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Informe P2
Informe P2
Informe P2
Laboratorio de Biorreactores
Profesores
Rodríguez Sierra Juan Carlos
Juan Manuel Salgado Román
Practica 2
“Instrumentación y Control de los Biorreactores”
Integrantes
Ayala Sánchez Adrián Arturo
García Hernández José Guadalupe
Medina Maldonado María de la Luz
Ortega Huerta Daniela Elizabeth
Reyes Zamora Diana
Equipo #2
5BM1
Resumen........................................................................................................................................ 4
Introducción.................................................................................................................................... 4
Objetivos........................................................................................................................................ 8
Descripción del Sistema................................................................................................................. 8
Materiales y equipo...................................................................................................................... 12
Metodología.................................................................................................................................. 13
Resultados y discusión................................................................................................................ 14
Conclusión................................................................................................................................... 23
Referencias.................................................................................................................................. 23
Resumen
Los biorreactores deben de cumplir con condiciones óptimas para llevar a cabo reacciones
biológicas, para que se pueda cumplir con las mismas es necesario controlar de manera precisa
variables como la temperatura, pH, presión, aireación (si es que el sistema es aerobio), entre otras.
Por lo tanto, al cumplir con el correcto control de las variables se asegura la supervivencia del
organismo y del producto a obtener, para poder llevar este correcto control, las variables deben de
ser monitorizadas y controlables. Se precisaron los diferentes tipos de instrumentalización y
especificaciones de los sistemas de control en el laboratorio para su correcto uso, así como
identificar las variables que intervienen en ellos debido a que es necesario la optimización en el
proceso de control de cultivos.
Introducción
❖ Controlador: Puede ser un amplificador, filtro, unión mecánica u otro elemento de control,
pero también puede ser una computadora tal como un microprocesador.
❖ Proceso controlado: Una señal de entrada o comando se aplica al controlador, cuya salida
actúa como una señal de control o señal actuante, la cual regula el proceso controlado, de tal forma
que la variable de salida o variable controlada se desempeñe de acuerdo con ciertas
especificaciones o estándares establecidos (Pérez et al, 2008).
La fig.3 muestra el sistema esquematizado de la implementación de lazo cerrado.
Controladores.
Un controlador es el elemento, dentro del sistema de control, que se encarga de mantener la señal
en el punto deseado y lo más estable posible. Existen diferentes controladores que se pueden
integrar de manera individual o en conjunto en un sistema de control, como lo son:
● Controlador P (Proporcional): La acción del elemento regulatorio (salida del controlador) es
proporcional a la señal de error. Es limitada debido al desempeño que puede tener.
● Controlador I (Integral): La salida del controlador es proporcional a los errores acumulativos
del proceso. Su limitación es que dicho control es muy lento.
● Controlador D (Diferencial): Mejora la respuesta transitoria por lo que no puede utilizarse
individualmente. Su desventaja recae en que amplifica las señales de ruido lo que podría arrojar un
error mayor.
Usualmente los controladores P I y D se combinan para tener un mejor control. Por lo tanto, existen
controladores PI, PD y PID (Anaya et al, 2014).
Siendo el control PID, el controlador más recomendable pues aumenta la estabilidad con la parte
derivativa y proporcional, la rapidez de respuesta de la parte derivativa y arroja una mayor exactitud
con la parte integral.
En la fig.4 se muestra el sistema de lazo cerrado, muestra la relación entrada-salida de un sistema
de control de lazo cerrado.
Objetivos
A. Objetivo general:
B. Objetivos específicos:
Figura 11. Modo para que el controller controle los valores de las variables de temperatura,
pH, velocidad de agitación y oxígeno disuelto.
