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TWI625335B - 純化抗體的方法 - Google Patents

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TWI625335B
TWI625335B TW103108898A TW103108898A TWI625335B TW I625335 B TWI625335 B TW I625335B TW 103108898 A TW103108898 A TW 103108898A TW 103108898 A TW103108898 A TW 103108898A TW I625335 B TWI625335 B TW I625335B
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肯特 蓋肯
Eric J. Suda
艾瑞克 蘇德
Antonio Raul Ubiera
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Abstract

一種純化蛋白質的方法，其透過超級抗原層析術由含有至少一種汙染物的溶液中純化出一種包含抗體、抗體片段或免疫球蛋白單一變異域之蛋白質，該方法包括：a)使該蛋白質吸附到固化於固體撐體的超級抗原上；b)以含有一種脂族羧酸鹽的第一次洗滌緩衝液接觸含該吸附蛋白質的固化超級抗原，而移除該至少一種污染物；及c)由固化於該固體撐體上的超級抗原洗析出該蛋白質。

Description

純化抗體的方法
本發明涉及蛋白質純化的領域，使用一種超級抗原，諸如：蛋白質A、蛋白質G或蛋白質L固化至一固體撐體上。特別是本發明涉及洗滌緩衝液成分，及使用該洗滌緩衝液於洗滌過程中移除宿主細胞污染物，減少所欲蛋白質產物之損耗的方法。
在過去十年內，蛋白質A親和力層析術已研發完善，而成為自哺乳動物細胞培養液流中獲取單株抗體(mAbs)的首選方法，由於蛋白質A配體與抗體可結晶區段之間的專一性結合，此高度專一性親和力可在單一步驟中去除98%的雜質。於蛋白質A層析法的典型操作狀況下，澄清的細胞培養進料流通過管柱直至達到抗體某一負載量，一般之後以一種高離子性緩衝液清洗該管柱，以移除經由非專一性交互作用結合到樹脂的宿主細胞污染物，之後通常轉換酸鹼值由管柱洗析出該抗體，並收集以作進一步處理。因此本文的主要目的為研究使用洗滌劑結合鹽類，以破壞離子性及疏水性兩種交互作用，而加強去除宿主細胞污染物，從而降低下游操作步驟的純化作業負擔。
為了大規模的純化，致力於盡可能完善洗滌及洗析緩衝液 之成分，以獲得最大量的產物，然而，在製程中有許多不同的蛋白質產物同時被純化，研發針對個別單一蛋白質產物的一種獨特洗滌緩衝液需要大量時間及資源，以篩選各種緩衝液成分而決定一種針對個別特定蛋白質產物的適宜洗滌緩衝液，一種有效“通用”於不同類型蛋白質的居間洗滌緩衝液是有用且合乎需求的，本發明提供一種使用此洗滌緩衝液分的蛋白質純化方法。
在一方面，本發明涉及一種純化蛋白質的方法，其透過超級抗原層析術由含有至少一種汙染物的溶液中純化出一種包含抗體、抗體片段或免疫球蛋白單一變異域之蛋白質，該方法包括：a)使該蛋白質吸附到固化於固體撐體的超級抗原上；b)以含有一種脂族羧酸鹽的第一次洗滌緩衝液接觸含該吸附蛋白質的固化超級抗原，而移除該至少一種污染物；及c)由固化於該固體撐體上的超級抗原洗析出該蛋白質。
在一方面，本發明涉及一種經由蛋白質A層析法自被污染的溶液中純化一種蛋白質的方法，其包含：(a)將固化於固相上的蛋白質A與蛋白質A平衡緩衝液平衡；(b)使該蛋白質從污染溶液吸附到固化於固相上的蛋白質A；(c)以第一次蛋白質A洗滌緩衝液清洗固相，移除至少一種污染物，該緩衝液含有約50mM至約55mM tris base、約45mM至約50mM醋酸，至少一種脂族羧酸鹽，酸鹼值約7.5，其中該脂族羧酸鹽選自由約100mM辛酸鈉、約20mM癸酸鈉及約20mM月桂酸鈉所組成之群組；及(d)以一種蛋白質A洗析緩衝液由固相回收該蛋白質。於本發明的一方面，所有該緩衝液皆不添加NaCl。
於一具體實例中，該蛋白質A洗滌緩衝液更含有約1mM至約500mM醋酸鈉；於一具體實例中，該蛋白質A洗滌緩衝液含有約300mM醋酸鈉。
在一方面，本發明涉及一種經由蛋白質L層析法自被污染的溶液中純化蛋白質的方法，其包含：(a)將固化於固相上的蛋白質L與蛋白質L平衡緩衝液平衡；(b)使該蛋白質從污染溶液吸附到固化於固相上的蛋白質L；(c)以第一次蛋白質L洗滌緩衝液清洗固相，移除至少一種污染物，該緩衝液含有約50mM至約55mM tris base、約45mM至約50mM醋酸、至少一種脂族羧酸鹽，酸鹼值約7.5，其中該脂族羧酸鹽選自由約100mM辛酸鈉、約20mM癸酸鈉及約20mM月桂酸鈉所組成之群組；及(d)以一種蛋白質L洗析緩衝液由固相回收該蛋白質。於本發明的一方面，所有該緩衝液皆不添加NaCl。
於一具體實例中，該蛋白質L洗滌緩衝液更含有約1mM至約500mM醋酸鈉；於一具體實例中，該蛋白質L洗滌緩衝液含有約300mM醋酸鈉。
圖1：辛酸鹽濃度研究結果-抑瘤素M抗體(anti-OSM(oncostatin M))。
圖2：辛酸鹽濃度研究結果-介白素13抗體(anti-IL13)。
圖3：羧酸比較研究結果。
應當理解本發明不限於特定之方法、試劑、化合物、組成 或生物系統，其當然可作變化，應當亦可理解本文所使用之專有名詞只為說明特定具體實例，並非為了進行限制。除非內文另有明確規定，當用於本專利說明書及所附申請專利範圍時，單數形式的“一”、“一種”及“該”包括複數物件，例如：提到“一種多肽”則包括兩個或兩個以上多肽等的組合。
當“約”用於本文提及可測量的量時，諸如：數量、持續時間...等，意指囊括指定值±20%或±10%，包括±5%、±1%及±0.1%的偏差，如此的偏差可適宜進行本文公開之方法。
除非另有定義，本文使用的所有技術及科學專有名詞與本發明領域相關技術人員理解之術語詞義相同。儘管任何方法及材料與本文所述之方法材料相似或相當，可用於實行檢測本發明，但本文所述為較佳之材料及方法。於說明和申請本發明時，將使用以下專有名詞。
