Nothing Special   »   [go: up one dir, main page]

SU1124976A1 - Method of obtaining sorbent - Google Patents

Method of obtaining sorbent Download PDF

Info

Publication number
SU1124976A1
SU1124976A1 SU833628557K SU3628557K SU1124976A1 SU 1124976 A1 SU1124976 A1 SU 1124976A1 SU 833628557 K SU833628557 K SU 833628557K SU 3628557 K SU3628557 K SU 3628557K SU 1124976 A1 SU1124976 A1 SU 1124976A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
red blood
blood cells
erythrocytes
diagnosticum
charge
Prior art date
Application number
SU833628557K
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Анатолий Игнатьевич Мирошников
Александр Викторович Темнов
Ольга Владимировна Савицкая
Маргарита Владимировна Дулатова
Александр Юсупович Иванов
Надежда Константиновна Призова
Анна Константиновна Анфиногенова
Original Assignee
Институт биологической физики АН СССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биологической физики АН СССР filed Critical Институт биологической физики АН СССР
Application granted granted Critical
Publication of SU1124976A1 publication Critical patent/SU1124976A1/en

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

ii

(L

Jim СО ЧJim soo h

а:but:

Изобретение относитс  к вакцинно-сывороточному делу и может быть использовано, в технологии получени  эритроцитарных диагностикумов медицинского.и. ветеринарного назначени .The invention relates to a vaccine serum case and can be used in the technology for obtaining erythrocyte diagnostics of medical and medical. veterinary prescribing.

В патентной и научно-технической литературе не известны способы отбора эритроцитов дл  получени  эритроцитарного диагностикума.Erythrocyte selection methods for obtaining erythrocyte diagnosticum are not known in the patent and scientific literature.

Целью изобретени   вл етс  созДс ние способа отбора эритроцитов дл  получени  эритроцитарного диагностикума .The aim of the invention is to create a method for selecting red blood cells to obtain an erythrocyte diagnosticum.

Поставленна  цель достигаетс  те что согласно способу отбора эритроцитов дл  получени  эритроцитарного диагностикума, заключающемус  в том, что эритроциты выдел ют из донорской крови, фиксируют, далее определ ют зар д фиксированных эритроцитов и в качестве исходного сырь  используют эритроциты с зар дом 4,12-10 - 3, Кл.The goal is achieved by the fact that, according to the method of selecting red blood cells to obtain an erythrocyte diagnosticum, which consists in that red blood cells are separated from donor blood, fixed, then the charge of fixed red blood cells is determined and erythrocytes with a charge of 4.12-10 are used as the starting material - 3, Cl.

Способ осуществл етс  следующим образом. После получени  цельной крови (например, бараньей) из нее выдел ют эритроциты, затем их фиксируют формалином и подвергают аналитическому или препаративному клеточному электрофорезу, определ ют зар д, а в качестве частицтносителей антигенов в дальнейшем производстве диагностикумов из всей попул ции используют эритроциты с зар дом 4,1210 - 3, Кл.The method is carried out as follows. After obtaining whole blood (e.g. lamb), erythrocytes are extracted from it, then they are fixed with formalin and subjected to analytical or preparative cell electrophoresis, charge is determined, and further erythrocytes with charge of antigens are used as particle carriers of antigens. 4.1210-3, Cl.

При технической реализации предглагаемого сйособа дл  отбора эритроцитов предварительно устанавливают граничное значение величины зар да, при снижении которой у фиксированных эритроцитов ведут выбраховку эритроцитов. Граничные значени  можно определить однократным определением зар да фиксированных эритроцитов; при параллельном контроле диагностикумов, изготовленных на этих эритроцитах. Согласно Регламенту производства контроль качества диагностикума осуществл етс  в реакции РИГА с гипериммунными сыворотками животных и сыворотками здоровых доноров, т.е. путем градуировки , как проиллюстрировано в примере. Причем по техническим ус .пови м Регламента производства диагностикум считаетс  специфичным если титр его с сывороткой здорЪвых доноров в реакции РИГА менее чем 1/100.In the technical implementation of the proposed method for selection of erythrocytes, the limiting value of the charge value is preliminarily established, with a decrease in which for fixed erythrocytes, erythrocytes are screened. Boundary values can be determined by a single determination of the charge of fixed erythrocytes; with parallel monitoring of diagnostic kits made on these erythrocytes. According to the Production Regulations, the quality control of diagnosticum is carried out in the reaction of RIGA with the hyperimmune sera of animals and the sera of healthy donors, i.e. by graduation, as illustrated in the example. Moreover, according to the technical regulations of the Production Regulations, the diagnosticum is considered specific if its titer with serum of healthy donors in the RIGA reaction is less than 1/100.

