FUNDAMENTOS DE AGARES

 Gram Negativas  Hemolisis  Tipo de

 Gram Positivas  Bacterias específicas medio/cultivo
 Inhibidores

Agar MacConkey: es un medio selectivo y diferencial para bacterias Gram negativas, especialmente enterobacterias;
el cristal violeta y las sales biliares inhiben el crecimiento de bacterias Gram positivas y un indicador de pH rojo neutro
para la detección de la enzima lactasa.

 Si el medio y sus colonias se tornan de un color rojizo es señal de lactosa (+) acidificando el medio
 Si el medio no vira a ningún color particular y las colonias son blancas o incoloras es señal de lactosa (-)
produciendo amoniaco y utilizando peptonas en vez de lactosa.
Agar Sangre: Es un medio nutritivo no selectivo que gracias a la sangre añadida permite observar si los microorganismos
realizan hemólisis (Beta, Alfa y Gamma) por medio de los halos hemolíticos cuyos colores en orden son:

 β = incoloros = hemolisis total

 α = verdosos = hemolisis parcial
 γ = no hay halos visibles = sin hemolisis
Posibles microorganismos según hemolisis en agar sangre (cocos Gram positivos):

 β = Staphylococcus aureus
 β = Alfa Streptococcus pyogenes
 γ = Neisseria meningitidis
 γ = Beta Staphylococcus epidermidis
 α = Streptococcus pneumoniae
Agar Manitol Salado: Es un medio de cultivo selectivo que permite el crecimiento de bacterias Gram positivas, su
concentración de NaCl del (7.5% a 10%) siendo selectivo para Staphylococcus y Micrococcaceae e inhibitorio para
bacterias Gram negativas, sumado el Manitol que es otro inhibidor de Gram negativas y un indicador de pH rojo fenol.
Este agar busca evidenciar si los microorganismos a analizar (en su mayoría Staphylococcus) son coagulasa (+) o (-).

 Si es coagulasa (+) producen colonias de color amarillo y un medio circundante del mismo color (positivo para
Staphylococcus aureus)
 Si es coagulasa (-) producirá colonias de color rojo y no producen un cambio de color en el medio.
Agar Baird Parker: Es un medio de cultivo selectivo y diferencial para Staphylococcus coagulasa (+) para comprobar
la reducción de telurito y detectar la enzima lecitinasa. Es altamente nutritivo para los Staphylococcus, gracias a que el
telurito de potasio y el cloruro de litio actúan como agentes inhibidores a la flora acompañante dejando exclusivo para
Staphylococcus y la yema de huevo permite visualizar la actividad lecitinásica.

 Si los Staphylococcus reducen el telurito a teluro y originan colonias de color grisáceo-negro y tienen actividad
lecitinásica producirá un halo claro alrededor de la colonia.
Agar DNAsa: Es un medio de cultivo diferencial (principalmente) entre especies de Serratia spp con Klebsiella y
Enterobacter. Busca detectar la presencia de la enzima desoxirribonucleasa en el microorganismo a analizar, gracias a la
alta concentración de ácido desoxirribonucleico en el medio.

 Si el microorganismo hidroliza el ADN este tornará un halo traslucido alrededor de la colonia, si no, este no
tendrá un halo y el medio será opaco.
Agar Mueller Hinton: Es un medio de cultivo altamente recomendado para las pruebas de sensibilidad a antimicrobianos
es altamente nutritivo y para su siembra se utiliza la técnica de siembra masiva creando una suspensión bacteriana con una
turbidez del 0.5 escala Mc Farland.
Agar Chocolate: Es un medio de cultivo enriquecido no selectivo para microorganismos patógenos fastidiosos como
Haemophilus spp (influenzae) o Neisseria spp (gonorrhoeae).
Agar SIM: Es un medio semisólido y diferencial para la identificación de bacterias principalmente las Enterobacterias,
permite la ejecución de 3 pruebas importantes: producción de indol, sulfuros y movilidad bacteriana.

