Nothing Special   »   [go: up one dir, main page]

RU2646113C1 - Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells - Google Patents

Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells Download PDF

Info

Publication number
RU2646113C1
RU2646113C1 RU2016136040A RU2016136040A RU2646113C1 RU 2646113 C1 RU2646113 C1 RU 2646113C1 RU 2016136040 A RU2016136040 A RU 2016136040A RU 2016136040 A RU2016136040 A RU 2016136040A RU 2646113 C1 RU2646113 C1 RU 2646113C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cells
naf
delivery
fna
solution
Prior art date
Application number
RU2016136040A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валентина Филипповна Зарытова
Ася Сауловна Левина
Марина Николаевна Репкова
Зинфер Ришатович Исмагилов
Надежда Васильевна Шикина
Людмила Евгеньевна Татарова
Наталья Алексеевна Мазуркова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН)
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт катализа им. Г.К. Борескова Сибирского отделения Российской академии наук (ИК СО РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН), Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт катализа им. Г.К. Борескова Сибирского отделения Российской академии наук (ИК СО РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН)
Priority to RU2016136040A priority Critical patent/RU2646113C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2646113C1 publication Critical patent/RU2646113C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/02Inorganic compounds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/7042Compounds having saccharide radicals and heterocyclic rings
    • A61K31/7052Compounds having saccharide radicals and heterocyclic rings having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. nucleosides, nucleotides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: method for making a system of delivery of nucleic acid fragments (NAF) to mammalian cells is provided. The base for the delivery of NAF is synthesized. Amine-substituted silanol (Si~NH2) at a concentration of 1-4 mg Si/ml is used as the base. Si~NH2 is obtained by hydrolysis in water of aminopropyltriethoxysilane at a pH value of 10-11 and temperature of 20-70°C followed by neutralisation of silanol with a 0.5-1% solution of acetic acid to a pH value of 8-9. The resulting solution of Si~NH2 is added with the calculated number of 10-3-10-7 M of the corresponding NAF solution in the ratio of 5-100 nmol of NAF per 1 mg of Si and incubated in 0.1-0.2 M of NaCl at room temperature for 20-30 min. A system of delivery of NAF to cells is made. It is a composite of Si~NH2⋅NAF with a NAF capacity of 10-100 nmol/mg of Si.
EFFECT: high strength of binding of oligonucleotide with the base, ability to penetrate through the cell membrane and low cytotoxicity.
3 dwg, 10 ex

Description

Изобретение относится к области молекулярной биологии, биоорганической химии и медицины и может быть использовано для создания систем доставки лекарственных средств (в частности, олигонуклеотидов) в клетки.The invention relates to the field of molecular biology, bioorganic chemistry and medicine and can be used to create systems for the delivery of drugs (in particular, oligonucleotides) into cells.

Использование фрагментов нуклеиновых кислот и их аналогов (ФНК) для селективного воздействия на внутриклеточный генетический материал является одной из важнейших задач современной биологии и фундаментальной медицины. В случае решения этой проблемы открывается возможность широкого использования этого подхода в практической медицине. Однако до конца не решенной проблемой является отсутствие эффективного способа доставки фрагментов нуклеиновых кислот и их аналогов внутрь клетки, поскольку известно, что сами по себе они проникают в клетки в очень малой степени, в первую очередь, из-за гидрофобного характера клеточной мембраны.The use of nucleic acid fragments and their analogues (FNAs) for selective action on intracellular genetic material is one of the most important tasks of modern biology and fundamental medicine. If this problem is solved, the possibility of widespread use of this approach in practical medicine opens up. However, the problem that has not been completely resolved is the lack of an effective method for delivering fragments of nucleic acids and their analogues into the cell, since it is known that by themselves they penetrate into the cells to a very small extent, primarily because of the hydrophobic nature of the cell membrane.

Известны способы доставки ФНК в клетки с помощью вирусных векторов [Bouard, D. еt al., British Journal of Pharmacology, 2009, v. 157, 153-165], путем включения в липосомы [Deshpande, D. et al., Pharm. Res., 1998, v. 15, p. 1340-1347], путем конъюгирования с катионными полимерами различной природы [Smedt, S.C. et al., Pharm. Res., 2000, v. 17, 113-126], с помощью электропорации [Baum С.et al., Biotechniques. 1994, v. 17, 1058-1062] и др. Однако проблема доставки пока не нашла окончательного решения и продолжает оставаться актуальной задачей.Known methods for delivering FNA to cells using viral vectors [Bouard, D. et al., British Journal of Pharmacology, 2009, v. 157, 153-165], by incorporation into liposomes [Deshpande, D. et al., Pharm. Res., 1998, v. 15, p. 1340-1347], by conjugation with cationic polymers of various nature [Smedt, S.C. et al., Pharm. Res., 2000, v. 17, 113-126], using electroporation [Baum C. et al., Biotechniques. 1994, v. 17, 1058-1062] and others. However, the problem of delivery has not yet found a final solution and continues to be an urgent task.

Известно использование наночастиц различной природы, в частности, неорганических наночастиц в качестве агентов доставки реакционноспособных олигонуклеотидов, обеспечивая тем самым высокоэффективное взаимодействие с внутриклеточными нуклеиновыми кислотами.It is known to use nanoparticles of various nature, in particular, inorganic nanoparticles as agents for the delivery of reactive oligonucleotides, thereby providing highly efficient interaction with intracellular nucleic acids.

Описано использование наночастиц фосфата кальция для доставки плазмидной ДНК в стволовые клетки [Cao X, et al., Int. J. Nanomedicine, 2011; 6, 3335-3349]; наночастиц фосфатов магния и марганца для доставки олигонуклеотидов в клетки HeLa [Bhakta G, et al., Biomaterials. 2005, v. 26, 2157-2163], наночастиц карбонат-апатита для доставки ДНК в клетки млекопитающих [Hossain S, et al., Anal. Biochem., 2010, v. 397, 156-161]; наночастиц благородных металлов для детекции ДНК и их доставки в клетки [Chen XJ, et al., Wiley Interdiscip.Rev. Nanomed. Nanobiotechnol., 2012, doi: 10.1002/wnan. 1159].The use of calcium phosphate nanoparticles for delivering plasmid DNA to stem cells has been described [Cao X, et al., Int. J. Nanomedicine, 2011; 6, 3335-3349]; magnesium and manganese phosphate nanoparticles for the delivery of oligonucleotides to HeLa cells [Bhakta G, et al., Biomaterials. 2005, v. 26, 2157-2163], carbonate apatite nanoparticles for delivering DNA to mammalian cells [Hossain S, et al., Anal. Biochem., 2010, v. 397, 156-161]; noble metal nanoparticles for DNA detection and cell delivery [Chen XJ, et al., Wiley Interdiscip.Rev. Nanomed. Nanobiotechnol., 2012, doi: 10.1002 / wnan. 1159].

