SU1124976A1 - Method of obtaining sorbent - Google Patents
Method of obtaining sorbent Download PDFInfo
- Publication number
- SU1124976A1 SU1124976A1 SU833628557K SU3628557K SU1124976A1 SU 1124976 A1 SU1124976 A1 SU 1124976A1 SU 833628557 K SU833628557 K SU 833628557K SU 3628557 K SU3628557 K SU 3628557K SU 1124976 A1 SU1124976 A1 SU 1124976A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- red blood
- blood cells
- erythrocytes
- diagnosticum
- charge
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Description
ii
(Л(L
Jim СО ЧJim soo h
а:but:
Изобретение относитс к вакцинно-сывороточному делу и может быть использовано, в технологии получени эритроцитарных диагностикумов медицинского.и. ветеринарного назначени .The invention relates to a vaccine serum case and can be used in the technology for obtaining erythrocyte diagnostics of medical and medical. veterinary prescribing.
В патентной и научно-технической литературе не известны способы отбора эритроцитов дл получени эритроцитарного диагностикума.Erythrocyte selection methods for obtaining erythrocyte diagnosticum are not known in the patent and scientific literature.
Целью изобретени вл етс созДс ние способа отбора эритроцитов дл получени эритроцитарного диагностикума .The aim of the invention is to create a method for selecting red blood cells to obtain an erythrocyte diagnosticum.
Поставленна цель достигаетс те что согласно способу отбора эритроцитов дл получени эритроцитарного диагностикума, заключающемус в том, что эритроциты выдел ют из донорской крови, фиксируют, далее определ ют зар д фиксированных эритроцитов и в качестве исходного сырь используют эритроциты с зар дом 4,12-10 - 3, Кл.The goal is achieved by the fact that, according to the method of selecting red blood cells to obtain an erythrocyte diagnosticum, which consists in that red blood cells are separated from donor blood, fixed, then the charge of fixed red blood cells is determined and erythrocytes with a charge of 4.12-10 are used as the starting material - 3, Cl.
Способ осуществл етс следующим образом. После получени цельной крови (например, бараньей) из нее выдел ют эритроциты, затем их фиксируют формалином и подвергают аналитическому или препаративному клеточному электрофорезу, определ ют зар д, а в качестве частицтносителей антигенов в дальнейшем производстве диагностикумов из всей попул ции используют эритроциты с зар дом 4,1210 - 3, Кл.The method is carried out as follows. After obtaining whole blood (e.g. lamb), erythrocytes are extracted from it, then they are fixed with formalin and subjected to analytical or preparative cell electrophoresis, charge is determined, and further erythrocytes with charge of antigens are used as particle carriers of antigens. 4.1210-3, Cl.
При технической реализации предглагаемого сйособа дл отбора эритроцитов предварительно устанавливают граничное значение величины зар да, при снижении которой у фиксированных эритроцитов ведут выбраховку эритроцитов. Граничные значени можно определить однократным определением зар да фиксированных эритроцитов; при параллельном контроле диагностикумов, изготовленных на этих эритроцитах. Согласно Регламенту производства контроль качества диагностикума осуществл етс в реакции РИГА с гипериммунными сыворотками животных и сыворотками здоровых доноров, т.е. путем градуировки , как проиллюстрировано в примере. Причем по техническим ус .пови м Регламента производства диагностикум считаетс специфичным если титр его с сывороткой здорЪвых доноров в реакции РИГА менее чем 1/100.In the technical implementation of the proposed method for selection of erythrocytes, the limiting value of the charge value is preliminarily established, with a decrease in which for fixed erythrocytes, erythrocytes are screened. Boundary values can be determined by a single determination of the charge of fixed erythrocytes; with parallel monitoring of diagnostic kits made on these erythrocytes. According to the Production Regulations, the quality control of diagnosticum is carried out in the reaction of RIGA with the hyperimmune sera of animals and the sera of healthy donors, i.e. by graduation, as illustrated in the example. Moreover, according to the technical regulations of the Production Regulations, the diagnosticum is considered specific if its titer with serum of healthy donors in the RIGA reaction is less than 1/100.