Пример. Отбор фиксированных эритроцитов 1 мл формализированных эритроцитов барана, содержащихс  в физиологическом растворе, осаждают центрифугированием при 350 в течение 5 мин с последующей двухкратной отмывкой и ресуспензированием в измерительной среде с параметрами: ионна  сила (u 0,02; рИ 7,3; . Концентрацию эритроцитов в пробе довод т разбавлением ее измерительной средой до 5-10 5-10 клеток на 1 мл. Величину поверхностного зар да эритроцита рассчитывают по формуле g 3-lG 4.(i5 CG5E а US Кл, где измер емой величиной  вл етс  U электрофоретическа  подвижность (ЭФП) , мкм С -в зкость (дл  используемых растворов равна 10 п) ; те -величина, обратна  толщине двойного электрического сло , котора  дл  водных растворов одновалентных солей,(концентрации . См) равна-эег см/З.оьюсм : см ; S- площадь поверхности эрроцита , среднее значение которой равно 1, 65-ICT см.Example. Selection of fixed erythrocytes 1 ml of formalized sheep erythrocytes contained in physiological saline is precipitated by centrifugation at 350 for 5 min, followed by washing twice and resuspension in a measuring medium with the parameters: ionic strength (u 0.02; rI 7.3;; erythrocyte concentration; erythrocyte concentration; in the sample, it is diluted with a measuring medium to 5-10 5-10 cells per 1 ml. The surface charge of the erythrocyte is calculated using the formula g 3-lG 4. (i5 CG5E and US C, where the measured value is U electrophoretic mobility st (efp), μm C-viscosity (for solutions used is 10 n), the value is the inverse of the thickness of the electrical double layer, which for aqueous solutions of monovalent salts, (concentration. cm) is equal to e-cm / 3. cm; S is the surface area of the errocyte, the average value of which is 1, 65-ICT cm.

ЭФП измер ют методом микроэлектрофореза на.приборе Пармоквант-2 ( Карл Цейсе, Йена) в автоматическом режиме. Используемый прибор обеспечивает получение средних значений ЭФП и статистическу ю обработку данных. Сопоставительные данные полученных ЭФП эритроцитов в сравнении с определением специфичности препаратов (изготовленных на этих эритроцитах) по реакции РИГА даны в табл.AFP is measured by the method of microelectrophoresis on a Parmoquant-2 instrument (Carl Zeis, Jena) in an automatic mode. The instrument used provides the average values of the ESP and statistical data processing. Comparative data of the obtained EFP of erythrocytes in comparison with the determination of the specificity of drugs (made on these erythrocytes) by the reaction of RIGA are given in table.

Из приведенных данных контрол  ЭФП восьми партий формализированных эритроцитов (колонка 1) в сопоставлении с титрами РИГА диагностикумов изготовленных на этих эритроцитах (колонки- 2 и 3), первые четыре партии и жидких, и сухих препаратов , имеют титры больше, чем 1/100, т.е. по техническим услови м Регламента производства их надо забраковать. У всех этих партий эритроцитов ЭФр меньше 2 мкм С В см. Препараты партий, 5-8 имеют титр меньше 1/100, т.е. соответствуют ТУ. ЭФП этих партий больше 2 мкм В см. Причем препарат , эритроциты которого имеют ЭФП 1,93 мкм см, имеют титр 1/150 и 1/300, т.е.  вл ютс  плохим а препарат, ЭФП которого 2,02 мкм см имеют титр 1/50, т.е.  вл ютс  хорошими. Таким образом, нижн   граница значений ЭФП, при которой необходимо проводить отбра ковку эритроцитов, равна 2 мкм С- В см или 3,3-10 Кл.Eight batches of formalized erythrocytes (column 1) compared with RIGA titers of diagnostics made on these erythrocytes (columns 2 and 3), the first four batches of both liquid and dry preparations have titers greater than 1/100, those. according to the technical conditions of the Production Regulations, they must be rejected. All these batches of red blood cells EFR less than 2 microns C In see Preparations of the parties, 5-8 have a titer less than 1/100, i.e. correspond to the specifications. The ESP of these batches is more than 2 μm V cm. Moreover, the preparation, the erythrocytes of which have an ESP of 1.93 μm cm, has a titer of 1/150 and 1/300, i.e. are bad and the preparation, whose EFP of 2.02 µm cm has a titer of 1/50, i.e. are good. Thus, the lower bound of the values of the ESP, at which it is necessary to reject the erythrocytes, is 2 µm C – B cm or 3.3–10 Kl.

