JPH0356425A - 制癌性組成物 - Google Patents
制癌性組成物Info
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- JPH0356425A JPH0356425A JP1190964A JP19096489A JPH0356425A JP H0356425 A JPH0356425 A JP H0356425A JP 1190964 A JP1190964 A JP 1190964A JP 19096489 A JP19096489 A JP 19096489A JP H0356425 A JPH0356425 A JP H0356425A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、β配位を有するN−アセチルノイラミン酸に
対して特異性を有するモノクロナール抗体を有効成分と
して含む制癌性組戊物に関する。
対して特異性を有するモノクロナール抗体を有効成分と
して含む制癌性組戊物に関する。
1975年にケーラーほか( K6hlor andM
illstein )は均一な特異性及び性質を有する
抗体のはり無限量の生或を可能にする雑種細胞(ハイブ
リドーマ)を用いる単クa−ン性抗体を製造する方法を
導入した。
illstein )は均一な特異性及び性質を有する
抗体のはり無限量の生或を可能にする雑種細胞(ハイブ
リドーマ)を用いる単クa−ン性抗体を製造する方法を
導入した。
抗体は、抗原として知られる他の分子との桔合およびそ
れを認識する能力を有するタンパク質である.単クロー
ン性抗体は他の抗体と異ならないが、しかしそれらはそ
の性質が非常に均一であり、ただ1種の抗原または抗原
決定基を認識する。この様な単クローン性抗体およびハ
イブリドーマを生或させる多くの技術は、「単クローン
性ハイブリドーマ抗体:技術および適用(Monocl
onal Hybridoma Antibodies
: Techniques and Applic
aLions) J ( ハレル( John G
. Hurre目)編、1983)により証明されるよ
うに今日普通である。
れを認識する能力を有するタンパク質である.単クロー
ン性抗体は他の抗体と異ならないが、しかしそれらはそ
の性質が非常に均一であり、ただ1種の抗原または抗原
決定基を認識する。この様な単クローン性抗体およびハ
イブリドーマを生或させる多くの技術は、「単クローン
性ハイブリドーマ抗体:技術および適用(Monocl
onal Hybridoma Antibodies
: Techniques and Applic
aLions) J ( ハレル( John G
. Hurre目)編、1983)により証明されるよ
うに今日普通である。
一方、N−アセチルノイラミン酸は複合糖質の糖鎖末端
に存在し、種々の重要な生物学的機能を担っている事が
知られている.近年、悪性腫瘍にβ配位を有するN−ア
セチルノイラミン酸を含む新規な糖鎖性癌抗原の存在が
示唆されその意義が注目されている. したがって、β配位N−アセチルノイラミン酸に対して
特異性を有するモノクロナール抗体を含む組成物が、癌
治療等の目的から期待されていた.これら複合糖質に対
するモノクロナール抗体のうち、これまでにN−アセチ
ルノイラミン酸を含む部位をエピトープとするモノクロ
ーナル抗体が多く得られているが、これらはいずれもα
配位を有するN−アセチルノイラミン酸と反応するもの
のβ配位を有する.N−アセチルノイラミン酸と反応し
ないので、これらはいずれもβ配位を有するN−アセチ
ルノイラミン酸をF! !Ii結合する能力を持たず、
癌治療の目的で使用することはできなかった. 〔発明が解決しようとする課題〕 したがって本発明の目的は、β配位N−アセチルノイラ
ミン酸をエピトーブ(抗原決定基)とするモノクロナー
ル抗体を有効成分として含む制癌性組威物を提供するこ
とにある. (問題点を解決するための手段〕 本発明者らは、上記問題点に鑑み、β配位のシアル酸化
