Universidad Nacional de San Antonio Abad Del Cusco: Facultad de Ciencias Agrarias
Universidad Nacional de San Antonio Abad Del Cusco: Facultad de Ciencias Agrarias
Universidad Nacional de San Antonio Abad Del Cusco: Facultad de Ciencias Agrarias
CUSCO
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
ESCUELA PROFESIONAL DE ZOOTECNIA
Cusco - Perú
2021
DEDICATORIA
A mis padres, Cristóbal y Sofía, por haberme forjado como la persona que soy,
inculcándome sus buenos valores, a enfrentar de manera sabia e inteligente los
retos que se me presentan en la vida, por su apoyo y ayuda en los momentos
más difíciles y quienes soportaron con paciencia mi ausencia, fruto del objetivo
buscado.
A mis hermanos, Edme, Willington, Lourdes, Brayan Raúl y Luis Christian, por
estar conmigo siempre en los buenos y malos momentos e impulsándome a
seguir adelante pese a las dificultades y sobre todo hacer de mi vida más alegre y
llevadera.
A ti, en especial que desde ya eres la razón más importante en mi vida, y eres el
principal motivo para no desfallecer ante ninguna dificultad, todo por ti y para ti.
A mis abuelos, tías y tíos, por sus consejos y ejemplo de vida que me orientaron a
reconocer el valor de la familia.
ii
AGRADECIMIENTO
A Dios, por permitirme aun seguir con vida y así dejarme conocer más de la vida y
permitirme lograr mis objetivos, por bendecirme día a día y no dejarme caer en los
miles de tropiezos que se me presentan en mi vivir.
A mi asesor Ing. Zoot. M.Sc. Hernán Carlos Cucho Dolmos, por haberme guiado
en la elaboración, ejecución y redacción del presente trabajo de investigación, y
sobre todo por su paciencia, disposición incondicional y por la confianza puesta
en mi persona.
iii
TABLA DE CONTENIDOS
DEDICATORIA ...................................................................................................... ii
AGRADECIMIENTO ..............................................................................................iii
TABLA DE CONTENIDOS ....................................................................................iv
ÍNDICE DE TABLAS ............................................................................................viii
INDICE DE ANEXOS ............................................................................................. x
ÍNDICE DE FOTOGRAFIAS ..................................................................................xi
GLOSARIO ...........................................................................................................xii
RESUMEN ...........................................................................................................xiii
INTRODUCCIÓN ................................................................................................... 1
CAPÍTULO I ........................................................................................................... 2
PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ................................................................... 2
1.1. Desarrollo del problema ......................................................................... 2
CAPITULO II .......................................................................................................... 6
MARCO TEÓRICO ................................................................................................ 6
2.1. ANTECEDENTES DE LA INVESTIGACIÓN ............................................ 6
iv
2.1.8. Coeficiente de variación de poros......................................................14
2.2.3.1. La epidermis................................................................................16
2.2.3.3. La hipodermis..............................................................................17
2.2.10.12. Tinción.........................................................................................26
vi
3.6.2. Variables dependientes .....................................................................32
CAPITULO IV........................................................................................................43
RESULTADOS Y DISCUSIONES .........................................................................43
4.1. Determinar la relación de folículos secundarios/primarios ...............43
RECOMENDACIONES. .....................................................................................63
BIBLIOGRAFIA ....................................................................................................64
ANEXOS ...............................................................................................................71
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Comparación del parámetro de relación folícular (s/p) entre las crías de la
raza Huacaya y Suri. ................................................................................. 7
Tabla 2. Efecto de la raza y sexo sobre la relación folicular(s/p), en alpacas. ....... 7
Tabla 3. Estadística descriptiva del índice folicular de la piel en las crías de alpacas.
................................................................................................................... 8
Tabla 4. Densidad folicular y relación de folículos secundarios/primarios, en
camélidos. ................................................................................................. 9
Tabla 5. Promedio (desviación estándar) del IF, PVS y MDF de alpacas del CIDCS-
Lachocc en Huancavelica. ......................................................................... 9
Tabla 6. Medidas cuantitativas de las variables de los folículos totales y relación
folicular primario/secundarios, por especie. ..............................................10
Tabla 7. Media y desviación estándar (DE) de la densidad de fibras pilosas y
densidad de poros por mm2: También se muestran la relación del Número
de fibras/Número de poros en llamas y alpacas. ......................................12
Tabla 8. Resumen de estadísticos de la densidad de fibras pilosas, poros y relación
Número de fibras/poros, evaluados en 6 vaquillas Holstein. ....................12
Tabla 9. Operacionalización de variables. ............................................................33
Tabla 10. Tamaño de muestra poblacional. ..........................................................34
viii
Tabla 11. Efecto del sexo en la relación de folículos secundarios/primarios (Índice
folicular) en alpacas Suri de color blanco. ................................................43
Tabla 12. Efecto de la edad en la relación de folículos secundarios/primarios de
alpacas Suri de color blanco. ....................................................................45
Tabla 13. Efecto del sexo para el área de folículos pilosos en alpacas Suri de color
blanco. ......................................................................................................46
Tabla 14. Efecto de la edad para el área de folículo piloso en alpacas Suri de color
blanco. ......................................................................................................46
Tabla 15. Efecto del sexo para el perímetro de folículos pilosos en alpacas Suri de
color blanco. .............................................................................................47
Tabla 16. Efecto de la edad para el perímetro de folículos pilosos en alpacas Suri
de color blanco. ........................................................................................48
Tabla 17. Efecto del sexo para el diámetro de folículos pilosos en alpacas Suri de
color blanco. .............................................................................................48
Tabla 18. Efecto de la edad para el diámetro del folículo piloso en alpacas Suri de
color blanco, para cuatro categorías.........................................................49
Tabla 19. Efecto del sexo sobre el número de fibras pilosas por mm 2 (densidad de
fibra pilosa) en alpacas Suri de color blanco. ...........................................50
Tabla 20. Efecto de la edad sobre el número de fibras por mm 2 (densidad de fibra
pilosa) en alpacas Suri de color blanco. ...................................................51
Tabla 21. Efecto del sexo sobre la desviación estándar de la fibra pilosa, en alpacas