本文交替使用的“多肽”、“胜肽”及“蛋白質”意指一種胺基酸殘基之聚合物，多肽可源於天然(組織衍生)、來自原核或真核細胞的重組或自然表現，或經由化學合成方法製造，該名詞應用於胺基酸聚合物，其中一或多種胺基酸殘基是一種對應天然胺基酸的人造化學擬似物，如同天然存在胺基酸聚合物與非天然存在胺基酸聚合物，胺基酸擬似物意指化學化合物，其具有異於一般胺基酸的化學結構，但其功能類似天然存在胺基酸，非天然殘基已充分說明於科學及專利文獻中；一些作為天然胺基酸殘基擬似物的示例性非天然組成物及其說明如下：芳香族胺基酸的擬似物可經由置換例如：D-或L-萘丙胺酸；D-或L-苯甘胺酸；D-或L-2噻吩丙胺酸；D-或L-1,-2,3-，或4-芘丙胺酸；D-或L-3噻吩丙胺酸；D-或L-(2-吡啶基)-丙胺酸；D-或L-(3-吡啶基)-丙胺酸；D-或L-(2-吡基)-丙胺酸；D-或L-(4-異丙基)-苯甘胺酸；D-(三氟甲基)-苯甘胺酸；D-(三氟甲基)-苯丙胺酸；D-p-氟-苯丙胺酸；D-或L-p-聯苯苯丙胺酸；K-或L-p-甲氧基-聯苯苯丙胺酸；D-或 L-2-吲哚(烷基)丙胺酸及D-或L-烷基叔胺而產生，其中烷基可為被取代或未取代的甲基、乙基、丙基、己基、丁基、戊基、異丙基、異丁基、仲異基、異戊基，或一種非酸性胺基酸。非天然胺基酸的芳香環包括例如：噻唑基、苯硫基、吡唑基、苯并咪唑基、萘基、呋喃基、吡咯基及吡啶基芳香環。
本文所用“胜肽”包括那些本文特別例舉的肽類保守變異體；本文所用“保守性變異”概指以另一種生物性類似的殘基置換一種胺基酸殘基，保守性變異的例子包括但不限於以一種疏水性殘基諸如：異白胺酸、纈胺酸、白胺酸、丙胺酸、半胱胺酸、甘胺酸、苯丙胺酸、脯胺酸、色胺酸、酪胺酸、正白胺酸或甲硫胺酸取代另一種殘基，或以一種極性的殘基取代另一種殘基，例如：精胺酸取代離胺酸，麩胺酸取代天門冬胺酸，或麩醯胺酸取代天門冬醯胺...等；中性親水性胺基酸可被取代為另一種，包括：天門冬醯胺、麩醯胺酸、絲胺酸及蘇胺酸。假使被取代之多肽引發的抗體亦與未取代之多肽發生免疫作用，則“保守性變異”亦包括使用該被取代的胺基酸替換該未取代的親本胺基酸，此類保守性取代涵蓋於本發明的肽類定義中。本文所用“陽離子”意指在酸鹼值7.4時具有淨正電荷的任何胜肽，可經由該領域技術人員已知或本文所述之標準方法測定該肽類的生物活性。
依據一種蛋白質進行“重組”，表示經由引入一種異源核酸或蛋白質，或一種核酸或蛋白質本身的變更而改變該蛋白質。
本文所用“治療性蛋白質”意指研究人員或醫師正在尋求的任何蛋白質及/或多肽，其可被施用於哺乳動物，以引發組織、系統、動物或人類的一種生物性或醫藥反應，一種治療性蛋白質可能引發一種以上的生物性或醫藥反應；此外，專有名詞“治療有效量”意指與未接受該量的對應受試者相較，導致但不限於痊癒、預防或改善一種疾病、失調或副作用， 或減緩一種疾病或失調惡化速度的任何量，該名詞亦包括其範圍內有效提升正常生理功能的量，以及增強或幫助第二藥劑的治療效果而有效引發患者生理功能的量。
所有本文鑑定的“胺基酸”殘基為天然L-構型，與標準多肽命名法一致，胺基酸殘基的縮寫如下表所示：
應注意本文以定則表示所有胺基酸殘基序列，其由左向右方向為胺基末端到羧基末端的習用方向。
於另一具體實例中，該多肽是一種抗原結合多肽；於一具體實例中，該抗原結合多肽選自由可溶性受體、抗體、抗體片段、免疫球蛋白單一變異域、Fab、F(ab')2、Fv、雙硫鍵連結的Fv、scFv、閉鎖式構型多特異性抗體、雙硫鍵連結的scFv或雙體抗體(diabody)所組成之群組。
本文所用專有名詞“抗原結合多肽”意指抗體、抗體片段，及 可結合抗原的其他蛋白質結構。
所用的專有名詞：Fv、Fc、Fd、Fab或F(ab)2與其標準義意一致(參見例如：Harlow et al.,Antibodies A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,(1988))。
“嵌合抗體”意指一類型的設計抗體，其含有源自施者抗體的天然存在變異區(輕鏈及重鏈)與源自受者抗體的輕鏈及重鏈恒定區。
“人源化抗體”意指一類型的設計抗體，具有源自非人類之予體免疫球蛋白的互補決定區(CDRs,complementarity determining region)，該分子其餘的免疫球蛋白衍生部分源自一種(或多種)人類免疫球蛋白。此外，可變更架構支撐殘基以維持結合親和力(參見例如：Queen et al.,Proc.Natl.Acad Sci USA,86：10029-10032(1989),Hodgson et al.,Bio/Technology,9：421(1991))。一種適宜的人類受者抗體可透過同源的施者抗體之核酸及胺基酸序列選自習用的資料庫，例：卡巴資料庫(KABAT.RTM.database)、洛斯阿拉莫斯資料庫(Los Alamos database)及瑞士蛋白質資料庫(Swiss Protein database)，具同源的施者抗體(在胺基酸基礎上)之架構區域特徵的人類抗體可能適合提供重鏈恒定區及/或重鏈變異架構區，以插入予體的互補決定區。可用類似形式選擇可貢獻輕鏈恒定或變異架構區的適宜受者抗體，應注意該受者抗體的重及輕鏈並不需要源自相同的受者抗體，先前技術說明數種製造該人源化抗體的方式，參見例如：EP-A-0239400及EP-A-054951。
專有名詞“施者抗體(donor antibody)”意指一種抗體(單株及/或重組)，貢獻它的變異區、互補決定區，或其他功能性區段或其類似物的胺基酸序列給第一免疫球蛋白配對者，從而提供已變更的免疫球蛋白編碼區，並產生具抗原專一性的表現變更抗體，且中和該施者抗體的特有 活性。
專有名詞“受者抗體(acceptor antibody)”意指與施者抗體異源的一種抗體(單株及/或重組)，其貢獻所有(或任何部分，但在一些具體實例中為全部)編碼它的重及/或輕鏈架構區，及/或它的重及/或輕鏈恒定區之胺基酸序列給第一免疫球蛋白配對者，於某些具體實例中，一種人類抗體為受者抗體。
“互補決定區”被定義為一抗體的互補決定區胺基酸序列，其為免疫球蛋白重及輕鏈的高度變異區，參看例如：Kabat等人,Sequences of proteins of Immunological Interest,4th Ed.,U.S.Department of Health and Human Services,National Institutes of Health(1987)。免疫球蛋白的變異部分具有三個重鏈及三個輕鏈互補決定區(或互補決定區域)，因此，本文所用“互補決定區”意指所有三個重鏈互補決定區，或所有三個輕鏈互補決定區(若恰當，或者是所有重鏈及所有輕鏈互補決定區)，抗體的結構及蛋白質摺疊可能表示其他殘基被認為是該抗原結合區的一部分，而應可被該領域技術人員所理解，範例參見：Chothia等人.,(1989)Conformations of immunoglobulin hypervariable regions；Nature 342,p 877-883。
