Nothing Special   »   [go: up one dir, main page]

NO149040B - Fremgangsmaate for fremstilling av antibiotika betegnet fortimicin d og ke - Google Patents

Fremgangsmaate for fremstilling av antibiotika betegnet fortimicin d og ke Download PDF

Info

Publication number
NO149040B
NO149040B NO773674A NO773674A NO149040B NO 149040 B NO149040 B NO 149040B NO 773674 A NO773674 A NO 773674A NO 773674 A NO773674 A NO 773674A NO 149040 B NO149040 B NO 149040B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
fortimicin
water
column
fractions
activity
Prior art date
Application number
NO773674A
Other languages
English (en)
Other versions
NO773674L (no
NO149040C (no
Inventor
Takao Iida
Kunikatsu Shirahata
Isao Matsubara
Masahiro Sugimoto
Shinzo Ishii
Ryo Okachi
Takashi Nara
Original Assignee
Kyowa Hakko Kogyo Kk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from JP51128837A external-priority patent/JPS5834119B2/ja
Priority claimed from JP233877A external-priority patent/JPS5390241A/ja
Application filed by Kyowa Hakko Kogyo Kk filed Critical Kyowa Hakko Kogyo Kk
Publication of NO773674L publication Critical patent/NO773674L/no
Publication of NO149040B publication Critical patent/NO149040B/no
Publication of NO149040C publication Critical patent/NO149040C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H15/00Compounds containing hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals
    • C07H15/20Carbocyclic rings
    • C07H15/22Cyclohexane rings, substituted by nitrogen atoms
    • C07H15/222Cyclohexane rings substituted by at least two nitrogen atoms
    • C07H15/224Cyclohexane rings substituted by at least two nitrogen atoms with only one saccharide radical directly attached to the cyclohexyl radical, e.g. destomycin, fortimicin, neamine
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/863Mycobacterium