Известен способ получения наноразмерной системы доставки ФНК в клетки млекопитающих, включающий синтез наночастиц диоксида титана (ТiO2) размером ~5 нм и последующую иммобилизацию на них допамин-содержащего олигонуклеотида [Paunesku Т. et al., Nat. Mater. 2003, v. 2, 343-346; Thurn К.Т. et al., Small 2009, v. 5, 1318-1325; Kurepa, J. et al., Nano Lett. 2010, v. 10, 2296-2302].A known method for producing a nanoscale system for the delivery of FNA to mammalian cells, including the synthesis of titanium dioxide (TiO 2 ) nanoparticles of ~ 5 nm in size and subsequent immobilization of a dopamine-containing oligonucleotide on them [Paunesku T. et al., Nat. Mater. 2003, v. 2, 343-346; Thurn K.T. et al., Small 2009, v. 5, 1318-1325; Kurepa, J. et al., Nano Lett. 2010, v. 10, 2296-2302].

Наиболее близким к заявляемому способу – прототипом - является способ получения наноразмерной системы доставки олигонуклеотидов, включающий синтез наночастиц диоксида титана, синтез конъюгатов наночастиц диоксида титана с полилизином (TiO2-PL), иммобилизацию олигонуклеотидов на TiO2-PL, при этом иммобилизацию олигонуклеотида проводят в водном растворе при комнатной температуре, а не связавшийся с частицами конъюгат отмывают раствором NaCl. ФНК связываются с TiO2-PL за счет электростатического взаимодействия положительно заряженных аминогрупп полилизина (NH2) и отрицательно заряженных межнуклеотидных фосфатных групп олигонуклеотида (р). Получают наноразмерную систему доставки ФНК в клетки, представляющую собой нанокомпозит TiO2-PL⋅ФНК с емкостью по ФНК, составляющей 0.2-60 нмоль/мг. Длительность способа получения системы доставки составляет 1.5-2 часа, а с учетом времени приготовления TiO2-наночастиц -2-3 суток. Получаемая таким способом наноразмерная система доставки ФНК в клетки состоит из наночастиц диоксида титана, покрытых полилизином, на которых иммобилизованы ФНК, способные проникать в эукариотические клетки путем обычного эндоцитоза. В качестве линкера используют полиамины, содержащие от 3 до 1000 аминогрупп в молекуле, преимущественно полилизин, полиэтиленимин или спермин (патент RU 2444571 С2, опубл. 10.03.2012).Closest to the claimed method - the prototype - is a method of obtaining a nanoscale oligonucleotide delivery system, including the synthesis of titanium dioxide nanoparticles, the synthesis of titanium dioxide nanoparticle conjugates with polylysine (TiO2-PL), the oligonucleotides are immobilized on TiO2-PL, while the oligonucleotide is immobilized into the oligonucleotide at room temperature, and not conjugated to particles, the conjugate is washed with a solution of NaCl. FNAs bind to TiO 2 -PL due to the electrostatic interaction of positively charged amino groups of polylysine (NH 2 ) and negatively charged internucleotide phosphate groups of the oligonucleotide (p). A nanoscale system for delivering FNA to cells is obtained, which is a TiO 2 -PL⋅FNA nanocomposite with a FNA capacity of 0.2-60 nmol / mg. The duration of the method of obtaining the delivery system is 1.5-2 hours, and taking into account the time of preparation of TiO 2 nanoparticles -2-3 days. Obtained in this way, the nanoscale system for the delivery of FNA to cells consists of titanium dioxide nanoparticles coated with polylysine, on which FNAs are immobilized, capable of penetrating into eukaryotic cells by conventional endocytosis. As the linker, polyamines are used containing from 3 to 1000 amino groups in the molecule, mainly polylysine, polyethyleneimine or spermine (patent RU 2444571 C2, publ. 10.03.2012).

Недостатками известного способа является необходимость предварительного синтеза конъюгатов наночастиц диоксида титана с полилизином (TiO2-PL), что требует использования относительно дорогого реактива (полилизина) и дополнительного времени, а также ограниченные функциональные возможности вследствие того, что в качестве основы для системы доставки используются нестабильные золи диоксида титана, склонные к агрегации, что может быть препятствием для использования нанокомпозитов TiO2-PL⋅ФНК в медицинской практике.The disadvantages of this method is the need for preliminary synthesis of conjugates of titanium dioxide nanoparticles with polylysine (TiO 2 -PL), which requires the use of a relatively expensive reagent (polylysine) and additional time, as well as limited functionality due to the fact that unstable are used as the basis for the delivery system aggregates of titanium dioxide, which may be an obstacle to the use of TiO 2 -PLOFNA nanocomposites in medical practice.

Техническим результатом является упрощение и сокращение длительности способа, а также расширение его функциональных возможностей.The technical result is to simplify and reduce the duration of the method, as well as expanding its functionality.

Технический результат достигается заявляемым способом, заключающимся в следующем.The technical result is achieved by the claimed method, which consists in the following.

