RU2619179C1 - Method for evaluating viral contamination of air - Google Patents
Method for evaluating viral contamination of air Download PDFInfo
- Publication number
- RU2619179C1 RU2619179C1 RU2016110894A RU2016110894A RU2619179C1 RU 2619179 C1 RU2619179 C1 RU 2619179C1 RU 2016110894 A RU2016110894 A RU 2016110894A RU 2016110894 A RU2016110894 A RU 2016110894A RU 2619179 C1 RU2619179 C1 RU 2619179C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- air
- viruses
- sampler
- rna
- virus
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Virology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, в частности к микробиологии, вирусологии, и может быть использовано для оценки вирусной обсемененности воздуха в помещениях предприятий и организаций различного профиля РНК-содержащими вирусами, возбудителями острых респираторных вирусных инфекций с целью их профилактики.The invention relates to medicine, in particular to microbiology, virology, and can be used to assess viral contamination of air in the premises of enterprises and organizations of various profiles with RNA-containing viruses, pathogens of acute respiratory viral infections with the aim of their prevention.
По частоте и количеству заболеваний острые респираторные заболевания (ОРЗ) занимают первое место в мире, составляя 95% всех инфекционных заболеваний. Смертность от ОРЗ на сегодняшний день остается стабильно высокой. Так, от гриппа ежегодно в мире умирают 2 миллиона человек. В Российской Федерации, по данным «Доклада о состоянии здоровья населения и организации здравоохранения по итогам деятельности органов исполнительной власти субъектов Российской Федерации за 2014 год» ежегодно на 100 тысяч населения приходится 4573,9 случаев инфекционных и паразитарных заболеваний (темп прироста 0,2%). В структуре инфекционной заболеваемости важное место отведено инфекционным заболеваниям органов дыхания.In the frequency and number of diseases, acute respiratory infections (ARI) occupy first place in the world, accounting for 95% of all infectious diseases. Mortality from acute respiratory infections today remains stably high. Thus, 2 million people die of influenza every year in the world. In the Russian Federation, according to the “Report on the state of population’s health and healthcare organization based on the results of the activities of the executive authorities of the constituent entities of the Russian Federation for 2014” annually per 100 thousand people account for 4,573.9 cases of infectious and parasitic diseases (growth rate of 0.2%) . In the structure of infectious diseases, an important place is given to infectious diseases of the respiratory system.
Острые респираторные заболевания - группа заболеваний, чаще вызываемых вирусами (гриппа, парагриппа, представителями семейства Paramixoviridae, аденовирусами, коронавирусами, риновирусами и др.) и характеризующихся чрезвычайно быстрым распространением в виде эпидемий и пандемий. Острые респираторные вирусные инфекции (ОРВИ) - инфекционные заболевания, характеризующиеся поражением верхних и нижних дыхательных путей и др. [Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция: клиника, диагностика, лечение / Чешик С.Г., Вартанян Р.В. Методические рекомендации Роспотребнадзора (проект) «лабораторная диагностика гриппа и других орви методом полимеразной цепной реакции» / Справочник заведующего КДЛ. 2014. №7. С. 50-69].Acute respiratory diseases are a group of diseases most often caused by viruses (influenza, parainfluenza, representatives of the Paramixoviridae family, adenoviruses, coronaviruses, rhinoviruses, etc.) and characterized by extremely rapid spread in the form of epidemics and pandemics. Acute respiratory viral infections (SARS) - infectious diseases characterized by lesions of the upper and lower respiratory tract, etc. [Respiratory syncytial virus infection: clinic, diagnosis, treatment / Cheshik SG, Vartanyan R.V. Methodological recommendations of Rospotrebnadzor (project) "laboratory diagnosis of influenza and other acute respiratory viral infections by the polymerase chain reaction" / Reference book of the head of the Department 2014. No7. S. 50-69].
Вирусы, вызывающие ОРЗ и ОРВИ, передаются воздушно-капельным путем от больных людей и здоровых вирусоносителей [Рациональная терапия острых респираторных инфекций и гриппа / Овсянникова Е.М., Коровина Н.А., Моргунова С.Л., Стойко Т.Ю., Бодаревская О.П. Медицинский совет. 2015. №1; Роль респираторных вирусов в развитии аллергии / Гервазиева В.Б., Сверановская В.В., Штерншис Ю.А., Семенов Б.Ф. / Цитокины и воспаление. 2003. Т. 2. №3. С. 1-8; Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция (РС-инфекция)]. Человек, как источник передачи респираторных вирусных инфекций, выделяет вирусы во внешнюю среду с кашлем, чиханьем, слюной, слизью и т.д. Так, человек, зараженный вирусом гриппа, заразен с первых часов заболевания до 5-7-го дня болезни; зараженный парамиксовирусами (в т.ч. парагриппом) и коронавирусами - заразен от первых двух-трех суток (максимальная опасность заражения) до десяти дней заболевания (вероятность заболевания снижается); зараженный аденовирусами опасен до 3-4 недель болезни [Инфекционная иммунология/журнал медицинская иммунология 2005. Т. 7. №2-3. С. 287-335; Актуальные вопросы симптоматического и патогенетического лечения острых респираторных вирусных инфекций / Селькова Е.П. Справочник поликлинического врача. 2013. №1. С. 9-13; Острые респираторные вирусные инфекции / Лиознов Д.А., Лапотников В.А., Петров В.Н. / Медицинская сестра. 2011. №4. С. 3-9; Современное лабораторное обеспечение эпидемиологических исследований и профилактических мероприятий / Инфекция и иммунитет. 2012. Т. 2. №1-2. С. 234-349].Viruses that cause ARI and SARS are transmitted by airborne droplets from sick people and healthy virus carriers [Rational therapy of acute respiratory infections and influenza / Ovsyannikova EM, Korovina NA, Morgunova SL, Stoyko T.Yu. , Bodarevskaya O.P. Medical advice. 2015. No1; The role of respiratory viruses in the development of allergies / Gervazieva VB, Sveranovskaya VV, Sternshis Yu.A., Semenov B.F. / Cytokines and inflammation. 2003. T. 2. No. 3. S. 1-8; Respiratory syncytial viral infection (PC infection)]. A person, as a source of transmission of respiratory viral infections, secretes viruses into the external environment with coughing, sneezing, saliva, mucus, etc. So, a person infected with the influenza virus is contagious from the first hours of the disease until the 5-7th day of the disease; infected with paramyxoviruses (including parainfluenza) and coronaviruses - contagious from the first two to three days (maximum risk of infection) to ten days of illness (the likelihood of illness is reduced); infected with adenoviruses is dangerous until 3-4 weeks of illness [Infectious immunology / journal medical immunology 2005. V. 7. No. 2-3. S. 287-335; Actual issues of symptomatic and pathogenetic treatment of acute respiratory viral infections / Selkova EP Handbook of outpatient physician. 2013. No1. S. 9-13; Acute respiratory viral infections / Lioznov D.A., Lapotnikov V.A., Petrov V.N. / Nurse. 2011. No4. S. 3-9; Modern laboratory support of epidemiological studies and preventive measures / Infection and immunity. 2012.Vol. 2. No. 1-2. S. 234-349].