Suri de color blanco. .................................................................................51
Tabla 22. Efecto de la edad sobre la desviación estándar de la fibra pilosa, en
alpacas Suri de color blanco. ....................................................................52
Tabla 23. Efecto del sexo sobre el Coeficiente de variabilidad de la fibra pilosa, en
alpacas Suri de color blanco. ....................................................................53
Tabla 24. Efecto de la edad sobre el Coeficiente de variabilidad de la fibra, en
alpacas Suri de color blanco. ....................................................................53
Tabla 25. Efecto del sexo sobre el número de poros por mm2 (densidad de poros)
en alpacas Suri de color blanco. ...............................................................54
Tabla 26. Efecto de la edad sobre el número de poros por mm2 (densidad de poros)
en alpacas Suri de color blanco. ...............................................................55
Tabla 27. Efecto del sexo sobre la desviación estándar del poro, en alpacas Suri
de color blanco. ........................................................................................55
ix
Tabla 28. Efecto de la edad sobre la desviación estándar del poro, en alpacas Suri
de color blanco. ........................................................................................56
Tabla 29. Efecto del sexo sobre el Coeficiente de variabilidad del poro, en alpacas
Suri de color blanco. .................................................................................57
Tabla 30. Efecto de la edad sobre el Coeficiente de variabilidad del poro, en alpacas
Suri de color blanco. .................................................................................57
Tabla 31. Efecto del sexo sobre la relación de número de fibras/número de poros,
en alpacas Suri de color blanco. ...............................................................58
Tabla 32. Efecto de la edad sobre la relación de número de fibras/número de poros,
en alpacas Suri de color blanco. ...............................................................59
Tabla 33. Correlación(r) entre el índice folicular y la densidad de fibras pilosas en
alpacas Suri de color blanco. ....................................................................60
INDICE DE ANEXOS
ANEXO 1. Análisis de varianza de la relación de folículos secundarios sobre
primarios. ..................................................................................................71
ANEXO 2. Análisis de varianza del área del folículo piloso. .................................71
ANEXO 3. Análisis de varianza del perímetro del folículo piloso. .........................71
ANEXO 4. Análisis de varianza del diámetro del folículo piloso. ...........................72
ANEXO 5. Análisis de varianza del número de haces de fibras pilosa (densidad de
fibras)........................................................................................................72
ANEXO 6. Análisis de varianza del número de poros por 1mm 2...........................72
ANEXO 7. Análisis de varianza de la relación del número de fibras/número de
poros.........................................................................................................73
ANEXO 8. Análisis de varianza de la desviación estándar de la fibra pilosa. .......73
ANEXO 9. Análisis de varianza del coeficiente de variabilidad de la fibra pilosa. 73
ANEXO 10. Análisis de varianza de la desviación estándar del poro. ..................74
ANEXO 11. Análisis de varianza del coeficiente de variabilidad del poro. ............74
ANEXO 12. Base de datos de la relación de folículos secundarios/primarios, área,
diámetro y perímetro de folículos pilosos de alpacas Suri de color blanco
en hembras y machos de cuatro categorías. ............................................75
x
ANEXO 13. Base de datos de alpacas Suri por edad y sexo, de hembras y machos
del número de poros, fibras, la relación de número de fibras/número de
poros y parámetros estadísticos de la fibra y el poro................................77
ÍNDICE DE FOTOGRAFIAS
xi
GLOSARIO
CSD: Camélidos sudamericanos.
DFT: Densidad folicular total.
FP: Folículo primario.
FS: Folículo secundario.
FSO: Folículos secundarios originales.
FSD: Folículos secundarios derivados.
SAS: Statistical Analysis System.
μm: Micras.
DS: Desviación estándar.
CV: Coeficiente de variabilidad.
n: Número de datos.
IF: Índice folicular.
s/p: Relación de folículos secundarios/primarios.
DIFP: Diámetro interno de los folículos primarios.
DIFS: Diámetro interno de los folículos secundarios.
CIDCS: Centro de investigación y desarrollo de camélidos sudamericanos.
MIN: Mínimo.
MAX: Máximo.
f/mm2: Folículo por milímetro cuadrado
FAO: Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación Agricultura
xii
RESUMEN
El presente trabajo de investigación denominado "Determinación del índice folicular
y densidad de fibra en alpacas de la raza Suri de color blanco en el centro de
investigación en camélidos sudamericanos (CICAS) - La Raya", se realizó con el
objeto de determinar el índice folicular y la densidad de fibras del costillar medio de
la piel de alpacas Suri, utilizándose 30 alpacas, entre hembras y machos; de dientes
de leche (DL), dos dientes (2D), cuatro dientes (4D) y boca llena (BLL). Para índice
folicular se tomaron muestras de piel por punción con un sacabocado de 5 mm de
diámetro, se sumergieron en formol al 10% y fueron procesados por la técnica de
inclusión en parafina, y finalmente se realizó el conteo de folículos con la ayuda del
software Motic Images Plus 2.0ML. Para la densidad de fibra se hizo la preparación
de la piel en animal vivo, captura amplificada de imágenes, almacenamiento de
imágenes y; por último, el procesamiento de imágenes y presentación de datos
mediante el software Fiber Den. Los datos fueron analizados en un arreglo factorial
en bloques al azar, la comparación de medias se efectuó con el test de Duncan, y
para evaluar la relación entre las variables estudiadas, se empleó la correlación de
Pearson; todos los datos se analizaron con el SAS. Los valores promedio para
hembras de índice folicular (s/p), área, perímetro y diámetro de folículos fueron de
7,13 ± 1,73(7,13:1); 527,01 ± 120,91 μm2; 79,31 ± 9,73 μm y 21,71 ± 2,35 μm,
respectivamente, y para machos resulto de 6,74 ± 1,70(6,74:1); 579,72 ± 191,20
μm2; 84,63 ± 15,80 μm y 22,73 ± 3,43 μm, respectivamente, no existiendo
diferencias significativas (p>0,05) para ambos sexos, en ninguna de las variables.
Los promedios para el efecto sexo de las variables: Densidad de fibra, Densidad de
poro, Fibras por poro, fueron de 19,76 ± 4,87 fibras/mm2; 7,96 ± 2,79 poros/mm2 y
2,57 ± 0,32 fibras/poro, respectivamente, para hembras, y para machos fue de
24,13 ± 4,61 fibras/mm2; 9,55 ± 1,60 poros/mm2 y 2,53 ± 0,26 fibras/poro,
respectivamente, en las que el sexo logró influir (p<0,05) en las variables de
densidad de fibra y densidad de poro, empero no ocurrió ello (p>0,05), para la
relación de fibras por poro. Por último, la correlación entre el índice folicular y
densidad de fibra resultó ser baja y negativa -0,01901 sin diferencias
significativas(p>0,05), lo cual indica que no existe relación entre ambas variables.
xiii
INTRODUCCIÓN
1
CAPÍTULO I
PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
1.1. Desarrollo del problema
Pese a ser el país con mayor producción de fibra pilosa, los alpaqueros no
cuentan con conocimientos ni información sobre la evaluación y determinación de
la densidad y calidad de fibra, eso es un gran inconveniente porque a mayor
densidad y calidad de fibra mayor peso y finura de vellón; por tanto, mejor precio.
2
Todo lo anterior indica que la piel de alpaca tiene estudios preliminares a
nivel estructural; sin embargo, existen escasos estudios que muestren relaciones
entre las características de la piel y la fibra pilosa. Además, está claro que antes de
cualquier iniciativa o programa de mejora genética que esté orientado a incrementar
la calidad y cantidad de la producción de fibra en alpacas es indispensable conocer
las características de los folículos pilosos (índice folicular) y también ver si estas
características están correlacionadas con la densidad de fibra pilosa.