Предварительно получают основу (носитель) для системы доставки. Для этого 3-аминопропилтриэтоксисилан (в концентрации 1-4 мг/мл в пересчете на Si) гидролизуют добавлением его по каплям к дистиллированной воде при значениях рН 10-11 и температуре от 20 до 70°С и перемешиванием в течение 8-15 ч. Полученный аминозамещенный силанол (Si~NH2) представляет собой прозрачный раствор, содержащий Si(OH)3(C3H6NH2) в виде мономера или димера или смеси мономера, димера и слабоконденсированных цепочек с соотношением Si/NH2=1:1. Высушенный на воздухе гидролизованный продукт представляет собой бесцветную стекловидную пленку. По данным рентгенофазового анализа (РФА) и просвечивающей электронной микроскопии (ПЭМ) сухой продукт является аморфным веществом.Pre-receive the basis (carrier) for the delivery system. For this, 3-aminopropyltriethoxysilane (at a concentration of 1-4 mg / ml in terms of Si) is hydrolyzed by adding it dropwise to distilled water at pH 10-11 and a temperature of from 20 to 70 ° C and stirring for 8-15 hours. The obtained amino-substituted silanol (Si ~ NH 2 ) is a clear solution containing Si (OH) 3 (C 3 H 6 NH 2 ) in the form of a monomer or dimer or a mixture of monomer, dimer and weakly condensed chains with the ratio Si / NH 2 = 1: one. The air-dried hydrolyzed product is a colorless glassy film. According to x-ray phase analysis (XRD) and transmission electron microscopy (TEM), the dry product is an amorphous substance.

Перед иммобилизацией ФНК к раствору гидролизованного продукта добавляют 0.5-1%-ную уксусную кислоту до значений рН 8-9 и получают раствор Si~NH2 с концентрацией 1-4 мг/мл в пересчете на Si и соотношением Si/NH2=1:(0.4-0.5). К полученному раствору Si~NH2 (2-25 мкл, 1-4 мг Si/мл) добавляют 10-50 мкл 10-3-10-7 М раствора соответствующего ФНК длиной 10-1500 звеньев с соотношением 5-100 нмоль ФНК на 1 мг Si и инкубируют в 0.1-0.2М растворе NaCl, при комнатной температуре в течение 20-30 минут. ФНК количественно связываются с Si~NH2 за счет сильного электростатического взаимодействия положительно заряженных аминогрупп и отрицательно заряженных межнуклеотидных фосфатных групп олигонуклеотида. Получают систему доставки ФНК в клетки, представляющую собой нанокомпозит Si~NH2⋅ФНК с размером частиц от 1 до 8 нм (по данным атомной силовой микроскопии) с концентрацией 0.25-1 мг/мл по Si и с емкостью по ФНК, составляющей 10-100 нмоль/мг. Длительность способа получения системы доставки ФНК составляет не более 0.5 часа, а с учетом приготовления основы для доставки (Si~NH2) - не более 20 часов.Before immobilization of the FNA, 0.5-1% acetic acid is added to the solution of the hydrolyzed product to pH 8-9 and a solution of Si ~ NH 2 with a concentration of 1-4 mg / ml in terms of Si and the ratio Si / NH 2 = 1 is obtained: (0.4-0.5). To the resulting Si ~ NH 2 solution (2-25 μl, 1-4 mg Si / ml) add 10-50 μl of a 10 -3 -10 -7 M solution of the corresponding FNA with a length of 10-1500 units with a ratio of 5-100 nmol FNA per 1 mg Si and incubated in 0.1-0.2 M NaCl solution, at room temperature for 20-30 minutes. PNAs quantitatively bind to Si ~ NH 2 due to the strong electrostatic interaction of positively charged amino groups and negatively charged internucleotide phosphate groups of the oligonucleotide. A system for delivering FNA to cells is obtained, which is a Si ~ NH 2 ⋅ FNA nanocomposite with a particle size of 1 to 8 nm (according to atomic force microscopy) with a concentration of 0.25-1 mg / ml for Si and with a FNA capacity of 10- 100 nmol / mg. The duration of the method of obtaining the delivery system of FNK is not more than 0.5 hours, and taking into account the preparation of the basis for delivery (Si ~ NH 2 ) - not more than 20 hours.

Получаемая заявляемым способом система доставки ФНК в клетки представляет собой растворимый нанокомпозит, состоящий из аминосиланола, с аминогруппами которого электростатически связаны ФНК, способные проникать в эукариотические клетки предположительно путем обычного эндоцитоза, без использования дополнительных внешних методов трансфекции, и направленно воздействовать на внутриклеточный генетический материал и подавлять его дальнейшее функционирование.Obtained by the claimed method, the delivery system of FNK into cells is a soluble nanocomposite consisting of aminosilanol, with amino groups of which FNC are electrostatically coupled, capable of penetrating into eukaryotic cells presumably by conventional endocytosis, without using additional external methods of transfection, and targeting intracellular genetic material and suppressing its further functioning.

Определяющими отличительными признаками предлагаемого способа от прототипа являются:The defining hallmarks of the proposed method from the prototype are:

1) В качестве основы для доставки ФНК в клетки используют аминозамещенный силанол (Si~NH2) в концентрации 1-4 мг Si/мл, который получают гидролизом в воде аминопропилтриэтоксисилана при рН 10-11 и температуре 20-70°С с последующей нейтрализацией до рН 8-9, что позволяет упростить способ и сократить его длительность за счет сокращения стадий, удешевить за счет исключения дорогого препарата полилизина и обеспечить получение растворимого препарата, что является преимуществом для использования в медицинской практике.1) Amino-substituted silanol (Si ~ NH 2 ) at a concentration of 1-4 mg Si / ml, which is obtained by hydrolysis of aminopropyltriethoxysilane in water at a pH of 10-11 and a temperature of 20-70 ° C, followed by neutralization, is used as the basis for the delivery of FNA to cells to a pH of 8-9, which allows to simplify the method and reduce its duration by reducing the stages, reduce the cost of eliminating the expensive drug polylysine and provide a soluble drug, which is an advantage for use in medical practice.

2) Последующую иммобилизацию ФНК на Si~NH2 осуществляют путем добавления рассчитанного количества 10-3-10-7М раствора соответствующего ФНК к прозрачному раствору Si~NH2 с концентрацией 1-4 мг/мл в пересчете на Si в 0.1-0.2 М NaCl при рН 8-9 и перемешивания при комнатной температуре в течение 20-30 минут, что обеспечивает прочное связывание ФНК с Si~NH2 за счет электростатического взаимодействия отрицательно заряженных фосфатных групп ФНК с положительно заряженными аминогруппами.2) Subsequent immobilization of the FNA on Si ~ NH 2 is carried out by adding the calculated amount of a 10 -3 -10 -7 M solution of the corresponding FNA to a clear Si ~ NH 2 solution with a concentration of 1-4 mg / ml in terms of Si in 0.1-0.2 M NaCl at pH 8-9 and stirring at room temperature for 20-30 minutes, which ensures strong binding of the FNA to Si ~ NH 2 due to the electrostatic interaction of negatively charged phosphate groups of FNA with positively charged amino groups.

