RU2809513C1 - Способ получения биомассы диатомовой водоросли nanofrustulum shiloi - Google Patents
Способ получения биомассы диатомовой водоросли nanofrustulum shiloi Download PDFInfo
- Publication number
- RU2809513C1 RU2809513C1 RU2023125013A RU2023125013A RU2809513C1 RU 2809513 C1 RU2809513 C1 RU 2809513C1 RU 2023125013 A RU2023125013 A RU 2023125013A RU 2023125013 A RU2023125013 A RU 2023125013A RU 2809513 C1 RU2809513 C1 RU 2809513C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- nanofrustulum
- shiloi
- culture
- nutrient medium
- diatom
- Prior art date
Links
- 241001535153 Nanofrustulum shiloi Species 0.000 title claims abstract description 32
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 title claims abstract description 20
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 18
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 34
- 238000005286 illumination Methods 0.000 claims abstract description 11
- 239000013535 sea water Substances 0.000 claims abstract description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 7
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 8
- 230000001186 cumulative effect Effects 0.000 description 7
- 241000195493 Cryptophyta Species 0.000 description 5
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 5
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 4
- 230000005587 bubbling Effects 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 2
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 2
- 239000003963 antioxidant agent Substances 0.000 description 2
- 230000003078 antioxidant effect Effects 0.000 description 2
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 2
- SJWWTRQNNRNTPU-ABBNZJFMSA-N fucoxanthin Chemical compound C[C@@]1(O)C[C@@H](OC(=O)C)CC(C)(C)C1=C=C\C(C)=C\C=C\C(\C)=C\C=C\C=C(/C)\C=C\C=C(/C)C(=O)C[C@]1(C(C[C@H](O)C2)(C)C)[C@]2(C)O1 SJWWTRQNNRNTPU-ABBNZJFMSA-N 0.000 description 2
- AQLRNQCFQNNMJA-UHFFFAOYSA-N fucoxanthin Natural products CC(=O)OC1CC(C)(C)C(=C=CC(=CC=CC(=CC=CC=C(/C)C=CC=C(/C)C(=O)CC23OC2(C)CC(O)CC3(C)C)C)CO)C(C)(O)C1 AQLRNQCFQNNMJA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 2
- 241000206761 Bacillariophyta Species 0.000 description 1
- 241000192699 Chroococcales Species 0.000 description 1
- 241000192700 Cyanobacteria Species 0.000 description 1
- 241001147476 Cyclotella Species 0.000 description 1
- 241001646657 Detonula confervacea Species 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- 244000040153 Karatas plumieri Species 0.000 description 1
- 235000004874 Karatas plumieri Nutrition 0.000 description 1
- 241000293869 Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium Species 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000003674 animal food additive Substances 0.000 description 1
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 1
- 230000000035 biogenic effect Effects 0.000 description 1
- 235000021466 carotenoid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001747 carotenoids Chemical class 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 229910052729 chemical element Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000003653 coastal water Substances 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 1
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 229930003935 flavonoid Natural products 0.000 description 1
- 150000002215 flavonoids Chemical class 0.000 description 1
- 235000017173 flavonoids Nutrition 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 description 1
- 238000004237 preparative chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
Abstract
Изобретение относится к биотехнологии. Предложен способ получения биомассы диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi, предусматривающий культивирование в накопительном режиме в течение 20 сут в плоскопараллельных культиваторах с рабочей толщиной слоя 2-5 см при 22±1°С, круглосуточном освещении 11,5 клк на питательной среде, приготовленной на основе стерильной морской воды соленостью 17%о. Изобретение обеспечивает расширение арсенала способов культивирования Nanofrustulum shiloi с повышенным выходом биомассы. 2 ил., 1 табл., 2 пр.
Description
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при промышленном получении биомассы диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi.
Микроводоросль Nanofrustulum shiloi является ценным сырьем для получения биологически активных веществ. Она характеризуется высоким содержанием липидов (27-28% от сухой биомассы) и каротиноидов, в частности фукоксантина (Demirel et al., 2020), содержит флавоноиды и оксилипины ( et al., 2022), что предполагает возможность ее массового культивирования. Nanofrustulum shiloi проявляет антиоксидантную и противомикробную активность в отношении грамотрицательных Е. coli и S. typhimurium и грамположительных S. aureus. Благодаря этим ценным качествам, биомасса Nanofrustulum shiloi может применяться в пищевой промышленности, медицине, а также в качестве кормовых добавок при культивировании гидробионтов.
