SEMILLASforestales

CONVENIO
MINISTERIO DE AGRICULTURA Y DESARROLLO RURAL

CORPORACION NACIONAL DE INVESTIGACION Y FOMENTO
FORESTAL 126/98
Investigación en Semillas Forestales
Santafé de Bogotá, julio de 1999

INDICE
Pág.
INTRODUCCION 1
1. IMPORTANCIA DEL MATERIAL REPRODUCTIVO 2

SELECCIONADO
1.1 Semillas de procedencias selectas 3

1.2 Arboles semilleros 3
1.3 Semilla de ensayos de procedencia 3
1.4 Semilla de árboles elite 4
1.5 Semilla de fuentes semilleras 4
2. IMPACTO EN LA REFORESTACION DEL MATERIAL 5

REPRODUCTIVO DE CALIDAD CONOCIDA
3. METODOLOGIA PARA EL ESTABLECIMIENTO DE 6

FUENTES SEMILLERAS
3.1 Ganancias genéticas en el corto plazo 6

3.2 Ventajas de establecer fuentes semilleras 8
3.3 Aspectos básicos a tener en cuenta para la 9
identificación y selección de fuentes semilleras
3.4 Clasificación de Fuentes Semilleras 10
3.5 Metodología de evaluación y selección de 13
fuentes semilleras
4. MANEJO DE FUENTES SEMILLERAS 15
4.1 Demarcación 15
4.2 Protección 16
4.3 Control de Malezas 16
4.4 Raleos 16
4.5 Aislamiento 18
4.6 Fertilización 19
4.7 Conservación 19
5. AVANCES EN LA IDENTIFICACION, SELECCION 19

MANEJO Y REGISTRO DE FUENTES SEMILLERAS
EN COLOMBIA
Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR ii

Pág.
5.1 Identificación de especies prioritarias 20

5.2 Selección de Fuentes Semilleras 21
5.3 Registro de fuentes semilleras 23
5.4 Base de datos sobre fuentes semilleras -FUESEMILL 24
6. MANEJO EN CAMPO DE FUENTES SEMILLERAS 25
7. GANANCIAS GENETICAS 29
8. PROTOCOLO DE ANALISIS PARA CERTIFICACION 31

DE SEMILLAS FORESTALES.
8.1 Protocolo de análisis para la especie Tabebuia rosea 32
8.2 Protocolo de análisis para la especie Cordia alliodora 35
8.3 Protocolo de análisis para la especie Cedrela odorata 38
8.4 Protocolo de análisis para la especie Cariniana piryformis 42
8.5 Protocolo de análisis para la especie Alnus jorullensis 45

8.6 Coclusiones generales. 48
9. PROTOCOLOS PARA LA ESTANDARIZACION DE ANALISIS 50

DE RUTINA.
9.1 Análisis de calidad física para diez especies forestales. 51
ANEXO:
REGISTRO NACIONAL DE FUENTES SEMILLERAS
Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR iii

INTRODUCCION
Con la desaparición del INDERENA en 1994, también desaparecieron una serie de

acciones de apoyo y fomento al sector forestal, como el manejo y abastecimiento de
semillas de especies forestales nativas neotropicales y algunos trabajos en el área de
mejoramiento genético (procedencias y progenies). Siendo una de las mayores
limitaciónes para avanzar en los programas de reforestación con especies nativas, la
obtención de semillas de calidad, en la cantidad requerida y en el tiempo planificado; esta
actividad se cubría anteriormente con el establecimiento de una red de árboles semilleros
a nivel nacional complementado con el establecimiento de algunos huertos semilleros
principalmente de Coniferas y de Eucalyptus, actividad que era liderada por el
INDERENA, esta situación se ve agravada con la continua presión sobre los bosques
naturales que comienzan a escasear en nuestro país.
El gobierno nacional con el deseo de recuperar las áreas boscosas para garantizar un
medio ambiente sano y la producción de materia prima para los procesos industriales,
justifica desarrollar programas que garanticen el suministro de semillas en cantidad y
calidad suficientes, para cumplir las metas de reforestación que requiere el país.
Para llenar los vacíos dejados con la desaparición del INDERENA en este campo, el
Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural entidad que lidera la actividad forestal
productiva, manifiesta su interés de convertir a CONIF en un centro de apoyo técnico
nacional para la actividad forestal. Para lo cual se realiza un programa estratégico de
investigación productiva; el Programa de Investigación en Semillas de Especies
Forestales Nativas - INSEFOR -, partiendo de dos áreas básicas: Investigación en
Mejoramiento Genético Forestal e Investigación en Semillas Forestales.
Siendo esta ultima área la base para iniciar las actividades de gestión para el
abastecimiento de semillas forestales de especies nativas de origen y calidad conocidas,
para lo cual se adopta la metodología empleada por PROSEFOR en Centro América y
permite ampliar la base genética de las fuentes semilleras de acuerdo a ciertos requisitos
técnicos que se tratan en el presente documento, al igual se presenta el estado de avance
de esta área en el tiempo de su implementación a nivel nacional, a traves de la
información sobre las metodologías, principios y logros en la búsqueda y establecimiento
de fuentes semilleras con base en la experiencia del Programa como mecanismo para
que otras entidades realicen este mismo tipo de trabajo.
Trabajo complementado con la realización de los protocolos sobre pruebas de semillas de

5 especies forestales nativas de amplia demanda nacionalTabebuia rosea, Cordia
alliodora, Cedrela odorata, Cariniana piryformis y Alnus jorullensis, que constituyen
los primeros pasos para el establecimiento de protocolos de certificación de estas cinco
especies.
Los protocolos fueron desarrollado en el Laboratorio de Semillas Forestales de la

Corporación Nacional de Investigación y Fomento Forestal - CONIF, localizado en Santafé
de Bogotá. El desarrollo de la investigación se basó en el documento producido por
CONIF, titulado “Documentación Guía para el Desarrollo de la Investigación en Semillas
de Diez Especies Forestales.
Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR 1

1- IMPORTANCIA DEL MATERIAL REPRODUCTIVO SELECCIONADO
El aumento constante de la población, la conversión de bosques naturales para la

agricultura, ganadería o adificaciones y la necesidad de madera y otros productos del
bosque, presionan cada vez más los ecosistemas naturales. Se reconoce que el costo de
la deforestación es alto: erosión y pérdida de la fertilidad de los suelos, inundaciones,
desertificación, reducción de la biodiversidad e extinción de especies o poblaciones
únicas son algunos de los problemas asociados a la desaparición de los bosques. La
experiencia ha demostrado que la actividad agrícola no es sostenible en terrenos de
aptitud forestal, lo cual genera degradación, con grandes consecuencias biológicas,
económicas y sociales.
Las plantaciones forestales manejadas técnicamente son parte de la solución, al

recuperar y aprovechar terrenos no aptos para usos agropecuarios, crear condiciones
ecológicas favorables, crear fuentes de trabajo y suministrar los productos forestales que
exige la población creciente, reduciendo así la presión sobre los hábitats naturales
remanentes.
Para que las plantaciones sean exitosas, sin embargo, deben cumplirse tres condiciones
fundamentales:
a) Una combinación correcta con el sitio de plantación,
b) uso del germoplasma de la mejor calidad genética posible y,
c) aplicación de técnicas silviculturales apropiadas.
Una falla en algunos de éstos componentes afecta el rendimiento de la plantación. Ciertos

problemas de índole ambiental se pueden corregir, mediante fertilización, encalado,
drenajes, etc. Los problemas genéticos sólo se pueden corregir sustituyendo la
plantación; de ahí, que este componente deba recibir consideración especial.
Dentro del esquema tradicional del mejoramiento por métodos sexuales, las mayores
ganancias genéticas se obtienen mediante el desarrollo de huertos semilleros
genéticamente comprobados (Zobel y Talbert, 1984). Para el establecimiento de los
huertos se requiere de cierta capacidad técnica, financiera y conocimientos sobre la
especie involucrada que a veces no están disponibles; así mismo, es necesario cierto
tiempo para que los huertos alcancen su producción plena. Mientras esto sucede, se
deben tomar medidas alternativas para satisfacer la demanda inmediata de semillas.
La identificación de las mejores fuentes productoras de semilla es uno de los principales

componentes de cualquier programa de semillas forestales. Todo programa de
reforestación debe considerar esta etapa fundamental, con el propósito de obtener el
material genético a corto plazo mientras los programas de mejoramiento aportan
resultados para establecer sistemas más avanzados y sofisticados, que suministren
semillas de mayor calidad y productividad.
Existen varios métodos para la obtención de semilla genéticamente mejorada en el corto

plazo. Para especies prioritarias, estas medidas deben considerarse temporales, mientras
entran en producción otras fuentes que garanticen una mayor ganancia genética.

1.1- Semillas de procedencias selectas
Cuando existen resultados de ensayos procedencias, el primer paso para el

establecimiento de plantaciones es la obtención de semilla de las mejores o de la mejor
procedencia. Si está proviene de otra región, generalmente no es posible iniciar acciones
de mejoramiento hasta tanto no se desarrolle una población base suficientemente grande
en la región de introducción.
La mayoría de los casos, la introducción de especies en sitios previamente seleccionados

de acuerdo a las exigencias de la especie, permite el desarrollo de fuentes locales de
semilla. Además de disminuir los costos, conlleva a la formación de razas locales, las
cuales generalmente producen un mejoramiento notable, sobre todo en adaptabilidad y
características de forma, con respecto a las introducciones originales.
1.2 Arboles semilleros
Esta opción se ha utilizado en programas jóvenes o para especies que, por su baja tasa
de plantación anual, no ameritan esfuerzos mayores. Consiste en seleccionar y marcar
fenotipos sobresalientes, ya sea en plantaciones o en bosque natural, y colectar su
semilla para el establecimiento de plantaciones. Puesto que en estas condiciones la
heredabilidades son bajas, las ganancias genéticas también lo son, sobre todo si
selecciona en bosques naturales donde existe un componente de variación ambiental
fuerte. Además, la selección está basada en el árbol madre únicamente, y no hay control
sobre el progenitor masculino.
Cuando la selección se realiza en plantaciones homogéneas, es posible lograr ganancias

mayores, sobre todo en características de adaptabilidad, forma del fuste y posiblemente
características de crecimiento, debido a que en éstos casos, la variación fenotípica refleja
más fielmente la variación genotípica. También es posible lograr ganancias en tolerancia
a insectos y enfermedades si se seleccionan individuos sanos en rodales fuertemente
infectados.
Desde el punto de vista práctico, una limitante de los árboles semilleros como fuente de
semilla, es el alto costo y la baja eficiencia de la recolección, ya que normalmente se
localizan a grandes distancias unos de otros, y es necesario desplazar todo el equipo de
sitio en sitio para recolectar los frutos.
Con algunas especies es posible localizar suficientes árboles semilleros dentro de un área
definida, lo cual reduce los costos de recolección al concentrar esta operación en un solo
sitio. Este tipo de fuente presenta problemas de índole genético, relacionados con la baja
heredabilidad y la falta de control sobre el progenitor masculino, y posiblemente la
ganancia se reduzca como consecuencia de un menor diferencia de selección. Para
algunas especies, sin embargo, puede ser la única alternativa a corto plazo.
1.3 Semilla de ensayos de procedencia
En muchas regiones de un país se han establecido ensayos de procedencia y

eventualmente surge el interrogante de si éstos pueden utilizarse para la obtención de
semilla. Existen varios inconvenientes al respecto, relacionados principalmente con la
distribución de los árboles finales. suponiendo que en un ensayo típico, con seis
procedencias, parcelas de 36 árboles por tratamiento y cinco repeticiones, destaca sólo

un procedencia, quedarán cinco parcelas de 36 árboles distribuidas a lo largo de un área
de 1.2 hectáreas. En cada parcela habrá que realizar un aclareo final para dejar un
máximo de cinco árboles por parcela, lo cual, además del reducido número de individuos
(25 en 1.2 ha), tiene el inconveniente de la pobre distribución final.
La situación puede mejorar, dependiendo del diseño y del número de procedencias

seleccionadas. Sin embargo, generalmente habrá problemas de subutilización del área y
restricciones en la polinización, ya que ésta posiblemente ocurrirá entre miembros de una
sola parcela y no entre todos los árboles remanentes. El uso de semilla de éstos ensayos
debería considerarse como última alternativa. Tan pronto como se conozca la mejor o
mejores procedencias, lo más recomendable es introducir semilla de mismas fuentes e
iniciar establecimiento de plantaciones más extensas, que puedan ser convertidas
rápidamente en rodales o plantaciones semilleras, así como producir material de
selección para el desarrollo de fuentes más avanzadas.
1.4 Semilla de árboles elite
Un árbol elite es aquel que ha demostrado su superioridad genética a través de ensayos

de progenies. Para especies prolíficas y de semilla pequeña, es posible utilizar semilla de
árboles elite para el establecimiento de plantaciones. Esta estrategia tiene varias
ventajas: a) utiliza semilla que demostró superioridad genética en ensayos de campo, b)
para especies de semilla pequeña, es posible que quede en almacenamiento suficiente
semilla de recolecciones originales realizadas para establecer el ensayo, la cual puede
utilizarse inmediatamente. Otra ventaja es que pertenece al lote probado en los ensayos,
es decir, no tiene un factor de variación entre años de recolección y c) se puede identificar
los mejores genotipos y producción de semilla en el huerto semillero. La ganancia
genética, será la mitad con respecto a un huerto de plántulas, debido a que no hay
selección del progenitor masculino.
1.5 Semilla de fuentes semilleras
Otra estrategia para la producción de semilla es colectar rodales con características

superiores al promedio, ya sea en plantaciones existentes, en bosque natural o
establecerse desde el primer año para ese único propósito. Estos deben de considerarse
como una medida transitoria para producir semilla de mejor calidad genética a corto
plazo, mientras se da tiempo para establecer otras formas más avanzadas de producción
como lo son los huertos semilleros de clones o familias debidamente probadas.
La identificación de las mejores fuentes de semilla y su evaluación y selección, forman

uno de los principales componentes de cualquier programa de semillas forestales. Todo
programa de reforestación debe considerar esta etapa fundamental, con el propósito de
obtener material propagativo en el futuro inmediato de mayor calidad y productividad que
la semilla comercial, sin ningún tipo de selección.
La garantía que obtiene el usuario de la semilla o reforestador, al utilizar material de una

fuente conocida, es de gran importancia, puesto que ésta ha sido seleccionada
previamente mediante comparación con otras fuentes y manejada de tal forma que
asegura una mejora sobre el promedio existente y su adaptación al sitio de plantación con
condiciones similares a las del rodal.

2- IMPACTO EN LA REFORESTACION DEL MATERIAL REPRODUCTIVO DE
CALIDAD CONOCIDA
En algunas regiones del país se observan pequeñas plantaciones forestales pobladas de

árboles raquíticos y de mala forma que pugnan por sobrevivir a condiciones adversas de
clima y de suelo, y todo esto porque, en muchos casos, quienes asesoran a los
agricultores, campesinos y comunidades indígenas, a través de proyectos cuyo principal
objetivo era el desarrollo social, recomendaron la implantación de bosques de diverso tipo
sin antes analizar y solucionar el problema de la inexistencia del material genético
adecuado.
La falta de investigación silvicultural en especies nativas trae como consecuencia la

explotación sin control de bosques nativos, y en ciertos casos la sustitución con especies
introducidas que se han adaptado satisfactoriamente a nuestro medio, como sucede con
el pino y eucalipto, esta situación, ha dado como resultado el desconocimiento de los
sistemas de reproducción más adecuados para la mayoría de las especies nativas y del
potencial del origen del material genético de alta calidad que pueda asegurar su
repoblación.
Las empresas forestales siempre han sido productoras a bajo costo, lo que se acentuará
en el futuro si quieren competir con éxito en el mercado. Las empresas que logren
producir productos forestales con precios competitivos del mercado serán empresas
exitosas. Igualmente los agricultores y propietarios de tierras requerirán cada vez
optimizar la productividad por hectárea, ya que el número de hectáreas disponibles para
la plantación se verá limitado, como también la madera de los bosques nativos. Esto
conlleva a aplicar un manejo cada vez más intensivo de tal forma de maximizar los
productos de alta calidad en muy pocas hectáreas que les permita ser una empresa con
bajos costos de producción.
La calidad de la madera es un factor crucial para obtener un mayor volumen útil. Para
esto se requiere como mínimo, contar con semilla de alta calidad genética y con una
garantía de suministro oportuno y permanente. Es así como muchas empresas forestales
en algunos países, iniciaron sus programas de plantaciones masivas, con semilla de
rodales previamente identificados, seleccionados y manejados adecuadamente,
obteniendo una moderada productividad y rendimiento económico.
La identificación de las fuentes para suministro de semilla, forman uno de los principales
componentes para la inmediata y futura utilización de material para proyectos masivos de
reforestación. Esto implica una mejora a corto plazo de la calidad de las plantaciones y de
sus rendimientos en términos de biomasa y por ende económicos, elevando así los
ingresos de los agricultores y empresas dedicadas a la actividad forestal. A largo plazo,
se puede constituir una base genética amplia y punto de partida para los programas de
mejoramiento de las principales especies utilizadas para reforestación comercial.
La garantía que obtiene el usuario de la semilla, al utilizar material de una fuente

conocida, es de gran importancia, puesto que ésta ha sido seleccionada previamente
mediante comparación con otras fuentes y manejadas de tal forma que asegura una
mejora sobre semilla recolectada en un sitio desconocido.
En el caso de las especies valiosas, de alto interés económico y que justifican la

implementación de un programa de mejoramiento genético, el uso de las fuentes

semilleras se constituye en una opción rápida para el abastecimiento de semillas. Para las
especies de importancia económica secundaria, para las que no existe interés por
desarrollar un programa de mejoramiento complejo, las fuentes semilleras ofrecen una
posibilidad práctica y operativa de controlar la calidad de la semilla, asegurando su
adaptabilidad y garantizando que el nivel de mejora genética puede ser del 5 a 10 %.
3. METODOLOGIA PARA EL ESTABLECIMIENTO DE FUENTES SEMILLERAS
El mayor esfuerzo de la investigación para fomentar el establecimiento de plantaciones

forestales ha estado dirigido principalmente hacia la selección de especies, silvicultura,
desarrollo y comercialización de los productos del bosque. Los esfuerzos realizados en el
campo de la producción de semillas mejoradas, genética y fisiológicamente, han sido
escasos a pesar de que el uso de semillas mejoradas es fundamental para asegurar que
las plantaciones alcancen rendimientos mayores, los productos sean de mejor calidad y
que éstas puedan convertirse en una alternativa de uso de la tierra competitiva con otros
usos agrícolas o ganaderos.
A partir del año 1995, La Corporación Nacional de Investigación y Fomento forestal -

CONIF, ha venido adelantando el Programa de Investigación en Semillas de Especies
Forestales Nativas - INSEFOR, orientado principalmente al mejoramiento en calidad y
cantidad del material propagativo forestal.
El Programa de Semillas Forestales, financiado por el Ministerio de Agricultura y