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører fremgangsmåte for fremstilling av antibiotisk virksomme forbindelser med den generelle formel:
0
H
hvor R er H (fortimicin KE) eller -CCH2NH2 (fortimicin D), eller farmasøytisk akseptable syreaddisjonssalter derav.
Disse forbindelser med formel I fremstilles ifølge foreliggende oppfinnelse ved at man dyrker en mikroorganisme tilhørende arten Micromonospora olivoasterospora i et næringsmedium, isolerer minst en av nevnte antibiotiske forbindelser fra dyrkningsvæsken og, om ønsket, omdanner den antibiotiske forbindelsen til et syreaddisjonssalt derav, og deretter, om ønsket, oppvarmer oppnådd fortimicin D i en alkalisk vandig oppløsning for omdannelse til fortimicin KE.
Antibiotika som utviser aktivitet overfor et bredt spektrum av bakterier er det alltid behov for. Til dette formål har det vist seg at når visse stammer av Micromonospora dyrkes i et næringsmedium, produseres flere antibiotiske stoffer i dyrkningsvæsken. Spesielt er fortimicin-faktorene A, B og C blitt isolert fra dyrkningsvæsken av Micromonospora olivoasterospora MK-70 (ATCC 21819)(PERM-P nr. 1560), og disse forbindelser har de følgende strukturformler:
Fortimicin A Fortimicin B Fortimicin C
De kjemiske, fysikalske og biologiske egenskaper
til disse antibiotika og fremgangsmåtene til deres fremstilling er forklart i detalj i norsk patent nr. 139•864 (fortimicin B), norsk patent nr. 142.264 (fortimicin A) og norsk patent nr. 142.919 (fortimicin C).
Det har nå vist seg at Micromonospora olioasterospora MK-70, når den dyrkes, frigir to ytterligere aktive, stoffer utover fortimicin A, fortimicin B og fortimicin C. Et studium av disse aktive stoffers kjemiske, fysikalske og biologiske egenskaper viser at stoffene er hittil ukjente antibiotiske forbindelser som nå er blitt navngitt fortimicin D og fortimicin KE.
Ved fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen fremstilles som nevnt de nye antibiotika, fortimicin-faktorene Dog KE, med den generelle formel I ved gjæring av en mikroorganisme tilhørende slekten Micromonospora, som er i stand til å produsere den ene av eller begge disse faktorer, i et næringsmedium inntil det spores vesent-lig antibakteriell aktivitet i dyrkningsvæsken. Etter dyrkningens avslutning isoleres de aktive fraksjoner inneholdende fortimicin D eller fortimicin KE fra dyrkningsvæsken ved kjente metoder, slik som behandling med ioneutvekslerharpiks.
Fortimicin D og KE utviser bred antibakteriell aktivitet og er derfor bl.a. nyttige til å rense og sterilisere labo-ratorieglassutstyr og kirurgiske instrumenter og kan også anvendes i kombinasjon med såper, vaskemidler og vaskeoppløsninger til rengjøringsformål. Videre forventes fortimicin D å kunne anvendes som terapeutisk forbindelse overfor forskjellige infeksjoner (hos mennesker og dyr) fremkalt av forskjellige bakterier.
Fremgangsmåten omfatter også fremstilling av de farmasøytisk akseptable ikke-toksiske syreaddisjonssalter av fortimicin D og fortimicin KE, inkludert mineralsyreaddisjonssaltene, slik som hydrokloridet, hydrobromidet, hydrojodidet, sulfatet, sulfamatet og fosfatet, og de organiske syreaddisjonssalter slik som maleatet, acetatet, citratet, oxalatet, succinatet, benzoatet, tartratet, fumaratet, maleatet, mandelatet og ascorbatet.
De fysikalsk-kjemiske egenskaper til den frie base av fortimicin D er følgende:
(1) Et basisk hvitt pulver
(2) Elementanalyse:
(3) Smeltepunkt: 109-H4°C
(4) Ultrafiolett absorpsjonsspektrum:
Det ultrafiolette absorpsjonsspektrum av en vandig oppløsning av stoffet viser ikke noe karakteristisk maksimum mellom 220 nm
og 360 nm, men viser kun terminal absorpsjon.
(5) Spesifikk dreining: fafl^5 = +121° (C = 0,5, H20)
(6) Infrarødt absorpsjonsspektrum:
Det infrarøde absorpsjonsspektrum måles i KBr-tablett. Den frie base av fortimicin D viser maksima ved følgende bølge-tall (cm<-1>): 3400, 2900, 1625, 1570, 1470, 1350, 1315, 1020.
(7) Fargereaksjoner:
Ninhydrin-reaksjon: positiv
Kaliumpermanganat-reaksj on: positiv
Elson-Morgan's reaksjon: negativ
Biuret-reaksjon: negativ
(8) PMR-spektra av fortimicin D måles i en deuteriumoksyd-oppløs-ning (pD - 10,1) ved anvendelse av JEOL JNM-PS-100. Resultatene er som følger: éi,10-1,90 (4H, m), 2,50-3,06 (4H, m), 3,07 (3H, s), 3,^5 (3H, s), 3,53 (2H, s), 3,70-4,25 (4H, m), 4,36 (1H, t, J = 3,0), 4,88 (1H, d, J= 4,0), 4,92 (1H, d,d, J = 3,0, 9,0). (9) CMR-spektrum av fortimicin D måles i en deuteriumoksyd-oppløsning (pD = 11,1) ved anvendelse av JEOL-PFT-100A. Resultatene er som følger: 6 176,5, 100,1, 78, 5, 73,6, 73,0, 71, 3, 71,1, 56,4, 55,5, 52,5, 50,2, 45,7, 43,4, 32,2, 32,2, 28,3, 26,3. (10) Massespektra av stoffet avslører den følgende M + 1 ion og fragmentioner. Formlene i parenteser betyr sammensetnings-formlene oppnådd ved høyoppløsningsmassespektrometri.
Ut fra resultatet av massespektrometrien bestemmes stoffets molekylvekt til å være 391, og molekylformelen bestemmes til å være C^gH^N^Og. Elementanalysen for stoffet (hydratisert
med 2,5 mol H^O) beregnet ut fra molekylformelen er C = 44,01 %, H = 8,79 % og N = 16,0 4 %. (11) Basert på de ovenfor angitte fysikalsk-kjemiske data antas strukturformelen for fortimicin D å være som følger: (12) Den frie base av fortimicin D er lett oppløselig i vann, oppløselig i metanol og tungt oppløselig i etanol og aceton, men er uoppløselig i organiske oppløsningsmidler slik som kloroform, benzen, etylacetat, butylacetat, dietyleter, butanol, petroleumeter og n-hexan.
De fysikalsk-kjemiske egenskaper til den frie base av fortimicin KE er som følger:
(1) Et basisk hvitt pulver
(2) Elementanalyse funnet: C = 48,18 %, H = 9,29 %, N = 15,84 %
(3) Smeltepunkt: 72-77°C
(4) Ultrafiolett absorpsjonsspektrum:
Det ultrafiolette absorpsjonsspektrum av en vandig oppløsning av stoffet viser ikke noe karakteristisk maksimum mellom 220 nm og 360 nm, men viser kun terminal absorpsjon.
(5) Spesifikk dreining: [o^<5> = + 28,5° (C = 0,5, H20)
(6) Infrarødt absorpsjonsspektrum:
Det infrarøde absorpsjonsspektrum måles i KBr-tablett. Den frie base av fortimicin KE viser maksima ved de følgende bølgetall (cm<-1>): 3350, 2920, 1580, 1470, 1370, 1330, 1090, 1035
(7) Pargereaksjoner:
Ninhydrin-rekasjon: positiv
Kaliumpermanganat-reaksjon: positiv
Elson-Morgan's reaksjon: negativ
Biuret-reaksjon: negativ
(8) PMR-spektra for fortimicin KE måles i deuteriumoksyd-oppløs-ning (pD = 11,1) ved anvendelse av JEOL JNM-PS-100.
Resultatene er som følger:
6 1,10-1,90 (4H, m), 2,40 (3H, s), 2,66 (2H, d, J= 6,0),
2,69-3,20 (3H, m), 3,48 (3H, s), 3,49 (1H, t, J - 9,5), 3,59-^,10 (3H, m), 3,92 (1H, d, d, J = 4,5, 9,5), 5,04 (1E,
d, J = 4,0).
(9) CMR-spektra for fortimicin KE måles i en deuteriumoksyd-oppløsning (pD = 11,0) ved anvendelse av JEOL PFT-100A.
Resultatene er som følger:
6 102, 3, 83,7, 79,9, 71, 3, 71, 3, 60,9, 59, 3, 53,8, 50,4, 45,8, 35,4, 28,3, 27,0. (10) Stoffets massespektrum avslører følgende M + 1 ion og fragmentioner. Formlene i parenteser betyr sammensetnings formlene oppnådd ved høyoppløsningsspektrometri.
m/e 335 M <+> 1 (C^H^N^O )
317 (Cl4H27N305) 235 (C9Hi<gN>2<0>5)
207 (CgH19N204) 189 (CgH17<N>203)
129 (C6H13<N>2<0>)
Ut fra resultatet av massespektrometrien bestemmes stoffets molekylvekt til å være 334, og molekylformelen bestemmes til å være C-^H-^N^Oj-. Stoffets elementanalyse (hydratisert med 1 mol H20) beregnet fra molekylformelen er C = 47,71 %,