Вирусы, вызывающие респираторные инфекции и являющиеся в основном РНК-содержащими (за исключением ДНК-содержащего аденовируса), характеризуются различным строением, небольшими размерами (до 250 нм) [Масс-спектрометрические подходы в изучении оболочечных вирусов: новые возможности для структурной биологии и профилактической медицины обзор / Кордюкова Л.В., Серебрякова М.В. Журнал биохимия. №8. С. 1002-1016. 2012 г.; Молекулярные и клеточные основы иммунорегуляции, иммунодиагностики и иммунокоррекции (экспериментальные модели) / Медицинская иммунология. 2006. Т. 8. №2-3. С. 113-194; Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция: современный взгляд на проблему / Бевза С.Л., Харламова Ф.С / Детские инфекции. 2008. т. 7. №1. С. 43-51; Идентификация аденовирусов респираторной группы методом ПЦР / Штыров А.А., Орлова С.В. / Журнал Молодежный сборник научных статей «Научные стремления» №2 / 2012 / - С. 63; Современное лабораторное обеспечение эпидемиологических исследований и профилактических мероприятий / Инфекция и иммунитет. 2012. Т. 2. №1-2. С. 234-349; Острые респираторные вирусные инфекции / Аверьянов А.В. / Журнал Практическая пульмонология №4 / 2003 - С. 33; Современные аспекты терапии и профилактики гриппа / Попов С.Ф., Левшин В.К. / Иванова Г.Ф. / Кувшинова Т.Д. 2010 г. Журнал лекарственный вестник. №6(38). С. 17-22; Конструирование Дезоксирибозимов Для Ингибирования Репродукции Вируса Гриппа А / Евдокимов А.А., Мазуркова Н.А., Малыгин Э.Г., Зарытова В.Ф., Левина А.С., Репкова М.Н., Загребельный С.Н., Нетесова; Молекулярные и клеточные основы иммунорегуляции, иммунодиагностики и иммунокоррекции (Эксперименталь); SARS (Severe Acute Respiratory Syndrome), или ТОРС (тяжелый острый респираторный синдром) / Н.В. Астафьева, Е.Г. Белова / Медицинский научно-практический журнал. Лечащий врач. №9. 2003 г.; Способ дифференциальной диагностики респираторных вирусных инфекций методом мультиплексной пцр с детекцией в режиме реального времени и перечень последовательностей для его осуществления / Файзулоев Е.Б., Никонова А.А., Океании А.С., Лободанов С.А., Малахо С.Г., Зверев В.В. / Патент на изобретение RUS 2460803, 27.10.2010] и различной степенью устойчивости во внешней среде, а некоторые из них могут сохраняться в жизнеспособном состоянии в течение длительного периода времени. Так, вирусы парагриппа при комнатной температуре сохраняются в воздухе 4 часа; коронавирусы - на пластиковой поверхности сохраняются до 2 суток, в канализационных водах до 4 суток, респираторно-синтициальные вирусы сохраняются в жизнеспособном состоянии на предметах окружающей среды от 20 минут до 5-6 часов; аденовирусов - до 14 суток [Методические Рекомендации Роспотребнадзора (Проект) «Лабораторная Диагностика Гриппа и Других Орви Методом Полимеразной Цепной Реакции» / Справочник заведующего КДЛ. 2014. №7. С. 50-69; Современное лабораторное обеспечение эпидемиологических исследований и профилактических мероприятий / Инфекция и иммунитет.2012. Т. 2. №1-2. С. 234-349; Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция (РС-инфекция); Инфекционная иммунология/журнал медицинская иммунология 2005. Т. 7. №2-3. С. 287-335].Viruses that cause respiratory infections and are mainly RNA-containing (with the exception of DNA-containing adenovirus) are characterized by different structures, small sizes (up to 250 nm) [Mass spectrometric approaches to the study of enveloped viruses: new opportunities for structural biology and preventive medicine review / Kordyukova L.V., Serebryakova M.V. Journal of Biochemistry. No. 8. S. 1002-1016. 2012; Molecular and cellular basis of immunoregulation, immunodiagnostics and immunocorrection (experimental models) / Medical immunology. 2006. V. 8. No. 2-3. S. 113-194; Respiratory syncytial viral infection: a modern view of the problem / Bevza S.L., Kharlamova F.S. / Children's infections. 2008. v. 7. No. 1. S. 43-51; Identification of respiratory group adenoviruses by PCR / Shtyrov A.A., Orlova S.V. / Magazine Youth collection of scientific articles "Scientific aspirations" No. 2/2012 / - P. 63; Modern laboratory support of epidemiological studies and preventive measures / Infection and immunity. 2012.Vol. 2. No. 1-2. S. 234-349; Acute respiratory viral infections / Averyanov A.V. / Journal of Practical Pulmonology No. 4/2003 - S. 33; Modern aspects of therapy and prevention of influenza / Popov S.F., Levshin V.K. / Ivanova G.F. / Kuvshinova T.D. 2010. Journal of the medicinal bulletin. No. 6 (38). S. 17-22; Construction of Deoxyribozymes For Inhibition of Reproduction of the Influenza Virus A / Evdokimov A.A., Mazurkova N.A., Malygin E.G., Zarytova V.F., Levina A.S., Repkova M.N., Zagrebelny S.N. , Netesova; Molecular and cellular bases of immunoregulation, immunodiagnostics and immunocorrection (Experimental); SARS (Severe Acute Respiratory Syndrome), or SARS (severe acute respiratory syndrome) / N.V. Astafieva, E.G. Belova / Medical Scientific and Practical Journal. Therapist. No. 9. 2003; The method of differential diagnosis of respiratory viral infections by multiplex PCR with real-time detection and a list of sequences for its implementation / Fayzuloev EB, Nikonova AA, Oceania AS, Lobodanov SA, Malakho S.G. ., Zverev V.V. / Patent for invention RUS 2460803, 10.27.2010] and various degrees of stability in the external environment, and some of them can remain in a viable state for a long period of time. So, parainfluenza viruses at room temperature remain in the air for 4 hours; coronaviruses - on a plastic surface last up to 2 days, in sewage waters up to 4 days, respiratory syncytial viruses remain in a viable state on environmental objects from 20 minutes to 5-6 hours; adenoviruses - up to 14 days [Methodical Recommendations of Rospotrebnadzor (Project) “Laboratory Diagnosis of Influenza and Other Orvi by the Polymerase Chain Reaction Method” / Reference book of the head of the Laboratory 2014. No7. S. 50-69; Modern laboratory support of epidemiological studies and preventive measures / Infection and immunity. 2012. T. 2. No. 1-2. S. 234-349; Respiratory syncytial viral infection (PC infection); Infectious immunology / Journal of Medical Immunology 2005. V. 7. No. 2-3. S. 287-335].