Desarrollo Rural, tiene como objetivo principal mantener en funcionamiento un sistema de
abastecimiento de semillas forestales de especies nativas de origen y calidad conocidas.
La metodología que el INSEFOR utiliza para la identificación, selección y manejo de
fuentes semilleras, a sido adaptada del Proyecto de Semillas Forestales (PROSEFOR) del
CATIE en Turrialba, Costa Rica (CONIF, 1995) y se describe a continuación.
3.1 Ganancias genéticas en el corto plazo
El éxito logrado en el establecimiento y productividad de plantaciones de árboles

forestales esta determinado en gran parte por la especie utilizada y la fuente de semilla
dentro de la especie. Sin importar que tan complejas sean las técnicas de mejoramiento
genético, las ganancias mayores, más fáciles y más rápidas en la mayoría de los
programas de mejoramiento genético forestal se obtienen asegurando el uso de la
especie y fuentes de semilla adecuados dentro de la especie (zobel y Talbert, 1992).
Las ganancias genéticas obtenidas de un programa convencional de mejoramiento

genético forestal son determinadas o restringidas por la calidad de la fuente de semilla
utilizada (Squillace, 1966). Lo ideal es emprender un programa intensivo de
mejoramientro genético forestal sólo después de que se conozca la mejor fuente
geográfica. En la práctica, esto con frecuencia no es posible, pero pueden obtenerse
buenas ganancias si se efectúa el desarrollo adecuado de la raza local introducida, aun
cuando es posible que la procedencia original utilizada no sea muy buena.
Cuando el silvicultor selecciona una o varias especies para su masificación a través de

plantaciones, tiene que establecer o incorporarse a un Programa de Mejora Genética de
forma tal que se le asegure un abastecimiento continuo de semillas de la mayor calidad
genética posible. Este objetivo se puede alcanzar en corto plazo (uno ó dos años)

estableciendo fuentes semilleras o áreas productoras de semilla, donde se intenta
seleccionar aquellas fuentes, orígenes ó procedencias que permitan aprovechar al
máximo su capacidad de adaptación de las especies. En forma inmediata a la primera
acción se deben iniciar varias etapas consecutivas que permitirán ir capturando en forma
sistemática y creciente las máximas ganancias genéticas por unidad de tiempo, y que
comenzarán a arrojar resultados en unos cuatro o cinco años.
Las maderas nativas están recibiendo una especial atención tanto para uso doméstico
como leña o para obtener madera para aserrío. Con el mejoramiento genético se logra
tener un mayor porcentaje de madera, lo cual permite un mayor valor comercial de la
madera, permite disminuir los costos de producción y aumentar la ganancia por unidad de
volumen.
El grado de mejoramiento genético o nivel de ganancia, a obtener con una fuente

semillera dependerá de viarios factores, pero fundamentalmente del grado de selección
que en ella se representa, y de la heredabilidad e las características de interés que se
pretende mejorar. sin embargo, el grado de mejoramiento genético obtenido al usar
semilla de una fuente semillera suele ser desconocido, debido a que los progenitores son
seleccionados sólo por sus características fenotípicas y normalmente no se efectúan las
pruebas de progenie correspondiente.
Aún así, en ocasiones estas pruebas se realizan y han permitido verificar que en las áreas
semillerasde pino, en el sur de Estados Unidos, se conseguía sólo un limitado
mejoramiento en el crecimiento en volumen (Zobel y Talbert, 1988). Este escaso
mejoramiento en el crecimiento en volumen es consecuencia de la baja heredabilidad que
normalmente exhibe este carácter, sin embargo, se observan ganancias en la calidad de
los árboles, su resistencia a las plagas y en general en características de adaptabilidad
(Ipinza, 1998).
Antecedentes derivados de ensayos con plantas provenientes de semilla generadas en

áreas productoras de las especies Pinus elliottii y P. taeda confirman que éstas muestran
una escasa o nula superioridad sobre plantas producidas con semilla comercial corriente,
en lo que se refiere a las tasas de crecimiento, pero que si son claramente superiores en
forma, uniformidad y resistencia a plagas y enfermedades (Ipinza, 1998).
A pesar de esto, existen situaciones en que el mejoramiento en crecimiento ha sido

razonablemente bueno en áreas productoras de semillas de plantaciones de especies
introducidas, como los pinos y eucaliptos. Existen escasos antecedentes específicos
relacionados con la ganancia en volumen asociado al uso de fuentes semilleras.
Muniswami (1977) citado por Ipinza (1998), señala que las progenies de Tectona grandis
generadas con semillas provenientes de rodales naturales transformados en áreas
productoras de semilla, exhiben en promedio un 10% más volumen que los árboles
producidos con semilla comercial sin mejoramiento. Por otra parte, en Finlandia,
Oskarsson (1971), citado por el mismo autor, menciona ganancias en volumen de un 6%
en árboles de Pinus sylvestris generados con semilla de fuentes semilleras, respecto a
otros de semilla comercial. En el cuadro 1 siguiente se muestra las ganancias genéticas
obtenidas, para diferentes caracteres de importancia forestal, a partir de semilla
proveniente de fuentes semilleras.

Cuadro 1. Ganancias genéticas obtenidas a partir de fuentes semilleras
ESPECIE LUGAR CARACTER GANANCIA AUTOR

Pinus radiata N. Zelandia Diámetro Sobre 6% Shelbourne,1969
Pinus radiata N. Zelandia Forma de fuste 25% Shebourne, 1969
Cupressus Kenya Diámetro 25% Dyson, 1969
lusitanica Finlandia Volumen 6% Oskarsson, 1971
Pinus sylvestris Volumen 10% Muniswami, 1977
Tectona grandis
Fuente: Ipinza, 1998
En la práctica, la ganancia aumentará en la medida que la intensidad de selección sea

mayor. En este sentido la transformación de fuentes semilleras la selección se verifica en
dos niveles; primero la selección de rodales y después la selección de árboles dentro del
rodal. La selección de árboles dentro del rodal está limitada por la existencia inicial de
árboles y el número mínimo de ellos que se debe conservar para que el área sea
suficiente, de aquí la importancia que la selección de los rodales a convertir sea lo más
rigurosa posible.
3.2 Ventajas de establecer fuentes semilleras
Una fuente semillera la define Barner (1973), citado por Jara (1995), como un grupo de
árboles de la misma de la misma especie que es mejorado mediante la remoción o tumba
de individuos indeseables y manejado para estimular la producción pronta y abundante de
semilla. En algunos casos, una fuente que proviene de plantación puede tener el doble
propósito de producción de madera para aserrío y de semilla.
Otra definición de fuente semillera más aplicable a bosque natural, es definida por Zobel y
Talbert (1988) como un grupo de árboles de la misma especie o grupo de especies donde
predominan individuos fenotípicamente o de conformación aceptable o deseable en
cuanto a forma, vigor y sanidad, el cual es manejado técnicamente para aumentar y
sostener la producción de semilla en calidad y cantidad.
Las áreas productoras de semilla pueden formarse a partir de plantaciones establecidas,

de bosque natural o establecerse desde el primer año para ese único propósito . Estos
deber considerarse siempre como una medida transitoria para producir semilla de mejor
calidad genética a corto plazo, mientras se da tiempo para establecer otras formas más
avanzadas de producción, como los huertos semilleros clónales o familias debidamente
probadas y manejadas.
En el caso de especies valiosas de alto interés económico y que justifican la

implementación de un programa de Mejoramiento de árboles, el uso de fuentes semilleras
constituye una opción rápida para el abastecimiento de semillas. Para las especies de
menor uso comercial y que no existe interés en desarrollar un programa de mejoramiento
complejo, las fuentes semilleras ofrecen una posibilidad práctica de controlar la calidad de
la semilla, asegurando su adaptabilidad y garantizando algún nivel de mejora. Las
ventajas asociadas al estableciemiento de fuentes semilleras o áreas productoras de
semilla se pueden resumir en las siguientes:
• Rápido y simple establecimiento

• La producción de semilla mejorada se puede obtener en 1 o 2 años
• La semilla generada posee mejores cualidades genéticas que la semilla comercial
corriente, especialmente en adaptabilidad, crecimiento, forma de fuste y resistencia a
plagas
• Semilla de un origen geográfico conocido
• Concentración de las operaciones de recolección en un área pequeña y accesible, lo
que se traduce también en la reducción de costos de cosecha y procesamiento
3.3 Aspectos básicos a tener en cuenta para la identificación y selección de

fuentes semilleras
El establecimiento de fuentes semilleras o áreas productoras de semilla rendirá los

mejores resultados en la medida que se respeten las siguientes consideraciones básicas:
• Accesibilidad
La ubicación de las fuentes semilleras cuyo acceso es por carreteras en muy mal estado
o sin él, juega un papel muy importante en el tiempo y dinero, supervisión y
administración que en lo posible debe cubrir las áreas que permitan suplir los
requerimientos de semillas. El rodal a transformar en fuente semillera debe establecerse
en un sitio con condiciones ecológicas y representativo a las áreas a reforestar, que sea
de fácil acceso, lejano a fuentes contaminantes de polen externo y en lo posible cercano a
los sitios de consumo de semillas.
• Estado general del rodal
Para la selección de una fuente semillera se deben de tener mínimo los siguientes
aspectos:
• No haber sido sometidos a intenso aprovechamiento selectivo.

• No muy viejos y degradados.
• Demostrar capacidad para producir semilla.
• Edad para la producción de semilla.
• Presentar árboles fonotípicamente aceptables en por lo menos un 50%
• Ubicación en sitios de moderada a alta fertilidad.
• Número de árboles y tamaño de la fuente
No existen especificaciones rígidas en cuanto al número de árboles y al tamaño de la

fuente de semillas. Se necesita contar con un número suficiente de árboles, de modo de
permitir la elección adecuada de individuos de alta calidad. Sin embargo, el tamaño de la
fuente puede variar de acuerdo con las necesidades de semilla, pero el número de
árboles no puede ser inferior a 30 y podrá llegar hasta 150 ó más árboles por hectárea.
Zobel y Talbert (1988) señalan que es recomendable conservar del orden de 125 arb/ha,
si no es posible, 50 a 75 arb/ha se consideran apropiados, pero como mínimo, si no se
pueden obtener más de 25 arb/ha, no es recomendable la transformación en fuente
semillera.

Los árboles de muchas especies nativas que se encuentran dispersos en el bosque
natural, se pueden constituir en fuentes semilleras siempre que se ubiquen bajo las
mismas condiciones ambientales y existan límites naturales que las aíslen de otras.
Para el caso de especies en vía de extinción, se debe considerar pequeños grupos de

árboles con fines de conservación del recurso genético, aunque no se consideran como
rodales semilleros se debe tomar medidas especiales para su conservación.
• Floración y fructificación
La floración y la fructificación de los árboles puede variar de acuerdo con el medio biotico
donde se encuentren los árboles, en el bosque natural y/o plantaciones , la respuestas de
floración se pueden maximizar y/o disminuir de acuerdo a cada situación en particular;
factor que es determinante en la producción de semillas de una especie forestal.
Los rodales que se transformaran en fuente semillera deben tener la edad suficiente para
producir semilla, indicado por copas con cobertura adecuada para generar cosechas
abundantes. Por otra parte, tienen que ser lo suficientemente jóvenes para asegurar la
producción de semilla durante varios años, antes de que esta decaiga por pérdida de
vigor.
• Topografía
El rodal debe presentar una topografía que facilite el acceso y la realización de los
trabajos de manejo y cosecha de semillas. Es importante que el terreno sea en lo posible
plano y sin restricciones de acceso, lo que permite mecanizar algunas faenas y realizar
visitas inspectoras durante el año.
3.4 Clasificación de Fuentes Semilleras
Conforme se avanza en el proceso de mejoramiento genético de una especie, se logran

ganancias genéticas cada vez mayores. La semilla recolectada de un rodal natural no
manejado generalmente dará origen a plantaciones de inferior calidad que la semilla
procedente de huertos semilleros genéticamente comprobados, bajo condiciones de sitio
y manejo apropiados en ambos casos.
Es muy importante tener presente que no se puede garantizar el comportamiento de los

árboles cuando se obtiene semilla de una fuente desarrollada bajo condiciones ecológicas
y/o edáficas diferentes al sitio de plantación, no importa qué tan mejorada sea dicha
fuente. La única excepción a esto es el caso de fuentes semilleras que tengan el respaldo
de pruebas genéticas establecidas en el sitio donde se lleva a cabo la reforestación. El
descuido a la hora de seleccionar la fuente semillera ha sido una de las principales
causas del fracaso en muchos programas de reforestación.
Bajo estos principios, el programa INSEFOR recomienda seguir la siguiente clasificación

de fuentes semilleras categorizadas de mayor a menor ganancia genética potencial.
• Huerto Semillero Genéticamente Comprobado (HSC)
Un huerto semillero es una plantación de clones o progenies que han sido seleccionados
intensivamente con base en ciertas características de importancia económica, aislada o

manejada para reducir contaminación de polen de árboles inferiores y manejada
intensivamente para aumentar la producción de semilla y facilitar su recolección. El
Huerto Semillero Genéticamente Comprobado es aquel que tiene respaldo de pruebas de
progenies establecidas y evaluadas en los sitios potenciales de plantación, y que ha sido
sometido a los aclareos genéticos necesarios para dejar únicamente los clones o
individuos que han demostrado su superioridad.
Además, este tipo de fuente semillera deberá cumplir, con todos los otros requisitos
básicos de un huerto semillero en cuanto a método de selección de árboles, área, diseño,
número mínimo de ramets (o individuos), número mínimo de clones (o familias) y
distribución de los ramets dentro del huerto.
• Huerto Semillero No Comprobado (HSNC)
Este es un huerto similar al anterior pero que no ha sido sometido a aclareos genéticos,
ya sea por la ausencia de ensayos genéticos o por la corta edad de los ensayos. Aunque
este huerto no tiene respaldo de pruebas genéticas, la alta intensidad de selección ha que
han sido sometidos los padres garantiza una ganancia genética superior a la de otros
tipos de fuente semillera tales como los rodales semilleros y las fuentes selectas o
identificadas. Por ese motivo es ubicado dentro de una categoría superior.
Un Huerto Semillero No Comprobado puede pasar a la categoría anterior si se llevan a

cabo los aclareos genéticos respectivos.
• Rodales Semilleros (RS)
Los Rodales Semilleros pueden ser rodales plantados o naturales, aislados o manejados
para reducir contaminación de polen de árboles inferiores y que ha sido sometidos a
aclareos de mejoramiento para dejar 75 - 200 árboles por hectárea con características
fenotípicas apropiadas.
El Rodal Semillero debe tener una base genética suficientemente amplia; plantaciones
originadas con semillas de unos pocos árboles deben ser descartadas. También, se
requiere que al menos un 50% de los árboles del rodal haya alcanzado el estado de
fructificación. El Rodal Semillero debe tener un área mínima de una hectárea; grupos más
pequeños o árboles en hileras NO pueden ser considerados como rodales semilleros.
Los Rodales Semilleros pueden ser desarrollados a partir de:
• Rodales Naturales
• Plantaciones comerciales
• Plantaciones piloto, parcelas de validación
• Algunos tipos de ensayos genéticos, como las pruebas de procedencias.
Una de las diferencias principales a nivel genético entre los rodales semilleros es la
intensidad de selección: en los rodales semilleros, los árboles finales han sido
seleccionados a una intensidad de 1:10 - 1:20, mientras que en el caso de los huertos,
cada árbol ha sido seleccionado entre varios miles de árboles evaluados. Por esta razón,
si la selección se ha realizado con base en las mismas características fenotípicas el

huerto siempre producirá mayor ganancia genética que el rodal semillero. Los rodales
semilleros No pueden pasar a las categorías anteriores.
• Fuentes Seleccionadas (FS)
Estas son rodales que no cumplen con uno o varios de los requisitos establecidos para
los Rodales Semilleros, principalmente porque presentan problemas de aislamiento,
porque contienen menos de 75 árboles aceptables por hectárea o porque aún no ha sido
sometidos a los aclareos de depuración (contienen más de 200 árboles por hectárea).
Aun así, para ser aceptados dentro de esta categoría, deben poseer una base genética
amplia, un área mínima de 1 hectárea e igualmente, una densidad tan que permita
obtener un mínimo de 75 árboles por hectárea, o al menos un 50% de éstos dentro de las
categorías de “árboles aceptables”.
Las áreas que se encuentren en esta categoría por problemas de aislamiento o porque
aún no han recibido los aclareos necesarios (pero cumplen con el requisito de número
mínimo de árboles aceptables por hectárea), pueden pasar a la categoría de Rodal
Semillero si se llevara a cabo las acciones correspondientes.
• Fuentes Identificadas (FI)
Las Fuentes Identificadas son grupos de árboles que por su baja densidad, por ocupar
poca área y/o porque no contienen el número suficiente de árboles aceptables por
hectárea, no clasifican dentro de la categoría anterior, pero deben utilizarse
temporalmente ante la ausencia de otras fuentes avanzadas.
En este grupo se encuentra típicamente los siguientes tipos parcelas:
• Parcelas experimentales representadas por un número limitado de individuos.

• Pequeños bloques de plantación
• Ensayos genéticos o silviculturales de poca extensión
• Especies del bosque natural que por su naturaleza o debido a la eliminación de
bosques, ocurren a bajas densidades o no alcanzan el número mínimo de árboles
aceptables por hectárea.
No hay que olvidar los peligros de una reducción excesiva de la base genética del
material. Como requisito mínimo, las recolecciones de semilla deberían realizarse de al
menos 20 árboles desechando aquellas fuentes que no permitan cumplir con este
requisito. Es de esperar que para una especie prioritaria este tipo de fuentes sea
reemplazado rápidamente por otras fuentes más avanzadas que garanticen una mejor
calidad genética del material.
3.5 Metodología de evaluación y selección de fuentes semilleras
El proceso de evaluación y selección de fuentes semilleras seguido por el CONIF,

consiste en efectuar una valoración de la calidad del rodal candidato, teniendo en cuenta
las características fenotípicas que componen la fuente. Para ello el criterio más
importante a tener en cuenta es conocer con exactitud el uso final de la fuente, para
definir las especies forestales y las pautas de valoración. Para el caso de querer obtener
madera para aserrar, se considera la rectitud de los fustes y el hábito de ramificación

como los más sobresalientes; estos criterios son muy diferentes si se quiere obtener
madera para leña, forraje o aceites.
Esta labor de evaluación se realiza en los rodales que mayor posibilidad de ser
transformados en área productora de semilla presentan, es decir, en aquellos que
aparentemente muestran mayor cantidad de árboles ideales o de buena calidad.
• Muestreo de la fuente candidata
Una forma rápida de obtener información objetiva acerca del estado y calidad de los
individuos que componen la fuente semillera, es mediante el muestreo o inventario del
rodal. Para realizar esta actividad, es necesario hacer una visita a la fuente candidata,
recorrerla con algún grado de detenimiento y dependiendo del tamaño, de la variación del
suelo y de la fisiografía se decide delimitar las parcelas de muestreo de área conocida
(500 ó 1.000 m²); si el bosque tiene una superficie mayor a 5 hectáreas con variaciones
fisiográficas o edáficas, se recomienda establecer varias parcelas, ubicando por lo menos
una en cada tipo de paisaje.
Si la fuente es una plantación compacta y coetánea, como norma general se establece

una parcela por hectárea. La forma de la parcela dependerá del estado del bosque; si se
distinguen las hileras de árboles, se pueden delimitar parcelas rectangulares de 30 x 33 m
de lado para obtener una superficie aproximada de 1.000 m², o de 25 x 20 m² para una
superficie de 500 m². En caso de no ser posible diferenciar las hileras, como en el bosque
natural, grupos de árboles plantados al azar ó árboles de regeneración natural, la parcela
circular es más práctica de delimitar. Para obtener un área de 1.000 m² o 500 m² se traza
una radio 17.84 ó 12.62 m, respectivamente, eligiendo un árbol de muy buena calidad
como eje central (figura 1).
Figura 1. M uestreo o inventario de una fuente semillera

Arboles en desorden
Arboles en hileras

Dentro de cada parcela de muestreo se inventarían todos los árboles de la especie
elegida, registrando las características cualitativas y cuantitativas de interés, de acuerdo a
la finalidad de la reforestación que se va a realizar.
La valoración de la calidad fenotípica cualitativa, que aplica el programa INSEFOR, está

en función para obtener plantaciones industriales comerciales, bajo esta consideración el
criterio de calificación cualitativo es el siguiente:
Clase 1: Arboles excelentes, dominantes o codominantes, rectos, sin bifurcaciones,

ramas delgadas y horizontales, sanos, vigorosos, fuste cilíndrico, y sin acanalamientos.
Conformarán la mayoría de la fuente semillera una vez realizado el raleo.
Clase 2: Arboles bueno, dominantes o codominantes, sin bifurcaciones bajas, con leves
sinuosidades en el fuste, sanos, vigorosos y ramas no tan gruesas. Algunos de estos
árboles podrían permanecer después del aclareo si no existen suficientes en la categoría
anterior.
Clase 3: Arboles indeseables, suprimidos, enfermos, con defectos en el fuste,

acanalamientos, ramas gruesas. Todos deben ser eliminados en la primera depuración.
Adicionalmente a la evaluación cualitativa, se toman mediciones de diámetro a la altura

del pecho (DAP) y la altura de todos los árboles dentro de la parcela. En el anexo 1 se
presenta un formato para llevar a cabo esta labor de muestreo. Es importante resaltar que
la rigidez con que se aplican los criterios de evaluación dependen también del rodal que
se este evaluando, no se puede aplicar la misma intensidad y rigor a las fuentes
provenientes de plantaciones que a las del bosque natural, debido a que en este último,
ya fueron extraídos los mejores ejemplares.
Adicionalmente a la evaluación fenotípica, se elabora un croquis y la descripción de la

fuente semillera, y se recolecta la mayor información posible acerca del origen de la
semilla de la fuente, la edad y manejo silvicultural cuando se trata de una plantación.
La descripción de la fuente contiene información relacionada con la taxonomía de la

especie, localización geográfica y politico-administrativa, clima, suelos, topografía y sobre
la misma fuente (densidad, tipo de bosque natural o plantado, área, propietario). Un
formato de la descripción de la fuente semillera se presenta en el anexo 2.
4. MANEJO DE FUENTES SEMILLERAS
En este contexto, el manejo de fuentes semilleras es la ejecución de las actividades

necesarias para lograr uno o más de los siguientes objetivos:
1. Mantener la fuente en buena condición para lograr una floración abundante y una
cosecha de semillas saludable.
2. Hacer la recolección de semilla más fácil y económica.
3. Asegurar la protección continua contra destrucción y daños.
4. Mantener el grado de aislamiento necesario para evitar la contaminación con polen

indeseable.