 Indol: Las bacterias que contengan la enzima triptofanasa encargada de utilizar el aminoácido triptófano
produciendo indol que al agregar el reactivo de Kovacs se presencia la formación de un anillo de color rojo sobre
el medio.
 Sulfuros: Las bacterias usan el azufre del Tiosulfato de sodio produciendo gases de H 2S que reaccionan con las
sales de hierro presentes en el medio formando un precipitado de color negro llamado sulfuro de hierro por todo el
agar.
 Movilidad: El crecimiento de las colonias es visible ya que se extienden por el agar; también una prueba de
sulfuros positiva indica movilidad

Agar EMB: Es un medio selectivo y diferencial de bacterias Gram negativas de rápido crecimiento y poco exigentes
también permite el desarrollo para todas las familias de Enterobacterias. La eosina y azul de metileno actúan como
agentes inhibidores para bacterias incapaces de utilizar lactosa y/o sacarosa y un amplio espectro de bacterias Gram
positivas

 Glucosa y/o lactosa (+): colonias de color negro azulado o amarronado. Pueden tener centro oscuro y brillo
metálico.
 Glucosa y/o lactosa (-): colonias incoloras iguales al color del medio.
Agar TSI: Es un medio de cultivo utilizado como prueba bioquímica para la diferenciación de Enterobacterias en base de
la fermentación de glucosa, lactosa y sacarosa y producción de H2S.

 Pico alcalino y base ácida (rojo/amarillo) = Microorganismo fermentador de glucosa

 Pico alcalino y base ácida y gas (rojo/amarillo) = Microorganismo fermentador de glucosa y productor de CO 2
 Pico ácido y base ácida y/o gas (amarillo/amarillo) = Microorganismo fermentador de las 3 azúcares (en caso de
que sí) productor de CO2
 Pico alcalino y base alcalina (rojo/rojo) = No fermentador de azúcares degradación de peptonas
 Pico o base con precipitado de Sulfuro de hierro (negro) = Si la base es negra, el microrganismo fermenta glucosa
y produce H2S.
Agar Citrato: Medio diferencial para Enterobacterias en la capacidad de usar Citrato como única fuente de carbono y
energía.

 Si el microorganismo tiene la enzima Citrato Permeasa, este utilizará el citrato y alcalinizará el medio
produciendo amoniaco que gracias al indicador de pH azul de bromotimol hará que el medio vire a un color azul.
Agar Urea: Medio de cultivo utilizado como prueba bioquímica para la identificación de la enzima Ureasa, mostrando la
hidrólisis de la urea presente en el medio.

 Es positivo si el medio vira a un color rosado, indicado por el rojo fenol.

Medio de Voges Proskauer: Medio indicador para la producción de acetoína al usar la vía glucolítica (Fermentación) por
butilenglicol.

 Es positivo para fermentación por vía del Butilenglicol si el medio vira a un color rojo luego de agregar el
reactivo de Barret + KOH 40%
Medio Rojo de Metilo: Medio indicador para la producción estable de productos terminales de la glucólisis tras usar la
vía de ácidos mixtos.

 Es positivo para fermentación por vía de ácidos mixtos si el medio vira a un color rojo luego de agregar el
reactivo rojo de metilo.
Prueba Glucosa OF: Es una prueba que indica el metabolismo energético del microorganismo si es respirador o
fermentador, se utiliza glucosa como sustrato y se detecta la acidificación del medio gracias al azul de bromotimol. Se
inoculan ambos tubos con la bacteria y se deja una en aerobiosis y la otra se cubre con parafina o aceite mineral dejándola
en anaerobiosis.

 Si el tubo en aerobiosis vira a amarillo por la superficie del agar, pero el de anaerobiosis no vira de color, se
considera que el microorganismo es respirador/oxidador.
 Si los tubos en aerobiosis y anaerobiosis viran a un color amarillo, se considera que el microorganismo es
fermentador.
 Si no vira a amarillo en ninguno de los casos, el microorganismo no produce ácidos
Prueba Bilis-Esculina: Este es un medio selectivo para Streptococcus del grupo D (enterococos y no enterococos) y que
sirve como indicador de que el microorganismo es capaz de hidrolizar esculina el cual es un compuesto glucosídico
formado por glucosa y aglucona. La bilis acuta como agente inhibidor para enterobacterias y Streptococcus no
pertenecientes al grupo D y le permite al Streptococcus del grupo D desarrollarse.
Si el medio vira a un color marrón casi negro es positivo para hidrólisis de Esculina.
Agar XLD: También llamado agar xilosa, lisina, desoxicolato; Es un medio selectivo y diferencial utilizado para la
identificación de enterobacterias del genero Shigella. La degradación de los carbohidratos presentes (Xilosa, sacarosa,
lactosa) produce ácido haciendo virar el medio a un color amarillo debido al indicador de pH rojo fenol. El desoxicolato
es un inhibidor de bacterias Gram positivas. La Xilosa es fermentada por prácticamente todas las enterobacterias con
excepción de la Shigella. Y la Lisina es utilizada para identificar bacterias lisina (+) que en su mayoría son patógenas.

