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    Clase 6 Parasitologia

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    METODO DE FAUST

    TECNICA KATO KATS

    Utilizado deteccion
    de:
    Schistosoma mansoni
    Trichuris trichiura
    Ascaris lumbricoides.
    MÉTODO DE HOFFMAN
    "COLECCIÓN,
    PRESERVACIÓN Y
    TRANSPORTES DE
    MUESTRAS FECALES"
    El estudio de las muestras fecales nos permite detectar la
    presencia de protozoos y larvas o huevos de helmintos. Para
    obtener un buen resultados en un examen parasitológico se
    deben tener en cuenta diferentes aspectos.
    Las consecuencias de una muestra mal tomada y/o mal
    enviada pueden suponer un fracaso en la identificación del
    agente etiológico Lo ideal es que las muestras se transporten
    al laboratorio dentro de los 30 minutos posteriores a la
    recolección.
    Para asegurar la integridad de las posibles formas parasitarias
    que pueden estar presentes es importante el uso de medios
    especiales de conservación, o de soporte para el transporte de
    las muestras que se retrasen más de 30 minutos. Si las
    muestras no se pueden procesar en cuanto se reciben en el
    laboratorio, se deben almacenar a temperatura ambiente, o
    refrigeradas, según el tipo de muestra.
    Miniparasep: Las muestras de heces se recomienda
    recogerlas empleando frascos con medio de transporte
    para asegurar la viabilidad de las posibles estructuras
    parasitarias existentes. Uno de los sistemas disponible
    es el sistema Miniparasep y para su correcto uso se
    deben seguir las instrucciones del fabricante.

    Bote de boca ancha: Se emplearán estos botes cuando


    en las heces se visualiza la expulsión de cualquier
    forma que pudiera ser un parásito o para introducir el
    aspirado duodenal/yeyunal.
    La técnica de Graham: El test de Graham es una técnica relativamente
    sencilla de realizar que nos permite el estudio de Enterobius vermicularis
    y, en ocasiones, de Taenia spp. Para llevar a cabo este test es necesario
    tener en cuenta unas recomendaciones durante el proceso de recogida
    de muestras, que deben ser correctamente explicadas a los pacientes
    que se vayan a someter al test:

    Las muestras se deben recoger por la mañana, nada más levantarse, y


    antes de realizar el aseo matinal.
    - La noche anterior a la recogida de las muestras no se debe aplicar
    crema ni pomada en la región perianal.
    - La cinta adhesiva que se utilice para la recogida de la muestra debe
    ser transparente para poder visualizarlo posteriormente en el
    microscopio.
    - Se aconseja entregar al paciente un soporte (portaobjetos) para pegar
    la cinta adhesiva una vez recogida la muestra, así como un contenedor
    para la misma, de manera que el transporte al laboratorio sea el
    adecuado.
    Sangre: Para la obtención de la sangre que será objeto de estudio se
    deben tener en cuenta unas recomendaciones:
    La sangre se extraerá por punción de la pulpa del dedo o por punción
    venosa

    • Si la obtenemos a por punción pulpar, es preferible utilizar los dedos


    anular o cordial de la mano izquierda.
    • En el caso de la punción venosa se aconseja no utilizar
    anticoagulante en los tubos de extracción de la misma, pero si fuera
    necesario usarlo, se recomienda que éste sea EDTA.
    • Como en otros casos de análisis parasitológicos, la muestra debe
    ser procesada y examinada al microscopio lo más rápidamente
    posible tras su extracción. Ese aconseja que el límite de tiempo para
    su estudio no sobrepase una hora. Esto es importante porque el
    tiempo es un factor que altera la morfología de los hematíes y por lo
    tanto la de los posibles parásitos que existan en la muestra.
    RESUMEN
    El tema de colección, preservación y transporte de
    muestras fecales es crucial en diversos campos, como la
    medicina, la microbiología y la ecología.
    • Colección de muestras: Se debe utilizar un recipiente
    estéril para recoger la muestra, evitando la
    contaminación con materiales externos. Es
    importante seguir procedimientos específicos para
    evitar alterar la muestra.
    • Preservación de muestras: Dependiendo del análisis
    que se realizará, las muestras pueden necesitar ser
    preservadas para mantener la integridad de los
    microorganismos presentes. Esto puede implicar el
    uso de soluciones de preservación que eviten la
    degradación de los componentes de interés.
    Transporte de muestras: Las muestras fecales
    deben ser transportadas en condiciones
    adecuadas para mantener su viabilidad y evitar
    contaminaciones. Esto puede incluir el uso de
    envases herméticos, refrigeración o congelación,
    dependiendo de los requisitos del análisis y la
    duración del transporte.