El tipo de manejo necesario depende del tipo de fuente semillera. De acuerdo a Barner,
Olesen y Wellendorf (1988), las fuentes de semilla se pueden clasificar en: (1) rodales
identificados, (2) rodales seleccionados, (3) áreas de producción de semilla, (4) rodales
semilleros de procedencia y (5) huertos semilleros.
Existe el grado creciente de selección, información e intensidad de manejo del primer tipo
de fuente al quinto. En rodales identificados, el manejo generalmente se limita a limpiezas
antes de la recolección, mientras que en huertos semilleros el manejo es muy intensivo y
se conoce hasta la posición de cada familia o clon. Los métodos de manejo para los tipos
intermedios siguen más o menos los lineamientos que se presentan en esta sección.
La supervisión regular es un requisito necesario para el manejo efectivo de una fuente

semillera. Factores tales como el acceso y la concentración de fuentes juegan un papel
importante. Se entiende por “acceso” el que se pueda llegar a la fuente durante todo el
año con relativa facilidad y razonable seguridad, preferiblemente en un día o menos de
viaje. En rodales naturales, siempre y cuando exista la opción, se debe seleccionar el
rodal menos remoto.
4.1 Demarcación
El marcaje de los límites sirve para reconocer fácilmente el área donde se realiza la
recolección de semilla, el mantenimiento y la protección. También indica los límites
legales de entrada y prohibición de explotación prohibida (pastoreo, tala de árboles, etc.).
La “intensidad” con que se marcan los límites depende de la importancia y tamaño de la
fuente semillera.
El material conque se marcan los límites debe ser el de mayor durabilidad de los que se
encuentran disponibles localmente. Se pueden usar piedras, postes de concreto o
madera, o se pueden pintar anillos en los árboles del borde.
Los bordes se deben indicar en los mapas que se incluyen en la descripción de la fuente.
En fuentes con áreas muy grandes, la marcación de los límites no es posible, por lo que
es esencial diseñar los mapas muy cuidadosamente y detalladamente.
4.2 Protección
Los riesgos más comunes son el fuego, tala ilegal, invasión de tierras y ganado. La
protección se debe realizar a través de franjas contrafuegos, supervisión constante y la
creación de buenas relaciones con la población local. La limpieza de malezas en los
límites puede servir como demarcación y para prevenir el fuego.
Se deben establecer y mantener franjas contrafuego alrededor de las fuentes semilleras,

especialmente en áreas de pastizales y en climas monzónicos con una estación seca
marcada. Para algunas especies puede ser adecuado aplicar fuegos controlados
alrededor del rodal después de cierta edad.
Ocasionalmente se pueden requerir medidas de protección contra plagas y enfermedades

que afectan el desarrollo de flores y semillas. Se puede remover los árboles afectados o
aplicar medidas de control químico. algunas plagas y enfermedades han desarrollado una

relación simbiótica con plantas locales. Dichas plantas pueden ser eliminadas para contar
el ciclo biológico de los agentes patógenos.
Es necesario cercar la fuente semillera cuando existe el peligro de daños por parte del
ganado y animales silvestres, o la posible explotación por parte de la población local.
4.3 Control de Malezas
El crecimiento de malezas, incluyendo trepadoras, es una de las mayores calamidades

durante las primeras etapas de desarrollo de las fuentes semilleras. Este puede ser un
problema temporal hasta que los árboles supriman las malezas. Sin embargo, si no se
maneja adecuadamente pueden retardar en forma significativa el desarrollo de la fuente
semillera. Por esta razón, las limpiezas se deben hacer regularmente, en algunos lugares
inclusive varias veces al año.
También muy a menudo es necesario realizar una limpieza del sotobosque la recolección
de semillas.
4.4 Raleos
El raleo que sigue a la selección de los árboles productores de semillas, tiene por objeto
eliminar a los individuos inferiores (clase 1 y algunos clase 2) y a la vez permitir que los
fenotipos selectos permanezcan en condiciones que favorezcan el desarrollo de sus
copas y la producción de semillas. En la medida que esta intervención se realice
adecuadamente, se obtendrán los mejores resultados en términos de ganancia genética y
de abundancia en la producción y cosecha de semilla.
El momento en que se realiza esta intervención determina la temporada a partir de la cual

se puede comenzar la utilización de la fuente. Si el raleo se ejecuta después de los
árboles han florecido, los árboles superiores remanente ya habrán sido contaminados por
el polen de los individuos que se relearon, y habrá que esperar hasta la próxima
temporada para contar con semilla mejorada.
Como procedimiento, todos los árboles que no cumplan con las especificaciones
indicadas anteriormente, o que sean capaces de hibridar o competir con la especie
deseada, deben ser eliminados de la fuente semillera mediante uno o más raleos. Esta
consideración es de importancia fundamental, pues en la medida que se implemente
rigurosamente, se podrá obtener el mejor resultado (ganancia) en la utilización del área
productora de semilla.
No se debe dejar ningún árbol que esté por debajo del estándar definido, ni siquiera por
razones de espaciamiento. Inclusive, si en algunos sectores del rodal sólo existen
fenotipos inferiores, todos ellos deben eliminarse, aún cuando esto origine grandes
espacios en el rodal (Zobel y Talbert, 1988).
Por otra parte, para obtener una cosecha abundante de semilla, los árboles seleccionados
como productores deben tener su copa expuesta a plena luz solar por lo menos en tres de
sus costados. Si en sectores del rodal se encuentran varios fenotipos superiores juntos,
algunos de ellos deberán sacrificarse de modo de permitir que los remanentes reciban
suficiente luz para responder a la intervención.

Como regla general, se sugiere que el espaciamiento promedio entre los árboles que
permanecerán como productores de semilla, sea igual a la mitad de la altura de los
árboles dominantes y codominantes del rodal (Rudolf et al., 1974). Un espaciamiento de
tal magnitud puede producir un incremento de hasta treinta veces en la producción de
semillas de algunas coníferas (Cooley, 1970), pero a su vez conlleva el riesgo real de
caída de árboles por efecto del viento.
Los daños causados por el viento en los árboles remanentes, se pueden controlar
efectuando intervenciones más suaves y frecuentes, de modo de acondicionar
gradualmente al rodal a la mayor exposición al viento.
Ipinza (1997) señala que un rodal que ha sido intervenido silvícolamente y que presenta
una baja densidad, puede ser transformado en fuente semillera con una o dos
intervenciones de raleo. Por otra parte, si el rodal es denso y los árboles muestran una
fuerte competencia, será necesario realizar más de dos intervenciones para liberar
paulatinamente las copas de los árboles que conformarán el área de semillas
En la Tabla 2 se entrega un esquema de raleos aplicable en rodales semilleros jóvenes.
Tabla 2. Planificación de raleo en rodal semillero joven
ARB/HA RALEO (%) AÑO DE INTERVENCION

600 50 1 Año después de cerrar las copas
800 50 2 Años después del primer raleo
400 75 2 Años después del segundo raleo
100
(FUENTE: Ipinza, 1997)
Otra consideración que debe observarse al realizar el raleo del rodal que se convertirá en
área productora de semilla, es que esta actividad debe ejecutarse con un cuidado
extremo, de modo de minimizar el daño que puedan sufrir los árboles remanentes. Los
residuos de esta operación deben eliminarse del rodal, de esta forma se disminuyen los
riesgos de problemas sanitarios o incendios y se facilitan las operaciones posteriores de
manejo y cosecha de semillas.
4.5 Aislamiento
Para minimizar la contaminación de los árboles seleccionados como productores de

semillas, con polen de árboles indeseables de zonas aledañas a la fuente, esta debe
rodearse por una franja de aislación, también llamada franja de dilución de polen. Aún así,
debe considerarse que el aislamiento total es virtualmente imposible de obtener, debido a
que el polen puede ser movilizado por distintos agentes a distancias considerables; por lo
mismo el objetivo de la franja de dilución no es eliminar totalmente la contaminación, sino
reducirla a niveles mínimos.

En este aspecto recobran importancia las consideraciones mencionadas para la selección
de rodales, especialmente las referentes a la distancia que este debe conservar de las
fuentes de polen contaminante.
Como regla general Ipinza (1997) menciona que las fuentes semilleras deben estar
separado de plantaciones u otras fuentes de polen en un radio de un kilómetro. Mesén
(1995), menciona una franja de ancho mínimo de 100 m. Sin embargo, el ancho de la
franja depende del alcance de la dispersión del polen, que para la mayoría de las
especies nativas este aspecto se desconoce.
En la práctica, en los rodales que se han raleado para transformarlos en fuentes

productoras de semilla, se define una zona de cosecha constituida por los árboles
ubicados en la zona central del rodal, de este modo la zona de dilución queda definida en
forma automática por los árboles ubicados en la franja periférica, desde los cuales no se
cosechará semilla. El ancho de esta franja es variable, definiéndose que el valor mínimo
debería estar entre 60 y 100 metros (Ipinza, 1997). Estudios de dispersión de polen
realizados en algunas coníferas de la costa este de Estados Unidos permiten afirmar a
sus autores que una franja de aislación de 150 metros es suficiente.
4.6 Fertilización
La fertilización solamente es aplicable en fuentes semilleras que se manejan

intensivamente, por ejemplo, los rodales semillero de procedencia o los huertos
semilleros. La fertilización se aplicará solamente si ha probado que es efectiva y que los
beneficios justifican el costo.
4.7 Conservación
Las fuentes de semilla que se encuentran en peligro de extinción o de deterioro severo,

se conservan usando básicamente dos métodos diferentes:
Rodales (In situ).Protección y mantenimiento de especies y poblaciones en (en sitio) los

ecosistemas en los que ocurren naturalmente.
Rodales Ex situ.Protección y mantenimiento de recursos genéticos fuera de (fuera del

sitio) su ambiente natural plantaciones, poblaciones de mejoramiento, rodales semilleros y
de conservación.
La diferencia básica entre las dos estrategias es que la conservación in situ permite que el
proceso evolutivo continúe dentro del área de distribución natural. En ecosistemas
complejos se asegura la existencia de los polinizadores naturales.
La conservación ex situ tiene la ventaja de que los rodales se pueden establecer en áreas
especialmente favorables para la producción de semilla, protección y otros aspectos de
manejo. Sin embargo, desde el punto de vista puramente de la conservación, la estrategia
in situ es preferible cuando sea posible.

5. AVANCES EN LA IDENTIFICACION, SELECCION, MANEJO Y REGISTRO DE
FUENTES SEMILLERAS EN COLOMBIA
Dado el escaso conocimiento en el país de las especies nativas en general, el largo plazo
que exigen los programas de mejoramiento genético y las evidentes necesidades de
contar con material reproductivo de especies nativas de buena calidad en el corto plazo,
se hace necesario impulsar el establecimiento y manejo de rodales semilleros, que si bien
su ganancia genética es menor que la obtenida de los huertos semilleros, constituyen una
excelente alternativa práctica mientras se desarrollan programas más avanzados de
mejoramiento genético.
El impulso al establecimiento de fuentes semilleras manejadas es una alternativa viable,

soluciona en buena medida y en el corto plazo las necesidades de contar con material
genéticamente mejor que la semilla comercial corriente, proveniente de rodales no
identificados ni clasificados y sin ninguna garantía de calidad.
En Colombia la investigación en mejoramiento de semillas forestales con especies nativas

se inició con el convenio realizado entre el Centro Internacional de Investigación y
Desarrollo - CIID - de Canadá, el INDERENA y CONIF en septiembre de 1985, trabajo
orientado a mejorar los conocimientos sobre madurez de frutos, técnicas de manejo post-
cosecha de frutos y semillas, presecado, aumento de la viabilidad de semillas y
almacenamiento, además se realizaron estudios de composición química y anatomía
descriptiva para 16 especies forestales neotropicales de Colombia.
Con la terminación del convenio con el CIID y la desaparición del INDERENA, el área de
semillas forestales fue descuidada, hasta la creación del Programa de Investigación en
Semillas Forestales - INSEFOR, en el año 1995, el cual tiene dentro de sus objetivos
mejorar la calidad del material propagativo forestal en cantidades adecuadas a los
programas de reforestación del país.
5.1 Identificación de especies prioritarias
Un criterio importante a tener en cuenta en cualquier programa de mejoramiento de

árboles, es la elección de la especie, de ahí que dentro de la metodología del INSEFOR,
se halla realizado una encuesta preliminar para obtener información acerca del consumo
de semillas forestales a nivel nacional, identificando así especies prioritarias que mayor
necesidad de material propagativo se requiere para los programas de repoblación forestal.
En la metodología de trabajo del Programa INSEFOR y como estrategia general, se

seleccionaron especies y regiones en todo el territorio nacional, donde mayor es la
actividad de reforestación y donde los terrenos son de aptitud forestal. Conjuntamente con
las organizaciones públicas y privadas se realizaron las labores de identificación y
clasificación da fuentes semilleras, logrando así un inventario a nivel nacional
adecuadamente clasificado, el cual es la base para la actividad de manejo en favor de la
producción de semillas.
Tomando como base los resultados de la encuesta, se priorizaron especies forestales

nativas que mayor volumen de semilla se moviliza, y que por lo tanto son las más usadas
para el establecimiento de plantaciones forestales y agroforestales, también se tuvo en
cuenta especies con alto potencial y que presentan algún grado de amenaza de
desaparecer. Los criterios utilizados para seleccionar las especies fueron:

• Especies forestales nativas preferidas por los interesados en los planes de
reforestación
• Especies forestales nativas maderables con uso industrial
• Volumen movilizado de semillas
• Existencia de plantaciones o bosque natural con los requisitos mínimos para el
establecimiento de una fuente semillera.
• Especies forestales en peligro
Con este reconocimiento se registraron 29 especies forestales nativas, en todo el territorio

nacional, aunque existen otras con gran potencial para satisfacer las necesidades del
país, su demanda no es alta en comparación con algunas especies introducidas, debido a
la escasa promoción en el país, o por desconocimiento en el manejo silvicultural, pese a
esto la demanda de estas especies va en aumento.
Dentro de las especies forestales nativas el Bombacopsis quinata es la más reforestada

a nivel nacional, seguida por el Tabebuia rosea, Cordia alliodora y Alnus jorullensis, lo
cual justifica la implementación de programas de mejoramiento de semillas forestales
orientado a mejorar las plantaciones, manteniendo así la base genética para futuros
programas de mejoramiento genético y de conservación ex situ e in situ.
También dentro de la lista de especies forestales que el INSEFOR ha identificado la

existencia de fuentes semilleras, aparecen ocho especies clasificadas como de riesgo
bajo o medio de desaparecer, según la lista de plantas colombianas en peligro publicadas
por el Instituto de Investigaciones de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt
(versión julio de 1997). Para este caso, los pequeños grupos de árboles, que no cumple
las exigencias mínimas para considerarse como fuente semillera, se deben considerar
con el fin de asegurar el recurso genético, y se deben registrar como fuente de
conservación y tomar las medidas para su protección. Las especies forestales registradas
por CONIF, consideradas como en peligro y que merecen especial atención, se enumeran
a continuación:
ESPECIE CATEGORIA DE RIESGO
Bombacopsis quinata En peligro *

Quercus humboldtii Vulnerable **
Juglans neotropica Vulnerable
Cariniana pyriformis Vulnerable/en peligro
Swietenia macrophylla Vulnerable/en peligro
Decussocarpus rospigliossi Vulnerable/en peligro
Podocarpus oleifolios Vulnerable/en peligro
Promnopitys montana Vulnerable/en peligro
* Riesgo medio
** Riesgo bajo
5.2 Selección de Fuentes semilleras
Una vez seleccionadas las especies prioritarias, se inició un reconocimiento por todo el
territorio nacional, con el apoyo de entidades públicas y privadas, para identificar y

seleccionar fuentes semilleras con especies nativas, para lo cual se visitaron plantaciones
forestales y bosques naturales en todo el país. Es importante destacar, que los predios o
sitios donde se ubicaron las fuentes semilleras fue en lo posible de propiedad de
entidades como las Corporaciones Autónomas Regionales, Secretarías de Agricultura,
Comités de Cafeteros, Compañías de Reforestación y Empresas Públicas; sin embargo,
únicamente el 31.2% de las fuentes semilleras clasificadas fue posible ubicarlas en
predios públicos, y el 68.8% restante están ubicadas en predios de propiedad privada,
atendiendo al hecho de que sus propietarios están interesados en utilizarla como área
productora de semilla, y la Corporación correspondiente se compromete a darle
seguimiento y fomentar el uso de la misma.
En cada plantación o bosque natural seleccionado, se aplicó un muestreo para determinar

las características fenotípicas de los árboles que se convertirían en posibles productores
de semillas; siguiendo la metodología indicada el numeral 3.5. Esta información es clave
para saber si las áreas evaluadas califican para convertirse en fuentes de semillas y
determinar así, los tratamientos silviculturales necesarios para cumplir con el objetivo de
producir semilla con mayor calidad genética, que la semilla comercial corriente.
El Programa INSEFOR, con el fin de abastecer semilla de calidad conocida comenzó la labor
de identificar y clasificar fuentes semilleras de especies forestales nativas en todo el territorio
nacional. Entre 1995 y 1998 se han identificado 109 fuentes semilleras de 29 especies
forestales de las cuales 11 corresponden a la categoría fuente seleccionada, una a la
categoría rodal semillero, una a la categoría Huerto Semillero Genéticamente Comprobado y
96 a la categoría de más baja calidad genética que es la fuente identificada (figura 2 ).
Figura 2. Distribución de fuentes semilleras por calidad genética
FI
88%
FI
RS
FS
HSGC
RS
FS 1%
HSGC
10%
1%
La especie que más fuentes semilleras se han clasificado es el Quercus humboldtii con 17
fuentes, seguida del Cordia alliodora con 15, Tabebuia rosea con 11 y Alnus jorullensis y
Cedrela odorata con 7 cada una. Es de destacar también, que especies como el
Bombacopsis quinata y el Swietenia macrophylla son de alta demanda a nivel nacional,
sin embargo, solamente se han encontrado cuatro (4) y tres (3) fuentes semilleras,
respectivamente, ubicadas en la Costa Atlántica. Esto es un panorama general de la
importancia del abastecimiento de semillas forestales en calidad conocida y cantidad
adecuadas y que justifica aún más emprender programas de Mejoramiento Genético
Forestal e investigación en semillas. En el anexo 1, se muestra la lista de fuentes semilleras
identificadas por el Programa INSEFOR, el listado incluye, la especie, el código, la ubicación

geográfica, la altitud, clima, área y el nombre de la entidad en la cual esta bajo su jurisdicción
cada fuente semillera; estas se encuentran registradas en la base de datos FUESEMILL.
El mayor número de fuentes semilleras (69) se ubicaron en la Zona Andina, correspondiente

a 18 especies forestales, en la Costa Atlántica se identificaron 22 fuentes semilleras (20.2%)
para 10 especies, en la región de la Orinoquia se ubicaron 12 fuentes (11%) para nueve
especies y en la Costa Pacífica seis fuentes semilleras (4.6%) correspondiente a 5 especies.
El total de área ocupada por las 109 fuentes semilleras identificadas por el Programa
INSEFOR es de 733.6 hectáreas, distribuidas en 654.9 ha para la Zona Andina, 52.7 ha para
la Costa Atlántica y 26 ha para las regiones de la Orinoquia y Costa Pacífica. En la tabla 1 se
muestra ésta distribución descriminada por especie.
Tabla 1 . Distribución de las fuentes semilleras por regiones
ZONA ANDINA COSTA ORINOQUIA COSTA TOTAL

ESPECIE ATLANTICA PACIFICA
Número AREA Númer AREA Númer AREA Númer AREA Númer AREA
fuentes (ha) o (ha) o (ha) o (ha) o (ha)
fuentes fuentes fuentes fuentes
Alnus jorullensis 7 62 7 62
Anacardium excelsum 2 3 2 3
Apeiba aspera 1 1.21 2 1.2 3 2.41
Aspidosperma dugandii 1 0.1 1 0.1
Bombacopsis quinata 4 9.2 4 9.2
Cariniana pyriformis 5 32.9 1 1 6 33.9
Cariodendron orinocense 1 0.5 1 0.5
Cedrela montana 2 50.8 2 50.8
Cedrela odorata 3 13.13 1 2.5 3 1.2 7 16.83
Cordia alliodora 12 205.8 1 0.5 1 1.0 1 1.0 15 208.3
Cordia gerascanthus 2 26 2 2.2 1 1.0 5 29.2
Decussocarpus rospigliossii 3 4.5 3 4.5
Dialyantera sp 1 1.0 1 1
Genipa americana 1 1.5 1 1.5
Hevea brasiliensis 2 3.2 2 3.2
Jacaranda copaia 2 2.0 1 13 1 0.9 4 15.9
Juglans neotropica 2 4.4 2 4.4
Laphoensia speciosa 1 0.8 1 0.8
Myrcianthes leucoxyla 1 0.5 1 0.5
Podocarpus oleifolios 1 0.7 1 0.7
Prumnopites montana 1 0.7 1 0.7
Pseudosamanea guachapele 1 0.2 1 0.2
Quercus humboldtii 17 167.4 17 167.4
Schizolobium parahybum 3 6 1 0.5 4 6.5
Swietenia macrophylla 3 1.15 3 1.15
Tabebuia rosea 5 74 6 32.5 11 106.5
Virola dixonii 1 0.9 1 0.9
Virola reedii 1 0.9 1 0.9
Vochysia tetraphylla 1 0.8 1 0.8
TOTAL 69 654.13 22 52.65 12 21.1 6 4.9 109 733.59
5.3 Registro de fuentes semilleras
En la mayoría de los países tropicales, el registro y la certificación de semillas y en

general de material reproductivo vegetal ha sido canalizado con todo esfuerzo hacia
especies agrícolas especialmente de granos básicos como café, cacao, caña, maíz, frijol,
entre los más destacados.