Resultados y discusión
En esta práctica se revisará la forma en que se maneja la consola de control de las variables del
biorreactor. Así como la forma de calibración de algunas de sus variables. Se tienen diferentes
variables a medir en un biorreactor para que el cultivo que se tenga en éste se pueda encontrar en
las mejores condiciones, entre ellas están:
Temperatura
Agitación
Oxígeno disuelto
Nivel/ Espuma
pH
Figura 15. Pantalla de inicio de la consola de control del biorreactor de tanque agitado marca
Applikon.
A continuación, se revisan los sensores que la consola del reactor tanque agitado Applikon posee,
su funcionamiento y características de acuerdo con el manual para biorreactores de 1 a 20L marca
Applikon Biotechnology.
.
Temperatura.
SENSOR Termopar
Se establece una temperatura de control deseada; el controlador manda una señal para
verificar si cumple con la indicación, de no ser así, manda la señal a los actuadores:
• Manta de calefacción.
CONTROL • Agua de enfriamiento.
Si tenemos una T por debajo de la deseada se activa la manta.
Si la temperatura esta por arriba de la deseada se activa la alimentación de agua de
enfriamiento.
TEMPERATURA
ESQUEMA
Este parámetro debe controlarse ya que varía según la biomasa del sistema (Doran, 2012); para
ello se utiliza el sensor llamada termopar que se coloca centro del termopozo con un poco de agua
destilada, así como una mantilla de calentamiento alrededor del recipiente de vidrio.
Fi
gura 16. Medición y control de la temperatura
Los termopares son el medio de medida más utilizado, esto debido a que cuentan con un rango de
temperatura muy alto, de hasta 1700°C (WIKA, 2016).
De acuerdo con el manual de operación de Applikon esta mantilla puede calentar hasta una
temperatura de 80°C y consumir 178 W de energía aproximadamente; lo que significa una gran
transferencia de calor.
Según Matthews, (2008) los sistemas más económicos para transferencia de calor son las mantillas
o intercambiadores internos mientras que los más caros suelen ser las chaquetas exteriores,
además estas últimas solo son útiles a temperaturas mayores a los 70°C. Finalmente, en los casos
en que se utilice la matilla será un menor consumo de energía, pero deberá anticiparse el tiempo
que requerirá llegar a la temperatura deseada para el bioproceso.
Este control tiene una acción derivativa lo que lo convierte en un parámetro preventivo, debido que
predice el error y emplea una acción oportuna para corregirlo. Dicha acción, reacciona a la rapidez
de entrada y altera la señal de salida, por lo cual actúa ante la velocidad del cambio del error y lo
corrige antes de que el error incremente
Agitación
MONITOREO Motor de agitación
ESQUEMA
También existen dos tipos de acopladores del motor uno es con sello en forma de labios y el otro
es magnéticamente. El siguiente recuadro representa sus principales características.
Aireación / Oxígeno
ESQUEMA
O
X C
I
G
E
N
O
A) Módulo de selección del gas
D B) Ejemplo de conexión de la salida de gases de la consola al difusor de entrada de
I aire.
S NOTAS C)Rotámetro con una válvula antirretorno en la salida del gas que evita que las
U diferencias de presión causen reflujo a través el rotámetro.
E El sensor polarográfico debe de estar conectado mínimo 6 horas antes de realizar
L medición
Nivel
El biorreactor de 7 litros marca Applikon utiliza sensores marca AppliSens, los cuales pueden medir
distintas propiedades, entre ellas el nivel del fluido contenido en el biorreactor. De acuerdo con
Applikon Biotechnology (2008) se sabe que el actuador para nivel es el mismo que actúa para
controlar el nivel de espuma y suministrar antiespumante para evitar derrame de sustancias
presentes dentro del reactor. De esta forma, a continuación, se muestran las características y
funcionamiento de dicho actuador.
