通过将图1的温度与荧光强度的变化求导并取其负导数(-dF/dT)而得到,直接反应了在不同靶序列存在情况下改良Taqman探针的熔点;在图2中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为温度与荧光强度的导数dF/dT在图2a中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为荧光强度Fluoresecence采集HEX通道荧光;曲线1加入的为代表具核梭杆菌互补的靶序列,曲线2加入的为代表牙龈卟啉单胞菌互补的靶序列,曲线3加入的为代表幽门螺旋杆菌互补的靶序列。在图2b中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为荧光强度Fluoresecence采集FAM通道荧光;曲线4加入的为代表金黄色葡萄球菌互补的靶序列,曲线5加入的为代表变形链球菌互补的靶序列。
图3a和3b为实施例2的熔解曲线检测分析图;在图3a中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为温度与荧光强度的导数dF/dT,采集HEX通道荧光;峰1代表具核梭杆菌互补的靶序列熔点,峰2代表牙龈卟啉单胞菌互补的靶序列熔点,峰3代表幽门螺旋杆菌互补的靶序列熔点。在图3b中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为温度与荧光强度的导数dF/dT,采集FAM通道荧光;峰4代表金黄色葡萄球菌互补的靶序列熔点,峰5代表变形链球菌互补的靶序列熔点。图3a和3b分别由3个平行管组成。
图4为实施例3的扩增曲线检测分析图;在图4中,横坐标为反应循环数Cycle,纵坐标为荧光强度Fluoresecence,采集HEX通道荧光;曲线1加入的为浓度106 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,曲线2加入的为浓度105 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,曲线3加入的为浓度104 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,曲线4加入的为浓度103 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,曲线5加入的为浓度102 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,曲线7加入的为浓度100 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品。
图5为实施例3的扩增曲线检测分析图;熔解曲线检测分析图;在图5中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为温度与荧光强度的导数dF/dT,采集HEX通道荧光;峰1加入的为浓度106 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,峰2加入的为浓度105copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,峰3加入的为浓度104 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,峰4加入的为浓度103 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,峰5加入为浓度102 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品,峰6加入的为浓度101 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品。峰7加入为浓度100 copies的含有具核梭杆菌互补的靶序列质粒标准品。
图6和7为实施例4的熔解曲线检测分析图;在图6中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为温度与荧光强度的导数dF/dT,采集FAM通道荧光;图6为金黄色葡萄球菌互补的靶序列熔解曲线检测分析图;峰1为加入Fast Taq Polymerase,峰2为加入普通TaqPolymerase。在图7中,横坐标为温度Temperature(℃),纵坐标为温度与荧光强度的导数dF/dT,采集HEX通道荧光;图7为具核梭杆菌互补的靶序列(峰3和峰4)和幽门螺旋杆菌(峰5和峰6)互补的靶序列熔解曲线检测分析图;峰3和峰5为加入Fast Taq Polymerase,峰4和峰6为加入普通Taq Polymerase。
具体实施方式
以下实施例结合附图对本发明作进一步的说明,所给出的是本发明的一些具体实施例,这些实施例只是说明而不表示本发明所有的可能性,本发明并不局限于这些实施例中提到的材料、反应条件或参数,任何在相关领域具备经验的人,都可以按照本发明的原理,利用其它类似材料或反应条件实现本发明所描述的对突变进行检测,这些并不脱离本发明描述的基本概念。
实施例1考察人工合成不同的互补靶序列考察改良Taqman探针熔解曲线法分别检测五种口腔致病菌:牙龈卟啉单胞菌、幽门螺旋杆菌、具核梭杆菌、变形链球菌、金黄色葡萄球菌的能力;