Известен ряд методов отбора проб, проведения исследований, учета результатов, описанных в различных нормативных документах, для оценки бактериальной и микологической обсемененности воздуха в помещениях организаций и предприятий различного профиля [Приказ Министерства здравоохранения СССР от 30.09.91 г. №254 «О развитии дезинфекционного дела»; МУК 4.2.1089-02 Использование установки обеззараживания воздуха УОВ "ПОТОК 150-М-01" и контроль микробной обсемененности воздуха при ее работе; МУ 28-6/15-86 «Методические указания по организации и проведению комплекса санитарно-противоэпидемических мероприятий в асептических отделениях (блоках) и палатах»; МУК 4.2.2942-11. «Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Методы санитарно-бактериологических исследований объектов окружающей среды, воздуха и контроля стерильности в лечебных организациях. Методические указания"; Приказ МЗ СССР №720 от 31 июля 1978 г. «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией»; МУ 42-51-4-93 «Контроль микробной контаминации воздуха производственных помещений»; МУ 3182-84 «Методические указания по микробиологическому контролю в аптеках»; Приложение Приказ Минздрава СССР от 28.12.89 N 691 «Инструкция по организации и проведению комплекса санитарно-противоэпидемических мероприятий в акушерских стационарах»; МУ-44-116 (утв. департаментом Госсанэпиднадзора Минздрава РФ 19.05.1997) «Медицинские иммунобиологические препараты. Асептическое производство медицинских иммунобиологических препаратов; МУ 64-02-005-2002 «Методические указания классификация и организация помещений для производства нестерильных лекарственных средств»; СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»; МУ 2657-82. Методические указания по санитарно-бактериологическому контролю на предприятиях общественного питания и торговли пищевыми продуктами. Однако ни один из указанных документов не отражает метода оценки вирусной обсемененности воздуха.A number of methods are known for sampling, conducting research, and taking into account the results described in various regulatory documents for assessing bacterial and mycological airborne contamination in the premises of organizations and enterprises of various profiles [Order of the Ministry of Health of the USSR of September 30, 1991 No. 254 “On the development of disinfection business "; MUK 4.2.1089-02 Use of the air disinfection unit UOV "POTOK 150-M-01" and control of microbial contamination of air during its operation; MU 28-6 / 15-86 "Methodological guidelines for the organization and conduct of a complex of sanitary and anti-epidemic measures in aseptic departments (blocks) and wards"; MUK 4.2.2942-11. "Control methods. Biological and microbiological factors. Methods of sanitary-bacteriological studies of environmental objects, air and sterility control in medical organizations. Guidelines "; Order of the Ministry of Health of the USSR No. 720 of July 31, 1978" On improving medical care for patients with purulent surgical diseases and strengthening measures to combat nosocomial infection "; MU 42-51-4-93" Control of microbial air contamination of industrial premises "; MU 3182-84" Guidelines for microbiological control in pharmacies "; Appendix Order of the Ministry of Health of the USSR dated December 28, 89 N 691" Instructions for the organization and conduct of a complex of sanitary and anti-epidemic measures in obstetric hospitals "; MU-44-116 (approved. dep by the Code of Sanitary Inspection of the Ministry of Health of the Russian Federation 05/19/1997) "Medical immunobiological preparations. Aseptic production of medical immunobiological preparations; MU 64-02-005-2002" Guidelines classification and organization of premises for the production of non-sterile medicines "; SanPiN 2.1.3.2630-10" Sanitary epidemiological requirements for organizations engaged in medical activities "; MU 2657-82. Guidelines for sanitary and bacteriological control in catering and food trade bubbled products. However, none of these documents reflects a method for assessing viral airborne contamination.
Известен способ дифференциальной диагностики респираторных вирусных инфекций методом мультиплексной ПЦР с детекцией в режиме реального времени и перечень последовательностей для его осуществления [патент RU №2460803], предусматривающий анализ каждого исследуемого образца на наличие нуклеиновых кислот 11 респираторных вирусов в 3-х реакционных смесях. Способ позволяет дифференциально выявлять в биологических образцах нуклеиновые кислоты основных возбудителей ОРВИ - вирусов гриппа А и В, коронавирусов, вирусов парагриппа 1, 2, 3, 4 типов, аденовирусов, респираторно-синцитиального вируса, риновирусов и энтеровирусов. Наличие в изучаемой пробе нуклеиновых кислот того или иного респираторного вируса определяется ростом сигнала флуоресценции определенного красителя в одной из реакционных смесей. Недостатком данного способа является то, что метод не предусматривает отбор проб воздуха с адсорбцией вирусных нуклеиновых кислот, а также его сложность и большая продолжительность (до двух суток) определения общей микробной обсемененности воздушной среды, что не позволяет проводить исследование в режиме реального времени (в виде экспресс-прогноза).A known method for the differential diagnosis of respiratory viral infections by multiplex PCR with real-time detection and a list of sequences for its implementation [patent RU No. 2460803], providing for the analysis of each test sample for the presence of nucleic acids of 11 respiratory viruses in 3 reaction mixtures. The method allows to differentially detect nucleic acids in biological samples of the main pathogens of ARVI - influenza A and B viruses, coronaviruses,
Известен способ экспресс-прогноза общей микробной обсемененности воздушной среды [Патент RU 2491349, 2013 г.], включающий определение количества аэрозольных частиц с диаметром 0,3 мкм, 0,5 мкм и 1,0 мкм в единице объема воздуха с использованием счетчика аэрозольных частиц, расчет прогнозируемой общей микробной обсемененности воздушной среды по формуле: Y=0,0003(n0,5+n1,0)-1,2, по меньшей мере, при одном из условий n0,3≤2,95n0,5 и/или n0,5≤3,99n1,0, где: Y - прогнозируемая общая микробная обсемененность воздушной среды, КОЕ на единицу объема воздуха; n0,3 - количество аэрозольных частиц диаметром 0,3 мкм в единице объема воздуха; n0,5 - количество аэрозольных частиц диаметром 0,5 мкм в единице объема воздуха; n1,0 - количество аэрозольных частиц диаметром 1,0 мкм в единице объема воздуха; 0,0003; 2,95 и 3,99 - коэффициенты; 1,2 - корректирующая безразмерная величина. Однако данный способ является расчетным, кроме этого он не улавливает и не идентифицирует вирусы.A known method for express forecasting the total microbial contamination of the air environment [Patent RU 2491349, 2013], including determining the number of aerosol particles with a diameter of 0.3 μm, 0.5 μm and 1.0 μm per unit volume of air using an aerosol particle counter , the calculation of the predicted total microbial contamination of the air according to the formula: Y = 0,0003 (n 0,5 + n 1,0 ) -1,2, at least under one of the conditions n 0,3 ≤2,95n 0, 5 and / or n 0.5 ≤ 3.99n 1.0 , where: Y is the predicted total microbial contamination of the air, CFU per unit volume of air; n 0,3 - the number of aerosol particles with a diameter of 0.3 microns per unit volume of air; n 0,5 - the number of aerosol particles with a diameter of 0.5 microns per unit volume of air; n 1,0 - the number of aerosol particles with a diameter of 1.0 μm per unit volume of air; 0,0003; 2.95 and 3.99 - coefficients; 1,2 - correcting dimensionless quantity. However, this method is calculated, in addition, it does not capture and does not identify viruses.
Прототипом изобретения является способ оценки бактериальной контаминации воздуха [Методические указания МУК 4.2.734-99 «Микробиологический мониторинг производственной среды». Москва 1999, Минздрав России], включающий отбор проб воздуха с помощью пробоотборника «Флора - 100» на питательные среды, с последующей инкубацией и идентификацией выделенных бактерий. Недостатком способа является то, что он улавливает и идентифицирует только бактерии без выделения и идентификации вирусов, способ применим лишь для производителей медицинских иммунобиологических препаратов.The prototype of the invention is a method for assessing bacterial air contamination [Methodical instructions MUK 4.2.734-99 "Microbiological monitoring of the production environment". Moscow 1999, Ministry of Health of Russia], including air sampling using a Flora-100 sampler on nutrient media, followed by incubation and identification of the isolated bacteria. The disadvantage of this method is that it captures and identifies only bacteria without isolation and identification of viruses, the method is applicable only to manufacturers of medical immunobiological preparations.
