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Obtención de Almidón PDF
Obtención de Almidón PDF
Obtención de Almidón PDF
AUTORA
AÑO
2019
FACULTAD DE INGENIERÍA Y CIENCIAS APLICADAS
Profesor Guía
Autora
Año
2019
DECLARACIÓN DEL PROFESOR GUÍA
______________________________
________________________________
Declaro que este trabajo es original, de mi auditoría, que se han citado las
fuentes correspondientes y que en su ejecución se respetaron las disposiciones
legales que protegen los derechos de autor vigentes.
_______________________________
Lizeth Estefania Romero Shiguango
CI: 220020573-6
AGRADECIMIENTO
2.5.1.4 Adsorción que permita un enlace tipo puente entre partículas ...... 17
2.6 Floculación............................................................................... 18
REFERENCIAS .................................................................. 71
ANEXOS ............................................................................. 86
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1.Vacas ordeñadas y producción de leche ............................................. 1
Figura 2.Procesos de elaboración de leche .................................................... 10
Figura 3.Coagulación. ..................................................................................... 15
Figura 4.Compresión de la capa difusiva. ....................................................... 16
Figura 5.Neutralización de la carga (a) y re-estabilización de inversión de la
carga (b). .......................................................................................... 16
Figura 6.Atrapamiento de las partículas en un floc. ......................................... 17
Figura 7.Modelo de enlace de puente para desestabilizar coloides con
polímeros. ........................................................................................ 18
Figura 8.Floculación. ....................................................................................... 19
Figura 9.Beneficios y Limitaciones de los coagulantes naturales. ................... 22
Figura 10.Transición del almidón durante tratamiento hidrotérmico. ............... 28
Figura 11.Proceso de la Obtención de almidón basándose en la metodología de
Aparicio 2003. .................................................................................. 30
Figura 12.Proceso de la Obtención de almidón de almidón de plátano. .......... 31
Figura 13.Comprobación de contenido de almidón en papa, plátano y yuca,
respectivamente. .............................................................................. 32
Figura 14.Toma de muestra de agua residual. ................................................ 33
Figura 15.Medición de pH. .............................................................................. 34
Figura 16.Medición de Turbiedad en espectrofotómetro. ................................ 35
Figura 17.Proceso de sedimentación en cono Imhoff. ..................................... 35
Figura 18.Equipo de filtración. ......................................................................... 37
Figura 19.Proceso de medición de la demande química de oxígeno. .............. 38
Figura 20.Bloque calefactor. ........................................................................... 38
Figura 21.Botellas oxitop en incubadora a 20 °C. ............................................ 39
Figura 22.Pretratamiento del agua residual. .................................................... 41
Figura 23.Proceso de gelificación en parrilla de calentamiento con agitación. 41
Figura 24.Prueba de dosificación en test de jarras. ......................................... 42
Figura 25.Dosis óptima del Sulfato de aluminio. .............................................. 44
Figura 26.Porcentaje de remoción de turbiedad con almidón de plátano. ....... 48
Figura 27.Porcentaje de remoción de turbiedad con almidón de Papa. ........... 49
Figura 28.Porcentaje de remoción de turbiedad con almidón de Yuca. ........... 50
Figura 29.Porcentaje de remoción de turbiedad con Al2(SO4)3. ....................... 51
Figura 30.Datos obtenidos del análisis de DQO. ............................................. 53
Figura 31.Datos obtenidos del análisis de DBO5. ............................................ 54
Figura 32.Representación del porcentaje de remoción de Compuesto orgánico
con la dosis de almidón .................................................................... 56
Figura 33.Representación del porcentaje de remoción de Compuesto orgánico
con almidón de yuca. ........................................................................ 57
Figura 34.Representación del porcentaje de remoción de compuesto orgánico
con almidón de papa. ....................................................................... 58
Figura 35.Representación del porcentaje de remoción de Compuesto orgánico
con almidón de plátano. ................................................................... 58
Figura 36.Remoción del compuesto orgánico según el tipo de almidón utilizado.
