RU2000809C1 - Process for isolating pregnancy-associated alfa-macroglobuline and alfa-glycoprotein from blood plasma - Google Patents
Process for isolating pregnancy-associated alfa-macroglobuline and alfa-glycoprotein from blood plasmaInfo
- Publication number
- RU2000809C1 RU2000809C1 SU5004900A RU2000809C1 RU 2000809 C1 RU2000809 C1 RU 2000809C1 SU 5004900 A SU5004900 A SU 5004900A RU 2000809 C1 RU2000809 C1 RU 2000809C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- agarose
- alfa
- pregnancy
- blood plasma
- proteins
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Использование в биологии и медицине Сущность способа вначале провод т аффинную хроматографию на иминодиуксуснокислой агарозе со спейсером и элюируют с нее а -макрогпобулин, а затем несорбировавшийс на названной агарозе материал пропускают через иминодиуксуснокислую эгарозу без спейсера, элюируют с нее ассоциированный с беременностью а -гпикопротеин и дочищают его негативной иммуноаффинной хроматографией на 4-бета-оксиэтипсульфонип-2-аминоа низол-агарозе с иммобилизованными антителами против белков сыворотки крови мужчинUse in biology and medicine The essence of the method is first carried out by affinity chromatography on iminodiacetic acid agarose with a spacer and a-macrogobobulin is eluted from it, and then the material not adsorbed on said agarose is passed through iminodiacetic acid agarose without spacer; by its negative immunoaffinity chromatography on 4-beta-hydroxyethylsulfonip-2-amino-nizol-agarose with immobilized antibodies against serum proteins of men
Description
Изобретение относитс к биологической химии, а именно к биотехнологии, и может быть использовано в биологии и медицине . Ассоциированный с беременностью ал ьфа2-гликопротеин (АБГ) и альфаг-макроглобулин (МГ) вл ютс белками-гомологами , обладают способностью подавл ть активность протеиназ и мощным иммуномодулирующим действием.The invention relates to biological chemistry, in particular to biotechnology, and can be used in biology and medicine. Pregnancy-associated alpha-2-glycoprotein (ABH) and alpha-macroglobulin (MG) are homologous proteins, have the ability to suppress proteinase activity and potent immunomodulatory effects.
Цель изобретени - упрощение способа последовательного извлечени МГ и АБГ из плазмы крови беременных женщин путем сокращени количества этапов очистки и их общей продолжительности, а также получение белков высокой степени чистоты.The purpose of the invention is to simplify the method of sequential extraction of MG and ABH from the blood plasma of pregnant women by reducing the number of cleaning steps and their overall duration, as well as obtaining high purity proteins.
Способ осуществл ют следующим образом . На первом этапе очистки провод тс цинк-хелатна хроматографи на иминоди- уксуснокислой агароэе соспейсером, состо щем из 6 атомов углерода (малое предпри тие Эстар. ЭССР). АБГ совершенно не взаимодействует с этим гелем, тогда как весь МГ сорбируетс на нем. Элю- цию МГ провод т в услови х градиента рН 7,0-5,0. Его чистота после этого превышает 95 %, а выход составл ет 39 % (1,1 г из 1 л плазмы крови), что существенно выше, чем в способе-прототипе. Белки, свободно прошедшие через иминодиуксуснокислую ага- розу со спейсером, в том числе и АБГ без диализа пропускают через иминодиуксуснокислую агарозу без спейсера. Элюцию АБГ осуществл ют аналогично, как и МГ. Фракции, содержащие АБГ, без концентрировани пропускают через колонку 4-/3-ок- сиэтилсульфонил-2 -аминоанизолагарозы с иммобилизованными антителами против сыворотки