Задачей изобретения является разработка способа, позволяющего с высокой достоверностью оценить вирусную обсемененность воздуха РНК-содержащими вирусами, возбудителями острых респираторных вирусных инфекций в помещениях предприятий и организаций различного профиля, с целью профилактики острых респираторных вирусных инфекций.The objective of the invention is to develop a method that allows with high reliability to evaluate the viral contamination of air by RNA-containing viruses, pathogens of acute respiratory viral infections in the premises of enterprises and organizations of various profiles, with the aim of preventing acute respiratory viral infections.
Технический результат при использовании изобретения - повышение точности оценки за счет определения вирусной обсемененности воздуха РНК-содержащими вирусами, возбудителями острых респираторных вирусных инфекций в помещениях в 1 м3 воздуха.The technical result when using the invention is to increase the accuracy of the assessment by determining the viral contamination of air with RNA-containing viruses, the causative agents of acute respiratory viral infections in rooms in 1 m 3 of air.
Изобретение иллюстрируется фигурами 1-2, на которых изображены точки, в которых проводят отбор проб воздуха.The invention is illustrated by figures 1-2, which depict the points at which the sampling of air.
Предлагаемый способ оценки вирусной обсемененности воздуха осуществляют следующим образом: отбирают пробы воздуха с использованием импактора микробиологического «Флора-100», заливают средой-РНК, определяют вирусную обсемененность воздуха методом мультиплексной ПЦР с детекцией в режиме реального времени.The proposed method for assessing viral air contamination is carried out as follows: take air samples using the Flora-100 microbiological impactor, fill in with RNA medium, determine air viral contamination by real-time multiplex PCR detection.
Пробоотборник - импактор воздуха микробиологический «Флора-100» - размещают на высоте не менее 50 см от пола и на расстоянии не менее 30 см от стены или каких-либо предметов, препятствующих свободному проходу воздуха. Отбор проб воздуха в помещении площадью до 15 м2 отбирают в одной точке в центре комнаты; в помещениях площадью более 15 м2 - пробы отбирают в пяти точках по «принципу конверта» (фиг. 1); в узких длинных помещениях (с отношением ширины к длине >1:5) пробы в точках на расстоянии не более 5 м друг от другаThe sampler - microbiological air impactor Flora-100 - is placed at a height of at least 50 cm from the floor and at least 30 cm from the wall or any objects that impede the free passage of air. Sampling of air in a room with an area of up to 15 m 2 is taken at one point in the center of the room; in rooms with an area of more than 15 m 2 - samples are taken at five points according to the "envelope principle" (Fig. 1); in narrow long rooms (with a ratio of width to length> 1: 5), samples at points at a distance of not more than 5 m from each other
(фиг. 2). Указанный способ отбора воздуха используют для полного охвата всего объема воздуха в помещении.(Fig. 2). The specified method of air selection is used to fully cover the entire volume of air in the room.
В пробоотборник устанавливают пустую стерильную чашку Петри с мембранным фильтром «Владипор» типа МФАС-ОС-1 (диаметр пор 0,22 мкм, диаметр диска 47 мм) в держатель пробоотборника - импактора воздуха микробиологического «Флора-100».An empty sterile Petri dish with a Vladipor membrane filter of the MFAS-OS-1 type (pore diameter 0.22 μm, disk diameter 47 mm) is installed in the sampler into the sampler holder, the microbiological Flora-100 air impactor.
Нажимают кнопку, имеющую маркировку требуемого объема отбираемого воздуха 1000 л, при этом над кнопкой загорается красный световой индикатор. Производят отбор пробы воздуха аспирационным методом, нажатием кнопки [СЕТЬ], расположенной на левой стенке пробоотборника. После отбора заданного объема воздуха индикаторная лампа гаснет.A button is pressed that has a marking of the required volume of sampled air of 1000 l, while a red indicator light lights up above the button. An air sample is taken by the aspiration method by pressing the [NETWORK] button located on the left side of the sampler. After taking a predetermined volume of air, the indicator lamp goes out.
В чашку с отобранной пробой помещают 10 мл среды-РНК для сохранения и стабилизации РНК вирусов (среда производства ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, каталожный номер 981, поставлена ООО «Интерлабсервис»). Среда предназначена для сохранения и транспортировки с одновременной стабилизацией внутриклеточной мРНК для последующего выделения тотальной РНК. Транспортная среда содержит компонент, который стабилизирует профиль экспрессии [http://www.opt-union.ru/i_store/item_1000380764/sreda-rnk.html].10 ml of RNA medium is stored in a sample cup to preserve and stabilize the RNA of viruses (production environment of the Central Research Institute of Epidemiology of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare, catalog number 981, supplied by Interlabservis LLC). The medium is intended for storage and transportation with simultaneous stabilization of intracellular mRNA for subsequent isolation of total RNA. The transport medium contains a component that stabilizes the expression profile [http://www.opt-union.ru/i_store/item_1000380764/sreda-rnk.html].
Содержимое чашки перемешивают.The contents of the cup are mixed.
Определяют содержание нуклеиновых кислот вирусов методом мультиплексной ПНР с детекцией в режиме реального времени, метод включает следующие этапы:Determine the content of nucleic acids of viruses by the method of multiplex PNR with real-time detection, the method includes the following steps:
1) подготовка смесей праймеров, зондов для проведения ОТ и ПЦР-РВ и контрольных образцов (внутренний положительный контроль, положительный контроль 1, положительный контроль 2, положительный контроль 3, отрицательный контроль);1) preparation of mixtures of primers, probes for RT and PCR-RV and control samples (internal positive control,
2) выделение нуклеиновых кислот респираторных вирусов из исследуемых проб;2) the selection of nucleic acids of respiratory viruses from the studied samples;
3) проведение мультиплексной реакции обратной транскрипции и мультиплексной ПЦР в реальном времени (каждый образец анализируется в трех пробирках);3) real-time multiplex reverse transcription reaction and multiplex PCR (each sample is analyzed in three tubes);
4) учет и интерпретация результатов анализа.4) accounting and interpretation of analysis results.