Las especies forestales no han entrado en esta etapa de registro ni de certificación,
posiblemente por su poca participación dentro del PIB y porque la actividad reforestadora
apenas esta tomando impulso.
Una de las metas del Programa INSEFOR es la creación y puesta en marcha del Registro
Nacional de Fuentes Semilleras, en el cual se describen las características de las áreas
de productoras de semilla, la ubicación y el clima donde crece.
Los principales objetivos de crear y mantener un registro de fuentes semilleras son:
• Tener un inventario nacional y la información pertinente de cada una de las fuentes

semilleras clasificadas.
• Facilitar al usuario de la semilla su obtención y utilización.
• Garantizar a los reforestadores material genético de mejor calidad para una zona
biogeográfica dada.
• Mantener la identidad de la semilla y del material vegetativo, lo que permite utilizar el

material las veces que sea necesario.
• Uniformizar la información general y los precios dentro de las mismas categorías
5.4 Base de datos sobre fuentes semilleras - FUESEMILL
La base de datos en la practica es un registro de datos que genera un listado y archivo

de las fuentes semilleras que han sido calificadas y clasificadas, atendiendo al concepto
de fuente semillera. Para mantener la información relacionada con áreas productoras de
semilla, se creó una base de datos denominada FUESEMILL, diseñada para la captura y
recuperación de la información recopilada en los sitios de donde se ubican las fuentes.
La base de datos se desarrolló en el sistema administrador de base de datos ACCESS de

Microsoft, bajo el ambiente Windows y recopila en forma concreta la información
necesaria para la ubicación, determinación y evaluación de las fuentes semilleras de
especies forestales que se han incluido como productoras de germoplasma de mayor
calidad genética que la semilla comercial corriente.
FUESEMILL esta compuesta por varios archivos o tablas que están intercomunicados por
medio de códigos, conformando así una base de datos relacional. Los archivos que
componen la base de datos son:
• Fuentes semilleras. Contiene los datos correspondiente a las fuentes semilleras como
son: especie, procedencia, información geográfica, información climática,
características de la fuente. A cada fuente se le asigna un código para su
identificación, que esta compuesto por tres caracteres numéricos y tres alfabéticos; los
primeros hacen referencia a un orden secuencial y los alfabéticos identifican la entidad
dentro de cuya área jurisdiccional se ubica la fuente.
El código de cada fuente es única e invariable, de tal forma que la fuente tendrá
siempre el mismo código. En caso que desaparezca una fuente, el número no se

volverá a utilizar, y si se llegara a reemplazar por otra plantación, se le asignaría un
nuevo código, por cuanto el material genético es diferente al originalmente establecido.
• Departamentos. Contiene los códigos y nombres de departamentos del país, según la

división política del DANE. Facilita la selección de un departamento para evitar la
digitación del nombre.
• Municipios. Códigos y nombres de los municipios del país, según la división política
del DANE.
• Estaciones Meteorológicas. Contiene los códigos, nombres, ubicación geográfica,

promedios mensuales de precipitación y temperatura de cada una de las estaciones
meteorológicas registradas en el IDEAM. Los promedios mensuales de precipitación y
de temperatura son históricos de acuerdo con el número de años de medición de cada
estación.
• Clasificación de fuentes semilleras. Contiene los datos correspondientes a la forma

y área de la parcela muestreada, así como también el diámetro, altura y clase de los
árboles muestreados, de acuerdo con la metodología establecida.
La recuperación o consulta de datos se puede efectuar a nivel de una fuente, una especie
o en forma general considerando todas las fuentes.
La actualización o modificación de datos de una fuente semillera se puede efectuar en el

momento de hacer una consulta, bien sea por el código de la fuente o por el nombre de la
especie. En el anexo 3 se muestra el listado general por especie obtenido de la base de
datos FUESEMILL, el cual da una información completa sobre las características y
ubicación de cada fuente semillera.
6. MANEJO EN CAMPO DE FUENTES SEMILLERAS
La cuantificación de la calidad de las fuentes semilleras, no es el único paso en el

establecimiento de áreas productoras de semilla, el proceso implica la depuración de los
individuos de calidad indeseable, área de aislamiento para evitar la contaminación de
polen externo a la fuente, fertilización y limpias periódicas. De esta manera la fuente
semillera representa una medida interina para producir semilla de mejor calidad genética
en el corto y mediano plazo.
Las fuentes semilleras establecidas sobre plantaciones o bosque natural, la ganancia

genética es menor que en huertos semilleros. Esta diferencia resulta de la intensidad de
selección, que es mucho menor (1:<20) para las fuentes semilleras que para los huertos
(1:>1000). Sin embargo, los rodales técnicamente manejados pueden producir ganancias
importantes en características de alta heredabilidad, como la forma del fuste (Shelbourne,
1969, citado por Mesén, 1995), y tienen ciertos atributos que los hacen muy importantes
cuando no se tienen programas avanzados de mejoramiento genético.
En el inicio del Programa INSEFOR se difinieron a nivel nacional, seis fuentes semilleras
con el fin de realizar un manejo técnico a nivel piloto y demostrativo, orientado a mejorar
la calidad genética del material reproductivo forestal y aumentar la producción de
semillas. Se seleccionaron seis fuentes semilleras de cinco especies forestales de alta

demanda a nivel nacional y con edad suficiente para la producción de semilla, ubicadas
en tres regiones naturales de Colombia, En la tabla 2 siguiente se indican las fuentes
semilleras seleccionadas para su respectivo manejo:
Tabla 2 Características generales de las fuentes semilleras manejadas por CONIF
ESPECIE CODIGO CLASIFICACION MUNICIPIO DEPTO ALTITUD ZONA ARE ENTIDAD

msnm DE A
VIDA (ha)
Alnus jorullensis 006EPM Fuente seleccionada Manizales Caldas 2.800 bmh-MB 1 Aguas
Cariniana pyriformis 055COR Fuente seleccionada San Luis Antioqui 480 bmh-T 0.7 UGAM
Cordia alliodora 001CON Rodal semillero Tumaco a 30 bh-T 1 CONIF
Genipa americana 027CVC Fuente identificada Palmira Nariño 1250 bh-PM 1.5 CVC
Tabebuia rosea 071CVS Fuente identificada Montería Valle 20 bs-T 6 CVS
Tabebuia rosea 058CON Fuente identificada Tumaco Córdob 30 bh-T 1 CONIF
a
Nariño
Para efectuar el manejo en favor de la producción de semilla mejorada se siguieron los

siguientes pasos generales:
1. Evaluación general del estado actual de la fuente: Definiendo densidad, número de

árboles en cada categoría, número de árboles a entresacar, selección y marcación de
los árboles a dejar finalmente; así como datos adicionales de estado fitosanitario y
composición del rodal.
2. Selección e identificación de la calidad de los árboles. Siguiendo la metodología

aplicada por INSEFOR se evaluaron y calificaron cada todos los árboles que
componen la fuente de acuerdo a los criterios de calidad: clase 1. Arbol de muy buenas
características, clase 2. Arbol de regulares condiciones y clase 3. Arbol que debe ser
eliminado del rodal por presentar muy malas características de desarrollo y calidad,
éstos criterios de selección y evaluación fueron definidos con fines maderables.
Además de las pautas anteriores se tomaron en cuenta otros aspectos logísticos, de

acuerdo a las posibilidades e interés institucional para la ejecución en convenio con otras
entidades, de manera que se garantice el seguimiento, permanencia y aplicabilidad
práctica e inmediata. Es así como se seleccionaron fuentes ubicadas en sitios o áreas de
propiedad oficial o de entidades que garantizan la permanencia, el manejo y el cuidado de
las áreas productoras de semillas.
Con base a esta metodología aplicada por el INSEFOR se determinó las características
silviculturales de las fuentes semilleras, las cuales se presentan antes del manejo en la
tabla 3.
Tabla 3 Características silviculturales de las fuentes semilleras antes del manejo

ESPECIE CLASIFICACION ARB/H ARB/HA ARB/HA ARB/HA ALTURA DIAMETR OBSERVACIONE
A CLASE 1 CLASE 2 CLASE 3 MEDIA O S
(m) MEDIO
(cm)
Alnus jorullensis Fuente seleccionada 160 100 60 0 18.0 38.5 Plantación
Cariniana pyriformis Fuente seleccionada 224 40 99 85 15.9 20.1 Plantación
Cordia alliodora Rodal semillero 453 117 158 178 30.5 34.5 Plantación
Genipa americana Fuente identificada 440 161 159 120 18.0 17.3 Arboretum
Tabebuia rosea (Mon) Fuente identificada 120 25 60 35 20.3 32.9 Plantación
Tabebuia rosea (Tum) Fuente identificada 152 123 29 0 20.2 32.9 Parcela exptal

Todas las fuentes semilleras se establecieron en plantaciones ya establecidas, a
excepción, de la especie Tabebuia rosea establecida en la Estación Silvicultura La
Esperiella de propiedad de CONIF, la cual es una percela experimental que tenía como
objetivo evaluar el comportamiento del Tabebuia rosea, bajo tres porcentajes de mezcla
con las especies Cordia alliodora y Cedrela odorata; dado que el comportamiento de T.
rosea, mostró un rendimientos aceptables en las condiciones de Tumaco, se decidió
eliminar las otras dos especies y convertir esta parcela en área productora de semillas,
como alternativa viable para proveer germoplasma para las condiciones ambientales de la
región de Tumaco (bh - T).
Las demás fuentes semilleras seleccionadas para manejo se establecieron sobre

plantaciones comerciales, que por estar ubicada en predios de entidades públicas o
privadas se garantiza su continuidad y utilización. Esto presenta una ventaja; ya que los
árboles son de la misma edad y están sometidos a condiciones ambientales e
intervenciones similares. Por lo tanto, la selección fenotípica es más efectiva y estima
mejor la variación genotípica.
Con base en el diagnóstico inicial, obtenido del inventario al 100% y siguiendo la

metodología que el INSEFOR aplica para la identificación, selección y manejo de fuentes
semilleras, se realizaron las labores de mejoramiento de seis rodales indicados en la tabla
3, encaminado hacia la producción en cantidad y calidad de material propagativo. Una vez
seleccionado los rodales se orientó el manejo siguiendo los siguientes pasos:
Aclareo: El mejoramiento del rodal implica la remoción de todos los individuos de la clase
tres (3) y tantos de la clase dos (2) como sea necesario para lograr la densidad final
deseada. Estos aclareos son mucho más fuertes que los aclareos silviculturales típicos,
por lo que fue necesario realizar la depuración en dos etapas (una cada año), evitando así
abrir la plantación en forma drástica en una sola intervención. Sin embargo, el rodal de
Cordia alliodora y Alnus jorullensis, al hacerle la primera intervención hubo
volcamiento de siete y cinco árboles respectivamente.
El régimen de dos aclareos, consiste en mantener relación del 50% entre el espacio
resultante y la altura dominante, en donde se corta un 60% de la masa forestal inicial en
el primer raleo y un 40% de la masa forestal remanente en el segundo raleo. Estos dos
raleos son suficientes para mejorar la amplitud de la copa que es estrecha especialmente
en las especies Alnus jorullensis, Cordia alliodora y Cariniana pyriformis.
Para efectuar estos aclareos se tuvieron en cuenta los siguientes aspectos:
• La copa de los árboles remanentes se liberó en tres lados, esto implica, a veces, la
remoción de árboles de clase 1, como es en el caso de las fuentes de Cordia
alliodora y Genipa americana.
• Se eliminaron todos los árboles clase 3, aunque la distribución final no sea

homogénea, es el caso de las fuentes con la especie T. rosea, que se notan grandes
claros dentro del área productora de semilla.
• La selección se concentró primero en las características de forma, eliminando los

árboles bifurcados, sinuosos, de ramas gruesas y enfermos. Una vez realizado esto, se

marcaron los árboles para un segundo raleo dirigido a eliminar los árboles de clase 2 y
a mejorar el espaciamiento.
• Los desechos y productos de los raleos, se extrajeron de las fuentes, evitando así
focos de infección de enfermedades o ataques de insectos que puedan afectar los
árboles en píe.
En la tabla 4 , se indica un esquema de las intervenciones realizadas a las fuentes

semilleras con el fin de mejorar la calidad de la semilla.
Tabla 4 Resumen del manejo realizado a seis fuentes semilleras de especies nativas
ESPECIE DENSIDAD 1° ACLAREO 2° ACLAREO DENSIDAD AISLAMIENTO
INICIAL (año 1) (año 2) FINAL
arb/ha arboles árboles (%) árboles árboles (%)* arb/ha
clase 3 clase 2 clase 2 Clase 1 Clase 1
Alnus jorullensis 160 25 15.6 35 25.9 100 Franja de 50 m
Cariniana pyriformis 224 85 37.9 99 71.2 40 Total
Cordia alliodora 453 178 93 59.8 65 35 54.9 82 Franja de 100 m
Genipa americana 440 120 27.3 159 41 62.5 120 Total
Tabebuia rosea (Mon) 120 35 29.2 60 70.6 25 Total
Tabebuia rosea (Tum) 152 10 6.6 21 14.8 121 Total
*: Porcentaje sobre la masa forestal remanente
Aislamiento: El área de aislamiento de los rodales tiene como fin disminuir la

contaminación de polen de árboles inferiores cercanos a las fuentes semilleras. El
aislamiento total de un rodal es casi imposible de logar, pero se pueden tomar medidas
para reducir la contaminación a niveles mínimos. En este caso las fuentes semilleras de
Cariniana pyriformis, Genipa americana y Tabebuia rosea, presentan un aislamiento
total, es decir en su alrededor no se encuentran individuos cercanos de la misma especie
que puedan polinizar los árboles seleccionados.
Las fuentes semilleras de Alnus jorullenisis y Cordia alliodora, por estar localizadas en
una plantación de mayor tamaño, 2 y 10 hectáreas, respectivamente, fue necesario
establecer una zona de dilución de polen alrededor del los rodales. El procedimiento
consiste en realizar el mismo manejo (depuración, limpias) que el área de recolección de
semilla, en una franja de 100 metros para la fuente de Cordia alliodora y 50 metros
alrededor de la fuente de Alnus jorullensis, en la cual también se eliminan los fenotipos
inferiores, pero esta área no se utiliza para la recolección de semilla. Los árboles de la
franja aportan polen al rodal y sirven como barrera física contra polen contaminante de
áreas no manejadas.
El aislamiento de un rodal pequeño, aumenta considerablemente los costos de

mantenimiento, es así, que para establecer la franja de aislamiento de la fuente semillera
de Cordia alliodora fue necesario manejar ocho hectáreas más, aplicando los mismos
criterios que se utilizan para el manejo de una hectárea como área de recolección de
semillas. Para la fuente semillera de Alnus jorullensis, se manejó una hectárea como
zona de aislamiento de polen.
El ancho de la franja de aislamiento para casi la totalidad de las especies forestales

nativas aún no ha sido estudiada, esto depende del alcance de los dispersores del polen
(viento, animales, agua). Como norma general Mesén (1995), recomienda un ancho
mínimo de 100 m; sin embargo, esta distancia es diferente para cada especie, inclusive

para cada sitio según algunas condiciones climáticas como la velocidad e intensidad de
viento y lluvia.
Protección: La protección involucra una serie de medidas para evitar daño a los árboles
o a la semilla. Para las fuentes semilleras de Alnus jorullensis, Genipa americana y
Tabebuia rosea (Montería), fue necesario cercar el área para evitar el acceso de ganado
y personas ajenas a las fuentes; en el caso de las especies Cariniana pyriformis, Cordia
alliodora y Tabebuia rosea ubicada en Tumaco, no fue necesario aplicar esta medida, ya
que el predio donde se ubica no tiene actividad ganadera, ni hay paso permanente de
personas por el lugar, únicamente se demarcaron los límites del área de recolección de
semillas.
La limpieza permanente (mínimo tres anuales) dentro del rodal, también es una actividad
necesaria para facilitar las labores de cosecha de semilla y porque mantiene la fuente
semillera libre de competencia al inicio de la floración.
Es de anotar que el mayor esfuerzo y la mayor inversión de recursos económicos en el

establecimiento de una fuente semillera, se aplica en los tratamientos iniciales (2 ó 3
primeros años), especialmente en la depuración de individuos de baja calidad fenotípica;
las labores posteriores son actividades más simples que consisten en la inducción de la
floración por medios químicos, biológicos o mecánico, mantenimiento de cercos,
protección y limpiezas permanentes.
Registros: Para todas las fuentes semilleras se llevan registros detallados, que permiten
llevar un control preciso de las operaciones y suministrar información completa a los
usuarios de estas fuentes. Para ello se utiliza la base de datos del Registro Nacional de
Fuentes Semilleras - FUESEMILL, descrita anteriormente.
7. GANANCIAS GENÉTICAS
Es importante destacar que el número de raleos puede ser dos, tres o cuatro, lo que
depende de la vulnerabilidad de los árboles a la acción del viento. La idea es disminuir
significativamente la densidad, ya que mientras mayor es la distancia entre árboles
remanentes, menor es la probabilidad de que dichos árboles sean parientes y por lo tanto
menor es la consanguinidad (Ipinza, 1998).
Cuando se hace una depuración a una fuente semillera se eliminan los árboles de menor
calidad. Debido a que ésta selección se realiza en función de su fenotipo, la ganancia
genética (G) que se obtiene de la misma depende de la heredabilidad (h² ó H²) y del
diferencial de selección (S), o intensidad de raleo o proporción de árboles a dejar en pie,
esto se expresa como sigue (Ipinza, 1998):
G = h² * S
Otra forma de expresar la ganancia genética de un rasgo específico es:
G = h² *isf, donde:
i = Diferencial de selección
sf = Desviación estándar fenotípica del rasgo a mejorar (DAP, altura, Forma).