крови мужчин. Заключительный выход АБГ, имеющего чистоту более 95 %, составл ют 30 % (0,18 г из 1 л плазмы крови), что существенно больше, чем в способе; плототипе,The method is carried out as follows. At the first stage of purification, zinc-chelate chromatography was carried out on an iminodiacetic acid agaroea with a co-spacer consisting of 6 carbon atoms (Estar, a small enterprise in the Estonian SSR). ABH does not interact with this gel at all, while all MG is adsorbed on it. MG elution was carried out under a pH gradient of 7.0-5.0. After that, its purity exceeds 95%, and the yield is 39% (1.1 g from 1 l of blood plasma), which is significantly higher than in the prototype method. Proteins that freely pass through iminodiacetic agarose with a spacer, including ABH without dialysis, are passed through iminodiacetic agarose without a spacer. Elution of ABH is carried out in the same way as MG. ABH-containing fractions were passed without concentration through a column of 4- / 3-hydroxyethylsulfonyl-2-aminoanisolagarose with immobilized anti-male serum antibodies. The final yield of ABH having a purity of more than 95% is 30% (0.18 g from 1 liter of blood plasma), which is significantly greater than in the method; plototype
Пример 1. В 100 мл плазмы крови беременных женщин добавл ют сухой хлористый натрий до концентрации 1 м и под- титровывают ее до рН 8.0. Затем нанос т плазму на колонку (2,6 см х 10 см), содержащую 50 мл иминодиуксуснокислой агарозы со спейсером (6 атомов углерода). Иминодиуксуснокислую агарозу предварительно пе- ревод т в цинк-форму, последовательно пропускают через нее 200 мл 0,05 М раствора трилона Б, 200 мл дистиллированной воды , 200 мл 0,05 М раствора сульфата цинка, 200 мл дистиллированной воды, 200 мл 0,02 М фосфатного буфера. рН 8,0, содержащего 1 М хлористого натри. Затем после внесени плазмы крови колонку отмывают стартовым буфером и провод т элюировзние в градиенте рН 7.0 -5 0 Дл этого испольтуютExample 1. Dry sodium chloride was added to 100 ml of blood plasma of pregnant women to a concentration of 1 m and it was titrated to pH 8.0. Plasma is then applied to a column (2.6 cm x 10 cm) containing 50 ml of iminodiacetic acid agarose with a spacer (6 carbon atoms). Iminodiacetic acid agarose is preliminarily converted to the zinc form, 200 ml of a 0.05 M solution of Trilon B, 200 ml of distilled water, 200 ml of a 0.05 M solution of zinc sulfate, 200 ml of distilled water, 200 ml 0 are passed successively through it. 02 M phosphate buffer. pH 8.0 containing 1 M sodium chloride. Then, after the introduction of blood plasma, the column is washed with the starting buffer and elution is carried out in a pH gradient of 7.0 -5 0.
0.02 М фосфатный буфер рН 7,0 содержащий 1 М хлористого натри и 0,02 М фосфат- но-лимоннокислый буфер, рН 5.0, а также содержащий 1 М хлористого натри . Суммарный объем обоих буферов равен 300 мл. Фракции объемом 5 мл определ ют с помощью ракетного иммуноэлектрофореза и затем их собирают. Концентрированные препарата МГ, как правило, не провод тс , поскольку белок снимаетс с иминодиуксуснокислой агарозы достаточно острым пиком.0.02 M phosphate buffer pH 7.0 containing 1 M sodium chloride and 0.02 M phosphate-citrate buffer, pH 5.0, as well as 1 M sodium chloride. The total volume of both buffers is 300 ml. 5 ml fractions were determined by missile immunoelectrophoresis and then collected. Concentrated MG preparations are generally not administered, since the protein is removed from the iminodiacetic acid agarose by a fairly sharp peak.