    En resumen, la correcta colección, preservación


    y transporte de muestras fecales son
    fundamentales para garantizar la precisión y
    fiabilidad de los análisis microbiológicos y otros
    estudios que dependen de ellas.
    Colección, preservación, transporte de muestras

    MATERIALE
    S

    RECIPIENTES ESTÉRILES GUANTES DESECHABLES


    TOALLAS DE PAPEL SOLICITUD DEL LABORATORIO
    PROCEDIMIENT
    O
    Preparación: El paciente debe recibir instrucciones claras sobre cómo recolectar la
    1 muestra y cualquier preparación previa necesaria, como evitar ciertos alimentos o
    medicamentos antes de la recolección.

    Recolección de la muestra: Se proporciona al paciente un recipiente estéril para


    2 recolectar la muestra fecal. Es importante que el paciente no contamine la muestra con
    orina u otros materiales.

    3
    Preservación: Dependiendo del tipo de análisis que se realizará, la muestra puede
    requerir diferentes métodos de preservación.
    Etiquetado: La muestra debe etiquetarse claramente con la identificación del paciente,
    4
    la fecha y la hora de la recolección.

    Transporte: Las muestras fecales deben transportarse al laboratorio lo más pronto


    5
    posible después de la recolección.

    Almacenamiento en el laboratorio: Una vez que las muestras llegan al laboratorio, se


    6
    almacenan según los requisitos específicos del análisis que se realizará

    Análisis: Una vez que las muestras llegan al laboratorio, se realizan los análisis
    7
    pertinentes según la solicitud del médico o el protocolo establecido.
    RECOLECCIÓN

    La forma correcta de recolección de muestras fecales implica seguir estos pasos:

    • Utiliza un recipiente estéril proporcionado por el laboratorio o profesional de la salud.


    • Lava tus manos con agua y jabón antes de recolectar la muestra.
    • Evita la contaminación de la muestra con orina u otras sustancias. Si es posible, recoge
    la muestra directamente en el recipiente sin que toque el agua del inodoro.
    • Recoge una muestra representativa de diferentes partes de la deposición.
    • Llena el recipiente hasta la marca indicada o según las instrucciones del laboratorio.
    • Cierra herméticamente el recipiente.
    • Etiqueta claramente el recipiente con tu información personal y la fecha y hora de la
    recolección.
    • Lleva la muestra al laboratorio o sigue las instrucciones para su envío dentro del tiempo
    recomendado para preservar su integridad.
    TEMPERATURAS EN QUE DEBEN TRANSPORTARSE LAS
    MUESTRAS FECALES

    Las temperaturas de transporte y preservación de muestras pueden variar según el tipo


    de muestra, pero en el caso de muestras fecales, generalmente se deben transportar y
    preservar a temperaturas frescas, entre 2°C y 8°C, para mantener la viabilidad de los
    microorganismos presentes.
    TIPOS DE MUESTRAS FECALES

    Muestras fecales frescas: Estas son muestras de heces recién recolectadas, que se
    01
    examinan en un corto período de tiempo después de la colección.

    02 Muestras formadas: Son muestras de heces con una forma sólida, generalmente cilíndrica.

    Estas muestras pueden ser útiles para una variedad de pruebas, incluidos análisis químicos
    03
    y microbiológicos-

    Muestras de heces con sangre: La presencia de sangre en las heces puede indicar
    04
    problemas serios, como úlceras, cáncer de colon o infecciones graves.
    TIPO 05 TIPO 06

    Muestras de heces con moco: La presencia Muestras de heces para pruebas de sangre
    de moco en las heces puede ser un signo de oculta: Estas son muestras utilizadas para
    inflamación en el tracto gastrointestinal detectar la presencia de sangre que no es
    visible a simple vista.

    TIPO 07 TIPO 08

    Muestras para cultivos: En este caso, las Muestras para pruebas genéticas o
    muestras se recolectan para cultivos moleculares: Las muestras fecales pueden
    microbiológicos específicos a fin de utilizarse para analizar el ADN o ARN de
    identificar bacterias, virus o parásitos patógenos específicos
    presentes en las heces.
    TIPOS DE EXÁMENES DE HECES
    EXAMEN MACROSCÓPICO DE LAS
    EXAMEN PARASITOLÓGICO DE HECES
    HECES

    BÚSQUEDA DE SANGRE OCULTA EN


    COPROCULTIVO
    HECES
    FA C U LTA D C I E N C I A S D E L A S A L U D

    METODOS DE COLORACION DE
    PROTOZOOS Y OTROS
    PA R A S I T O S EN H E C E S
    Una tinción es un proceso por el cual las
    moléculas d e un colorante se absorben a una
    superficie c o n el objetivo d e mejorar el
    contraste en la imagen vista en el
    microscopio.
    Antes d e realizar cualquier tipo d e tinción se
    d e b e considerar la estructura parasitaria
    p u e d e ser efímera o permanente.
    La elección d e la técnica está en
    función del objetivo que se
    pretenda y d e la estructura
    parasitaria por procesar.