3
fibras/número de poros, de alpacas de la raza Suri machos y hembras de
color blanco en las diferentes edades?
1.3. OBJETIVOS
1.4. JUSTIFICACIÓN
4
llamas se encuentra en manos de pequeños productores; quienes las crían con el
objetivo principal de la producción de pelo fino.
5
CAPITULO II
MARCO TEÓRICO
2.1. ANTECEDENTES DE LA INVESTIGACIÓN
2.1.1. Índice Folicular
Molina, G., Teich, I., Antonini, M., Reniere, C., Terza, A., & Balzarini, M. (2016)
en alpacas Suri encontraron que la densidad folicular fue de 42,8 f/mm², con un
rango de 19 a 58 f/mm², mientras que en alpacas Huacaya la densidad folicular total
varia de 23 a 56 f/mm², con un promedio de 41,6 f/mm², la relación folicular
secundario/primario en promedio para Huacaya es de 7,21 ± 0,52 f/mm², y para las
alpacas Suri fue de 7,21 ± 0,62 f/mm².
Tabla 1. Comparación del parámetro de relación folícular (s/p) entre las crías de
la raza Huacaya y Suri.
Media
Razas relación DS CV(%)
folícular s/p
Huacaya 13,9 4,7 33,7
Suri 14,5 6,3 44,0
Fuente: Badajoz, (2007).
8
Tabla 4. Densidad folicular y relación de folículos secundarios/primarios, en
camélidos.
Tabla 5. Promedio (desviación estándar) del IF, PVS y MDF de alpacas del CIDCS-
Lachocc en Huancavelica.
9
Nacional de Huancavelica. Procesaron 80 biopsias mediante medios histológicos y
coloración de hematoxilina - eosina; encontraron un promedio general 15,07
folículos secundarios sobre primarios, estos resultados provienen de un área
evaluada de 0,2704 mm2; no encontrando diferencias significativas por sexo ni por
edad. Con la finalidad de verificar la edad en la que los folículos secundarios
alcanzan su madurez y comparar la estructura y actividad folicular en tres diferentes
tipos de camélidos del Perú (alpaca Huacaya, alpaca Suri y llama Chaku).
10
del vellón (Gamarra, 2008); por tanto, constituye un referente de comparación; sin
embargo, existen reportes superficiales acerca de la existencia de haces de fibras
pilosas en vicuñas y alpacas; así (Chamut et al., 2016) encontraron en vicuñas,
haces compuestos por tres fibras pilosas mostrando diferencias substanciales en
tamaño y relación espacial entre pelos, fibras pilosas y lanas, mientras que (Torres
de Jasaui et al., 2007 y Badajoz et al., 2009) también reportaron en alpacas haces
formadas hasta por tres fibras pilosas.
12
fibras/mm2, DenCon de 10,50±0,16 y 6,77±2,26 conducto/mm2 y Fib/Con de
2,41±0,04 y 1,89±0,63, respectivamente para alpacas y llamas.
13
Ccalta, (2020) encontró el valor promedio de 4,38 fibras en alpacas Huacaya,
según edad los valores promedio fueron de 3,87 fibras para machos y 4,72 fibras
para hembras, sin diferencias estadísticas entre ambos sexos, los valores
promedios encontrados para el efecto edad fueron de 4,70 fibras; 5,00 fibras; 4,95
fibras y 3,71 fibras en alpacas de DL, 2D, 4D y BLL, donde no muestran diferencias
estadísticas entre edades.
14
folicular, hay mayor densidad de fibras pilosas con el consiguiente aumento del
peso de vellón en los primeros años de vida (Velásquez, 1985).
15
sin embargo, la medición de la densidad resulta aun considerablemente más
dificultosa (McFadden y Neale, 1954)
2.2.3.1. La epidermis
16
cuales descansan sobre una fina capa celular, algo brillante. En esta capa, la raza
Suri presenta menos grasa que la Huacaya. Esta capa es más delgada en la alpaca
que en otras especies (Bustinza, 2001).
2.2.3.2. La dermis
2.2.3.3. La hipodermis
Es una capa de la piel de CSD formada por tejido conectivo laxo, cuya
función es fijar la dermis a los huesos o músculos y cuya principal característica es
la presencia de un alto número de células adiposas (Bustinza, 2001).
17
2.2.4. Folículos Pilosos en Alpacas
Existen dos tipos de folículos: los folículos primarios (FP) relacionado con la
glándula sebácea, la glándula sudorípara y el músculo erector que dan origen a los
pelos largos y gruesos. El folículo primario (FP) no está rodeado completamente
por folículos secundarios (FS) sino que se localiza a un lado de ellos. Los folículos
secundarios (FS) con frecuencia van acompañados de glándulas sudoríparas y
originan la fibra pilosa fina y comienzan a desarrollarse alrededor de los folículos
primarios (San Martin y Franco, 2007; Rodríguez, 2006 y Bustinza, 2001).
Los folículos se encuentran en grupos foliculares; compuestos por un folículo
primario rodeado de 3 a 20 folículos secundarios en alpacas Suri, en cambio en
alpacas Huacaya un folículo primario se encuentra rodeado por 3 a 26 folículos
secundarios; también pudiéndose encontrar folículos primarios solitarios (folículo
primario extra grupo folicular) (Badajoz et al., 2009). Lo que describiremos a
continuación se basa en los estudios de (Badajoz et al., 2009).
18
a) Folículos primarios: Este es el primero en desarrollarse en el feto, de mayor
diámetro que los folículos secundarios; también está relacionado con la
glándula sebácea, la glándula sudorípara y el músculo erector (Badajoz et
al., 2009).
b) Folículos secundarios: Estos empiezan su desarrollo después de los
folículos primarios en el feto, tienen menor diámetro y están acompañados
con frecuencia de glándulas sudoríparas (Badajoz et al., 2009).
c) Grupos foliculares simples: Estos están formados sólo por folículos
secundarios que se encuentran en su mayoría fusionados a través de su
vaina radicular externa (Badajoz et al., 2009).
d) Grupos foliculares compuestos: Estos se encuentran formados por
folículos primarios y secundarios, delimitados completamente por tejido
conectivo denso que se infiltra entre ambos, formando un fino estroma
conectivo (Badajoz et al., 2009).
2.2.5. Formación de la fibra pilosa
Scott et al., citado por Escobar y Esteban, (2009) refieren que, el folículo
piloso presenta en su base un ensanchamiento que constituye el bulbo piloso, el
cual presenta una papila de tejido conectivo con varios capilares. Esta papila
invagina profundamente al bulbo formando un área bastante notoria. En dirección
longitudinal, el folículo puede dividirse en las siguientes regiones: región del bulbo,
región por encima del bulbo y tercio superior del folículo. Región del bulbo dentro
de ésta se encuentra la papila, que comprende un grupo de células de la dermis. El
bulbo contiene las células germinativas, se multiplican para proveer las células de
la fibra pilosa. Las células mueren y son expulsadas del folículo con fibras pilosa de
lana. Este proceso de endurecimiento de las células se llama queratinización
debido a que se forma una proteína insoluble. Región por encima del bulbo, esta
región tiene una forma ligeramente en espiral, y además es más gruesa de un lado
que del otro, ya que el folículo tiene una especie de hinchazón en uno de sus lados.