Верхн   граница значений ЭФП фиксированных эритроцитов определ етс  природой поверхности нативных эритроцитов барана.Это значение оказалось равным 2,5 мкм Свсм илиThe upper limit of the EFP values of fixed erythrocytes is determined by the nature of the surface of the native erythrocytes of the ram. This value was found to be 2.5 µm Svcm or

4-1210 Кл.4-1210 Cl.

Визуальный контроль спонтаннойVisual control spontaneous

агглютинации не позвол ет вы вить плохие эритроциты и диагностикумы бракуют после их изготовлени , а , использование предлагаемого способа предотвращает выпуск неспецифического диагностикума. Кроме того, предлагаемый способ позвол ет проводить отбраковку эритроцитов быстро, сразу после их фиксации, т.е. отпадает необходимость длительного изготовлени  диагностикумов на этих эритроцитах и постановки РИГА с донорскими сыворотками.agglutination does not allow detection of bad red blood cells and diagnosticums are rejected after their manufacture, and the use of the proposed method prevents the release of non-specific diagnosticum. In addition, the proposed method allows the rejection of red blood cells quickly, immediately after their fixation, i.e. there is no need for long-term production of diagnostic kits on these erythrocytes and staging RIGA with donor sera.

Claims (1)

57) СПОСОБ ОТБОРА ЭРИТРОЦИТОВ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ. ЭРИТРОЦИТАРНОГО ДИАГНОСТИКУМА, заключающийся в том, что эритроциты выделяют из донорской; крови, фиксируют, далее определяют заряд фиксированных эритроцитов и в качестве исходного сырья изполъзуют эритроциты с зарядом 4,12 ΊΟ'1 3,3Ί0η Кл.57) METHOD FOR SELECTING RYTHROCYTES TO OBTAIN. Erythrocyte diagnostics, consisting in the fact that red blood cells are isolated from the donor; blood, they are fixed, then the charge of fixed red blood cells is determined and erythrocytes with a charge of 4.12 ΊΟ ' 1 3.3Ί0 η Cl are used as feedstock. Изобретение относится к вакцинно-сывороточному делу и может быть использовано, в технологии получения эритроцитарных диагностикумов медицинского.и. ветеринарного назначения.The invention relates to a vaccine-serum case and can be used in the technology of obtaining red blood cell diagnosticum medical. veterinary appointment. В патентной и научно-технической литературе не известны способы отбора эритроцитов для получения эритроцитарного диагностикума.In the patent and scientific literature, there are no known methods for the selection of red blood cells to obtain a red blood cell diagnosticum. Целью изобретения является создание способа отбора эритроцитов для получения эритроцитарного диагностикума .The aim of the invention is to provide a method for the selection of red blood cells to obtain a red blood cell diagnosticum. Поставленная цель достигается тем что согласно способу Отбора эритроцитов для получения эритроцитарного диагностикума, заключающемуся в том, что эритроциты выделяют из донорской крови, фиксируют, далее определяют заряд фиксированных эритроцитов и в качестве исходного сырья используют эритроциты с зарядом 4,12· 10**2 - 3,3-НУ’1 Кл.This goal is achieved by the fact that according to the method of selecting red blood cells to obtain an erythrocyte diagnosticum, which consists in the fact that red blood cells are extracted from donated blood, they are fixed, then the charge of fixed red blood cells is determined and red blood cells with a charge of 4.12 · 10 ** 2 - are used as feedstock 3,3-NU ' 1 Cl. Способ осуществляется следующим образом. После получения цельной крови (например, бараньей) из нее выделяют эритроциты, затем их фиксируют формалином и подвергают аналитическому или препаративному клеточному электрофорезу, определяют заряд, а в качестве частиц-носителей антигенов в дальнейшем производстве диагностикумов из всей популяции используют эритроциты с зарядом 4,12·10“ - 3,3·10~'2' Кл.The method is as follows. After obtaining whole blood (for example, lamb), red blood cells are extracted from it, then they are fixed with formalin and subjected to analytical or preparative cell electrophoresis, the charge is determined, and erythrocytes with a charge of 4.12 are