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MAOI - Tesis - Titulo - Imprimir 2021
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TESIS
INGENIERO QUÍMICO
PRESENTADO POR
ASESORES:
IQUITOS, PERÚ
2021
ii
JURADOS YiiiASESORES
DEDICATORIA
iv
AGRADECIMIENTOS
A Dios Jehová por la vida que me dio en este mundo y tener una hermosa familia
a mi lado.
Al Dr. Gabriel Emilio Vargas Arana, por formar parte de su equipo de trabajo
durante el desarrollo del proyecto.
Al Dr. Wilfredo Ruiz Mesías y la Ing. Leonor Arévalo Encinas por su apoyo y
asesoramiento durante el desarrollo de la tesis.
Y a todas las personas que de una forma a otra me ayudaron a culminar mi tesis.
A TODOS ELLOS
MI ETERNA GRATITUD
v
ÍNDICE GENERAL
PORTADA i
ACTA DE SUSTENTACIÓN ii
DEDICATORIA iv
AGRADECIMIENTO v
ÍNDICE GENERAL vi
ÍNDICE DE FIGURAS x
RESUMEN xiv
ABSTRACT xv
INTRODUCCIÓN 1
CAPITULO I: MARCO TEÓRICO 3
1.1 Antecedentes 3
1.1.1 antecedente local 3
1.1.2 Antecedente nacional 3
1.1.3 Antecedente internacional 5
1.2 Bases teóricas 6
1.2.1 Los cinco tipos de cocona, con gran diferencia morfológica 6
1.2.2 Taxonomía 6
1.2.3 Morfología de la planta 7
1.2.4 Fruto 8
1.2.5 Usos 10
vi
1.3 Definiciones de términos básicos 10
1.3.1 Actividad del agua y estabilidad de los alimentos 10
1.3.2 Humedad 11
1.3.3 Cenizas 11
1.3.4 Lípidos 12
1.3.5 Proteínas 13
1.3.6 Fibra 14
1.3.7 Carbohidratos 14
1.3.8 Minerales 15
CAPÍTULO II: OBJETIVOS, HIPÓTESIS Y VARIABLES 17
2.1 Objetivos 17
2.1.1 General 17
2.1.2 Especifico 17
2.2 Formulación de la hipótesis 17
2.2.1 General 17
2.2.2 Especifico 17
2.3 Variables y su Operacionalización 17
2.3.1 Variable independiente 17
2.3.2 Variable dependiente 18
CAPÍTULO III: METODOLOGÍA 19
3.1 Tipo y diseño 19
3.2 Diseño muestral 19
3.3 Procedimiento de recolección de datos 19
3.3.1 Lugar de colecta 19
3.3.2 Obtención y acondicionamiento del endospermo 19
3.3.3 Materiales y/o reactivos, instrumentos y equipos 20
3.3.3.1 Materiales 20
3.3.3.2 Reactivos 20
vii
3.3.3.3 Instrumentos 20
3.3.3.4 Equipos 21
3.3.4 Metodología 21
3.3.4.1 Determinación de Humedad y Materia Volátil 22
3.3.4.2 Determinación de Ceniza 23
3.3.4.3 Determinación de Lípidos 23
3.3.4.4 Determinación de proteína 24
3.3.4.5 Determinación de Fibra 26
3.3.4.6 Determinación de minerales 27
CAPÍTULO IV: RESULTADO 29
CAPÍTULO V: DISCUSIÓN 30
CAPÍTULO VI: CONCLUSIONES 32
CAPÍTULO VII: RECOMENDACIONES 34
CAPÍTULO VIII: FUENTES DE INFORMACIÓN 35
ANEXOS 38
1. Estadística complementaria
2. Instrumento de recolección de datos
3. Consentimiento informado
viii
INDICE DE SIGLAS Y SÍMBOLOS
mL: Mililitros
g : Gramos
N: Normalidad
cc.: Concentrado
min : Minuto
mm : Milimetro
µL : Microlitro
µg : Microgramo
ix
INDICE DE FIGURAS
Pág.