Las células de la fibra pilosa están diferenciadas, y la propia fibra pilosa se
queratiniza a medida que es rodeada por las capas ya queratinizadas de la vaina
interna de la raíz. Tercio superior del folículo, en esta región la vaina externa de la
raíz tiene una estructura similar a la epidermis. La membrana del folículo y la parte
superior de los ductos de las glándulas sudoríparas y sebáceas, están alineadas
con varias capas de células cornificadas y la fibra pilosa está completamente
queratinizada.
20
Los folículos de la alpaca por su distribución se clasifican en dos clases:
Simples y Compuestos. Los folículos simples contienen una sola fibra pilosa, con
diámetro bastante grueso, cuya médula es infalible y están acompañados de una
glándula sudorípara, que en algunos casos puede desembocar al folículo o, en
otros, emerger libremente y han sido definidos como folículos primarios solitarios.
Los folículos compuestos están formados por varios folículos de diferentes tipos y
grosores, rodeados por tejido conectivo denso. Estos folículos se compactan y en
la zona superficial se fusionan unos con otros y su emergencia es única. Este
folículo compuesto toma el nombre de nido folicular, con un folículo primario y varios
secundarios. El folículo primario (FP) es el más grande y de mayor diámetro y está
relacionado con la glándula sebácea, glándula sudorípara y el musculo erector. El
FP no está rodeado completamente por folículos secundarios (FS), sino que se
localiza a un lado de ellos. Los FS son de menor diámetro y con frecuencia van
acompañados de glándulas sudoríparas (Bustinza, 2001).
Aliaga, (2006) y Bustinza, (2001) coinciden en, describir que el trio de los
folículos primarios asociados con sus folículos secundarios, constituyen el grupo
folicular, el cual constituye la unidad de producción de lana. Además, los folículos
primarios producen fibra pilosa mucho más gruesa que los secundarios, estos
carecen de glándulas sudoríparas y del musculo erector de pilli, no así los folículos
primarios que los poseen. Sin embargo, ambos tipos de folículos tienen en común
glándulas sebáceas. Los folículos secundarios presentan algunas características
diferenciales de los primarios. Además de su formación posterior en el feto, se
distinguen de los primarios en que no poseen glándulas sudoríparas, ni músculo
erector. Además, su glándula sebácea es mucho más pequeña (unilobulada) y en
algunos casos no existe. Alcanzan una profundidad menor en la dermis que los
primarios y a diferencia de estos nunca producen pelos, ni kemps (Minola y
Goyenechea, 1975).
21
En alpacas, el desarrollo folicular es similar al de los ovinos. Así, el FP inicia su
formación entre los 90 y 147 días después de la concepción y la mayor producción
se da entre los 187 a 214 días de gestación. El desarrollo de los folículos
secundarios originales (FSO) se observa a partir del día 187 y el desarrollo de los
folículos secundarios derivados (FSD) se produce a los 264 días de gestación (Yi,
citado por Escobar y Esteban, 2009). Cabe resaltar que la maduración folicular sólo
alcanza el 75% (Bustinza, 2001).
Holt, (2011) menciona que la zona más propicia y representativa para la toma
de muestra de piel en todas las especies se encuentra a la altura de los costillares
ya que las zonas con mayor amplitud de capas de piel se encuentran a la altura de
las palmas de las manos y las plantas de los pies con 4 mm; así también las zonas
con menor amplitud de capas de piel se encuentran a la altura de los parpados de
los ojos con 5 mm.
Valmi, (2011) Menciona que para empezar con la técnica histológica se debe
obtener una muestra del tejido el cual ya fue debidamente extraído, conservado y
rotulado.
2.2.10.2. Fijación
22
Montalvo, (2010) describe que este es un proceso que cuya finalidad es
determinar la vida de la célula e impedir las modificaciones post mortem que pueda
sufrir la célula, manteniendo la estructura morfológica de células y tejidos sin que
ocurran cambios notables en ellos, y esto se consigue inmovilizando (por
coagulación o precipitación) las moléculas proteínicas e inhibiendo principalmente
las enzimáticas haciéndolas insolubles. Esta acción garantiza la integridad de las
células y tejidos, y esto se consigue mediante agentes químicos denominados
fijadores. Así el formol es la sustancia elegida y de mayor uso en los laboratorios
que realizan técnicas histológicas y para ello se usa el formol al 10% (ósea una
solución de 10% de formol con 90% de agua); (Valmi, 2011) ya también dice que
este proceso se refiere al tratamiento del tejido con sustancias químicas, de manera
que mantenemos las células con las propiedades intactas lo mejor posible. Esto se
logra al inactivar ciertas enzimas celulares que de otra manera iniciarían la autolisis
y llevarían a la degeneración post mortem. La fijación mantiene las estructuras al
estimular la formación de enlaces cruzados entre las proteínas.
2.2.10.3. Deshidratación
Para Montalvo, (2010) y Valmi, (2011) está significa extraer o remover el agua de
los tejidos fijados, y esta debe ser completa porque de lo contrario el solvente no
actúa. (Valmi, 2011) afirma que el mejor agente para este proceso es el alcohol
etílico; (Montalvo, 2010) por esto se sumergen en alcohol etílico y se sigue la
secuencia, tiempos y proporciones, (Valmi, 2011) la deshidratación se logra mejor
utilizando alcoholes de menor a mayor concentración siguiente:
Valmi, (2011) comenta que este proceso permite que el alcohol de los tejidos
sea reemplazado por un líquido que disuelva la parafina con la cual el tejido va a
ser impregnado. Además, muchas de estas sustancias tienen la propiedad de
23
volver transparente los tejidos; el solvente más usado para la parafina es el xilol. La
proporción en relación con la muestra debe de ser 10 veces el volumen del tejido,
pero como una dificultad del proceso, es cuando la deshidratación no es completa,
el xilol toma un aspecto lechoso cuando se le añade el tejido.
Montalvo, (2010) dice que en esta etapa los tejidos y la parafina integran un
solo bloque que contiene la dureza y consistencia suficiente para obtener secciones
delgadas y transparentes de nuestras muestras, las secciones delgadas o cortes
se obtienen usando instrumentos mecánicos diseñados. Para que en forma más o
menos automática seccione el bloque de parafina en cortes delgados y de grosor
uniforme; el instrumento usado se denomina micrótomo; (Valmi, 2011) dice que
este instrumento es un equipo rotatorio semiautomático que se utiliza para el corte
donde el bloque se acerca, progresivamente a la cuchilla que se acerca con el filo
24
hacia arriba rebajando progresivamente el tejido hasta conseguir el corte deseado.
