RU2324737C1 - Process of obtaining transgene tobacco plants with increaed content of prolyl - Google Patents
Process of obtaining transgene tobacco plants with increaed content of prolyl Download PDFInfo
- Publication number
- RU2324737C1 RU2324737C1 RU2006136956/13A RU2006136956A RU2324737C1 RU 2324737 C1 RU2324737 C1 RU 2324737C1 RU 2006136956/13 A RU2006136956/13 A RU 2006136956/13A RU 2006136956 A RU2006136956 A RU 2006136956A RU 2324737 C1 RU2324737 C1 RU 2324737C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- gene
- dna
- pdh
- exon
- proline
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к генетической инженерии высших растений, и касается способа получения трансгенных растений табака с повышенным содержанием пролина.The invention relates to the field of biotechnology, in particular to the genetic engineering of higher plants, and relates to a method for producing transgenic tobacco plants with a high content of proline.
Известны два способа получения трансгенных растений с модифицированным метаболизмом пролина: с помощью повышения экспрессии гена Δ1-пирролин-5-карбоксилатсинтетазы (P5CS), отвечающего за синтез пролина (Hu С-А.A., Delauney A.J., Verma D. P.S. // Proc. Natd. Acad. Sci. USA. 1992. V.89. P.9354-9358), либо снижения активности фермента пролиндегидрогеназы, определяющего скорость деградации пролина (Kiyosue Т., Yoshiba Y., Yamagichi-Shinozaki К., Shinozaki К // Plant Cell. 1996. V.8. P.1323-1335). Основным недостатком данных способов является низкая экологическая безопасность, поскольку отбор трансформантов производят на средах, содержащих антибиотик (канамицин).Two methods for producing transgenic plants with a modified proline metabolism are known: by increasing the expression of the Δ1-pyrrolin-5-carboxylate synthetase (P5CS) gene responsible for the synthesis of proline (Hu C-A.A., Delauney AJ, Verma DPS // Proc. Natd Acad. Sci. USA. 1992. V.89. P.9354-9358), or a decrease in the activity of the proline dehydrogenase enzyme, which determines the rate of proline degradation (Kiyosue T., Yoshiba Y., Yamagichi-Shinozaki K., Shinozaki K // Plant Cell. 1996. V.8. P.1323-1335). The main disadvantage of these methods is low environmental safety, since the selection of transformants is carried out on media containing an antibiotic (kanamycin).
Наиболее ближайшим к заявленному способу прототипом является способ получения трансгенных растений табака, экспрессирующих кДНК гена пролиндегидрогеназы (PDH) в антисмысловой (обратной) ориентации, отвечающий за деградацию пролина (Nanjo Т., Kobayashi M., Yoshiba Y. et. al. // FEBS Lett. 1999. V.461. P.205-210). Способ заключается в клонировании кДНК гена PDH из арабидопсиса (Arabidopsis thaliana) в антисмысловой ориентации под контролем конститутивного промотора 35S из вируса мозаики цветной капусты, передаче полученной рекомбинантной плазмиды в штамм агробактерии (Agribacterium tumefaciens) и получении трансгенных растений арабидопсиса (Arabidopsis thaliana) с помощью отбора и генерации на селективной среде с канамицином.The closest to the claimed method prototype is a method for producing transgenic tobacco plants expressing cDNA of the proline dehydrogenase (PDH) gene in the antisense (reverse) orientation, responsible for proline degradation (Nanjo T., Kobayashi M., Yoshiba Y. et. Al. // FEBS Lett. 1999. V.461. P.205-210). The method consists in cloning the cDNA of the PDH gene from Arabidopsis (Arabidopsis thaliana) in the antisense orientation under the control of the constitutive 35S promoter from cauliflower mosaic virus, transferring the obtained recombinant plasmid to an agrobacterium tumefaciens strain and obtaining Arabidopsis arabidopsis transgenic plants and generation on selective medium with kanamycin.
Основными недостатком прототипа являются:The main disadvantage of the prototype are:
1. Необходимость введения в геном растений гена устойчивости к канамицину в составе Т-ДНК рекомбинантной плазмиды, который не играет никакой другой функциональной роли кроме возможности отбора.1. The need to introduce into the plant genome of the kanamycin resistance gene in the composition of T-DNA recombinant plasmids, which does not play any other functional role except the possibility of selection.