本文所用專有名詞“域”意指一種摺疊的蛋白質結構，其具有獨立於該蛋白質其他部分的三級結構，一般而言，域負責蛋白質分立的功能特性，在許多情形下可被加入、移除或轉移至其他蛋白質，而不失去該蛋白質及/或該域其餘部分的功能。“抗體單一變異域”是一種摺疊的多肽域，包含抗體變異域的特有序列，因此它包括完整的抗體變異域及經修飾的變異域，例如：其中一或多個圈環被抗體變異域的非特有序列，或不完整的或包含胺基或羧基末端延伸的抗體變異域，以及至少保留該全長結構域結合活性與專一性之變異域的摺疊區段所取代。
術語“免疫球蛋白單一變異域”意指一種抗體變異域(VH、VHH、VL)，其獨立於不同變異區或域，專一性地結合至一種抗原或抗原決定位，免疫球蛋白單一變異域可與該單一免疫球蛋白變異域抗原結合所不需要的其他不同變異區或變異域(亦即，該免疫球蛋白單一變異域結合抗原與該附加變異域無關)以一種形式存在(例：同源或異源多聚體)。“域抗體”或“dAb”與“免疫球蛋白單一變異域”相同，其可結合至本文所述之抗原，免疫球蛋白單一變異域可以是一種人類抗體變異域，但亦可包括來自其他物種的單一抗體變異域，諸如：囓齒動物(例：公開於WO 00/29004)、鉸口鯊及羊駝的VHH域抗體(奈米體)。羊駝VHH是免疫球蛋白單一變異域多肽，其來源物種包括：駱駝、美洲駝、羊駝、單峰駝及原駝，它們產生天然缺少輕鏈的重鏈抗體，可按本領域可用之標準技術人源化此VHH域，且依據本發明定義該域仍被認為是“域抗體”，本文所用“重鏈變異區(VH)”包括羊駝VHH域。新型抗原受體變異區是另一種形式的免疫球蛋白單一變異域，其在軟骨魚包含鉸口鯊中被發現，這些域亦已知為新型抗原受體變異區(一般縮寫為V(NAR)或NARV)，更多詳情參看Mol.Immunol.44,656-665(2006)及US20050043519A。
專有名詞“抗原決定位結合域”意指獨立於不同變異區或域可專一性結合至抗原或抗原決定位的一種區域，其可為一種域抗體(dAb)，例如：一種人類、羊駝或鯊魚的免疫球蛋白單一變異域。
本文所用專有名詞“抗原結合位”意指位於蛋白質上的一種位置，其可專一性地結合至抗原，它可能是一種單一域，例如一種抗原決定位結合域，或它可能是位於標準抗體的重鏈變異區/輕鏈變異區域配對。在本發明的一些方面，單鏈可變區段(ScFv)域可提供抗原結合位。
本文所用專有名詞“單株域抗體(mAbdAb)”及“域單株抗 體(dAbmAb)”意指本發明之抗原結合蛋白質，兩專有名詞可交換使用，且於本文使用旨在具有相同意義。
在一方面，本發明涉及一種純化蛋白質的方法，其透過超級抗原層析術由含有至少一種汙染物的溶液中純化出一種包含抗體、抗體片段或免疫球蛋白單一變異域之蛋白質，該方法包括：a)使該蛋白質吸附到固化於固體撐體的超級抗原上；b)以含有一種脂族羧酸鹽的第一次洗滌緩衝液接觸含該吸附蛋白質的固化超級抗原，而移除該至少一種污染物；及c)由固化於該固體撐體上的超級抗原洗析出該蛋白質。
於一具體實例中，使用一種超級抗原進行親和力層析術，“超級抗原”是配體的總稱，其於一蛋白位置上與免疫球蛋白超家族的成員作用，該位置與這些蛋白質的目標配體結合位不同，葡萄球菌腸毒素是超級抗原的範例，其與T細胞受體作用，可結合抗體的超級抗原包括但不限於：結合至免疫球蛋白G恒定區的蛋白質G(Bjorck and Kronvall,J.Immunol.,133：969(1984))；Protein A which binds the免疫球蛋白G constant region and VH domains(Forsgren and Sjoquist,J.Immunol.,97：822(1966))；及結合輕鏈變異區域的蛋白質L(Bjorck,J.Immunol.,140：1194(1988))。於一具體實例中，該超級抗原選自蛋白質A、蛋白質G及蛋白質L。
當用於本文時，專有名詞“蛋白質A”包括由其天然來源回收的蛋白質A、合成的蛋白質A(例：經由胜肽合成或重組技術)，及其保留對於具重鏈恒定區2/重鏈恒定區3的蛋白質之結合能力的變異型，可自吉諾泰(Repligen)、法瑪西亞(Pharmacia)及法碼科技(Fermatech)公司商業購得蛋白質A。
當用於本文時，“親和力層析術”是一種色層分離物質的方法，其利用不同於生物分子一般性質的生物分子間特殊可逆的交互作用， 諸如：等電點、疏水性，或尺寸大小以影響色層分離。“蛋白質A親和力層析術”或“蛋白質A層析法”意指一種特殊的親和力色層分析法，它利用蛋白質A之免疫球蛋白G結合域對免疫球蛋白分子可結晶區段部分的親和力，此可結晶區段部分含有人類或動物免疫球蛋白恒定域的重鏈恒定區2及重鏈恒定區3，或本質上類似的免疫球蛋白域，蛋白質A包括：來自金黃色葡萄球菌細胞壁的天然蛋白質、經由重組或合成方法製造的蛋白質A，及保留結合可結晶區段能力的變異型。於實際操作中，蛋白質A層析法涉及使用固化至固體撐體上的蛋白質A，參見Gagnon,Protein A Affinity Chromotography,Purification Tools for Monoclonal Antibodies,pp.155-198,Validated Biosystems,1996。親和力層析術亦可使用蛋白質G及蛋白質L。固體撐體是一種供蛋白質A黏附的非水性基質(例如：一種管柱、樹脂、基質、珠粒、凝膠...等)。此種撐體包括：瓊脂糖、離子交換瓊脂糖、玻璃、矽石、聚苯乙烯、火棉膠木炭、沙、聚甲基丙烯酸鹽、交聯聚(苯乙烯-二乙烯苯)，及有聚葡萄糖表面增量劑的瓊脂糖，以及任何其它適宜的材料，該材料為本領域所熟知。任何適當的方法皆可用來黏附超級抗原至固體撐體上，黏附蛋白質至適宜固體撐體的方法為本領域所熟知，參看例如：Ostrove,in Guide to Protein Purification,Methods in Enzymology,182：357-371,1990。具備或不具備蛋白質A或蛋白質L的此種固體撐體可由許多商業來源獲得，包括諸如：維克特實驗室(Vector Laboratory)(伯林蓋姆，加州(Burlingame,Calif.))、聖克魯斯生物技術公司(Santa Cruz Biotechnology)(聖克魯斯，加州(Santa Cruz,Calif.))、伯瑞生物技術公司(BioRad)(赫丘里斯，加州(Hercules,Calif.))、安瑪西亞生物技術公司(Amersham Biosciences)(奇異醫療集團分部，烏普薩拉，瑞典(Uppsala,Sweden))，及密理博生物技術公司(Millipore)(比爾里卡，馬薩諸塞州(Billerica,Mass.))。