H = 9,15 % og N = 15,89 %. (11) Basert på de ovenstående fysiskalsk-kjemiske data antas strukturformelen av fortimicin KE å være som følger: (12) Den frie base av fortimicin KE er lett oppløselig i vann, oppløselig i metanol og tungt oppløselig i etanol og aceton, men er uoppløselig i uorganiske oppløsningsmidler slik som kloroform, benzen, etylacetat, butylacetat, dietyleter, butanol, petroleumeter og n-hexan.
RF-verdiene for fortimicin D og fortimicin KE ved papirkromatografi og tynnsjiktskromatografi under anvendelse av forskjellige utviklingsmidler er vist i følgende tabeller 1-3. Til sammenligning er også anført RF-verdiene for antibiotika som ligner fortimicin D og KE.
Gram-positive og Gram-negative bakterier. Spesielt er det karakteristisk at antibiotikumet er effektivt overfor visse stammer av lischerichia coli, som er resistente overfor kanamycin, gentamicin og tobramycin. Videre forventes fortimicin D å ha en terapeutisk virkning på forskjellige infeksjoner (hos mennesker og dyr) fremkalt av de ovennevnte forskjellige bakterier. I dette henseende er LD^q av fortimicin D sulfat for dd-mus, som veide 20 + 1 g, bestemt til å være 159 mg/kg. Ved slike antibakterielle egenskaper er fortimicin D anvendelig til medisinske formål. Som det også fremgår av det ovenstående, utviser fortimicin KE et bredt anti-bakterielt spektrum. Videre utmerker fortimicin KE seg ved å være stabilt i alkalisk oppløsning.
En sammenligning av fortimicin-faktorene D og KE med kjente antibiotika belyses ytterligere deres nyhet. Som vannopp-løselige basiske antibiotika, produsert av mikroorganismer til-hørende slekten Micromonospora og med brede antibakterielle spektre, kjennes gentamicin-komplekset (M.J. Weinstein et al.: Antimicrobial Agenst and Chemotherapy, 1963, lj D.J. Cooper et al.: J. Infect. Dis. 119, 3^2, 1969; og J.A. Waitz et al.: Antimicrobial Agenst
and Chemotherapy 2, 464 1972), antibiotikum nr. 460 (japansk ut-legningsskrift nr. 46-16153), sisomicin (M.J. Weinstein et al.: J. Antibiotics, 23, 551, 555, 559, 1970), XK-62-2 (US patent nr. 4.045.298), fortimicin B, fortimicin A og fortimicin C. Som vist i den ovenfor angitte tabell 3, utviser gentamtain A, B, C^ og C^ komponenter Rf-verdier på henholdsvis 0,00, 0,00, 0,38 og 0,59 ved papirkromatografi. På den annen side er Rf-verdien ved samme papirkromatografi av fortimicin D 0,18 og av fortimicin KE 0,59. Således er fortimicin D klart forskjellige fra gentamicin-kompo-nentene og fortimicin KE er forskjellige fra alle unntagen gentamicin C^. Ved papirkromatografien i tabell 3 viser fortimicin D samme Rf-verdi (0,18) som gentamicin Ci, .a (0,18), og derfor kan fortimicin D og gentamicin C-, La ikke skjelnes fra hverandre i dette henseende. Ved silisiumdioksydgel-tynnsjiktskromatografien i tabell 2 under anvendelse av utviklingsmidlet II adskiller fortimicin D (Rf-verdi: 0,37) seg imidlertid klart fra gentamicin Cj-_a (Rf-verdi: 0,16). På samme måte viser gentamicin C-^, C2 og i tabell 2 Rf-verdier på 0,0.6 - 0,16, mens fortinricin-KE viser en Rf-verdi på 0,58. Ved sammenligning av fortimicin-faktorene D og
KE med antibiotikum nr. 460, sisomicin, XK-62-6, fortimicin B, fortimicin A og fortimicin C i tabell 3, utviser antibiotikum nr. 460, sisomicin XK-62-2, fortimicin D, fortimicin A og fortimicin C Rf-verdier på henholdsvis 0,01, 0,18, 0,49, 0,65, 0,37
og 0,18. Rf-verdien for fortimicin D er 0,18 og for fortimicin KE 0,59. Fortimicin KE er således klart forskjellig. Selv om Rf-verdien for fortimicin D er den samme (i tabell 3) som for sisomicin og fortimicin C, adskiller fortimicin C (Rf-verdi: 0,40) og sisomicin (Rf-verdi: 0,18) seg klart fra fortimicin D (Rf-verdi: 0,37) ved silisiumdioksydgel-tynnsjiktskromatografien i tabell 2.
Dessuten kan som vann opp løs elige basiske antibiotika., produsert av andre Actinomyceter enn den tilhørende slekten Micromonospora og med brede antibakterielle spektre, nevnes streptomycin A og B, ribostamycin, lividomycin A, B og D, spectinomycin, kasu-gamicin, neomycin A, B og C, kanamycin A, B og C, nebramycin-kompleks, nebramycin-faktorer 4 og 5 og paromomycin. Fortimicin-faktorene D og KE har vist seg å være sterkt forskjellige fra hvert av disse antibiotika med hensyn til fysikalsk-kjemiske egenskaper. Videre er fortimicin-faktorene D og KE, som det fremgår av tabell 3, helt forskjellige fra disse antibiotika med hensyn til Rf-verdiene ved papirkromatografien.
Fra det ovenstående antas fortimicin-faktorene D og KE å være hittil ukjente antibiotika.
Fortimicin-faktorene D og KE produseres ved gjæring av en mikroorganisme tilhørende slekten Micromonospora. Enhver stamme som tilhører slekten Micromonospora og er i stand til å danne fortimicin D og/eller fortimicin KE i dyrkningsvæsken, kan anvendes. Eksempler på foretrukne stammer er Micromonospora olivoasterospora MK-70 (FERM-P nr. 1560) (ATCC 2l8l9), Micromonospora olivoasterospora MK-80 (FERM-P nr. 2192) (ATCC 31010) og Micromonospora olivoasterospora Mm 744 (FERM-P nr. 2193) (ATCC 31009). Disse stammer er blitt deponert i the American Type Culture Collection, Rockville, Maryland, USA og i the Fermentation Research Institute Agency of Industrial Science and Technology, Tokyo, Japan og er blitt tildelt de ovenfor angitte aksesjonsnummere.
Disse stammers mikrobiologiske egenskaper er beskrevet' i norsk patent nr. 13Q.S04, Som tilfellet er med andre stammer av
Actinomyceter kan de mikroorganismer som er anvendelige ved ut-førelsen av fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen, muteres ved kun-stige midler, slik som ultrafiolett bestråling, røntgenbestråling og anvendelse av forskjellige mutasjonsinduserende kjemikalier på kjent måte til forhøyelse'av produksjonen av metaboliske produkter, og et eksempel på en slik mutant stamme er Micromonospora olivoasterospora CS-26 (FERM-P nr. 3567, NRRL 8178). Denne sist-nevnte mutantstamme er deponert i the United States Department of Agriculture, Peoria, Illinois og er fritt tilgjengelig for offent-ligheten .
Generelt kan konvensjonelle metoder for dyrkning av Actinomyceter anvendes ved foreliggende fremgangsmåte. Således
kan man benytte forskjellige næringskilder i dyrkningsmediet. Passende karbonkilder er f.eks. glucose, stivelse, mannose, fruk-tose, saccharose og melasse enten alene eller i kombinasjon. Hydrokarboner, alkoholer, organiske syrer osv. kan også anvendes, avhengig av den benyttede mikroorganismes evne til å assimilere disse. Som uorganiske og organiske nitrogenkilder kan f.eks. anvendes ammoniumklorid, ammoniumsulfat, urea, ammoniumnitrat og natriumnitrat, enten alene eller i kombinasjon, eller naturlige nitrogenkilder slik som pepton, kjøttekstrakt, gjærekstrakt, tørr-gjær, maisstøpevann, soyabønnepulver, kasaminosyre og oppløselig vegetabilsk protein. Om nødvendig kan det tilsettes uorganiske salter slik som natriumklorid, kaliumklorid, kalsiumkarbonat og fosfater til mediet. Videre kan det tilsettes organiske og uorganiske materialer som fremmer veksten av den bestemte stamme og produksjonen av fortimicin-fakt orer D og/eller KE.
En væskedyrkningsmetode, spesielt en submers omrørt dyrkningsmetode, er mest egnet. Dyrkningstemperaturen er mest ønskelig 25-40°C, og det foretrekkes å utføre dyrkningen ved omkring nøytral pH-verdi. Vanligvis er det etter 2-15 dagers væskedyrkning dannet fortimicin D og fortimicin KE i dyrkningsvæsken. Når utbyttet av de antibiotiske stoffer i dyrkningsvæsken når et maksimum, stanses dyrkningen og det ønskede produkt isoleres og renses fra dyrkningsvæsken etter at mikroorganismecellene er blitt fjernet, f.eks. ved filtrering.