本实施例设计了针对以上五种口腔致病菌的改良Taqman探针,人以上五种口腔致病菌的靶序列,改良Taqman探针熔解曲线法检测五种口腔致病菌。所用的改良Taqman探针和靶的序列为:
牙龈卟啉单胞菌的探针为5’-HEX-catcaccacataccacagatg-BHQ2-3’
幽门螺旋杆菌的探针为5’-HEX-ctgcaacgtgaccattagcag-BHQ2-3’
具核梭杆菌的探针为5’-HEX-aaaatagcatactttacatattcatttt-BHQ2-3’
变形链球菌的探针为5’-FAM-ttggaagagcacgtccaa-BHQ2-3’
金黄色葡萄球菌的探针为5’-FAM-cactttagaattagtg-BHQ2-3’
牙龈卟啉单胞菌互补靶的序列为5’-Catctgtggtatgtggtgatg-3’
幽门螺旋杆菌互补靶的序列为5’-Ctgctaatggtcacgttgcag-3’
具核梭杆菌互补靶的序列为5’-Aaaatgaatatgtaaagtatgctatttt-3’
变形链球菌互补靶的序列为5’-ttggaagagcacgtccaa-3’
金黄色葡萄球菌互补靶的序列为5’-Cactaattctaaagtg-3’
所用的靶序列和探针都在上海生工生物工程有限公司合成。
20μL反应液中含10×PCR buffer 2μL(含1.5mMMg2+),10pmol probemix,不加靶序列或者加入10pmol上述靶序列中的一种。对上述混合液进行熔解曲线分析,反应条件为:95℃变性1min,40℃保温2min,随后按1℃/step的升温速率从40℃递增至80℃进行熔解曲线分析,并且采集FAM和HEX荧光信号。该实验在Rotor-geneQ实时PCR仪上进行。
结果见图1a,b和2a,b可以观察到,在没有靶序列存在时,改良Taqman探针低温时,自身闭合,荧光基团和淬灭基团相互靠近而不发出荧光,随着温度的升高,改良分子信标的茎环结构逐渐解链而使荧光基团和淬灭基团分离而发出荧光。在有靶序列存在的情况下,改良Taqman探针低温时与互补的靶序列形成刚性且稳定的双链杂交体,使荧光基团和淬灭基团分离,发出荧光,随着温度的升高,双链杂交体逐渐解链,达到熔点时,荧光迅速下降。对不同的靶序列,形成稳定性不同的双链杂合体,具有各自不同的熔点。不同的改良Taqman探针与不同的靶序列,在不同荧光通道形成各种独特的熔点。根据熔点的不同就很容易判断到底是加入的是哪种靶。因此,Taqman探针熔解曲线法可以用于五种口腔致病菌的检测。
实施例2考察多重PCR后人工合成改良Taqman探针熔解曲线法在同时检测五种口腔致病菌(牙龈卟啉单胞菌、幽门螺旋杆菌、具核梭杆菌、变形链球菌、金黄色葡萄球菌)的能力。本实施例设计了针对以上五种口腔致病菌的改良Taqman探针和扩增引物,采用针对以上五种口腔致病菌全基因组DNA,考察改良Taqman探针熔解曲线法同时检测五种口腔致病菌的能力。所用的改良Taqman探针为:
牙龈卟啉单胞菌的探针为5’-HEX-catcaccacataccacagatg-BHQ2-3’
幽门螺旋杆菌的探针为5’-HEX-ctgcaacgtgaccattagcag-BHQ2-3’
具核梭杆菌的探针为5’-HEX-aaaatagcatactttacatattcatttt-BHQ2-3’
变形链球菌的探针为5’-FAM-ttggaagagcacgtccaa-BHQ2-3’
金黄色葡萄球菌的探针为5’-FAM-cactttagaattagtg-BHQ2-3’
所用的引物为:
牙龈卟啉单胞菌的上游引物为5’-gtcgtttacgagcagccttc-3’
牙龈卟啉单胞菌的下游引物为5’-tttggcttccgttctattgg-3’
幽门螺旋杆菌的上游引物为5’-ggaaaccgattgccttcata-3’
幽门螺旋杆菌的下游引物为5’-tgatgaacagcaccagaagc-3’
具核梭杆菌的上游引物为5’-ccagctggcattcccttt-3’
具核梭杆菌的下游引物为5’-ttttatcggttggaggcaag-3’
变形链球菌的上游引物为5’-ctaaggattccaggggaagg-3’
变形链球菌的下游引物为5’-tggtggcacagaactaagca-3’
金黄色葡萄球菌的上游引物为5’-gctcacatgcctgtggacta-3’
金黄色葡萄球菌的下游引物为5’-agagccttgctgtgggatta-3’
所有引物在设计过程中,其5’端均人为添加一段共同的寡核苷酸填充序列“CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC”。
所用的探针和引物都在上海生工生物工程有限公司合成。
人工设计具核梭杆菌互补靶序列的质粒标准品序列为:
“CCAGCTGGCATTCCCTTTaaaatagcatactttacatattcattttgtttttgtgatataactgaattttttaaaattctagcataataaatccattcaactgcaacaacagaaattatcatattacttattcctgcacctaacattccaactaataccatagctagtaaaaaacttggaaatgttgagaatatcatagtcaaccaatcaaaaaaactttcttctttccCTTGCCTCCAACCGATAAAA”
所用的探针、引物和具核梭杆菌互补靶序列的质粒标准品都在上海生工生物工程有限公司合成。