used as particles-carriers of antigens in the further production of diagnosticum from the whole population · 10 “ ! Ζ - 3.3 · 10 ~ ' 2 ' Cl. При технической реализации предлагаемого способа для отбора эритроцитов предварительно устанавливают граничное значение величины заряда, при снижении которой у фиксированных эритроцитов ведут выбраковку эритроцитов. Граничные значения можно определить однократным определением заряда фиксированных эритроцитов: при параллельном контроле диагностикумов, изготовленных на этих эритроцитах. Согласно Регламенту производства контроль качества диагностикума осуществляется в реакции ΡΗΓΑ с гипериммунными сыворотками животных и сыворотками здоровых доноров, т.е. путем ’градуировки, как проиллюстрировано в примере. Причем по техническим условиям Регламента производства диагностикум считается специфичным если титр его с сывороткой здоровых доноров в реакции ΡΗΓΑ менее чем 1/100.In the technical implementation of the proposed method for the selection of red blood cells, a boundary value of the charge value is preliminarily set, upon reduction of which red blood cells are discarded in fixed red blood cells. Boundary values can be determined by a single determination of the charge of fixed red blood cells: with parallel monitoring of diagnostics made on these red blood cells. According to the Production Regulations, the quality control of the diagnosticum is carried out in the reaction of ΡΗΓΑ with hyperimmune animal sera and healthy donor sera, i.e. by graduation, as illustrated in the example. Moreover, according to the technical conditions of the Production Regulations, a diagnosticum is considered specific if its titer with healthy donor serum in the ΡΗΓΑ reaction is less than 1/100. Пример. Отбор фиксированных эритроцитов 1 мл формализированных эритроцитов барана, содержащихся в физиологическом растворе, осаждают центрифугированием при £ =· 350 в течение 5 мин с последующей двухкратной отмывкой и ресуспензированием в измерительной среде с пара метрами: ионная сила р =0,02; pH 7,3; t=25°C. Концентрацию эритроцитов в пробе доводят разбавлением ее измерительной средой до 5·1Ό6 5· 10 2 клеток на 1 мл. Величину поверхностного заряда эритроцита рассчитывают по формуле g =3 · 10'Т|7« U5 CG 5Е = 10'” J те U5 Кл, где измеряемой величиной является U электрофоретическая подвижность (ЭФП) , мкм С* В*’см; -вязкость (для используемых растворов равна 10 п) ; % -величина, обратная толщине двойного электрического слоя, которая для водных растворов одновалентных солей,(концентрации, См) равна эгЕсм/Ш · 10® см'1 10 см~* ; S- площадь поверхности эритроцита, среднее значение которой равно 1,65 · КГ^ см2.Example. The sampling of fixed red blood cells 1 ml of formalized sheep erythrocytes contained in physiological saline is precipitated by centrifugation at £ = · 350 for 5 min, followed by two times washing and resuspension in a measuring medium with the following parameters: ionic strength p = 0.02; pH 7.3; t = 25 ° C. The concentration of red blood cells in the sample was adjusted by diluting it with a measuring medium to 5 · 1Ό 6 5 · 10 2 cells per 1 ml. The surface charge of the red blood cell is calculated by the formula g = 3 · 10 ' T | 7 “U5 CG 5Е = 10 '” J those U5 C, where the measured quantity is U electrophoretic mobility (EF), μm C * B *'cm; - viscosity (for used solutions is equal to 10 _g p); % is the reciprocal of the thickness of the double electric layer, which for aqueous solutions of monovalent salts (concentration, cm) is equal to eGeSm / W · 10® cm ' 1 10 + g cm ~ *; S is the surface area of the red blood cell, the average value of which is 1.65 · KG ^ cm 2 . ЭФП измеряют методом микроэлектрофореза на приборе 11Пармоквант-2’1 (’Карл Цейсе1', Йена) в автоматическом режиме. Используемый прибор обеспечивает получение средних значений ЭФП и статистическую обработку данных. Сопоставительные данные полученных ЭФП эритроцитов в сравнении с определением специфичности препаратов (изготовленных на этих эритроцитах) по реакции ΡΗΓΑ даны в табл.EFP is measured by the method of microelectrophoresis on an instrument 11 Parmokvant-2 ' 1 (' Karl Zeise 1 ', Jena) in automatic mode. The instrument used provides the average values of the EFP and statistical data processing. Comparative data of the obtained EPC of erythrocytes in comparison with the determination of the specificity of the preparations (made on these erythrocytes) by the reaction ΡΗΓΑ are given in table. Иэ приведенных данных контроля ЭФП восьми партий формализированных эритроцитов (колонка 1) в сопоставлении с титрами ΡΗΓΑ диагностикумов, изготовленных на этих эритроцитах (колонки. 