........................................................................................................................ 59
Figura 37.Análisis de remoción de compuesto orgánico con relación a la dosis
de almidón. ....................................................................................... 62
Figura 38.Representación del porcentaje de remoción de compuesto orgánico
del análisis de DBO5 con almidón de yuca ....................................... 63
Figura 39.Representación del porcentaje de remoción de compuesto orgánico
del análisis de DBO5 con almidón de papa. ...................................... 63
Figura 40.Representación del porcentaje de remoción de compuesto orgánico
del análisis de DBO5 con almidón de plátano. .................................. 64
Figura 41.Representación del porcentaje de remoción de compuesto orgánico
del análisis de DBO5 con almidón de plátano. .................................. 65
Figura 42.Remoción de turbidez en el análisis de DBO 5 según el tipo de
almidón utilizado. .............................................................................. 66
ÍNDICE DE TABLA
Tabla 1. Coagulantes naturales evaluados y considerado positivo para
reducción de turbiedad. ...................................................................... 21
Tabla 2. Estructuras moleculares del almidón. ................................................ 24
Tabla 3. Composición del tubérculo de la papa. .............................................. 25
Tabla 4. Composición química del almidón de plátano. ................................... 26
Tabla 5. Límites de descargas al alcantarillado. .............................................. 40
Tabla 6. Primer diseño experimental para remoción de compuesto orgánico. . 43
Tabla 7. Segundo diseño experimental remoción de turbiedad. ...................... 45
Tabla 8. Caracterización de las muestras recolectadas en la industria láctea. 46
Tabla 9. Obtención de almidón de yuca, papa, plátano. .................................. 47
Tabla 10. Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de plátano. .......... 48
Tabla 11. Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de Papa .............. 49
Tabla 12. Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de Yuca. ............. 50
Tabla 13. Porcentaje de remoción de turbidez con Al2(SO4)3. ......................... 51
Tabla 14. Datos obtenidos del diseño experimental para determinar el
porcentaje de remoción de compuesto orgánico con DQO. .............. 52
Tabla 15. Datos obtenidos del diseño experimental para determinar el
porcentaje de remoción de compuesto orgánico con DBO 5. ............. 53
Tabla 16. ANOVA de remoción de compuesto orgánico por dosis de almidón. 55
Tabla 17. Medias según dosis aplicada en el análisis de DQO. ...................... 56
Tabla 18. Primer diseño para determinar la remoción de compuesto orgánico
con DBO5. ........................................................................................ 60
Tabla 19. ANOVA de remoción de compuesto orgánico por dosis de almidón. 61
Tabla 20. Medias según dosis aplicada en el análisis de DBO 5. ..................... 61
Tabla 21. Segundo diseño experimental para determinar la remoción de
turbiedad. ....................................................................................... 66
1
1. CAPITULO I. INTRODUCCIÓN
1.1 Antecedentes
En el Ecuador se generan cerca de 900 mil litros al día de leche, los cuales
pueden ser producidos por pequeñas, medianas y grandes empresas (Centro de
la Industria Láctea del Ecuador [CIL], 2019). En el año 2016 se tuvo un
incremento de 0,29% en la producción de ganado vacuno; por ende, la
producción de leche aumentó según la región del país, aportando de esta
manera la Sierra con un 77,21%, la Costa con 41,96% y el Oriente con el 4,82%
(Instituto Nacional de Estadística y Censos [INEC], 2016).
Dentro de los procesos de producción de leche, que generan una mayor cantidad
de descargas hacia las plantas de tratamiento son: la pasteurización y la
homogeneización.