FIGURA N° 08: Vista frontal de los cinco (5) tipos de cocona (CD1, SRN9, NMA1,
CTR, UNT2), de izquierda a derecha 43
x
FIGURA N° 19: Corte longitudinal de los cinco tipos de cocona “Solanum
sessiflorum Dunal”, de izquierda a derecha (CD1, SRN9, NMA1, CTR y UNT2)45
xi
INDICE DE TABLAS
Pag.
Tabla N° 03: Análisis bromatológico en 100 g de pulpa fresca de los cinco tipos
de cocona “Solanum sessiflorum Dunal” 29
xii
ÍNDICE DE ANEXOS
xiii
RESUMEN
De acuerdo a los resultados del análisis bromatológico, los cinco tipos de cocona
contienen valores de proteína interesantes que varían entre 0,88-2,52%, siendo la
cocona SRN9 la de mayor valor; con respecto a la fibra los resultados varían entre
0,76-5,03%, siendo la de mayor valor la cocona CD1; en cuanto a los
carbohidratos los valores varían entre 3,14-4,19%, siendo la más representativa la
cocona SRN9. Por otra parte, con respecto al análisis de micro nutrientes la
cocona CD1 muestra alto contenido de potasio (2382,2 µg/100g MF), sodio (240
µg/100g MF), y calcio (70,1 µg/100g MF); mientras que la cocona NMA1 muestra
alto contenido de hierro (71,2 µg/100g MF). Con este estudio de investigación se
da a conocer el potencial que tienen los cinco tipos de cocona como
fuente/recurso para la elaboración de productos funcionales.
xiv
ABSTRACT
The bromatological analysis was performed on the fresh pulps of the five types of
cocona, using validated methodologies, such as moisture (AOCS Ac 2-41), ash
(AOCS Ba 5a-49), lipids (AOCS Ba 3-38), proteins ( AOCS Ac 4-91), fiber (ISO
6865-2000) and carbohydrates for the difference of 100% minus the total sum of
moisture, ash, lipids, protein and fiber. The micronutrient mineral content was
determined by atomic absorption spectrophotometry.
According to the results of the bromatological analysis, the five types of cocona
contain interesting protein values that vary between 0.88-2.52%, being the cocona
SRN9 the one with the highest value; With respect to fiber, the results vary
between 0.76-5.03%, the CD1 cocona being the highest value; Regarding
carbohydrates, the values vary between 3.14-4.19%, the most representative
being the cocona SRN9. On the other hand, with respect to the analysis of
micronutrients, Cocona CD1 shows a high content of potassium (2382.2 µg / 100g
MF), sodium (240 µg / 100g MF), and calcium (70.1 µg / 100g MF); while the
NMA1 cocona shows high iron content (71.2 µg / 100g MF). This research study
reveals the potential of the five types of cocona as a source / resource for the
elaboration of functional products.
xv
INTRODUCCIÓN
2
CAPÍTULO I
MARCO TEÓRICO
1.1 Antecedentes
En el año 2007, en Nicargua, se publicó una guía que forma parte del proyecto
Red SICTA en conjunto con otras organización publicaron “Cultivos de
diversificación para pequeños productores de frijol y maíz en américa central-
Naranjilla (lulo) y cocona. Managua-Nicaragua”, donde buscaron informar y
apoyar a cualquier productor o institución que pretenda desarrollar una línea de
producción, para esto se evaluó la composición química promedio en 100 g de
pulpa cocona, reportando el siguiente resultado: Humedad 88,5 g, Calor
energético 41,0 cal, Proteínas 0,9 g, Fibra 9,2 g, Cenizas 0,7 g, Calcio 16,0 mg,
Fósforo 30,0 mg, Hierro 1,5 mg y con vitaminas abarca: caroteno 0,18 mg,
Tiamina 0,06 mg, Riboflavina 0,10 mg, Niacina 2,25 mg, Ac. Ascórbico 4,50 mg
(IICA).
5
1.2 Bases teóricas
1.2.2 Taxonomia
Características taxonómicas
División spermathophytae
Subdivisión Asteridae
Tribu Solaneae
Subfamilia Solanoideae
Familia Solanaceae
Sección Lasiocarpa
Subgénero Leptostemonumn
Género Solanum
Especie Sessiflorum
Nombres Cocona, Cubio, Topiro, Orinoco Aplle,
comunes Peach tomato
6
1.2.3 Morfología de la planta
7
Figura 2. Plantación de la cocona tipo SRN9.