Известен способ, в котором микроводоросль Nanofrustulum shiloi культивируют на питательной среде BG11 (Stanier et al., 1971) с содержанием (г⋅л1): NaNO3 - 1,5; KHPO4 - 0,04; Na2EDTA - 0,001; Fe(NH4)3(C6H5O7)2 - 0,006, в плоскопараллельных культиваторах объемом 7 л с барботажной системой аэрации U-образного типа и L-образного типа со скоростью аэрации 4 л⋅мин-1 при освещенности 50 мк⋅моль⋅фотон⋅м2⋅с-1 и температуре 22±2°С в накопительном режиме культивирования (Demirel et al., 2020). При таких условиях культивирования зафиксирована максимальная плотность культуры 0,38 г⋅л-1 при аэрации L-образного типа и 0,62 г⋅л-1 при аэрации U-образного типа.
Известен способ культивирования Nanofrustulum shiloi на питательной среде BG11 (Stanier et al., 1971), приготовленной на основе искусственной морской воды в трубчатом фотобиоректорах объемом 2 л с аэрацией 5 л⋅мин-1 при освещенности 300 мк⋅моль⋅фотон⋅м2⋅с-1 и температуре 21±2°С в накопительном режиме культивирования. В конце данного эксперимента биомасса достигала своей максимальной плотности 0,6 г⋅л-1 ( et al., 2023).
Наиболее близким по технической сущности к заявляемому способу является способ выращивания Nanofrustulum shiloi на питательной среде F/2 (Guillard, Ryther, 1963) с содержанием NaNO3 - 7,5 мг⋅л-1; NaH2PO4 × 2Н2 О - 5 мг⋅л-1; Na2SiO3×9H2O - 30 мг⋅л-1; Na2EDTA - 4,36 мг⋅л-1; FeSO4 × 7H2O - 3,15 мг⋅л-1 в культиваторах объемом 15 л при освещенности 3 клк с фотопериодом 12:12 при температуре 20°С в накопительном режиме культивирования ( et al., 2021). В начале стационарной фазы роста культура достигала максимальной плотности 0,1 г⋅л-1. Недостаток данного метода заключается в получении небольшого количества биомассы культуры Nanofrustulum shiloi из-за использования обедненной биогенными элементами питательной среды F/2.
Задачей изобретения является усовершенствование способа путем уточнения состава питательной среды для культивирования Nanofrustulum shiloi с целью увеличения скорости роста культуры.
Технический результат поставленной задачи заключается в увеличении выхода биомассы микроводоросли в результате оптимизации соотношений и концентраций биогенных элементов в питательной среде, приготовленной на основе стерильной морской воды.
Заявленный технический результат достигается тем, что в Способе получения биомассы диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi, предусматривающий культивирование в накопительном режиме, культуру диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi выращивают в течение 20 суток в плоскопараллельных культиваторах с рабочей толщиной слоя 2-5 см и при температуре 22±1°С, круглосуточном освещении 11,5 клк на оптимальной питательной среде, приготовленной на основе стерильной морской воды соленостью 17%о, имеющей состав, г⋅л-1: Na2SiO3 × 9H2O - 0,150; NaNO3 - 0,3875; NaH2PO4 × 2H2O - 0,045; Na2EDTA - 0,017; FeSO4 × 7H2O - 0,01; NaMoO4 × H2O - 1,2⋅10-5; CuSO4 × 5 H2O - 2,8⋅10-5; ZnSO4 × 7 H2O - 4,4⋅10-5; CoCl2 × 6 H2O - 2⋅10-5; MnCl2 x 4 H2O - 3,6⋅10-5.
Общим для прототипа ( et al., 2021) и заявляемого способа является применение накопительного режима культивирования. Основное отличие от прототипа заключается в том, что в заявляемом способе при культивировании используется питательная среда, обогащенная макро- и микроэлементами, количественный состав которой авторами подобран в результате экспериментов, учитывая соотношение долей химических элементов в биомассе Nanofrustulum shiloi.
Способ поясняется описанием и иллюстрациями. Фиг. 1 - Динамика плотности накопительной культуры Nanofrustulum shiloi при различной концентрации биогенных элементов в питательной среде, выращенной в культиваторе с рабочей толщиной освещаемого слоя 5 см. Фиг. 2 - Динамика плотности накопительной культуры Nanofrustulum shiloi при различной концентрации биогенных элементов в питательной среде, выращенной в культиваторе с рабочей толщиной освещаемого слоя 2 см.