合物を化学合成し、これを免疫原としてモノクロナール
抗体を作成し、該モノクロナール抗体が癌細胞に対して
特異的に反応し、正常細胞とは反応しないことを明らか
にし、本発明を完戒するに至った。
に存在し、種々の重要な生物学的機能を担っている事が
知られている.近年、悪性腫瘍にβ配位を有するN−ア
セチルノイラミン酸を含む新規な糖鎖性癌抗原の存在が
示唆されその意義が注目されている. したがって、β配位N−アセチルノイラミン酸に対して
特異性を有するモノクロナール抗体を含む組成物が、癌
治療等の目的から期待されていた.これら複合糖質に対
するモノクロナール抗体のうち、これまでにN−アセチ
ルノイラミン酸を含む部位をエピトープとするモノクロ
ーナル抗体が多く得られているが、これらはいずれもα
配位を有するN−アセチルノイラミン酸と反応するもの
のβ配位を有する.N−アセチルノイラミン酸と反応し
ないので、これらはいずれもβ配位を有するN−アセチ
ルノイラミン酸をF! !Ii結合する能力を持たず、
癌治療の目的で使用することはできなかった. 〔発明が解決しようとする課題〕 したがって本発明の目的は、β配位N−アセチルノイラ
ミン酸をエピトーブ(抗原決定基)とするモノクロナー
ル抗体を有効成分として含む制癌性組威物を提供するこ
とにある. (問題点を解決するための手段〕 本発明者らは、上記問題点に鑑み、β配位のシアル酸化
合物を化学合成し、これを免疫原としてモノクロナール
抗体を作成し、該モノクロナール抗体が癌細胞に対して
特異的に反応し、正常細胞とは反応しないことを明らか
にし、本発明を完戒するに至った。
すなわち、本発明は、エピトープ(抗原決定基)として
β配位を有するN−アセチルノイラミン酸に対して特異
性を有するモノクロナール抗体を有効戒分として含む制
癌性m戒物を提供するものである。
β配位を有するN−アセチルノイラミン酸に対して特異
性を有するモノクロナール抗体を有効戒分として含む制
癌性m戒物を提供するものである。
本発明についてさらに詳細に説明する。
本発明の組戒物に含まれるモノクロナール抗体を産生ず
るハイブリドーマは、ケーラー等の方法、すなわち、抗
原を動物に免疫して得られるB細胞(リンパ球)と骨髄
腫細胞とを細胞融合させることにより調製される。ここ
で、本発明のMi戊物に含まれるモノクローナル抗体を
作成するための「抗原」としては、β配位を有するN−
アセチルノイラミン″酸誘導体である, 以下、それらの化合物の具体例を挙げる。
るハイブリドーマは、ケーラー等の方法、すなわち、抗
原を動物に免疫して得られるB細胞(リンパ球)と骨髄
腫細胞とを細胞融合させることにより調製される。ここ
で、本発明のMi戊物に含まれるモノクローナル抗体を
作成するための「抗原」としては、β配位を有するN−
アセチルノイラミン″酸誘導体である, 以下、それらの化合物の具体例を挙げる。
丑Δど肘
一鳳ニュL二え−
(B)
(C)
次に本発明の組底物に含まれるモノクローナル抗体に抗
原特異性を示さないα配位を有するN−アセチルノイラ
ミン酸誘導体の具体例を以下に示す. (H) 0H (J) 0H υ目 該ハイブリドーマから産生されるモノクロナール抗体は
上記β配位のシアル酸をエピトープ(抗原決定基)とし
て認識し、特異的に反応する。したがって、該ハイブリ
ドーマから産生されるモノクロナール抗体はβ配位を有
するN−アセチルノイラミン酸およびその誘導体であれ
ばいずれのものでも高い特異性を有する. まず、上記した抗原をマウスの筋肉、皮下、腹腔内に免
疫する。この免疫の際、アジュバント、すなわち免疫増
強剤としては、不完全アジェバントまたは完全アジュバ
ントのいずれも使用でき、例えば、油、乳化剤、結核死
菌、サルモネラ死菌およびこれらの混合物、好ましくは
サルモネラ・ミネソタ死菌が使用できる. 次に、上記で得られたB細胞とミエローマ細胞とを細胞
融合する。
原特異性を示さないα配位を有するN−アセチルノイラ
ミン酸誘導体の具体例を以下に示す. (H) 0H (J) 0H υ目 該ハイブリドーマから産生されるモノクロナール抗体は