Этап 2 (проведение мультиплексной реакции обратной транскрипции и мультиплексной ПЦР-РВ) выявления и идентификации специфических фрагментов нуклеиновых кислот возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ): РНК респираторно-синцитиального вируса (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), метапневмовируса (human Metapneumovirus - hMpv), вирусов парагриппа 1, 2, 3 и 4 типов (human Parainfluenza virus-1-4 - hPiv), коронавирусов видов OC43, E229, NL63, HKUI (human Coronavirus - hCov), риновирусов (human Rhino virus - hRv), ДНК аденовирусов групп В, С и E (human Adenovirus - hAdv) и бокавируса (human Bocavirus - hBov) методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов амплификации согласно инструкции к набору реагентов для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ) (ООО «Интерлабсервис», каталожный номер R-V57).Stage 2 (conducting a multiplex reverse transcription reaction and multiplex PCR-RV) to identify and identify specific nucleic acid fragments of the causative agents of acute respiratory viral infections of humans (ARVI): RNA of the respiratory syncytial virus (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), metapneumovirus (human Metapneumovirus hMpv), parainfluenza viruses of
- Для проведения количественного анализа строится калибровочный график зависимости значений порогового цикла Ct от десятичного логарифма концентрации ДНК. По значению порогового цикла трех калибраторов с известной концентрацией, с помощью компьютерной программы, проводится расчет концентрации РНК исследуемых вирусов, согласно руководству к прибору.- To carry out a quantitative analysis, a calibration graph is constructed for the dependence of the threshold cycle Ct on the decimal logarithm of DNA concentration. By the value of the threshold cycle of three calibrators with a known concentration, using a computer program, the RNA concentration of the studied viruses is calculated, according to the manual for the device.
- Рассчитывают концентрацию вируса в воздухе по формуле:- Calculate the concentration of the virus in the air according to the formula:
К=М/2 (копий/м3),K = M / 2 (copies / m 3 ),
где М - концентрация вируса в растворе транспортной РНК-среды, которая была определена в предыдущем пункте. Полученное число копий умножают на 10 (в пересчете на 10 мл среды).where M is the concentration of the virus in the solution of the transport RNA medium, which was determined in the previous paragraph. The resulting number of copies is multiplied by 10 (in terms of 10 ml of medium).
Предлагаемый способ иллюстрируется следующими примерами.The proposed method is illustrated by the following examples.
Пример 1. Помещение площадью 14,35 м2. Отбирают воздух в центре комнаты в одной точке, пробоотборник - импактор воздуха микробиологический «Флора-100» - размещают на высоте 50 см от пола на табурете, в пробоотборник устанавливают пустую стерильную чашку Петри с мембранным фильтром «Владипор» типа МФАС-ОС-1 (диаметр пор 0,22 мкм, диаметр диска 47 мм) в держатель пробоотборника - импактора воздуха микробиологического «Флора-100». Нажимают кнопку, имеющую маркировку требуемого объема отбираемого воздуха 1000 л, при этом над кнопкой загорается красный световой индикатор. Производят отбор пробы воздуха аспирационным методом, нажатием кнопки [СЕТЬ], расположенной на левой стенке пробоотборника. После отбора заданного объема воздуха индикаторная лампа гаснет. В чашку с отобранной пробой помещают 10 мл среды-РНК для сохранения и стабилизации РНК вирусов. Содержимое чашки перемешивают.Example 1. The room area of 14.35 m 2 . Air is taken in the center of the room at one point, the sampler, the microbiological air impactor Flora-100, is placed at a height of 50 cm from the floor on a stool, an empty sterile Petri dish with a Vladipor membrane filter of the MFAS-OS-1 type is installed in the sampler ( pore diameter 0.22 μm, disk diameter 47 mm) in the holder of the sampler - microbiological air impactor Flora-100. A button is pressed that has a marking of the required volume of sampled air of 1000 l, while a red indicator light lights up above the button. An air sample is taken by the aspiration method by pressing the [NETWORK] button located on the left side of the sampler. After taking a predetermined volume of air, the indicator lamp goes out. 10 ml of RNA medium is placed in a sample cup to preserve and stabilize RNA viruses. The contents of the cup are mixed.
Определяют содержание нуклеиновых кислот вирусов методом мультиплексной ПЦР с детекцией в режиме реального времени.The content of virus nucleic acids is determined by multiplex PCR with real-time detection.
1) подготавливают смесь праймеров, зондов для проведения ОТ и ПЦР-РВ и контрольных образцов (внутренний положительный контроль, положительный контроль 1, положительный контроль 2, положительный контроль 3, отрицательный контроль);1) prepare a mixture of primers, probes for RT and PCR-RV and control samples (internal positive control,
2) выделяют нуклеиновые кислоты респираторных вирусов из исследуемых проб;2) isolated nucleic acids of respiratory viruses from the studied samples;
3) проводят мультиплексную реакцию обратной транскрипции и мультиплексную ПЦР в реальном времени (каждый образец анализируется в трех пробирках);3) carry out a multiplex reverse transcription reaction and multiplex real-time PCR (each sample is analyzed in three tubes);
4) учитывают и интерпретируют результаты анализа.4) take into account and interpret the results of the analysis.
Этап 2 (проведение мультиплексной реакций обратной транскрипции и мультиплексной ПЦР-РВ) выявления и идентификации специфических фрагментов нуклеиновых кислот возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ): РНК респираторно-синцитиального вируса (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), метапневмовируса (human Metapneumovirus - hMpv), вирусов парагриппа 1, 2, 3 и 4 типов (human Parainfluenza virus-1-4 - hPiv), коронавирусов видов OC43, E229, NL63, HKUI (human Coronavirus - hCov), риновирусов (human Rhino virus - hRv), ДНК аденовирусов групп В, С и E (human Adenovirus - hAdv) и бокавируса (human Bocavirus - hBov) методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов амплификации согласно инструкции к набору реагентов для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ) (ООО «Интерлабсервис», каталожный номер R-V57).Stage 2 (conducting multiplex reverse transcription reactions and multiplex PCR-RV) to identify and identify specific nucleic acid fragments of the causative agents of acute respiratory viral infections of humans (ARVI): RNA of the respiratory syncytial virus (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), metapneumovirus (human Metapneumovirus hMpv), parainfluenza viruses of
- Для проведения количественного анализа строится калибровочный график зависимости значений порогового цикла Ct от десятичного логарифма концентрации ДНК. По значению порогового цикла трех калибраторов с известной концентрацией, с помощью компьютерной программы, проводится расчет концентрации РНК исследуемых вирусов, согласно руководству к прибору.- To carry out a quantitative analysis, a calibration graph is constructed for the dependence of the threshold cycle Ct on the decimal logarithm of DNA concentration. By the value of the threshold cycle of three calibrators with a known concentration, using a computer program, the RNA concentration of the studied viruses is calculated, according to the manual for the device.
- Рассчитывают концентрацию вируса в воздухе по формуле:- Calculate the concentration of the virus in the air according to the formula:
К=М/2 (копий/м3),K = M / 2 (copies / m 3 ),
где М - концентрация вируса в растворе транспортной РНК-среды, которая была определена в предыдущем пункте.where M is the concentration of the virus in the solution of the transport RNA medium, which was determined in the previous paragraph.
К=2/2=1. Умножают на 10. 10 копий/м3 вируса возбудителя респираторных заболеваний.K = 2/2 = 1. Multiply by 10. 10 copies / m 3 of the virus of the causative agent of respiratory diseases.
