Multi Stix
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colour perception; the presence or absence of inhibitory and matrix factors typically
found in urine; and the laboratory conditions in which the product is used (e.g., lighting, temperature, and humidity). Each colour block or instrumental result represents a
range of values. Because of specimen and reading variability, specimens with analyte
concentrations that fall between nominal levels may give results at either level. Results
will usually be within one level of the true concentration. Exact agreement between
visual results and instrumental results might not be found because of the inherent
differences between the perception of the human eye and the optical systems of the
instruments. The following list shows the generally detectable levels of the analytes in
contrived urines; however, because of the inherent variability of clinical urines, lesser
concentrations may be detected under certain conditions.
Test Pad and Sensitivity:
Protein: 0.150.3 g/L (1530 mg/dL) albumin
Blood: 150620 g/L (0.0150.062 mg/dL) haemoglobin
Leucocytes: 515 cells/hpf in clinical urine
Nitrite: 1322 mol/L (0.060.1 mg/dL) nitrite ion
Glucose: 47 mmol/L (75125 mg/dL) glucose
Ketone: 0.51.0 mmol/L (510 mg/dL) acetoacetic acid
Bilirubin: 714 mol/L (0.40.8 mg/dL) bilirubin
CHEMICAL PRINCIPLES OF PROCEDURES AND INGREDIENTS: (based on dry weight at
time of impregnation)
Protein: This test is based on the protein-error-of-indicators principle. Ingredients: 0.3%
w/w tetrabromphenol blue; 97.3% w/w buffer; 2.4% w/w nonreactive ingredients.
Blood: This test is based on the peroxidase-like activity of hemoglobin, which catalyzes the
reaction of diisopropylbenzene dihydroperoxide and 3,3,5,5-tetramethylbenzidine.
Ingredients: 6.8% w/w diisopropylbenzene dihydroperoxide; 4.0% w/w 3,3,5,5-tetramethylbenzidine; 48.0% w/w buffer; 41.2% w/w nonreactive ingredients.
Leucocytes: Granulocytic leucocytes contain esterases that catalyze the hydrolysis of the
derivatized pyrrole amino acid ester to liberate 3-hydroxy-5-phenyl pyrrole. This pyrrole
then reacts with a diazonium salt. Ingredients: 0.4% w/w derivatized pyrrole amino acid
ester; 0.2% w/w diazonium salt; 40.9% w/w buffer; 58.5% w/w nonreactive ingredients.
Nitrite: At the acid pH of the test pad, nitrite in the urine reacts with -arsanilic acid to
form a diazonium compound. This diazonium compound in turn couples with 1,2,3,4tetrahydrobenzo(h)quinolin-3-ol. Ingredients: 1.4% w/w -arsanilic acid; 1.3% w/w 1,2,3,4tetrahydrobenzo(h)quinolin-3-ol; 10.8% w/w buffer; 86.5% w/w nonreactive ingredients.
Glucose: This test is based on a double sequential enzyme reaction. Glucose oxidase catalyzes the formation of gluconic acid and hydrogen peroxide from the oxidation of glucose.
Peroxidase then catalyzes the reaction of hydrogen peroxide with a potassium iodide chromogen to oxidize the chromogen. Ingredients: 2.2% w/w glucose oxidase (microbial, 1.3
IU); 1.0% w/w peroxidase (horseradish, 3300 IU); 8.1% w/w potassium iodide; 69.8% w/w
buffer; 18.9% w/w nonreactive ingredients.
Ketone: This test is based on the development of colours when acetoacetic acid reacts with
nitroprusside. Ingredients: 7.1% w/w sodium nitroprusside; 92.9% w/w buffer.
pH: This test is based on a double indicator principle that gives a broad range of colours covering the entire urinary pH range. Ingredients: 0.2% w/w methyl red; 2.8% w/w bromthymol blue; 97.0% w/w nonreactive ingredients.
Specific Gravity: This test is based on the apparent pKa change of certain pretreated polyelectrolytes in relation to ionic concentration. Ingredients: 2.8% w/w bromthymol blue;
68.8% w/w poly (methyl vinyl ether/maleic anhydride); 28.4% w/w sodium hydroxide.
Bilirubin: This test is based on the coupling of bilirubin with diazotized dichloroaniline in
a strongly acid medium. Ingredients: 0.4% w/w 2,4-dichloroaniline diazonium salt; 37.3%
w/w buffer; 62.3% w/w nonreactive ingredients.
Urobilinogen: This test is based on the Ehrlich reaction in which -diethylaminobenzaldehyde in conjunction with a colour enhancer reacts with urobilinogen in a
strongly acid medium. Ingredients: 0.2% w/w -diethylaminobenzaldehyde; 99.8% w/w nonreactive ingredients.
US PATENT NUMBERS: Refer to the carton of the product you are using for the US
patent numbers.
TRADEMARKS: MULTISTIX , CLINITEK , and CHEK-STIX are trademarks of
Siemens Healthcare Diagnostics.
PRODUCT NOS.: 2289, 2300, 2304, 2308, 2740, 2741, 2743, 2810, 2815, 2820, 2857, 2877.
For more information, contact your Siemens representative or Customer Service.
Siemens Healthcare Diagnostics Inc.
Sir William Siemens Square
Frimley, Camberley
Surrey, GU16 8QD UK
Direct Telephone: +44 (0) 845 600 1955
Direct Fax: +44 (0) 1276 696 680
Bandelettes ractives
Siemens Healthcare Diagnostics
pour analyse urinaire
RSUM ET EXPLICATIONS : Les bandelettes Siemens Healthcare Diagnostics pour analyse urinaire sont composes de zones ractives permettant de rechercher dans lurine les protines, le
sang, les leucocytes, les nitrites, le glucose, les corps ctoniques (acide actylactique), le pH, la
densit urinaire (SG), la bilirubine et lurobilinogne. Le nom des paramtres recherchs pour
chaque type de tests est inscrit sur ltiquette du flacon ou sur lemballage. Les bandelettes
) uniquement. Lire attensadressent aux professionnels pour un usage diagnostic in vitro (
tivement la notice demploi avant toute utilisation du produit (
).
Les bandelettes ractives Siemens sont prtes lemploi. La lecture peut se faire visuellement ou laide dun appareil de la gamme des analyseurs CLINITEK et du logiciel adapt. Pour
de plus amples informations, contacter le Responsable du produit.
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LECTURE SUR APPAREIL : Suivre scrupuleusement les instructions figurant dans le manuel
dutilisation de lappareil.
CONTROLE QUALITE : Analyser des chantillons ngatifs et positifs connus ou la solution de
contrle la premire ouverture du flacon. Leau NE doit PAS tre utilise comme tmoin ngatif.
Chaque laboratoire doit tablir ses propres objectifs en matire de standards de performance
adapts. Les bandelettes de contrle ngatif et positif CHEK-STIX fournissent une base idale
pour un programme de contrle qualit.