Оптимизация питательной среды заключается в увеличении концентрации всех биогенных элементов среды, учитывая истинные потребности культуры Nanofrustulum shiloi, соответственно представлениям о субстрат зависимом росте микроорганизмов в культуре (Тренкеншу, 2010 а, б). Показано, что использование обедненной стандартных питательных сред F/2 и BG11 для интенсивного культивирования Nanofrustulum shiloi с целью накопления биомассы нецелесообразно (Demirel et al., 2020; Grubisict et al., 2021). При увеличении концентрации биогенных элементов продуктивность культуры возрастает (см. Фиг. 1). Максимальное значение плотности культуры в стационарной фазе роста так же, как и продуктивность зависит от концентрации биогенных элементов в среде.
Рассчитав доли биогенных элементов в биомассе по результатам химического анализа Nanofrustulum shiloi, была составлена оптимальная питательная среда для интенсивного культивирования (Табл. 1).
Выращивание осуществляли при круглосуточном освещении 11,5 клк в накопительном режиме в культиваторах с рабочей толщиной освещаемого слоя 2 см и 5 см. При таких условиях культивирования выход биомассы микроводоросли Nanofrustulum shiloi составляет 3,2 г сухого вещества на 1 л культуры в культиваторе с рабочей толщиной освещаемого слоя 2 см, и 2,2 г сухого вещества на 1 л культуры в культиваторе с рабочей толщиной освещаемого слоя 5 см (см. Фиг. 1 и Фиг. 2).
Способ культивирования бетопланктонной диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi реализуется следующим образом.
Для культивирования используют диатомовую водоросль Nanofrustulum shiloi, коллекционное хранение которой осуществляют на питательной среде F/2 при температуре 22±1°С. Для получения инокулята культуру водоросли в течение 7-8 дней выращивают методом накопительной культуры на среде F, в которой концентрации всех биогенных элементов увеличены в пять раз (5F) при освещении 6 клк и при непрерывном барботаже воздухом (1 л⋅мин-1⋅л-1 культуры).
Для засева культиваторов используют активно делящуюся культуру, взятую на линейной стадии роста, когда ее продуктивность максимальна. Суспензию клеток вносят в культиваторы из такого расчета, чтобы начальная плотность культур составляла не менее 0,1-0,2 г сухого вещества на 1 л культуры. Процесс культивирования осуществляют на модифицированной питательной среде (Табл. 1).
Пример 1
Для культивирования использовали вид Nanofrustulum shiloi, обнаруженный в обрастании полимерных материалов в полузакрытой части Карантинной бухты крымского прибрежья Черного моря (44036 56``N; 33°30 10``Е) (Blaginina, Ryabushko, 2021).
Для получения инокулята культуру в течение 10 суток выращивали методом накопительной культуры в колбах объемом 1 л при освещении 6 клк на питательной среде F, в которой концентрации всех биогенных элементов увеличены в пять раз (5F). Полученную культуру использовали в качестве инокулята.
Культуру переносили в культиваторы плоскопараллельного типа объемом Зле рабочей толщиной слоя 5 см, содержащие предлагаемую в изобретении питательную среду, оптимальную по соотношению биогенных элементов, приготовленную на основе стерильной морской воды с соленостью 17%: Na2SiO3 × 9H2O - 0,150, NaNO3 - 0,3875, NaH2PO4 × 2H2O - 0,045, Na2EDTA - 0,017, FeSO4 × 7H2O - 0,010, NaMoO4 × H20 - 1,2⋅10-5; CuSO4 × 5 H2O - 2,8⋅10-5, ZnSO4 × 7 H2O - 4,4⋅10-5, CoCl2 × 6 H2O - 2⋅10-5, MnCl2 × 4 H2O - 3,6⋅10-5, концентрация биогенных элементов в которой рассчитаны на 3 г⋅л-1 сухой массы, и продолжали выращивать в течение 20 суток при освещении 11,5 клк и непрерывном барботаже воздухом со скоростью 1 л⋅мин-1⋅л-1 культуры, и при температуре 22±1°С до плотности 2,2 г сухой биомассы на 1 л культуры. Выход сухой биомассы в стационарной фазе роста составил 2,2 г на 1 л культуры.