2. Использование для отбора трансгенных растений селективной среды с добавлением антибиотика канамицина, что не позволяет классифицировать растения на повышенное содержание пролина, связанное со стрессоустойчивостью.2. The use of a selective medium for the selection of transgenic plants with the addition of the antibiotic kanamycin, which does not allow the plants to be classified into high proline levels associated with stress resistance.
Технической задачей настоящего изобретения является упрощение способа за счет оптимизации генетической конструкции для трансформации растений и повышение его экологической безопасности.An object of the present invention is to simplify the method by optimizing the genetic construct for plant transformation and increasing its environmental safety.
Поставленная техническая задача достигается предлагаемым способом, заключающимся в следующем.The technical task is achieved by the proposed method, which consists in the following.
Конструируют рекомбинантную плазмидную ДНК путем выделения первого экзона гена PDH из генома арабидопсиса (Arabidopsis thaliana) с помощью ПЦР со специфическими праймерами с последующим соединением фрагментов в прямой и обратной ориентациях в полилинкере Т-ДНК области бинарной векторной плазмиды рВi121. В результате получают рекомбинантную плазмидную ДНК pBi-2E, размером 14099 п.н., обеспечивающую перенос целевой последовательности ДНК в геном растений и экспрессию двуцепочечного супрессора гена PDH.Recombinant plasmid DNA was constructed by isolating the first exon of the PDH gene from the Arabidopsis genome (Arabidopsis thaliana) using PCR with specific primers, followed by linking the fragments in the forward and reverse orientations in the T-DNA polylinker region of the pBi121 binary vector plasmid. The result is a recombinant plasmid DNA pBi-2E, size 14099 bp, providing transfer of the target DNA sequence to the plant genome and expression of the double-stranded suppressor of the PDH gene.
Рекомбинантная плазмида состоит из следующих элементов:Recombinant plasmid consists of the following elements:
- ДНК векторной плазмиды размером 14758 п.н.- DNA of a vector plasmid with a size of 14758 bp
- фрагмента ДНК, содержащего первый экзон гена PDH в прямой ориентации размером 545 п.н.- a DNA fragment containing the first exon of the PDH gene in a direct orientation of 545 bp
- фрагмента ДНК, содержащего первый экзон и фрагмент первого интрона гена PDH размером 691 п.н. в обратной ориентации;- a DNA fragment containing the first exon and a fragment of the first intron of the PDH gene of size 691 bp in reverse orientation;
- Промотора 35S РНК из генома вируса мозаики цветной капусты;- 35S RNA promoter from the cauliflower mosaic virus genome;
- 3'НТР области гена нопалинсинтазы.- 3'NTR region of the nopaline synthase gene.
Сконструированную рекомбинантную плазмиду pBi-2E, несущую последовательность гена PDH, переносят в штамм агробактерии (Agrobacterium tumefaciens) AGLO с последующей прямой трансформацией листовых дисков табака (Nicotiana tabacum) SR1 сокультивацией с агробактерией с последующим отбором и генерацией непосредственно на средах, содержащих NaCl.The constructed recombinant plasmid pBi-2E, carrying the PDH gene sequence, is transferred to the agrobacterium (Agrobacterium tumefaciens) AGLO strain followed by direct transformation of tobacco leaf discs (Nicotiana tabacum) SR1 by co-cultivation with agrobacterium followed by selection and generation of NaCl directly onto media.
Физическая карта плазмиды pBi-2E с указанием генетических маркеров приведена на фиг.1, где pdh exoni - нуклеотидная последовательность первого экзона гена PDH арабидопсиса; pdh intron - фрагмент первого интрона гена PDH арабидопсиса; CaMV 35S pro - промотор гена 35S РНК вируса мозаики цветной капусты; NOS 3'UTR-3'-нетранслируемый район гена нопалинсинтазы из Ti-плазмиды агробактерии (Agrobacterium tumefaciens); NOS pro - промотор гена нопалинсинтазы; NPTII-ген неомицинфосфотрансферазы II; LB, RB - левая и правая границы Т-ДНК области.A physical map of the plasmid pBi-2E with genetic markers is shown in figure 1, where pdh exoni is the nucleotide sequence of the first exon of the Arabidopsis PDH gene; pdh intron - fragment of the first intron of the PDH gene of Arabidopsis;
Определяющими отличительными признаками заявляемого способа по сравнению с прототипом, являются:The defining distinguishing features of the proposed method in comparison with the prototype are:
1. В качестве векторной плазмиды используют вектор рВi121, в котором ген β-глюкуронидазы был заменен на последовательности гена PDH, соединенных в прямой и обратной ориентациях, что позволило получить конструкцию меньшего размера, более оптимальную для трансформации.1. As the vector plasmid, the pBi121 vector is used, in which the β-glucuronidase gene has been replaced by PDH gene sequences connected in direct and reverse orientations, which allowed us to obtain a smaller construct that is more optimal for transformation.