CONSERVATION ET PRECAUTION DEMPLOI : Conserver des tempratures comprises entre 15
et 30 C (
). Ne pas utiliser les bandelettes aprs leur date limite dutilisation ( ). Conserver
le flacon labri de la lumire et ne pas retirer le dessicant du flacon. LA PROTECTION CONTRE
LHUMIDITE AMBIANTE, LA LUMIERE ET LA CHALEUR EST ESSENTIELLE AFIN DEVITER DAFFECTER LES PLAGES REACTIVES. Ne pas sortir de bandelette du flacon sans utilisation immdiate. Le flacon doit tre soigneusement referm entre chaque analyse. Ne pas toucher les zones
ractives de la bandelette. Toute zone, avant raction, qui parat plus claire ou plus fonce que le
bloc tmoin correspondant, doit tre considre comme dtriore. Si les rsultats sont aberrants, vrifier la date limite dutilisation et contrler que les bandelettes ragissent normalement
avec des tmoins positifs et ngatifs connus.
LIMITES DUTILISATION : Comme pour tout examen de laboratoire, un diagnostic prcis ne
peut tre dfini ou une dcision thrapeutique prise sur la base dun seul rsultat ou aprs
utilisation dune seule mthode. Les substances qui provoquent lapparition dune couleur de
lurine anormale peuvent avoir une incidence sur la lisibilit des zones ractives. Ces substances
incluent des niveaux visibles de sang ou de bilirubine et des mdicaments contenant des colorants, de la nitrofurantone ou de la riboflavine. Les niveaux dacide
ascorbique gnralement trouvs dans lurine nexercent aucune influence dans le cadre de lutilisation de ces tests.
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(strip result of 0.3 g/L or 30 mg/dL). Clinical judgement is needed to evaluate the significance of Trace results. The protein test is less sensitive to mucoproteins and globulins,
which are generally detected at levels of 0.6 g/L (60 mg/dL) or higher; a negative result
does not rule out the presence of these other proteins.
BLOOD: Normally, no haemoglobin is detectable in urine (< 100 g/L or 0.010 mg/dL;
3 RBC/L). The significance of the Trace reaction may vary among patients, and clinical
judgment is required for assessment in an individual case. Blood is often, but not always,
found in the urine of menstruating females. The test is equally sensitive to myoglobin as
to haemoglobin. A haemoglobin concentration of 150620 g/L (0.0150.062 mg/dL) is
approximately equivalent to 520 intact red blood cells per microliter. Captopril and other
compounds that contain sulfhydryl groups may reduce the sensitivity. Certain oxidizing
contaminants, such as hypochlorite, may produce false positive results. Microbial peroxidase associated with urinary tract infection may cause a false positive reaction.
LEUCOCYTES: Normal urine specimens generally yield negative results. A strip result of
Small or greater is a useful indicator of infection. Trace results may be of questionable clinical significance; however, Trace results observed repeatedly may be clinically significant.
Elevated glucose concentrations ( 160 mmol/L or 3 g/dL) may cause decreased test results.
The presence of cephalexin, cephalothin, or high concentrations of oxalic acid may also
cause decreased test results. Tetracycline may cause decreased reactivity, and high levels of
the drug may cause a false negative reaction. Positive results may occasionally be due to
contamination of the specimen by vaginal discharge.
NITRITE: Normally, no nitrite is detectable in urine. This test depends upon the conversion
of nitrate (derived from the diet) to nitrite by the action of Gram negative bacteria in the
urine. Many enteric gram-negative organisms give positive results when their number is
greater than 105/mL (16.2 mol/L or 0.075 mg/dL nitrite ion or greater). The test is specific for nitrite and will not react with any other substance normally excreted in urine. Pink
spots or pink edges should not be interpreted as a positive result. A negative result does
not rule out significant bacteriuria. False negative results may occur with shortened bladder incubation of the urine (< 4 hours), absence of dietary nitrate, or the presence of
nonreductive pathological microbes.
GLUCOSE: Small amounts of glucose (< 1.67 mmol/L or 30 mg/dL) are normally excreted
by the kidney. These amounts are usually below the sensitivity level of this test but on occasion may produce a result between Negative and 5.5 mmol/L (100 mg/dL) that is interpreted as a positive result. The test is specific for glucose; no substance excreted in urine
other than glucose is known to give a positive result. High ketone levels (4 mmol/L or 40
mg/dL) may cause false negatives for specimens containing small amounts of glucose (47
mmol/L or 75125 mg/dL).
KETONE: Normally, no ketone is detectable in urine. The test reacts with acetoacetic acid
in urine. It does not react with acetone or -hydroxybutyric acid. False Trace results may
occur with highly pigmented urine specimens or those containing large amounts of levodopa metabolites. Compounds that contain sulfhydryl groups, such as mesna (2-mercaptoethane sulfonic acid) and captopril, may cause false positive results or an atypical
colour reaction.
pH: The normal pH of urine can range from 4.6 to 8.0. The pH test area measures pH values from 58.5 visually and 59 instrumentally, generally to within one unit of the expected result. Bacterial growth by certain organisms in a specimen may cause a marked alkaline shift (pH > 8.0), usually because of urea conversion to ammonia.
SPECIFIC GRAVITY: The normal SG of urine ranges from 1.001 to 1.035. If the SG of a
random urine specimen is 1.023, the concentrating ability of the kidneys can be considered normal. This test permits determination of urine specific gravity between 1.000
and 1.030. In general, it correlates within 0.005 with values obtained with the refractive
index method. For increased accuracy, 0.005 may be added to visual readings from urines
with pH 6.5. Strips read instrumentally are automatically adjusted for pH by the instrument. The Siemens SG test is not affected by the presence of radiopaque dyes as are the
refractive index, urinometer, and osmolality methods. Highly buffered alkaline urines may
cause low readings, while the presence of moderate quantities of protein (17.5 g/L or
100750 mg/dL) may cause elevated readings.
BILIRUBIN: Normally, no bilirubin is detectable by even the most sensitive methods. Even
trace amounts of bilirubin are sufficiently abnormal to require further investigation.
Indican (indoxyl sulfate) can produce a yellow-orange to red colour response that may
interfere with the interpretation of a negative or positive reading. Metabolites of etodolac
may cause false positive or atypical results. Atypical colours may indicate bile pigment
abnormalities and the urine specimen should be tested further.
UROBILINOGEN: Urobilinogen is normally present in urine at concentrations up to 16
mol/L (1.0 mg/dL). A result of 33 mol/L (2.0 mg/dL) represents the transition from normal to abnormal, and the patient and/or urine specimen should be evaluated further. This
test area will detect urobilinogen in concentrations as low as 3.2 mol/L (0.2 mg/dL or 0.2
EU/dL) in urine. The absence of urobilinogen in the specimen cannot be determined. The
test pad may react with interfering substances known to react with Ehrlichs reagent, such
as -aminosalicylic acid and sulfonamides. Atypical colour reactions may be obtained in
the presence of high concentrations of -aminobenzoic acid. False negative results may
be obtained if formalin is present. Strip reactivity increases with temperature; the optimum
temperature is 2226C. The test is not a reliable method for the detection of porphobilinogen.