La heredabilidad para los rasgos de crecimiento tienden a ser inferiores que la forma del
fuste (Zobel y Talbert, 1988). No obstante recientes estudios sostienen que las evidencias
de la superioridad de la rectitud sobre los rasgos de crecimiento son débiles (Cornelius,
1994, citado por Ipinza, 1998). Ambos grupos de variables fluctúan entre 0.1 a 0.3
En la tabla 5 se presentan las estimaciones de las ganancias genéticas de las fuentes

semilleras para rasgos que fluctúan en heredabilidad de 0.1 a 0.3.
Tabla 5 Ganancias genéticas (%) esperadas para valores de heredabilidad entre 0.1 y 0.3
ESPECIE HEREDABILIDAD
0.1 0.2 0.3

Alnus jorullensis
Diámetro 2 4 9
Altura 1 3 6
Forma de fuste
6 9 18
Cariniana pyriformis
Diámetro 3 6 10
Altura 2 5 8
Forma de fuste
7 11 15
Cordia alliodora
Diámetro 3 5 12
Altura 2 4 5
Forma de fuste
9 12 18
Genipa americana
Diámetro 3 6 10
Altura 2 3 5
Forma de fuste
10 13 21
Tabebuia rosea (Mon)
Diámetro 2 5 7
Altura 1 4 5
Forma de fuste
9 14 20
Tabebuia rosea (Tum)
Diámetro 3 5 8
Altura 2 4 5
Forma de fuste
8 10 14
8. PROTOCOLOS DE ANALISIS PARA CERTIFICACION DE SEMILLAS

FORESTALES
El Programa de Investigación en Semillas de Especies Forestales Nativas - INSEFOR,

promovido por el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural y liderado por la Corporación
Nacional de Investigación y Fomento Forestal - CONIF, tiene dentro de sus metas y
prioridades el adelanto de ensayos de investigación para apoyar el desarrollo de los
proyectos en semillas. El presente estudio hace parte del Programa INSEFOR y se

enmarca dentro de la priorización de las necesidades de investigación en semillas
forestales.
Las condiciones óptimas para la germinación de semillas en laboratorio no han sido

determinadas para la mayoría de especies forestales nativas.
Esto constituye un obstáculo para la certificación de la calidad fisiológica por parte de las
entidades certificadoras, por cuanto cada laboratorio aplica condiciones diferentes y
obtiene por consiguiente distintos resultados en sus pruebas. Esto hace que lo usuarios
no puedan tener confiabilidad ni certeza de la calidad del material reproductivo que
adquieren y que además, germinan las semillas en medios diferentes a las establecidas
por la instancia certificadora.
Los procedimientos aproximados, replicables y estandarizados de muestreo y las pruebas

de semillas son vitales para determinar la calidad de la semilla, incrementar la
productividad de la cosecha y servir de base para implementar las regulaciones que
faciliten el comercio y la certificación de semillas (Gosling, 1995, citado por Jara y López,
1996).
En la actualidad no existen protocolos sobre pruebas de germinación para muchas

especies forestales tropicales, a la fecha solo se tienen dos especies con reporte
conocido para estandarizar las pruebas de laboratorio: Cordia alliodora y Sweitenia
macrophylla (Trujillo, 1998). Gran parte de la información existente sobre este aspecto se
refiere a experiencias y estándares para especies de la zona templada.
En el presente informe, se presentan los resultados sobre la optimización de condiciones

ambientales en el laboratorio para cinco especies forestales nativas de amplia demanda
nacional: Tabebuia rosea, Cordia alliodora, Cedrela odorata, Cariniana piryformis y Alnus
jorullensis, que constituyen los primeros pasos para el establecimiento de protocolos de
certificación de estas cinco especies.
Los protocolos fueron desarrollado en el Laboratorio de Semillas Forestales de la

Corporación Nacional de Investigación y Fomento Forestal - CONIF, localizado en Santafé
de Bogotá. El desarrollo de la investigación se basó en el documento producido por
CONIF, titulado “Documentación Guía para el Desarrollo de la Investigación en Semillas
de Diez Especies Forestales”.

8.1 Protocolo De Análisis Para La Especie Tabebuia Rosea
El objetivo de esta investigación es desarrollar el protocolo de investigación para la

especie Tabebuia rosea y definir los procedimientos adecuados para obtener los
mayores porcentajes de germinación. Se evaluó los efectos combinados de dos períodos
de luz, dos temperaturas y tres sustratos, sobre la capacidad germinativa de semillas de
roble (Tabebuia rosea).
• Metodología
Los tratamientos consistieron en la combinación de tres factores ambientales: sustrato,

luz y temperatura. Se emplearon tres sustratos: Tierra más arena en proporción 1:2, papel
de germinación y papel filtro; dos períodos de luz (12 y 24 horas); y dos temperaturas (28
y 30°C). Las pruebas se realizaron en una cámara de germinación con control de luz y
temperatura y un cuarto de germinación, también, con control de estas dos variables. A la
semilla se le aplicó un fungicida (Vitavax) y no se empleó ningún tratamiento
pregerminativo. Para la germinación de las semillas se emplearon cajas de petri y cajas
plásticas transparentes con tapa desinfectados con cloro. Los sustratos fueron
esterilizados previamente en autoclave a una temperatura de 254°F y una presión de
agua de 1.2 Kg/cm² durante 30 minutos. Se aplicó riego con agua esterilizada tan pronto
como se colocaron las semillas a germinar. Se registró la germinación diaria cuando la
plúmula comenzó a emerger.
La prueba se estableció utilizando un diseño en bloques completos al azar en arreglo

factorial con tres niveles de factores (3 x 2 x 2) para un total de 12 tratamientos. Debido a
las restricciones de capacidad de la estufa germinadora se utilizaron 3 repeticiones de 50
semillas cada una por tratamiento. Se determinó el porcentaje de germinación final y el
valor de germinación; esta última variable es un concepto que combina el vigor
germinativo y la velocidad de germinación (Djavansir y Pourbeik, 1976) y es calculado
mediante la siguiente fórmula:
VG = (Σ VGD/N) x (PG x 10)
VG: Valor de germinación

VGD: Velocidad de germinación diaria, que se calcula dividiendo el porcentaje de
germinación acumulado entre el número de días transcurridos desde la
siembra.
N: Número de conteos diarios, iniciando el día que germina la primera semilla.
PG: Porcentaje de germinación total al final del ensayo.
Se efectuó un análisis de varianza (ANDEVA), con el fin de determinar las diferencias

significativas entre tratamientos y las posibilidades de interacciones entre ellos. Para ello
fue necesario transformar el porcentaje de germinación utilizando la función arcoseno √x.
Se aplicó la prueba de comparación de rangos múltiples de DUNCAN para diferenciar los
tratamientos (Snedecor y Cochran, 1967). El análisis de los datos se realizó utilizando el
paquete estadístico SAS.
Se realizaron pruebas rutinarias de pureza, peso de 1.000 semillas y contenido de

humedad, siguiendo la metodología de ISTA (1993).

• Resultados y discusión
Los análisis de pureza, peso y contenido de humedad se muestran en la siguiente tabla:
VARIABLE VALOR
Pureza (%) 96.12
Peso de 1.000 semillas (gr) 28.86
Contenido de humedad (%) 9.18
No. de semillas/Kg 34.649
La única variable que presenta diferencias siginificativas (p < 0.05) en relación al

porcentaje de germinación total es el sustrato, el fotoperíodo y las temperaturas utilizadas
no presentaron diferencias en la germinación de la semilla del Tabebuia rosea. Las
interacciones entre los tres factores (sustrato, luz y temperatura) fueron estadísticamente
significativas al 5% de probabilidad. El período máximo de germinación bajo condiciones
de laboratorio para esta especies es de 25 días.
El valor de germinación (VG) presentó diferencias significativas para todas las variables
utilizadas (sustrato, luz y temperatura). En el sustrato tierra y arena la germinación fue 6%
más alto que el papel de germinación y 3% mayor que el papel filtro, de igual manera el
valor de germinación es más alto en el sustrato tierra y arena, como se muestra en la
tabla 1.
Tabla 1. Germinación del Tabebuia rosea como respuesta al efecto principal
SUSTRATO (%) VG
Tierra + arena 86.04 A 0.74 A
Papel de germinación 79.79 B --
Papel filtro 82.92 B 0.55 B
Promedios con igual letra no son significativamente diferentes, según la prueba de
Duncan (p<0.05)
%: germinación total al final del ensayo; VG: Valor de germinación
Con relación a las temperaturas evaluadas, el porcentaje de germinación más alto fue
determinado a 30°C, sin embargo, estadísticamente fue igual a la germinación obtenida
bajo condiciones de temperatura de 28°C; situación similar ocurre con el valor de
germinación el cual es significativamente mayor (p<0.05) a 30°C (tabla 2). Esto coindice
con lo manifestado por Trujillo (1998a), en el sentido de que la temperatura ideal para la
germinación tiende a ser igual o similar a la que predomina en el hábitat natural de las
especies.
Tabla 2. Germinación como respuesta a la temperatura
TEMPERATURA (%) VG
30°C 84.16 A 0.79 A
28°C 81.67 A 0.50 B
Duncan (p<0.05)
%: germinación total al final del ensayo; VG: Valor de germinación

También se determinó una influencia del fotoperíodo en el porcentaje de germinación y el
valor de germinación. La germinación total fue mayor con el tratamiento de 12 horas luz y
12 horas oscuridad, pero no significativamente; sin embargo, en relación al valor de
germinación (VG) la mejor respuesta se obtuvo con el tratamiento 24 horas de luz
constantes (Tabla 3). Debido al efecto positivo de la luz en la germinación, el roble parece
tener semillas fotoblásticas. Desde el punto de vista práctico, es más conveniente obtener
un valor de germinación alto, ya que esta variable es una medida del vigor y también de la
germinación total.
Tabla 3. Germinación como respuesta a la luz
FOTOPERIODO (%) VG
24 h luz 80.55 A 0.80 A
12 h luz 85.28 A 0.49 B
Duncan (p<0.05)
%: germinación total al final del ensayo; VG: Valor de germinación.
La interacción entre los tratamientos utilizados presentó diferencias estadísticas al nivel

del 5% de probabilidad en relación a la germinación total y altamente significativas
(p<0.01) para el valor de germinación (VG). La mejor germinación del Tabebuia rosea se
obtuvo con la combinación de papel filtro como sustrato, 12 horas luz y 30°C de
temperatura, para el valor de germinación (VG), las mejores respuestas se obtuvieron con
la combinación del papel filtro, 24 horas luz y 30°C, la cual se obtuvo también en tierra
más arena, bajo 24 horas de luz y 30°C. En la tabla 4 se muestran los porcentajes de
germinación logrados de acuerdo a la combinación de tratamientos, resaltando los valores
más altos obtenidos. Los promedios generales se muestran como referencia.
Tabla 4. Porcentajes de germinación de Tabebuia rosea bajo diferentes condiciones

de sustrato, luz y temperatura
SUSTRATO HORAS 28°C 30°C PROMEDIO

LUZ S
Tierra + arena 24 90.0 83.3
12 90.0 80.8 86.0
Papel de 24 74.2 80.0
germinación 12 85.0 80.0 79.8
Papel filtro 24 67.5 88.3
12 83.3 92.5 82.9
Promedios 81.7 81.2
Las complejas interacciones que se presentan entre las diferentes combinaciones

ambientales, no muestran tendencias claras en relación al porcentaje de germinación, sin
embargo, el mayor promedio general se obtuvo con el sustrato tierra más arena,
indicando que es un factor determinante en la germinación de las semilla de esta especie.
Esto coincide con los resultados encontrados por Mesén y Hersame (1996), al indicar que
el sustrato en la germinación del Cedrela odorata y Cupressus lusitanica, posiblemente
mediante su influencia de humedad, es el elemento crítico en la germinación ya que el
agua es el factor determinante para el inicio y desarrollo normal de la germinación, la luz,
el oxígeno y la temperatura son factores secundarios.

Conclusiones
El mejor sustrato para la germinación de semillas de la especie Tabebuia rosea bajo

condiciones de laboratorio fue la mezcla de tierra más arena en proporción 1:2,
posiblemente por la gran retención de humedad de este sustrato, lo que facilidad la
imbibición de la semilla.
La combinación del papel filtro, 12 horas luz y 30°C de temperatura crea el ambiente
favorable para que la semilla de Tabebuia rosea exprese su máxima germinación, sin
embargo, el mayor valor del valor de germinación (VG) se manifestó con la combinación
de 24 horas luz, 30°C y sustrato de tierra más arena o papel filtro. El interés del análisis
del valor de germinación se basa en la teoría que probablemente sólo las semillas que
germinan con rapidez y vigor en condiciones favorables de laboratorio serán capaces de
producir plántulas vigorosas en las condiciones que existen en el terreno, donde una
germinación débil o retrasada suele tener poco progreso.
8.2 Protocolo De Analisis Para La Especie Cordia Alliodora
La especie Cordia alliodora, es una de las pocas semillas forestales a las cuales se les ha
desarrollado métodos para estandarización de técnicas de laboratorio. Se evaluó, en el
laboratorio del CATIE en Costa Rica, las respuestas de germinación a tratamientos
específicos como temperaturas, pH del medio, sustratos y tratamientos pregerminativos
(Samaniego, 1995).
El objetivo de realizar el protocolo con esta especie es la comprobación de los resultados

obtenidos en el CATIE, probando condiciones de luz y sustrato para la germinación de la
semilla en laboratorio, a una temperatura constante de 28 +/- 2°C, encontrado por
Samaniego (1995) como óptima para la germinación del Cordia alliodora
Metodología
Para la comprobación del protocolo con la especie Cordia alliodora, se probaron los
siguientes tratamientos:
Sustrato
1. Tierra más arena en relación 1:2

2. Arena de río
3. Caja petri más papel filtro
Fotoperíodo
1. Luz constante 24 horas

2. 12 horas de luz y 12 horas oscuridad
Para la germinación de las semillas se emplearon cajas de petri y cajas plásticas

transparentes con tapa desinfectados con cloro. Los sustratos fueron esterilizados
previamente en autoclave a una temperatura de 254°F y una presión de agua de 1.2

Kg/cm² durante 30 minutos. Se aplicó riego con agua esterilizada tan pronto como se
colocaron las semillas a germinar. Se registró la germinación diaria cuando la plúmula
comenzó a emerger. Se utilizó semilla de procedencia del rodal semillero ubicado en la
Estación Silvicultural La Espriella en Tumaco - Nariño, la cual se desinfectó previamente
con Vitavax y no se aplicó ningún tratamiento pregerminativo.

factorial con dos niveles de factores (3 x 2) para un total de 6 tratamientos. Se utilizaron 3
repeticiones de 100 semillas cada una por tratamiento. Se determinó únicamente el
porcentaje de germinación final, dado el bajo porcentaje de germinación que se registró
en todos los tratamientos.
Se efectuó un análisis de varianza (ANDEVA) y la prueba de comparación múltiple de

DUNCAN para diferenciar los tratamientos (Snedecor y Cochran, 1967). El análisis de los
datos se realizó utilizando el paquete estadístico SAS.

Resultados
VARIABLE VALOR
Pureza (%) 89.97
No. de semillas/Kg 136547
El tamaño de la semilla de Cordia alliodora de procedencia Tumaco es menor que los

rangos encontrados para la zona andina, mientras que para la procedencia Tumaco el
número de semillas por kilogramo es de 136.547 unidades, para la zona andina es de
60.000 unidades en promedio. Aunque para esta especie, no se tienen parámetros
indicadores del tamaño de la semilla en relación a la germinación, parece que las semillas
de mayor tamaño germinan más rápidamente y tienen más posibilidades de sobrevivencia
que las semillas pequeñas (Trujillo, 1998).
Con base en el análisis de varianza, se encontraron diferencias altamente significativas

(p<0.01) entre los sustratos probados. Teniendo como base el porcentaje de variación
total del diseño utilizado, se determinó que el sustrato es el factor con mayor participación
en la germinación final del C. alliodora. El fotoperíodo no representó un factor importante
en la germinación de esta especie (tabla 1), en este caso, debido a la comodidad, es
preferible mantenerla con luz permanente. La germinación más alta se obtuvo con el
sustrato tierra más arena en proporción 1:2, estos resultados son contradictorios a los
encontrados por Samaniego (1995), quien reporta como mejor sustrato el papel toalla,
seguida por el sustrato arena y, como el peor medio indica la mezcla de tierra más arena.
Esta diferencia de resultados puede ser debida a la baja germinación encontrada en este
ensayo, posiblemente por el poco número de árboles fructificado en el momento de la
recolección de la semilla, lo que desfavorece la panmixia y aumenta los niveles de
endogamia entre individuos.

Tabla 1. Porcentaje de germinación como respuesta al sustrato y al fotoperíodo
SUSTRATO % FOTOPERIOD %
GERMINACION O GERMINACION
Papel filtro 0.80 A Luz 24 horas 6.11 A
Arena 3.70 AB Luz 12 horas 3.33 A
Tierra+aren 9.60 B
a
Duncan (p<0.01)
La interaccion entre los dos factores fueron estadísticamente significativos al 5% de

probabilidad, pero solo representó el 11% del total de la variación en el modelo. Al
combinar los mejores resultados obtenidos se observa que el mayor porcentaje de
germinación del laurel se presenta con la mezcla de tierra más arena, luz 24 horas y una
temperatura constante de 28°C, iniciando la germinación al cuarto día y terminando a los
35 días de sembrada. En la tabla 2 se indica el efecto de las interacciones en relación al
porcentaje de germinación total.
Tabla 2. Porcentaje de germinación como respuesta a la

interacción entre tratamientos
TRATAMIENTOS % DE GERMINACION
Papel filtro + 24 horas luz 0.08 A
Papel filto + 12 horas luz 0.08 A
Arena + 24 horas luz 2.50 A
Tierra + arena + 12 horas luz 4.10 A
Arena + 12 horas luz 5.00 A
Tierra + arena + 24 horas luz 15.0 B
Duncan (p<0.01)
Conclusiones
Una mezcla de tierra más arena de río en proporción 1:2, con un fotoperíodo de 24 horas
y temperatura de 28°C, permiten expresar la máxima capacidad germinativa de las
semillas de Cordia alliodora.
El factor más influyente en la capacidad de germinación de la semillas de laurel es el

sustrato, encontrándose la máxima expresión en el medio tierra más arena en proporción
1:2
El fotoperíodo es un factor poco influyente en la germinación de las semilla de laurel
Es conveniente repetir el ensayo cuantas veces sea necesario, con semilla de la misma
procedencia, pero haciendo la recolección en la época de mayor producción de la fuente
semillera, en Tumaco sucede en el mes de marzo.
En un ensayo de semillas el origen y la calidad de la fuente semillera es decisivo en la

obtención de resultados.

8.3 Protocolo De Analisis Para La Especie Cedrela Odorata
Los rangos de germinación reportados para la especie Cedrela odorata, varían de 35 a

70%, esta variación se desconoce si es por la calidad fisiológica y genética de la semilla o
por las condiciones ambientales de germinación diferentes, lo que no permite conocer la
calidad fisiológica de cualquier lote de semillas.
El objetivo es determinar el máximo potencial de germinación de una muestra de semilla

en el menor tiempo posible, bajo condiciones ambientales óptimas, esto estandariza la
repetición de los ensayos y permite la comparación entre diferentes lotes de semilla de
una misma especie.
El presente protocolo evalúa los efectos de tres tipos de sustratos, dos períodos de luz y
dos de temperatura, sobre la capacidad germinativa de semillas de Cedrela odorata,
permitiendo determinar las condiciones óptimas para la germinación y estandarizar las
normas de análisis para esta especie.
Metodología
Para la comprobación del protocolo con la especie Cedrela odorata, se probaron los
Sustratos

2. Papel de germinación
3. Caja petri más papel filtro
Exposición a la luz

Temperatura del sitio de germinación
1. 25 +/- 2°C
2. 30 +/- 2°C
Para la germinación de las semillas se emplearon cajas de petri y cajas plásticas

transparentes con tapa desinfectados con cloro, el papel de germinación se colocó con
suficiente humedad en una bolsa plástica, previamente desinfectada. Los sustratos fueron
esterilizados en autoclave a una temperatura de 254°F y una presión de agua de 1.2
Kg/cm² durante 30 minutos. Se aplicó riego con agua esterilizada tan pronto como se
colocaron las semillas a germinar. Se registró la germinación diaria cuando la plúmula
comenzó a emerger. Se utilizó semilla de procedencia del fuente Semillera identificada
ubicada en el municipio de San Martín-Meta, la cual se desinfectó previamente con
Vitavax y no se aplicó ningún tratamiento pregerminativo.

factorial con tres niveles de factores (3 x 2 x 2) para un total de 12 tratamientos, tomando
como factor principal el sustrato. Se utilizaron 3 repeticiones de 40 semillas cada una por
tratamiento. Se determinó el porcentaje de germinación total y el valor máximo de la
velocidad de germinación, que es el valor de germinación más alto durante la prueba
(Czabator, 1962).


