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Introduction Et Rappel Sur Les Paramètres Fermentaires

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I.

Introduction
Les bioréacteurs ou réacteurs enzymatiques, sont construit en général sur les
mêmes modèles que les réactions chimiques, ce sont des cuves ou enceintes en verre
(pour les modèles de laboratoires ou en acier ou en acier inoxydable (industrielle).
Ils sont pourvus pour réaliser les réactions enzymatiques (réacteurs
enzymatiques) ou des réactions à cellules (fermenteurs ou cytocultures), les réacteurs
biologiques sont aussi appelés bioréacteurs.
Le bioréacteur permet de contrôler les conditions de culture (T°, pH, aération,…etc.).
Les bioréacteurs industriels permettent la fabrication de nombreux produits : yaourt,
vaccin, antibiotiques, vitamines, anticorps, acides organiques.
Un fermenteur est construit en général sur le modèle d’un bioréacteur muni d’un
système d’aération. Cependant, le terme fermenteur qui est parfois utilisé sans
distinction par rapport à celui de bioréacteur, permet de différencier le type de culture
(bactérie, levure pour fermenteur et cellules animales pour bioréacteurs).
Les bioréacteurs sont conçus pour assurer quatre (04) grandes fonctions :
-transfert de matière
-transfert de chaleur
-maintien de stérilité
-suivi des paramètres et conduite de régulation
II. Fermenteur
1) Généralités
Les premiers procédés industriels de fermentation ont été des versions
extrapolées des recettes domestiques. pour satisfaire les besoins de plus en plus
important , de nouvelles dimensions se sont développées à partir de la capacité des
micro-organismes à produire des quantités importantes des métabolites primaires ou
secondaires d’intérêt industriel, intéressant , la plupart des secteurs de l’activité
économique , chimie, pharmacie, énergie , alimentation, agriculture et environnement.
Les réactions de fermentation est un processus qui fait appel à des microorganismes qui
se développent en consommant une partie réactive appelé substrat et en transformant
l’autre en divers produit. Les cuves de fermentation ont la dimension (1 à 15L)
dimensions de laboratoire à l’échelle pilote (1 à 5m3) ou industrielle (300 à 500m3) est
appelé fermenteur.
Leur mode de fonctionnement est soit discontinu (batch) ou semi continu (fed-batch) ou
continu (chemostat).

2) Critères de conception d’un fermenteur


Les critères de fonctionnement d’un fermenteur industriel découlent de la
réaction biologique de fermentation que l’on souhaite mettre en œuvre, dans le but de
produire soit de biomasse ou molécules contenues dans le micro-organisme ou produit
par ces derniers (acides organiques, acides aminés).
En fonction du métabolisme sélectionné, imposé les conditions de calcul de la
conception du fermenteur (transfert de matière, de chaleur, critères de stérilité.)

3) Mesures et contrôle de régulation


1. Les mesures courantes effectuées sont les suivantes :
 Vitesse d’agitation
 Aération (volume d’air injecté/unité de temps)
 T°
 Ph
 Pression
 Détection de mousse
 O2 dissout
 CO2 dissout
 O2 dans la phase gazeuse en sortie du fermenteur
 CO2 dans la phase gazeuse en sortie du fermenteur
 Masse

2. Les mesures spécifiques


 Turbidimétrie
 Boucle de filtration avec analyse (HPLC)
 Méthanisation (la spécificité de production de méthane par certains
micro-organismes)
 Maitrise du phénomène de moussage
 Evolution du gaz dissout dans le milieu de fermentation

 Différents échelles de travail


Echelle laboratoire Pilote industrielle
Temps recherche développement production
Objectif Etude de la faisabilité Etude et mise Mise en œuvre des
de production au point des conditions
(collection des souches conditions industrielles
et préparation des industrielles
milieux)

4) Rappels sur les paramètres fermentaires


Les réactions globales de croissance cellulaires peuvent caractérisées en terme de
cinétique

4.1) taux de croissance

Le taux de croissance mesure l’accroissement de la population microbienne

µ (h-1) au cours d’une période de temps (t)

dx/dt= µX ⇒ X= 1/µ dx/dt

X: biomasse (g/L ou nombre de cellules)

Il est calculé selon la formule suivante : µ= n/t


4.2) temps de génération :

C’est le temps nécessaire à une bactérie pour donner deux bactéries puis4-8…..n.

Il peut être définit par le temps nécessaire au doublement d’une population bactérienne

G=t/n

t : temps en minutes

n : nombre de division cellulaire

4.4) Rendement

Après inoculation du milieu de culture, on observe successivement une phase de


latence pendant laquelle les micro-organismes s’adaptent à leur nouveau
environnement ; une phase de croissance, souvent exponentielle, une phase de
ralentissement suivie d’une phase de déclin et mortalité des cellules.

Le rendement est le rapport de l’accroissement de biomasse sur la consommation du


substrat S pour une période donnée.

Soit un intervalle de temps ∆t, ∆[S] (Kg/m3) de substrat consommé pour former ∆[X]
(Kg/ m3) de biomasse et ∆ [P] de produit. On définit donc le rendement :

 De formation de biomasse par rapport au substrat


Rx/s=-∆[X]/ ∆[S]
 De formation du produit par rapport au substrat
Rp/s=-∆ [P]/ ∆[S]

Remarque : pour la fermentation pour les levures et bactéries on détermine le


rendement par le rapport suivant :
Rdt = Biomasse formée en poids (g)/ Quantité de sucre consommé (g)

4.5) Coefficient métabolique


Ce coefficient métabolique q mesure la vitesse de consommation du substrat par
la biomasse à un substrat q=1/X.ds/dt
4.6) Cinétique de croissance limitée par un substrat
 En culture discontinue anaérobie
Il peut s’agir du substrat carboné ou de la source azotée, lorsqu’en fin de
culture ces substrats sont épuisés.
 En culture aérobie
C’est en générale l’oxygène, faiblement soluble dans le milieu de
fermentation est apporté en continu qui est le substrat limitant.

4.7) la relation cinétique de Monod


L’effet de la concentration d’un substrat limitant sur la vitesse de croissance d’un
micro-organisme est la relation de Monod :
µ= µmax [S]/Km+[S]
Ou :
- µ: taux de croissance
- Km (Kg/m3) constante de Monod

Remarque
Cette relation de la croissance cellulaire repose sur un grand nombre de réactions
enzymatiques donc, la relation de Monod est identique à celle de Michaélis-Menten.
La relation de Monod permet la modélisation cinétique des phases de croissance et de
ralentissement.

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