Isolering og rensing av fortimicin D og fortimicin KE utføres ved metoder som vanligvis anvendes til isolering og rensing av mikrobielle metaboliske produkter fra en dyrkningsvæske.
Ettersom de antibiotiske forbindelser fortimicin D
og fortimicin KE er basiske stoffer og er lett oppløselige i vann, men tungt oppløselige i de alminnelige organiske oppløsningsmidler, kan forbindelsene renses ved de metoder som vanligvis anvendes for rensing av såkalte vannoppløselige basiske antibiotika. Nærmere bestemt kan D- og KE-faktorene renses ved passende kombinasjon av adsorpsjon og desorpsjon fra kationutvekslerharpiks, cellulose-søylekromatografi, adsorpsjon og desorpsjon under anvendelse av en søyle av "Sephadex LH-20", silisiumdioksydgel-søylekromatografi osv. Som eksempel er en egnet metode for rensing av fortimicin D fra dyrkningsvæsken, når det anvendes en stamme som er i stand til å produsere fortimicin-komplekset (en blanding inneholdende fortimicin A, B, C, D og KE og biprodukter med anti-mikrobiell aktivitet), som følger: Det cellefrie kulturfiltrat innstilles til pH 7,5 og føres deretter igjennom en kationutvekslerharpiks, slik som "Amberlite IRC-50" (ammoniumform). Etter at harpiksen er vasket med vann, gjennomføres eluering med 0,5N ammoniakkvann. De aktive fraksjoner kombineres og konsentreres under forminsket trykk. Konsentratet behandles deretter med en anionutvekslerharpiks "Dowex 1 x 2" (OH-form). De aktive fraksjoner som oppnås ved elueringen, kombineres og konsentreres under forminsket trykk for oppnåelse av et rått pulver av fortimicin-kompleks. Det rå pulver oppløses i vann og oppløsningen innstilles deretter til en pH-verdi på 5j0 med 2N svovelsyre og føres deretter igjennom en kolonne pakket med aktivkull for å adsorbere de aktive komponenter. Søylen av aktivkull vaskes deretter med vann for å fjerne urenheter. Deretter gjennomføres eluering med 0,2N svovelsyre for å eluere de aktive komponenter. De aktive fraksjoner kombineres og etter nøytralisering med en anionutvekslerharpiks, slik som "Dowex 44" (OH-form), frysetørkes blandingen for oppnåelse av fri base av fortimicin-komplekset.
I tilfelle av at fortimicin-komplekset inneholder fortimicin D underkastes det ovenfor oppnådde rå pulver av fortimicin-kompleks silisiumdioksydgel-søylekromatografi under anvendelse av et blandet oppløsningsmiddel av isopropanol, kloroform og konsentrert ammoniakkvann (volumforhold 4:2:1) som utviklingsmiddel. Det rå pulver suspenderes i opp løsningsmidlet og innføres i kolonnen. Utviklingen gjennomføres med det samme oppløsningsmiddel ved en strømningshastighet på omkring 30 ml/time. Først elueres fortimicin B og etter at flere sporkomponenter er eluert, elueres fortimicin A i store aktive fraksjoner. Deretter fortsettes elueringen og etter at fortimicin C er eluert, elueres fortimicin D
i de neste store aktive fraksjoner. De aktive fraksjoner inneholdende fortimicin D oppsamles og konsentreres under forminsket trykk. Konsentratet frysetørkes til oppnåelse av et hvitt stoff bestående av fri base av fortimicin B. På denne måte kan en betydelig renset prøve av fortimicin D oppnås ved silisiumdioksydgel-søylekromatografi. Imidlertid er det enkelte ganger noen urenheter til stede i prøven. I dette tilfelle underkastes prøven ytterligere cellulose-søylekromatografi. Som utviklingsmiddel anvendes et blandet oppløsningsmiddel av n-butanol, pyridin, eddiksyre og vann (volumforhold 6:4:2:4). De ved elueringen oppnådde aktive fraksjoner kombineres og konsentreres under forminsket trykk for oppnåelse av et renset preparat av fortimicin D. For fjerning av urenheter som utviser positiv reaksjon med ninhydrin, er søylekromatografi under anvendelse av karboksymetylcellulose også effektiv. Nærmere bestemt føres i dette tilfelle en oppløs-ning av det rå pulver igjennom en kolonne pakket med karboksymetylcellulose (ammoniumform). De aktive komponenter adsorberes på karboksymetylcellulose. Deretter vaskes søylen grundig med vann for eluering av de fleste pigmenter og uorganiske salter. Deretter elueres de aktive komponenter med 0,2N ammoniumhydrogen-karbonatoppløsning. Fraksjoner inneholdende fortimicin D kombineres og frysetørkes for oppnåelse av renset fortimicin D.
Under de ovenfor beskrevne rensningsmetoder kontrol-leres fraksjonene ved silisiumdioksydgel-tynnsjiktskromatografi. Som utviklingsmiddel anvendes et blandet oppløsningsmiddel av isopropanol, kloroform og konsentrert ammoniakkvann (volumforhold 2:1:1) og utviklingen gjennomføres ved romtemperatur i to timer. Fortimicin D viser en Rf-verdi på omkring 0,43 på silisiumdioksydgel-tynnsjiktskromatogrammet.
I tilfelle av at fortimicin-komplekset inneholder fortimicin KE og fortimicin D, oppløses det ved frysetørkingen oppnådde rå pulver i vann. Etter å være innstilt til pH. 7,5 med, 2N svovelsyre, føres oppløsningen gjennom en kolonne pakket med en kationutvekslerharpiks, "Amberlite CG-50" type I (ammonium-form). Por adsorpsjon av fortimicin-komplekset på denne. Søylen vaskes deretter med vann. Deretter gjennomføres elueringen med 0,2N ammoniakkvann. Etter at flere sporkomponenter er eluert, elueres en blanding av fortimicin B og fortimicin KE i store aktive fraksjoner. Deretter fortsettes elueringen og etter eluering av flere sporkomponenter elueres fortimicin A og fortimi-
cin D. Aktive fraksjoner inneholdende fortimicin KE og fortimicin B kombineres og tørkes for oppnåelse av et pulver av baser av fortimicin KE og fortimicin B. Deretter underkastes pulveret silisiumdioksydgel-søylekromatografi under anvendelse av et blandet opp-løsningsmiddel av isopropanol, kloroform og konsentrert ammoniakkvann (volumforhold 4:2:1) som utviklingsmiddel. Det ovennevnte pulver suspenderes i det blandede oppløsningsmiddel, og suspen-sjonen innføres i en kolonne pakket med silisiumdioksydgel. Utviklingen gjennomføres med det samme oppløsningsmiddel ved en strømningshastighet på omkring 30 ml/time. De først eluerte aktive fraksjoner er fortimicin B. Deretter elueres fortimicin KE. Fraksjonene inneholdende fortimicin KE kombineres og konsentreres under forminsket trykk. Konsentratet oppløses i en liten mengde vann og frysetørkes for oppnåelse av den frie base av fortimicin KE. På denne måte kan en betydelig renset prøve av fortimicin KE oppnås ved silisiumdioksydgel-søylekromatografi. Imidlertid er det enkelte ganger noen urenheter til stede i prøven. Om ønsket kan det for oppnåelse av fortimicin D fra de aktive fraksjoner inneholdende fortimicin D og fortimicin A, anvendes den ovennevnte lignende metode under anvendelse av silisiumdioksydge1-kromatografi.
Under de ovenfor beskrevne rensningsmetoder kontrol-leres fraksjonene ved silisiumdioksydgel-tynnsjiktskromatografi. Som utviklingsmiddel anvendes et blandet oppløsningsmiddel av isopropanol, kloroform og konsentrert ammoniakkvann (volumforhold 2:1:1) og utviklingen gjennomføres ved romtemperatur i to timer. Fortimicin KE viser en Rf-verdi på omkring 0,58 på silisiumdioksyd-ge 1-kromatogrammet.
Fortimicin KE kan også oppnås ved oppvarming av fortimicin D i en alkalisk vandig oppløsning, slik som natriumhydroksyd og bariumhydroksyd. Spesielt oppvarmes fortimicin D i en mettet vandig oppløsning av bariumhydroksyd ved en temperatur på 100°C
i tre timer. Deretter nøytraliseres reaksjonsoppløsningen med