    TIPOS DE TINCIONES
    tinciones efímeras: se utilizan para
    observar parásitos vivos,
    tinciones permanentes: para
    observar parásitos muertos y
    permiten un estudio más detallado
    de la estructura.
    IMPORTANCIA
    Mejora la visibilidad:
    mejorar el contraste y h a c e que y sus partes
    sean más fáciles d e ver.
    Identificación y diferenciación:
    resaltar características, diferencia un
    parásito d e otro.
    Estudio de la estructura y función:
    resalta su núcleo, citoplasma, pared
    celular.
    Diagnóstico de enfermedades:
    por la presencia d e ciertos parásitos en
    muestras d e sangre, heces u otros tejidos
    del cuerpo.
    Se b a s a en el comportamiento ácido-resistente d e la
    cubierta d e estos parásitos, los cuales se tiñen d e rojo
    y destacan sobre un fondo verde o azul,
    dependiendo del colorante d e contraste usado.
    Los ooquistes:
    Crystosporidium
    Isospora
    Cyclospora
    Son d e color rojo fucsia sobre un fondo verdoso (con
    verde d e malaquita) o azul (con azul d e metileno).
    En algunos casos, no se colorean bien, pero la
    refringencia característica permite diferenciarlos
    Se bas a en la identificación d e esporas
    d e Enterocytozoon, Encephalitozoon.
    Por la combinación d e las coloraciones
    Gram y tricrómica.
    Se observan las esporas:
    Enterocytozoon
    Encephalitozoon
    Nosema
    Aparecen d e un color rosado o rojo
    tenue o fucsia sobre el fondo verde o
    azul.
    Mayormente utiliza d o en
    m ic ro b io lo g ia , para e sa lta r
    estructuras de m ue stra s
    biologicas.. usado para identificar
    e struc tura s d e l q uiste , m ie ntra s
    qu e el color c a rm in tiñe la s
    paredes del quiste.
    Lugol tiñe las paredes de algunos parasitos, entre ellos podemos encontrar:
    PROTOZOOS
    GIARDIA LAMBLIA
    ENTAMOEBA HISTOLYTICA
    CYTOISOSPORA BELLI
    IODAMOEBA BUTSCHLII
    ENDOLIMAX NANA
    ENTAMOEBA COLI
    L u gol t iñ e la s pa r edes de a lgu n os pa r a sit os,
    ent re ellos podemos enc o nt ra r:
    HELMINTOS
    ENTEROBIUS VERMICULARIS

    DIPHYLLOBOTHRIUM LATUM

    HYMENOLEPIS DIMINUTA

    HYMENOLEPIS NANA

    ENTRE OTROSI
    TINCIÓN DE TRICRÓMICO DE
    WHEATLEY

    La tinción de tricrómico de Wheatley es un método


    especializado utilizado para la detección de parásitos
    en muestras de heces. Este método implica el uso de
    una serie de colorantes que permiten la visualización
    clara de diferentes estructuras parasitarias bajo el
    microscopio. La tinción de tricrómico de Wheatley
    utiliza tres colorantes:
    azul de metileno
    eosina
    azul de anilina
    Tiñen diversas estructuras como las paredes celulares,
    los núcleos y las cápsulas de los parásitos
    • No es un método comúnmente utilizado
    para la detección d e parásitos en
    muestras d e heces, se asocia mas co n la
    histología y la patología en la visualización
    d e tejidos y
    c é lula s. Sin e mb a rg o, e n a lg uno s c a so s,
    p u e d e se r útil p a ra d e te c ta r p a rá sito s e n
    muestras d e heces c u a n d o se requiere una
    evaluación detallada d e las características
    tisulares o celulares asociadas c o n la
    infección parasitaria.
    Esta té c nic a q uim io fluo re sc e nte e s
    útil p a ra la detección de
    microsporidios, A c a n t h a m o e b a spp.,
    Pne um o c ystis jiro ve c i y D iro fila ria
    spp. Los a g e nte s
    quimiofluorescentes, como
    Calcofluor, Fungi-Fluor o Uvitex 2B,
    también conocidos c o m o agentes
    abrillantadores ópticos
    Saframina modificada
    Utilizada para detectar especie de Cyclospora ,
    Cryptosporidia y Cystoisospora.
    Los ooquistes de Cyclospora en muestras clínicas se
    demuestran de forma rutinaria mediante tinción
    acidorresistente modificada (en frío). Sin embargo,
    con esa técnica, los ooquistes se tiñen de forma
    variable desde que no se tiñen hasta que se tiñen
    por completo, lo que conduce a una posible
    identificación errónea. La técnica de safranina
    modificada produce una tinción más uniforme de
    estos ooquistes.
    En el c a m p o d e la parasitología, la
    tinc ió n d e G ie m sa ha p e rm itid o
    hacer el d ia g nó stic o de
    enfermedades p a ra sita ria s ta le s
    c o m o la malaria, el mal d e c h a g a s
    y la leishmaniasis.
    C o n e sta tinc ió n lo s núc le o s d e lo s
    parásitos se tiñen d e rojo brillante y
    el citoplasma d e color azul. Trofozoítos de Giardia
    intestinalis teñidos con
    Giemsa.
    GRACIAS

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