2. Используют двуцепочечный супрессор, что более эффективно, чем использование антисмыслового для подавления активности генов (Wang M-B. and Waterhouse Р.М. // Plant Molecular Biology. 2000. V.43. P.67-82). В прототипе был использован вектор рВЕ2113, где кДНК гена PDH в антисмысловой ориентации была встроена перед геном β-глюкуронидазы.2. Use a double-stranded suppressor, which is more effective than using antisense to suppress gene activity (Wang M-B. And Waterhouse, RM // Plant Molecular Biology. 2000. V.43. P.67-82). In the prototype, the vector pBE2113 was used, where the cDNA of the PDH gene in the antisense orientation was inserted before the β-glucuronidase gene.
3. Отбор трансгенных растений осуществляют непосредственно на стрессовом фоне, а именно на среде, содержащей 250 mM NaCl.3. The selection of transgenic plants is carried out directly on a stressful background, namely on a medium containing 250 mM NaCl.
Изобретение поясняется следующими примерами конкретного выполнения способа.The invention is illustrated by the following examples of specific performance of the method.
Пример 1Example 1
Конструирование рекомбинантной плазмиды pBi-2EConstruction of the recombinant plasmid pBi-2E
Конструирование двуцепочечного супрессора в составе вектора pBi121 осуществляли посредством тройного лигирования. В конструкцию собирали три фрагмента: первый экзон гена пролиндегидрогеназы, первый экзон гена PDH с частью первого интрона и фрагмент плазмиды pBi121, содержащий в Т-области ген NPTII, промотор 35S РНК вируса мозаики цветной капусты и 3'-нетранслируемый район гена нопалинсинтазы, включающий сигнал полиаденилирования. Первый экзон гена PDH арабидопсиса был получен с помощью ПЦР (праймеры: 5'-aacaaactggatccggcgatcttac-3'; 5'-gagatgttggtctagatttggcagc-3') и клонирован в плазмиде pBlueScript KSII по сайтам рестрикции BamHI и XbaI. Далее его выделяли с помощью рестриктаз BamHI и HindIII; ПЦР-ный фрагмент первого экзона гена PDH с частью первого интрона гидролизовали рестриктазой HindIII, плазмиду pBi121 гидролизовали рестриктазами BamHI и Есl136II. Продукты рестрикции разделяли в 1% агарозном геле, гель окрашивали раствором бромистого этидия в воде (1 мкг/мл) и методом сорбции ДНК на силикагеле выделяли необходимые фрагменты, которые далее обрабатывали ДНК-лигазой, и лигазной смесью трансформировали компетентные клетки Е. coli XL1 Blue. Трансформанты высевали на чашку с LB-агаром, содержащим 50 мкг/мл канамицина. Клоны, несущие рекомбинантные плазмиды со встроенным геном, отбирали методом ПЦР анализа ДНК отдельных колоний E.coli с праймерами на нуклеотидную последовательность первого экзона гена PDH арабидопсиса.The construction of a double-stranded suppressor in the vector pBi121 was carried out by triple ligation. Three fragments were assembled into the construct: the first exon of the proline dehydrogenase gene, the first exon of the PDH gene with a part of the first intron, and the plasmid pBi121 fragment containing the NPTII gene in the T region, the
Пример 2Example 2
Получение трансгенных растений, несущих конструкцию pBi-2EObtaining transgenic plants bearing the construction of pBi-2E