 Producción de colonias incoloras u rojas (No fermentan: xilosa, sacarosa ni lactosa; no descarboxilan lisina)
positivo para Shigella
 Producción de colonias grandes y amarillas sin precipitado de bilis, positivo para E. coli
 Producción de colonias rojas con centro negro, positivo para Salmonella
Agar Rambach: Es un medio de cultivo que permite el crecimiento de Enterobacterias y permite diferenciarlas según su
tipo; El desoxicolato de sodio es un agente inhibidor de bacterias Gram positivas; el medio contiene propilenglicol las
cuales las bacterias que utilicen este polímero crean ácido que en presencia del rojo fenol hacen virar las colonias a un
color rojo; gracias al cromógeno permite diferenciar las Salmonella de las Coliformes debido al β-galactosidasa propias de
las Coliformes que al fermentar lactosa forman colonias de un azul violeta y las Proteus y/o Pseudomonas forman
colonias incoloras / amarillentas.

 Salmonella: Utiliza propilenglicol y forma colonias de color rosado / rojo.

 Coliformes: (E. coli) utilizan lactosa y desdoblan β-galactosidasa formando colonias de color azul / violeta
 Pseudomonas y Proteus: forman colonias incoloras / amarillentas
Pruebas IMVIC: También llamadas pruebas bioquímicas de Indol, Rojo de Metilo, Voges Proskauer y Citrato. Las
cuales son importantes para las Enterobacterias.
Fenilalanina: Es un medio de cultivo diferencial para Morganella morganii bio-grupo 1 y 2, Providencia spp, Proteus
spp y otros Enterobacteriaceae, en presencia de la enzima fenilalanina deaminasa. El aminoácido fenilalanina es
sometido a desaminación oxidativa por la enzima antes mencionada, esto produce ácido fenilpirúvico y amoníaco. Y en
presencia de cloruro férrico se puede evidenciar este ácido.

 Si se torna de color verde el pico de flauta es positivo para fenilalanina.

Prueba LIA: También conocido como Agar lisina hierro; es una prueba bioquímica utilizada para la identificación de
Enterobacterias. Esta prueba busca comprobar si el microorganismo a analizar tiene la enzima lisina descarboxilasa que es
capaz de reaccionar con el grupo carboxilo del aminoácido L-lisina (también puede se puede producir desaminación del
aminoácido por la presencia de la enzima). También permite evidenciar si algunos grupos bacterianos pueden producir
H2S.

 Los microorganismos fermentadores de glucosa acidifican el medio virándolo de un color púrpura a amarillo
debido al indicador de pH púrpura de bromocresol.
 Este medio ácido favorece a la actividad enzimática de la L-descarboxilasa y metaboliza la lisina alcalinizando el
medio haciéndolo virar a un tono púrpura
 Microorganismos fermentadores de glucosa y Lisina (-) producen un medio totalmente amarillo
 Purpura / purpura: descarboxilación de Lisina (+)
 Purpura / amarillo: descarboxilación de Lisina (-)
 Rojo / amarillo: desaminación de Lisina (+)
 H2S: precipitado negro por todo el agar (+)
Agar Cetrimida: Es un medio selectivo para Pseudomonas aeruginosa y otras de su mismo género. El medio permite
el crecimiento de las bacterias Pseudomonas y estimula la formación de pigmentos; el cloruro de magnesio y sulfato de
potasio promueven la formación de pigmentos como la piocianina, pioverdina, piomelanina y fluoresceínas muy comunes
de P. aeruginosa. La Cetrimida es un detergente catiónico que inhibe el desarrollo de flora bacteriana liberando
nitrógeno y fósforo de dicha flora acompañante, aunque, puede inhibir algunas especies de Pseudomonas.

 Crecimiento (+) y pigmentación de color verde/azulado (Piocianina)

 Crecimiento (+) y pigmentación de color verde (Pioverdina)
 Crecimiento (+) y pigmentación de color rosa/rojo (Piorrubina)
 Algunas cepas de Klebsiella, Enterobacter, Citrobacter, Proteus, Providencia, Alcaligenes y Aeromonas crecen en
agar Cetrimide produciendo colonias amarillas, pero bajo luz UV (254 nm) no producen fluorescencia ya que no
se corresponde con el pigmento fluoresceína (Propio de Pseudomonas)
 Algunas cepas de Serratia pueden crecer y producir pigmento rosado.