Белковый материал, не св занный со спеисерированной иминодиуксуснокислой агарозой, без диализа нанос т на колонку (2,6 см х 10 см), содержащую 50 мл иминодиуксуснокислой агарозы без спейсера(малое предпри тие Эстар. ЭССР), наход щуюс в цинк-форме и предварительно уравновешенную 0,02 М фосфатным буфером, рН 8,0 с 1 М хлористого натри . Примесные белки удал ют с гел стартовым буфером, затем провод т элюирование св завшихс с агарозой белков в градиенте рН 7,0-5,0 описанным способом. Фракции, содержащие АБГ, наход т с помощью ракетного иммуноэлектрофореза, сливают их и нанос т на колонну (1 см х 20 см), заполненную 14 мл 4-/ -оксиэтилсульфонил-2-амино- анизол-агарозы с присоединенными аффинноочищенными козьими антителами против белков сыворотки крови мужчин. Дл синтеза последнего сорбента используют смесь сывороток крови мужчин с низким уровнем АБГ. Белки из этой смеси присоедин ют к 4-fl оксиэтилсульфонил-2-аминоа- низол-агарозе путем диазотировани с помощью полученного сорбента извлекают антитела из козьей антисыворотки против всех белков сыворотки крови человека, данные антитела аммобилизуют на 4-/ -оксиэ- тилсульфонил-2- аминоанизол-агарозе путем диазотировэни .Protein material unrelated to the specialized iminodiacetic agarose is applied without dialysis to a column (2.6 cm x 10 cm) containing 50 ml of iminodiacetic agarose without a spacer (Estar, a small enterprise in the Estonian SSR), which is in zinc form and pre-equilibrated with 0.02 M phosphate buffer, pH 8.0 with 1 M sodium chloride. The impurity proteins were removed from the gel with start buffer, then elution of agarose-bound proteins was carried out in a pH gradient of 7.0-5.0 by the described method. Fractions containing ABG were found by rocket immunoelectrophoresis, poured and applied to a column (1 cm x 20 cm) filled with 14 ml of 4- / -oxyethylsulfonyl-2-amino-anisole-agarose with attached affinity-purified goat antibodies against proteins blood serum of men. For the synthesis of the last sorbent, a mixture of male blood serum with a low level of ABH is used. Proteins from this mixture are attached to 4-fl hydroxyethylsulfonyl-2-aminoanisole-agarose by diazotization using the obtained sorbent antibodies are removed from the goat antiserum against all human serum proteins, these antibodies are immobilized on 4- / -oxyethylsulfonyl-2 - aminoanisole agarose by diazotirovani.
Заключительный выход МГ после 10 экспериментов колебалс от 38 % до 42 %, в среднем 39 % (1,1 г из 1 л плазмы крови), а АБГ - от 28 % до 31 %. в среднем 30 % (0.18 г из 1 л плазмы крови). Дл оценки чистоты и натианости полученных препаратов АБГ и МГ использовали комплекс элект- рофоретических методов, различные варианты иммуноэлектрофореза. аминокислотный анализ, излучали реакции белков с различными ферментами. По данным электрофореза в градиенте пор полиакриламид- ного гел мол. м. МГ составл ет 720 КДа, АБГ 360 КДа. При исследовании полученных препаратов белков электрофорезом в поли- акриламидном геле в восстанавэливающихThe final MG release after 10 experiments ranged from 38% to 42%, on average 39% (1.1 g from 1 liter of blood plasma), and ABH from 28% to 31%. an average of 30% (0.18 g of 1 liter of blood plasma). A complex of electrophoretic methods and various types of immunoelectrophoresis were used to assess the purity and natianity of the obtained ABG and MG preparations. amino acid analysis, reactions of proteins with various enzymes were emitted. According to the data of electrophoresis in the pore gradient of a polyacrylamide gel mol. m. MG is 720 KDa, ABG 360 KDa. In the study of protein preparations obtained by polyacrylamide gel electrophoresis in reducing