Заявляемый способ обеспечивает получение нанокомпозита с практически такой же емкостью по ФНК, как и известный способ (прототип), и высокой прочностью связывания ФНК с Si~NH2, основанной на сильном электростатическом взаимодействии фосфатных групп с аминогруппами. Предлагаемый способ, как и известный способ (прототип), обеспечивает возможность присоединять к Si~NH2 любые ФНК и их аналоги, содержащие отрицательные заряды на межнуклеотидных фосфатных группах. Предлагаемый способ, как и известный способ (прототип), обеспечивает высокую противовирусную активность получаемых препаратов в отношении вируса гриппа А. Кроме этого, предлагаемый способ обеспечивает возможность получения прозрачных растворов нанокомпозитов, не содержащих агрегированных наночастиц, склонных к осаждению.The inventive method provides for the production of a nanocomposite with almost the same FNA capacity as the known method (prototype) and high binding strength of FNA to Si ~ NH 2 , based on the strong electrostatic interaction of phosphate groups with amino groups. The proposed method, as well as the known method (prototype), provides the ability to attach to Si ~ NH 2 any FNA and their analogues containing negative charges on internucleotide phosphate groups. The proposed method, like the known method (prototype), provides high antiviral activity of the obtained preparations against influenza A virus. In addition, the proposed method provides the possibility of obtaining transparent solutions of nanocomposites that do not contain aggregated nanoparticles prone to precipitation.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами конкретного выполнения.The invention is illustrated by the following examples of specific performance.

Пример 1. Получение Si~NH2.Example 1. Obtaining Si ~ NH 2 .

К 120 мл нагретой на водяной бане до 70°С дистиллированной воде по каплям добавляют 4 г 3-аминопропилтриэтоксисилана (508 мг по Si) до рН 10 и перемешивают при этой температуре 8 ч. Концентрация продукта составляет 4.2 мг Si/мл. По данным титрования продукта мольное соотношение NH2/Si в образце составляет 1:1. После охлаждения до комнатной температуры к раствору добавляют 0.5% раствор уксусную кислоту до рН 8. Концентрация наночастиц Si~NH2 после нейтрализации составляет 4 мг Si/мл. По данным титрования продукта мольное соотношение NH2/Si после нейтрализации составляет 0.5. Размер наночастиц - 1-8 нм по данным атомной силовой микроскопии.To 120 ml of distilled water heated in a water bath at 70 ° C, 4 g of 3-aminopropyltriethoxysilane (508 mg Si) are added dropwise to pH 10 and stirred at this temperature for 8 hours. The product concentration is 4.2 mg Si / ml. According to the titration of the product, the molar ratio of NH 2 / Si in the sample is 1: 1. After cooling to room temperature, 0.5% acetic acid solution was added to the solution to pH 8. The concentration of Si ~ NH 2 nanoparticles after neutralization was 4 mg Si / ml. According to the product titration, the molar ratio of NH 2 / Si after neutralization is 0.5. The size of the nanoparticles is 1-8 nm according to atomic force microscopy.

Пример 2. Получение Si~NH2.Example 2. Obtaining Si ~ NH 2 .

Способ осуществляют аналогично примеру 1, за исключением того, что гидролиз 3-аминопропилтриэтоксисилана проводят при 20°С и рН 11 и перемешивают при этой температуре 15 ч. После гидролиза раствор нейтрализуют 1%-ный раствор уксусной кислотой до значений рН 9.The method is carried out analogously to example 1, except that the hydrolysis of 3-aminopropyltriethoxysilane is carried out at 20 ° C and pH 11 and stirred at this temperature for 15 hours. After hydrolysis, the solution is neutralized with a 1% solution of acetic acid to pH 9.

Пример 3. Получение Si~NH2.Example 3. Obtaining Si ~ NH 2 .

Способ осуществляют аналогично примеру 1, за исключением того, что в реакции гидролиза используют 127 мг 3-аминопропилтриэтоксисилана (в пересчете на Si). Концентрация продукта после нейтрализации составляет 1 мг Si/мл.The method is carried out analogously to example 1, except that 127 mg of 3-aminopropyltriethoxysilane (in terms of Si) is used in the hydrolysis reaction. The concentration of the product after neutralization is 1 mg Si / ml.

Пример 4. Получение композита Si~NH2⋅oligo1Example 4. Obtaining a composite of Si ~ NH 2 ⋅oligo1

К 25 мкл Si~NH2, полученному по примеру 1, добавляют 65 мкл 0.16 М NaCl и 10 мкл 10-3 М (10 нмоль) раствора 10-звенного олигонуклеотида d(5'CATCCAGGATp)* (oligo1). Реакционную смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут. Получают продукт Si~NH2⋅oligo1 с концентрацией 1 мг/мл (по Si) и емкостью по олигонуклеотиду 100 нмоль/мг Si.65 μl of 0.16 M NaCl and 10 μl of 10 -3 M (10 nmol) of a solution of 10-unit oligonucleotide d ( 5 ' CATCCAGGATp) * (oligo1) are added to 25 μl of Si ~ NH 2 obtained in Example 1. The reaction mixture was incubated at room temperature for 30 minutes. Get the product Si ~ NH 2 ⋅oligo1 with a concentration of 1 mg / ml (Si) and a capacity for oligonucleotide 100 nmol / mg Si.

Пример 5. Получение композитов Si~NH2⋅oligo2 и Si~NH2⋅oligo3.Example 5. Obtaining composites Si ~ NH 2 ⋅oligo2 and Si ~ NH 2 ⋅oligo3.