脂族羧酸鹽可為直鏈或支鏈的，於某些具體實例中，該脂族羧酸鹽是一種脂族羧酸或其鹽類，或是該脂族羧酸鹽的來源是一種脂族羧酸或其鹽類；於某些具體實例中，該脂族羧酸鹽為直鏈的，選自甲酸(蟻酸)、乙酸(醋酸)、丙酸(丙酸)、丁酸(酪酸)、戊酸(纈草酸)、己酸(羊油酸)、庚酸(庚酸)、辛酸(羊羶酸)、壬酸(天竺葵酸)、癸酸(羊脂酸)、十一酸(十一酸)、十二酸(月桂酸)、十三酸(十三酸)、十四酸(肉豆蔻酸)、十五酸、十六酸(棕櫚酸)、十七酸(珠光脂酸)、十八酸(硬脂酸)及二十酸(花生酸)，或任何其鹽類，因此，該脂族羧酸鹽可含有1-20個碳長度的碳骨架；於一具體實例中，該脂族羧酸鹽含有6-12個碳的骨架；於一具體實例中，該脂族羧酸鹽選自己酸鹽、庚酸鹽、辛酸鹽、癸酸鹽及十二酸鹽；於一具體實例中，該脂族羧酸鹽的來源選自脂族羧酸、脂族羧酸的一種鈉鹽，及脂族羧酸的一種鉀鹽。於一具體實例中，該洗滌緩衝液含有辛酸鈉、癸酸鈉，或月桂酸鈉；於一具體實例中，該洗滌緩衝液含有約10mM至約125mM辛酸鈉，約1mM至約30mM癸酸鈉，或約1mM至約30mM月桂酸鈉；於一具體實例中，該洗滌緩衝液含有約100mM辛酸鈉，約20mM癸酸鈉，或約20mM月桂酸鈉；於一具體實例中，該洗滌緩衝液含有約1mM至約500mM醋酸鈉；於一具體實例中，該洗滌緩衝液含有約300mM醋酸鈉。
於一具體實例中，該至少一種污染物是一種宿主細胞蛋白質或宿主細胞DNA；於某些具體實例中，該宿主細胞選自中國倉鼠卵巢細胞(CHO cells)、鼠骨髓瘤細胞株(NS0 cells)、骨髓瘤細胞(Sp2/0 cells)、非洲綠猴腎臟纖維細胞(COS cells)、血癌細胞(K562 cells)、幼倉鼠腎細胞(BHK cells)、人類視網膜細胞(PER.C6 cells)及人類胚腎細胞(HEK cells)；該宿主細胞可為細菌細胞，選自大腸桿菌(例如：W3110、BL21)、枯草桿菌，及/或其他適宜的細菌；真核細胞，諸如：真菌或酵母菌細胞(例： 醇酵母菌、麴菌、啤酒釀母菌、粟酒裂殖酵母、紅麵包黴菌)。
“緩衝液”是一種緩和的溶液，經由其酸鹼共軛成分的作用而減少酸鹼值的變化。
本文的“平衡緩衝液”是用以製備層析法固相的緩衝液。
“加樣緩衝液”是用來加入該蛋白質與汙染物的混合物至層析基質上的緩衝液，平衡緩衝液和加樣緩衝液可為相同緩衝液。
“洗析緩衝液”是用來由層析基質中洗提出蛋白質的緩衝液。
“鹽”是由酸及鹼交互作用形成的一種化合物。
於一具體實例中，該洗滌緩衝液含有一種有機酸、一種該有機酸之共軛鹼的鹼金屬鹽或銨鹽，及一種有機鹼；於一具體實例中，該洗滌緩衝液不添加NaCl。
於一具體實例中，該有機酸包括但不限於：蟻酸、醋酸、乳酸、檸檬酸、蘋果酸、順丁烯二酸、甘胺酸、磷酸、胺乙醯酸、琥珀酸、TES(2-{[三(羥甲基)甲基]胺基}乙磺酸)、MOPS(3-(N-嗎啉基)丙磺酸)、PIPES(哌-N,N'-二(2-乙磺酸))，及MES(2-(N-嗎啉基)乙磺酸)。
於一具體實例中，該有機鹼包括但不限於：tris base、精胺酸、Bis-tris、Bis-tris-丙烷、Bicine(N,N-二(2-羥乙基)甘胺酸)、HEPES(4-2-羥乙基-1-哌乙磺酸)、TAPS(3-{[三(羥甲基)甲基]胺基}丙磺酸)，及Tricine(N-三(羥甲基)甲甘胺酸)。
於一具體實例中，該有機酸的共軛鹼為該有機酸共軛鹼之鈉鹽、鉀鹽或銨鹽；於一具體實例中，該有機酸是醋酸，而醋酸的共軛鹼為鈉鹽。
於一具體實例中，該蛋白質是一種抗原結合蛋白質；於一具體實例中，該抗原結合蛋白質是一種抗體；於一具體實例中，該抗體屬 免疫球蛋白G類；於一具體實例中，該抗原結合蛋白質是一種免疫球蛋白單一變異域。
在一方面，本發明涉及一種經由蛋白質A層析法從被污染的溶液中純化一種蛋白質的方法，其包含：(a)以一種蛋白質A平衡緩衝液平衡固化於固相的蛋白質A；(b)該蛋白質從污染溶液吸附到固化於固相上的蛋白質A；(c)以第一次蛋白質A洗滌緩衝液清洗固相，移除至少一種污染物，該緩衝液含有約50mM至約55mM tris base，約45mM至約50mM醋酸，至少一種脂族羧酸鹽，酸鹼值約7.5，其中該脂族羧酸鹽選自含約100mM辛酸鈉，約20mM癸酸鈉，及約20mM月桂酸鈉所組成之群組；及(d)以一種蛋白質A洗析緩衝液由固相回收該蛋白質。於一具體實例中，所有該緩衝液皆不添加NaCl；於一具體實例中，該蛋白質A洗滌緩衝液更包含約1mM至約500mM醋酸鈉；於一具體實例中，該蛋白質A洗滌緩衝液包含約300mM醋酸鈉。
於一具體實例中，該平衡緩衝液含有約50mM至約55mM tris base，約45mM至約50mM醋酸，酸鹼值約7.2；而該洗析緩衝液含有1.8mM醋酸鈉，及約28.2mM至約300mM醋酸，酸鹼值約2.4至約3.6。
於一具體實例中，該方法更包含步驟(c)之後、步驟(d)之前的以下步驟：以第二次蛋白質A洗滌緩衝液清洗固相以移除污染物，該緩衝液含有55mM tris base、45mM醋酸，酸鹼值約7.2；於一具體實例中，該第二次蛋白質A洗滌緩衝液不添加NaCl。
於一具體實例中，該方法更包含步驟(d)之後的以下步驟：(e)以30mM醋酸、100mM鹽酸滴定含有該回收蛋白質之溶液至酸鹼值約3.0；(f)使步驟(e)之溶液的酸鹼值維持在約3.0達約30至約60分鐘；及(g)以1 M tris調整步驟(f)之溶液的酸鹼值至約7.5。
於一具體實例中，該方法更包含過濾步驟(g)所產生的溶液。