(Montalvo, 2010) menciona, que el sistema de funcionamiento de este equipo
consta de 4 mecanismos principales que son:
Valmi, (2011) menciona que el grosor del corte ideal es de 2 a 3 micras. Esto
reduce la superposición de núcleos.
2.2.10.10. Flotación
Valmi, (2011) dice que el baño de flotación debe ser calentado a pocos
grados bajo el punto de fusión de la parafina. El uso de agua destilada en el baño
ayuda a eliminar burbujas (puede usarse agua de caño). Agregar lentamente acido
al agua. llevar la solución a ebullición. Enfriar y agregar al baño de flotación
conforme se necesite. El hervido remueve el CO2 del agua reduciendo la formación
de burbujas de aire. El ácido clorhídrico al 1% previene la precipitación de sales
minerales que ocurre luego que el CO2 ha hervido.
25
2.2.10.11. Adhesivos para tejidos
2.2.10.12. Tinción
Montalvo, (2010) Una vez ya obtenidos los cortes y los tejidos ya hayan sido
adheridos a los portaobjetos estos están listos para ser coloreados; (Valmi, 2011)
dice que la tinción de los cortes histológicos permite estudiar y conocer las
características físicas de los tejidos y las relaciones entre las células que los
constituyen. (Montalvo, 2010) afirma que el proceso de coloración o tinción consiste
en que una estructura celular o tisular adquiera especialmente un color bajo la
acción de una sustancia colorante, y se considera que una estructura se a
coloreado cuando al lavarse con el líquido que disuelve el colorante no se decolora;
(Valmi, 2011) dice que se efectúa generalmente usando mezclas de sustancias
químicas denominadas colorantes. Los colorantes usados se pueden clasificar
como ácidos, básicos o neutros. Los componentes de los tejidos que se tiñen
fácilmente con colorantes básicos se denominan basófilos, reciben el nombre de
acidofilos aquellos que se unen a los colorantes ácidos. El azul de toluidina y el azul
de metileno son ejemplos de colorantes básicos, así como la hematoxilina. Los
componentes más importantes de los tejidos que reaccionan con los colorantes
básicos son las nucleoproteínas y las glucosaminas glicano ácido, debido a los
grupos ácidos ionizables que contienen. Colorantes ácidos tales como el Orange
G. la Eosina y la fucsina ácida tiñen principalmente los componentes básicos de las
proteínas citoplasmáticas.
Montalvo, (2010) dice que este tipo de coloración es de tipo más frecuente
en el estudio de células y tejidos, a través del microscopio fotónico, donde el núcleo
de la célula se colorea de azul; el citoplasma y material extracelular se colorea de
diferentes tonos rosáceos; (Valmi, 2011) también aporta diciendo que en el servicio
tradicionalmente utilizan el método Harris que es un método regresivo, pues tiñen
todas las estructuras (núcleo, citoplasma, tejido conectivo) y es seguido por una
26
decoloración controlada y azuleamiento para llegar al óptimo resultado de tinción
nuclear, previo desparafinado.
2.2.10.14. Montaje
Montalvo, (2010) menciona que una vez concluida la tinción de los cortes
estos se deben colocar en condición de protección y de poder usarlos infinidad de
veces sin que se deterioren y para este fin se debe recurrir al último paso que es el
montaje; y para este fin se debe de colocar una gota de una sustancia adherente
diluida generalmente en xilol se usa resina natural de bálsamo de canada o resinas
sintéticas y encima de ellos una laminilla cubreobjetos cuidando que no queden
burbujas de aire entre la resina; de ahí se deja que el xilol evapore y la resina
adquiera solidez y para ello la placa se calienta ligeramente entre 45 °C y 50 °C
durante 24 a 48 horas; (Valmi, 2011) menciona que este es el paso final de la
preparación de las láminas es cubrir la porción que contiene el tejido con una
lámina.
27
(Galbraith, 2010) las fibras pilosas de mayor importancia comercial son producidas
por los folículos secundarios. Esto indica que, a mayor índice folicular, la calidad de
la fibra pilosa será mejor, tendrá mayor cantidad de fibras pilosas más delgadas
(que son producidas por los folículos secundarios).
29
CAPITULO III
DISEÑO DE LA INVESTIGACION
3.1. Ámbito de estudio
3.3. MATERIALES
3.3.1. Material biológico
x Alpacas Suri de color blanco.
3.3.2. Materiales para la obtención de muestras
3.3.2.1. Para la determinación del índice folicular
x Punch o sacabocado de 5 mm
x Tintura de yodo 30 ml
x Lidocaína 50 ml (Anestésico local)
x Jeringas de tuberculina 0,5 ml
x Algodón 100 g
x Alcohol etílico al 96 %.
x Formol al 10 %.
30
x Tubos de colección de muestras.
x Guantes quirúrgicos descartables.
x CICLO SAM PLUS de 500 ml(Antibiótico)
x Botas
x Sogas de 3 m
x Cinta Masking Tape
x Rotuladores.
x Mameluco.
3.3.2.2. Para la determinación de la densidad de fibras pilosas
x Tinte sach life for men 35 ml
x Agua oxigenada “Oxigenta” 30 Vol. x 50 ml (Activador en crema)
x Jabón líquido (Shampoo concentrado Bella)
x Asperjador de agua.
x Cuchillas inoxidables.
x Toallas.
x Bol (recipiente).
x Brochas para teñido de cabello.
x Tijeras.
x Papel secante.
x Navaja de afeitar con hojas cambiables.
3.3.3. Del equipo
x Densímetro de fibras (Fiber Den).
x Microscopio digital (Motic Images Plus 2.0ML).
x Impresora.
x Computadora portátil
x Cámara digital
3.3.4. Materiales y equipo de escritorio
x Cuaderno de apuntes.
x Bolígrafos.
x Papel Bond A-4.
x Memoria USB.
31
3.4. Método
32
3.6.3. Definición operativa de variables
Tipo de
Variables Naturaleza Medicíon Indicador
variable
Dientes de leche, 2
Edad Independiente Cuantitativa De razón Dientes, 4 Dientes y
Boca Llena.
Sexo Independiente Cualitativa Nominal Hembra y macho
Relación s/p, en un
Índice folícular Dependiente Cuantitativa De razón área determinada de
piel (mm2).
número de haces de
Densidad de
Dependiente Cuantitativa De razón fibra por poro en un
fibra
área de 1mm2.
Cantidad de poros por
Densidad de
Dependiente Cuantitativa De razón un área determinada
conductos
(mm2).
Relación del Número de
número de fibras/números de
Dependiente Cuantitativa De razón
fibras/número poros en un área de
de poros 1mm2.
3.7. Metodología
33
Tabla 10. Tamaño de muestra poblacional.