SPECIFIC PERFORMANCE CHARACTERISTICS: Performance characteristics are based
on clinical and analytical studies and depend upon several factors: the variability of
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des substances interfrentes connues pour leur raction avec le ractif de Ehrlich, telles que
lacide para-aminosalicylique et les sulfonamides. Des couleurs atypiques peuvent apparatre en
prsence de fortes concentrations dacide para-amino-benzoque. Des rsultats faussement
ngatifs peuvent tre provoqus par la prsence de formol. La temprature augmente la ractivit du test (la temprature optimale est comprise entre 22 et 26 C). Ce test ne constitue pas une
mthode fiable pour la dtection de porphobilinognes.
NOTES : Les caractristiques et performances des tests sont fondes sur des donnes cliniques
et analytiques et dpendent de plusieurs facteurs : les variations dues la perception des
couleurs, la prsence ventuelle de substances interfrentes et matricielles habituellement
prsentes dans lurine et les conditions de laboratoire dans lesquelles le produit est utilis (par
exemple, lclairage, la temprature et lhumidit). Chaque bloc de couleurs ou chaque rsultat
sur appareil correspond une fourchette de valeurs. Compte tenu des variations dues lchantillon ou la lecture, un rsultat se situant entre deux valeurs nominales peut se lire lune ou
lautre de ces valeurs. Les rsultats se situeront gnralement un bloc prs de la vritable concentration. Les rsultats trouvs la lecture visuelle et ceux obtenus par lecture automatise peuvent ne pas correspondre exactement. Ceci est d la diffrence de perception entre lil et le
systme optique de lappareil. La liste qui suit reprend les diffrents seuils de dtection tablis.
Sous certaines conditions, ces seuils peuvent te abaisss.
Zones ractives et seuil de dtection :
Protines : 0,15 0,3 g/L (15 30 mg/dL) albumine
Sang : 150 620 g/L (0,015 0,062 mg/dL) hmoglobine
Leucocytes : 5 15 cellules/hpf dans lurine clinique
Nitrites : 13 22 mol/L (0,06 0,1 mg/dL) ion nitrite
Glucose : 4 7 mmol/L (75 125 mg/dL) glucose
Corps ctoniques : 0,5 1,0 mmol/L (5,0 10 mg/dL) acide actylactique
Bilirubine : 7 14 mol/L (0,4 0,8 mg/dL) bilirubine
PRINCIPES CHIMIQUES DES PROCEDURES ET INGREDIENTS : (bass sur le poids sec au
moment de limprgnation)
Protines : Ce test repose sur le principe de lerreur protique des indicateurs. Ingrdients : 0,3 %
p/p bleu de ttrabromophnol ; 97,3 % p/p tampon ; 2,4 % p/p excipients.
Sang : Ce test repose sur lactivit peroxydase de lhmoglobine qui catalyse la raction du dihydroperoxyde de diisopropylbenzne et du ttramthyl-3,3,5,5-benzidine. Ingrdients : 6,8 % p/p
dihydroperoxyde de diisopropylbenzne ; 4,0 % p/p ttramthyl-3,3,5,5-benzidine ; 48,0 % p/p
tampon ; 41,2 % p/p excipients.
Leucocytes : Les leucocytes granulocytaires contiennent des estrases qui catalysent lhydrolyse
du driv ester amino pyrrolique pour librer du pyrrole 3-hydroxy-5-phnyl. Cette pyrrole ragit
ensuite avec un sel de diazonium. Ingrdients : 0,4 % p/p driv ester amino pyrrolique ; 0,2 %
p/p sel de diazonium ; 40,9 % p/p tampon ; 58,5 % p/p excipients.
Nitrites : Au contact du pH acide de la zone ractive, les nitrites urinaires ragissent avec lacide
para-arsanilique pour former un compos diazonium. Ce compos diazonium se mlange son
tour au ttrahydro-1,2,3,4 benzo (h) quinolinol-3. Ingrdients : 1,4 % p/p acide para-arsanilique ;
1,3 % p/p ttrahydro-1,2,3,4 benzo (h) quinolinol-3 ; 10,8 % p/p tampon ; 86,5 % p/p excipients.
Glucose : Ce test repose sur une double raction enzymatique squentielle. Le glucose-oxydase
catalyse la formation dacide gluconique et de peroxyde dhydrogne partir de loxydation du
glucose. La peroxydase catalyse ensuite la raction du peroxyde dhydrogne avec un chromogne diodure de potassium pour oxyder le chromogne. Ingrdients : 2,2 % p/p glucose-oxydase (1,3 UI) ; 1,0 % p/p peroxydase (3300 UI) ; 8,1 % p/p iodure de potassium ; 69,8 % p/p
tampon ; 18,9 % p/p excipients.
Corps ctoniques : Ce test repose sur le dveloppement de couleurs lors de la raction de lacide
actylactique avec le nitroprussiate de sodium. Ingrdients : 7,1 % p/p nitroprussiate de sodium ; 92,9 % p/p tampon.
pH : Ce test repose sur le principe de double indicateur qui fournit une gamme tendue de
couleurs couvrant lintgralit de la gamme de pH urinaire. Ingrdients : 0,2 % p/p rouge de
mthyle ; 2,8 % p/p bleu de bromothymol ; 97,0 % p/p excipients.
SG : Ce test repose sur le changement du pKa apparent de certains polylectrolytes prtraits en
fonction de la concentration ionique. Ingrdients : 2,8 % p/p bleu de bromothymol ; 68,8 % p/p
polymres (danhydride methyl vinyl ether maleique) ; 28,4 % p/p hydroxyde de sodium.
Bilirubine : Ce test repose sur la combinaison de la bilirubine avec la dichloro-aniline diazote
dans un milieu fortement acide. Ingrdients : 0,4 % p/p dichloro-2,4 aniline diazote ; 37,3 % p/p
tampon ; 62,3 % p/p excipients.
Urobilinogne : Ce test repose sur la raction de Ehrlich dans laquelle le -dithylaminobenzaldhyde et un activateur de couleur ragissent avec lurobilinogne dans un milieu fortement
acide. Ingrdients : 0,2 % p/p -dithylaminobenzaldhyde ; 99,8 % p/p excipients.
NUMEROS DE BREVETS AMERICAINS : Pour connatre les numros de brevets amricains, se
reporter lemballage du produit utilis.
MARQUES DEPOSEES : MULTISTIX, CLINITEK et CHEK-STIX sont des marques dposes de
Siemens Healthcare Diagnostics.
RF. PRODUIT : 09159477 (2289), 03536597 (2300), 04200746 (2304), 00211670 (2308),
07900226 (2740), 08935414 (2741), 08259974 (2810), 01728693 (2815), 01248993 (2820),
05205326 (2857), 06562467 (2877).