услови х с додецилсульфатом натри определено , что мол. м. полипептидных цепей, как МГ так и АБГ равн етс 180 КДа, При окрашивании полиакриламидных гелей с помощью высокочувствительных методов, в частности импоегнирооани серебром,примесные белки в препаратах АБГ и МГ не обнаружены. При изоэлектрическом фокусировании в градиенте амфолитов в эгароз- ном гелеизоэлектрическа точка обоих белков находитс в зоне рН 4,7, что соответствует известным данным. В соотаетствии с ними наход тс также полученные характеристики аминокислотного и углеводного составов. Тестирование препаратов АБГ и МГ с помощью перекрестного иммуноэлек- трофореза показало, что выделенные белки имеют подвижность альфа2-глобулинов и не содержат примеси иных белков. Последние данные были получены при использовании гетерологических антисывороток (козьих, бараньих, кроличьих). Выделенные белки ингибировали протеолитическую активность плэзмина, тромбина, коллагеназы, трипсина и других протеиназ в соотношени- х, близких к эквимол рным, что свидетельствует об их высокой нативности. Многократна иммунизаци кроликов препаратами данных белков в течение 1 года продемонстрировала их высокую чистоту: после каждой реиммунизации кролики продуцировали моноспецифические антитела против указанных белков. При исследова-. нии методами перекрестного иммуноэлект- рофореза и иммунодиффузии препарата conditions with sodium dodecyl sulfate it is determined that mol. m of polypeptide chains, both MG and ABG, is 180 KDa. When staining polyacrylamide gels using highly sensitive methods, in particular impoegnioan silver, impurity proteins were not found in ABG and MG preparations. When the ampholytes have isoelectric focusing in an egarose gel-isoelectric point, the point of both proteins is in the pH zone 4.7, which corresponds to known data. In accordance with them are also found characteristics of amino acid and carbohydrate compositions. Testing of ABG and MG drugs using cross-sectional immunoelectrophoresis showed that the isolated proteins have alpha2-globulin mobility and do not contain impurities of other proteins. Recent data were obtained using heterological antisera (goat, ram, rabbit). The isolated proteins inhibited the proteolytic activity of plesmin, thrombin, collagenase, trypsin, and other proteinases in ratios close to equimolar, which indicates their high nativeness. Repeated immunization of rabbits with the preparations of these proteins during 1 year demonstrated their high purity: after each immunization, rabbits produced monospecific antibodies against these proteins. When exploring. research by methods of cross immunoelectrophoresis and immunodiffusion of the drug
АБГ и антисыворотки против МГ, а также препарата МГ и антисыворотки против АБГ кака -либо перекрестна реактивность не обнаружена. Последние результаты свидетельствуют об отсутствии какой-либо контаминации АБГ и МГ друг другом. Таким образом полученные данные указывают на то, что чистота АБГ и МГ превышает 95 % и их нативность практически не измен етс в ходе очистки.ABH and anti-MG antiserum, as well as MG drug and anti-ABH antiserum, did not show any cross-reactivity. Recent results indicate the absence of any contamination of ABH and MG with each other. Thus, the obtained data indicate that the purity of ABG and MG exceeds 95% and their nativeness remains practically unchanged during the purification.
П р и м е р 2. К 100 мл сыворотки ретроп- лацентарной крови (ретроплацентарна кровь.,- это кровь беременных женщин, котора вытекает свободно в процессе родов и может содержать небольшие примеси крови плода и околоплодных вод) добавл ют сухой хлористый натрий до концентрации 1 М и подтитровывают ее раствором трехза- мещенного фосфата натри до рН 8,0. Дальнейшие этапы очистки также аналогичны таковым в примере 1. Выход МГ и в 10 экспериментах колебалс от37 до43 %, веред- нем 39 % (1,1 г из 1л). выход АБГ от 29 % до 31 %, в среднем 30 % (0,18 г из 1 л). Весь перечисленный в примере 1 комплекс имму- нохимических и биохимических методов свидетельствовал о высокой нативности АБГ и МГ, а также о том. что их чистота превышала 95 %.Example 2. To 100 ml of serum of retro-placental blood (retro-placental blood., Is the blood of pregnant women, which flows freely during childbirth and may contain small impurities of the blood of the fetus and amniotic fluid), dry sodium chloride is added to concentration of 1 M and titrated with a solution of trisubstituted sodium phosphate to a pH of 8.0. The further purification steps are also similar to those in Example 1. The MG yield and in 10 experiments ranged from 37 to 43%, primarily 39% (1.1 g out of 1 liter). ABG yield from 29% to 31%, an average of 30% (0.18 g per 1 liter). The entire complex of immunochemical and biochemical methods listed in Example 1 testified to the high native ability of ABH and MG, as well as to that. that their purity exceeded 95%.