Agar TCBS: “Agar Tiosulfato Citrato Bilis Sacarosa” Medio selectivo para el aislamiento y cultivo de Vibrio cholerae,
Vibrio parahemolyticus y otras especies de Vibrio. La bilis de buey, el citrato de sodio y el pH alcalino inhiben el
desarrollo de flora acompañante, favoreciendo el crecimiento de Vibrio spp; El cloruro de sodio mantiene el balance
osmótico y debido a su alta concentración también contribuye a la selectividad del medio; La sacarosa es el hidrato de
carbono fermentable y el azul de bromotimol y azul de timol son los indicadores de pH

 Microorganismos fermentadores de sacarosa: colonias amarillas.

 Microorganismos no fermentadores de sacarosa: colonias del color del medio, con centro verde.
Agar Kligler de Hierro: Es un medio de cultivo utilizado para la identificación de Enterobacterias con base en la
fermentación de hidratos de carbono y producción de ácido sulfhídrico; La lactosa y la glucosa son los hidratos de
carbono fermentables. El tiosulfato de sodio es el sustrato necesario para la producción de ácido sulfhídrico, el citrato de
hierro y amonio, es la fuente de iones Fe3+; El rojo de fenol es el indicador de pH, y el cloruro de sodio mantiene el
balance osmótico.

 Superficie alcalina/profundidad ácida (pico rojo/fondo amarillo): el microorganismo solamente fermenta la

glucosa.
 Superficie ácida/Profundidad ácida (pico amarillo/fondo amarillo): el microorganismo fermenta glucosa, y
lactosa.
 Superficie alcalina/Profundidad alcalina (pico rojo/fondo rojo): el microorganismo es no fermentador de
azúcares.
 La presencia de burbujas o la ruptura del medio de cultivo indican que el microorganismo produce gas.
 El ennegrecimiento del medio indica que el microorganismo produce ácido sulfhídrico.
Agar Thayer-Martin: Medio de cultivo selectivo y enriquecido para la recuperación de Neisserias patógenas a partir
de muestras clínicas. Es preparado con medio base GC, y adicionado de suplementos nutricionales, hemoglobina e
inhibidores, permite obtener un buen desarrollo de Neisserias patógenas tales como N. gonorrhoeae y N. meningitidis.
La hemoglobina aporta hemina y el inhibidor V.C.N.T (Nistatina 12500 UI; Colistina sulfato 7.50 mg; Vancomicina 3.00
mg; Trimetoprima 5.00 mg) otorga selectividad al medio de cultivo, inhibiendo el desarrollo de la flora acompañante,
incluyendo a casi la totalidad de las levaduras patógenas. La Proteasa peptona nº3 provee una gran variedad de
aminoácidos como péptidos de tamaño pequeño. El almidón de maíz y la glucosa actúan como fuente de energía. Las
sales de fosfato cumplen un rol tamponante y el cloruro de sodio contribuye a mantener el equilibrio osmótico. El agar
es un agente gelificante inerte.

Agar Thayer-Martin Modificado: Medio selectivo que permite el crecimiento de Neisserias patógenas. es un medio
ampliamente nutritivo por la presencia de Agar Base GC, hemoglobina y el suplemento de enriquecimiento Britalex

Agar BHI: Es un medio de uso general adecuado para el cultivo de una amplia variedad de tipos de organismos, incluidos
las bacterias, levaduras y hongos filamentosos, a partir de muestras clínicas. Obtiene los nutrientes de la infusión de
cerebro y corazón, la peptona y la glucosa. Las peptonas y la infusión son fuentes de nitrógeno orgánico, carbono,
azufre, vitaminas y sustancias de traza. La glucosa es la fuente de carbohidratos que los microorganismos utilizan
mediante fermentación. Se utiliza fosfato disódico como tampón en el medio.

Medio CTA: Es un medio de cultivo para el mantenimiento de microorganismos. También se utiliza para la detección de
movilidad bacteriana y, con la adición de carbohidratos, para las reacciones de fermentación de microorganismos
exigentes, es decir, Neisseria, neumococos, estreptococos y anaerobios no formadores de esporas.

Para los clostridios, bacilos, micrococos comunes, bacilos entéricos y otros organismos no considerados generalmente
como exigentes para la nutrición, se recomienda el uso de la base de agar Trypticase en lugar de CTA Medium.

