Mecanismos de Evolución y Resistencia Bacterianas
Mecanismos de Evolución y Resistencia Bacterianas
Mecanismos de Evolución y Resistencia Bacterianas
Mecanismos de evolución
y resistencias bacterianas
Rafael Gómez-Lus y Carmen Rubio Calvo
Unidad de Microbiología. Departamento de Microbiología, Medicina Preventiva y Salud Pública. Universidad de Zaragoza. Zaragoza. España.
La evolución de las bacterias hacia la resistencia a los antibióti- nes de genes estructurales o reguladores. Alternativamente, pue-
cos, e incluso a la multirresistencia, es inevitable porque los genes de resultar de la adquisición horizontal de información genética
que la codifican ya existen en la naturaleza. Un ejemplo clásico exógena. Ambos mecanismos no son mutuamente exclusivos y
es la identificación de una cepa de Escherichia coli, productora de pueden asociarse en la emergencia y en una diseminación más
betalactamasa, antes de que la penicilina se hubiera utilizado clí- eficiente de la resistencia.
nicamente1. Es un aspecto particular de la evolución general de Una visión ampliada de los factores de virulencia para compren-
las células procariotas que preocupa a Homo sapiens, pero que no der mejor la infección y su tratamiento, incluidos elementos si-
puede detenerlo ninguna fuerza. En consecuencia, lo mejor que tuados fuera del ser humano, nos llevan a una interpretación más
podemos lograr es retrasar la emergencia y la diseminación sub- ecológica. Una ventaja de esta perspectiva es situar a la biología
secuente de las bacterias resistentes o de los genes de resistencia. de la resistencia y su evolución en el centro del problema.
Por eso, el fenómeno de la resistencia puede surgir por mutacio-
Cada uno de estos fenómenos no solamente es infeccioso, sino Entre los cocos grampositivos, la transferencia de genes de re-
exponencial, ya que está asociado a la replicación del ácido sistencia a macrólidos en Streptococcus pneumoniae está mediada
desoxirribonucleico (ADN). La diseminación clonal se debe a por Tn cromosómicos, como el Tn15452, de amplio espectro de
la replicación del cromosoma; la conjugación plasmídica, a la huéspedes: géneros Streptococcus, Staphylococcus y Enterococcus.
transferencia replicativa, y la migración de genes, a la transposi- El origen de los plásmidos de resistencia lo encontramos en
ción replicativa. Hagamos especial énfasis en que la conjugación microorganismos productores de antibióticos (géneros Bacillus,
tiene un rango muy amplio de bacterias huéspedes, por lo que Micromonospora, Streptomyces, etc.) y forma parte de un mecanis-
los plásmidos pueden transferirse de forma eficiente entre gé- mo antisuicidio, con exportación de las sustancias protectoras.
neros filogenéticamente remotos, y las barreras para la expresión Este mecanismo propuesto incialmente por Watanabe3 y com-
de genes heterólogos son limitadas, de modo que los determi- pletado por Benveniste y Davies4, indicaba que los determinan-
nantes genéticos de resistencia se expresan en procariotas muy tes R procedían de los cromosomas de los precitados géneros y
diversas. eran capturados por plásmidos (factores sexuales)5. Otra posibi-
Estas observaciones conducen al conocimiento de que las bac- lidad es la participación de genes metabólicos cuyos productos
terias atesoran un fondo de genes de resistencia, ya que están intervienen en las funciones procarióticas y son capaces también
laxamente unidos a sus huéspedes y en condiciones naturales se de modificar, inactivar o expulsar moléculas de antimicrobianos.
diseminan con facilidad. Además, muchos de los determinantes genéticos de resistencia
que ahora se encuentran en plásmidos pueden tener su origen en
el cromosoma de otras especies, como ya se ha demostrado.
La resistencia a los antibióticos en
bacilos gramnegativos y en cocos Propagación de plásmidos R
grampositivos entre diferentes cepas en el medio
La resistencia bacteriana a los antibióticos en los bacilos gram- hospitalario
negativos (BGN) suele estar mediada por plásmidos R, y los
genes vehiculados, por transposones (Tn), integrones (In) y em- En el Hospital Clínico Universitario Lozano Blesa de Zara-
paquetados en casetes génicas (tabla 1). En los cocos grampo- goza, investigamos la diseminación y la evolución de la resis-
sitivos, son fundamentales los Tn conjugativos cromosómicos tencia antibiótica y estudiamos los plásmidos R conjugativos
(TnCC), caracterizados por compartir rasgos con plásmidos R, (tra+), los elementos transponibles y, en algunos casos, los me-
bacteriófagos y Tn clásicos. Todos estos elementos desempeñan canismos bioquímicos de resistencia. En 1974, de una cepa de
un papel central en la evolución, proporcionan mecanismos para Pseudomonas aeruginosa procedente del Centro Regional de
generar diversidad y, con los sistemas de transferencia de ADN, Traumatología, caracterizamos el plásmido de 68 kb pUZ1 (fig.