上記β配位のシアル酸をエピトープ(抗原決定基)とし
て認識し、特異的に反応する。したがって、該ハイブリ
ドーマから産生されるモノクロナール抗体はβ配位を有
するN−アセチルノイラミン酸およびその誘導体であれ
ばいずれのものでも高い特異性を有する. まず、上記した抗原をマウスの筋肉、皮下、腹腔内に免
疫する。この免疫の際、アジュバント、すなわち免疫増
強剤としては、不完全アジェバントまたは完全アジュバ
ントのいずれも使用でき、例えば、油、乳化剤、結核死
菌、サルモネラ死菌およびこれらの混合物、好ましくは
サルモネラ・ミネソタ死菌が使用できる. 次に、上記で得られたB細胞とミエローマ細胞とを細胞
融合する。
ここで、融合剤としては、ポリエチレングリコール、H
VJ等が使用でき、好ましくはポリエチレングリコール
4000である. また、培養液としては、ハイブリドーマ細胞とミエロー
マ細胞とを選択するためHAT培地を使用するのが好ま
しい。さらに、得られたハイブリドーマをクローニング
?去、例えばメチルセルロース法、軟アガロース法、ま
たは限界希釈法を用いて単一クローンを分離する。
VJ等が使用でき、好ましくはポリエチレングリコール
4000である. また、培養液としては、ハイブリドーマ細胞とミエロー
マ細胞とを選択するためHAT培地を使用するのが好ま
しい。さらに、得られたハイブリドーマをクローニング
?去、例えばメチルセルロース法、軟アガロース法、ま
たは限界希釈法を用いて単一クローンを分離する。
かくして得られたモノクロナール抗体産生ハイプリドー
マについて、常法にて抗体価をチェノクし、抗体価の大
きいハイプリドーマを選択して保存する.=亥ハイフ′
リドーマはアメリカンタイフ゜カルチャー コレクショ
ンに寄託されており (受託番号HB9619 AT
CC)、何人も入手可能である。
マについて、常法にて抗体価をチェノクし、抗体価の大
きいハイプリドーマを選択して保存する.=亥ハイフ′
リドーマはアメリカンタイフ゜カルチャー コレクショ
ンに寄託されており (受託番号HB9619 AT
CC)、何人も入手可能である。
この様にして得られたモノクローナル抗体は、癌細胞を
抗原として認識することができ、その結果制癌作用を有
する。癌細胞と該モノクローナル抗体の反応は癌細胞、
例えばPC−10(肺癌由来の可移植性腫瘍株’) 、
YTS−1 (ヒト膀胱癌)等を用いたEL I S
A法(酵素免疫測定法)、抗体依存性、細胞障害試験、
免疫吸着試験等により明らかにされた。
抗原として認識することができ、その結果制癌作用を有
する。癌細胞と該モノクローナル抗体の反応は癌細胞、
例えばPC−10(肺癌由来の可移植性腫瘍株’) 、
YTS−1 (ヒト膀胱癌)等を用いたEL I S
A法(酵素免疫測定法)、抗体依存性、細胞障害試験、
免疫吸着試験等により明らかにされた。
本発明の制癌性組戒物は上記のモノクローナル抗体を有
効成分として含む。該モノクローナル抗体を乾燥粉末状
とした後、種々の添加剤、例えばpH調節剤、キレート
剤、安定剤、溶解補助剤等を加えて本発明の組成物を得
てもよいが、これらを添加した該モノクローナル抗体溶
液を凍結乾燥等の手段により粉末状の組成物としてもよ
い。これらの添加剤は通常20〜90重量%で含まれる
.本発明の制癌剤組成物を癌治療の目的で患者に投与す
るには、動脈内、静脈内注射、筋肉内、皮下注射、及び
点滴による全身投与の他、癌Mi織内あるいはその近傍
に局所投与してもよい。
効成分として含む。該モノクローナル抗体を乾燥粉末状
とした後、種々の添加剤、例えばpH調節剤、キレート
剤、安定剤、溶解補助剤等を加えて本発明の組成物を得
てもよいが、これらを添加した該モノクローナル抗体溶
液を凍結乾燥等の手段により粉末状の組成物としてもよ
い。これらの添加剤は通常20〜90重量%で含まれる
.本発明の制癌剤組成物を癌治療の目的で患者に投与す
るには、動脈内、静脈内注射、筋肉内、皮下注射、及び
点滴による全身投与の他、癌Mi織内あるいはその近傍
に局所投与してもよい。
本組成物は胃癌、肺癌等の固型癌の他、白血病等の血液