2 и 3), первые четыре партии и жидких, и сухих препаратов , имеют титры больше, чем 1/100, т.е. по техническим условиям Регламента производства их надо забраковать. У всех этих партий эритроцитов ЭФ(1 . меньше 2 мкмС В см. Препараты партий, 5-8 имеют титр меньше 1/100, т.е. соответствуют ТУ. ЭФП этих партий больше 2 мкм С~’ В*’ см. Причем препарат , эритроциты которого имеют ЭФП 1,93 мкм С'1 В'1 см, имеют титр 1/150 и 1/300, т.е. являются плохими, а препарат, ЭФП которого 2,02 мкм С'1 см имеют титр 1/50, т.е.According to the data of the EFP control of eight batches of formalized erythrocytes (column 1) in comparison with the ΑΓΑ titers of diagnosticums made on these erythrocytes (columns. 2 and 3), the first four batches of both liquid and dry preparations have titers greater than 1/100 , i.e. according to the technical conditions of the production regulations they must be rejected. All of these batches of erythrocytes have EF (1. Less than 2 μm C V cm. The preparations of batches 5-8 have a titer less than 1/100, i.e. they correspond to TU. the preparation, the red blood cells of which have an EFP of 1.93 μm C ' 1 B' 1 cm, have a titer of 1/150 and 1/300, i.e. they are bad, and the drug, the EFP of which 2.02 μm C ' 1 cm have a titer 1/50, i.e. являются хорошими. Таким образом, нижняя граница значений ЭФП, при которой необходимо проводить отбра- . ковку эритроцитов, равна 2 мкм См В”' см или 3,3- Ю'^Кл.are good. Thus, the lower limit of the values of the electron phase transition at which it is necessary to carry out the selection. erythrocyte forging, equal to 2 μm C m V ”cm or 3.3 - 10 '^ C. Верхняя граница значений ЭФП фиксированных эритроцитов определяется природой поверхности нативных эритроцитов барана.Это значение оказалось равным 2,5 мкм с’в'см или 4 · 12'10'2 Кл.The upper limit of the EFP values of fixed erythrocytes is determined by the nature of the surface of native sheep erythrocytes. This value turned out to be equal to 2.5 μm s'v'cm or 4 · 12'10 ' 2 C. Визуальный контроль спонтанной агглютинации не позволяет выявить плохие эритроциты и диагностикумы бракуют после их изготовления, а . использование предлагаемого способа предотвращает выпуск неспецифи3 ческого диагностикума. Кроме того, предлагаемый способ позволяет проводить отбраковку эритроцитов быстро, сразу после их фиксации, т.е. отпа дает необходимость длительного изготовления диагностикумов на этих эритроцитах и постановки ΡΗΓΑ с до норскими сыворотками.Visual control of spontaneous agglutination does not allow to identify bad red blood cells and diagnostics are rejected after their manufacture, as well. the use of the proposed method prevents the release of a non-specific diagnosticum. In addition, the proposed method allows the rejection of red blood cells quickly, immediately after their fixation, i.e. Otpa gives the need for long-term production of diagnosticums on these red blood cells and the setting of ΡΗΓΑ with donor sera. ЭФП формалинизи- EFP formalin- Титр диагностикума в ΡΗΓΑ с донорской Title of diagnosticum in ΡΗΓΑ with donor пп pp рованных эритро- erythrocytes сывороткой serum цитов, мкм С*’ В“’ см cit, μm C * ’B“ ’cm жидкий препарат liquid preparation сухой препарат dry preparation
11,4111.41 21,4721.47 31,5931.59 41,9341.93 1/12001/1200 1/12001/1200 1/3001/300 1/3001/300 1/12001/1200 1/12001/1200 1/6001/600 1/1501/150 52,0252.02 62,1362.13 72,2372.23 82,3182.31 1/501/50 1/501/50 1/501/50 1/50 01/50 0
SU833628557K 1983-07-19 1983-07-19 Method of obtaining sorbent SU1124976A1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833628557A SU1124975A1 (en) 1983-07-19 1983-07-19 Method of obtaining erythrocytic diagnosticum