Agar Palcam:
Agar MGIT
Agar Lowenstein Jensen

Priviet995
Antibióticos para Gram positivos: Macrólidos, Meticilina, Trimetoprima sulfametoxazol, Amoxicilina + ácido
clavulánico, Piperacilina/tazobactam
Antibióticos para Gram negativos: Trimetoprima sulfametoxazol, Aminoglucósidos (Amikacina, Kanamicina,
Gentamicina), Cefalosporina III – IV, Fluoroquinolonas, cefotaxima, carbapenémicos, piperacilina-tazobactam

SENSIBILIDAD A ANTIMICROBIANOS

Antibiótico Diámetro de la zona de inhibición (mm)

Cantidad en el disco Resistente Intermedia Sensible

Ampicilina 10 ug 11 o menos 12-13 14 o más

Ampicilina 10 ug 28 o menos 29 o más

para S. aureus

Amoxicilina 25 ug 16 21

Amoxicilina 25 ug 21 o menos Más de 22

S.Aureus

Gentamicina 10 ug 12 o menos 13-14 15 o más

Kanamicina 30 ug 13 o menos 14-17 18 o más

Penicilina G 10 unidades 11 o menos 12-21 22 o más

Penicilina G 10 unidades 28 o menos 29 o más

para S. aureus

Estreptomicina 10 ug 1 1 o menos 12- 14 15 o más

Clindamicina 2 ug 14 o menos 15-16 17 o más

Cloranfenicol 30 ug 12 o menos 13-17 18 o más

 Cocos Gram Staphylococcus
positivos
Catalasa POSITIVO
Especie aureus epidermidis saprophyticus
Coagulasa + - -
Halófilo (6.5%) + + -/+
Manitol + - -/+
Desoxirribonucleasa + - -
Novobiocina /////// Sensible Resistente
Motilidad - - -
Esporas - - -
Anaerobio F + + +

Cocos Gram Streptococcus

positivos
Catalasa NEGATIVO
Hemolisis ALFA (α) BETA (β) GAMMA (γ) (D)
Especie S. G. pneumoniae Agalactiae Pyogenes bovis enterococos
viridans (B) (A)
Esculina - - - - + +
Halófilo (6.5%) //// //// //// //// - +
CAMP //// //// + - //// ////
Bacitracina //// //// Resistente Sensible //// ////
Optoquina Resistente Sensible //// //// //// ////
Motilidad - - - - - -
Esporas - - - - - -
Anaerobio F + + + + + +
 Prueba de medios CTA
Especie Nitratos Catalasa Oxidasa Glucosa Lactosa Sacarosa Maltosa Fructosa DNAsa
N. gonorrhoeae - + + + - - - - -
N. meningitidis - + + + - - + - -
N. cinérea - + + - - - - - -
N. subflava biovar subflava - + + + - - + - -
N. subflava biovar flava - + + + - - + + -
N. subflava biovar perflava - + + + - + + + -
N. sicca - + + + - + + + -
N. mucosa + + + + - + + + -
N. flavescens - + + - - - - - -
Kingella denitrificans + + + + - - - - -

Pruebas para Haemophilus humanas

Especie Factores Prueba Prueba Descarboxi Fermentación
Hemólisis X V Indol Ureasa Ornitina Glucosa Lactosa Sacarosa Fructosa Ribosa Xilosa Manosa
Biotipo
H. influenzae
Biotipo I - + + + + + + - - - + + -
Biotipo II - + + + + - + - - - + + -
Biotipo III - + + - + - + - - - + + -
Biotipo IV - + + - + + + - - - + + -
Biotipo V - + + + - + + - - - + + -
Biotipo VI - + + - - + + - - - + + -
Biotipo VII - + + + - - + - - - + + -
Biotipo VIII - + + - - - + - - - + + -
Biogrupo aegyptius - + + - + - + - - - + - -
H. parainfluenzae
Biotipo I - - + - - + + - + + - - +
Biotipo II - - + - + + + - + + - - +
Biotipo III - - + - + - + - + + - - +
Biotipo IV - - + + + + + - + + ND - +
Biotipo VI - - + + - + + - + + ND ND V
Biotipo VII - - + + + - + - + ND - - ND
Biotipo VIII - - + + - - + - + ND - - ND
H. haemolyticus + + + V + - + - - +d + V -
H. parahaemolyticus + - + - + V + - + + - - -
H. segnis - - + - - - + - + +d - - -
 H. aphrophilus - - - - - - + + + + + - +
H. paraphrophilus - - + - - - + + + + + - +
H. paraphrophaermolitycus + - + - + - + - + + - - -
H. ducreyi + + - - - - - - - - - - -