Nivel / Antiespumante
Tipo: Señal Encendido/Apagado
MONITOREO Sensibilidad: Firmware seleccionable:
- Alto: Conductividad ≥ 26 µS significa “Contacto”
- Bajo: Conductividad ≥ 200 µS significa “Contacto”
CONTROL El actuador para el controlador de nivel / antiespumante es ya sea apagado (AO = 0 %)
o encendido (AO = 100 %). En la mayoría de los casos, la situación deseada es “Sin
contacto”. Cuando el estado "Sin contacto" cambia a "Contacto", primero transcurre un
"tiempo muerto" después de que el actuador está encendido durante el intervalo de
“Tiempo de pulso”. Esta secuencia se repite hasta que el estado cambia a "No contacto”
de nuevo.
Los valores de tiempo muerto y tiempo de pulso se pueden editar usando la opción de
menú > Tiempo de control de nivel. La función del sensor de nivel (discriminación entre
“sin contacto” y “contacto”) se puede seleccionar “calibrando” el sensor de nivel.
Intervalos del actuador de
Nivel/Antiespumante
ESQUEMA
N
I
V
E
L NOTAS Conductividad [=] μSiemens
pH
Sensor de pH dentro de la escala de 0-14.
MONITOREO
Este cuenta con un rango de precisión de ± 0.01
Se establece un valor deseado (setpoint) así como los límites superior e inferior. El
sensor manda una señal analógica a la consola, la cual analiza los datos y si es
necesario hacer una modificación al valor se agregan soluciones concentradas de ácido
CONTROL o base, de forma que el valor llegue al setpoint.
El ingreso de las soluciones es por medio de activación de bombas peristálticas que se
activan cuando se da la señal, y se apagan cuando el sensor obtiene la lectura
deseada.
PH
ESQUEMA
La señal del pH se mide de manera constante de forma que al medir un valor fuera del
NOTAS rango se pueda corregir lo más rápido posible
La calibración es rápida y sencilla.
Existen diferentes tipos de medidores de pH, según el fabricante (Applikon, 2008) el sensor de pH
que se usa en el reactor que con el que se cuenta en el laboratorio es del z001032551, el cual tiene
un diámetro de 12mm. Este tiene la característica que puede ser autoclavable, lo que facilita la
reducción de posibles contaminaciones en el proceso.
Figura 18. Gráfico del controlador en la medición de pH.
Aireación / Oxígeno
Si la medición se realiza bajo condiciones estériles, el sistema debe ser calibrado después de
la esterilización ya que la esterilización puede alterar al sensor.
Después del enfriamiento, el fermentador debe airearse durante tiempo suficiente para
alcanzar una presión de oxígeno constante, permitir que la señal se estabilice y la lectura del
amplificador ajustado al valor deseado (por ejemplo, 100 % saturación de aire, 20,9%
saturación de oxígeno o 9,17 miligramos O2/L agua pura a 20°C y 760 mmHg).
Nota: En caso de sistemas esterilizables en autoclave, se debe quitar el cable del electrodo
antes de la esterilización; cubrir el electrodo conector con algodón o con papel esterilizable
(aluminio). El sensor debe ser conectado al amplificador inmediatamente después de la
esterilización para polarizarlo; es recomendado para polarizar el electrodo durante al menos
varias (6) horas antes de la calibración. Preferentemente la calibración debe tomar lugar
justo antes de la inoculación (cuanto más tiempo período de polarización, mayor será la
precisión de la medición).
Homogeneizar el medio removiendo durante la calibración para evitar un gradiente de
difusión.
Una calibración de "un punto" normalmente es suficiente para habilitar mediciones precisas
en todo el rango entre 0 y 100% dO2 (a 0% dO 2 el sensor polarizado sistema no genera
corriente). De todos modos, eso es una buena práctica verificar la señal medida al 0% dO2.
Retire todo el oxígeno del medio con gas N 2 puro (99,98%) y siga la lectura del sensor hasta
que está estabilizado. En caso de que la lectura final sea > 0,5% de aire saturación, el sensor
necesita mantenimiento.