Los coagulantes de origen natural son una alternativa con gran utilidad para el
procesamiento de las aguas con desechos provenientes de la industria láctea,
este es un método que aún no se ha explotado, son fáciles de manipular y
amigables con el entorno, no son tóxicos y se componen de taninos, alcaloides,
mucílagos, proteínas, y polisacáridos (Moscozo, 2015). También es común el
empleo de elementos alimenticios a manera de bio coagulantes, debido a su
elevado compuesto de proteínas y de carbohidratos, los cuales se hallan
2
Sin embargo, algunas desventajas que presentan los coagulantes químicos son,
que requieren un control del pH como es el caso del sulfato de aluminio, en el
policloruro de aluminio la existencia de un pH alto perjudica la eliminación de
desechos orgánicos, el uso de cloruro férrico puede causar mayor peso
molecular de hierro, ya que la dosis de hierro es mayor que la de aluminio y es
muy corrosivo para ser almacenado o manipular. El sulfato férrico por otro lado
puede llegar a dar coloración en el agua tratada (Asociación Interamericana de
Ingeniería Sanitaria y Ambiental [AIDIS], s.f.).
Por último, tenemos al uso de bio coagulantes naturales los cuales pueden
elaborarse a partir de: especies naturales, tamarindo, moringa, papas y habas.
Los beneficios al emplearlos para tratamiento de aguas es principalmente que
estos se producen de manera sencilla, por reacciones bioquímicas dada por la
naturaleza, es decir originados naturalmente. En comparación con los químicos,
los coagulantes de origen natural presentan una muy pequeña, si no es
4
diversidad de los desechos de las aguas con la diferenciación que estas tienen
una elevada demanda biológica de oxígeno (DBO5) que puede ir de 2000 y 3000
mg/L y de DQO en un intervalo de 2000 y 4000 mg/L, al igual que elevadas
proporciones de residuos suspendidos o disueltos, compuesto orgánico, aceites
y nutrientes como el amoniaco, fósforo y minerales (Tirado, Gallo, Acevedo y
Mouthon, 2016).
En la Región del Gran Caribe (RGC), el mal manejo de aguas residuales, pueden
llegar a ser una fuente significativa en el área de contaminación marítima, debido
a las repercusiones a la salud humana, amenaza al desarrollo sostenible y a los
recursos marítimos. Dentro de los países de la RGC, se tiene un mal
ordenamiento territorial, el asentamiento poblacional se ubica en áreas costeras,
las cuales no constan con un método de alcantarillado adecuado, impidiendo de
esta forma un acceso a un saneamiento básico de conexiones domiciliarias a
una red de alcantarillado, por ende, es más complicada la existencia de plantas
de tratamientos. Por efecto de lo antes mencionado, se produce un vertimiento
directo a los ecosistemas marino-costero de las aguas residuales, provocando
altos riesgos a la salud pública y ambiente (Palacios, García, Villasol, Chabalina,
García, Pérez y Morales, 2010).
En Ecuador se tiene una gran variedad de industrias lácteas las cuales necesitan
de un estudio ambiental para la obtención de la licencia Ambiental, como ejemplo
de este proceso tenemos una empresa elaboradora de lácteos ¨FLORALP S.A¨,
que está ubicada en la parroquia de Caranqui, cantón Ibarra, esta fue sujeta a
un estudio de impacto ambiental, para poder realizar este estudio, se hizo la toma
de la muestra, obtenida de las descargas provenientes del sistema de
tratamiento, el cual según los resultados obtenidos por esta descarga dirigida al
alcantarillado, sobrepasaba los límites permisibles designados por el Acuerdo
Ministerial 097-A tabla 8 para descargas al sistema de alcantarillado, entre los
parámetros que no están en norma constan: pH, DBO5, DQO, Nitrógeno total,
Sólidos Suspendidos y Totales, por lo cual, el impacto que genera la elaboración
de lácteos es alto (Montenegro, 2017).
6
1.3 Objetivos
1.4 Alcance
1.5 Justificación
Los productos descritos, son los causantes de la contaminación del agua, por lo
que es preciso contribuir con el proceso de su purificación, a través de
operaciones de depuración entre las cuales se cuenta la coagulación-floculación,
encargada de la eliminación de compuestos orgánicos e inorgánicos en
suspensión, mejorando así las características apropiadas del agua (Ramírez y
Jaramillo, 2018).