Пример 2. Помещение площадью 22,31 м2 (квадратная комната). Отбирают воздух в пяти точках по принципу конверта, пробоотборник - импактор воздуха микробиологический «Флора-100» - размещают на высоте 50 см от пола на табурете, в пробоотборник устанавливают пустую стерильную чашку Петри с мембранным фильтром «Владипор» типа МФАС-ОС-1 (диаметр пор 0,22 мкм, диаметр диска 47 мм) в держатель пробоотборника - импактора воздуха микробиологического «Флора-100». Нажимают кнопку, имеющую маркировку требуемого объема отбираемого воздуха 1000 л, при этом над кнопкой загорается красный световой индикатор. Производят отбор пробы воздуха аспирационным методом, нажатием кнопки [СЕТЬ], расположенной на левой стенке пробоотборника. После отбора заданного объема воздуха индикаторная лампа гаснет. Во все чашки с отобранной пробой помещают 10 мл среды-РНК для сохранения и стабилизации РНК вирусов. Содержимое чашки перемешивают.Example 2. A room with an area of 22.31 m 2 (square room). Air is taken at five points according to the principle of the envelope, the sampler - the microbiological air impactor Flora-100 - is placed at a height of 50 cm from the floor on a stool, an empty sterile Petri dish with a Vladipor membrane filter of the MFAS-OS-1 type is installed in the sampler ( pore diameter 0.22 μm, disk diameter 47 mm) in the holder of the sampler - microbiological air impactor Flora-100. A button is pressed that has a marking of the required volume of sampled air of 1000 l, while a red indicator light lights up above the button. An air sample is taken by the aspiration method by pressing the [NETWORK] button located on the left side of the sampler. After taking a predetermined volume of air, the indicator lamp goes out. 10 ml of RNA medium is placed in all sampled dishes to preserve and stabilize the RNA of viruses. The contents of the cup are mixed.
Определяют содержание нуклеиновых кислот вирусов во всех чашках методом мультиплексной ПЦР с детекцией в режиме реального времени.The content of virus nucleic acids in all plates was determined by multiplex PCR with real-time detection.
1) подготавливают смесь праймеров, зондов для проведения ОТ и ПЦР-РВ и контрольных образцов (внутренний положительный контроль, положительный контроль 1, положительный контроль 2, положительный контроль 3, отрицательный контроль);1) prepare a mixture of primers, probes for RT and PCR-RV and control samples (internal positive control,
2) выделяют нуклеиновые кислоты респираторных вирусов из исследуемых проб;2) isolated nucleic acids of respiratory viruses from the studied samples;
3) проводят мультиплексную реакцию обратной транскрипции и мультиплексную ПЦР в реальном времени (каждый образец анализируется в трех пробирках);3) carry out a multiplex reverse transcription reaction and multiplex real-time PCR (each sample is analyzed in three tubes);
4) учитывают и интерпретируют результаты анализа.4) take into account and interpret the results of the analysis.
Этап 2 (проведение мультиплексной реакции обратной транскрипции и мультиплексной ПЦР-РВ) выявления и идентификации специфических фрагментов нуклеиновых кислот возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ): РНК респираторно-синцитиального вируса (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), метапневмовируса (human Metapneumovirus - hMpv), вирусов парагриппа 1, 2, 3 и 4 типов (human Parainfluenza virus-1-4 - hPiv), коронавирусов видов OC43, E229, NL63, HKUI (human Coronavirus - hCov), риновирусов (human Rhinovirus - hRv), ДНК аденовирусов групп В, С и E (human Adenovirus - hAdv) и бокавируса (human Bocavirus - hBov) методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов амплификации согласно инструкции к набору реагентов для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ) (ООО «Интерлабсервис», каталожный номер R-V57).Stage 2 (conducting a multiplex reverse transcription reaction and multiplex PCR-RV) to identify and identify specific nucleic acid fragments of the causative agents of acute respiratory viral infections of humans (ARVI): RNA of the respiratory syncytial virus (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), metapneumovirus (human Metapneumovirus hMpv), parainfluenza viruses of
- Для проведения количественного анализа строится калибровочный график зависимости значений порогового цикла Ct от десятичного логарифма концентрации ДНК. По значению порогового цикла трех калибраторов с известной концентрацией, с помощью компьютерной программы, проводится расчет концентрации РНК исследуемых вирусов, согласно руководству к прибору.- To carry out a quantitative analysis, a calibration graph is constructed for the dependence of the threshold cycle Ct on the decimal logarithm of DNA concentration. By the value of the threshold cycle of three calibrators with a known concentration, using a computer program, the RNA concentration of the studied viruses is calculated, according to the manual for the device.
- Рассчитывают концентрацию вируса в воздухе в каждой чашке по формуле:- Calculate the concentration of virus in the air in each cup according to the formula:
К=М/2 (копий/м3),K = M / 2 (copies / m 3 ),
где М - концентрация вируса в растворе транспортной РНК-среды, которая была определена в предыдущем пункте.where M is the concentration of the virus in the solution of the transport RNA medium, which was determined in the previous paragraph.
К1=0/2=0, К2=1/2=0,5, К3=2/2=1, К4=0/2=0, К5=0/2=0.K 1 = 0/2 = 0, K 2 = 1/2 = 0.5, K 3 = 2/2 = 1, K 4 = 0/2 = 0, K 5 = 0/2 = 0.
Рассчитывают сумму копий на всех чашках К=1,5 копия/м3. Умножают на 10. Получают 15 копий/м3 вируса возбудителя респираторных заболеваний.Calculate the amount of copies on all cups K = 1.5 copy / m 3 . Multiplied by 10. Get 15 copies / m 3 the virus of the causative agent of respiratory diseases.
Пример 3. Помещение площадью 20,0 м2 (коридор). Отбирают воздух в двух точках, на расстоянии 5 метров друг от друга. Пробоотборник - импактор воздуха микробиологический «Флора-100» - размещают на высоте 50 см от пола на табурете, в пробоотборник устанавливают пустую стерильную чашку Петри с мембранным фильтром «Владипор» типа МФАС-ОС-1 (диаметр пор 0,22 мкм, диаметр диска 47 мм) в держатель пробоотборника - импактора воздуха микробиологического «Флора-100». Нажимают кнопку, имеющую маркировку требуемого объема отбираемого воздуха 1000 л, при этом над кнопкой загорается красный световой индикатор. Производят отбор пробы воздуха аспирационным методом, нажатием кнопки [СЕТЬ], расположенной на левой стенке пробоотборника. После отбора заданного объема воздуха индикаторная лампа гаснет. Во все чашки с отобранной пробой помещают 10 мл среды-РНК для сохранения и стабилизации РНК вирусов. Содержимое чашки перемешивают.Example 3. A room with an area of 20.0 m 2 (corridor). Air is taken at two points, at a distance of 5 meters from each other. The sampler - microbiological air impactor Flora-100 - is placed at a height of 50 cm from the floor on a stool, an empty sterile Petri dish with a Vladipor membrane filter of the MFAS-OS-1 type (pore diameter 0.22 μm, disk diameter is installed in the sampler) 47 mm) into the sampler holder - microbiological air impactor Flora-100. A button is pressed that has a marking of the required volume of sampled air of 1000 l, while a red indicator light lights up above the button. An air sample is taken by the aspiration method by pressing the [NETWORK] button located on the left side of the sampler. After taking a predetermined volume of air, the indicator lamp goes out. 10 ml of RNA medium is placed in all sampled dishes to preserve and stabilize the RNA of viruses. The contents of the cup are mixed.
Определяют содержание нуклеиновых кислот вирусов во всех чашках методом мультиплексной ПЦР с детекцией в режиме реального времени.The content of virus nucleic acids in all plates was determined by multiplex PCR with real-time detection.