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INSERT
06512622 REV B
530
200MM
JOB NO:
515228
C O N TA C T O R I G I N AT O R S
PANTONE REFERENCES:
BLACK
1ST PROOF:
1ST REVISE:
2ND REVISE:
3RD REVISE:
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3 SEPT 98
22 SEPT 98
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(500 mg) Eiwei pro Tag liegen (Streifenergebnis 0,3 g/l bzw. 30 mg/dl). Die Einschtzung von
Spuren-Ergebnissen erfordert klinisches Urteilsvermgen. Der Eiweitest ist gegenber
Mucoproteinen und Globulinen weniger empfindlich. Diese Eiweie werden im Allgemeinen erst ab
einer Konzentration von 0,6 g/l (60 mg/dl) oder hher erfasst; ein negatives Ergebnis schliet also
das Vorhandensein dieser Eiweie nicht aus.
BLUT: Normalerweise ist im Harn kein Hmoglobin nachweisbar (< 100 g/l oder 0,010 mg/dl; 3
RBC/l). Die Bedeutung von Spuren von Blut im Harn kann je nach Patient verschieden sein, und
die Bewertung der einzelnen Flle erfordert klinisches Urteilsvermgen. Oft, jedoch nicht immer, ist
Blut im Harn von menstruierenden Frauen anzutreffen. Der Test ist gleichermaen empfindlich fr
Myoglobin und Hmoglobin. Eine Hmoglobinkonzentration von 150620 g/l (0.0150.062
mg/dl) entspricht ungefhr 520 intakten roten Blutkrperchen pro Mikroliter. Captopril und
andere Verbindungen, die Sulfhydrylgruppen enthalten, knnen die Empfindlichkeit herabsetzen.
Bestimmte oxidierende Kontaminationsstoffe wie Hypochlorit knnen zu falsch positiven
Ergebnissen fhren. Mit Harnwegsinfektionen einhergehende bakterielle Peroxidase kann eine
falsch positive Reaktion verursachen.
LEUKOZYTEN: In normalen Harnproben werden im Allgemeinen negative Ergebnisse gemessen.
Ein Ergebnis von + oder grer ist ein Anzeichen fr Infektion. Geringe Mengen an Leukozyten
(Spur) sind von fraglicher klinischer Relevanz, knnen jedoch relevant sein, wenn sie wiederholt
auftreten. Erhhte Glucosekonzentrationen ( 160 mmol/l oder 3 g/dl) knnen zu niedrigeren
Testergebnissen fhren. Dies gilt auch fr das Vorhandensein von Cephalexin, Cephalothin oder
hohen Konzentrationen von Oxalsure. Tetracyclin kann eine verminderte Reaktivitt verursachen,
und hohe Konzentrationen dieses Wirkstoffs knnen eine falsch negative Reaktion bewirken.
Positive Ergebnisse knnen gelegentlich auf die Kontamination der Probe durch vaginale
Absonderungen zurckgefhrt werden.
NITRIT: Normalerweise ist im Harn kein Nitrit nachweisbar. Das Prinzip dieses Tests beruht auf der
Umwandlung von Nitrat (aus der Nahrung) in Nitrit durch gramnegative Bakterien im Harn. Viele
gramnegative Bakterien der Darmflora fhren zu positiven Ergebnissen, wenn ihre Anzahl ber
105/ml (16,2 mol/l oder 0,075 mg/dl Nitritionen oder darber) liegt. Der Test ist nitritspezifisch
und reagiert mit keiner anderen normalerweise im Harn ausgeschiedenen Substanz. Rosa Flecken
oder rosa Ecken sollten nicht als positives Ergebnis interpretiert werden. Ein negatives Ergebnis
schliet eine signifikante Bakteriurie nicht aus. Bei verkrzter Blaseninkubation des Harns (< 4
Stunden), Nitratmangel in der Nahrung oder Vorhandensein nicht-reduzierender pathologischer
Mikroorganismen knnen falsch negative Ergebnisse erzielt werden.
GLUCOSE: Die Nieren scheiden normalerweise kleinere Mengen an Glucose aus (< 1,67 mmol/l
oder 30 mg/dl). Diese Mengen liegen im Allgemeinen unter der Empfindlichkeitsgrenze dieses
Tests, knnen jedoch gelegentlich zu einem Ergebnis zwischen negativ und 5,5 mmol/l
(100 mg/dl) fhren, das als positiv interpretiert wird. Dieser Test ist glucosespezifisch; es ist keine
andere im Harn ausgeschiedene Substanz bekannt, die ein positives Ergebnis verursacht.
Durch hohe Konzentrationen von Keton (4 mmol/l oder 40 mg/dl) kann es bei Proben mit kleinen
Glucosekonzentrationen (47 mmol/l oder 75125 mg/dl) zu falsch negativen Ergebnissen
kommen.
KETON: Normalerweise ist im Harn kein Keton nachweisbar. Dieser Test reagiert mit
Acetessigsure im Harn. Er reagiert nicht mit Aceton oder -Hydroxybuttersure. Falsche Spurenergebnisse knnen bei hochpigmentierten Harnen oder bei Proben mit groen Konzentrationen von
Levodopa-Metaboliten auftreten. Verbindungen wie Mesna (2-Mercaptoethansulfonsure) und
Captopril, die Sulfhydrylgruppen enthalten, knnen falsch positive Ergebnisse oder eine atypische
Farbreaktion verursachen.
pH: Der normale pH-Wert von Harn kann zwischen 4,6 und 8,0 liegen. Die pH-Testzone misst pHWerte von 58,5 (bei visueller Auswertung) oder 59 (bei instrumenteller Auswertung), im
Allgemeinen bis auf eine Einheit genau am erwarteten Ergebnis. Das Wachstum bestimmter bakterieller Organismen in einer Probe kann eine deutliche alkalische Verschiebung (pH > 8,0) verursachen, gewhnlich aufgrund der Umwandlung von Harnstoff zu Ammoniak.
SPEZIFISCHES GEWICHT: Das spezifische Gewicht von Harn liegt normalerweise zwischen 1,001
und 1,035. Ist das SG einer beliebigen Harnprobe 1,023, kann von einer normalen Konzentrationsfhigkeit der Nieren ausgegangen werden. Dieser Test ermglicht die Bestimmung des spezifischen Harngewichts zwischen 1,000 und 1,030. Im Allgemeinen korreliert er bis auf 0,005 genau
mit den durch die Refraktometer-Methode gemessenen Werten. Bei einem pH-Wert
6,5 ist das visuell ermittelte Ergebnis um 0,005 zu erhhen. Bei instrumenteller Ablesung erfolgt
diese Anpassung automatisch. Der SG-Test von Siemens wird nicht, wie die Refraktometer-,
Urinometer- und Osmolalitt-Methoden, durch das Vorhandensein von rntgendichten Farbstoffen
beeinflusst. In hochgepufferten alkalischen Harnen kann es zu niedrigen Werten, bei
Vorhandensein moderater Proteinkonzentrationen (17,5 g/l oder 100750 mg/dl) dagegen zu
erhhten Werten kommen.