Полученная по примеру 1 конструкция pBi-2E, несущая последовательность гена PDH, была использована для прямой трансформации клеток Agrobacterium tumefaciens штамма AGLO известным способом, описанным в (Horsch R., Fry J., Hoffman N. et al. // Plant Molecular Biology Manual. Dordrecht. Kluwer Academic Publishers. 1988, P.A5/1-A5/9). Для агробактериальной трансформации в качестве исходных эксплантов использовали листья трехнедельных растений табака (Nicotiana tabacum) SR1. Отбор трансформантов проводили на питательной среде с добавлением 250 mM NaCl. На фиг.2 представлены результаты селекции листовых дисков табака, трансформированных конструкцией pBi-2E и контрольной pBi101, которая представляет базовый вектор, без целевого гена, гдеThe pBi-2E construct carrying the PDH gene sequence obtained in Example 1 was used for direct transformation of Agrobacterium tumefaciens cells of the AGLO strain by the known method described in (Horsch R., Fry J., Hoffman N. et al. // Plant Molecular Biology Manual Dordrecht. Kluwer Academic Publishers. 1988, P. A5 / 1-A5 / 9). For agrobacterial transformation, leaves of three-week tobacco plants (Nicotiana tabacum) SR1 were used as initial explants. Transformants were selected on culture medium supplemented with 250 mM NaCl. Figure 2 presents the results of the selection of leaf tobacco discs transformed with the construct pBi-2E and the control pBi101, which represents the base vector, without the target gene, where
А - трансформация конструкцией pBi101, отбор на канамицине;A - pBi101 construction transformation, selection on kanamycin;
Б - трансформация конструкцией pBi101, отбор на среде, содержащей 250 mM NaCl;B — transformation with the construction of pBi101, selection on a medium containing 250 mM NaCl;
В - трансформация pBi-2E, отбор на среде, содержащей 250 mM NaCl.B - pBi-2E transformation, selection on a medium containing 250 mM NaCl.
Листовые диски после агробактериальной трансформации были перенесены на среду Мурашиге и Скуга (МС) (Murasige Т., Skoog F. // Physiol. Plant. 1962, V.15, P.473-497), содержащую 250 mM NaCl. На фиг.2 В видно, что каллусообразование на листовых дисках с конструкцией pBi-2E на среде с 250 mM NaCl несколько угнеталось. Листовые диски с контрольной конструкцией pBi101 на среде с 250 mM NaCl (фиг.2Б) полностью некротизировались, а на среде с канамицином развивались нормально (фиг.2А).After agrobacterial transformation, leaf disks were transferred to Murashige and Skoog (MS) media (Murasige T., Skoog F. // Physiol. Plant. 1962, V.15, P.473-497) containing 250 mM NaCl. Figure 2B shows that callus formation on leaf disks with pBi-2E construction on a medium with 250 mM NaCl was somewhat inhibited. Leaf discs with the control design pBi101 on a medium with 250 mM NaCl (Fig. 2B) were completely necrotic, and on a medium with kanamycin they developed normally (Fig. 2A).
На фиг.3 представлена электрофореграмма ПЦР-анализа геномной ДНК проростков трансгенных растений на наличие встройки 35S промотора вируса мозаики цветной капусты с фрагментом гена PDH в антисмысловой ориентации. Нанесения по дорожкам: 1 - маркерная ДНК; 2 - вектор pBi-2E; 3 - нетрансгенный табак SR1; 4-12 - трансгенные табаки SR1. Из фиг.3 видно, что ПЦР-анализ с праймерами на нуклеотидную последовательность первого экзона PDH подтверждает наличие нуклеотидной последовательности PDH арабидопсиса в геномах отобранных растений.Figure 3 presents the electrophoregram of PCR analysis of the genomic DNA of transgenic plant seedlings for the presence of the 35S insert of the cauliflower mosaic virus promoter with a PDH gene fragment in the antisense orientation. Trace application: 1 - marker DNA; 2 - vector pBi-2E; 3 - non-transgenic tobacco SR1; 4-12 - transgenic tobaccos SR1. Figure 3 shows that PCR analysis with primers for the nucleotide sequence of the first exon of PDH confirms the presence of the PDH nucleotide sequence of Arabidopsis in the genomes of selected plants.