para su diseminación a otras bacterias. 1), grupo de incompatibilidad P transferible a E. coli J62 por
Como analizaremos más adelante, entre las poblaciones bacte- conjugación y patrón de resistencia que incluía 10 antibióticos
rianas de BGN, sobre todo en las causantes de infecciones hos- y cloruro mercúrico6,7. El plásmido pUZ1 contenía 2 Tn, el Tn3
pitalarias, son fundamentales la intervención de los plásmidos ya conocido que porta el gen bla , y uno nuevo, el Tn1696
TEM-1
R, de los Tn, de los In y de las casetes génicas, cuyo papel varía (fig. 2) vehículo del integrón In4, que albergaba 5 de los genes
de unos a otros determinantes genéticos. Muchos de los genes de resistencia.
de resistencia adquiridos son parte de pequeños elementos mó- Cuatro años después, aislamos diferentes cepas de enterobacte-
viles: las casetes génicas, que al incorporar un pequeño sitio de rias y de P. aeruginosa (tabla 2), que portaban plásmidos del mis-
recombinación (SR, de 59 pb), les confiere movilidad. Es un mo grupo P, con idénticos peso molecular, patrón de restricción
mecanismo muy eficiente de empaquetar genes y, en cuanto al y producción de enzimas8. Estos hallazgos apoyaban la hipóte-
grado de divergencia entre las casetes génicas, están en el rango sis de la diseminación de plásmidos R pertenecientes al grupo
existente entre especies como E. coli y Salmonella typhimurium; IncP, capaces de propagarse entre las familias Enterobacteriaceae
es decir, de 10 a 160 millones de años. La SR (secuencia re- y Pseudomonadaceae.
petida) de 59pb derivan de ancestros comunes, funcionalmente En 1976, detectamos un plásmido de 73 kb perteneciente al
conservadas por muchos años. grupo Inc M y, por tanto, transferible solamente a enterobacte-
rias. El patrón de resistencia antibiótica incluía ampicilina, tetra-
ciclina, gentamicina y tobramicina. Posteriormente, se aislaron
numerosas cepas de enterobacterias con plásmidos del mismo
Tabla 1. Superfamilias de vectores génicos grupo IncM e idénticas propiedades genotípicas y fenotípicas,
encontrando en una cepa clínica de Proteus vulgaris la coexis-
tencia de 2 plásmidos, uno del grupo IncM y otro del IncP.
Cromosoma: gran replicón Además, como consecuencia de la vigilancia epidemiológica de
Plásmido: pequeño replicón las cepas portadoras de plásmidos R, pudimos comprobar que
Transposón: cromósomico y/o plasmídico algunos inicialmente transferibles (tra+), dejaban de serlo (tra–),
Integrón: vector natural de clonación y expresión así como la pérdida de plásmidos, o bien la recombinación de
Casetes génicas: vectores “capturables” parte de sus genes en el cromosoma, que indicaba mecanismos
Bacteriófago: porta genes en su cápside de transposición. Un ejemplo práctico lo constituye una trans-
conjugante de la cepa de E. coli #3644, que perdió el plásmido,
IR Tn1696
IR
IR
Tn3
Tabla 2. Plásmidos del grupo Inc P aislados en el CRT(1974) y en el Hospital Clínico Universitario Lozano Blesa de Zaragoza (1976-1978)
tirresistente serotipo 6B, de España a Islandia, del sur al norte salud pública y, en el caso de los antibióticos, permitirá adoptar
de Europa11. medidas que repercutirán en los costes sanitarios y, en especial,
Es comprensible que, en 1997, se crease la Red Epidemiológica en los efectos ecológicos adversos de su utilización, es decir, en la
Molecular de Neumococos (Pneumococcal Molecular Epide- selección de patógenos resistentes.
miology Network), bajo los auspicios de la Unión Internacional
de Sociedades de Microbiología, con la finalidad de estandarizar
la nomenclatura y la clasificación de los clones de S. pneumoniae
en el ámbito mundial. Bibliografía
Es destacable que la vigilancia de la aparición de nuevos meca-
nismos bacterianos frente a los antimicrobianos ha dado lugar
al hallazgo de un nuevo fenotipo de resistencia múltiple media-
do por la ARN metiltransferasa Cfr en S. aureus y en E. coli12.
El fenotipo que se denomina PhLOPSa confiere resistencia
a las clases siguientes de antibióticos: fenicoles, lincosamidas, •• Muy importante
oxazolidinonas, pleuromutilinas (como tiamulina, de uso en
1. Abraham EP, Chain E. An enzyme from bacteria able to destroy penicillin. Nature.
veterinaria) y estreptogramina A, siendo la primera vez que se 1940;146:837.
detecta resistencia transferible plasmídica a oxazolidinonas y 2. Seral C, Castillo J, García C, Rubio MC, Gómez-Lus R. Distribution of resistance
genes tet(M), aph (3’)-III , catpC194 and the integrase of Tn1545 in clinical Streptococcus
tiamulina. pneumoniae harbouring erm(B) and mef (A) genes in Spain. J Antimicrob Chemother.
2001;47:863-6.
3. •• Watanabe T. The origin of R factors. Annals NY Acad Sci. 1971;182:126-40.
Conclusión 4. •• Benveniste R, Davies J. Aminoglycoside antibiotic-inactivating enzymes in
Antinomycetes similar to those present in clinical isolates of antibiotic-resistant
bacteria. Proc Natl Acad Sci (USA). 1973;70:2270-80.