1.2.4 Fruto
Los frutos son bayas de forma variable desde esferoide, amarañonado, cilíndrico,
ovalada, oblata, redondeada, hasta cilíndrica - cónica; el tamaño y peso varía de
acuerdo al ecotipo (Balcazar y Carbajal, 2011).
Los frutos maduros son de color amarillo pálido, anaranjado manchado o rojo; la
pulpa es acuosa, con una firmeza intermedia y blanda de color amarillo a amarillo
blancuzco, de agradable aroma, ligeramente ácida.
8
El epicarpio es una capa delgada lisa, suave y cubierta según variedad por
pubescencia fina purulenta, que presenta coloraciones diferentes a la madurez,
con maduración uniforme y algunas veces pobre. Las cavidades de las semillas
presentan una forma irregular en algunos ecotipos mientras que en otros en
forma regular y redonda. Los frutos presentan longitudes entre 52,18 mm. y 83,97
mm. y su diámetro de 49,94 mm. a 77,85 mm; el número de lóbulos de 4 a 5, el
grosor de pulpa oscila entre 4,94 mm. y 12,12 mm. el peso de la pulpa en los
frutos presenta rangos entre 33,60 g. y 184,73 g (Balcazar y Carbajal, 2011).
Manifiesta que el fruto varía desde casi esférico u ovoide hasta ovalado, con 4 a
12 cm de ancho, 3 a 6 cm de largo y 24 a 250 g de peso. El color de la baya
puede ser desde amarillo hasta rojizo; los frutos de color amarillo normalmente
están cubierto de pubescencia blanduzca, fina y suelta, dicha pubescencia es
mucho menos notoria en el ecotipo de color rojizo. La cascara es suave y rodea
la pulpa o mesocarpio grueso, amarillo y acuoso. Las cuatro celdas que lo
componen están llenas envueltas en mucilago claro, similares a las del tomate. El
fruto posee una fragancia y sabor especial (ligeramente acido, sin dulce)
(Villachica, 1996).
El fruto de la cocona puede pesar entre 20 y 450 gramos y contener entre 200 y
500 semillas glabras, ovaladas y aplanadas (1000 semillas pesan entre 0,8 y 1,2
g). Los frutos son muy variables en su 60 forma. Los frutos de forma cilíndrica
tienen, en general, 4 lóculos y los cordiformes, redondos y aplanados de 6 a 8,
aunque puede haber variación en el número de lóculos en frutos de una misma
planta. El fruto es verde cuando no está maduro, amarillo-anaranjado cuando
está maduro y finalmente café-rojizo cuando ya no es apto para el consumo
humano. Los frutos generalmente están cubiertos de pelos cortos y quebradizos
que son fácilmente removidos al restregarlos con las manos. Su piel es
resistente, de gusto amargo. La pulpa es amarilla clara a crema amarillenta,
midiendo entre 0,2 a 2,5 cm de espesor (Silva Filho et al., 1998).
9
1.2.5 Usos
1
𝑎𝑎 =
1 + 0,0097∆°𝑇
Dónde:
1.3.2 Humedad
1.3.3 Cenizas
11
1.3.4 Lípidos
Las principales funciones de los lípidos son como fuente de energía importante
por la beta-oxidación; vehículo de vitaminas liposolubles; son ácidos grasos
indispensables, linoleico y linolénico; promueven la síntesis de miscelas y de bilis,
facilitan la absorción de las vitaminas liposolubles (Badui, 2006).
12
3. Vitaminas liposolubles.
4. Esteroles.
5. Hidrocarburos.
1.3.5 Proteínas
Las proteínas son uno de los componentes vitales del organismo. Lo mismo que
los hidratos de carbono y los lípidos, se componen de carbono, hidrógeno y
oxígeno, pero se diferencian por su contenido en nitrógeno (16 %), que es lo que
permite asumir distintas estructuras y con ello múltiples funciones fundamentales
para el desarrollo de la vida (Vasquez y García, 2005).