MACHOS HEMBRAS
Numero de Numero de
Categoría Categoría
alpacas alpacas
Dientes de leche 3 Dientes de leche 4
2 Dientes 2 2 Dientes 3
4 Dientes 2 4 Dientes 3
Boca llena 5 Boca llena 8
TOTAL 12 TOTAL 18
34
Fotografía 1. Tubos de colección debidamente rotulados con la información de cada
animal: arete, sexo y edad.
35
Fotografía 2. Conteo de folículos primarios y secundarios en el software
Motic Images Plus 2.0 ml.
Se inició con el corte de las fibras pilosas con una tijera, en una zona del
costillar medio derecho de cada alpaca de un área aproximada de 100 x 100 mm,
Luego se procedió al lavado de la zona con agua y Shampoo, seguidamente se
36
procede al secado y luego al teñido, utilizando una mezcla de tinte y oxidante para
dichos efectos, el tinte sobre la zona se dejó actuar por un promedio de 25 a 30
minutos, después de este tiempo se procede al lavado y secado (con papel secante
y toalla). Luego de esto fue rasurada la zona teñida con el uso de una navaja
provista de hoja de afeitar, dejando entre 0,2 a 0,4 mm de largo de la fibra pilosa
desde el nivel de cada poro.
37
Fotografía 6. Aplicación del tinte más el agente oxidante sobre la
zona de muestreo de cada animal.
38
3.7.3.2. Preparación del Fiber Den y captura de imágenes
39
Fotografía 10. Imágenes capturadas de haces de fibras.
En esta etapa se realizó el conteo de las fibras pilosas por conducto en cada
una de las imágenes debidamente identificadas. El conteo se realizó partiendo de
la zona superior hacia la zona inferior alrededor de 1mm² hasta culminar toda la
imagen. Al momento del conteo se tuvo en cuenta las fibras pilosas por cada
conducto de donde emergen (haces), marcándose los válidos mediante un símbolo
determinado y de esta manera se evitaron los dobles conteos. Luego de terminar
el conteo de las fibras pilosas por cada conducto en una imagen se realizó las
anotaciones respectivas (en forma automática), De esta forma el procedimiento y
el equipo permitieron obtener las siguientes características: Promedio y desviación
estándar de la densidad de fibras/mm 2; Promedio y desviación estándar de la
densidad de conductos/mm2; relación número fibras/número de conductos; y
adicionalmente las características de los haces por número de fibras pilosas que
contienen.
40
3.8. Diseño estadístico
ሺσ ݅ݔሻሺσ ݆ݕሻ
σ ݆ݕ݅ݔെ
ݎൌ ݊
ሺσ ݅ݔሻ ଶ ଶ
ටσ ݅ݔଶ െ ൨ σ ݆ݕ ଶ െ ሺσ ݆ݕሻ ൨
݊ ݊
Dónde:
r = Correlación simple
n = Número total de datos
xi = Variable Independiente.
yj = Variable dependiente.
∑xi= Sumatoria de la variable “x”
∑yj= Sumatoria de la variable “y”
42
CAPITULO IV
RESULTADOS Y DISCUSIONES
4.1. Determinar la relación de folículos secundarios/primarios
En la Tabla 11, se determinó que la relación de folículos s/p en alpacas Suri, fue
de 6,97 s/p. El valor obtenido es inferior a lo reportado por (Ccalta, 2020) que
encontró para índice folicular 7,48 s/p, esto probablemente se deba a que el estudio
fue realizado en alpacas de la raza Huacaya, (Badajoz, 2007) a su vez obtuvo 14,5
s/p para índice folícular, (Antonini et al., 2004) en su estudio reporta un promedio
de 7,84 s/p para índice folicular, (Paucar y Sedano, 2014) reportan 12,81 s/p. Estas
diferencias de resultados se deben a que los estudios realizados por los autores
mencionados fueron en crías de alpacas, al respecto (Apaza et al., 1998)
mencionan que, al nacimiento, los folículos están bastante compactados en la piel
haciendo muy alta la densidad folicular; a medida que el animal crece la piel se
expande de manera que la densidad folicular disminuye. Otra razón del porque los
valores obtenidos son inferiores, es debido al número de animales estudiados,
donde los animales trabajados por los diferentes autores mencionados fueron
superiores a los nuestros.
Efecto sexo.
43
seleccionadas para este trabajo son de la raza Huacaya, se podría inferir también
que la cantidad de alpacas seleccionadas para este trabajo influyeron, al ser
superiores en relación a los nuestros.
Al respecto Paucar y Sedano,(2014) reportaron 12,42 s/p para machos y
para hembras 13,30 s/p, a su vez (Badajoz, 2007) reporta 15 y 14 s/p para machos
y hembras respectivamente, siendo estos valores superiores a nuestros resultados,
se difiere que probablemente se deba al número superior de alpacas trabajadas por
los autores mencionados, también se puede deber a la influencia que existe por los
factores fisiológicos, medio ecológico y a la alimentación empleados en dichas
zonas, sin embargo para este efecto (Ccalta, 2020), hallo diferencias significativas
entre ambos sexos, donde los machos poseen mayor relación folicular s/p respecto
a las hembras, al contrario (Badajoz, 2007), (Paucar y Sedano, 2014); (Escobar y
Esteban, 2009) concluyeron que el sexo no logró influir sobre la relación folicular
s/p, esto es similar a nuestros resultados.
Efecto edad
44
las edades lo contrario sucedió con Paucar y Sedano, (2014) quienes solo
trabajaron con alpacas Huacaya de 1 año y 2 años.
Otros estudios en alpacas de mayor edad muestran valores por debajo del
promedio obtenido en el presente estudio. Así tenemos que (Tapia, 1977) obtuvo
una relación folicular s/p de 4,92 para alpacas Huacaya de 1 año de edad y (Gaitán,
1967) reporta una relación folicular s/p de 7,18 en alpacas de la misma raza de 4
años de edad. Por otro lado, en alpacas Suri (Tapia, 1969) obtuvo una relación
folicular s/p de 4,94, de manera similar a la relación folicular encontrada por (Tapia,
1977) quien obtuvo un promedio de 5,19 secundarios por cada primario. Las
diferencias entre los resultados encontrados en el presente trabajo y los valores
reportados en estudios anteriores podrían deberse a los diferentes ambientes de
cada estudio. Asimismo, se debe destacar que nuestro estudio utilizó alpacas de
todas las edades. Se sabe que el máximo valor de relación folicular s/p se obtiene
a una edad muy temprana como son los 4 meses en los camélidos sudamericanos,
sin embargo, esta no permanece constante a medida que maduran en el tiempo
como lo determinó (Antonini, et al., 2005).
45
Tabla 13. Efecto del sexo para el área de folículos pilosos en alpacas Suri de color
blanco.
Efecto sexo
Efecto edad
Los valores promedios obtenidos para esta variable según edad fueron de
496,89 μm2; 454,13 μm2; 482,06 μm2 y 637,19 μm2 para alpacas de DL, 2D, 4D y
BLL respectivamente (Tabla 14), encontrando diferencias significativas(p<0,05)
para el efecto edad, donde alpacas de 2D y 4D tienen el área de folículo más
pequeña en relación a las alpacas de DL y BLL. Aún no existen estudios sobre esta
variable con los que se pueda discutir.