BILIRUBIN: Normalerweise ist im Harn selbst mit den empfindlichsten Methoden kein Bilirubin
nachweisbar. Selbst Spuren von Bilirubin sind daher ausreichend abnormal, um eine weitere
Untersuchung erforderlich zu machen. Indican (Indoxylsulfat) kann eine gelb-orange bis rote
Farbreaktion bewirken, die die Interpretation eines negativen oder positiven Ergebnisses beeintrchtigen kann. Metaboliten von Etodolac knnen falsch positive oder atypische Ergebnisse
bewirken. Atypische Farben knnen auf Gallenpigmentabnormalitten hinweisen; die Harnprobe
sollte daher weiter untersucht werden.
UROBILINOGEN: Urobilinogen ist normalerweise im Harn in Konzentrationen von bis zu 16 mol/l
(1,0 mg/dl) anzutreffen. Ab einem Ergebnis von 33 mol/l (2,0 mg/dl) beginnt der bergang zum
pathologischen Bereich, und der Patient und/oder die Harnprobe sollte weiter untersucht werden.
Diese Testzone weist Urobilinogen im Harn bereits in Konzentrationen ab 3,2 mol/l (0,2 mg/dl
oder 0,2 Ehrlich-Einheit/dl) nach. Ein Fehlen von Urobilinogen in der Harnprobe lsst sich nicht
nachweisen. Der Reagenzbereich kann mit Strsubstanzen reagieren, die bekanntermaen mit
Ehrlichs Reagenz reagieren, wie -Aminosalicylsure und Sulfonamiden. Atypische Farbreaktionen
knnen bei Anwesenheit hoher Konzentrationen von -Aminobenzoesure zustande kommen.
Falsch negative Ergebnisse sind bei Anwesenheit von Formalin mglich. Die Reaktivitt des
Teststreifens nimmt mit der Temperatur zu; die optimale Temperatur liegt bei 2226 C. Der Test
ist keine zuverlssige Methode zum Nachweis von Porphobilinogen.
SPEZIELLE LEISTUNGSMERKMALE: Die Leistungsmerkmale basieren auf klinischen und analytischen Studien und sind von verschiedenen Faktoren abhngig, wie beispielsweise Unterschieden
in der Farbwahrnehmung, Anwesenheit oder Abwesenheit von normalerweise im Harn anzutreffenden inhibitorischen Stoffen und Matrixfaktoren oder den im Labor herrschenden Anwendungsbedingungen wie Beleuchtung, Temperatur und Luftfeuchtigkeit. Jedes Farbfeld bzw. jeder vom
Gert angezeigte Wert entspricht einem Wertebereich. Aufgrund der Unterschiede zwischen Proben
und Interpretationen knnen Proben mit Konzentrationen, die zwischen zwei Wertebereichen
liegen, bei beiden Wertebereichen ein Ergebnis erbringen. Die Ergebnisse liegen im Allgemeinen
bis auf einen Bereich genau am tatschlichen Wert. Eine exakte bereinstimmung zwischen
visuellen und instrumentellen Ergebnissen ist mglicherweise aufgrund der Unterschiede zwischen
der Wahrnehmung durch das menschliche Auge und dem optischen System der Gerte nicht
gegeben. Die folgende Tabelle gibt die im Allgemeinen nachweisbaren Konzentrationen der
Analyten in knstlichen Harnen wieder. Aufgrund der natrlichen Unterschiede zwischen klinischen
Harnen knnen jedoch unter bestimmten Bedingungen auch geringere Konzentrationen
nachgewiesen werden.
Testzone und Empfindlichkeit:
Eiwei: 0,150,3 g/l (1530 mg/dl) Albumin
Blut: 150620 g/l (0,0150,062 mg/dl) Hmoglobin
Leukozyten: 515 Zellen/hpf im klinischen Harn
Nitrit: 1322 mol/l (0,060,1 mg/dl) Nitrition
Glukose: 47 mmol/l (75125 mg/dl) Glukose
Keton: 0,51,0 mmol/l (510 mg/dl) Acetessigsure
Bilirubin: 714 mol/l (0,40,8 mg/dl) Bilirubin
CHEMISCHE PRINZIPIEN DER VERFAHREN UND INHALTSSTOFFE: (Angaben in Trockengewicht
zum Zeitpunkt der Imprgnierung)
Eiwei: Dieser Test basiert auf dem Prinzip des Protein-Fehlers von pH-Indikatoren. Inhaltsstoffe:
0,3 Gew. % Tetrabromphenolblau; 97,3 Gew. % Puffer; 2,4 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
Blut: Dieser Test basiert auf der peroxidase-hnlichen Aktivitt von Hmoglobin, die die Reaktion
von Diisopropylbenzol Dihydroperoxid und 3,3,5,5-Tetramethylbenzidin katalysiert. Inhaltsstoffe:
6,8 Gew. % Diisopropylbenzol Dihydroperoxid; 4,0 Gew. % 3,3,5,5-Tetramethylbenzidin; 48,0
Gew. % Puffer; 41,2 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
Leukozyten: Granulozytische Leukozyten enthalten Esterasen, die die Hydrolyse des derivatisierten
Pyrrolaminosureesters unter Freisetzung von 3-Hydroxy-5-Phenylpyrrol katalysieren. Dieses
Pyrrol reagiert dann mit einem Diazoniumsalz. Inhaltsstoffe: 0,4 Gew. % derivatisierter
Pyrrolaminosureester; 0,2 Gew. % Diazoniumsalz; 40,9 Gew. % Puffer; 58,5 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
Nitrit: Im sauren Milieu der Testzone reagiert das Nitrit im Harn mit -Arsanilsure zu einer
Diazoniumverbindung. Diese Diazoniumverbindung wiederum verbindet sich mit 1,2,3,4-Tetrahydrobenzo(h)chinolin-3-ol. Inhaltsstoffe: 1,4 Gew. % -Arsanilsure; 1,3 Gew. % 1,2,3,4Tetrahydrobenzo(h)chinolin-3-ol; 10,8 Gew. % Puffer; 86,5 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
Glukose: Dieser Test basiert auf zwei aufeinanderfolgenden Enzymreaktionen. Das Enzym
Glucoseoxidase katalysiert die Bildung von Glukonsure und Wasserstoffperoxid durch die
Oxidation von Glucose. Dann katalyisert das Enzym Peroxidase die Reaktion von
Wasserstoffperoxid mit einem Kaliumiodid-Chromogen, wobei das letztere oxidiert wird.