在一方面，本發明涉及一種經由蛋白質L層析法從被污染的溶液中純化一種蛋白質的方法，其包含：(a)以一種蛋白質L平衡緩衝液平衡固化於固相的蛋白質L；(b)該蛋白質從污染溶液吸附到固化於固相上的蛋白質L；(c)以第一次蛋白質L洗滌緩衝液清洗固相，移除至少一種污染物，該緩衝液含有約50mM至約55mM tris base，約45mM至約50mM醋酸，至少一種脂族羧酸鹽，酸鹼值約7.5，其中該脂族羧酸鹽選自含約100mM辛酸鈉，約20mM癸酸鈉，及約20mM月桂酸鈉所組成之群組；及(d)以一種蛋白質L洗析緩衝液由固相回收該蛋白質。於一具體實例中，所有該緩衝液皆不添加NaCl；於一具體實例中，該蛋白質L洗滌緩衝液更包含約1mM至約500mM醋酸鈉；於一具體實例中，該蛋白質L洗滌緩衝液包含約300mM醋酸鈉。
於一具體實例中，該平衡緩衝液含有約50mM至約55mM tris base，約45mM至約50mM醋酸，酸鹼值約7.2；而該洗析緩衝液含有1.8mM醋酸鈉，及28.2mM至約300mM醋酸，酸鹼值約2.4至約3.6。
於一具體實例中，該方法更包含步驟(c)之後、步驟(d)之前的以下步驟：以第二次蛋白質L洗滌緩衝液清洗固相以移除污染物，該緩衝液含有55mM tris base，酸鹼值約7.2的45mM醋酸；於一具體實例中，該第二次蛋白質L洗滌緩衝液不添加NaCl。
於一具體實例中，該方法更包含步驟(d)之後的以下步驟：(e)以30mM醋酸、100mM鹽酸滴定含有該回收蛋白質之溶液至酸鹼值約3.0；(f)使步驟(e)之溶液的酸鹼值維持在約3.0達約30至約60分鐘；及(g)以1 M tris調整步驟(f)之溶液的酸鹼值至約7.5。
於一具體實例中，該方法更包含過濾步驟(g)所產生的溶液。
“溶液”可為細胞培養液，例如：一種細胞培養進料流，該進料流可被過濾；該溶液可為一種澄清未經處理的培養液(CUB)(或澄清的發酵培養液/上清液)，CUB亦已知為一種具有細胞及/或細胞碎片的細胞培養上清液，該細胞及/或細胞碎片可由澄清法移除。另外，使用該領域已知的方法獲取至少一種周質空間萃取物，該溶液可為一種裂解的細胞表達蛋白質製備物(例：溶液為一種溶胞產物)。
“污染物”意指一種外來或不符預期的分子，於超級抗原層析過程之前出現在注入的樣本中，或隨著超級抗原層析過程中出現在析出液中，有可能出現“過程雜質”，這些雜質是所欲蛋白質生產過程中造成的結果，例如：這些雜質包括宿主細胞蛋白質(HCP)、RNA及DNA(例如：病毒)。“宿主細胞蛋白質”意指與所要蛋白質無關，在細胞培養或發酵期間由宿主細胞產生的蛋白質，包括細胞內及/或分泌的蛋白質，宿主細胞蛋白質的一個例子是一種蛋白酶，若在純化期間或純化後仍存在，其可對所欲蛋白質造成損害，例如：假使蛋白酶繼續存在於含有所要蛋白質的樣本中，它可產生原本不存在的產物相關物質或雜質，蛋白酶的存在可導致純化期間及/或於最終製劑中，所要蛋白質隨時間衰變，移除宿主細胞蛋白質或降低宿主細胞蛋白質的量義同於移除或減少蛋白酶。
過程雜質亦包括用來使細胞生長或確保所欲蛋白質表現的成分，例如：溶劑(例：用來培養酵母細胞的甲醇)、抗生素、胺甲喋呤(MTX)、培養液成分、凝聚劑...等，也包括超級抗原固相一部分的分子，在先前步驟期間，其溶於樣本中，例如：蛋白質A、蛋白質G，或蛋白質L。污染物亦包括“產物相關物質”，其中包含保留其活性但結構不同的蛋白質； 及“產物相關雜質”，其中包含因其結構差異而失去活性的蛋白質。這些產物相關變異型包括例如：高分子量種類(HMWs)、低分子量種類(LMWs)、凝集的蛋白質、前驅物、降解的蛋白質、錯誤摺疊的蛋白質、被遮蔽雙硫鍵的蛋白質、區段，及去醯胺基的種類。
可於析出液中測得任何一種這些雜質的存在，以確認洗滌步驟是否成功，例如：我們已指出在每毫克蛋白質中，測得奈克的宿主細胞蛋白質量降低(參見本文例證)。
因此，來自超級抗原固體撐體的析出液可能含有該蛋白質於樣本中，以及宿主細胞蛋白質或DNA，量約5,000ppm(parts per million，百萬分之一)或更少，4,000ppm或更少，3,000ppm或更少，2,500ppm或更少，2,000ppm或更少，1,500ppm或更少，1,000ppm或更少，約900ppm或更少，約800ppm或更少，約700ppm或更少，約600ppm或更少，約500ppm或更少，約400ppm或更少，約300ppm或更少，約200ppm或更少，約100ppm或更少，約90ppm或更少，約80ppm或更少，約70ppm或更少，約60ppm或更少，或約50ppm或更少。“ppm”相當於奈克/毫克，而“ppb”(十億分之一)相當於皮克/毫克。
與不含脂族羧酸鹽的對照洗滌步驟相較，可發現雜質減少；另外，與不含脂族羧酸鹽及醋酸鈉的對照洗滌步驟相較，可發現雜質減少。
依據本發明洗滌步驟所述之方法，其中來自析出液的所要蛋白質回收率為：100%、99%、98%、97%、96%、95%、90%、85%、.80%、70%、60%、50%或更少，包括介於100%至50%的任何個別值，或介於此範圍內任何一對個別值內的子範圍。析出液的回收百分率(%)計算方法為：以注入管柱的所要蛋白質的量為百分比，測定析出液中所要蛋白質的量， 根據以下公式：回收百分率=析出液之產物量×100/注入液之產物量存在於析出液中污染物的量可用酵素免疫測定法、高通量分子交互作用即時快速篩選分析儀(OCTET)或其他方法測量，以測定上述一或多種汙染物的量，本文所述之例證使用酵素免疫測定法，測定樣本中宿主細胞蛋白質的量。
例1-材料與方法
所有色層分析過程使用購自奇異醫療集團(烏普薩拉．瑞典)的AKTA Explorer 100系統，使用分光光度計(Thermo Scientific NanoDrop 1000(RN))測量於280奈米的吸光值以測定純蛋白質樣本濃度，使用架在高效能液相層析儀(Agilent 1100 HPLC){購自惠普公司(Hewlett Packard)(帕洛阿爾托，加州(Palo Alto,CA))}的POROS蛋白質A管柱(2.1×30毫米){購自應用生物系統公司(Applied Biosystems)(福斯特城，加州(Foster City,CA))}測定未處理樣本中蛋白質的濃度，蛋白質A親和介質(MabSelect SuRe protein A)培養液購自奇異醫療集團(烏普薩拉．瑞典)，層析管柱購自密理博公司(貝德福德，馬薩諸塞州)，使用攜帶式濁度計2100P(2100P Tubidimeter)及貨號# 24347-06的玻璃樣本管{購自哈希公司(HACH Company)(拉夫蘭，科羅拉多州，美國(Loveland,CO,USA))}測量濁度，所有化學藥品購自艾萬拓公司(JT Baker)(菲利普斯堡，紐澤西州(Phillipsburg,NJ))，或西格瑪奧瑞奇集團(Sigma Aldrich)(聖路易斯，密蘇里州(St Louis,MO))，且為美國藥典級。