Resultados
VARIABLE VALOR
Pureza (%) 20.56
Con base en el análisis de varianza, se encontraron diferencias estadísticas significativas

(p<0.05) para el efecto del sustrato y la interacción temperatura, luz y sustrato, sobre la
germinación total del la semilla de Cedrela odorata. Para la variable valor máximo de
germinación (vm) la interacción entre los tres factores fue la única variable que presentó
diferencias estadísticas (p<0.05).
La mayor expresión en la germinación del cedro fue debida al sustrato, encontrándose

12.5% mayor germinación en el sustrato tierra más arena que en papel filtro y 10.1% más
en el sustrato tierra más arena que en el papel de germinación. El valor de germinación
también fue mayor en el sustrato tierra y arena, aunque no estadísticamente
representativo. En la tabla uno se muestra la germinación total y la velocidad de
germinación como respuesta al sustrato. El crecimiento de hongos fue un problema en el
sustrato arena y tierra, a pesar de la esterilización del medio y la desinfección de la
semilla con Vitavax. En el laboratorio de Plagas y Enfermedades Forestales (PPF) de
CONIF, se identificaron dos hongos deuteromicetes: Fusarium sp y Alternaria sp., los
cuales pueden ser parasíticos, aunque no necesariamente en la semilla, si podrían ser
fuente de inóculo al momento de establecer un germinador, si no se aplica un tratamiento
adecuado.
Tabla 1. Germinación del C. odorata como respuesta al sustrato
SUSTRATO % GERMINACION VM DIA

Tierra+arena (1:2) 18.12 A 1.53 A 11
Papel de germinación 8.54 AB 0.57 A 10
Papel filtro 5.60 B 0.60 A 8
Duncan (p<0.05)

VM: Valor máximo de germinación; DIA: día en que alcanza el valor máximo.
También se determinó la influencia del fotoperíodo y la temperatura en el porcentaje de

germinación y el valor máximo de germinación. La germinación aumentó con un
incremento en las horas luz (24 horas constante), aunque, no significativamente. Debido
al efecto positivo de la luz en la germinación de estas semillas, el cedro tiene semillas
fotoblásticas. En el caso de la temperatura, también se presentó un tendencia general de
mayor germinación bajo 25°C que 30°C, esto coincide con la temperatura promedio del
ambiente donde crece el cedro, lo que indica la adaptación de la especie a regenerarse
dentro de su hábitat natural. En la tabla 2, se muestran los porcentajes de germinación y
el valor máximo de germinación obtenidos con relación al fotoperíodo y a la temperatura.
Tabla 2. Germinación del C. odorata como respuesta al fotoperíodo y a la

temperatura
VARIABLE % GERMINACION VM DIA

24 Horas luz 9.17 A 0.74 A 8
12 horas luz 12.3 A 1.05 A 11
25°C 13.3 A 1.12 A 12
30°C 8.2 A 0.67 A 7
Duncan (p<0.05)
Las interacciones entre los tres factores fueron estadísticamente significativos (P<0.05),
en relación al porcentaje de germinación total y el valor máximo de germinación, pero
estas diferencias no son más del 15% del total de la variación en el diseño, lo que indica
que uno de los factores es altamente influyente en la germinación del cedro, para este
caso es el sustrato.
La mejor germinación se obtuvo con la combinación de tierra más arena (1:2), luz
permanente por 24 horas/día y 25°+/-2°C, tanto para el porcentaje de germinación total,
como para el valor máximo de germinación. La combinación del papel filtro, luz 24 horas y
30°C de temperatura no favoreció la germinación de las semillas de cedro, encontrándose
que en éstos tratamientos no germinó ninguna semilla. Esto es un indicador que el
sustrato, mediante su influencia de humedad, es el elemento crítico en la germinación. En
la tabla 3, se muestran los valores promedios de germinación encontrados como efecto
de la interacción entre los tratamientos.

Tabla 3. Germinación del C. odorata como respuesta a la interacción entre
tratamientos
TRATAMIENTOS % GERMINACION VM DIA

Papel filtro+24 horas luz+30°C 0.00 A - -
Papel de germinación+24 3.30 AB 0.30 AB 6
horas+30°C 4.20 AB 0.33 AB 9
Papel germinación+12 horas 5.00 ABC 0.50 ABC 11
luz+30°C 8.30 ABC 0.67 ABC 8
Papel filtro+24 horas luz+25°C 11.0 ABCD 0.53 ABC 9
Papel filtro+12 horas luz+30°C 12.0 ABCD 0.77 ABC 16
Papel germinación+12 horas 13.0 ABCD 1.57 CD 11
luz+25°C 13.0 ABCD 1.13 ABCD 11
Papel germinación+12 horas 17.0 BCD 1.37 BCD 12
luz+25°C 20.0 CD 1.63 CD 11
Papel filtro+12 horas luz+25°C 25.5 D 1.97 D 10
Tierra+arena+24 horas luz+30°C
Tierra+areana+12 horas luz+25°C
Duncan (p<0.05)
Conclusiones
El mejor sustrato para la germinación de la semilla de cedro probados bajo condiciones

de laboratorio es la tierra más arena de río en proporción 1:2.
El protocolo de certificación facilita la determinación de la viabilidad de las semilla, que

para el caso del cedro se debe probar bajo condiciones controladas combinando el
sustrato de tierra más arena, fotoperíodo de 24 horas luz - día y temperatura de 25°C.
El valor máximo de germinación en que la semilla de cedro expresa su potencial

germinativo esta al rededor del día 10.
El control de plagas y enfermedades en la semilla es un factor importante a considerar en

cualquier ensayo de germinación, pues pueden afectar el potencial germinativo de
cualquier especie.
La incidencia de las temperaturas y el fotoperíodo probados tiene baja influencia en el

potencial germinativo de la semilla de cedro.

8.4 Protocolo De Analisis Para La Especie Cariniana Piryformis
El abarco Cariniana piryformis es una de las especies poco estudiadas en relación a la

fisiología de las semilla, solamente se reportan algunos trabajos relacionados con
germinación, tratamientos pregerminativos y almacenamiento (Triviño, et al, 1990).
El presente protocolo evalúa los efectos de tres tipos de sustratos, dos períodos de luz y
dos de temperatura, sobre la capacidad germinativa de semillas de Cariniana piryformis,
permitiendo determinar las condiciones óptimas para la germinación y estandarizar las
normas de análisis para esta especie.
Metodología
Para la comprobación del protocolo con la especie Cariniana piryformis, se probaron los
Sustratos

2. Aserrín
3. Arena de río

1. 25 +/- 2°C
2. 30 +/- 2°C
Para la germinación de las semillas se emplearon cajas plásticas transparentes con tapa
desinfectados con cloro; el agua, el aserrín y las cajas petri se esterilizaron en autoclave a
una temperatura de 254°F y una presión de agua de 1.2 Kg/cm² durante 30 minutos y, la
tierra y la arena en el horno a 103°C durante una hora. Se aplicó riego con agua
esterilizada tan pronto como se colocaron las semillas a germinar. Se registró la
germinación diaria cuando la plúmula comenzó a emerger. Se utilizó semilla de
procedencia de la fuente Semillera identificada, ubicada en el municipio de San Luis -
Antioquia, la cual se desinfectó previamente con Vitavax y no se aplicó ningún tratamiento
pregerminativo.

como factor principal el sustrato. Se utilizaron 3 repeticiones de 40 semillas cada una por
tratamiento. Se determinó el porcentaje de germinación total y el valor máximo de la
velocidad de germinación, que es el valor de germinación más alto durante la prueba
(Czabator, 1962).


Resultados
VARIABLE VALOR
Pureza (%) 96.9
La velocidad de germinación en la semilla de abarco fue muy irregular (CV = 44%),

posiblemente por el alto contenido de grasas, revelando la resistencia de esta especie a
modificar su contenido de humedad, lo que se traduce en una germinación baja y
retardada (Triviño et al 1990).
El análisis de varianza detectó diferencias significativas (p<0.05) para el efecto del

sustrato y la interacción sustrato x luz x temperatura y, diferencias altamente significativas
(p<0.01), para el efecto de la temperatura sobre la germinación. Teniendo como base el
porcentaje de variación total del modelo utilizado, se determinó que la temperatura es el
factor con mayor incidencia en la germinación de la semilla de abarco. La germinación fue
mayor en 22.6%, con una temperatura del sitio de germinación de 25 +/- 2°C que a 30°C.
Esto coindice con lo manifestado por Trujillo (1998), en el sentido de que la temperatura
ideal para la germinación tiende a ser igual o similar a la que predomina en el hábitat
natural de las especie. Las especie de climas más fríos, tienden a presentar mayores
porcentajes de germinación a temperaturas más bajas.
Otro factor que incide en la germinación del abarco es el sustrato, encontrándose que la
tierra más arena y la arena de río favorecen la germinación, mientras que el aserrín la
inhibe. La cantidad de luz no representó un factor importante en la germinación total ni en
el valor máximo de germinación. En la tabla 1 se muestran los valores individuales de
germinación y el valor máximo de germinación para el efecto del sustrato, cantidad de luz
y temperaturas evaluadas.

Tabla 1. Germinación del C. piryformis como respuesta al sustrato, cantidad de luz
y temperaturas
VARIABLE % GERMINACION VM DIA

Sustrato
Tierra+arena 1:2 19.38 A * 0.49 A 18
Arena de río 16.46 A 0.66 A 27
Aserrín 9.79 B 0.44 A 23
Cantidad de luz
24 Horas luz 15.83 A 0.62 A 26
12 horas luz 14.58 A 0.43 A 27
Temperaturas
25+/-2°C 26.57 A ** 0.86 A * 30
30+/-2°C 3.89 B 0.20 B 15
Duncan
*:Significativo al 5% de probabilidad; **: Altamente significativo al 1% de probabilidad
El análisis de varianza detectó diferencias significativas (P<0.05) para el efecto de la

interacción entre el sustrato x luz x temperatura, sobre la germinación y el valor máximo
de germinación, pero estas diferencias solo representaron una variación menor al 10% del
total de la variación en el modelo. La mejor germinación del abarco se obtuvo con la
combinación de tierra + arena en proporción 1:2, 12 horas luz y 25 +/- 2°C de
temperatura. Sin embargo, no hubo diferencias estadísticas con respecto a la segunda
mejor germinación, la cual se obtuvo también en tierra + arena y 25°C, pero con una
cantidad de luz de 24 horas/día. La peor germinación se obtuvo con la combinación de
tierra + arena, 12 horas de luz y 30°C. En la tabla 2 se indica la germinación total y el
valor máximo de germinación obtenidos como respuesta a la combinación de
tratamientos.
Tabla 2. Germinación del C. piryformis como respuesta a la interacción entre

tratamientos.
TRATAMIENTO % VM DIA
GERMINACION
Tierra+arena, 12 horas luz, 30°C 0.00 A 0.00 A --
Aserrín, 12 horas luz, 30°C 0.80 A 0.03 AB 6
Aserrín, 24 horas luz, 30°C 1.70 A 0.36 ABC 13
Arena, 24 horas luz, 30°C 6.60 AB 0.29 ABC 33
Arena, 12 horas luz, 30°C 6.60 AB 0.23 ABC 21
Tierra+arena, 24 horas luz, 30°C 7.50 AB 0.30 ABC 21
Aserrín, 24 horas luz, 25°C 17.0 BC 0.89 CD 37
Aserrín, 12 horas luz, 25°C 20.0 C 0.43 ABC 36
Arena, 12 horas luz, 25°C 23.0 CD 0.76 BCD 27
Arena, 24 horas luz, 25°C 29.0 CDE 0.66 ABCD 28
Tierra+arena, 24 horas luz, 25°C 33.0 E 1.26 D 24
Tierra+arena, 12 horas luz, 25°C 37.0 E 1.14 D 28
Duncan (P<0.05)

Conclusiones
La temperatura es un factor determinante en la germinación de las semillas de abarco,

siendo favorable 25°C.
La mezcla de tierra más arena en proporción 1:2, posiblemente mediante su influencia en

la humedad, es un factor que contribuye en gran medida a optimizar la germinación de la
semilla de abarco.
La cantidad de luz no tiene mayor influencia en la germinación del abarco.
La combinación de tierra+arena (1:2), 12 ó 24 horas luz/día y 25°C de temperatura, es un

factor ambiental que maximiza la germinación de la semilla de abarco, por lo tanto es un
parámetro para certificación de semillas a nivel de laboratorio para esta especie.
8.5 Protocolo De Analisis Para La Especie Alnus Jorullensis
El Alnus jorullensis, es una de las especie forestales que más problemas presenta en la
germinación. Las semillas son viables durante un corto período de tiempo. Después de un
mes de colectadas sirve aproximadamente un cincuenta por ciento. Esto puede ser
consecuencia no solo de los métodos utilizados en la germinación, sino también de tener un
fruto seco y dehiscente, lo que obliga a subir a los árboles antes que el fruto abra para
recolectar la mayor cantidad de frutos y asegurar la semilla.
Metodología
Para el desarrollo del protocolo con la especie Alnus jorullensis, se probaron los
Sustratos

2. Papel de germinación
3. Tierra con musgo

1. 18 +/- 2°C
2. 25 +/- 2°C
Para la germinación de las semillas se emplearon cajas plásticas transparentes con tapa
desinfectados con cloro; el agua, se esterilizó en autoclave a una temperatura de 254°F y
una presión de agua de 1.2 Kg/cm² durante 30 minutos y, la tierra, la arena y el musgo en
el horno a 103°C durante una hora. Se aplicó riego con agua esterilizada tan pronto como
se colocaron las semillas a germinar. Se registró la germinación diaria cuando la plúmula

comenzó a emerger. Solamente se utilizó una procedencia del municipio de Tunja-
Boyacá, que por razones de no fructificación de la especie fue imposible conseguir semilla
de fuente semillera clasificada. No se aplicó ningún tratamiento pregerminativo.

como factor principal el sustrato. Se utilizaron 3 repeticiones con 100 semillas cada. Se
determinó el porcentaje de germinación final y el valor de germinación; esta última
variable es un concepto que combina el vigor germinativo y la velocidad de germinación
(Djavansir y Pourbeik, 1976)


Resultados
VARIABLE VALOR
Pureza (%) 45
Contenido de humedad (%) 8
No. de semillas puras/Kg 800.000
Los efectos de la temperatura y el sustrato mostraron diferencias estadísticas (p<0.05) en

la germinación total y el valor de germinación. Las interacciones entre los tres factores
fueron altamente significativas (0.01). Puesto que las interacciones representaron
solamente una pequeña parte de la variación total en el diseño utilizado, no se incluyen
en este análisis.
El porcentaje de germinación y el valor de germinación fueron significativamente más alto

en el sustrato de papel de germinación y tierra+musgo que en la mezcla de arena y tierra
(tabla 1.). Entre los sustratos tierra: musgo, y arena: tierra, el porcentaje de germinación
fue 5% más alto en tierra: musgo.
Tabla 1. Germinación del Alnus jorullensis como respuesta al sustrato como efecto
principal
SUSTRATO % GERMINACION VG
Tierra+musgo 15.17 A 2.2 A
Papel de germinación 14.17 A 2.0 A
Tierra+arena 1:2 10.10 B 0.9 B
Promedios con igual letra NO son estadísticamente diferentes, según la prueba de
DUNCAN (P<0.05)
VG:Valor de germinación.

Con relación a las temperaturas evaluadas, el porcentaje de germinación más alto fue
determinado a temperatura de 18+/-2°C. La germinación fue menor con una temperatura
de 25+/-2°C. Esto coincide con lo manifestado por Trujillo (1998), en el sentido de que la
temperatura más recomendada para la germinación de especies forestales tiende a ser
igual o similar a la que predomina en el área de distribución natural de las especies. Las
especies de climas más fríos, como en este caso el aliso, tiende a presentar mayores
porcentajes de germinación y mayor valor de germinación a temperaturas más bajas.
El fotoperíodo no mostró mayor influencia en la germinación del aliso. Sin embargo, existe
una tendencia de aumento en la germinación con un fotoperíodo de 24 horas luz/día.
Debido al efecto positivo de la luz en la germinación de las semillas, el aliso parece tener
semilla fotoblástica.
Tabla 2. Germinación del Alnus jorullensis como respuesta a la temperatura y

fotoperíodo
TRATAMIENTO % GERMINACION
Temperatura
18+/-2°C 17.5 A
25+/-2°C 10.5 B
Fotoperíodo
24 horas luz/día 15.2 A
12 horas luz/día 17.0 A
Promedios con igual letra NO son estadísticamente diferentes, según la prueba de
DUNCAN (P<0.05)
VG:Valor de germinación.
Conclusiones
Con base en los resultados, los mayores porcentajes de germinación del Alnus jorullensis,
se presentan utilizando como medio de germinación, el sustrato tierra: musgo y papel de
germinación, a temperatura de 18°C y fotoperíodo de 12 a 24 horas luz/día.
Los porcentajes de germinación en general, fueron muy bajos, posiblemente por la

procedencia de la semilla, que por efectos de fenología fue imposible conseguir de fuente
semillera clasificada.
Se recomienda repetir la prueba utilizando semilla de procedencia de una fuente semillera

manejada y clasificada.
8.6 Conclusiones generales
Uno de los factores que más influye en la germinación de las semillas de las especies
probadas es el sustrato. Las características del sustrato son de naturaleza inerte, alta
capacidad de aireación y la poca resistencia a la emergencia de la raíz. Un sustrato de
naturaleza franca ofrece a las semillas y posteriormente a las plántulas, buena aireación
con la ventaja de que retiene mejor la humedad que es necesaria en la germinación.