Трансформанты, несущие рекомбинантную плазмиду pBi-2E, были проанализированы на содержание свободного пролина в листовой ткани. Для измерения использовались растения одного возраста (2-3 недели), выращенные стерильно в условиях климатокамеры, листья отбирались приблизительно одного размера с одного уровня растений в каждом эксперименте. Содержание пролина в листовых экстрактах оценивалась по методу Бэйтса (Bates L.S., Waldren R.P., Teare I.D. // Plants and Soil. 1973. V.39. P.205-207) в микрограммах (мкг) свободного пролина на грамм сырой массы (гсм) образца. Результаты измерений приведены в таблице.Transformants carrying the recombinant plasmid pBi-2E were analyzed for the content of free proline in leaf tissue. For measurement, plants of the same age (2-3 weeks) were used, grown sterile under the conditions of a climatic chamber, leaves were selected from approximately the same size from one plant level in each experiment. The proline content in leaf extracts was estimated by the Bates method (Bates LS, Waldren RP, Teare ID // Plants and Soil. 1973. V.39. P.205-207) in micrograms (μg) of free proline per gram of wet weight (gsm) sample. The measurement results are shown in the table.
Из представленных в таблице данных видно, что полученные трансгенные растения табака, несущие рекомбинантную плазмиду pBi-2E, имеют повышенный в несколько раз уровень содержания пролина по сравнению с контрольными растениями.From the data presented in the table, it is seen that the obtained transgenic tobacco plants carrying the recombinant plasmid pBi-2E have a several times higher level of proline content compared to control plants.
Таким образом, способ позволяет получать трансгенные растения табака, несущие последовательность первого экзона гена PDH в прямой и обратной ориентациях, с повышенным содержанием пролина.Thus, the method allows to obtain transgenic tobacco plants bearing the sequence of the first exon of the PDH gene in direct and reverse orientations, with a high content of proline.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006136956/13A RU2324737C1 (en) | 2006-10-18 | 2006-10-18 | Process of obtaining transgene tobacco plants with increaed content of prolyl |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006136956/13A RU2324737C1 (en) | 2006-10-18 | 2006-10-18 | Process of obtaining transgene tobacco plants with increaed content of prolyl |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2324737C1 true RU2324737C1 (en) | 2008-05-20 |
Family
ID=39798821
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006136956/13A RU2324737C1 (en) | 2006-10-18 | 2006-10-18 | Process of obtaining transgene tobacco plants with increaed content of prolyl |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2324737C1 (en) |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2644238C2 (en) * | 2011-09-02 | 2018-02-08 | Филип Моррис Продактс С.А. | Isopropylmalate synthase from nicotiana tabacum and methods and its application |
RU2681497C2 (en) * | 2011-10-31 | 2019-03-06 | Филип Моррис Продактс С.А. | Modulating beta-damascenone in plants |
RU2689719C2 (en) * | 2011-09-02 | 2019-05-28 | Филип Моррис Продактс Эс.А | Nicotiana tabacum threonine synthase and related methods of use |
RU2721799C2 (en) * | 2014-09-26 | 2020-05-22 | Филип Моррис Продактс С.А. | Reduced content of tobacco-specific nitrosamines by changing the path of nitrate assimilation |
RU2733837C2 (en) * | 2014-05-08 | 2020-10-07 | Филип Моррис Продактс С.А. | Reduced nicotine conversion into nornicotine in plants |
RU2735254C2 (en) * | 2012-12-21 | 2020-10-29 | Филип Моррис Продактс С.А. | Reduced tobacco-specific nitrosamines in plants |
US10883114B2 (en) | 2015-09-09 | 2021-01-05 | Philip Morris Products S.A. | Plants with reduced asparagine content |
RU2756102C2 (en) * | 2014-07-18 | 2021-09-28 | Филип Моррис Продактс С.А. | Tobacco protease genes |
-
2006
- 2006-10-18 RU RU2006136956/13A patent/RU2324737C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
NANJO Т. ет al. FEBS LETTERS, 1999, v.461(3): 205-210. KIYOSUE Т. ет al. PLANT CELL, 1996, v.8(8):1323-35. * |
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2644238C2 (en) * | 2011-09-02 | 2018-02-08 | Филип Моррис Продактс С.А. | Isopropylmalate synthase from nicotiana tabacum and methods and its application |