Способ осуществляют аналогично примеру 4, кроме того, что в качестве олигонуклеотидов используют 10-4 М растворы 21-звенных олигодезоксирибонуклеотидов d(5'GCAAAAGCAGGGTAGATAATCp) (oligo2) или d(5'GATCAACTCCATATGCCATGTp) (oligo3) (по 25 мкл, 2.5 нмоль), и реакцию проводят в 0.2 М NaCl, для чего в реакционную смесь добавляют 50 мкл 0.4 М NaCl. Получают композиты Si~NH2⋅oligo2 и Si~NH2⋅oligo3 с концентрацией 1 мг/мл (по Si) и с емкостью по олигонуклеотиду 25 нмоль/мг Si.The method is carried out analogously to example 4, except that 10 -4 M solutions of 21-unit oligodeoxyribonucleotides d ( 5 ' GCAAAAGCAGGGTAGATAATCp) (oligo2) or d ( 5' GATCAACTCCATATGCCATGTp) (oligo3) (25 μl each) are used as oligonucleotides and the reaction is carried out in 0.2 M NaCl, for which 50 μl of 0.4 M NaCl is added to the reaction mixture. Composites Si ~ NH 2 ⋅oligo2 and Si ~ NH 2 ⋅oligo3 are obtained with a concentration of 1 mg / ml (by Si) and with an oligonucleotide capacity of 25 nmol / mg Si.

Пример 6. Получение композита Si~NH2⋅oligo4 и Si~NH2⋅oligo5.Example 6. Obtaining a composite of Si ~ NH 2 ⋅oligo4 and Si ~ NH 2 ⋅oligo5.

Способ аналогичен примеру 5, отличается тем, что в качестве олигонуклеотида используют 50 мкл 10-4 М (5 нмоль) раствора 30-звенного олигорибонуклеотида 5'CUGCUGUACAUGGCACAUGGAAUUGAUUA (oligo4) или 50 мкл 10-4 М раствора 16-звенного аналога олигодезоксирибонуклеотида dps(5'CCGTCGGTACCGGCCG) (oligo5), содержащего межнуклеотидные тиофосфатные группы (ps), и реакцию проводят в 0.1 М NaCl, для чего в реакционную смесь добавляют 25 мкл 0.4 М NaCl. Получают нанокомпозиты Si~NH2⋅oligo4 и Si~NH2⋅oligo5 с концентрацией 1 мг/мл (по Si) и с емкостью по олигонуклеотидам 50 нмоль/мг Si.The method is similar to example 5, characterized in that 50 μl of a 10 -4 M (5 nmol) solution of a 30-unit 5 -unit oligoribonucleotide CUGCUGUACAUGGCACAUGGAAUUGAUUA (oligo4) or 50 μl of a 10 -4 M solution of a 16-unit oligodeoxyribonucleotide d ps analogue are used as an oligonucleotide 5 ' CCGTCGGTACCGGCCG) (oligo5) containing internucleotide thiophosphate groups (ps) and the reaction is carried out in 0.1 M NaCl, for which 25 μl of 0.4 M NaCl is added to the reaction mixture. Si ~ NH 2 ⋅oligo4 and Si ~ NH 2 ⋅oligo5 nanocomposites are obtained with a concentration of 1 mg / ml (by Si) and with an oligonucleotide capacity of 50 nmol / mg Si.

Пример 7. Получение композита Si~NH2⋅oligo5.Example 7. Obtaining a composite of Si ~ NH 2 ⋅oligo5.

Способ аналогичен примеру 4, отличается тем, что в качестве олигонуклеотида используют 50 мкл 1500-звенного фрагмента ДНК (oligo5) с концентрацией 2⋅10-7 М (1⋅10-2 нмоль), 2 мкл Si~NH2, полученного по примеру 3 и 48 мкл 0.4 М NaCl. Получают нанокомпозит Si~NH2⋅oligo5 с концентрацией 0.02 мг/мл (по Si) и с емкостью по олигонуклеотиду 5 нмоль/мг Si.The method is similar to example 4, characterized in that 50 μl of a 1500-unit DNA fragment (oligo5) with a concentration of 2⋅10 -7 M (1⋅10 -2 nmol), 2 μl of Si ~ NH 2 obtained according to example 1 is used as an oligonucleotide 3 and 48 μl of 0.4 M NaCl. Get a nanocomposite Si ~ NH 2 ⋅oligo5 with a concentration of 0.02 mg / ml (Si) and with an oligonucleotide capacity of 5 nmol / mg Si.

Пример 8. Оценка способности нанокомпозита Si~NH2⋅ФНК проникать в клетки.Example 8. Assessment of the ability of the nanocomposite Si ~ NH 2 ⋅FNA to penetrate into cells.

В эксперименте используют клетки линий HeLa и MDCK (полученные из коллекции культур клеток ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор», п. Кольцово, Новосибирская обл.), красители для окрашивания клеточных ядер и мембран (DAPI и Cell Mask Plasma Membrane Stain) и питательную среду для клеток DMEM, эмбриональную телячью сыворотку (ЭТС), антибиотики, буфер PBS (Invitrogen, США). Для приготовления образцов для конфокальной микроскопии клетки культивируют в полной среде DMEM в 8-луночных камерах до достижения 70% монослоя, после этого полную среду заменяют на среду без сыворотки, стрептомицина и пенициллина (160 мкл). Затем добавляют исследуемый нанокомпозит SiO2 Si~NH2⋅oligo2(Flu), полученный, как описано в примере 5 с использованием олигонуклеотида, меченного флуоресцеином (40 мкл в лунку) до конечной концентрации 0.01 мг/мл по Si и 0.25 нмоль/мл по олигонуклеотиду. После 24-ч инкубации клетки отмывают буфером PBS, фиксируют и окрашивают красителями (DAPI для ядер, и Cell Mask Plasma Membrane Stain для клеточных мембран) в течение 10 мин. Препараты анализируют с помощью конфокального лазерного сканирующего микроскопа LSM 510 UV MetaMicroscope (Carl Zeiss, Inc.). На фиг. 1 представлены изображения клеток HeLa (А) и MDCK (Б) (а - ядра, б - границы клеток и внутриклеточные актиновые филаменты, в - флуоресцеин-меченные нанокомпозиты). Видно, что в случае обоих типов клеток (HeLa и MDCK) нанокомпозит Sid Si~NH2⋅oligo2(Flu) обнаруживается внутри клеток.In the experiment, HeLa and MDCK cell lines (obtained from the cell culture collection of the Federal State Institution of Biological Research, Vektor Vector, Koltsovo, Novosibirsk Region), dyes for staining cell nuclei and membranes (DAPI and Cell Mask Plasma Membrane Stain) and nutrient medium for DMEM cells, fetal calf serum (ETS), antibiotics, PBS buffer (Invitrogen, USA). To prepare samples for confocal microscopy, cells were cultured in complete DMEM in 8-well chambers until a 70% monolayer was reached, after which the complete medium was replaced with serum-free, streptomycin and penicillin (160 μl). Then, the studied nanocomposite SiO 2 Si ~ NH 2 ⋅oligo2 (Flu) is added, obtained as described in Example 5 using a fluorescein-labeled oligonucleotide (40 μl per well) to a final concentration of 0.01 mg / ml for Si and 0.25 nmol / ml for oligonucleotide. After a 24-hour incubation, cells were washed with PBS buffer, fixed and stained with dyes (DAPI for nuclei, and Cell Mask Plasma Membrane Stain for cell membranes) for 10 min. The preparations were analyzed using a LSM 510 UV MetaMicroscope confocal laser scanning microscope (Carl Zeiss, Inc.). In FIG. Figure 1 shows images of HeLa (A) and MDCK (B) cells (a - nuclei, b - cell boundaries and intracellular actin filaments, c - fluorescein-labeled nanocomposites). It is seen that in the case of both types of cells (HeLa and MDCK), the Sid Si ~ NH 2 ⋅oligo2 (Flu) nanocomposite is found inside the cells.