tørr is og det resulterende bunnfall av bariumkarbonat fjernes ved filtrering. Filtratet konsentreres og føres igjennom en kolonne pakket med "Amberlite CG-50" (ammonium-form). Etter vasking av søylen med vann gjennomføres eluering med 0,2N ammoniakkvann. Først elueres en liten mengde reaksjonsbiprodukter og deretter elueres fortimicin KE. Fraksjonene inneholdende fortimicin KE kombineres og konsentreres under forminsket trykk. Konsentratet frysetørkes deretter for oppnåelse av den frie base
av fortimicin KE.
Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen belyses nærmere
ved følgende representative eksempler på bestemte utførelsesformer av fremgangsmåten.
EKSEMPEL 1
A. Dyrking av CS-26 stammen.
Som podestamme anvendes micromonospora olivoasterospora CS-26 (NR-R1 8178) (FERM-P nr. 3567). Podestammen er en mutantstamme avledet fra micromonospora olivoasterospora MK-70 (ATCC 21819) (FERM-P nr. 1560) ved hjelp av behandling med nitro-soguanidin, ultrafiolett bestråling og Y_bestråling. Et medium inneholdende 2 g/dl glucose, 0,5 g/dl pepton, 0,5 g/dl gjærekstrakt og 0,1 g/dl kalsiumkarbonat (pH 755 før sterilisering), anvendes som et første podemedium. Et øye av podestammen innpodes i 10 ml porsjoner av det første podemedium i 50 ml store reagens-glass og dyrkes ved 30°C i fem dager. Deretter innpodes 10 ml av den således fremstilte første podekultur i 30 ml porsjoner av et annet podemedium i 250 ml Erlenmeyerkolber. Det andre podemedium har samme sammensetning som det første podemedium. Den andre podedyrkning utføres ved rysting ved 30°C i to dager, og deretter ble 30 ml av den andre podekultur innpodet i 300 ml porsjoner av det tredje podemedium i 2 1 Erlenmeyerkolber forsynt med skovler. Det tredje podemedium er av samme sammensetning som det første podemedium. Den tredje podedyrkning gjennomføres ved rysting ved 30°C i to dager. Deretter ble 1,5 1 av den tredje p'odekultur (tilsvarende 5 kolber) innpodet i 15 1 av et fjerde podemedium i en 30 1 krukkefermentor av rustfritt stål. Det fjerde podemedium har samme sammensetning som det første podemedium. Den fjerde podedyrkning i krukkefermentoren gjennomføres med lufting og om-røring (15 l/min.; 350 omdr./min.l ved 37°C i to dager. Deretter ble 15 1 av det fjerde podemedium i 150 1 av et gjæringsmedium innpodet i en 300 1 fermentor. Gjæringsmediet har følgende sammensetning : Oppløselig stivelse 4 g/dl K^PO^ 0,05 g/dl CaCO^ 0..1 g/dl Soyabønnemel 2 g/dl MgSO^H^ 0,05 g/dl
Maisstøpevann 1 g/dl KC1 0,03 g/dl
(pH 7,5 før sterilisering)
Gjæringen i fermentoren gjennomføres med lufting og omrøring (80 l/min.\ 150 omdr./min.) ved 2 7°C i fire dager.
B. Isolering av rått fortimicin-kompleks.
Etter fullføring av gjæringen innstilles dyrkningsvæsken til pH 2,5 med konsentrert svovelsyre og omrøres i 30 minutter. Deretter tilsettes omkring 7 kg av et filterhjelpe-middel, "Radiolite Np. 600" til dyrkningsmediet, og mikroorganisme-celler fjernes ved filtrering. Filtratet innstilles til pH 7,5
ved tilsetning av 6N natriumhydroksydoppløsning og sendes deretter igjennom en kolonne pakket med omkring 20 1 av en kationutvekslerharpiks, "Amberlite IRC-50" (ammonium-form). De aktive komponenter adsorberes på harpiksen, og gjennomløpet passeres. Etter at harpiksen er vasket med vann, gjennomføres eluering av de aktive komponenter med 0,5N ammoni akk vann. Eluatet underkastes, bestemmelse av aktivitet ved en papirskivemetode under anvendelse av en agar-plate av Bacillus subtinis nr. 10707. Fraksjoner som viser er. aktivitet, kombineres og konsentreres under forminsket trykk til omkring 1 liter. Konsentratet føres deretter igjennom en søyle - pakket med 500 ml av en anionutvekslerharpiks, "Dowex 1x2"
(OH-form) og deretter føres omkring 2 1 vann gjennom søylen. På denne måte fjernes urenheter og de aktive komponenter elueres med vann. De aktive fraksjoner kombineres og konsentreres under forminsket trykk til omkring 100 ml. Konsentratet føres igjennom en kolonne pakket med omkring 50 ml aktivkullpulver, hvorved de aktive komponenter adsorberes. Søylen vaskes med vann og gjennomløpet og vaskevannet kasteres. Det gjennomføres eluering med 0,2N svovelsyre. Eluatet underkastes bestemmelse av aktivitet ved en papirskivemetode under anvendelse av Bacillus subtilis nr. 10707. De aktive fraksjoner kombineres og føres igjennom en søyle av en
harpiks, "Dowex 44" (OH-form) og eluering av aktivt materiale gjennomføres med vann. De aktive fraksjoner kombineres og konsentreres til omkring 50 ml. Konsentratet frysetørkes for oppnåelse av et rått pulver av fortimicin-kompleks. Utbyttet av det rå pulver er omkring 35 gs og aktiviteten er 580 enh./mg (aktiviteten av 1 mg av det rene preparat tilsvarer 1000 enheter).
C. Isolering og rensing av fortimicin D.
Omkring 500 ml silisiumdioksydgel suspenderes i et oppløsningsmiddel bestående av isopropanol, kloroform og konsentrert ammoniakkvann (volumforhold 4:2:1) og pakkes i en glasskolonne som et tett ensartet lag. Deretter vaskes søylen grundig med det samme oppløsningsmiddel. Deretter fylles 10 g av det i det ovenstående trinn B oppnådde rå pulver over silisiumdioksydgelen i et ensartet tynt lag. Etter påfylling av det rå pulver helles det samme oppløsningsmiddel gradvis inn i søylen fra toppen og deretter gjennomføres eluering kontinuerlig med en strømningshastig-het på omkring 50 ml/time. Eluatet utvinnes i 20 ml fraksjoner,
og hver av fraksjonene underkastes bestemmelse av aktivitet ved papirskivemetoden under anvendelse av Bacillus subtilis nr. 10707» Først elueres fortimicin B etterfulgt av fortimicin A. Deretter fortsettes elueringen og etter at fortimicin C er eluert, elueres fortimicin D. De aktive fraksjoner underkastes tynnsjiktskromatografi og fraksjonene inneholdende fortimicin D kombineres og konsentreres under forminsket trykk til tilstrekkelig fjerning av oppløsningsmidlet. Resten oppløses i en liten mengde vann og opp-løsningen frysetørkes for oppnåelse av omkring 1,5 g renset preparat av den frie base av fortimicin D. Produktet utviser en aktivitet på omkring 980 enheter/mg.
D. Isolering og rensing av fortimicin KE
For oppnåelse av fortimicin KE oppløses 20 g av det
i det ovenstående trinn B oppnådde rå pulver i 30 ml vann. Opp-løsningen innstilles til pH 7>5 med konsentrert svovelsyre og. føres igjennom en kolonne pakket med 1 liter kationutvekslerharpiks, "Amberlite CG-50" (ammonium-form). Gjennomløpet kasseres. Det aktive stoff adsorberes på harpiksen. Etter vasking av harpiksen med vann gjennomføres eluering med 0,2N ammoniakkvann. Eluatet utvinnes i 50 ml fraksjoner og hver av fraksjonene underkastes bestemmelse av aktivitet ved papirskivemetoden og tynnsjikts-
kromatografi.
Først elueres flere sporkomponenter. Deretter elueres fraksjoner inneholdende fortimicin KE og fortimicin B. Fraksjonene kombineres og konsentreres til 20 ml. Konsentratet frysetørkes for oppnåelse av 8 g av et rått pulver.
Omkring 500 ml silisiumdioksydgel, suspendert i et oppløsningsmiddel bestående av isopropanol, kloroform og konsentrert ammoniakkvann (volumforhold 4:2:1), pakkes i en glasskolonne som et tett ensartet lag. Deretter vaskes kolonnen grundig med det samme oppløsningsmiddel. Deretter fylles det ovenfor oppnådde rå pulver på silisiumdioksydgelen i et ensartet tynt lag og det samme oppløsningsmiddel helles gradvis inn i kolonnen ovenifra og deretter gjennomføres elueringen kontinuerlig med en strømnings-hastighet på omkring 50 ml/time. Eluatet utvinnes i 20 ml fraksjoner og hver av fraksjonene underkastes bestemmelse av aktivitet ved papirskivemetoden under anvendelse av Bacillus subtilis nr. 10707- Først elueres fortimicin B etterfulgt av fortimicin KE.