Los coagulantes más utilizados para este tratamiento a nivel nacional y mundial
son los químicos, tal es el caso del sulfato de aluminio que presenta diferentes
complicaciones en su manipulación, como, por ejemplo, la irritación en la piel,
irritación en la nariz, pulmón y garganta al inhalarlo, entre otros efectos al
contacto directo con los humanos, afectando de esta manera la salud (NJ Health,
2016). Al mismo tiempo, con el empleo de coagulantes químicos se ocasiona
grandes volúmenes de lodo químico, difícil de estabilizar (Villegas, Castaño, y
Paredes, 2005).
Las aguas residuales pueden provenir de 4 diferentes fuentes las cuales son:
aguas domésticas, aguas residuales industriales, escorrentías de usos agrícolas
y pluviales. La más analizadas han sido las domésticas e industriales; sin
embargo, la afectación por uso agrícola en conjunto con las pluviales han sido la
causa principal de eutrofización en lagos y pantanos, debido a que existe la
presencia de fósforo a causa de los pesticidas y fertilizantes utilizados (Ramalho,
1990).
La mayor parte de agua utilizada en las industrias termina siendo agua residual,
al ser liberada al medio ambiente llega a crear una huella ambiental significativa,
además de producir muchos otros peligros. La cantidad de agua residual
dependerá de la actividad de la industria (Ranade y Bhandari, 2017).
Por otro lado, el tratamiento biológico aeróbico, es un proceso que tiene como
ventaja la degradación oxidativa de los sustratos de carbono, ya que está
proporcionando la energía necesaria para la proliferación de microorganismos
que actúan como biocatalizador.
Figura 3. Coagulación.
Tomado de Andía, 2000, p.10.
2.6 Floculación
Figura 8. Floculación.
Tomado de Andía, 2000, p.33.
Tabla 1.
Coagulantes naturales evaluados y considerado positivo para reducción de
turbiedad.
Coagulantes no 49 90 50
iónicos (Cyamopsis
tetragonolobus)
Adaptado de Guzmán et al., 2013, p.259.
22
2.8 Estudio del almidón de yuca, papa y plátano como bio coagulante
Tabla 2.
Estructuras moleculares del almidón.
Amilosa
Amilopectina
El almidón de la papa está conformado por fósforo, tiene una alta viscosidad,
capacidad de hinchamiento, alta claridad en el proceso de gelificación y una baja
retrogradación. Las propiedades del almidón de papa dependen de las
características físicas y químicas, entre los cuales están el tamaño granular y la
relación de la amilosa/amilopectina. (Peña, 2017).
Tabla 3.
Composición del tubérculo de la papa.
Tabla 4.
Composición química del almidón de plátano.
2.9.2 Gelatinización
2.9.3 Gelificación
La gelificación se define, como los cambios a los que son expuestos los gránulos
por calor en medio acuoso, el intervalo de temperatura en el que se produce el
hinchamiento de los gránulos es denominado temperatura de gelificación, en
este procedimiento la presencia de amilosa es necesaria, ya que esta es la
sustancia que se va a solubilizar en el agua y provocar el hinchamiento de los
gránulos y, finalmente formar una pasta de almidón, con alta viscosidad. Si esta
pasta es sometida por más tiempo a calor llega a la segunda fase donde se
puede apreciar la fragmentación de los gránulos, provocando una disminución
de su viscosidad, para dar paso a la formación del gel o gelificación (Aristizábal,
Sánchez y Mejía, 2007).
28
2.9.4 Retrogradación
Como primer paso, se procedió a pelar, lavar y cortar las especies vegetales en
porciones de 2.5 cm x 2.5 cm x 2 cm, luego se colocó los trozos realizados en el
paso anterior en un envase con agua a 40 °C, para proceder a licuar todas las
porciones del recipiente y así obtener partículas más finas (Figura11). Posterior
a este paso, se lavó varias veces el extracto obtenido con la misma agua utilizada
anteriormente y con el auxilio de un tamiz # 100.