Inhaltsstoffe: 2,2 Gew. % Glukoseoxidase (bakteriell, 1,3 IU); 1,0 Gew. % Peroxidase (Meerrettich,
3300 IU); 8,1 Gew. % Kaliumiodid; 69,8 Gew. % Puffer; 18,9 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
Keton: Dieser Test basiert auf der Farbentwicklung bei der Reaktion von Acetessigsure mit Nitroprussid-Natrium. Inhaltsstoffe: 7,1 Gew. % Nitroprussid-Natrium; 92,9 Gew. % Puffer.
pH: Dieser Test basiert auf einem doppelten Indikatorprinzip, dessen breite Farbpalette den
gesamten pH-Bereich von Harn abdeckt. Inhaltsstoffe: 0,2 Gew. % Methylrot; 2,8 Gew. % Bromthymolblau; 97,0 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
Spezifisches Gewicht: Dieser Test basiert auf einer pKs-nderung verschiedener vorbehandelter
Polyelektrolyte in Abhngigkeit von der Ionenkonzentration. Inhaltsstoffe: 2,8 Gew. % Bromthymolblau; 68,8 Gew. % Poly (Methylvinylether/Maleinsureanhydrid); 28,4 Gew. % Natriumhydroxid.
Bilirubin: Dieser Test basiert auf der Kopplung von Bilirubin mit diazotiertem Dichloranilin in stark
saurem Milieu. Inhaltsstoffe: 0,4 Gew. % 2,4-Dichloranilin Diazoniumsalz; 37,3 Gew. % Puffer;
62,3 Gew. % nicht reaktive Inhaltsstoffe.
Urobilinogen: Dieser Test basiert auf der Ehrlich-Reaktion, bei der -Diethylaminobenzaldehyd in
Verbindung mit einem Farbverstrker mit Urobilinogen in einem stark sauren Milieu reagiert.
Inhaltsstoffe: 0,2 Gew. % w/w -Diethylaminobenzaldehyd; 99,8 Gew. % nicht reaktive Bestandteile.
US-PATENTNUMMERN: Die entsprechenden Patennummern sind auf der Packung des verwendeten Produkts angegeben.
MARKEN: MULTISTIX , CLINITEK und CHEK-STIX sind eingetragene Marken der
Siemens Healthcare Diagnostics.
ARTIKELNUMMERN: 09159477 (2289), 03536597 (2300), 04200746 (2304), 00211670 (2308),
07900226 (2740), 08935414 (2741), 08259974 (2810), 01728693 (2815), 01248993 (2820),
05205326 (2857), 06562467 (2877).
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von Siemens.
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2008 Siemens Healthcare Diagnostics. Alle Rechte vorbehalten.
LET OP: Zorg ervoor dat werkoppervlakken en urinecontainers altijd vrij zijn
van reinigingsmiddelen en andere contaminerende stoffen. Sommige stoffen
kunnen leiden tot interferentie met de patintresultaten.
INZAMELING EN BEHANDELING URINEMONSTERS: Verzamel een vers urinemonster in een
schone en droge container. Meng het urinemonster voordat u de test uitvoert. Voer de test binnen twee uur na afname uit en nog sneller wanneer u op bilirubine of urobilinogeen test.
Contaminatie van het urinemonster met huidreinigingsmiddelen die chloorhexidine bevatten kunnen de testresultaten benvloeden van eiwit (en in mindere mate van het soortelijk gewicht en
bilirubine). De werkplek en de urinecontainers moeten altijd vrij zijn van detergentia en andere
contaminerende stoffen. Als de urine niet binnen de aanbevolen tijd kan worden getest, moet u
het urinemonster direct koelen en weer op kamertemperatuur laten komen voorafgaand aan het
testen.
VISUELE PROCEDURE:
1. Doop alle testzones van de strip in de urine en haal de strip er onmiddellijk weer uit.
2. Verwijder overtollige urine door de zijkant van de teststrip over de rand van de container te
strijken.
3. Vergelijk elke testzone met de kleurenblokjes op het etiket van de flacon. Lees elke zone af op
de afleestijd zoals vermeld op het etiket. Begin met de kortste tijd. Kleurveranderingen die na
meer dan 2 minuten optreden hebben geen diagnostische waarde. Gebruikte strips volgens de
standaard laboratorium procedure afvoeren.
1.
2.
3.
INSTRUMENTELE PROCEDURE: Volg zorgvuldig de aanwijzingen die gegeven worden in de handleiding van het gebruikte instrument.
KWALITEITSCONTROLE: Test altijd bekend negatieve en positieve urinemonsters of controles bij
in gebruik nemen van een nieuwe flacon. Gebruik GEEN water als negatieve controle. Elk laboratorium moet zijn eigen richtlijnen opstellen voor adequate uitvoering-en controle. CHEK-STIX
positieve en negatieve controlestrips bieden een goede basis voor een kwaliteitscontroleprogramma.
BEWAREN EN GEBRUIK VAN DE STRIPS: Bewaar de strips bij een temperatuur van 1530 C
(
). Gebruik geen strips waarvan de houdbaarheidsdatum verstreken is ( ). Bewaar de flacon niet in direct zonlicht en verwijder nooit het zakje met droogmiddel uit de flacon. BLOOTSTELLING AAN LICHT, WARMTE EN VOCHT KAN ONNAUWKEURIGE TESTRESULTATEN TOT
GEVOLG HEBBEN. Haal de teststrip direct voor gebruik uit de flacon en sluit de flacon onmiddellijk weer goed af. Raak de testzones van de strip niet aan. Te oude of verkeerd bewaarde strips
kunnen verkleuringen vertonen. Bij verkleurde strips of een ongewoon lage of hoge uitslag moet
de houdbaarheidsdatum gecontroleerd worden. Ook kan de bruikbaarheid van de strips worden
gecontroleerd met bekend negatieve en positieve controles.
BEPERKINGEN VAN DE PROCEDURE: Zoals bij alle laboratoriumonderzoeken, geldt ook hier,
dat er nooit een definitieve diagnose gesteld of therapeutische beslissing genomen kan worden op een enkel resultaat of een enkele methode. Stoffen die een abnormale urinekleur
veroorzaken kunnen het aflezen van de testzones op de teststrips benvloeden. Dit is o.a. het geval
bij zichtbare aanwezigheid van bloed of bilirubine en medicijnen die kleurstoffen, nitrofurantone
of riboflavine bevatten. Aanwezigheid van ascorbinezuur dat normaal in urine wordt aangetroffen
benvloedt deze tests niet.
INFORMATIE OVER DE TESTS:
EIWIT: Normaal gesproken wordt minder dan 0,15 g (150 mg) totaal eiwit per dag uitgescheiden
30
15
(24-uursperiode). Meer dan 0,5 g (500 mg) eiwit per dag (resultaat strip 0,3 g/L of 30 mg/dL)
wijst op klinische protenurie. Klinische beoordeling is nodig om de significantie van sporen eiwit
als testresultaat te evalueren. De eiwittest is minder gevoelig voor mucoprotenen en globulinen,
die in het algemeen worden aangetoond bij een concentratie van 0,6 g/L (60 mg/dL) of hoger; een
negatief resultaat sluit de aanwezigheid van deze andere eiwitten niet uit.