De aktive 'fraksjoner underkastes tynnsjiktskromatografi og fraksjonene inneholdende fortimicin KE kombineres og konsentreres under forminsket trykk for fjerning av oppløsningsmidlet. Resten oppløses i en liten mengde vann og oppløsningen frysetørkes for oppnåelse av omkring 2 g renset preparat av den frie base av for-timicin KE. Produktet utviser en aktivitet på omkring 970 enh./mg.
EKSEMPEL 2
I dette eksempel anvendes den stamme som ble benyttet i eksempel 1, som podestamme, og de i eksempel 1 benyttede podemedier (første til fjerde podemedium) anvendes også som podemedier. Det benyttede gjæringsmedium har følgende sammensetning:
Gjæringen gjennomføres under de samme betingelser som beskrevet i trinn A i eksempel 1, og det isoleres et rått pulver av fortimicin-kompleks på samme måte som beskrevet i trinn B i eksempel 1. Det oppnås omkring 71 g av det rå pulver av fortimicin-kompleks, som utviser en aktivitet på omkring 670 enn./mg. Deretter underkastes 50 g av det rå pulver rensing ifølge den metode som er beskrevet i trinn C i eksempel 1. Det oppnås omkring 15 g fortimicin D, som utviser en aktivitet på omkring 840 enn./mg.-
For ytterligere rensing underkastes preparatet cellu-lose-søylekromatografi. Omkring 500 ml av et cellulosepulver ("AVICEL") suspenderes i et blandet oppløsningsmiddel av n-butanol, eddiksyre, pyridin og vann (volumforhold 6:2:4:4) og pakkes i en glasskolonne for dannelse av et tett ensartet lag. Kolonnen vaskes deretter grundig med det samme oppløsningsmiddel. Preparatet fyl-.les på cellulosepulveret for dannelse av et ensartet tynt lag.
Etter at preparatet er påført, helles det samme oppløsningsmiddel gradvis inn i kolonnen ovenifra og detter gjennomføres elueringen kontinuerlig ved en strømningshastighet på omkring 1 ml/min. Eluatet utvinnes i 10 ml fraksjoner og hver av fraksjonene underkastes bestemmelse av aktivitet ved hjelp av papirskivemetoden under anvendelse av Bacillus subtilis nr. 10707. De aktive fraksjoner kombineres og konsentreres under forminsket trykk for å fjerne opp-løsningsmidlet tilstrekkelig. Resten oppløses i en liten mengde vann og frysetørkes. På denne måte oppnås omkring 8 g av et renset preparat av den frie hase av fortimicin D som utviser en aktivitet på 970 enh./mg.
EKSEMPEL 3
I dette eksempel gjentas metoden fra eksempel 2 for oppnåelse av omkring 68 g av et rått pulver av fortimicin-kompleks. Deretter underkastes 40 g av det rå pulver rensing ifølge metoden
i trinn D i eksempel 1. Det oppnås 7 g fortimicin KE som utviser en aktivitet på omkring 860 enh./mg.
For ytterligere rensing underkastes preparatet cellu-lose-søylekromatografi. Omkring 300 ml av et cellulosepulver ("AVICEL") suspenderes i et oppløsningsmiddel bestående av n-butanol, eddiksyre, pyridin og vann (volumf orhold 6:2:4:4) og pakkes i en glasskolonne for dannelse av et tett ensartet lag. Kolonnen vaskes deretter med det samme oppløsningsmiddel. Preparatet fylles på cellulosepulveret for dannelse av et ensartet tynt lag. Etter at preparatet er påført, helles det samme oppløsningsmiddel gradvis i kolonnen ovenifra og deretter gjennomføres eluering kontinuerlig med en strømningshastighet på omkring 1 ml/min. Eluatet utvinnes i 7 ml fraksjoner og hver av fraksjonene underkastes bestemmelse av aktivitet ved papirskivemetoden under anvendelse av Bacillus subtilis nr. 10707. De aktive fraksjoner kombineres og konsentreres under forminsket trykk for fjerning av oppløsningsmidlet. Resten oppløses i en liten mengde vann og frysetørkes. På samme måte oppnås omkring 5 g av et renset preparat av den frie base av fortimicin KE som utviser en aktivitet på 980 enh./mg.
EKSEMPEL 4
I dette eksempel anvendes den i eksempel 1 benyttede stamme som podestamme, og de i eksempel 1 benyttede podemedier (første til fjerde podemedium) anvendes også som podemedier. Imidlertid anvendes et gjæringsmedium med følgende sammensetning:
Gjæringen gjennomføres under de samme betingelser
som i trinn A i eksempel 1, og fortimicin D isoleres og renses på samme måte som beskrevet i trinn B og C i eksempel 1. Det oppnås omkring 15 g renset preparat av fortimicin D som utviser en aktivitet på omkring 975 enh./mg.
EKSEMPEL 5
I dette eksempel gjentas metoden i eksempel 4 med unntagelse av at fortimicin KE isoleres og renses på samme måte som beskrevet i trinn B og D i eksempel 1. Det oppnås omkring 7 g renset preparat av fortimicin KE som utviser en aktivitet på omkring 985 enh./mg.
EKSEMPEL 6
I dette eksempel anvendes Micromonospora olivoasterospora MK-70 (ATCC 21819), Micromonospora olivoasterospora MK-80 (ATCC 31010) og Micromonospora olivoasterospora Mm 744 (ATCC 31009) som podestammer. Podemediene (første til fjerde podemedium) og gjæringsmediet er de samme som i eksempel 1. Gjæringen gjennom-føres under de samme betingelser som angitt i trinn A i eksempel 1, og fortimicin D isoleres og renses på samme måte som beskrevet i trinn B og C i eksempel 1. På lignende måte isoleres og renses fortimicin KE på samme måte som beskrevet i trinn B og D i eksempel 1. Utbyttene og aktivitetene av de rensede preparater av fortimicin D og fortimicin KE er angitt i tabell 5.
EKSEMPEL 7
I dette eksempel oppløses 10 g av den frie base av fortimicin D i 500 ml av en mettet vandig oppløsning av bariumhydroksyd. Oppløsningen oppvarmes til en temperatur på 100°C i 3 timer og hensettes deretter inntil den er avkjølt til romtemperatur. Oppløsningen nøytraliseres med tørr is for utfelling av bariumkarbonatet. Bunnfallet fjernes ved filtrering og vaskes med en liten mengde vann. Filtratet og vaskeoppløsningene kombineres og konsentreres til omkring 20 ml. Konsentratet føres igjennom en kolonne pakket med 500 ml av en kationutvekslerharpiks, "Amberlite CG-50" (ammonium-form). Etter at harpiksen er vasket med vann, gjennomføres eluering med 0,2 N ammoniakkvann. Eluatet utvinnes i 20 ml fraksjoner og hver av fraksjonene underkastes bestemmelse av aktivitet ved papirskivemetoden. Først elueres en liten mengde reaksjonsbiprodukter. Deretter elueres fortimicin KE. Aktive fraksjoner underkastes tynnsjiktskromatografi og fraksjonene inneholdende fortimicin KE kombineres og konsentreres under forminsket trykk til 20 ml. Konsentratet frysetørkes, hvorved det oppnås 7,8 g renset preparat av den frie base av fortimicin KE, hvis aktivitet er omkring 970 enh./mg.
EKSEMPEL 8
I dette eksempel oppløses 1 g av den frie base av fortimicin D i 5 ml vann. Til oppløsningen tilsettes 1,7 ml 6N svovelsyre. Deretter tilsettes 100 ml metanol til blandingen til dannelse av et hvitt bunnfall. Bunnfallet utvinnes ved filtrering og vaskes med metanol. Etter tørking av bunnfallet under forminsket trykk oppnås 1,2 g av sulfatet av fortimicin D som utviser en aktivitet på omkring 650 enh./mg.
EKSEMPEL 9
I dette eksempel oppløses 1 g av den frie base av fortimicin KE i 5 ml vann. Til oppløsningen tilsettes 2,0 ml 6N svovelsyre. Deretter tilsettes 100 ml metanol til blandingen for dannelse av et hvitt bunnfall. Bunnfallet utvinnes ved filtrering og vaskes med metanol. Etter tørking av bunnfallet under forminsket trykk oppnås 1,3 g av sulfatet av fortimicin KE som utviser en aktivitet på omkring 610 enh./mg.