Пример 9. Оценка цитотоксичности нанокомпозитов.Example 9. Assessment of the cytotoxicity of nanocomposites.

Для тестирования цитотоксичности препаратов используют перевиваемую культуру клеток MDCK, полученную из коллекции культур клеток ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор». По 100 мкл суспензии клеток MDCK с концентрацией 100 000 кл./мл в среде RPMI-1640, содержащей 5% сыворотки крови плодов коровы, вносят в 96-луночные планшеты 12-канальной автоматической пипеткой. Планшеты с клетками помещают в термостат при температуре 37°С, 5% СО2 и 100% влажности на 2 сут до образования клеточного монослоя.To test the cytotoxicity of the preparations, a transplantable MDCK cell culture obtained from the collection of cell cultures of the FBSI SSC VB "Vector" is used. 100 μl of a suspension of MDCK cells with a concentration of 100,000 cells / ml in RPMI-1640 medium containing 5% blood serum of cow fruits was pipetted into 96-well plates using a 12-channel automatic pipette. Tablets with cells are placed in a thermostat at a temperature of 37 ° C, 5% CO 2 and 100% humidity for 2 days before the formation of a cell monolayer.

Для определения токсических концентраций образец разбавляют в несколько раз (в 2, 4, 8, 16, 20 раз, 32, 64 раза) средой RPMI-1640, содержащей 5% сыворотки крови плодов коровы. Образец после каждого разведения вносят на монослой клеток MDCK в 4-х лунках по 100 мкл/лунку планшета и оставляют в термостате при температуре 37°С, 5% СО2 и 100% влажности. Токсическое действие образца на монослой клеток MDCK оценивают через 2 суток по соотношению живых и мертвых клеток с помощью инвертированного микроскопа.To determine toxic concentrations, the sample is diluted several times (2, 4, 8, 16, 20 times, 32, 64 times) with RPMI-1640 medium containing 5% blood serum of cow fruits. After each dilution, the sample is added to the monolayer of MDCK cells in 4 wells of 100 μl / well of the plate and left in an incubator at a temperature of 37 ° C, 5% CO 2 and 100% humidity. The toxic effect of the sample on the monolayer of MDCK cells is evaluated after 2 days by the ratio of living and dead cells using an inverted microscope.

Эксперименты повторены 2-3 раза. Результаты представлены на фиг. 2, где квадраты - Si~NH2, треугольники - Si~NH2⋅oligo2. Из фиг. 2 видно, что выживаемость клеток примерно одинакова для исследуемых образцов, и величина ТС50 (концентрация препарата, при которой гибнет 50% клеток) составляет ~0.65 мг/мл в пересчете на Si.The experiments were repeated 2-3 times. The results are shown in FIG. 2, where the squares are Si ~ NH 2 , the triangles are Si ~ NH 2 ⋅oligo2. From FIG. Figure 2 shows that cell survival is approximately the same for the studied samples, and the TC 50 value (the concentration of the drug at which 50% of the cells die) is ~ 0.65 mg / ml in terms of Si.

Пример 10. Исследование противовирусной активности нанокомпозитов.Example 10. The study of the antiviral activity of nanocomposites.

В экспериментах используют вирус гриппа A/chicken/Kurgan/05/2005 (H5N1) с исходным титром 106,5 ТЦД50/мл. Исследуют противовирусные свойства композитов Si~NH2⋅oligo2 и Si~NH2⋅oligo3, полученных как описано в примере 5, контрольного образца Si~NH2, полученного как в примере 1, а также образца TiO2-PL⋅oligo2, полученного известным способом (прототип). В качестве олигонуклеотидной части нанокомпозитов используют олигонуклеотиды: oligo2, комплементарный 3'-концу вирусной (-)РНК и имеющий выраженные противовирусные свойства по отношению к вирусу гриппа A H5N1, и oligo3, имеющий случайную последовательность той же длины.The experiments use the influenza virus A / chicken / Kurgan / 05/2005 (H5N1) with an initial titer of 10 6.5 TCD 50 / ml. The antiviral properties of the Si ~ NH 2 ⋅oligo2 and Si ~ NH 2 ⋅oligo3 composites prepared as described in Example 5, the control sample Si ~ NH 2 obtained as in Example 1, as well as the TiO 2 -PL⋅oligo2 sample prepared by known way (prototype). As the oligonucleotide part of the nanocomposites, oligonucleotides are used: oligo2, complementary to the 3'-end of the viral (-) RNA and having pronounced antiviral properties with respect to the influenza A H5N1 virus, and oligo3 having a random sequence of the same length.