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1124976A1 true SU1124976A1 (en) 1984-11-23

Family

ID=21076799

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU833628557A SU1124975A1 (en) 1983-07-19 1983-07-19 Method of obtaining erythrocytic diagnosticum
SU833628557K SU1124976A1 (en) 1983-07-19 1983-07-19 Method of obtaining sorbent

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU833628557A SU1124975A1 (en) 1983-07-19 1983-07-19 Method of obtaining erythrocytic diagnosticum

Country Status (1)

Country Link
SU (2) SU1124975A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6869602B2 (en) * 2002-02-20 2005-03-22 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Method for treating, preventing, or inhibiting enterotoxigenic Escherichia coli infections with bovine red blood cells

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6869602B2 (en) * 2002-02-20 2005-03-22 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Method for treating, preventing, or inhibiting enterotoxigenic Escherichia coli infections with bovine red blood cells

Also Published As

Publication number Publication date
SU1124975A1 (en) 1984-11-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mahoney Bovine babesiosis: preparation and assessment of complement fixing antigens
Kritzman et al. Studies of a Waldenström-type macroglobulin with rheumatoid factor properties
EP0305337B1 (en) Method for the detection of antigens and/or antibodies, and a kit for carrying out the method
DE60037362T2 (en) Backward determination of ABO blood groups
Kelen et al. Rapid detection of Australia/SH antigen and antibody by a simple and sensitive technique of immunoelectronmicroscopy
US10456791B2 (en) Method and apparatus for performing contactless optically-induced dielectrophoresis for separation of circulating tumor cells
DD202178A5 (en) METHOD AND REAGENT FOR THE STUDY OF ANTIGEN ANTIBODY REACTIONS
DE2604844C3 (en) Method for the detection of hepatitis B surface antigen in human blood
DE3879085T2 (en) SNRNP-A-ANTIGEN AND FRAGMENTS THEREOF.
DE3105555C2 (en)
SU1124976A1 (en) Method of obtaining sorbent
CN111208306A (en) Method for measuring expression quantity of nicotinic acetylcholine receptor in rat lymphocyte
Redman et al. Comparison of IgM and IgG anti-A and anti-B levels in Asian, Caucasian and Negro donors in the North West Thames Region
WO2002090989A2 (en) Method for detecting blood cell antigens and the antibodies in response to the same
Magni et al. Hydrogel nanoparticle harvesting of plasma or urine for detecting low abundance proteins
DE2714751C2 (en)
DE2907228C2 (en) Immunochemical determination for the determination of the LDH 1 activity
EP2634584A1 (en) Screening method for detecting samples with antiphospholipid antibodies
Linder et al. Random distribution of exogenous lithium in nasal secretion and its application in substance determination
RU2526820C1 (en) Method for titration of group abo antibodies
Narayan et al. A modified disc electrophoretic method for animal blood serum proteins
US4139606A (en) Preparation of antigen and test for heterophil antibody
JP2005274497A (en) Blood separation method and device
US4228148A (en) Heterophil antibody differentiation (HAD) test
Diggs Immunodiffusion studies of Plasmodium berghei: interactions of an extract of the erythrocytic forms with rabbit antisera