El líquido que paso por el tamiz se dejó sedimentar por dos horas y lo que se
retuvo por el tamiz se desechó. Una vez transcurridas 3 a 4 horas del proceso
de decantación, se separó el líquido, mientras que el sedimento se dejó reposar
por 24 horas. Para evitar que exista un sobrenadante después de la refrigeración,
se volvió a realizar la separación del mismo, como penúltimo paso se pasó el
sedimento a la centrifugadora a 850 rpm por 15 minutos y se secó en la estufa a
40 °C por 24 horas, con la ayuda del mortero se logró obtener el almidón en
polvo (Ortiz, López, Torres y Pampillón, 2018).
30
3.3.1 Determinación de pH
(𝐴−𝐵)∗1000
𝑚𝑔 𝑑𝑒 𝑠ó𝑙𝑖𝑑𝑜𝑠 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙𝑒𝑠 = 𝑉𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑑𝑒 𝑚𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎 (𝑚𝑙) (Ecuación 1)
El primer paso para realizar este procedimiento es tarar los crisoles y papel filtro
a 105 °C en el horno por una hora, después de eso se debe preparar el equipo
a utilizar los cuales son el equipo de filtración y bomba de vacío. El papel de filtro
fue colocado en el embudo de filtración con agua destilada y procedemos a
aplicar poco a poco el agua residual hasta que el filtro se sature, para después
colocar el crisol con el filtro en el horno a 105 °C toda la noche, por último se
pesa el crisol con el papel filtro para proceder a hacer los cálculos (Hernández,
2007).
(𝐴−𝐵) (𝑚𝑔)
𝑚𝑔 𝑑𝑒 𝑠ó𝑙𝑖𝑑𝑜𝑠 𝑠𝑢𝑠𝑝𝑒𝑛𝑑𝑖𝑑𝑜𝑠 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙𝑒𝑠 = 106 𝑉𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑑𝑒 𝑚𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎 (𝑚𝑙) (Ecuación 2)
(𝐴−𝐵) (𝑚𝑔)
𝑚𝑔 𝑑𝑒 𝑠ó𝑙𝑖𝑑𝑜𝑠 𝑑𝑖𝑠𝑢𝑒𝑙𝑡𝑜𝑠 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙𝑒𝑠 = 106 𝑉𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑑𝑒 𝑚𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎 (𝑚𝑙) (Ecuación 3)
Para determinar la DQO fue empleado el kit NOVACHEM con rango de 0 a 15000
mg/l, donde se realizó el siguiente procedimiento (Figura 19). Para obtener el
valor de DQO se utilizó el espectrofotómetro UV/VIS NANOCOLOR marca
Macherey-Nagel con el código 029.
Tabla 5.
Límites de descargas al alcantarillado.
Temperatura T °C < 40
Con los datos obtenidos del anterior paso, se procedió a efectuar los cálculos
para establecer el porcentaje de separación de turbiedad que se obtuvo en todos
los análisis efectuados.
Tabla 6.
Primer diseño experimental para remoción de compuesto orgánico.
3 6 ml
Una vez conseguido los datos con la cantidad adecuada tanto del coagulante
natural como del químico, se elaboró la distribución de cantidad para cada
tratamiento; en esta fase se distribuyó por porcentajes, se consideró que la
cantidad máxima corresponden al 100% como se muestra en la Tabla 7.
45
Una vez obtenidos los datos se realizaron los cálculos para la obtener el
porcentaje de reducción de turbiedad y por ende cuál de los tratamientos fue el
mejor para cada una de las especies vegetales.
Tabla 7.
Segundo diseño experimental remoción de turbiedad.
Tabla 8.
Caracterización de las muestras recolectadas en la industria láctea.
Tabla 9.
Obtención de almidón de yuca, papa, plátano.
Coagulantes naturales
Tipo de Especie Pulpa de especies Cantidad de
vegetal vegetales (gr) almidón
obtenido(gr)
Tabla 10.
Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de plátano.
Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de plátano al 10%
(gelificación)
Dosis de Repetición 1 Repetición 2 Repetición 3
Coagulante Turbid % de Turbidez % de Turbid % de
natural ez remoc remoci ez remoci
ión ón ón
1ml 90 15.33 90 15.33 90 15.33
2ml 55.4 47.88 64.8 39.04 56.2 38.58
4ml 57.9 36.72 52.2 42.95 63.3 30.82
6ml 50.6 44.70 56.7 38.03 58.4 36.17
10ml 103 -12.57 103 -12.57 103 -12.57
La Figura 26 representa las tres repeticiones de cada una de las dosis, que se
realizaron para la obtención de la dosis óptima del almidón de plátano, en el
gráfico se destacó la dosis de 2 ml con un porcentaje de remoción del 48%.
60
50
% de remoción de
40
R1
turbidezi
30
20 R2
10
R3
0
-10 1ml 2ml 4ml 6ml 10ml
-20
Tabla 11.
Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de Papa.
60
% de remociòn de turbidez
50
40
30 R1
20 R2
R3
10
0
1ml 2ml 4ml 6ml 10ml
Dosis en ml de almidon de papa
Tabla 12.
Porcentaje de remoción de turbidez con almidón de Yuca.
35
% de remociòn de turbidez
30
25
20
R1
15
R2
10
R3
5
0
-5 1ml 2ml 4ml 6ml 10ml
Dosis en ml de almidon de yuca
Tabla 13.
Porcentaje de remoción de turbidez con Al2(SO4)3.
90
% de remoción de
80
turbidez
70
R1
60
R2
50
R3
40
2ml 3ml 5ml 6ml
Dosis en ml del Al2(SO4)3
Tabla 14.
Datos obtenidos del diseño experimental para determinar el porcentaje de
remoción de compuesto orgánico con DQO.
DATO S DQ O
R1 R2 R3
82,9
80,3
74,0
73,1
72,3
71,5
70,9
70,5
67,9
67,7
67,4
66,7
66,1
66,0
64,9
63,7
63,1
62,7
61,9
58,9
58,4
57,3
56,2
53,9
50,8
49,6
44,8
2 ML 4 ML 6 ML 2 ML 4 ML 6 ML 2 ML 4 ML 6 ML
YUCA PAPA PLÀTANO
Tabla 15.
Datos obtenidos del diseño experimental para determinar el porcentaje de
remoción de compuesto orgánico con DBO5.
Fue necesaria la aplicación de un análisis estadístico que definió los datos más
significativos según las medias en cada tratamiento.
DATO S DBO
R1 R2 R3
98,0
98,0
97,6
97,6
97,6
97,6
97,6
97,6
97,2
97,2
97,2
96,8
96,8
96,4
96,0
96,0
96,0
96,0
96,0
95,6
95,6
95,2
95,2
94,8
94,8
91,6
91,2
2 ML 4 ML 6 ML 2 ML 4 ML 6 ML 2 ML 4 ML 6 ML
YUCA PAPA PLÀTANO
Tabla 16.
ANOVA de remoción de compuesto orgánico por dosis de almidón.
Tabla 17.
Medias según dosis aplicada en el análisis de DQO.
Comparación de medias
Dosis Media
2 66.33
4 61.55
6 66
La Figura 33 muestra que la dosis que tuvo una mejor eliminación de compuesto
orgánico en la valoración de DQO, fue el de 6 ml con una remoción del 62.33%
utilizando almidón de yuca. La figura demuestra que no se solapan las imágenes
indicando que existe variación al aplicar diferentes dosis y el más destacado es
el de 6 ml debido a que sus datos son más certeros.
aproxima a los valores de 70%; sin embargo, existen datos menores lo cual hace
que el bigote inferior se acerque al 60% de remoción de turbiedad.
Figura 36. Remoción del compuesto orgánico según el tipo de almidón utilizado.
Según Herrera (2015), la aplicación del almidón nativo de papa tiene similares
resultados que, al aplicar el sulfato de aluminio, en aguas residuales domesticas
con una remoción de turbiedad de 20.4 UNT, obteniendo que el uso de almidón
de papa en el procedimiento de coagulación-floculación cree una aglutinación
mejor en las partículas que se encuentran suspendidas, el único inconveniente
es el color ya que es muy blanquecina, por lo tanto, sobrepasa el rango
permisible.