1) подготавливают смесь праймеров, зондов для проведения ОТ и ПЦР-РВ и контрольных образцов (внутренний положительный контроль, положительный контроль 1, положительный контроль 2, положительный контроль 3, отрицательный контроль);1) prepare a mixture of primers, probes for RT and PCR-RV and control samples (internal positive control,
2) выделяют нуклеиновые кислоты респираторных вирусов из исследуемых проб;2) isolated nucleic acids of respiratory viruses from the studied samples;
3) проводят мультиплексную реакцию обратной транскрипции и мультиплексную ПЦР в реальном времени (каждый образец анализируется в трех пробирках);3) carry out a multiplex reverse transcription reaction and multiplex real-time PCR (each sample is analyzed in three tubes);
4) учитывают и интерпретируют результаты анализа.4) take into account and interpret the results of the analysis.
Этап 2 (проведение мультиплексной реакции обратной транскрипции и мультиплексной ПЦР-РВ) выявления и идентификации специфических фрагментов нуклеиновых кислот возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ): РНК респираторно-синцитиального вируса (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), метапневмовируса (human Metapneumovirus - hMpv), вирусов парагриппа 1, 2, 3 и 4 типов (human Parainfluenza virus-1-4 - hPiv), коронавирусов видов OC43, E229, NL63, HKUI (human Coronavirus - hCov), риновирусов (human Rhino virus - hRv), ДНК аденовирусов групп В, С и E (human Adenovirus - hAdv) и бокавируса (human Bocavirus - hBov) методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов амплификации согласно инструкции к набору реагентов для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ) (ООО «Интерлабсервис», каталожный номер R-V57).Stage 2 (conducting a multiplex reverse transcription reaction and multiplex PCR-RV) to identify and identify specific nucleic acid fragments of the causative agents of acute respiratory viral infections of humans (ARVI): RNA of the respiratory syncytial virus (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), metapneumovirus (human Metapneumovirus hMpv), parainfluenza viruses of
- Для проведения количественного анализа строится калибровочный график зависимости значений порогового цикла Ct от десятичного логарифма концентрации ДНК. По значению порогового цикла трех калибраторов с известной концентрацией, с помощью компьютерной программы, проводится расчет концентрации РНК исследуемых вирусов, согласно руководству к прибору.- To carry out a quantitative analysis, a calibration graph is constructed for the dependence of the threshold cycle Ct on the decimal logarithm of DNA concentration. By the value of the threshold cycle of three calibrators with a known concentration, using a computer program, the RNA concentration of the studied viruses is calculated, according to the manual for the device.
- Рассчитывают концентрацию вируса в воздухе в каждой чашке по формуле:- Calculate the concentration of virus in the air in each cup according to the formula:
К=М/2 (копий/м3),K = M / 2 (copies / m 3 ),
где М - концентрация вируса в растворе транспортной РНК-среды, которая была определена в предыдущем пункте.where M is the concentration of the virus in the solution of the transport RNA medium, which was determined in the previous paragraph.
К,=0/2=0, К2=1/2=0,5K, = 0/2 = 0, K 2 = 1/2 / = 0.5
Рассчитывают сумму копий на всех чашках К=0,5.Calculate the amount of copies on all cups K = 0.5.
Умножают на 10. 5 копий/м3 вируса возбудителя респираторных заболеваний.Multiply by 10. 5 copies / m 3 of the respiratory pathogen virus.
Пример 4. Помещение площадью 20,0 м2 (коридор). Отбирают воздух в двух точках, на расстоянии 5 м друг от друга. Пробоотборник - импактор воздуха микробиологический «Флора-100» - размещают на полу, в пробоотборник устанавливают пустую стерильную чашку Петри с мембранным фильтром «Владипор» типа МФАС-ОС-1 (диаметр пор 0,22 мкм, диаметр диска 47 мм) в держатель пробоотборника - импактора воздуха микробиологического «Флора-100». Нажимают кнопку, имеющую маркировку требуемого объема отбираемого воздуха 1000 л, при этом над кнопкой загорается красный световой индикатор. Производят отбор пробы воздуха аспирационным методом, нажатием кнопки [СЕТЬ], расположенной на левой стенке пробоотборника. После отбора заданного объема воздуха индикаторная лампа гаснет. Во все чашки с отобранной пробой помещают 10 мл среды-РНК для сохранения и стабилизации РНК вирусов.Example 4. A room with an area of 20.0 m 2 (corridor). Air is taken at two points, at a distance of 5 m from each other. The sampler - microbiological air impactor Flora-100 - is placed on the floor, an empty sterile Petri dish with a Vladipor membrane filter of the MFAS-OS-1 type (pore diameter 0.22 μm, disk diameter 47 mm) is placed in the sampler into the sampler holder - microbiological air impactor Flora-100. A button is pressed that has a marking of the required volume of sampled air of 1000 l, while a red indicator light lights up above the button. An air sample is taken by the aspiration method by pressing the [NETWORK] button located on the left side of the sampler. After taking a predetermined volume of air, the indicator lamp goes out. 10 ml of RNA medium is placed in all sampled dishes to preserve and stabilize the RNA of viruses.
Определяют содержание нуклеиновых кислот вирусов во всех чашках методом мультиплексной ПЦР с детекцией в режиме реального времени.The content of virus nucleic acids in all plates was determined by multiplex PCR with real-time detection.
1) подготавливают смесь праймеров, зондов для проведения ОТ и ПЦР-РВ и контрольных образцов (внутренний положительный контроль, положительный контроль 1, положительный контроль 2, положительный контроль 3, отрицательный контроль);1) prepare a mixture of primers, probes for RT and PCR-RV and control samples (internal positive control,
2) выделяют нуклеиновые кислоты респираторных вирусов из исследуемых проб;2) isolated nucleic acids of respiratory viruses from the studied samples;
3) проводят мультиплексную реакцию обратной транскрипции и мультиплексную ПЦР в реальном времени (каждый образец анализируется в трех пробирках);3) carry out a multiplex reverse transcription reaction and multiplex real-time PCR (each sample is analyzed in three tubes);
4) учитывают и интерпретируют результаты анализа.4) take into account and interpret the results of the analysis.
Этап 2 (проведение мультиплексной реакции обратной транскрипции и мультиплексной ПЦР-РВ) выявления идентификации специфическихStage 2 (conducting a multiplex reverse transcription reaction and multiplex PCR-RV) identification of specific
фрагментов нуклеиновых кислот возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ): РНК респираторно-синцитиального вируса (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), метапневмовируса (human Metapneumovirus - hMpv), вирусов парагриппа 1, 2, 3 и 4 типов (human Parainfluenza virus-1-4 - hPiv), коронавирусов видов OC43, E229, NL63, HKUI (human Coronaviras - hCov), риновирусов (human Rhinovirus - hRv), ДНК аденовирусов групп В, С и E (human Adenovirus - hAdv) и бокавируса (human Bocavirus - hBov) методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов амплификации согласно инструкции к набору реагентов для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ) (000 «Интерлабсервис», каталожный номер R-V57).nucleic acid fragments of the causative agents of acute respiratory viral infections of humans (ARVI): RNA of the respiratory syncytial virus (human Respiratory Syncytial virus - hRSv), metapneumovirus (human Metapneumovirus - hMpv),
- Для проведения количественного анализа строится калибровочный график зависимости значений порогового цикла Ct от десятичного логарифма концентрации ДНК. По значению порогового цикла трех калибраторов с известной концентрацией, с помощью компьютерной программы, проводится расчет концентрации РНК исследуемых вирусов, согласно руководству к прибору.- To carry out a quantitative analysis, a calibration graph is constructed for the dependence of the threshold cycle Ct on the decimal logarithm of DNA concentration. By the value of the threshold cycle of three calibrators with a known concentration, using a computer program, the RNA concentration of the studied viruses is calculated, according to the manual for the device.