Claims (2)

1. Fremgangsmåte for fremstilling av antibiotisk virksomme forbindelser med den generelle formel: 0 hvor R er H (fortimicin KE) eller -CCH2NH2 (fortimicin D), eller farmasøytisk akseptable syreaddisjonssalter derav, karakterisert ved at man dyrker en mikroorganisme tilhørende arten Micromonospora olivoasterospora i et næringsmedium, isolerer minst en av nevnte antibiotiske forbindelser fra dyrkningsvæsken og, om ønsket, omdanner den antibiotiske forbindelsen til et syreaddisjonssalt derav, og deretter, om ønsket, oppvarmer oppnådd fortimicin D i en alkalisk vandig oppløsning for omdannelse til fortimicin KE.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at man anvender en mikroorganisme valgt fra Micromonospora olivoasterospora ATCC 21819, Micromonospora olivoasterospora ATCC 31009, Micromonospora olivoasterospora ATCC 31010 og Micromonospora olivoasterospora NRRL 8178.
NO773674A 1976-10-28 1977-10-27 Fremgangsmaate for fremstilling av antibiotika betegnet fortimicin d og ke. NO149040C (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP51128837A JPS5834119B2 (ja) 1976-10-28 1976-10-28 新抗生物質ホ−テイマイシンdおよびその製造法
JP233877A JPS5390241A (en) 1977-01-14 1977-01-14 Novel antibiotics fortemycin