RU2689719C2 (en) * | 2011-09-02 | 2019-05-28 | Филип Моррис Продактс Эс.А | Nicotiana tabacum threonine synthase and related methods of use |
RU2681497C2 (en) * | 2011-10-31 | 2019-03-06 | Филип Моррис Продактс С.А. | Modulating beta-damascenone in plants |
RU2735254C2 (en) * | 2012-12-21 | 2020-10-29 | Филип Моррис Продактс С.А. | Reduced tobacco-specific nitrosamines in plants |
RU2733837C2 (en) * | 2014-05-08 | 2020-10-07 | Филип Моррис Продактс С.А. | Reduced nicotine conversion into nornicotine in plants |
RU2756102C2 (en) * | 2014-07-18 | 2021-09-28 | Филип Моррис Продактс С.А. | Tobacco protease genes |
RU2721799C2 (en) * | 2014-09-26 | 2020-05-22 | Филип Моррис Продактс С.А. | Reduced content of tobacco-specific nitrosamines by changing the path of nitrate assimilation |
US11666082B2 (en) | 2014-09-26 | 2023-06-06 | Philip Morris Products S.A. | Reducing tobacco specific nitrosamines through alteration of the nitrate assimilation pathway |
US10883114B2 (en) | 2015-09-09 | 2021-01-05 | Philip Morris Products S.A. | Plants with reduced asparagine content |
RU2742725C2 (en) * | 2015-09-09 | 2021-02-10 | Филип Моррис Продактс С.А. | Plants with reduced asparagine content |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yin et al. | Evidence of multiple complex patterns of T-DNA integration into the rice genome | |
Trifonova et al. | Agrobacterium-mediated transgene delivery and integration into barley under a range of in vitro culture conditions | |
RU2324737C1 (en) | Process of obtaining transgene tobacco plants with increaed content of prolyl | |
Chan et al. | Agrobacterium-mediated production of transgenic rice plants expressing a chimeric α-amylase promoter/β-glucuronidase gene | |
Jaiwal et al. | Agrobacterium tumefaciens-mediated genetic transformation of mungbean (Vigna radiata L. Wilczek)—a recalcitrant grain legume | |
Joyce et al. | Selection system and co-cultivation medium are important determinants of Agrobacterium-mediated transformation of sugarcane | |
Atif et al. | Gene transfer in legumes | |
Komari et al. | Advances in cereal gene transfer | |
Dang et al. | An optimized Agrobacterium-mediated transformation for soybean for expression of binary insect resistance genes | |
Bakhsh et al. | Comparison of transformation efficiency of five Agrobacterium tumefaciens strains in Nicotiana Tabacum L. | |
Renou et al. | Recovery of transgenic chrysanthemum (Dendranthema grandiflora Tzvelev) after hygromycin resistance selection | |
Karthikeyan et al. | Agrobacterium-mediated transformation of indica rice cv. ADT 43 | |
US5073675A (en) | Method of introducing spectinomycin resistance into plants | |
Aida et al. | Efficient transgene expression in chrysanthemum, Dendranthema grandiflorum (Ramat.) Kitamura, by using the promoter of a gene for chrysanthemum chlorophyll-a/b-binding protein | |
Niu et al. | Factors affecting Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of peppermint | |
Mankin et al. | Disarming and sequencing of Agrobacterium rhizogenes strain K599 (NCPPB2659) plasmid pRi2659 | |
Gao et al. | Influence of bacterial density during preculture on Agrobacterium-mediated transformation of tomato | |
US20090210969A1 (en) | Antiporter gene from porteresia coarctata for conferring stress tolerance | |
JP5186076B2 (en) | Engineering plant senescence using the myb gene promoter and cytokinin biosynthesis genes | |
CA2657631C (en) | Use of multiple transformation enhancer sequences to improve plant transformation efficiency | |
Lee et al. | Development of transgenic tall fescue plants from mature seed-derived callus via Agrobacterium-mediated transformation | |
US6521458B1 (en) | Compositions and methods for improved plant transformation | |
Takatsu et al. | Transgene inactivation in Agrobacterium-mediated chrysanthemum (Dendranthema grandiflorum (Ramat.) Kitamura) transformants | |
Akutsu et al. | Transformation of the monocot Alstroemeria by Agrobacterium rhizogenes | |
RU2324736C1 (en) | Process of obtaining transgenic tobacco plants with increaed content of proline |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20131019 |