Пример 2
Активно делящуюся культуру водоросли Nanofrustulum shiloi, взятую на линейной стадии роста, когда ее продуктивность максимальна, переносили в культиваторы плоскопараллельного типа объемом 2 л с рабочей толщиной слоя 2 см, содержащие модифицированную питательную среду на основе стерилизованной морской воды с соленостью 17%, состав которой соответствует составу питательной среды в Примере 1, и продолжали выращивать в течение 20 суток при освещении 11,5 клк и непрерывном барботаже воздухом со скоростью 1 л⋅мин-1⋅л-1 культуры, и при температуре 22±1°С. В стационарной фазе роста плотность культуры достигла 3,2 г⋅л-1 сухой биомассы, что соответствовало ожидаемому значению максимальной плотности культуры, поскольку в эксперименте использовали предлагаемую питательную среду, рассчитанную на 3 г⋅л-1.
Таким образом, предложенная питательная среда и условия культивирования диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi обеспечивают продуктивность по биомассе в 10 раз выше, чем в известном способе. Предложенный способ является эффективным и может быть положен в основу промышленного культивирования диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi.
Работа выполнена в рамках темы госзадания №121030300149-0 "Исследование механизмов управления продукционными процессами в биотехнологических комплексах с целью разработки научных основ получения биологически активных веществ и технических продуктов морского генезиса"
Источники информации:
1. Тренкеншу Р.П. Простейшие модели роста микроводорослей. 5. Скорость энергообмена // Экология моря. - 2010 а. - Спец. вып. 80: Биотехнология водорослей. - С. 79-84.
2. Тренкеншу Р.П. Простейшие модели роста микроводорослей. 6. Предельные скорости роста // Экология моря. - 2010 б. - Спец. вып. 80: Биотехнология водорослей. - С. 85-91.
3. Blaginina A., Ryabushko L. Finding of a rare species of diatom Nanofrustulum shiloi (Lee, Reimer et Mcenery) Round, Hallsteinsen & Paasche, 1999 in the periphyton of the coastal waters of the Black Sea // International Journal on Algae. - 2021. - Vol. 23, iss. 3. - P. 247-256. doi:10.1615/InterJAlgae.v23.i3.40.
4. Demirel Z., Imamoglu E., Dalay M.C. Growth kinetics of Nanofrustulum Shiloi under different mixing conditions in flat-plate photobioreactor // Brazilian Archives of Biology and Technology. - 2020. - Vol. 63, iss. 4. - P. 1-8.
http://dx.doi.org/10.1590/1678-4324-2020190201.
5. A., Karatas. A.B., Demir D., Demirel Z., M., Conk-Dalay M. Manipulation in culture conditions of Nanofrustulum shiloi for enhanced fucoxanthin production and isolation by preparative chromatography // Molecules. - 2023. - Vol. 28, iss. 4. - P. 1-17. https://doi.org/10.3390/molecules28041988.
6. M., В., Z., Z., Vrana I., В., R., M.I. Bioprospecting of microalgae isolated from the Adriatic Sea: characterization of biomass, pigment, lipid and fatty acid composition, and antioxidant and antimicrobial activity // Molecules. - 2022. - Vol. 27, iss. 4. - P. 1-27. https://doi.org/10.3390/molecules27041248.
7. Guillard R.R.L., Ryther J. Studies on marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana husted and Detonula confervacea (cleve) gran // Canadian Journal of Microbiology. - 1963. - Vol. 8, iss. 2. - P. 229-239. https://doi.org/10.1139/m62-029.
8. Stanier R.Y., Kunisawa R., Mandel M., Cohen-Bazire G. Purification and properties of unicellular blue-green algae (order Chroococcales) // Bacteriological Reviews. - 1971. - Vol. 35, iss. 2. - P. 171-205. doi: 10.1128/br.35.2.171-205.1971.
Claims (1)
- Способ получения биомассы диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi, предусматривающий культивирование в накопительном режиме в культиваторах, отличающийся тем, что культуру диатомовой водоросли Nanofrustulum shiloi выращивают в течение 20 сут в плоскопараллельных культиваторах с рабочей толщиной слоя 2-5 см и при температуре 22±1°С, круглосуточном освещении 11,5 клк на питательной среде, приготовленной на основе стерильной морской воды соленостью 17%о, имеющей состав, г⋅л-1: Na2SiO3 × 9H2O - 0,150; NaNO3 - 0,3875; NaH2PO4 × 2H2O - 0,045; Na2EDTA - 0,017; FeSO4 × 7H2O - 0,01; NaMoO4 × H2O - 1,2⋅10-5; CuSO4 × 5 H2O - 2,8⋅10-5; ZnSO4 × 7 H2O - 4,4⋅10-5; CoCl2 × 6 H2O - 2⋅10-5; MnCl2 × 4 H2O - 3,6⋅10-5.