Противовирусные свойства нанокомпозитов исследованы на культуре клеток MDCK. Используют среду DMEM с добавлением 2% FBS, глютамина и антибиотиков. Клетки культивируют, как описано в примере 13. Препараты разводят средой RPMI-1640, содержащей 2 мкг/мл трипсина, и вносят на монослой отмытых от сыворотки клеток MDCK в объеме 50 мкл на лунку 96-луночного планшета из расчета 0.1 мкМ по олигонуклеотиду (4 мкг/мл по Si) в конечной реакционной смеси. Концентрация препарата примерно в 150 раз меньше значения ТС50 (фиг. 2), т.е. используется нетоксическая концентрация. Реакционные смеси инкубируют при 37°С и 100% влажности в СО2-инкубаторе в течение 1 ч. Затем вносят вирус A/chicken/Kurgan/05/2005 (H5N1) в разведениях на среде RPMI-1640, содержащей 2 мкг/мл трипсина, от -1 до -8 с десятикратным шагом в объеме 50 мкл/лунку. В качестве контроля используют вирус A/chicken/Kurgan/05/2005 (H5N1) без добавления исследуемых препаратов. Инкубируют в течение 2 суток в CO2-термостате при 37°С и 100% влажности; определяют наличие вируса визуально под микроскопом по ЦПД и в РГА с 1% эритроцитами петуха. Все препараты были проверены на противовирусную активность при n=6.The antiviral properties of nanocomposites were studied on an MDCK cell culture. Use DMEM medium supplemented with 2% FBS, glutamine and antibiotics. Cells were cultured as described in Example 13. The preparations were diluted with RPMI-1640 medium containing 2 μg / ml trypsin and introduced onto a monolayer of serum-washed MDCK cells in a volume of 50 μl per well of a 96-well plate at the rate of 0.1 μM oligonucleotide (4 μg / ml by Si) in the final reaction mixture. The concentration of the drug is approximately 150 times lower than the TC 50 value (Fig. 2), i.e. non-toxic concentration is used. The reaction mixtures were incubated at 37 ° C and 100% humidity in a CO 2 incubator for 1 h. Then virus A / chicken / Kurgan / 05/2005 (H5N1) was added in dilutions on RPMI-1640 medium containing 2 μg / ml trypsin , from -1 to -8 with tenfold increments in a volume of 50 μl / well. As a control, the virus A / chicken / Kurgan / 05/2005 (H5N1) is used without adding the studied drugs. Incubated for 2 days in a CO 2 thermostat at 37 ° C and 100% humidity; determine the presence of the virus visually under a microscope by the CPD and in the RGA with 1% rooster red blood cells. All drugs were tested for antiviral activity at n = 6.

На фиг. 3 приведены значения титра вируса (в единицах log ТЦД50/мл) в клетках МДСК, зараженных вирусом и обработанных исследуемыми препаратами. Из фиг. 3 следует, что контрольные образцы Si~NН2 (исходный силанол) и Si~NH2⋅oligo3 (содержащий случайную нуклеотидную последовательность, не комплементарную вирусной РНК) не проявляют заметной противовирусной активности, т.е. не происходит достоверно значимого снижения титра вируса в клетках. Образец Si~NH2⋅oligo2 обладает высокой противовируной активностью, которая даже несколько превосходит таковую для образца TiO2-PL⋅oligo2, полученного известным способом (прототип): разница между значениями титра вируса в контроле и опытах с соответствующими образцами составляет 3.2 log и 2.6 log, что соответствует подавлению репродукции вируса в 1000 и 400 раз соответственно.In FIG. Figure 3 shows the values of the titer of the virus (in units of log TCD 50 / ml) in MDSC cells infected with the virus and treated with the studied drugs. From FIG. 3 it follows that the control samples Si ~ NH 2 (starting silanol) and Si ~ NH 2 ⋅oligo3 (containing a random nucleotide sequence that is not complementary to viral RNA) do not exhibit significant antiviral activity, i.e. there is no significantly significant decrease in virus titer in cells. The Si ~ NH 2 ⋅oligo2 sample has a high antiviral activity, which even slightly exceeds that for the TiO 2 -PL⋅oligo2 sample obtained in a known manner (prototype): the difference between the values of the titer of the virus in the control and experiments with the corresponding samples is 3.2 log and 2.6 log, which corresponds to the suppression of virus reproduction in 1000 and 400 times, respectively.

Предлагаемый способ позволяет существенно упростить и сократить длительность, а также расширить функциональные возможности известного способа (прототипа) и обеспечить получение нанокомпозитов, представляющих собой систему доставки фрагментов нуклеиновых кислот и их аналогов в клетки млекопитающих. При этом получаемые заявляемым способом нанокомпозиты обладают свойствами, подобными нанокомпозитам, получаемым известным способом, а именно: такой же емкостью по ФНК, в частности олигодезоксирибонуклеотиду, высокой прочностью связывания олигонуклеотида с основой, способностью проникать через клеточную мембрану, низкой цитотоксичностью и специфической противовирусной активностью по отношению к вирусу гриппа А.The proposed method can significantly simplify and reduce the duration, as well as expand the functionality of the known method (prototype) and provide nanocomposites, which are a delivery system for fragments of nucleic acids and their analogues in mammalian cells. Moreover, the nanocomposites obtained by the claimed method have properties similar to nanocomposites obtained by a known method, namely, the same FNA capacity, in particular, oligodeoxyribonucleotide, high binding strength of the oligonucleotide to the base, ability to penetrate through the cell membrane, low cytotoxicity and specific antiviral activity with respect to to influenza A.

Claims (1)