BLOED: Hemoglobine wordt normaal gesproken niet aangetoond in urine (< 100 g/L of 0,010
mg/dL; 3 RBC/L). De significantie van sporen hemoglobine kan van geval tot geval verschillen
en verdere klinische beoordeling is dan ook noodzakelijk. In de urine van menstruerende vrouwen
wordt regelmatig bloed aangetroffen. De test is even gevoelig voor myoglobine als voor hemoglobine. Een hemoglobineconcentratie van 150620 g/L (0,0150,062 mg/dL) is ongeveer gelijk
aan 520 intacte erytrocyten per microliter. Captopril en andere verbindingen die sulfhydrylgroepen bevatten kunnen de gevoeligheid reduceren. Bepaalde oxiderende contaminanten, zoals
hypochloriet, kunnen vals-positieve resultaten veroorzaken. Vals-positieve resultaten kunnen eveneens optreden als gevolg van een urineweginfectie met peroxidase-producerende micro-organismen.
LEUKOCYTEN: Normale urinemonsters geven in het algemeen een negatief testresultaat. Een
positief testresultaat (+ of hoger) kan op infectie wijzen. Bij een incidenteel resultaat van spoor
leukocyten is de klinische significantie twijfelachtig; een herhaald voorkomende uitslag van
spoor leukocyten kan echter klinisch significant zijn. Bij verhoogde glucoseconcentraties
( 160 mmol/L of 3 g/dL) kan de test minder gevoelig worden. Door aanwezigheid van cephalexine, cephalotine of hoge concentraties oxaalzuur kan de reactiviteit van de test eveneens afnemen.
Tetracycline kan verminderde reactiviteit veroorzaken en een hoge dosis van dit medicament kan
een vals-negatieve uitslag opleveren. Bij vrouwen kunnen incidenteel positieve resultaten voorkomen als gevolg van contaminatie van de urine met vaginale afscheiding.
NITRIET: Normaal gesproken wordt er geen nitriet aangetoond in urine. Deze test is gebaseerd op
de omzetting van nitraat (uit de voeding) in nitriet door in urine aanwezige gramnegatieve bacterin. Veel gramnegatieve darmorganismen geven positieve resultaten wanneer hun aantal groter is
dan 105/mL (16,2 mol/L of 0,075 mg/dL nitriet-ion of meer). De test is specifiek voor nitriet en
reageert niet met andere normaal in urine voorkomende stoffen. Roze vlekjes op de testzone of
een roze verkleuring aan de randen mogen niet als positief genterpreteerd worden. Een negatief
resultaat sluit een bacteriurie niet uit. Vals-negatieve resultaten kunnen optreden wanneer de urine
te kort in de blaas aanwezig is (< 4 uur), bij afwezigheid van nitraat in de voeding of bij aanwezigheid van niet-reductieve pathologische micro-organismen.
GLUCOSE: Het is normaal dat kleine hoeveelheden glucose (< 1,67 mmol/L of 30 mg/dL) worden
uitgescheiden door de nieren. Deze concentraties zijn te laag om een positief testresultaat te
geven, maar een enkele keer kan een resultaat optreden tussen de kleurblokjes negatief en 5,5
mmol/L (100 mg/dL), wat als een positief resultaat wordt genterpreteerd. De test is specifiek voor
glucose. Er zijn geen vals-positieve resultaten bekend als gevolg van andere in urine voorkomende
stoffen. Hoge ketonenconcentraties (4 mmol/L of 40 mg/dL) kunnen vals-negatieve resultaten
veroorzaken bij urinemonsters die kleine hoeveelheden glucose (47 mmol/L of 75125 mg/dL)
bevatten.
KETONEN: Normaal gesproken worden geen ketonen in urine aangetoond. Deze test reageert met
acetylazijnzuur in urine. Er vindt geen reactie plaats met aceton of -hydroxyboterzuur. Valspositieve resultaten tot het niveau van sporen kunnen optreden bij sterk gekleurde urinemonsters
of in urine die grote hoeveelheden afbraakproducten van levodopa bevat. Verbindingen die
sulfhydryl-groepen bevatten, zoals mesna (2-mercapto-ethaan-sulfonzuur) en captopril, kunnen
vals-positieve resultaten of een atypische kleurreactie veroorzaken.
pH: De normale pH van urine kan variren van 4,6 tot 8,0. Met de pH-testzone worden pH-waarden gemeten van 58,5 visueel en 59 instrumenteel. In het algemeen is de afwijking minder dan
n unit van het verwachte resultaat. Door bacterile groei, vanwege bepaalde organismen in een
monster, kan een monster aanzienlijk meer basisch worden (pH > 8,0). Dit vindt gewoonlijk plaats
vanwege omzetting van ureum in ammoniak.
SOORTELIJK GEWICHT: Normaal gesproken varieert het soortelijk gewicht van urine van 1,001
tot 1,035. Als het soortelijk gewicht van een willekeurig urinemonster 1,023 is, kan het concentreervermogen van de nieren als normaal worden beschouwd. Met deze test kan het soortelijk
gewicht van urine tussen 1,000 en 1,030 worden bepaald. In het algemeen is de afwijking van
deze test ten opzichte van een refractometer-methode minder dan 0,005. Als de pH 6,5 of hoger
is, moet om een nauwkeurig resultaat te krijgen 0,005 bij de uitslag worden opgeteld. Dit gebeurt
automatisch als gebruik wordt gemaakt van afleesapparatuur. Deze test wordt niet benvloed door
de aanwezigheid van contrastvloeistoffen voor rntgendiagnostiek, wat bij de brekingsindex, de
urinometer en de osmolaliteitsmethodes wel het geval is. Sterk gebufferde alkalische urinemonsters kunnen lage resultaten opleveren, terwijl eiwitconcentraties tussen 1 en 7,5 g/L (100750
mg/dL) verhoogde resultaten kunnen veroorzaken.
BILIRUBINE: Normaal gesproken kan zelfs met de meest gevoelige methodes geen bilirubine worden aangetoond. Zelfs sporen bilirubine zijn abnormaal en vereisen nader onderzoek. Indican
(indoxylsulfaat) kan een geel-oranje tot rode kleurreactie geven die het aflezen van de strip kan
bemoeilijken. Metabolieten van etodolac kunnen vals-positieve of atypische resultaten veroorzaken. Atypische kleuren kunnen wijzen op abnormale galpigmenten. Nader onderzoek is gewenst.
UROBILINOGEEN: Urobilinogeen is normaal aanwezig in urine in concentraties tot 16 mol/L (1,0
mg/dL). Een resultaat van 33 mol/L (2,0 mg/dL) is een grenswaarde en de patint en/of het
urinemonster dienen verder onderzocht te worden. Deze testzone toont urobilinogeen in urine al
aan in concentraties van 3,2 mol/L (0,2 mg/dL of 0,2 EU/dL). De afwezigheid van urobilinogeen
in het monster kan niet worden bepaald. De testzone kan reageren met stoffen waarvan bekend is
dat ze met Ehrlichs reagens reageren, zoals -aminosalicylzuur en sulfonamiden. Atypische
kleurreacties kunnen optreden bij aanwezigheid van hoge concentraties -aminobenzozuur. Valsnegatieve resultaten kunnen optreden bij aanwezigheid van formaline. De reactiviteit van de strip
neemt toe bij oplopende temperatuur; de optimale temperatuur is 2226 C. De test is geen
betrouwbare methode voor het aantonen van porfobilinogeen.