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2809513C1 true RU2809513C1 (ru) | 2023-12-12 |
Family
ID=
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2582182C2 (ru) * | 2014-09-25 | 2016-04-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Институт морских биологических исследований им. А.О.Ковалевского РАН" (ФГБУН ИМБИ) | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОМАССЫ ДИАТОМОВОЙ ВОДОРОСЛИ Cylindrotheca closterium |
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2582182C2 (ru) * | 2014-09-25 | 2016-04-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Институт морских биологических исследований им. А.О.Ковалевского РАН" (ФГБУН ИМБИ) | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОМАССЫ ДИАТОМОВОЙ ВОДОРОСЛИ Cylindrotheca closterium |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| EUGENIA A. SAR, INES SUNESEN "Nanofrustulum shiloi (Bacillariophyceae) from the Gulf of San Matias (Argentina): morphology, distribution and comments about nomenclature", 2003, Nova Hedwigia, N 77(3-4), p. 399-406. DEMIREL Z. et al. "Growth kinetics of Nanofrustulum shiloi under different mixing conditions in flat-plate photobioreactor";Brazilian archives of biology and technology, 2020, v. 63, e20190201, p. 1-8. * |
| GRUBISIC M. et al "Bioprospecting of microalgae isolated from the Adriatic Sea: characterization and antimicrobial activity"; Moleculs, 2022, v. 27, iss 4, p. 1-27. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Praveen et al. | Photosynthetic aeration in biological wastewater treatment using immobilized microalgae-bacteria symbiosis | |
| KR101577820B1 (ko) | 종속영양 미세조류의 신규 배양 방법 | |
| Çelekli et al. | Modeling of biomass production by Spirulina platensis as function of phosphate concentrations and pH regimes | |
| Barghbani et al. | Investigating the effects of several parameters on the growth of Chlorella vulgaris using Taguchi's experimental approach | |
| Yongmanltchal et al. | Growth and eicosapentaenoic acid production by Phaeodactylum tricornutum in batch and continuous culture systems | |
| US8673619B2 (en) | Production of cyanobacterial or algal biomass using chitin as a nitrogen source | |
| Rossignol et al. | Comparison of two membrane–photobioreactors, with free or immobilized cells, for the production of pigments by a marine diatom | |
| Lebeau et al. | Biotechnology of immobilized micro algae: a culture technique for the future | |
| Iamtham et al. | Biofixation of CO2 from a power plant through large-scale cultivation of Spirulina maxima | |
| Silva-Aciares et al. | Comparisons of the growth of six diatom species between two configurations of photobioreactors | |
| US10173913B2 (en) | Process of treating buchu mercaptan production wastewater using microalgae and chitin as a nitrogen source | |
| CN1607908A (zh) | 单细胞蛋白质作为鱼类和贝类饲料的用途 | |
| RU2809513C1 (ru) | Способ получения биомассы диатомовой водоросли nanofrustulum shiloi | |
| CN106010969B (zh) | 一种吞噬微囊藻的棕鞭毛虫的大规模培养方法 | |
| Lebeau et al. | A new photobioreactor for continuous marennin production with a marine diatom: influence of the light intensity and the immobilised-cell matrix (alginate beads or agar layer) | |
| Velichkova et al. | Treatment of wastewater originating from aquaculture and biomass production in laboratory algae bioreactor using different carbon sources | |
| Zibarev et al. | Use of Chlorella sorokiniana (Chlorellaceae, Chlorellales) microalgae for purification of brewing-industry wastewaters | |
| Trinh | Comparison of Growth of Chlorella vulgaris in Flat-Plate Photobioreactor Using Batch, Fed-Batch, and Repeated Fed-Batch Techniques with Various Concentrations of Walne Medium | |
| Imamoglu et al. | Semi-continuous cultivation of Haematococcus pluvialis for commercial production | |
| Plengsakul et al. | Plastic media reduced algal wall-growth of Chlorococcum humicola for the cultivation in internal-loop airlift photobioreactor | |
| Ibrahim et al. | Biological Co-existence of the Microalgae–Bacteria System in Dairy Wastewater using photo-bioreactor | |
| Wongsnansilp et al. | Evaluation of common wastewaters on the growth of alga Spirulina | |
| Lowrey et al. | Investigation of heterotrophic cultivation potential of Chlorella vulgaris and Tetraselmis chuii in controlled environment wastewater growth media from dairy, poultry and aquaculture industries | |
| US20160002588A1 (en) | Solid phase based high yield biofuel technology | |
| US20160376543A1 (en) | Method of culturing algae |