13
1.3.6 Fibra
1.3.7 Carbohidratos
Los monosacáridos (azúcares sencillos), son azúcares formados por una sola
molécula; por ejemplo, la fructosa o azúcar de las frutas y la glucosa o azúcar
de la sangre (Uribe, 2016).
14
D-Galactosa D-Glucosa D-Manosa
16
CAPÍTULO II
2.1 Objetivos
2.1.1 General
Se realizó la caracterización química de cinco tipos de cocona “Solanum
sessiliflorum Dunal” procedentes del Banco de germoplasma del IIAP.
2.1.2 Específicos
Se realizó el análisis bromatológico de cinco tipos de cocona “Solanum
sessiliflorum Dunal” procedentes del banco de germoplasma del IIAP.
Se determinó el contenido de minerales (micro nutrientes) de cinco tipos de
cocona “Solanum sessiliflorum Dunal” procedentes del banco de germoplasma
del IIAP”.
2.2.1 General
2.2.2 Especifico
La pulpa del fruto de los cinco tipos de cocona “Solanum sessiliflorum Dunal”.
17
El análisis bromatológico de la pulpa de los cinco tipos de cocona “Solanum
sessiliflorum Dunal”.
18
CAPÍTULO III
METODOLOGÍA
Los cinco (5) tipos de frutos de cocona (CD1, SRN9, NMA1, CTR y UNT2)
“Solanum sessiliflorum Dunal”, se colectaron en el Centro de Investigación y
producción de Tulumayo de la Universidad Nacional Agraria de la Selva, en el
marco del convenio IIAP-UNAS, Santa Lucía, a 25 km. de la carretera marginal
Tingo María – Aucayacu, distrito de Rupa Rupa, Provincia de Leoncio Prado,
Departamento de Huánuco que presenta una altitud de 565 msnm.
Los cinco tipos de cocona CD1, SRN9, NMA1, CTR y UNT2 llegaron en óptimas
condiciones para ser procesadas y trabajadas, no teniendo la necesidad de
acondicionarla; no obstante, se procedió a seleccionar, pelar con cuchillo de
19
acero, licuó y se vertió en doble bolsa y se cerró herméticamente, finalmente
guardados en congelación para futuras pruebas.
3.3.3.1 Materiales
3.3.3.2 Reactivos
3.3.3.3 Instrumentos
3.3.4 Metodología
21
Lo datos se trataron a través de dos (2) fórmulas para la determinación de los
resultados finales de cada análisis. Estas fórmulas utilizadas son:
1. Promedio
∑𝑁
𝐼=1(𝑥𝑖 − Ẍ)
2
𝑆=√
𝑁−1
Este método determina la humedad y cualquier material que sea volátil bajo las
mismas condiciones de prueba.
Procedimiento
Cálculo:
masa de la muestra seca en gramos
% Humedad y materia volátil = 𝑥 100
masa de la muestra fresca en gramos
22
3.3.4.2 Determinación de Ceniza (Método AOCS Ba 5a-49)
Procedimiento
Procedimiento.
Se pesó y envolvió 5 g de muestra seca (se usa para que no interfiera el agua en
el proceso de extracción) en un papel filtro lento (2,5 𝝁m de diámetro), se colocó
las muestras selladas en las cámaras de extracción y se ensamblo el equipo.
Luego se depositó 25 mL de éter de petróleo en la cámara de extracción y se
dejó remojar la muestra aproximadamente 1 hora, después se añadió lentamente
un exceso de 25 mL a la cámara de extracción de tal manera que se produzca
el sifoneo y que la muestra quede sumergida en el solvente. Seguidamente se
calentó en una cocina eléctrica de modo que el solvente gotee desde el
condensador sobre el centro del cartucho. Se continuó la extracción por 3 horas,
se deja enfriar a temperatura ambiente y se concentró en el rotavapor. Finalmente
se secó y pesó los balones para determinar la cantidad de aceite por diferencia de
23
peso.