SPECIFIEKE EIGENSCHAPPEN: De beschreven eigenschappen zijn gebaseerd op klinische en
vergelijkende studies. De gevoeligheid van de testen is afhankelijk van verschillende factoren: het
verschil in kleurwaarnemingen, de aanwezigheid of afwezigheid van inhibitoire en matrixfactoren
in urine en de laboratoriumomstandigheden waaronder het product wordt gebruikt (bijv. belichting, temperatuur en vochtigheid). Elk kleurenblokje of elke waarde van de afleesapparatuur vertegenwoordigt een concentratiegebied. Als gevolg van variaties in de uitvoering en aflezing kan een
uitslag die tussen twee niveaus in ligt zowel naar de hoge als de lagere waarde genterpreteerd
worden. Resultaten zullen gewoonlijk minder dan n niveau van de werkelijke concentratie
afwijken. Er kunnen verschillen optreden tussen visuele en instrumentele waarnemingen. Dit is te
wijten aan het inherente verschil in waarnemen tussen optische apparatuur en het menselijk oog.
Onderstaande lijst geeft de gevoeligheid weer van de testen die over het algemeen in urine wordt
aangetoond. Door de variatie in urinemonsters kan er echter, onder bepaalde omstandigheden,
een lagere concentratie worden aangetoond.
Testzones en gevoeligheid:
Eiwit: 0,150,3 g/L (1530 mg/dL) eiwit albumine
Bloed: 150620 g/L (0,0150,062 mg/dL) hemoglobine
Leukocyten: 515 cellen/gezichtsveld (met een sterke vergroting) in klinische urine
Nitriet: 1322 mol/L (0,060,1 mg/dL) nitriet-ionen
Glucose: 47 mmol/L (75125 mg/dL) glucose
Ketonen: 0,51,0 mmol/L (510 mg/dL) acetylazijnzuur
Bilirubine: 714 mol/L (0,40,8 mg/dL) bilirubine
CHEMISCHE PRINCIPES VAN DE PROCEDURES EN BESTANDDELEN: (alle percentages zijn
gewichtspercentages)
Eiwit: Deze test is gebaseerd op het principe van de eiwitfout van indicatoren. Bestanddelen:
0,3 % tetrabroomphenolblauw; 97,3 % buffer; 2,4 % niet-reactieve bestanddelen.
Bloed: Deze test is gebaseerd op de peroxidaseachtige activiteit van hemoglobine, die functioneert als katalysator bij de reactie tussen di-isopropylbenzeen-dihydroperoxide en 3,3,5,5-tetramethylbenzidine. Bestanddelen: 6,8 % di-isopropylbenzeen-dihydroperoxide; 4,0 % 3,3,5,5tetramethylbenzidine; 48,0 % buffer; 41,2 % niet-reactieve bestanddelen.
Leukocyten: Granulocyten bevatten esterases die functioneren als katalysator bij de hydrolyse van
pyrrole-aminozuuresterderivaat tot vrij 3-hydroxy-5-fenylpyrrole. Dit pyrrole reageert vervolgens
met een diazoniumzout. Bestanddelen: 0,4 % pyrrole-aminozuuresterderivaat; 0,2 % diazoniumzout; 40,9 % buffer; 58,5 % niet-reactive bestanddelen.
Nitriet: Onder invloed van de zure pH van de testzone, reageert nitriet in de urine met -arsanylzuur om een diazoniumverbinding te vormen. Deze diazoniumverbinding reageert vervolgens met
1,2,3,4-tetrahydrobenzo(h)quinoline-3-ol. Bestanddelen: 1,4 % -arsanylzuur; 1,3 % 1,2,3,4tetrahydrobenzo(h)quinoline-3-ol; 10,8 % buffer; 86,5 % niet-reactieve bestanddelen.
Glucose: Deze test is gebaseerd op een dubbele, opeenvolgende enzymreactie. Glucose-oxidase
katalyseert de vorming van gluconzuur en waterstofperoxide door de oxidatie van glucose.
Vervolgens katalyseert peroxidase de reactie van waterstofperoxide met een kaliumjodidechromogeen om het chromogeen te oxideren. Bestanddelen: 2,2 % glucose-oxidase (microbieel, 1,3
IU); 1,0 % horseradish peroxidase (3300 IU); 8,1 % kaliumjodide; 69,8 % buffer; 18,9 % nietreactieve bestanddelen.
Ketonen: Deze test is gebaseerd op kleurontwikkeling bij de reactie van acetylazijnzuur met nitroprusside. Bestanddelen: 7,1 % natriumnitroprusside; 92,9 % buffer.
pH: Deze test is gebaseerd op een dubbele-indicatorprincipe dat een brede reeks van kleuren geeft
die de gehele pH-schaal in urine omvat. Bestanddelen: 0,2 % methylrood; 2,8 % broomthymolblauw; 97,0 % niet-reactieve bestanddelen.
Soortelijk gewicht: Deze test is gebaseerd op de duidelijke pKa-verandering van bepaalde voorbehandelde poly-elektrolyten in relatie tot de ionenconcentratie. Bestanddelen: 2,8 % broomthymolblauw; 68,8 % poly (methylvinylether/malenezuuranhydride); 28,4 % natriumhydroxide.
Bilirubine: Deze test is gebaseerd op het koppelen van bilirubine aan dichlooraniline-diazoniumzout in een sterk zuur medium. Bestanddelen: 0,4 % 2,4-dichlooraniline diazoniumzout; 37,3 %
buffer; 62,3 % niet-reactieve bestanddelen.
Urobilinogeen: Deze test is gebaseerd op de Ehrlich-reactie waarbij -dithylaminobenzaldehyde
verbonden met een kleurversterker reageert met urobilinogeen in een sterk zuur medium.
Bestanddelen: 0,2 % -dithylaminobenzaldehyde; 99,8 % niet-reactieve bestanddelen.
PATENTNUMMERS IN DE VS: raadpleeg de verpakking van dit product voor de patentnummers
in de VS.
HANDELSMERKEN: MULTISTIX, CLINITEK en CHEK-STIX zijn handelsmerken van
Siemens Healthcare Diagnostics.
PRODUCT NUMMER: 2289, 2300, 2304, 2308, 2740, 2741, 2810, 2815, 2820, 2857, 2877.
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530
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BLACK
1ST PROOF:
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3RD REVISE:
4TH REVISE:
3 SEPT 98
22 SEPT 98
17 NOV 98
15 DEC 98
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