Пример. Отбор фиксированных эритроцитов 1 мл формализированных эритроцитов барана, содержащихс в физиологическом растворе, осаждают центрифугированием при 350 в течение 5 мин с последующей двухкратной отмывкой и ресуспензированием в измерительной среде с параметрами: ионна сила (u 0,02; рИ 7,3; . Концентрацию эритроцитов в пробе довод т разбавлением ее измерительной средой до 5-10 5-10 клеток на 1 мл. Величину поверхностного зар да эритроцита рассчитывают по формуле g 3-lG 4.(i5 CG5E а US Кл, где измер емой величиной вл етс U электрофоретическа подвижность (ЭФП) , мкм С -в зкость (дл используемых растворов равна 10 п) ; те -величина, обратна толщине двойного электрического сло , котора дл водных растворов одновалентных солей,(концентрации . См) равна-эег см/З.оьюсм : см ; S- площадь поверхности эрроцита , среднее значение которой равно 1, 65-ICT см.Example. Selection of fixed erythrocytes 1 ml of formalized sheep erythrocytes contained in physiological saline is precipitated by centrifugation at 350 for 5 min, followed by washing twice and resuspension in a measuring medium with the parameters: ionic strength (u 0.02; rI 7.3;; erythrocyte concentration; erythrocyte concentration; in the sample, it is diluted with a measuring medium to 5-10 5-10 cells per 1 ml. The surface charge of the erythrocyte is calculated using the formula g 3-lG 4. (i5 CG5E and US C, where the measured value is U electrophoretic mobility st (efp), μm C-viscosity (for solutions used is 10 n), the value is the inverse of the thickness of the electrical double layer, which for aqueous solutions of monovalent salts, (concentration. cm) is equal to e-cm / 3. cm; S is the surface area of the errocyte, the average value of which is 1, 65-ICT cm.
ЭФП измер ют методом микроэлектрофореза на.приборе Пармоквант-2 ( Карл Цейсе, Йена) в автоматическом режиме. Используемый прибор обеспечивает получение средних значений ЭФП и статистическу ю обработку данных. Сопоставительные данные полученных ЭФП эритроцитов в сравнении с определением специфичности препаратов (изготовленных на этих эритроцитах) по реакции РИГА даны в табл.AFP is measured by the method of microelectrophoresis on a Parmoquant-2 instrument (Carl Zeis, Jena) in an automatic mode. The instrument used provides the average values of the ESP and statistical data processing. Comparative data of the obtained EFP of erythrocytes in comparison with the determination of the specificity of drugs (made on these erythrocytes) by the reaction of RIGA are given in table.
Из приведенных данных контрол ЭФП восьми партий формализированных эритроцитов (колонка 1) в сопоставлении с титрами РИГА диагностикумов изготовленных на этих эритроцитах (колонки- 2 и 3), первые четыре партии и жидких, и сухих препаратов , имеют титры больше, чем 1/100, т.е. по техническим услови м Регламента производства их надо забраковать. У всех этих партий эритроцитов ЭФр меньше 2 мкм С В см. Препараты партий, 5-8 имеют титр меньше 1/100, т.е. соответствуют ТУ. ЭФП этих партий больше 2 мкм В см. Причем препарат , эритроциты которого имеют ЭФП 1,93 мкм см, имеют титр 1/150 и 1/300, т.е. вл ютс плохим а препарат, ЭФП которого 2,02 мкм см имеют титр 1/50, т.е. вл ютс хорошими. Таким образом, нижн граница значений ЭФП, при которой необходимо проводить отбра ковку эритроцитов, равна 2 мкм С- В см или 3,3-10 Кл.Eight batches of formalized erythrocytes (column 1) compared with RIGA titers of diagnostics made on these erythrocytes (columns 2 and 3), the first four batches of both liquid and dry preparations have titers greater than 1/100, those. according to the technical conditions of the Production Regulations, they must be rejected. All these batches of red blood cells EFR less than 2 microns C In see Preparations of the parties, 5-8 have a titer less than 1/100, i.e. correspond to the specifications. The ESP of these batches is more than 2 μm V cm. Moreover, the preparation, the erythrocytes of which have an ESP of 1.93 μm cm, has a titer of 1/150 and 1/300, i.e. are bad and the preparation, whose EFP of 2.02 µm cm has a titer of 1/50, i.e. are good. Thus, the lower bound of the values of the ESP, at which it is necessary to reject the erythrocytes, is 2 µm C – B cm or 3.3–10 Kl.
Верхн граница значений ЭФП фиксированных эритроцитов определ етс природой поверхности нативных эритроцитов барана.Это значение оказалось равным 2,5 мкм Свсм илиThe upper limit of the EFP values of fixed erythrocytes is determined by the nature of the surface of the native erythrocytes of the ram. This value was found to be 2.5 µm Svcm or
4-1210 Кл.4-1210 Cl.