Способ получения системы доставки фрагментов нуклеиновых кислот (ФНК) в клетки млекопитающих, включающий синтез основы для доставки ФНК в клетки и иммобилизацию ФНК на основу, отличающийся тем, что в качестве основы используют аминозамещенный силанол (Si~NH2) в концентрации 1-4 мг Si/мл, который получают гидролизом в воде аминопропилтриэтоксисилана при рН 10-11 и температуре 20-70°С с последующей нейтрализацией силанола 0,5-1%-ным раствором уксусной кислоты до рН 8-9, далее к полученному раствору Si~NH2 добавляют рассчитанное количество 10-3-10-7 М раствора соответствующего ФНК в соотношении 5-100 нмоль ФНК на 1 мг Si и инкубируют в 0,1-0,2 М растворе NaCl при комнатной температуре в течение 20-30 мин.A method for producing a system for delivering nucleic acid fragments (FNAs) to mammalian cells, comprising synthesizing a base for delivering FNA to cells and immobilizing FNA to a base, characterized in that amine-substituted silanol (Si ~ NH 2 ) in a concentration of 1-4 mg is used as the base Si / ml, which is obtained by hydrolysis in water of aminopropyltriethoxysilane at pH 10-11 and a temperature of 20-70 ° C, followed by neutralization of silanol with a 0.5-1% solution of acetic acid to pH 8-9, then to the resulting solution Si ~ NH 2 add the calculated amount of 10 -3 -10 -7 M sol 5-100 nmol of FNA per 1 mg Si and incubated in a 0.1-0.2 M NaCl solution at room temperature for 20-30 min.
RU2016136040A 2016-09-06 2016-09-06 Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells RU2646113C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016136040A RU2646113C1 (en) 2016-09-06 2016-09-06 Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016136040A RU2646113C1 (en) 2016-09-06 2016-09-06 Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2646113C1 true RU2646113C1 (en) 2018-03-01

Family

ID=61568375

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016136040A RU2646113C1 (en) 2016-09-06 2016-09-06 Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2646113C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2693491C2 (en) * 2014-12-18 2019-07-03 Омиа Интернэшнл Аг Method of producing pharmaceutical delivery system

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6653124B1 (en) * 2000-11-10 2003-11-25 Cytoplex Biosciences Inc. Array-based microenvironment for cell culturing, cell monitoring and drug-target validation
RU2563171C1 (en) * 2014-10-15 2015-09-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) Method of producing nanosized system for delivering azidothymidine triphosphate to mammalian cells

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6653124B1 (en) * 2000-11-10 2003-11-25 Cytoplex Biosciences Inc. Array-based microenvironment for cell culturing, cell monitoring and drug-target validation
RU2563171C1 (en) * 2014-10-15 2015-09-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) Method of producing nanosized system for delivering azidothymidine triphosphate to mammalian cells

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KAMISETTY N. K. et al. "Stabilization of the immobilized linkers and DNA probes for DNA microarray fabrication by end-capping of the remaining unreacted silanol on the glass", Journal of Biotechnology, 2009, v.140, p.242-245. *
KAMISETTY N. K. et al. "Stabilization of the immobilized linkers and DNA probes for DNA microarray fabrication by end-capping of the remaining unreacted silanol on the glass", Journal of Biotechnology, 2009, v.140, p.242-245. STROTHER T. et al. "Covalent attachment of oligodeoxyribonucleotides to amine-modified Si (001) surfaces", Nucleic Acids Research, 2000, v.28, no.18, p.3535-3541. *
STROTHER T. et al. "Covalent attachment of oligodeoxyribonucleotides to amine-modified Si (001) surfaces", Nucleic Acids Research, 2000, v.28, no.18, p.3535-3541. *
ШЛЯПНИКОВ Ю. М. "Разработка методов иммобилизации и детекции фрагментов ДНК на микрочипах". Авто, Москва-2010, 21 с. *
ШЛЯПНИКОВ Ю. М. "Разработка методов иммобилизации и детекции фрагментов ДНК на микрочипах". Автореферат, Москва-2010, 21 с. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2693491C2 (en) * 2014-12-18 2019-07-03 Омиа Интернэшнл Аг Method of producing pharmaceutical delivery system

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Üzgün et al. PEGylation improves nanoparticle formation and transfection efficiency of messenger RNA
Sellner et al. DNA nanotubes as intracellular delivery vehicles in vivo
Gérard et al. Dendrimer-enabled DNA delivery and transformation of Chlamydia pneumoniae
Eroglu et al. A nonviral pHEMA+ chitosan nanosphere-mediated high-efficiency gene delivery system
Das et al. A peptide nucleic acid–aminosugar conjugate targeting transactivation response element of HIV-1 RNA genome shows a high bioavailability in human cells and strongly inhibits Tat-mediated transactivation of HIV-1 transcription
US10155946B2 (en) Particle-nucleic acid conjugates and therapeutic uses related thereto
Bhosle et al. Unifying in vitro and in vivo IVT mRNA expression discrepancies in skeletal muscle via mechanotransduction
Khalil et al. Functionalization of microparticles with mineral coatings enhances non-viral transfection of primary human cells
RU2646113C1 (en) Method for making system of delivery of nucleic acid fragments to mammalian cells
Pan et al. Efficient transfection by using PDMAEMA-modified SINWAs as a platform for Ca2+-dependent gene delivery
Repkova et al. Efficient inhibition of influenza A viral replication in cells by deoxyribozymes delivered by nanocomposites
Amirkhanov et al. Composites of peptide nucleic acids with titanium dioxide nanoparticles. IV. Antiviral activity of nanocomposites containing DNA/PNA duplexes
Soliman et al. Responsive polyelectrolyte complexes for triggered release of nucleic acid therapeutics
Zhu et al. A novel nonviral nanoparticle gene vector: Poly-L-lysine-silica nanoparticles
RU2499045C1 (en) Method for obtaining nanosized delivery system of fragments of nucleic acids and their analogues to cells of mammals
S Levina et al. TiO2∼ Deoxyribozyme nanocomposites as delivery system and efficient site-specific agents for cleavage of RNA targets
Hasaneen et al. Preparation, optimization, characterization and antimicrobial activity of chitosan and calcium nanoparticles loaded with Streptomyces Rimosus extracted compounds as drug delivery systems
Luisetto et al. Graphene and derivates: physico-chemical and toxicology properties in the mRNA vaccine manifacturing strategy
RU2466188C2 (en) Influenza a virus propagation inhibitor on basis of complex of titanium dioxide nanoparticles and oligonucleotide
Asgatay et al. Polynorbornene polycationic polymers as gene transfer agents: Influence of the counterion for in vitro transfection
JP2005176830A (en) Nucleic acid introduction carrier
JPWO2005095621A1 (en) Gene transfer regulation method and system using artificial magnetic material
Dick et al. Mineralized polyplexes for gene delivery: improvement of transfection efficiency as a consequence of calcium incubation and not mineralization
US20100190257A1 (en) Self-Assembly of a Cell-Microparticle Hybrid
US20080261045A1 (en) Composite and layered particles for efficient delivery of polyelectrolytes

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180907

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20220112

PD4A Correction of name of patent owner