Calculo
Procedimiento
Se llevó a cabo una prueba en blanco con sacarosa con todos los reactivos en
las mismas condiciones. Seguidamente se pesó en papel mantequilla 0,0033 g
de sulfato de cobre (aumenta la eficiencia de la reacción) + 0,2 g de dióxido de
titanio (reduce las salpicaduras) + 0,2 g de muestra fresca (se utiliza muestra
fresca porque elimina el contenido de aceite y agua; Además queda cualquier otro
compuesto que contenga nitrógeno, porque queda en el balón/tubo de Kjeldahl,
obteniéndose un mejor rendimiento de proteína) + 5,57 g de sulfato de potasio
(aumenta el punto de ebullición del H2 SO4 ); se envolvió cuidadosamente y se
colocó en los tubos Kjeldahl. Luego se añadió 10 mL de Ac. Sulfúrico
24
concentrado en el tubo de Kjeldahl, se colocó los tubos y se programa en el
digestor por 2 horas 30 minutos, conjuntamente con el equipo de neutralización.
Al finalizar se dejó enfriar por 30 minutos. Enseguida se prendió y estabilizó el
destilador y se programó con las siguientes condiciones:
Tabla N° 02. Parámetros del equipo destilador de Kjendhal.
Calculo
[(MA x 2 x mLA) − (mLBK x MB) − (mLB x MB)] x 14,0067
% Nitrogeno = 𝑥100
mg de muestra fresca
Donde:
26
Para el cálculo del contenido de Fibra presente en la muestra (Anexo 6.5) se
utilizó la siguiente expresión:
Cálculo
(masa crisol + muestra seca ) − (masa crisol + ceniza)
% Fibra = 𝑥 100
masa de muestra desengrasada (g)
Se empleó el crisol con ceniza del ítem 3.3.4.2 (los procedimientos se aplicaron
por separado para 6 crisoles con muestra). Luego se agregó 2 mL de HNO3 a
cada uno de las muestras, se colocan en una plancha de calentamiento hasta
sequedad. Seguidamente se colocaron a la mufla a 600 °C hasta que quedaron
blancas, los crisoles se colocan en el desecador, se enfrió a temperatura
ambiente y se pesan, a los crisoles se agrega 15 mL de HCl 6N a cada uno y se
calentaron hasta sequedad. Una vez seco se agregó 15 mL de HCl 3N y se
calentaron hasta su primer hervor, luego se dejó enfriar. Después se filtró en una
fiola de 100 mL (cada muestra) empleando filtro de membrana (18,5 cm de
diámetro) y bomba de vacío, antes de colocar la muestra se colocó agua millipore
(ultrapura) seguido de la muestra así se evitó que el filtro se queme. Luego a los
residuos que quedó en el crisol se le agregó 10 mL de HCl 3N y se calentó hasta
su primer hervor, se enfrió y filtró (18,5 cm de diámetro). A continuación, se
enjuagó con agua millipore al residuo que quedó en el crisol y se filtró. Después
se enrazó hasta un volumen de 100 mL con agua millipore a tres fiolas, a las
otras tres fiolas se les agrego 5 mL de cloruro de lantano al 10% y se les enrazó
con agua millipore. Posteriormente se preparó las soluciones patrones para cada
elemento con sus concentraciones respectivas: Ca (0.5, 1, 3, 5) ppm; K (1, 3, 5)
ppm; Mn (0.5, 1, 2) ppm; Na (0.5, 1, 2) ppm; Zn (0.2, 0.4, 0.8) ppm; Cu (50, 100,
200) ppm; Fe (1, 3, 5) ppm; Mg (0.5, 1, 3, 5) ppm (Las soluciones patrones
cubrieron el rango de concentración esperado de la muestra para su
27
determinación de cada elemento químico). Seguidamente se colocó el quemador
de acuerdo a la lámpara a utilizar: para Ca se usó un quemador de flujo laminar
con una llama Aire - Acetileno - óxido nitroso, mientras que, para Cu, K, Mg, Mn,
Na, Zn y Fe se utilizó un quemador de flujo laminar Acetileno con una llama de
Aire - Acetileno. Se eligió la lámpara a usar de acuerdo al elemento a determinar
y se dejó calentar por un mínimo de 15 minutos. Mientras tanto se alineo el
equipo.