Визуальный контроль спонтаннойVisual control spontaneous
агглютинации не позвол ет вы вить плохие эритроциты и диагностикумы бракуют после их изготовлени , а , использование предлагаемого способа предотвращает выпуск неспецифического диагностикума. Кроме того, предлагаемый способ позвол ет проводить отбраковку эритроцитов быстро, сразу после их фиксации, т.е. отпадает необходимость длительного изготовлени диагностикумов на этих эритроцитах и постановки РИГА с донорскими сыворотками.agglutination does not allow detection of bad red blood cells and diagnosticums are rejected after their manufacture, and the use of the proposed method prevents the release of non-specific diagnosticum. In addition, the proposed method allows the rejection of red blood cells quickly, immediately after their fixation, i.e. there is no need for long-term production of diagnostic kits on these erythrocytes and staging RIGA with donor sera.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU833628557A SU1124975A1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Method of obtaining erythrocytic diagnosticum |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1124976A1 true SU1124976A1 (en) | 1984-11-23 |
Family
ID=21076799
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU833628557A SU1124975A1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Method of obtaining erythrocytic diagnosticum |
SU833628557K SU1124976A1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Method of obtaining sorbent |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU833628557A SU1124975A1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Method of obtaining erythrocytic diagnosticum |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (2) | SU1124975A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6869602B2 (en) * | 2002-02-20 | 2005-03-22 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army | Method for treating, preventing, or inhibiting enterotoxigenic Escherichia coli infections with bovine red blood cells |
-
1983
- 1983-07-19 SU SU833628557A patent/SU1124975A1/en active
- 1983-07-19 SU SU833628557K patent/SU1124976A1/en active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6869602B2 (en) * | 2002-02-20 | 2005-03-22 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army | Method for treating, preventing, or inhibiting enterotoxigenic Escherichia coli infections with bovine red blood cells |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
SU1124975A1 (en) | 1984-11-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Mahoney | Bovine babesiosis: preparation and assessment of complement fixing antigens | |
Kritzman et al. | Studies of a Waldenström-type macroglobulin with rheumatoid factor properties | |
EP0305337B1 (en) | Method for the detection of antigens and/or antibodies, and a kit for carrying out the method | |
DE60037362T2 (en) | Backward determination of ABO blood groups | |
Kelen et al. | Rapid detection of Australia/SH antigen and antibody by a simple and sensitive technique of immunoelectronmicroscopy | |
US10456791B2 (en) | Method and apparatus for performing contactless optically-induced dielectrophoresis for separation of circulating tumor cells | |
DD202178A5 (en) | METHOD AND REAGENT FOR THE STUDY OF ANTIGEN ANTIBODY REACTIONS | |
DE2604844C3 (en) | Method for the detection of hepatitis B surface antigen in human blood | |
DE3879085T2 (en) | SNRNP-A-ANTIGEN AND FRAGMENTS THEREOF. | |
DE3105555C2 (en) | ||
SU1124976A1 (en) | Method of obtaining sorbent | |
CN111208306A (en) | Method for measuring expression quantity of nicotinic acetylcholine receptor in rat lymphocyte | |
Redman et al. | Comparison of IgM and IgG anti-A and anti-B levels in Asian, Caucasian and Negro donors in the North West Thames Region | |
WO2002090989A2 (en) | Method for detecting blood cell antigens and the antibodies in response to the same | |
Magni et al. | Hydrogel nanoparticle harvesting of plasma or urine for detecting low abundance proteins | |
DE2714751C2 (en) | ||
DE2907228C2 (en) | Immunochemical determination for the determination of the LDH 1 activity | |
EP2634584A1 (en) | Screening method for detecting samples with antiphospholipid antibodies | |
Linder et al. | Random distribution of exogenous lithium in nasal secretion and its application in substance determination | |
RU2526820C1 (en) | Method for titration of group abo antibodies | |
Narayan et al. | A modified disc electrophoretic method for animal blood serum proteins | |
US4139606A (en) | Preparation of antigen and test for heterophil antibody | |
JP2005274497A (en) | Blood separation method and device | |
US4228148A (en) | Heterophil antibody differentiation (HAD) test | |
Diggs | Immunodiffusion studies of Plasmodium berghei: interactions of an extract of the erythrocytic forms with rabbit antisera |