El sensor debe esterilizarse antes de la calibración para evitar errores de medición. Después
de la primera esterilización, nuevos módulos de membrana pueden mostrar una alteración de
la pendiente de algún porcentaje de la señal de medición; después de una segunda
esterilización sólo se observará una fracción de la primera alteración.
pH
El sensor de pH tiene un diafragma fijo y reduce la influencia del medio de cultivo en la medición de
pH; la operación del electrodo se basa en el principio de que un voltaje es generado cuando dos
líquidos de diferente pH entran en contacto en lados opuestos a través de una membrana de vidrio
delgado.
Al estar en contacto con sustancias de diferentes valores de pH, para tener una lectura más exacta
de la variable es necesario calibrar constantemente el sensor. Esto se hace por medio de
soluciones con valores de pH específicos (4.0, 7.0 10.0) con los cuales podemos realizar este
proceso (Hanna, 2022). El proceso de calibración se puede hacer con uno o dos puntos,
preferentemente usando el rango más cercano al valor con el que se va a trabajar (IME, 2021).
Cuando se utiliza un solo punto para calibrar, se comprueba que la lectura del sensor sea lo más
cercana o igual a la solución que se está utilizando; en caso de que no lo sea en la consola se va a
registrar el voltaje leído como el parámetro para ese pH.
Las calibraciones de dos puntos pueden ser desde el pH 4-7 o 7-10. En este caso el proceso se
repite, pero se comparan las mediciones de voltaje desde dos puntos distintos; de forma que el
sensor pueda ajustar de mejor manera los valores y relacionarlos con la escala de pH. No se
recomienda hacer una calibración de 4-10 debido a que el rango es muy amplio y la calibración
podría ser no tan exacta como esperamos.
Al momento de hacer las mediciones para la calibración es necesario que la solución cubra
totalmente el electrodo de medición, para asegurar esto generalmente se sumerge el sensor un
poco más arriba del electrodo, tal como se muestra en la imagen. De igual forma si se va a calibrar
con dos puntos, es necesario que entre cada una de las mediciones en un recipiente aparte se
limpie el sensor con agua destilada o alguna otra solución de pH neutro.
Figura 19. Descripción gráfica de cómo hacer la medición para la calibración del sensor de pH.
Es importante que para mantener una lectura adecuada de nuestro sensor tengamos los cuidados
adecuados con el mismo, los sensores de pH necesitan que se calibren de manera constante; se
limpie el electrodo con una solución de pH neutro (puede usarse agua destilada); así como que
tenga la cantidad necesaria de electrolito. Si se mantienen estas características de forma constante
vamos a poder prolongar la vida del sensor (Hanna, 2022).
Conclusión
Se puede concluir que el sistema del ez-contoller y sensores nos ofrecen un mejor control sobre las
variables involucradas en el proceso de fermentación, principalmente temperatura, velocidad de
agitación, pH y oxígeno disuelto; gracias al circuito de lazo cerrado y el controlador PID. De esta
forma la operación es más sencilla y práctica que si se hiciera de forma manual, haciendo más
eficaz y asegurando los requerimientos de un sistema fermentativo.
Referencias
Flores Morocho, D. A., & Trujillo Toledo, L. E. Diseño de un bioproceso industrial a partir de
la comparación de los efectos de dos especies de levaduras en la fermentación de vino de
borojó (Borojoa patinoi).
HANNA (2022) Soluciones para calibración de pH. HANNA Instruments
https://hannainst.com.mx/soluciones-ph/
IME (2021) Funcionamiento y cuidados del medidor de pH. Ingeniería y Metrología
Certificada para Calibración de Equipos de Control y Pruebas.
https://calibracionesime.com.mx/funcionamiento-y-cuidados-del-medidor-de-ph/
Matthews, G. (2008). Fermentation Equipment Selection: Laboratory Scale Bioreactor
Design Considerations. En McNeil, B. y Harvey L. (Eds) Practical Fermentation Technology.
Wiley & Sons.