Las especies forestales que tienen semilla pequeña, como el aliso, posee pocas reservas
nutritivas y por lo tanto requiere de la pronta disposición de elementos nutritivos
indispensables para su desarrollo.
La determinación de la calidad física y fisiológica de la semilla, es una actividad

indispensable y la única garantía que se puede ofrecer para la reproducción de plántulas
normales a los usuarios.
En la práctica, el objetivo más importante de un ensayo de semillas, es proporcionar una

estimación precisa de la capacidad de un determinado lote de semillas para producir
plantas sanas, resistentes vigorosas y adecuadas para una plantación.
La esencia de los trabajos en semillas es la aplicación de métodos, pruebas, test o

examen que sean normalizados y confiables, de manera que los resultados arrojadas que
se obtengan sean uniformes y reproducibles, lo que garantiza una certificación acertada
en el mercado de semillas forestales.
La optimización de las condiciones de laboratorio en el cual la semilla expresa la máxima

energía germinativa, unido a la identidad genética y a la determinación de la calidad de
plántulas a nivel de vivero, forman un programa completo de certificación de la calidad del
material propagativo forestal, lo que garantiza plantaciones más productivas.
En el siguiente cuadro se resume el protocolo a nivel de laboratorio de cinco especies

forestales de mayor demanda a nivel nacional, en el cual la semilla expresa su máxima
energía germinativa:

Resumen de los Protocolos de certificación para cinco especies forestales
ESPECIE CALIDAD FISICA PROTOCOLO DE

CERTIFICACION
Tabebuia rosea Pureza (%) 96.12 -Papel filtro, 12 horas luz/día,
Peso de 1.000 semillas 28.86 30°C
(gr) 9.18 -Tierra+arena, 24 horas luz/día,
Contenido de humedad 34649 30°C
(%)
No. De semillas puras/Kg
Cordia alliodora Pureza (%) 89.97 -Tierra+arena, 24 horas
Peso de 1.000 semillas 7.33 luz/día,25°C
(gr) 18.4
Contenido de humedad 136547
(%)
Cedrela odorata Pureza (%) 20.56 -Tierra+arena, 24 horas luz/día,
Peso de 1.000 semillas 7.73 25°C
(gr) 19.8
Contenido de humedad 129325
(%)
Cariniana Pureza (%) 96.9 -Tierra+arena, 12 horas luz/día,
piryformis Peso de 1.000 semillas 134.42 25°C
(gr) 10.2 -Tierra+arena, 24 horas luz/día,
Contenido de humedad 7439 25°C
(%)
Alnus Pureza (%) 45 -Tierra+musgo, 12 horas luz/día,
jorullensis Peso de 1.000 semillas 1.25 18°C
(gr) 8 -Tierra+musgo, 24 horas luz/día,
Contenido de humedad 800.000 18°C
(%) - Papel de germinación,
No. De semillas puras/Kg 12horas luz/
día, 18°C

9. PROTOCOLOS PARA LA ESTANDARIZACION DE ANALISIS DE RUTINA
El éxito en la producción de plantas en vivero, requiere de una buena calidad de las

semillas. Es de vital importancia, conocer y obtener la información de sus condiciones
físicas mediante la aplicación de técnicas de análisis válidas e indicadores que muestren
su verdadero potencial.
La esencia de un buen ensayo de semillas, es la aplicación de métodos de examen, que

sean normalizados y fiables de manera que los resultados que se obtengan sean
uniformes y reproducibles.
En la actualidad los procedimientos de análisis de semillas se fundamentan y hacen

referencia a las normas ISTA, sin embargo estas normas no incluyen la casi totalidad de
las semillas forestales tropicales, las cuales son heterogéneas y poseen características
anatómicas y químicas que las hacen atípicas y por tanto no son aplicables en muchos
casos, pero deben servir de guía metodológica.
Las semillas responden a variaciones relacionadas con los medios de análisis de una
manera muy sensible, los requerimientos de germinación tales como los sustratos, la luz,
la temperatura pueden alterar significativamente los resultados con pequeñas variaciones.
Estos estudios básicos de normalización para el análisis de semillas forestales, han sido
muy escasos y por tanto es necesario estandarizarlos con el fin de que el montaje de los
ensayos exprese el mayor potencial de la semilla y el lugar a equívoco en los resultados
sea mínimo. Las normas ISTA fijan la metodología pero no indican los medios apropiados
para el análisis de cada especie por lo cual solo sirven de guía.
Las condiciones planteadas hacen obligatoria la experimentación con más énfasis para
los ensayos de germinación y viabilidad, sin embargo ello no descartará que el
investigador defina avanzar el las demás pruebas de rutina tales como peso, pureza y en
especial contenido de humedad, para lo cual las instrucciones de ISTA son
suficientemente claras.
La certificación de semillas que se impulsa, tiene un componente de calidad física, no es

posible avanzar en esta certificación, si no se tienen los protocolos de análisis apropiados
para cada especie que garanticen la confiabilidad de los resultados de análisis.
• Planteamiento del problema
En el proceso de certificación de semillas a nivel de laboratorio, no existen protocolos de

trabajo que faciliten y hagan confiable los análisis y certificación de semillas forestales, ni
tampoco información completa al verdadero potencial de viabilidad en un determinado
lote de semillas.
No se ha utilizado un método normalizado para estandarizar los sistemas de análisis de

calidad, en los centros de semillas muchas veces las pruebas son lentas, se obtienen
resultados imprecisos, lo cual conlleva a un manejo inadecuado y a métodos pocos
confiables en la certificación fisiológica (características físicas) de las semillas forestales.
Los interrogantes a los que se enfrenta el usuario en relación al conocimiento de las

semillas son muy diversos, entre los cuales se enumeran las más comunes:cuales son las
las técnicas adecuadas a utilizar en el proceso de certificacion de semillas forestales a

nivel de laboratorio para obtener información confiable del verdadero potencial de
viabilidad de las semillas, cuál será la respuesta de la germinación de las especies
forestales a la utilización de pruebas de temperatura, régimen de luz, sustrato y
pretratamientos?, cuál es el potencial de viabilidad de las semillas forestales en estudio al
emplear el método de la prueba de Tetrazolio?
• Objetivo
Establecer métodos mediante los cuales se puedan estandarizar técnicas adecuadas y

precisas en los ensayos de semillas forestales a nivel de laboratorio, indispensables para
determinar la viabilidad y obtener resultados uniformes, confiables y reproducibles para
las especies: Anacrdium excelsum, Cedrela montana, Erythrina edulis, Erythrina fusca,
Enterolobium cyclocarpum, Jacaranda copaia, Juglans neotropica, Lafoensia speciosa,
Tabebuia chrisantha y Samanea saman
• Justificación
Actualmente no se ha desarrollado metodologías suficuentes referente al proceso de

certificación de semillas a nivel de laboratorio que permitan estandarizar los sistemas de
trabajo por especie, por lo cual resulta conveniente la aplicación de métodos que sean
normalizados y fiables, de manera que los resultados que se obtengan sean válidos.
Mediante la estandarización, se obtienen parámetros de comparación de las distintas

variables a calificar en lo referente a la certificación fisiológica de semillas (características
físicas) ya que en la mayoría de especies forestales del trópico no existen, así también
conocer las características ideales de germinación de las semillas para su mejor
desarrollo.
9.1 Análisis De Calidad Física Para Diez Especies Forestales
El análisis de calidad física de semillas forestales requiere de un equipo y condiciones de

laboratorio especializados, las normas y sistemas utilizados son regidos por las normas
internacionales de ISTA (1993), normas que regulan el sistema para algunas especies
forestales. Sin embargo, las especies nativas no están contempladas en las normas ISTA
y menos aún en las normas del sistema americano. Por lo que es necesario ajustar las
normas a las especies nativas.
Para realizar estos análisis se utilizan lotes de semilla de recolección directa, compras
locales o de importación, los cuales requieren un análisis de calidad para facilitar los
cálculos de siembra, manejo de semillas y por exigencia del mercado. La prueba de
calidad física y la determinación de la expresión máxima de la germinación (protocolo) es
la única garantía que tiene el usuario de conocer la capacidad de un determinado lote
para producir plantas sanas, resistentes, vigorosas y adecuadas para una plantación.
El análisis de calidad se fundamenta en tres tipos de ensayo:

• Contenido de humedad
• Pureza
• Peso

Para iniciar el ensayo se toma una muestra representativa del lote, mediante el uso de las
sondas, garantizando una muestra completamente al azar; el tamaño de la muestra de
análisis depende del tamaño de la semilla, tratamiento que se describe a continuación:
Para semillas de tamaño pequeño como de las especies: Cedrela montana, Jacaranda
copaia, Laphoensia speciosa, Tabebuia chrisantha y Samanea saman, se utilizaron
muestras de 500 gr.
Para las especies con semilla de tamaño grande como el Anacardium excelsum,
Erythrina edulis, Erythrina fusca, Enterolobium cyclocarpum y Juglans neotropica,
se utilizó en promedio 1.3 Kg.
Contenido de humedad: Para el contenido de humedad se utilizaron muestras de 10 ó

50 gr, dividiéndose en dos repeticiones iguales, las cuales se secaron al horno a una
temperatura de 103°C durante 17 horas, luego del secado se dejaron enfriar en el
desecador durante 30 minutos, seguidamente se pesa en la balanza analítica.
El contenido de humedad se calculó de con la siguiente fórmula
CH(%) = (1 - Peso seco/peso húmedo) 100
Se acepta hasta un 1% de tolerancia entre repeticiones.
Pureza: La pureza indica los porcentajes en los cuales se encuentra la mezcla de

semillas puras, con otras semillas y materia inerte.
Para esto se tomaron 2 repeticiones, equivalente al peso de 2.500 semillas. Se separan

las semillas puras de otras semillas y materiales como brácteas, ramitas y polvo, se
pesan sus componentes con aproximación al punto decimal y se calcula según la
siguiente fórmula:
Pureza (%) = (Peso semilla pura / peso total de la muestra) 100
Peso: Para el ensayo se cuentan ocho submuestras de 100 semillas cada una, se pesa
individualmente con aproximación al punto decimal. Por último se calcula el coeficiente de
variación, el cual debe ser menor de 4.0. Si el coeficiente de variación es mayor que 4.0,
como el caso de las especies Cedrela montana, Jacaranda copaia y Erythrina fusca, y
se toman otras ocho submuestras y el cálculo se hace sobre las 16 muestras restantes.
Empleando esta metodología se determinó la calidad física para 10 especies forestales

nativas (Anacardium excelsum, Erythrina edulis, Erytrina fusca, Cedrela montana,
Enterolobium cyclocarpum, Jacaranda copaia, Juglans neotropica, Lafoensia
speciosa, Tabebuia chrisantha, Samanea saman) y sus resultados se muestran en la
siguiente tabla:
Resultados de Calidad Física de 10 especies forestales nativas, prioritarias en el

desarrollo de investigación en semillas forestales de especies nativas que esta
impulsando el programa INSEFOR.

Resultados de Calidad Física de 10 especies forestales nativas
ESPECIE CALIDAD FISICA
Anacardium excelsum Pureza (%) 90

No. semillas/kg 370
Cedrela montana Pureza (%) 73.9
No. semillas/kg 40.352
Erythrina edulis Pureza (%) 99.9
No. semillas/kg 72
Erytrina fusca Pureza (%) 99.8
Enterolobium Pureza (%) 97.8
cyclocarpum Contenido de humedad (%) 14.2
Jacaranda copaia Pureza (%) 85
Juglans neotropica Pureza (%) 99.9
No. semillas/kg 61
Lafoensia speciosa Pureza (%) 65
Tabebuia chrisantha Pureza (%) 65
Samanea saman Pureza (%) 95

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TRUJILLO N. E. 1998a. Comunicación personal.

ANEXO 1. REGISTRO NACIONAL DE FUENTES SEMILLERAS
Especie Clasificaci Código Finca Vereda Municipio Depto. Zona Latitud Longitud Altitud Temp. Preci. Area Entidad a
on vida Promd Promd Contactar
. .
Alnus Fuente 091COC La Curva Guayabal Pensilvania Caldas bh- 05° 28' 75 ° 22 ' 2000 17.2 230.8 0.5 Colegio de
jorulensis Identificada PM 05'' 002 '' Caldas-
Pensilvania
Alnus Fuente 102CPN El Hato Los Villa Caro Norte bh-M 07° 56' 72 ° 58 ' 3000 68.4 9.0 CORPONOR
jorullensis Identificada Ranchos Santand 15'' 013 '' -Cúcuta
er
Alnus Fuente 010EPP La Ucumarí Pereira Risarald bmh 04° 41' 75 ° 34 ' 2520 212.2 10.0 Empresas
jorullensis Identificada Pastora a - MB 36'' 240 '' Públicas de
Pereira
Alnus Fuente 006EPM Empresas Río Blanco Manizales Caldas bmh 05° 00' 75 ° 25 ' 2900 15.3 130.4 2.0 Aguas de
jorullensis Selecciona Públicas - MB 30'' 120 '' Manizales
da
Alnus Fuente 007EPM Empresas Río Blanco Manizales Caldas bmh 05° 00' 75 ° 25 ' 2800 15.3 130.4 10.0 Aguas de
jorullensis Selecciona Públicas - MB 48'' 360 '' Manizales
da
Alnus Fuente 078CMB El Rasgón La Loma Piedecuest Santand bh- 07° 03' 72 ° 57 ' 2200 74.5 0.5 CDMB
jorullensis Identificada a er MB 00'' 500 ''
Alnus Fuente 016CCH Ventanas Alto Tres Gigante Huila bh - 02° 20' 75 ° 27 ' 2745 19.6 109.8 30.0 Comité de
jorullensis Identificada esquinas ST 25'' 560 '' Cafeteros del
Huila
Anacardium Fuente 060CRS Puerto El Pueblito San Onofre Sucre bs - 09° 42' 75 ° 29 ' 30 107.6 2.0 CARSUCRE
excelsum Selecciona Anibal - El T 20'' 500 ''
da Salado
Anacardium Fuente 062CRS Hambruna Macajan Toluviejo Sucre bs - 09° 34' 75 ° 25 ' 80 121.5 1.0 CARSUCRE
excelsum Selecciona PM 90'' 000 ''
da
Apeiba Fuente 082SAC Coralito Providencia Curillo Caqueta bmh 01° 03' 75 ° 55 ' 500 24.9 365.5 1.0 Secretaría de
aspera Identificada - PM 27'' 300 '' agricultura
del Caquetá
Apeiba Fuente 043CON Lusitania La Espriella Tumaco Nariño bh - 01° 38' 78 ° 46 ' 30 25.4 248.0 0.9 CONIF-

aspera Identificada T 00'' 000 '' Bogotá
Apeiba Fuente 032CVC La Trojita San Isidro Buenaventu Valle bmh 04° 00' 76 ° 59 ' 10 25.6 598.9 0.2 CVC-Cali
aspera Identificada ra -T 50'' 180 ''
Aspidosper Fuente 066CVS Jamaica San Monteria Cordoba bs - 08° 35' 75 ° 51 ' 30 120.3 0.1 CVS-
ma dugandii Identificada Anterito T 40'' 100 '' Montería
Bombacopsi Fuente 037REF Refocosta Pivijay Pivijay Magdale bs - 09° 14' 74 ° 17 ' 30 123.6 6.0 REFOCOST
s quinata Identificada S.A. na T 51'' 790 '' A-
Barranquilla
Bombacopsi Huerto 034MO Monterrey Monterrey Zambrano Bolivar bs - 09° 43' 74 ° 51 ' 25 28.4 68.3 1.7 PIZANO-
s quinata semillero N Forestal T 37'' 080 '' Bogotá
comprobad
o
Bombacopsi Fuente 086CPG La Lucha Maicao La 11° 16' 72 ° 24 ' 118 27.0 86.2 0.8 CORPOGUA
s quinata Identificada Guajira 45'' 030 '' GIRA-
Rioacha
Bombacopsi Fuente 064CRS Parcelaci Jonei Ovejas Sucre bs - 09° 32' 75 ° 15 ' 0 136.2 0.7 CARSUCRE-
s quinata Identificada ón T 50'' 800 '' Sincelejo
Alemania
Cariniana Fuente 108CPU Hda. Turbo Antioqui bmh- 07° 70' 76 ° 35 ' 150 216.4 0.1 CORPOURA
piryformis Identificada Choroman a T 00'' 000 '' BA-Apartadó
dó
Cariniana Fuente 094ESP Comunida Gengadó Vigia Del Antioqui bmh- 07° 05' 76 ° 53 ' 100 30.0 Fundación
pyriformis Selecciona d Embera Fuerte a T 24'' 024 '' ESPAVE-
da Medellín
Cariniana Fuente 090UG Pedro Alta Vista San Luis Antioqui bmh- 05° 37' 74 ° 33 ' 700 25.9 323.5 0.8 UGAM-San
pyriformis Identificada M Gómez a T 19'' 054 '' Luis
Cariniana Fuente 099CPN Porvenir Porvenir El Zulia Norte bh-T 07° 53' 72 ° 37 ' 150 228.6 1.0 CORPONOR
pyriformis Identificada Santand 20'' 058 '' -Cúcuta
er
Cariniana Fuente 055COR El Gallo Alta Vista San Luis Antioqui bp- 06° 02' 75 ° 00 ' 480 1.0 Asoc.Amigos
pyriformis Selecciona a PM 10'' 000 '' del bosque-
da San Luis
Cariniana Fuente 069CVS Corinto Apartada Ayapel Cordoba bh - 08° 06' 75 ° 19 ' 35 159.0 1.0 CVS-
pyriformis Identificada T 27'' 000 '' Montería
Caryodendr Fuente 023SAM La Brillante Lejanias Meta bp - 03° 30' 74 ° 81 ' 610 23.1 302.0 0.5 Sec. de
on Identificada Argentina MB 56'' 080 '' Agricultura
orinocensis del Meta
Cedrela Fuente 050CUN La Misiones El Colegio Cundina bh-M 04° 34' 74 ° 18 ' 1600 50.0 Comité de

montana Identificada Trinidad, marca 00'' 000 '' Cafeteros-
Arcadia Cundinamarc
a
Cedrela Fuente 019CAN Los San Ipiales Nariño bh - 00° 35' 77 ° 26 ' 2905 11.0 72.1 0.8 CORPONARI
montana Identificada Arrayanes Antonio MB 23'' 580 '' ÑO-Pasto
Cedrela Fuente 103CPU La Marina Zungo Apartado Antioqui bmh- 25 27.3 300.3 12.0 CORPOURA
odorata Identificada a T BA-Apartadó
Cedrela Fuente 096SM Camoita Camoita San Martin Meta bmh- 03° 44' 73 ° 42 ' 500 257.0 0.3 Sec.Medio
odorata Identificada M T 24'' 000 '' Ambiente-
Meta
Cedrela Fuente 092COC Termales- Nariño Antioqui bh-T 05° 34' 75 ° 06 ' 730 533.0 0.1 Colegio
odorata Identificada Espiritu a 23'' 050 '' Integrado de
Santo Caldas-
Pensilvania
Cedrela Fuente 095SM Granja Iracá San Martin Meta bmh- 03° 36' 73 ° 48 ' 490 257.0 0.5 Sec. Medio
odorata Identificada M Iracá T 36'' 000 '' Ambiente-
Meta.
Cedrela Fuente 059CRS Peralonso Laguna Flor Sincelejo Sucre bs - 09° 18' 75 ° 24 ' 220 100.3 2.5 CARSUCRE
odorata Identificada T 20'' 200 ''
Cedrela Fuente 033CVC San Isidro San Isidro Buenaventu Valle bmh 04° 00' 76 ° 58 ' 10 25.6 598.9 1.0 CVC-Cali
odorata Identificada ra -T 30'' 500 ''
Cedrela Fuente 025CAM Avícola Choapal Restrepo Meta bmh 04° 12' 73 ° 35 ' 550 502.7 0.4 CORMACAR
odorata Identificada La -T 22'' 670 '' ENA
Virginia
Cordia Fuente 057CVC Santa La Latina Alcala Valle bmh- 04° 42' 76 ° 15 ' 1270 21.0 159.0 1.0 CVC-Cali
alliodora Identificada Rosa PM 30'' 800 ''
Cordia Fuente 013CDR Calamar Palermo Ulloa Valle bh - 04° 41' 75 ° 44 ' 1700 177.1 20.0 CARDER-
alliodora Identificada T 50'' 380 '' Pereira
Cordia Fuente 056CVC El Prado El Higueron Ulloa Valle bh- 04° 39' 75 ° 47 ' 1250 21.0 159.0 1.0 CVC-Cali
alliodora Identificada PM 90'' 500 ''
Cordia Fuente 031CVC Palestina Lomitas La Cumbre Valle bmh 03° 40' 76 ° 37 ' 2100 96.3 10.0 CVC-Cali
alliodora Identificada -M 12'' 290 ''
Cordia Fuente 012CDR La Mirla El Silencio Belen De Risarald bmh- 05° 10' 75 ° 52 ' 1800 211.1 0.7 CARDER-
alliodora Identificada Umbria a M 48'' 000 '' Pereira
Cordia Fuente 039CDR La Renta Alcala Valle bh - 04° 41' 76 ° 13 ' 1700 21.0 159.0 70.0 CARDER-
alliodora Identificada PM 08'' 280 '' Pereira
Cordia Fuente 097CVC Comit;ee Cartago Valle bh- 04° 41' 75 ° 28 ' 1500 145.5 1.0 CVC-Cali
alliodora Identificada de PM 00'' 000 ''