Tabla 14. Efecto de la edad para el área de folículo piloso en alpacas Suri de color
blanco.
46
4.1.3. Perímetro del folículo piloso
Tabla 15. Efecto del sexo para el perímetro de folículos pilosos en alpacas Suri de
color blanco.
Efecto sexo.
Efecto edad.
47
Tabla 16. Efecto de la edad para el perímetro de folículos pilosos en alpacas Suri
de color blanco.
Tabla 17. Efecto del sexo para el diámetro de folículos pilosos en alpacas Suri de
color blanco.
Efecto sexo
Efecto edad
48
piloso respecto a las alpacas de 2D y 4D. Aún no existen estudios sobre esta
variable con los que se pueda discutir.
Tabla 18. Efecto de la edad para el diámetro del folículo piloso en alpacas Suri de
color blanco, para cuatro categorías.
49
respectivamente, esto resulto ser inferior en comparación a nuestros resultados la
causa la atribuimos a la especie animal.
Tabla 19. Efecto del sexo sobre el número de fibras pilosas por mm2 (densidad de
fibra pilosa) en alpacas Suri de color blanco.
Efecto sexo
El resultado para los machos fue de 24,13 fibras/mm2 y para las hembras de
19,76 fibras/mm2, estos resultados muestran diferencias estadísticas
significativas(p<0,05) entre ambos sexos, teniendo con mayor densidad a los
machos en relación a las hembras.
Efecto edad
Para esto Ccalta, (2020) hallo valores promedios de 34,18 fibras/mm2; 33,06
fibras/mm2; 27,70 fibras/mm2 y 26,66 fibras/mm2 para alpacas de DL, 2D, 4D y BLL
50
respectivamente, resultados que son mayores a los nuestros, se infiere que la
diferencia radica en la raza del animal usado para dicho trabajo de investigación.
Tabla 20. Efecto de la edad sobre el número de fibras por mm2 (densidad de fibra
pilosa) en alpacas Suri de color blanco.
Tabla 21. Efecto del sexo sobre la desviación estándar de la fibra pilosa, en alpacas
Suri de color blanco.
Efecto sexo
Para esta variable de estudio Ccalta, (2020) reporto 3,87 fibras y 4,72 fibras
para machos y hembras respectivamente, resultando superiores en relación a los
nuestros, esto probablemente es debido a la influencia del número de muestras
estudiadas, también podríamos atribuirla a la raza de alpacas evaluadas en ambos
estudios.
Efecto edad
Los resultados para esta variable de estudio, según edad fueron de 3,95
fibras; 2,44 fibras; 3,94 fibras y 2,79 fibras, para alpacas de DL, 2D, 4D y BLL
respectivamente, demostrándose así que no existen diferencias estadísticas
significativas entre edades (Tabla 22). Al respecto Ccalta, (2020) determino valores
promedios de 4,70 fibras; 5,00 fibras; 4,95 fibras y 3,71 fibras para alpacas de DL,
2D, 4D y BLL respectivamente. La diferencia de resultados probablemente se deba
a la raza de alpacas utilizadas en ambos trabajos de investigación.
Tabla 23. Efecto del sexo sobre el Coeficiente de variabilidad de la fibra pilosa, en
alpacas Suri de color blanco.
Efecto sexo
Efecto edad
Tabla 25. Efecto del sexo sobre el número de poros por mm2 (densidad de poros)
en alpacas Suri de color blanco.
Efecto sexo
Para el efecto sexo se tuvo como resultado con mayor densidad de poros a
los machos en comparación a las hembras, existiendo diferencias
significativas(p<0,05) entre ambos sexos.
Para lo cual Ccalta, (2020) reporto 10,80 poros por mm2 para machos y 9,51
poros por mm2 para hembras, resultando superiores a nuestros resultados y se
puede inferir que se deba a la raza de alpacas estudiadas por dicho autor. Sin
embargo, se coincide en la conclusión de que los machos poseen mayor densidad
de poros en relación a las hembras, esto probablemente a que se tiene una
selección metódica de machos reproductores en el CICAS-La raya.
Efecto edad
54
Para la característica densidad de poros por mm2 en la piel de alpacas Suri
de color blanco, se calculó valores promedios para las edades DL, 2D, 4D y BLL
hallando promedios de 11,20 poros/mm2; 8,92 poros/mm2; 8,44 poros/mm2 y 7,12
poros/mm2 respectivamente (Tabla 26), donde el efecto edad influyó sobre esta
variable, esto nos lleva a la conclusión de que alpacas de DL tienen alta densidad
de conductos en comparación a las alpacas de 2D, 4D y BLL.
Tabla 26. Efecto de la edad sobre el número de poros por mm2 (densidad de
poros) en alpacas Suri de color blanco.
Para esta característica, el promedio fue de 1,20 poros, con un valor mínimo de
0,40 y un valor máximo de 2,42, con un coeficiente de variabilidad de 50,94 %
(Tabla 27). Este resultado es inferior a la encontrado por Ccalta, (2020) quien
reporto 1,55 poros en alpacas Huacaya. Esto probablemente se deba a la raza de
alpaca usadas en ambos estudios.
Tabla 27. Efecto del sexo sobre la desviación estándar del poro, en alpacas Suri
de color blanco.
Efecto sexo
Efecto edad
Ccalta, (2020) determino valores promedios para esta variable de 2,04 poros;
1,31 poros; 1,52 poros y 1,43 poros para alpacas Huacaya de DL, 2D, 4D y BLL
respectivamente, estos promedios son superiores en comparación a los nuestros,
esto probablemente se deba a la raza de alpacas utilizadas en ambos estudios.
Tabla 28. Efecto de la edad sobre la desviación estándar del poro, en alpacas Suri
de color blanco.
56
relación a nuestro resultado, se difiere que la raza de alpacas utilizadas por el autor
podría haber influido en esta diferencia de resultados.
Tabla 29. Efecto del sexo sobre el Coeficiente de variabilidad del poro, en alpacas
Suri de color blanco.
Efecto sexo
Efecto edad
57
4D 5 17,53a 7,79 44,40 7,65 28,23
BLL 13 13,91a 5,96 42,84 4,55 22,22
Letras diferentes en la columna indican que existen diferencias estadísticas(p<0,05).
Tabla 31. Efecto del sexo sobre la relación de número de fibras/número de poros,
en alpacas Suri de color blanco.