Gram negativas ENTEROBACTERIACEAE

TSI (hierro triple azúcar)
Bacteria Lactosa Glucosa Sacarosa H2S CO2
E. coli + + - - +
Salmonella - + - + +
Klebsiella + + + - +/-
Shigella - + - - -
Prueba Yersinia - + +/- - -
Bioquímica Enterobacter + + + - +
Pseudomonas - - - - -
Acinetobacter - - -
Vibrio - + + - -
Proteus - + - + +
Serratia + + + - -
Citrobacter +/- + - + +
Morganella - + - - +
Providencia - + - - -

Citrato Simmons
(+) +/- (-)
(Vira azul) (Verde)

Salmonella Proteus E. coli

Prueba Pseudomonas Shigella
Bioquímica Enterobacter Morganella
Citrobacter Yersinia
Providencia Salmonella typhi
Klebsiella Salmonella paratyphi
Serratia
Vibrio
Acinetobacter

PRUEBA OF
Fermentador (anaerobio facultativo) Oxidador (aerobio)
E. coli Pseudomonas
Citrobacter Acinetobacter
Enterobacter
Shigella
Prueba Yersinia
Bioquímica Vibrio
Serratia
Klebsiella
Morganella
Providencia
Salmonella
Proteus

Ureasa
(+) variable (-)
 Prueba Morganella Enterobacter Shigella
Bioquímica Proteus Yersinia Salmonella
Providencia Citrobacter E. coli
(P. rettgeri) (P. stuartii) Pseudomonas
Klebsiella Acinetobacter Acinetobacter
Pseudomonas Vibrio
Serratia
(P. alcalifaciens)

SIM (sulfuro, indol, movilidad)

Prueba (+ + +) (- + -) (- - +) (- - -) (- + +) (+ - +)
Bioquímica
(P. vulgaris) Shigella Enterobacter Yersinia E. coli Salmonella
(K. oxytoca) Serratia Klebsiella Morganella Citrobacter
Pseudomonas Shigella Providencia Proteus
Acinetobacter Pseudomonas
Vibrio

Fermentación por vías glucolíticas

VP RM
Pruebas (Butilenglicol) (Ácidos mixtos)
Bioquímicas + V + V
Klebsiella P. mirabilis Salmonella S. marcescens
Enterobacter Citrobacter
Serratia Proteus
Morganella Shigella
(Vibrio TOR) Yersinia
E. coli
Morganella
Providencia
(Vibrio colera)

Fenilalanina
(+) (-)
Enterobacter
E. coli
Morganella Yersinia
Prueba Proteus Shigella
Bioquímica Providencia Serratia
Citrobacter
Salmonella
Vibrio
Klebsiella
Pseudomonas
Acinetobacter

LIA (Agar lisina hierro)

Prueba Descarboxilación Lisina Desaminación Lisina SH2
Bioquímica Klebsiella Proteus Salmonella
Salmonella Providencia
Serratia Morganella
E. coli
Vibrio

Lisina Arginina Ornitina

Prueba
Bioquímica + V - + V - + V -
E. coli Enterobacte Shigella Pseudomona E. coli Shigella (S. sonnei) E. coli Shigella
Salmonell r Citrobacter s Salmonella Klebsiella Salmonella Citrobacte Klebsiella
a Proteus Acinetobacte Citrobacter Serratia Enterobacte r Providencia
Klebsiella Morganella r Enterobacter Proteus r Proteus
Serratia Providencia Pseudomona Morganella Serratia Pseudomonas
Vibrio Yersinia s Providenci Morganella
Pseudomona Acinetobacte a Yersinia
s r Yersinia P. mirabilis
Vibrio Vibrio
 Reducción de nitratos
(+) (-)
Prueba Todas las Enterobacterias Acinetobacter
Bioquímica Pseudomonas (V)

Yersinia tiene movilidad a 22°C, no a 36°C

Vibrio serotipo O1 y O139 patógenos (Clásico, Tor)

 O1 sensible a 50 UI Polimixina B
 VP: Tor (+); Clásico (-)
 β-hemolisis (Tor)
 CAMP: Tor (+); O1, no O1 y no O139 (-)
 Cuerda: Tor y Clásico (+); no O1 y no O139 (-) (DEBIL)