60
Tabla 18.
Primer diseño para determinar la remoción de compuesto orgánico con DBO 5.
Tabla 19.
ANOVA de remoción de compuesto orgánico por dosis de almidón.
Tabla 20.
Medias según dosis aplicada en el análisis de DBO5.
Comparación de medias
Dosis media
2 96.55
4 96.66
6 95.66
Estos resultados son comparables con otros estudios en los que el porcentaje
de eliminación estuvo en el rango de 90% con la aplicación de la semilla de la M.
Oleífera en aguas residuales de una central de sacrificio (Arias, Hernández,
Castro y Sánchez, 2017). La aplicación de Cassia fistula logró una remoción del
70% de DBO5, pero no existieron cambios significativos en el análisis de DQO;
lo que puede significar la presencia de compuestos inorgánicos no
biodegradables por métodos convencionales y resistentes a la oxidación
bioquímica, cabe recalcar que este estudio se realizó en el tratamiento primario
de agua residual (Tarón, Guzmán y Barros, 2017).
Por otro lado, se tiene el análisis de la Figura 40, la cual al igual que en las
anteriores figuras se solaparon ya que no existió la presencia de datos variables.
Su rango de análisis fue desde 94% al 96% de remoción; según la media que se
obtuvo en el análisis de datos la mayor fue en la dosis de 4 ml con un 95.87% de
remoción.
Tabla 21.
Segundo diseño experimental para determinar la remoción de turbiedad.
El tratamiento que dio mejores resultados fue el de 75% de Al2(SO4)3 y 25% del
bio coagulante; con la aplicación del almidón de yuca que tuvo una remoción de
turbidez del 80%, con papa un 85.4% y, con plátano un 91.3%.
120,0
100,0
% de remoción de
% Remoción
80,0 turbidez yuca
turbidez
60,0 % Remoción
turbidez papa
40,0
% Remoción
20,0 turbidez plátano
0,0
1 2 3 4 5
Estos datos son comparables con varios estudios, entre estos el de Laines, Goñi,
Adams y Camacho(2008); se realizó la eliminación de turbiedad, utilizando
almidón de plátano con la adicion del sulfato de aluminio, con la diferencia que
en esta investigación se aplicó a lixiviados de rellenos sanitarios; la dosis que se
aplicó, fue de 75 mg/L para coagulante quimico y natural es decir en proporción
1:1, logrando una remoción del 90% de turbiedad. La diferencia entre la
investigación de Laines es la cantidad que se utilizó de almidón de platano en
esta investigación es mucho menor (500 µl), al igual que la cantidad de agua
muestra que utilizaron para los tratamientos en la prueba de jarras.
5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
5.1 Conclusiones
5.2 Recomendaciones
REFERENCIAS
Aguilar, M. I., Sáez, J., Lloréns, M., Soler, A., y Ortuño, J. (2002). Tratamiento
fisicoquímico de aguas residuales. España.
Arias, A., Hernández, J., Castro, A., y Sánchez, N. (2017). Tratamiento de aguas
residuales de una central de sacrificio: uso del polvo de la semilla de
la m. oleífera como coagulante natural. Biotecnología En El Sector
Agropecuario y Agroindustrial Edición Especial No, 1(1), 29-39.
Aristizábal, J., Sánchez, T., y Mejía, D. (2007). Guía técnica para producción y
análisis de almidón de yuca. Organización de las naciones unidas
para la agricultura y la alimentación. Recuperado el 18 de mayo de
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ANEXOS
Anexo 1. Obtención de almidón de plátano
Anexo 8. Muestras del segundo diseño experimental con almidón de papa (AP)
y sulfato de aluminio (SA) para medición de turbiedad.
Anexo 9. Muestras del segundo diseño experimental con almidón de plátano
(AV) y sulfato de aluminio (SA) para medición de turbiedad.
Anexo 10. Muestras del segundo diseño experimental con almidón de yuca (AY)
y sulfato de aluminio (SA) para medición de turbiedad.