除非另有說明，所有層析實驗於架在AKTA Explorer 100層析系統的1.1×25釐米之蛋白質A親和介質管柱上進行，使用分析性蛋白質 A，或經由流動式生物感測系統蛋白質濃度測定法(Biacore protein concentration assay){購自葛蘭素史克生物分析學組(Bioanalytical Sciences group at GSK)，上瑪瑞濃(Upper Merion)}。
例2-洗滌緩衝液添加劑的初步篩選
經由使用醋酸或tris base滴定至特定酸鹼值以製備緩衝液，篩選條件與類似於標準高鹽蛋白質A洗滌緩衝液(50mM tris、醋酸，1 MNaCl，酸鹼值7.2)的結果相較以作為對照，測試的五次實驗條件之完整清單請參閱表2，而相應的結果參閱表3及4。以葛蘭素史克產品的抑瘤素M抗體(GSK315234)及介白素13抗體(GSK679586)之細胞培養濾液經蛋白質A層析法測試該洗滌緩衝液，這兩種不同的實例有相似的宿主細胞蛋白及DNA減少趨勢，由於變化的非典型洗析曲線和過度的產物流失，未進一步評估聚乙二醇辛基苯基醚及聚氧乙烯辛烷基苯酚醚之洗滌緩衝液的蛋白質A產物中雜質的量。與標準的1 MNaCl洗滌緩衝液相較，含有PS80的緩衝液(一種非離子性的環氧乙烷聚合物為基底的界面活性劑)表現不明顯的清除作用，含有100mM辛酸鈉、羧酸的一種鈉鹽、辛酸的洗滌緩衝液降低最多的宿主細胞蛋白質及DNA，與對照組相較，該100mM辛酸鹽緩衝液減少抑瘤素M及介白素13兩種抗體中近五倍的宿主細胞蛋白質；再者，與對照組相較，該緩衝液分別減少介白素13抗體中100倍的DNA與抑瘤素M抗體中60倍的DNA，完整的抑瘤素M抗體及介白素13抗體與洗滌篩選條件之產率、宿主細胞蛋白質、DNA及粒徑篩選層析法(size exclusion chromatography)的資料請參閱表3和表4。
例3-辛酸鹽濃度對雜質清除的影響
為了檢驗辛酸鈉濃度對去除雜質的影響，測試一系列的辛 酸鈉濃度，檢驗辛酸鈉濃度對移除抑瘤素M抗體及介白素13抗體中雜質的影響所使用的緩衝液與流速清單請參閱表5，對於抑瘤素M抗體及介白素13抗體之辛酸鹽濃度研究的資料總結於圖1與圖2，對於介白素13抗體與抑瘤素M抗體兩者的層析結果，辛酸鹽濃度的改變明顯地影響中國倉鼠卵巢細胞之宿主細胞蛋白質及DNA的降低現象，辛酸鹽濃度越高，則發現抑瘤素M抗體及介白素13抗體兩者的宿主細胞蛋白質及DNA減少越多；然而，已發現辛酸鈉與0.3M醋酸鈉的組合可最大程度的減少宿主細胞蛋白質及DNA，與單獨一種洗滌劑或鹽類相較，該洗滌劑與一種鹽類的合併效果可增進緩衝液的清除能力。
由於經驗確認辛酸鈉在酸鹼值7.2的溶解度約為125mM，本研究中測試的最大辛酸鈉濃度為100mM，因為溶解度預期會隨著酸鹼值提高而增加，假使需要去除大量的宿主細胞污染物，可經由調整緩衝液系統及組成分來測試較高的辛酸鹽濃度。然而，在此基礎上，我們測得100mM辛酸鈉與0.3M醋酸鈉的組合足以去除宿主細胞雜質。
例4-羧酸篩選
辛酸鈉是羊脂酸的一種鈉鹽，含有屬於羧酸類之8個碳長的脂族長鏈，由於其飽和碳尾與帶電荷的羧基頭部，這些雙性飽和未分支鹽類可做為一種洗滌劑，為了測定碳尾長度對去除汙染物的影響，測試數種其他的鈉鹽類，所測之其他鹽類包括：己酸鈉、庚酸鈉、辛酸鈉、癸酸鈉，及月桂酸鈉，實驗設計總結於表6，此實驗的結果歸納於圖3，由於在初步實驗中發現月桂酸鈉產率低且會改變洗析現象，將月桂酸鈉排除不分析，除了十二酸鹽之外，雖然所有的不同鹽類造成相似的產物量，但每種鹽類導致非常不同的雜質狀況，當鏈的碳數增加時，雜質量會減少，碳鏈數少於辛酸鈉(C8)的鈉鹽會導致較高的雜質量，最好的兩種洗滌緩衝液添加劑為辛酸鈉及癸酸鈉。
例5-最佳化洗滌對濁度的影響
同樣也研究最佳化辛酸鹽洗滌對下游操作步驟的影響，特別著重於其對減少之後蛋白質A沉澱和提高過濾性的影響，使用兩種不同的 洗滌方法，使來自介白素13抗體細胞培養濾液的1.16克/升之介白素13抗體細胞培養過濾物通過2.6×27釐米的親和介質(MabSelect SuRe)管柱，一半的該材料使用加入辛酸鈉的最佳化洗滌方法，通過蛋白質A層析管柱，另一半的該材料以平衡緩衝液取代辛酸鹽洗滌進行處理，以濁度作為過濾性的指標，紀錄洗析收集液的濁度測量值，之後以30mM醋酸、100mM鹽酸滴定該洗析液至酸鹼值達3.5，再次測量並記錄濁度測量值，該洗析樣本於酸鹼值3.5條件下經過一小時之後，再將其滴定至酸鹼值達6.0，以備下一操作步驟使用，測量並記錄經調節酸鹼值之收集液的濁度測量值，所得結果總結於表7，而雜質狀況呈現於表8。考慮到濁度是過濾性的一種指標，辛酸鹽洗滌可降低過濾步驟的一些負擔，因為該陰離子交換注入材料可降低50%之濁度。
例6-使用蛋白質A辛酸鹽緩衝液於tris醋酸鹽緩衝液中純化域抗體
DOM0100，一種於大腸桿菌表現的25kDa(Vk-VH白蛋白域抗體+腫瘤壞死因子R1域抗體)域抗體分子，經由購自奇異醫療集團，裝 填於0.5×20釐米管柱的蛋白質A、親和介質(MabSelect Xtra)進行純化，所有步驟之管柱流速為300釐米/小時，經由酸鹼值為7.5的55mM tris base、45mM醋酸平衡之後，將細胞培養濾液注入含有13.5毫克/毫升樹脂的管柱中，該注入滴定量為1.88毫克/毫升，之後使用5管柱容積的酸鹼值為7.5之55mM tris base、45mM醋酸、300mM醋酸鈉、100mM辛酸鈉洗滌該管柱，接著洗析出該蛋白質，並清洗、消毒及儲存該管柱，透過酵素免疫測定法分析洗析峰值，得到1,440ppm的HCPs(宿主細胞蛋白質)，有74.9%的產率。於相同實驗條件下重複相同實驗兩次，但以高鹽洗滌取代辛酸鹽洗滌，透過酵素免疫測定法分析分別得到2,398ppm及2,456ppm的宿主細胞蛋白質，有77.2%及76.0%的產率，於0.5釐米×10釐米管柱中的層析程序配合滯留時間對動態結合能力可達150個循環沒有影響，同樣使用該相同的層析程序研究親和介質(MabSelect)與鹼性穩定的親和介質(MabSelect SuRe)之樹脂選擇性，而得出類似宿主細胞蛋白質產物之品質。
例7-使用蛋白質L、辛酸鹽洗滌及tris醋酸鹽緩衝液純化DAT06域抗體