(56) Sand О and ect Characterlzarion of human pregnancy zone protein, Comparison with Ruman alpha2-macroglobulln IIJ. Blol. Chemistry.-1985.-Vol.260.-P.15723-15735.(56) Sand O and ect Characterlzarion of human pregnancy zone protein, Comparison with Ruman alpha2-macroglobulln IIJ. Blol. Chemistry.-1985.-Vol.260.-P.15723-15735.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5004900 RU2000809C1 (en) | 1991-08-01 | 1991-08-01 | Process for isolating pregnancy-associated alfa-macroglobuline and alfa-glycoprotein from blood plasma |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5004900 RU2000809C1 (en) | 1991-08-01 | 1991-08-01 | Process for isolating pregnancy-associated alfa-macroglobuline and alfa-glycoprotein from blood plasma |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2000809C1 true RU2000809C1 (en) | 1993-10-15 |
Family
ID=21586600
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU5004900 RU2000809C1 (en) | 1991-08-01 | 1991-08-01 | Process for isolating pregnancy-associated alfa-macroglobuline and alfa-glycoprotein from blood plasma |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2000809C1 (en) |
-
1991
- 1991-08-01 RU SU5004900 patent/RU2000809C1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
White et al. | The isolation and characterization of plasminogen activators (urokinase) from human urine | |
Nustad et al. | Purification of rat urinary kallikreins and their specific antibody | |
Hiller et al. | Biotin binding to avidin. Oligosaccharide side chain not required for ligand association | |
Goldsmith et al. | Adsorption protein of the bacteriophage fd: isolation, molecular properties, and location in the virus | |
Swingle et al. | Tricalcium phosphate as an adsorbent in the chromatography of proteins | |
Berggård | Studies on the plasma proteins in normal human urine | |
Laskowski | [2] Chymotrypsinogens and chymotrypsins | |
Manni et al. | The eighth component of human complement (C8): isolation, characterization, and hemolytic efficiency | |
NO176570C (en) | Protein material, inhibin, purification method thereof, antibody to inhibin, non-therapeutic inhibin / antibody preparations and use for diagnostic and analytical purposes | |
US4332717A (en) | Purification of human growth hormone | |
Trowbridge | Mitogenic properties of pea lectin and its chemical derivatives | |
STOFFEL et al. | Cell-Free Translation of Human Liver Apolipoprotein AI and All mRNA Processing of Primary Translation Products | |
Ohlsson | Isolation and partial characterization of two related trypsin binding α-macroglobulins of dog plasma | |
Goldwasser et al. | Further purification of sheep plasma erythropoietin | |
KR890001581A (en) | Tissue Factor Inhibitor | |
SHAPIRO et al. | Protein composition of rabbit oviducal fluid | |
Karn et al. | Immunological relationships and post-translational modifications of human salivary amylase (Amy1) and pancreatic amylase (Amy2) isozymes | |
Nisonoff et al. | Effect of hydrolysis by papain on the combining sites of an antibody | |
Lester et al. | A postsynthetic modification of human α-fetoprotein controls its immunosuppressive potency | |
RU2000809C1 (en) | Process for isolating pregnancy-associated alfa-macroglobuline and alfa-glycoprotein from blood plasma | |
Mandel | Electrophoretic studies of saliva | |
Ishimoda-Takagi | Immunological purification of sea urchin egg tropomyosin | |
Jones et al. | Purification of C8 and C9 from rat serum | |
Spiegelberg | γD immunoglobulin | |
Hardwicke et al. | Human α1-glycoproteins Separation from pathological urine and examination by immunological and electrophoretic methods |