Cafeteros
Cordia Fuente 065CVS Santafé Guateque Monteria Cordoba bs - 08° 36' 75 ° 52 ' 30 120.3 0.5 CVS-
alliodora Identificada T 40'' 600 '' Montería
Cordia Fuente 101CPN Laguneta La Vega Cachira Norte bh-T 07° 39' 73 ° 11 ' 710 127.2 0.2 CORPONOR
alliodora Identificada Santand 00'' 000 '' -Cúcuta
er
Cordia Fuente 011CDR El Llano Tesalia Belen De Risarald bmh 05° 13' 75 ° 52 ' 1570 211.1 0.4 CARDER-
alliodora Identificada Umbria a - PM 12'' 160 '' Pereira
Cordia Rodal 001CON La solita - La Espriella Tumaco Nariño bh - 01° 38' 78 ° 46 ' 30 25.4 248.0 1.0 CONIF-
alliodora semillero CONIF T 00'' 000 '' Bogotá
Cordia Fuente 047CUN El Triunfo Misiones El Colegio Cundina bh-M 04° 33' 74 ° 27 ' 1505 100.0 Comité de
alliodora Identificada marca 60'' 700 '' Cafeteros-
Cun.
Cordia Fuente 072SAT Chinela-La Armero Tolima bmh 05° 00' 75 ° 00 ' 1400 28.1 124.0 0.5 Sec.
alliodora Identificada Pradera - PM 00'' 000 '' Agricultora-
Tolima
Cordia Fuente 004CEN Paraguaic Río Verde Buenavista Quindio bh - 04° 23' 75 ° 44 ' 1250 21.7 177.5 1.0 CENICAFE-
alliodora Identificada ito Bajo M 00'' 000 '' Chinchiná
Cordia Fuente 084SAC El Placer Alto Bonito Cartagena Caqueta bmh- 01 ° 21 ' 74 ° 50 ' 500 257.6 1.0 Secretaría de
alliodora Identificada Del Chaira T 008 '' 002 '' Agricultura-
Caquetá
Cordia Fuente 098CPN Campo Ciénaga La Norte bh-T 0 64.2 4.0 CORPONOR
gerascanthu Identificada alegre Esperanza Santand -Cúcuta
s er
Cordia Fuente 035MO Monterrey Zambrano Zambrano Bolivar bs - 09 ° 43 ' 74 ° 51 ' 25 28.4 68.3 1.7 PIZANO-
gerascanthu Identificada N Forestal T 150 '' 590 '' Bogotá
s
Cordia Fuente 106CPU Choroman Turbo Antioqui bmh- 07 ° 70 ' 76 ° 35 ' 150 216.4 22.0 CORPOURA
gerascanthu Identificada dó a T 000 '' 000 '' BA-Apartadó
s
Cordia Fuente 038REF Refocosta Pivijay Pivijay Magdale bs - 09 ° 15 ' 74 ° 16 ' 30 123.6 0.5 REFOCOST
gerascanthu Identificada S.A. na T 030 '' 390 '' A-Bogotá
s
Cordia Fuente 081SAC La El Triunfo San Jose Caqueta bmh 01 ° 21 ' 76 ° 75 ' 500 24.9 365.5 1.0 Sec.agricultu
gerascantusIdentificada Esperanz De Fragua - PM 000 '' 700 '' ra-Caquetá
a
Decussocar Fuente 021CRC Estación Quintero Silvia Cauca bmh 02 ° 42 ' 76 ° 18 ' 2925 154.0 2.0 CRC-
pus Identificada Piscicola - MB 411 '' 550 '' Popayán

rospigliosii
Decussocar Fuente 080AMB La Guarumale Tona Santand bh - 07 ° 13 ' 72 ° 40 ' 2600 121.9 2.0 Acueducto
pus Identificada Estancia s er MB 800 '' 900 '' de
rospigliossi Bucaramang
a
Decussocar Fuente 077CDB El Rasgón La Loma Piedecuest Santand bh- 07 ° 30 ' 72 ° 57 ' 2200 74.5 0.5 CDMB-
pus Identificada a er MB 000 '' 500 '' Bucaramang
rospigliossi a
Dialyanther Fuente 015AMB Brasil Retiro Bucaraman Santand bh - 07 ° 09 ' 73 ° 02 ' 1670 121.9 1.0 Acueducto
a sp. Selecciona Grande ga er PM 370 '' 040 '' de
da Bucaramang
a
Genipa Fuente 027CVC Vivero San Palmira Valle bs - 03 ° 33 ' 76 ° 12 ' 1250 20.8 152.5 1.5 CVC-Cali
americana Identificada San Emigdio T 240 '' 520 ''
Emigdio
Hevea Fuente 083SAC El Rosal Moralia El Paujil Caqueta bmh 01 ° 34 ' 75 ° 19 ' 400 25.0 307.5 17.0 Sec.Agricultu
brasiliensis Identificada - PM 000 '' 900 '' ra-Caquetá
Hevea Fuente 014CQT La La Tolda San Caqueta bh - 02 ° 09 ' 74 ° 48 ' 300 24.8 207.2 1.5 INCORA-
brasiliensis Identificada Esperanz Vicente Del T 000 '' 000 '' Florencia
a Caguan
Jacaranda Fuente 026MCE Los Villa Paz Puerto Meta bh - 03 ° 08 ' 73 ° 33 ' 350 25.3 212.7 13.0 MADERERIA
copaia Identificada Gabrieles Lleras T 100 '' 243 '' CENTRAL-
Betani
Jacaranda Fuente 075COR Florida Montenegro San Luis Antioqui bp - 06 ° 02 ' 75 ° 00 ' 480 433.7 1.0 Asoc.
copaia Identificada a PM 100 '' 000 '' Amigos del
Bosque-San
Luis-Ant.
Jacaranda Fuente 044CON Lusitania La Espriella Tumaco Nariño bh -T 01 ° 38 ' 78 ° 46 ' 30 25.4 248.0 0.9 CONIF-
copaia Identificada 000 '' 000 '' Bogotá
Jacaranda Fuente 074COR Balsamito Montenegro San Luis Antioqui bp - 06 ° 02 ' 75 ° 00 ' 480 433.7 0.0 Asoc.
copaia Identificada a PM 100 '' 000 '' Amigos del
Bosque-San
Luis-Ant.
Juglans Fuente 048CUN Misiones Misiones El Colegio Cundina bh-M 04 ° 34 ' 74 ° 18 ' 1600 4.0 Comité de
neotropica Identificada marca 000 '' 000 '' Cafeteros-
Cundinamarc
a
Juglans Fuente 029CVC El El Jardin Ginebra Valle bmh 03 ° 43 ' 76 ° 12 ' 2020 142.0 0.4 CVC-Cali

neotropica Identificada Silencio - ST 540 '' 560 ''
Laphoensia Fuente 018CAN Pajajoy Pajajoy Buesaco Nariño bh - 01 ° 22 ' 77 ° 12 ' 1955 115.8 0.8 CORPONARI
speciosa Identificada MB 270 '' 150 '' ÑO-Pasto
Myrcianthes Fuente 040CAN Llano Largo Buesaco Nariño bh - 01 ° 22 ' 77 ° 12 ' 2440 115.8 0.5 CORPONARI
leucoxyla Identificada MB 860 '' 580 '' ÑO-Pasto
Podocarpus Fuente 045COC Fontibón Rio Dulce Pensilvania Caldas bp - 05 ° 26 ' 75 ° 13 ' 3000 169.4 0.7 Colegio de
oleifolius Identificada M 050 '' 400 '' Caldas-
Pensilvania
Prumnopite Fuente 046COC Fontibón Rio Dulce Pensilvania Caldas bmh- 05 ° 26 ' 75 ° 13 ' 3000 169.4 0.7 Colegio de
s montano Identificada MB 050 '' 400 '' Caldas-
Pensilvania
Pseudosam Fuente 109SM Iracá San Martin Meta bmh- 500 257.0 2.0 Sec.Medio
anea Identificada M T Ambiente-
guachapele Meta
Quecus Fuente 051SAB Monte de La Lajita Saboya Boyaca bh-M 05 ° 43 ' 73 ° 45 ' 2500 108.1 5.0 Sec.Agricultu
humboldtii Identificada Luz 000 '' 500 '' ra-Boyacá-
Tunja
Quercus Fuente 008EPM Empresas Rio Blanco Manizales Caldas bmh 05 ° 00 ' 75 ° 24 ' 2750 15.3 130.4 0.8 Aguas de
homboldtii Identificada Públicas - MB 440 '' 480 '' Manizales
Quercus Fuente 005BOS La Paz. Nabarco Salento Quindio bmh 04 ° 31 ' 75 ° 35 ' 1800 207.2 0.5 BOSQUINSA
humboldtii Identificada - MB 050 '' 000 ''
Quercus Fuente 020CRC El Edén Cabecera Bolivar Cauca bmh 01 ° 51 ' 76 ° 58 ' 1750 21.4 144.0 1.5 CRC-
humboldtii Identificada Municipal - ST 023 '' 320 '' Popayán
Quercus Fuente 030CVC Las La Albania Palmira Valle bmh 03 ° 32 ' 76 ° 07 ' 2230 193.5 10.0 CVC-Cali
humboldtii Selecciona Margarita - ST 180 '' 130 ''
da s
Quercus Fuente 002BRI Bristol El Vino La Vega Cundina bh - 04 ° 58 ' 74 ° 59 ' 2100 13.5 121.2 0.8 Inmunizadora
humboldtii Identificada marca MB 000 '' 300 '' Bristol-
Bogotá
Quercus Fuente 052SAB Villa El Saboya Boyaca bh-M 05 ° 42 ' 73 ° 43 ' 2850 117.0 20.0 Sec.Agricultu
humboldtii Selecciona Gomez Resguardo 000 '' 400 '' ra de
da Boyacá-
Tunja
Quercus Fuente 003EPP Empresas La Suiza Pereira Risarald bmh 04 ° 44 ' 75 ° 36 ' 2450 212.2 2.0 Empresas
humboldtii Identificada Públicas a - ST 000 '' 300 '' Públicas-
Pereira
Quercus Fuente 022CRC La San Jose Purace Cauca bmh 02 ° 21 ' 76 ° 19 ' 2305 15.8 149.4 3.0 CRC-
humboldtii Identificada Estrella-El - MB 060 '' 440 '' Popayán

Bosqu
Quercus Fuente 053SAB Reserva Iguaque Villa De Boyaca bh- 05 ° 40 ' 73 ° 30 ' 2700 16.9 79.7 5.0 Sec.Agricultu
humboldtii Identificada Fauna y Leyva MB 800 '' 000 '' ra de
Flor Boyacá-
Tunja
Quercus Fuente 079CMB El Rasgón La Loma Piedecuest Santand bh- 07 ° 03 ' 72 ° 57 ' 2200 74.5 2.0 CDMB-
humboldtii Identificada a er MB 000 '' 500 '' Bucaramang
a
Quercus Fuente 054SAB Varias Cabecera Arcabuco Boyaca bmh- 05 ° 46 ' 73 ° 26 ' 2580 148.0 100.0 Sec.Agricultu
humboldtii Selecciona Municipal MB 700 '' 300 '' ra de
da Boyacá-
Tunja
Quercus Fuente 009EPP La Suiza La Suiza Pereira Risarald bmh 04 ° 42 ' 75 ° 36 ' 2450 212.2 0.5 Empresas
humboldtii Identificada a - ST 240 '' 000 '' Públicas-
Pereira
Quercus Fuente 017SAT El Las Mesitas Murillo Tolima bp - 04 ° 56 ' 75 ° 12 ' 2890 158.8 0.8 Sec.Agricultu
humboldtii Identificada Diamante M 290 '' 150 '' ra-Tolima
Quercus Fuente 028CVC Las Portugal Ginebra Valle bmh 03 ° 45 ' 76 ° 11 ' 2000 142.0 0.5 CVC-Cali
humboldtii Identificada Begonias - ST 010 '' 180 ''
Quercus Fuente 073UTO El Tabor Esmeralda Anzoategui Tolima bmh 04 ° 42 ' 75 ° 16 ' 2505 143.7 10.0 Universidad
humboltii Identificada - MB 000 '' 600 '' del Tolima
Quercus Fuente 076CAM Terpeya Juancho Iquira Huila bmh 02 ° 41 ' 75 ° 43 ' 1560 18.9 162.1 5.0 CAM-Neiva
humboltii Identificada Colombia - PM 180 '' 000 ''
Schizolobiu Fuente 107CPU Hda. Turbo Antioqui bmh- 07 ° 70 ' 76 ° 35 ' 150 216.4 5.0 CORPOURA
m Identificada Choroman a T 000 '' 000 '' BA-Apartadó
parahybum dó
Schizolobiu Fuente 089UG Ricardo La San Luis Antioqui bm-T 05 ° 37 ' 75 ° 02 ' 450 433.7 2.0 UGAM-San
m Identificada M Giraldo Garrucha a 054 '' 020 '' Luis-Ant.
parahybum
Schizolobiu Fuente 088UG Carlos El Cruce San Luis Antioqui bm - 05 ° 55 ' 75 ° 00 ' 400 433.7 0.8 UGAM-San
m Identificada M Emilio a T 022 '' 000 '' Luis-Ant.
parahybum Vasques
Schizolobiu Fuente 093REF REFOCO Pivijay Magdale bs-T 09 ° 14 ' 74 ° 17 ' 30 138.1 0.5 REFOCOST
m Identificada STA na 051 '' 019 '' A-
parahybum Barranquilla
Sweitenia Fuente 087CPG Villa Dalia Chingolita Maicao La 11 ° 11 ' 72 ° 48 ' 240 27.0 86.2 0.2 CORPOGUA
macrophylla Identificada Guajira 004 '' 000 '' JIRA
Swietenia Fuente 068CVS Vivero de Cabecera Sahagun Cordoba bs - 08 ° 56 ' 75 ° 27 ' 85 113.4 0.7 CVS-

macrophylla Identificada la CVS Municipal T 400 '' 000 '' Montería
Swietenia Fuente 070CVS Banco de Mocari Monteria Cordoba bs - 08 ° 48 ' 75 ° 50 ' 20 106.0 0.3 CVS-
macrophylla Identificada Semillas T 540 '' 700 '' Montería
CVS
Tabebuia Fuente 071CVS Vivero - Mocari Monteria Cordoba bs - 08 ° 48 ' 75 ° 50 ' 20 106.0 6.0 CVS-
rosea Identificada CVS T 540 '' 700 '' Montería
Tabebuia Fuente 036REF Refocosta Pivijay Pivijay Magdale bs - 09 ° 14 ' 74 ° 17 ' 30 123.6 8.0 REFOCOST
rosea Selecciona S.A. na T 180 '' 830 '' A-Baranquilla
da
Tabebuia Fuente 067CVS Estanque Cabecera San Andres Cordoba bs - 09 ° 08 ' 75 ° 30 ' 80 115.9 2.5 CVS-Cali
rosea Identificada Comunitar Municipal Sotavento T 100 '' 500 ''
io
Tabebuia Fuente 105CPU La Marina Zungo Apartado Antioqui bmh- 07 ° 49 ' 76 ° 56 ' 25 27.3 300.3 12.0 CORPOURA
rosea Identificada a T 000 '' 000 '' BA-Apartadó
Tabebuia Fuente 104CPU COMFAM Apartado Antioqui bmh- 07 ° 52 ' 76 ° 36 ' 100 207.6 1.0 CORPOURA
rosea Identificada ILIARES a T 000 '' 000 '' BA-Apartadó
Tabebuia Fuente 061CRS San Jose Arroyo San Onofre Sucre bs - 09 ° 43 ' 75 ° 32 ' 55 150.0 5.0 CARSUCRE-
rosea Identificada Torove T 600 '' 000 '' Sincelejo
Tabebuia Fuente 085CPG Ríomina Riohacha La bh - 11 ° 13 ' 73 ° 14 ' 80 27.4 92.1 1.0 CARPOGUA
rosea Identificada Guajira T 040 '' 054 '' JIRA-
Ríoacha
Tabebuia Fuente 063CRS Santa Pto Viejo Tolu Sucre bs - 09 ° 22 ' 75 ° 35 ' 55 119.4 10.0 CARSUCRE-
rosea Identificada Teresa T 600 '' 500 '' Sincelejo
Tabebuia Fuente 049CUN La Misiones El Colegio Cundina bh-M 04 ° 33 ' 74 ° 27 ' 1600 50.0 CENICAFE-
rosea Identificada Trinidad marca 600 '' 700 '' Chinchiná
Tabebuia Fuente 058CON Lusitania La Espriella Tumaco Nariño bh-T 01 ° 38 ' 78 ° 46 ' 30 25.4 248.0 1.0 CONIF-
rosea Identificada 000 '' 000 '' Bogotá
Tabebuia Fuente 100CPN VILLA BAJO Pto. Norte bh-T 08 ° 19 ' 72 ° 25 ' 200 222.8 10.0 CORPONOR
rosea Identificada CARMIÑA GUARAMIT Santander Santand 011 '' 018 '' -Cúcuta
O er
Virola Fuente 042CON Lusitania La Espriella Tumaco Nariño bh - 01 ° 38 ' 78 ° 46 ' 30 25.4 248.0 0.9 CONIF-
dixonii Identificada T 000 '' 000 '' Bogotá
Virola reedii Fuente 041CON Lusitania La Espriella Tumaco Nariño bh - 01 ° 38 ' 78 ° 46 ' 30 25.4 248.0 0.9 CONIF-
Identificada T 000 '' 000 '' Bogotá
Vochysia Fuente 024SAM Arbolito Chepero Cumaral Meta bmh 04 ° 15 ' 73 ° 27 ' 510 25.5 284.3 0.8 Sec.Agricultu
tetraphylla Identificada -T 485 '' 258 '' ra-Meta

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CONVENIO

MINISTERIO DE AGRICULTURA Y DESARROLLO RURAL

Investigación en Semillas Forestales

Santafé de Bogotá, julio de 1999

1. IMPORTANCIA DEL MATERIAL REPRODUCTIVO 2

1.1 Semillas de procedencias selectas 3

2. IMPACTO EN LA REFORESTACION DEL MATERIAL 5

3. METODOLOGIA PARA EL ESTABLECIMIENTO DE 6

3.1 Ganancias genéticas en el corto plazo 6

4. MANEJO DE FUENTES SEMILLERAS 15

5. AVANCES EN LA IDENTIFICACION, SELECCION 19

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR ii

5.1 Identificación de especies prioritarias 20

5.4 Base de datos sobre fuentes semilleras -FUESEMILL 24

6. MANEJO EN CAMPO DE FUENTES SEMILLERAS 25

8. PROTOCOLO DE ANALISIS PARA CERTIFICACION 31

8.1 Protocolo de análisis para la especie Tabebuia rosea 32

8.2 Protocolo de análisis para la especie Cordia alliodora 35

8.3 Protocolo de análisis para la especie Cedrela odorata 38

8.4 Protocolo de análisis para la especie Cariniana piryformis 42

8.5 Protocolo de análisis para la especie Alnus jorullensis 45

9. PROTOCOLOS PARA LA ESTANDARIZACION DE ANALISIS 50

9.1 Análisis de calidad física para diez especies forestales. 51

REGISTRO NACIONAL DE FUENTES SEMILLERAS

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR iii

Con la desaparición del INDERENA en 1994, también desaparecieron una serie de

Trabajo complementado con la realización de los protocolos sobre pruebas de semillas de

Los protocolos fueron desarrollado en el Laboratorio de Semillas Forestales de la

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR 1

El aumento constante de la población, la conversión de bosques naturales para la

Las plantaciones forestales manejadas técnicamente son parte de la solución, al

Una falla en algunos de éstos componentes afecta el rendimiento de la plantación. Ciertos

La identificación de las mejores fuentes productoras de semilla es uno de los principales

Existen varios métodos para la obtención de semilla genéticamente mejorada en el corto

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR 2

Cuando existen resultados de ensayos procedencias, el primer paso para el

La mayoría de los casos, la introducción de especies en sitios previamente seleccionados

1.2 Arboles semilleros

Cuando la selección se realiza en plantaciones homogéneas, es posible lograr ganancias

1.3 Semilla de ensayos de procedencia

En muchas regiones de un país se han establecido ensayos de procedencia y

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR 3

La situación puede mejorar, dependiendo del diseño y del número de procedencias

1.4 Semilla de árboles elite

Un árbol elite es aquel que ha demostrado su superioridad genética a través de ensayos

1.5 Semilla de fuentes semilleras

Otra estrategia para la producción de semilla es colectar rodales con características

La identificación de las mejores fuentes de semilla y su evaluación y selección, forman

La garantía que obtiene el usuario de la semilla o reforestador, al utilizar material de una

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR 4

En algunas regiones del país se observan pequeñas plantaciones forestales pobladas de

La falta de investigación silvicultural en especies nativas trae como consecuencia la

La garantía que obtiene el usuario de la semilla, al utilizar material de una fuente

En el caso de las especies valiosas, de alto interés económico y que justifican la

Investigación en Semillas Forestales - Programa - INSEFOR 5

3. METODOLOGIA PARA EL ESTABLECIMIENTO DE FUENTES SEMILLERAS

El mayor esfuerzo de la investigación para fomentar el establecimiento de plantaciones

A partir del año 1995, La Corporación Nacional de Investigación y Fomento forestal -

El Programa de Semillas Forestales, financiado por el Ministerio de Agricultura y

3.1 Ganancias genéticas en el corto plazo