A continuación, se encendió la llama y reguló el flujo del acetileno y del oxidante.
Se aspiró un blanco cero consistente en agua con ácido en la misma
concentración de las muestras y de las series estándares (HCl 3N). Se Ajustó el
cero de instrumento. Luego se aspiró la solución estándar y ajustó la velocidad
de aspiración del nebulizador hasta obtener la máxima respuesta. Se Ajustó el
mechero, vertical y horizontalmente, hasta obtener la máxima respuesta. Por
consiguiente, se aspiró el blanco cero nuevamente y reajustó al cero. Se aspiró
una solución estándar de concentración cercana al medio del rango. Se calibró el
instrumento con la serie de soluciones estándares para cada elemento,
empezando por el estándar menor y terminando con el estándar más alto. Y
finalmente se aspiró y registró la absorbancia o la concentración del elemento en
las muestras. Al finalizar el análisis, se aspiró el blanco cero, se cerró primero la
válvula de los gases y luego la del aire dejando enfriar el quemador.
Cálculos
mg (𝑎 − 𝑏)𝑥 𝑑 𝑥 𝑣
M( )=
L 𝑚
Donde:
28
CAPÍTULO IV
RESULTADOS
Tabla N° 03. Análisis bromatológico en 100 g de pulpa fresca de los cinco tipos de
cocona “Solanum sessiflorum Dunal”.
CD1 86,64 ± 0,36 1,28 ± 0,00 0,85 ± 0,00 1,84 ± 0,03 5,03 ± 0,15 3,84
SRN9 86,67 ± 0,26 0,95 ± 0,01 0,91 ± 0,01 2,52 ± 0,08 4,76 ± 0,18 4,19
NMA1 91,85 ± 0,09 0,76 ± 0,01 0,65 ± 0,00 1,07 ± 0,19 1,68 ± 0,19 3,99
CTR 92,82 ± 0,03 0,75 ± 0,00 0,46 ± 0,01 0,88 ± 0,39 1,00 ± 0,08 4,09
UNT2 93,56 ± 0,03 0,78 ± 0,00 0,18 ± 0,00 1,58 ± 0,14 0,76 ± 0,00 3,14
Resultados del análisis bromatológico obtenidos en g/100g MF de pulpa
Muestra µg/100 g pulpa µg/100 g pulpa µg/100 g pulpa µg/100 g pulpa µg/100 g pulpa
fresca - CD1 fresca - SRN9 fresca - NMA1 fresca - CTR fresca - UNT2
Potasio 2382,2 2004,9 846,5 638,1 570
Sodio 240 < 0,5 1474 < 0,5 177
Calcio 70,1 58,1 28,63 17,9 41,53
Magnesio 164,9 91,9 42,5 38.6 41,5
Zinc 67,3 46 26,2 17,9 18,8
Cobre 41,2 14,9 12,3 11,4 10,4
Manganeso 34,4 9,5 8,2 7,9 8,4
Hierro 70,1 58,1 71,2 40,7 51,9
29
CAPÍTULO V
DISCUSIÓN
Se observa que tres tipos de cocona tienen alto contenido de humedad (NMA1 =
91,85; CTR = 92,82; UNT2 = 93,56), lo cual manifiesta que son unos frutos
hidratantes en comparación con los otros dos tipos de cocona; estos resultados
son similares a los obtenidos por Carbajal y Balcazar (1998), Gonzales, (2001),
Villachica, (1996) y Contreras et al., (2018). Esto significa que los frutos en
mención pueden ser utilizado como un fruto hidratante.
Las coconas tipo NMA1 y SRN9 tienen mayor contenido en proteína, que varían
de 1,08 % a 2,72 %, en comparación con los resultados obtenidos por otros
investigadores como Carbajal y Balcázar (2004) (Proteína: 0,67 %) y Gonzales
(2001) (Proteína: 0,9 %). Esto significa que presenta buen potencial nutricional
para la elaboración de un producto funcional.
30
La determinación de fibra oscila entre 0,77 % y 5,45 %, siendo el CD1 y SRN9 los
que tienen mayor contenido de fibra, con respecto a los otros tres tipos de
cocona. Los resultados obtenidos para los cinco (5) tipos de cocona son mayores
a los reportados por Gonzales, (2001) y Villachica, (1996).