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO773674L NO773674L (no) 1978-05-02
NO149040B true NO149040B (no) 1983-10-24
NO149040C NO149040C (no) 1984-02-01

Family

ID=26335697

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO773674A NO149040C (no) 1976-10-28 1977-10-27 Fremgangsmaate for fremstilling av antibiotika betegnet fortimicin d og ke.

Country Status (13)

Country Link
US (2) US4145253A (no)
AR (1) AR219305A1 (no)
AU (1) AU516309B2 (no)
CA (1) CA1108074A (no)
DE (1) DE2748530C3 (no)
DK (1) DK145893C (no)
ES (1) ES463697A1 (no)
FR (1) FR2369294A1 (no)
GB (1) GB1572530A (no)
GR (1) GR66054B (no)
NO (1) NO149040C (no)
NZ (1) NZ185515A (no)
PH (1) PH14319A (no)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6030320B2 (ja) * 1978-01-13 1985-07-16 山之内製薬株式会社 新規抗生物質およびその製造法
US4312858A (en) * 1978-07-13 1982-01-26 Kowa Company, Ltd. Antibiotic KA-7038 and compositions containing same
US4380581A (en) * 1979-05-01 1983-04-19 Zaidan Hojin Biseibutsu Kagaku Kenkyu Kai Istamycins and streptomyces culture for the production thereof
NL8001842A (nl) * 1979-05-01 1980-11-04 Microbial Chem Res Found Nieuwe antibiotica die istamycinen zijn genoemd, werk- wijzen voor de bereiding van deze antibiotica, alsmede farmaceutische preparaten met werkzaamheid tegen bacterien die deze antibiotica bevatten en werkwijze voor het remmen van de groei van bacterien.
US4382926A (en) * 1980-04-01 1983-05-10 Zaidan Hojin Biseibutsu Kagaku Kenkyu Kai Formimidoyl A and B useful as semi-synthetic aminoglycosidic antibiotics
US4338309A (en) * 1980-11-10 1982-07-06 Abbott Laboratories 4',5'-Dihydro-antibiotic AX-127B-1; 2'-N-des-β-lysyl-4',5'-dihydro-antibiotic AX-127B-1; and 4-N-derivatives thereof
US5508315A (en) * 1992-10-15 1996-04-16 Ecomat, Inc. Cured unsaturated polyester-polyurethane hybrid highly filled resin foams
US5604266A (en) * 1992-10-15 1997-02-18 Ecomat, Inc. Cured unsaturated polyest-polyurethane highly filled resin materials and process for preparing them

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3976748A (en) * 1972-10-09 1976-08-24 Alkem Gmbh Process for the production of 238 Pu 16 O2
US3931400A (en) * 1973-04-17 1976-01-06 Abbott Laboratories Fortimicin B and process for production thereof
US3878193A (en) * 1973-06-26 1975-04-15 Schering Corp Process for the preparation of garamine derivatives
US3963695A (en) * 1974-12-19 1976-06-15 Smithkline Corporation Tetradeoxyneamine and derivatives thereof
US4091032A (en) * 1976-09-23 1978-05-23 Abbott Laboratories 4-N-acylfortimicin B derivatives and the chemical conversion of fortimicin B to fortimicin A
US4124756A (en) * 1976-12-27 1978-11-07 Abbott Laboratories 3-DE-O-Methylfortimicins

Also Published As

Publication number Publication date
NO773674L (no) 1978-05-02
AU3015877A (en) 1979-05-03
AR219305A1 (es) 1980-08-15
CA1108074A (en) 1981-09-01
DE2748530C3 (de) 1980-10-09
FR2369294B1 (no) 1980-04-11
AU516309B2 (en) 1981-05-28
GB1572530A (en) 1980-07-30
US4145253A (en) 1979-03-20
DK145893C (da) 1983-10-31
DE2748530B2 (de) 1980-02-07
GR66054B (no) 1981-01-14
DE2748530A1 (de) 1978-05-18
ES463697A1 (es) 1979-07-16
US4216308A (en) 1980-08-05
NZ185515A (en) 1980-08-26
NO149040C (no) 1984-02-01
DK145893B (da) 1983-04-05
DK478077A (da) 1978-04-29
FR2369294A1 (fr) 1978-05-26
PH14319A (en) 1981-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3976768A (en) Fortimicin A
US3931400A (en) Fortimicin B and process for production thereof
US4007167A (en) Antibiotic BM123 and production thereof
NO149040B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av antibiotika betegnet fortimicin d og ke
US4018972A (en) Antibacterial agents cis-BM123γ1 and cis-BM123γ2
US4279997A (en) Process for production of aminoglycoside antibiotics
US3454696A (en) Antibiotics 460 and methods for their production
NO142919B (no) Fremgangsmaate til fremstilling av et antibiotikum betegnet fortimicin c eller syreaddisjonssalter derav
DE2418349C3 (de) Fortimicin B und dessen pharmakologisch verträgliche Säureadditionssalze, Verfahren zu deren Herstellung und Arzneimittel enthaltend diese Verbindungen
US4209612A (en) Fortimicin factors KF and KG and process for production thereof
NO141343B (no) Fremgangsmaate till fremstilling av aminoglykosid-antibiotika, betegnet xk-88-1,-2, og -5 (seldomyciner).
US4097428A (en) Fortimicin C and process for production thereof
US4045610A (en) Antibiotics designated xk-88 series
US4241182A (en) Fortimicin factors KG1, KG2 and KG3 and processes for production thereof
KR790001476B1 (ko) 포티마이신 c의 제조방법
US4298690A (en) Antibiotics XK-62-3 and XK-62-4 and process for production thereof
JPS5813156B2 (ja) シンコウセイブツシツ sf−1854 ブツシツノセイゾウホウ
US5096817A (en) Process for producing antibiotics BU-3608 D and BU-3608 E
JPS5831196B2 (ja) Sf−1771 ブツシツノ セイゾウホウ
JP3192723B2 (ja) 新規マクロライド抗生物質sf2748b物質、sf2748c1物質、sf2748d物質およびsf2748e物質ならびにその製造法
SU296323A1 (ru) Способ получения антибиотика а204
US3657418A (en) Antibiotic histidomycin
JPS5834119B2 (ja) 新抗生物質ホ−テイマイシンdおよびその製造法
US4505895A (en) Antibiotic 273a1
JPS5922513B2 (ja) 新規物質sum−4およびその製造法