Efecto sexo
Efecto edad
58
Para la característica relación de número de fibras/número de poros, en
alpacas Suri de color blanco, los valores promedios fueron de 2,32 fibras/poros;
2,50 fibras/poros; 2,51 fibras/poros y 2,72 fibras/poros en alpacas de DL, 2D, 4D y
BLL respectivamente (Tabla 32), los resultados indican que existen diferencias
estadísticas significativas para el efecto edad, donde alpacas de DL tienen menor
relación de número de fibras pilosas por número de poros en comparación a las
alpacas de 2D, 4D y BLL. Estos resultados son inferiores con respecto a lo
reportado por (Ccalta, 2020) quien encontró valores promedios de 2,60 fibras/poros;
3,02 fibras/poros; 2,88 fibras/poros y 3,29 fibras/poros en alpacas de DL, 2D, 4D y
BLL respectivamente y de la misma manera la razón probablemente se deba a la
raza de alpacas evaluadas en ambos estudios.
Variables n r Sign.
f. s/p fibras/poro 30 -0,01901 0,9206
f. s/p: relación de folículos secundarios y primarios.
60
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
CONCLUSIONES
62
RECOMENDACIONES.
63
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70
ANEXOS
Grados
Suma de Cuadrado
Fuente de F- Valor Pr>F
Cuadrados de la media
libertad
Edad 3 17,394 520 88 5,798 173 63 2,12 0,126 2
Sexo 1 1,067 271 2 1,067 271 2 0,39 0,538 3
Edad*Sexo 3 5,424 172 09 1,808 057 36 0,66 0,584 1
Error 22 60,069 515 83 2,730 432 54
Total corregido 29 83,955 480 00
Grados Cuadrado
Suma de
Fuente de de la F- Valor Pr>F
Cuadrados
libertad media
Edad 3 187502,825 6 62500,941 9 3,99 0,020 8
Sexo 1 23099,536 7 23099,536 7 1,47 0,237 7
Edad*Sexo 3 115072,705 6 38357,568 5 2,45 0,090 8
Error 22 344980,549 9 15680,934 1
Total corregido 29 670655,617 8
71
ANEXO 4. Análisis de varianza del diámetro del folículo piloso.
Grados
Suma de Cuadrado de F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados la media Valor
libertad
Edad 3 62,504 107 55 20,834 702 52 4,17 0,017 5
Sexo 1 8,239 706 77 8,239 706 77 1,65 0,212 2
Edad*Sexo 3 50,152 423 18 16,717 474 39 3,35 0,037 5
Error 22 109,812 829 2 4,991 492 2
Total corregido 29 230,709 066 7
Grados
Suma de Cuadrado de F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados la media Valor
libertad
Edad 3 186,019 457 9 62,006 486 3,60 0,029 6
Sexo 1 127,237 213 7 127,237 213 7 7,39 0,012 6
Edad*Sexo 3 83,049 995 1 27,683 331 7 1,61 0,216 4
Error 22 379,032 000 0 17,228 727 3
Total corregido 29 775,338 666 7
Grados
Suma de Cuadrado de F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados la media Valor
libertad
Edad 3 76,315 589 74 25,438 529 91 10,21 0,000 2
Sexo 1 15,815 702 84 15,815 702 84 6,35 0,019 5
Edad*Sexo 3 31,984 040 75 10,661 346 92 4,28 0,016
Error 22 54,803 333 3 2,491 060 6
Total corregido 29 178,918 666 7
72
ANEXO 7. Análisis de varianza de la relación del número de fibras/número de
poros.
Grados
Suma de Cuadrado F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados de la media Valor
libertad
Edad 3 0,773 974 47 0,257 991 49 4,50 0,013 2
Sexo 1 0,007 330 92 0,007 330 92 0,13 0,724 1
Edad*Sexo 3 0,523 164 61 0,174 388 20 3,04 0,050 5
Error 22 1,262 146 67 0,057 370 30
Total corregido 29 2,566 616 67
Grados
Suma de Cuadrado de F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados la media Valor
libertad
Edad 3 11,669 737 88 3,889 912 63 2,11 0,127 4
Sexo 1 12,139 204 00 12,139 204 00 6,60 0,017 5
Edad*Sexo 3 4,069 495 63 1,356 498 54 0,74 0,541
Error 22 40,474 991 7 1,839 768 60
Total corregido 29 68,353 346 67
Grados
Suma de Cuadrado
Fuente de F- Valor Pr>F
Cuadrados de la media
libertad
Edad 3 140,889 202 2 46,963 067 4 2,13 0,125 8
Sexo 1 47,799 995 7 47,799 995 7 2,16 0,155 4
Edad*Sexo 3 87,560 995 4 29,186 998 5 1,32 0,292 6
Error 22 485,756 103 3 22,079 822 9
Total corregido 29 762,006 296 7
73
ANEXO 10. Análisis de varianza de la desviación estándar del poro.
Grados
Suma de Cuadrado F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados de la media Valor
libertad
Edad 3 2,656 861 50 0,885 620 50 2,53 0,083 4
Sexo 1 0,065 360 81 0,065 360 81 0,19 0,669 8
Edad*Sexo 3 0,482 829 35 0,160 943 12 0,46 0,713 1
Error 22 7,698 245 00 0,349 920 23
Total corregido 29 10,903 296 67
Grados
Suma de Cuadrado F-
Fuente de Pr>F
Cuadrados de la media Valor
libertad
Edad 3 140,220 337 5 46,740 112 5 1,46 0,253 3
Sexo 1 18,295 876 9 18,295 876 9 0,57 0,458 0
Edad*Sexo 3 39,381 511 3 13,127 170 4 0,41 0,747 8
Error 22 705,392 170 8 32,063 280 5
Total corregido 29 903,289 896 7
74
ANEXO 12. Base de datos de la relación de folículos secundarios/primarios, área, diámetro y perímetro de folículos pilosos de
alpacas Suri de color blanco en hembras y machos de cuatro categorías.
76
ANEXO 13. Base de datos de alpacas Suri por edad y sexo, de hembras y machos del número de poros, fibras, la relación de número
de fibras/número de poros y parámetros estadísticos de la fibra y el poro.
77
Desviación Coeficiente Desviación Coeficiente
Alpaca Número Número
estándar de Variación Estándar de Variación
Suri de Poros de Fibras Fibras Fibras Poros Poros
MS0504 DL M 9.80 25.20 2.57 4.12 16.34 1.17 11.90
MS0478 2D M 10.80 25.80 2.39 4.45 17.23 0.98 9.07
MS0491 2D M 9.60 22.00 2.29 2.19 9.96 1.36 14.13
MSR0079 4D M 7.00 14.40 2.06 3.01 20.88 0.89 12.78
MSR0081 4D M 12.40 31.40 2.53 8.21 26.15 2.42 19.49
MS0147 BLL M 11.40 28.60 2.51 3.56 12.43 2.33 20.46
MS0279 BLL M 8.80 23.00 2.61 2.68 11.67 0.40 4.55
MSR0052 BLL M 9.00 28.20 3.13 6.43 22.81 1.41 15.71
MSR0070 BLL M 8.80 21.80 2.48 2.14 9.80 0.40 4.55
MSR5272 BLL M 7.00 18.60 2.66 2.65 14.27 0.89 12.78
78