31
CAPITULO VI
CONCLUSIONES
II. La cocona CD1 tiene alto contenido en ceniza, esto tiene significado en la
totalidad de los minerales que presenta, manifestando buena calidad en
mineral en el fruto, según los resultados del análisis de minerales obtenidos.
También tiene alto contenido en fibra, lo cual, su consumo de ésta reduce el
estreñimiento y diarrea, previniendo de esta manera cualquier enfermedad
colorrectal y cardiovascular (Álvarez, 2006).
III. La cocona SRN9 tiene alto contenido de lípidos, lo cual, manifiesta que el
fruto puede emplearse como ungüento en las heridas provocadas por
quemaduras (Abanto, 2006), como también puede utilizarse para que el
cabello tenga un mejor brillo (Grandez et al., 2005). Ademas tiene alto
32
contenido de proteína, esto significa que es una alternativa para la formación
y regeneración de los tejidos, permitiendo tener un mejor funcionamiento en
nuestro sistema muscular esquelético. También tiene alto contenido de
carbohidratos, lo cual, es una alternativa para adquirir energía en formar
almidones y azucares.
IV. Por otra parte, los resultados de los minerales muestran que la cocona CD1
tiene alto contenido de potasio, sodio y calcio, siendo una alternativa de su
consumo, para prevenir o contrarrestar los síntomas de la hipocalemia (falta
de potasio) incluyen estreñimiento, cansancio, debilidad muscular e
indisposición (National Institutes of Health Office Of Dietary , 2019), o
síntomas de Hiponatremia (falta de sodio) incluye náuseas y vómitos, dolor de
cabeza desorientación, pérdida de energía, somnolencia y cansancio,
agitación e irritabilidad, debilidad, espasmos o calambre musculares,
convulsiones y hasta puede llegar a coma (MAYOCLINC, 2018). Además, el
calcio es bueno para los huesos y dientes durante el periodo prenatal en
concentraciones recomendadas, así mismo para el sistema muscular,
nervioso y circulatorio (National Institute of Health Office of Dietary, 2019).
V. La cocona NMA1 contiene alto contenido de Hierro, siendo ésta cocona muy
buena para combatir la anemia de origen hematológico.
33
CAPÍTULO VII
RECOMENDACIONES
34
CAPÍTULO VIII: FUENTES DE INFORMACIÓN
Balcazar, L., & Carbajal, C. (2011). Cultivo de Cocona. Lima, Perú: -Instituto de Investigación de la
Amazonia Peruana- Programa Biodiversidad).
Belitz, H. G. (2009). Chemical food.4th revised and extended. Berlin Heidelberg: Edition.Springer-
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Carbajal, C., & Balcazar, L. (1998). Cultivo de Cocona. Tingo María-Perú: Instituto de Investigación
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Carrera, C., & Guevara , P. (2012). Estudio de Pre-factibilidad para la deshidratación de cocona,
Solanum sessiflorum Dunal. Lima: Universidad Nacional de Ingeniería.
Contreras Gutiérrez, N., Ramírez Trujillo, Y., & Follegatti Romero, L. (2018). Estudio de los
parámetros cinéticos en los cambios de color en pulpa de cocona (Solanum sessiflorum)
durante el tratamiento térmico. Agroindustrial Science, 8(2), 111-116.
D´arcy, W. G. (1973). Flora of Panama: Fam. Solanaceae. Annals of the Missouri Botical Garden,
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Anuales del II Simposio Latino Americano de Ciencias de Alimentos.
37
ANEXOS
Anexo 1.1. Cálculo para el análisis de humedad de los cinco tipos de cocona
Solanum sessiflorum Dunal.