DAT06，一種於大腸桿菌表現的11.5kDa(Vk)域抗體分子，經由裝填於0.5釐米×20釐米管柱的蛋白質L(購自奇異醫療集團)進行純化，所有步驟之管柱流速為300釐米/小時，經過酸鹼值為7的52mM tris base、48mM醋酸平衡之後，將細胞培養濾液注入含有13毫克/毫升樹脂的管柱中，之後使用5管柱容積的酸鹼值為7之52mM tris base、48mM醋酸、100mM辛酸鈉洗滌該管柱，並於再次平衡之前，洗析、清洗、消毒並儲存該管柱，透過酵素免疫測定法分析洗析峰值，得到5,815ppm的宿主細胞蛋白質，有96.4%的回收率；相對地，使用酸鹼值7.0的52mM tris、48mM醋酸、2 MNaCl高鹽洗滌的相同層析程序，得到7,476ppm的宿主細胞蛋白質， 有85.1%的回收率，而使用酸鹼值7.0的52mM tris、48mM醋酸之平衡緩衝液的洗滌步驟得到12,523ppm的宿主細胞蛋白質，有94.1%的回收率。

Claims (45)

  1. 一種純化蛋白質方法，其透過超級抗原層析術由含有至少一種汙染物的溶液中純化出蛋白質，該方法包括：a)使該蛋白質吸附到固化於固體撐體的超級抗原上；b)以包含一種脂族羧酸鹽的第一次洗滌緩衝液接觸含該吸附蛋白質的固化超級抗原，而移除該至少一種污染物，其中該脂族羧酸鹽選自由己酸鹽、庚酸鹽、辛酸鹽、癸酸鹽及月桂酸鹽所組成之群組；及c)由固化於該固體撐體上的超級抗原洗析出該蛋白質。
  2. 根據申請專利範圍第1項之方法，其中該超級抗原選自由蛋白質A、蛋白質G及蛋白質L所組成之群組。
  3. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該脂族羧酸鹽的來源選自由脂族羧酸、脂族羧酸的鈉鹽及脂族羧酸的鉀鹽所組成之群組。
  4. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該洗滌緩衝液包含辛酸鈉、癸酸鈉或月桂酸鈉。
  5. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該洗滌緩衝液包含10mM至125mM辛酸鈉、1mM至30mM癸酸鈉或1mM至30mM月桂酸鈉。
  6. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該洗滌緩衝液包含100mM辛酸鈉、20mM癸酸鈉或20mM月桂酸鈉。
  7. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該洗滌緩衝液更包含100mM至400mM醋酸鈉。
  8. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該洗滌緩衝液包含300mM醋酸鈉。
  9. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該至少一種污染物為宿主細胞蛋白質或宿主細胞DNA。
  10. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中該宿主細胞選自由中國倉鼠卵巢細胞(CHO cells)、鼠骨髓瘤細胞株(NSO cells)、骨髓瘤細胞(Sp2/0 cells)、非洲綠猴腎臟纖維細胞(COS cells)、血癌細胞(K562 cells)、幼倉鼠腎細胞(BHK cells)、人類視網膜細胞(PER.C6 cells)及人類胚腎細胞(HEK cells)所組成之群組的哺乳動物細胞。
  11. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中該宿主細胞選自由大腸桿菌、真菌細胞或酵母菌細胞所組成之群組。
  12. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該固體撐體選自由瓊脂糖、聚甲基丙烯酸鹽、交聯聚(苯乙烯-二乙烯苯)及有聚葡萄糖表面增量劑之瓊脂糖所組成之群組。
  13. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該蛋白質選自由可溶性受體、抗體、抗體片段、免疫球蛋白單一變異域、Fab、F(ab')2、Fv、雙硫鍵連結的Fv、scFv、閉鎖式構型多特異性抗體、雙硫鍵連結的scFv或雙體抗體(diabody)所組成之群組。
  14. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該溶液是一種細胞培養濾液。
  15. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中於步驟c)之後，宿主細胞蛋白質相對減少的倍數為2至10倍。
  16. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中於步驟c)之後，宿主細胞蛋白質相對減少的倍數為5倍。
  17. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中於步驟c)之後，宿主細胞DNA相對減少的倍數為2至150倍。
  18. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中於步驟c)之後，宿主細胞DNA相對減少的倍數為100倍。
  19. 根據申請專利範圍第9項之方法，其中於步驟c)之後，宿主細胞蛋白質或DNA之量少於5,000ppm、4,000ppm、3,000ppm、2,500ppm、2,000ppm、1,500ppm、1,000ppm,900ppm、800ppm、700ppm、600ppm、500ppm、400ppm、300ppm、200ppm、100ppm、90ppm、80ppm、70ppm、60ppm或50ppm。
  20. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中於步驟c)之後，該蛋白質不用於任何進一步的親和力層析法。
  21. 根據申請專利範圍第1或2項之方法，其中該洗滌緩衝液更包含有機酸、該有機酸之共軛鹼的鹼金屬鹽或銨鹽及有機鹼，且其中該洗滌緩衝液不添加NaCl。