- Рассчитывают концентрацию вируса в воздухе в каждой чашке по формуле:- Calculate the concentration of virus in the air in each cup according to the formula:
К=М/2 (копий/м3),K = M / 2 (copies / m 3 ),
где М - концентрация вируса в растворе транспортной РНК-среды, которая была определена в предыдущем пункте.where M is the concentration of the virus in the solution of the transport RNA medium, which was determined in the previous paragraph.
К1=0/2=0, К2=1/2=0K 1 = 0/2 = 0, K 2 = 1/2 = 0
Рассчитывают сумму копий на всех чашках К=0Calculate the amount of copies on all cups K = 0
Умножают на 10.Multiply by 10.
0 копий/м3.0 copies / m 3 .
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016110894A RU2619179C1 (en) | 2016-03-24 | 2016-03-24 | Method for evaluating viral contamination of air |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016110894A RU2619179C1 (en) | 2016-03-24 | 2016-03-24 | Method for evaluating viral contamination of air |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2619179C1 true RU2619179C1 (en) | 2017-05-12 |
Family
ID=58716004
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016110894A RU2619179C1 (en) | 2016-03-24 | 2016-03-24 | Method for evaluating viral contamination of air |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2619179C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2759906C1 (en) * | 2021-03-16 | 2021-11-18 | Елена Александровна Прокопьева | Method for diagnosing viruses and viral infections |
RU2784291C1 (en) * | 2021-07-08 | 2022-11-23 | Общество с ограниченной ответственностью "АВТЭКС" (ООО "АВТЭКС") | Method for express diagnostics of viral diseases in phase of active virus isolation |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20120122075A1 (en) * | 1998-11-13 | 2012-05-17 | MesoSystems, Inc. | System and method for detecting threatening agents in the air |
RU2460803C2 (en) * | 2010-10-27 | 2012-09-10 | Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство промышленности и торговли Российской Федерации (Минпромторг России) | Differential diagnostic technique for respiratory viral infections by real-time multiplex pcr and sequence list for implementation thereof |
US20160041074A1 (en) * | 2014-08-10 | 2016-02-11 | Trans-Vac Systems LLC | Contaminant monitoring and air filtration system |
-
2016
- 2016-03-24 RU RU2016110894A patent/RU2619179C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20120122075A1 (en) * | 1998-11-13 | 2012-05-17 | MesoSystems, Inc. | System and method for detecting threatening agents in the air |
RU2460803C2 (en) * | 2010-10-27 | 2012-09-10 | Российская Федерация, от имени которой выступает Министерство промышленности и торговли Российской Федерации (Минпромторг России) | Differential diagnostic technique for respiratory viral infections by real-time multiplex pcr and sequence list for implementation thereof |
US20160041074A1 (en) * | 2014-08-10 | 2016-02-11 | Trans-Vac Systems LLC | Contaminant monitoring and air filtration system |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ МОНИТОРИНГ ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ СРЕДЫ, Методические указания, МУК 4.2.734-99, Минздрав России, Москва 1999. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2759906C1 (en) * | 2021-03-16 | 2021-11-18 | Елена Александровна Прокопьева | Method for diagnosing viruses and viral infections |
RU2784291C1 (en) * | 2021-07-08 | 2022-11-23 | Общество с ограниченной ответственностью "АВТЭКС" (ООО "АВТЭКС") | Method for express diagnostics of viral diseases in phase of active virus isolation |
RU216948U1 (en) * | 2022-08-19 | 2023-03-10 | Мария Владимировна Видманова | MASK FOR NON-INVASIVE COLLECTION OF COUGH AEROSOL FOR MICROBIOLOGICAL DIAGNOSTICS IN RESPIRATORY DISEASES |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Döhla et al. | SARS-CoV-2 in environmental samples of quarantined households | |
Rahmani et al. | Sampling and detection of corona viruses in air: A mini review | |
Leung et al. | Quantification of influenza virus RNA in aerosols in patient rooms | |
Hirotsu et al. | Analysis of a persistent viral shedding patient infected with SARS-CoV-2 by RT-qPCR, FilmArray Respiratory Panel v2. 1, and antigen detection | |
Elbadawi et al. | Non-mumps viral parotitis during the 2014–2015 influenza season in the United States | |
Blaschke et al. | Non-invasive sample collection for respiratory virus testing by multiplex PCR | |
Grinde et al. | The role of viruses in oral disease | |
Berkowitz et al. | Practical medical microbiology for clinicians | |
Pratheepamornkull et al. | Causative agents of severe community acquired viral pneumonia among children in eastern Thailand | |
Allicock et al. | Evaluation of saliva self-collection devices for SARS-CoV-2 diagnostics | |
Lauterbach et al. | Detection of influenza A virus from agricultural fair environment: air and surfaces | |
Habibi et al. | A safe and effective sample collection method for assessment of SARS-CoV-2 in aerosol samples | |
Mérens et al. | Ebola virus disease: Biological and diagnostic evolution from 2014 to 2017 | |
Hartiala et al. | Characteristics of hospitalized rhinovirus-associated community-acquired pneumonia in children, Finland, 2003–2014 | |
RU2619179C1 (en) | Method for evaluating viral contamination of air | |
Dietz et al. | Exploring Integrated Environmental Viral Surveillance of Indoor Environments: A comparison of surface and bioaerosol environmental sampling in hospital rooms with COVID-19 patients | |
Falahi et al. | Environmental surface contamination with SARS-CoV-2: toilets as the most contaminated surfaces in COVID-19 referral hospital | |
Yang et al. | Decay characteristics of aerosolized viruses in the air and control strategy of thermal and humid environment for epidemic prevention | |
Agaoglu et al. | COVID-19 PCR test performance on samples stored at ambient temperature | |
Izzotti et al. | Development of an integrated environmental monitoring protocol for SARS-CoV-2 contamination. Applications at the IRCSS San Martino Polyclinic Hospital in Genoa, Italy | |
Alnimr et al. | The environmental deposition of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 in nosocomial settings: role of the aerosolized hydrogen peroxide | |
Lebreil et al. | Surfaces and air contamination by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 using high-flow nasal oxygenation or assisted mechanical ventilation in intensive care unit rooms of patients with coronavirus disease 2019 | |
Ciccozzi et al. | An acute febrile outbreak in a refugee community of an Italian asylum seeker center: lessons learned | |
Büchner et al. | Do closed waste containers lead to less air contamination than opened? A clinical case study at Jena University Hospital, Germany | |
Zahedipour et al. | Evaluating the Effects of Curcumin on the Cytokine Storm in COVID-19 Using a Chip-Based Multiplex Analysis |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180325 |