Masa Masa
Crisol+ Muestra
Muestras muestra crisol % HUMEDAD PROMEDIO D.S
muestra (g) seca (g)
fresca (g) vacío (g)
10,0028−1,3743
1. 𝑥1 = % 𝐻1 = 𝑥 100 = 86,2608 %
10,0028
10,0004−1,3024
2. 𝑥2 = % 𝐻2 = 𝑥 100 = 86,9765 %
10,0004
10,0026−1,3313
3. 𝑥3 = % 𝐻3 = 𝑥 100 = 86,6905 %
10,0026
86,2608+86,9765+86,6905
= = 86,6424 % 𝑑𝑒 𝐻𝑢𝑚𝑒𝑑𝑎𝑑
3
38
Anexo 1.2. Cálculo para el análisis de cenizas de los cinco tipos de cocona
Solanum sessiliflorum Dunal.
Masa Masa
Crisol+ Muestra
Muestras muestra crisol % CENIZA PROMEDIO D.S
muestra (g) seca (g)
fresca (g) vacío (g)
2,0027−0,0257
4. 𝑥1 = %C1 = 𝑥 100 = 1,28 %
2,0027
2,0023−0,0255
5. 𝑥2 = %C2 = 𝑥 100 = 1,27 %
2,0023
2,0013−0,0256
6. 𝑥3 = %C3 = 𝑥 100 = 1,28 %
2,0013
1,28+1,27+1,28
= = 1,28 % 𝑑𝑒 𝐶𝑒𝑛𝑖𝑧𝑎
3
39
Anexo 1.3. Cálculo para el análisis de aceites de los cinco tipos de cocona
Solanum sessiflorum Dunal.
0,3195 86,64
7. 𝑥1 = %A1 = 𝑥 100 = 6,39 % en ms → 6,39% (1 − ) → 0,88% en mf
5,0002 100
0,3180 86,64
8. 𝑥2 = %A2 = 𝑥 100 = 6,36 % en ms → 6,36% (1 − ) → 0,87% en mf
5,0004 100
0,3180 86,64
9. 𝑥3 = %A3 = 𝑥 100 = 6,36 % en ms → 6,36% (1 − ) → 0,87% en mf
5,0006 100
0,88+0,87+0,87
= = 0,88 % de Aceite
3
40
Anexo 1.4. Cálculo para el análisis de proteína cruda de los cinco tipos de
cocona Solanum sessiflorum Dunal.
100−86,26 100−6,37
𝑥1 = %P1 = 14,5819 % x ( )x ( ) = 1,88 % en mf
100 100
1,88+1,82+1,88
= = 1,84 % de proteína
3
41
Anexo 1.5. Cálculo para el análisis de Fibra cruda de los cinco tipos de
cocona Solanum sessiflorum Dunal.
% Fibra D.S
Masa Crisol +
Crisol vacío Crisol + Cruda en
Muestras muestra muestra Promedio
(g) Ceniza (g) muestra
fresca (g) seca (g)
fresca
41,5692−41,1869
13. %F1 = = 40,8179 % en ms y ds
0,9366
100−86,26 100−6,37
%F1 = 40,8179 % x ( )x ( ) = 5,11 % en mf
100 100
35,0110−34,6265
14. %F2 = = 41,0659 % en ms y ds
0,9363
100−86,26 100−6,37
%F2 = 41,0659 % x ( )x ( ) = 5,14 % en mf
100 100
36,5912−36,2274
15. %F3 = = 38,8426 % en ms y ds
0,9366
100−86,26 100−6,37
%F3 = 38,8426 % x ( )x ( ) = 4,86 % en mf
100 100
5,11+5,14+4,86
= = 5,03 % de fibra
3
42
Anexo 2. Instrumento de recolección de datos - Fotos de las coconas
“Solanum sessiliflorum Dunal”.
Figura 8. Vista frontal de los cinco (5) tipos de cocona (CD1, SRN9, NMA1, CTR,
UNT2), de izquierda a derecha.
44
Anexo 2.3. Corte de los cinco tipos de cocona “Solanum sessiflorum Dunal”.
45
Anexo 2.4. Equipos para el Análisis bromatológico de los cinco tipos de cocona
Solanum sessiliflorum Dunal.
46
Figura N° 23. El Equipo soxhlet para la determinación del rendimiento de aceite
47
Figura N° 25. Sala de Proteína (Digestor, neutralizador y destilador Kjendahl
automático)
48
Figura N° 27. Soluciones Estándares de Minerales.
49
Anexo 3. Consentimiento informado
50