  22. 根據申請專利範圍第21項之方法，其中該有機酸選自由蟻酸、醋酸、乳酸、檸檬酸、蘋果酸、順丁烯二酸、甘胺酸、胺乙醯酸、琥珀酸、TES(2-{[三(羥甲基)甲基]胺基}乙磺酸)、MOPS(3-(N-嗎啉基)丙磺酸)、PIPES(哌-N,N'-二(2-乙磺酸))及MES(2-(N-嗎啉基)乙磺酸)所組成之群組。
  23. 根據申請專利範圍第21項之方法，其中該有機鹼選自由三羥甲基胺基甲烷(tris base)、Bis-tris、Bis-tris-丙烷、Bicine(N,N-二(2-羥乙基)甘胺酸)、HEPES(4-2-羥乙基-1-哌乙磺酸)、TAPS(3-{[三(羥甲基)甲基]胺基}丙磺酸)及Tricine(N-三(羥甲基)甲甘胺酸)所組成之群組。
  24. 根據申請專利範圍第21項之方法，其中該有機酸的共軛鹼為該有機酸共軛鹼之鈉鹽、鉀鹽或銨鹽。
  25. 根據申請專利範圍第21項之方法，其中該有機酸是醋酸。
  26. 根據申請專利範圍第21項之方法，其中該有機鹼是三羥甲基胺基甲烷(tris base)。
  27. 根據申請專利範圍第21項之方法，其中該有機酸為醋酸，且醋酸的共軛鹼為鈉鹽。
  28. 一種經由蛋白質A層析法從被污染的溶液中純化其蛋白質的方法，其包含：(a)將固化於固相上的蛋白質A與蛋白質A平衡緩衝液平衡；(b)使該蛋白質從污染溶液吸附到固化於固相上的蛋白質A；(c)以第一次蛋白質A洗滌緩衝液清洗固相，移除至少一種污染物，該緩衝液含有50mM至55mM三羥甲基胺基甲烷、45mM至55mM醋酸、至少一種脂族羧酸鹽，酸鹼值7.2至8.0，其中該脂族羧酸鹽選自由100mM辛酸鈉，20mM癸酸鈉及20mM月桂酸鈉所組成之群組；及(d)以一種蛋白質A洗析緩衝液由固相回收該蛋白質，其中所有的緩衝液皆不添加NaCl。
  29. 根據申請專利範圍第28項之方法，其中該平衡緩衝液含有50mM至55mM三羥甲基胺基甲烷、45mM至50mM醋酸，酸鹼值7.2；且該洗析緩衝液含有1.8mM醋酸鈉及28.2mM至300mM醋酸，酸鹼值2.4至3.6。
  30. 根據申請專利範圍第28或29項之方法，更包含步驟(c)之後、步驟(d)之前的以下步驟：以第二次蛋白質A洗滌緩衝液清洗固相以移除污染物，該緩衝液含有50-55mM三羥甲基胺基甲烷(tris base)、45-50mM醋酸，酸鹼值7.2，其中該第二次蛋白質A洗滌緩衝液不添加NaCl。
  31. 根據申請專利範圍第28或29項之方法，更包含步驟(d)之後的以下步驟：(e)以30mM醋酸、100mM鹽酸滴定含有該回收蛋白質之溶液至酸鹼值3.0；(f)使步驟(e)之溶液的酸鹼值維持在3.0達30至60分鐘；及(g)以1M tris調整步驟(f)之溶液的酸鹼值至7.5。
  32. 根據申請專利範圍第31項之方法，更包含過濾由步驟(g)所產生的溶液。
  33. 一種經由蛋白質L層析法從被污染的溶液中純化其蛋白質的方法，其包含：(a)將固化於固相上的蛋白質L與蛋白質L平衡緩衝液平衡；(b)使該蛋白質從污染溶液吸附到固化於固相上的蛋白質L；(c)以第一次蛋白質L洗滌緩衝液清洗固相，移除至少一種污染物，該緩衝液含有50mM至55mM三羥甲基胺基甲烷(tris base)、45mM至50mM醋酸、至少一種脂族羧酸鹽，酸鹼值7.5，其中該脂族羧酸鹽選自由100mM辛酸鈉、20mM癸酸鈉及20mM月桂酸鈉所組成之群組；及(d)以一種蛋白質L洗析緩衝液由固相回收該蛋白質，其中所有該緩衝液皆不添加NaCl。
  34. 根據申請專利範圍第33項之方法，其中該平衡緩衝液含有50mM至55mM三羥甲基胺基甲烷(tris base)、45mM至50mM醋酸，酸鹼值7.2；且該洗析緩衝液含有1.8mM醋酸鈉及28.2mM至300mM醋酸，酸鹼值2.4至3.6。
  35. 根據申請專利範圍第33或34項之方法，更包含步驟(c)之後、步驟(d)之前的以下步驟：以第二次蛋白質L洗滌緩衝液清洗固相以移除污染物，該緩衝液含有55mM三羥甲基胺基甲烷(tris base)、45mM醋酸，酸鹼值7.2，其中該第二次蛋白質L洗滌緩衝液不添加NaCl。
  36. 根據申請專利範圍第33或34項之方法，更包含步驟(d)之後的以下步驟：(e)以30mM醋酸、100mM鹽酸滴定含有該回收蛋白質之溶液至酸鹼值3.0；(f)使步驟(e)之溶液的酸鹼值維持在3.0達30至60分鐘；及(g)以1M tris調整步驟(f)之溶液的酸鹼值至7.5。
  37. 根據申請專利範圍第36項之方法，更包含過濾步驟(g)所產生的溶液。
  38. 根據申請專利範圍第28或33項之方法，其中該蛋白質A或蛋白質L洗滌緩衝液更含有1mM至500mM醋酸鈉。
  39. 根據申請專利範圍第38項之方法，其中該蛋白質A或蛋白質L洗滌緩衝液含有300mM醋酸鈉。
  40. 根據申請專利範圍第1項之方法，其中該洗滌緩衝液更包含45mM至55mM醋酸。
  41. 根據申請專利範圍第1項之方法，其中該洗滌緩衝液包含50mM至55mM三羥甲基胺基甲烷。
  42. 一種從被污染的溶液中純化蛋白質的方法，其包含：(a)將固化於固相上之蛋白質A與蛋白質A平衡緩衝液平衡或固化於固相上之蛋白質L與蛋白質L平衡緩衝液平衡；(b)使該蛋白質自該污染溶液吸附至該固化於固相上的蛋白質A或蛋白質L；(c)以第一次蛋白質A或第一次蛋白質L洗滌緩衝液清洗該固相，移除至少一種汙染物，該洗滌緩衝液包含三羥甲基胺基甲烷、醋酸、醋酸鈉以及辛酸鈉；以及(d)以蛋白質A洗析緩衝液或蛋白質L洗析緩衝液自該固相回收該蛋白質，其中所有緩衝液皆不添加NaCl。
  43. 一種從被污染的溶液中純化蛋白質的方法，其包含：(a)將固化於固相上之蛋白質A與蛋白質A平衡緩衝液平衡或固化於固相上之蛋白質L與蛋白質L平衡緩衝液平衡；(b)使該蛋白質自該污染溶液吸附至該固化於固相上之蛋白質A或蛋白質L；(c)以第一次蛋白質A或第一次蛋白質L洗滌緩衝液清洗該固相，移除至少一種汙染物，該洗滌緩衝液包含50mM至55mM三羥甲基胺基甲烷、45mM至55mM醋酸、100mM至400mM醋酸鈉與10mM至125mM辛酸鈉；以及(d)以蛋白質A洗析緩衝液或蛋白質L洗析緩衝液自該固相回收該蛋白質，其中所有緩衝液皆不添加NaCl。
  44. 根據申請專利範圍第1項之方法，其中該超級抗原為蛋白質A，且該脂族羧酸鹽為辛酸鈉。
  45. 根據申請專利範圍第44項之方法，其中該洗滌緩衝液包含10mM至125mM辛酸鈉。
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