20μL反应液中含10X PCR buffer 2μL(含1.5mM Mg2+),2.5mM MgCl2,15mMdNTP,10pmol probe mix,13 pmol引物mix,106 copies-100 copies具核梭杆菌互补靶序列的质粒标准品,5U Fast Taq Polymerase。对上述混合液进行PCR扩增,反应条件为:95℃预变性3min;95℃变性5sec,60℃保温3sec,72℃保温10sec,45循环;在反应后混合物进行熔解曲线分析,反应条件为:95℃变性1min,40℃保温2min,随后按1℃/step的升温速率从40℃递增至80℃进行熔解曲线分析,并且采集HEX荧光信号。该实验在Rotor-geneQ实时PCR仪上进行。
结果见图4和5可以观察到,图4的实时PCR扩增曲线表明,在具核梭杆菌互补靶序列的106 copies-101 copies质粒标准品存在的情况下,改良Taqman探针都能给出较好的信号,在具核梭杆菌互补靶序列的100 copies质粒标准品存在的情况下,改良Taqman探针无法检测出荧光信号。在靶序列不存在的情况下,改良Taqman探针无法检测出荧光信号。而图4的熔解曲线分析表明,在具核梭杆菌互补靶序列的106 copies-101 copies质粒标准品存在的情况下,改良Taqman探针能够在HEX通道形成独特一致的熔点。在具核梭杆菌互补靶序列的100 copies质粒标准品存在的情况下,改良Taqman探针无法形成熔点。在靶序列不存在的情况下,改良Taqman探针无法形成熔点。因此,采用多重PCR扩增后进行Taqman探针熔解曲线法检测具核梭杆菌互补靶序列的质粒标准品的灵敏度可达101copies。
实施例4考察人工合成改良Taqman探针熔解曲线法在采用不同的TaqPolymerase下含有以上三种口腔致病菌(具核梭杆菌、幽门螺旋杆菌和金黄色葡萄球菌)检测临床口腔样本的能力。
本实施例设计了针对以上五种口腔致病菌的改良Taqman探针和扩增引物,采用含有以上三种口腔致病菌临床口腔样本,考察改良Taqman探针熔解曲线和不同TaqPolymerase对口腔致病菌临床口腔样本检测的能力所用的改良Taqman探针为:
牙龈卟啉单胞菌的探针为5’-HEX-catcaccacataccacagatg-BHQ2-3’
幽门螺旋杆菌的探针为5’-HEX-ctgcaacgtgaccattagcag-BHQ2-3’
具核梭杆菌的探针为5’-HEX-aaaatagcatactttacatattcatttt-BHQ2-3’
变形链球菌的探针为5’-FAM-ttggaagagcacgtccaa-BHQ2-3’
金黄色葡萄球菌的探针为5’-FAM-cactttagaattagtg-BHQ2-3’
所用的引物为:
牙龈卟啉单胞菌的上游引物为5’-gtcgtttacgagcagccttc-3’
牙龈卟啉单胞菌的下游引物为5’-tttggcttccgttctattgg-3’
幽门螺旋杆菌的上游引物为5’-ggaaaccgattgccttcata-3’
幽门螺旋杆菌的下游引物为5’-tgatgaacagcaccagaagc-3’
具核梭杆菌的上游引物为5’-ccagctggcattcccttt-3’
具核梭杆菌的下游引物为5’-ttttatcggttggaggcaag-3’
变形链球菌的上游引物为5’-ctaaggattccaggggaagg-3’
变形链球菌的下游引物为5’-tggtggcacagaactaagca-3’
金黄色葡萄球菌的上游引物为5’-gctcacatgcctgtggacta-3’
金黄色葡萄球菌的下游引物为5’-agagccttgctgtgggatta-3’
所有引物在设计过程中,其5’端均人为添加一段共同的寡核苷酸填充序列“CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC”。
所用的探针、引物都在上海生工生物工程有限公司合成。
含有以上三种口腔致病菌临床口腔样本由口腔医院提供。
20μL反应液中含10X PCR buffer 2μL(含1.5mMMg2+),1.8mM MgCl2,7mMdNTP,10pmol probe mix,10pmol引物mix,含有以上三种口腔致病菌临床口腔样本,对上述混合液分别加入Fast Taq Polymerase和普通Taq Polymerase后进行PCR扩增,反应条件为:95℃预变性3min;95℃变性5sec,60℃保温3sec,72℃保温10sec,45循环;在反应后混合物进行熔解曲线分析,反应条件为:95℃变性1min,40℃保温2min,随后按1℃/step的升温速率从40℃递增至80℃进行熔解曲线分析,并且采集HEX和FAM荧光信号。该实验在Rotor-geneQ实时PCR仪上进行。
结果见图6和7,可以观察到,在有普通Taq Polymerase或者Fast Taq Polymerase反应液中,改良Taqman探针能够在FAM和HEX通道与对应的三种口腔致病菌(具核梭杆菌、幽门螺旋杆菌和金黄色葡萄球菌)形成独特一致的熔点。特别是在有Fast Taq Polymerase反应液中,改良Taqman探针能够在FAM和HEX通道与对应的三种口腔致病菌(具核梭杆菌、幽门螺旋杆菌和金黄色葡萄球菌)形成独特一致的熔点并且熔点信号显著高于有普通TaqPolymerase的反应液,因此,采用Fast Taq Polymerase进行多重PCR扩增后进行Taqman探针熔解曲线法检测临床口腔样本具有较好的检测效果。
上述仅为本发明的具体实施方式,但本发明的设计构思并不局限于此,凡利用此构思对本发明进行非实质性的改动,均应属于侵犯本发明保护范围的行为。