癌にも有効である。投与量は投与経路、治療目的とする
癌の種類により異なるが、該モノクローナル抗体として
1回0. 1〜500■、1日0. 1〜2000■で
ある. (発明の効果) 本発明の制癌性U或物に含まれるモノクローナル抗体は
、β配位N−アセチルノイラミン酸に特異的に反応する
ことができるので、癌細胞に対して極めて特異的に集合
して制癌作用を発揮することができる。又、他の制癌剤
等と結合させて夕一ゲソティング療法に利用することも
可能である。
癌にも有効である。投与量は投与経路、治療目的とする
癌の種類により異なるが、該モノクローナル抗体として
1回0. 1〜500■、1日0. 1〜2000■で
ある. (発明の効果) 本発明の制癌性U或物に含まれるモノクローナル抗体は
、β配位N−アセチルノイラミン酸に特異的に反応する
ことができるので、癌細胞に対して極めて特異的に集合
して制癌作用を発揮することができる。又、他の制癌剤
等と結合させて夕一ゲソティング療法に利用することも
可能である。
参考例
(11ヒム (A)の合 法
3−0−(メチル(5−アセタシド−4.78,9−テ
トラー0−アセチルー3.5−ジデオキシーβ−D−グ
リセローD−ガラクトー2−ノ二二ロピラノシル)オネ
ート)−1.2−ジー○−テトラデシルーSn−グリセ
ロールをメタノールに溶解後、室温下IN一水酸化ナト
リウムで加水分解した.得られた反応生戒物をアンバー
ライトにて中和後、逆相カラムクロマトグラフィーによ
り精製を行い化合物(A)を得て免疫原とした。(特開
昭59−164798号参照) (2)大狡勉貰 5匹のメスの6週令Balb/cマウスを空調室にて7
日間飼育したものを実験に使用した。
トラー0−アセチルー3.5−ジデオキシーβ−D−グ
リセローD−ガラクトー2−ノ二二ロピラノシル)オネ
ート)−1.2−ジー○−テトラデシルーSn−グリセ
ロールをメタノールに溶解後、室温下IN一水酸化ナト
リウムで加水分解した.得られた反応生戒物をアンバー
ライトにて中和後、逆相カラムクロマトグラフィーによ
り精製を行い化合物(A)を得て免疫原とした。(特開
昭59−164798号参照) (2)大狡勉貰 5匹のメスの6週令Balb/cマウスを空調室にて7
日間飼育したものを実験に使用した。
(3)五見五艷四U乳裂
化合物(A)1■とアジュバントとして酢酸処理したサ
ルモネラ・ミネソタ(Salmonel lamine
sota) R 5 9 5 4 mgとをリン酸
緩iJi生理食塩水(PBS (−) ) l に
て混合して抗原冫容冫夜とした。
ルモネラ・ミネソタ(Salmonel lamine
sota) R 5 9 5 4 mgとをリン酸
緩iJi生理食塩水(PBS (−) ) l に
て混合して抗原冫容冫夜とした。
(4)培 地
培地:ニノスイRPMI1640を使用した。
使用時にペニシリンGカリウム1 0 0 U/ストレ
プ1−マイシン硫酸塩tmg力価/ 、ヒ゛ルビン酸ナ
1・リウム1mM、牛胎児血清(Fl3S)を10%と
ずる様添加した。
プ1−マイシン硫酸塩tmg力価/ 、ヒ゛ルビン酸ナ
1・リウム1mM、牛胎児血清(Fl3S)を10%と
ずる様添加した。
HAT培地:チξジン0. 0 3 8 8 gとヒボ
キサンチン0. 1 3 6 1 gとを蒸留水100
に加熱融解し、100倍濃度の保存溶液とし−20
℃で保存した。同様に0.0176gのアミノプテリン
を蒸留水100 に少量のIN水酸化ナトリウム水溶
液を加えて溶かし、これをRP旧1640培地にて10
培に希釈し、100倍濃度の保存液として−20’Cで
遮光して保存した。
キサンチン0. 1 3 6 1 gとを蒸留水100
に加熱融解し、100倍濃度の保存溶液とし−20
℃で保存した。同様に0.0176gのアミノプテリン
を蒸留水100 に少量のIN水酸化ナトリウム水溶
液を加えて溶かし、これをRP旧1640培地にて10
培に希釈し、100倍濃度の保存液として−20’Cで
遮光して保存した。
使用時には、10%FBSRPM+ 1 6 4 0培
地にそれぞれ1/100量ずつ加え、HAT培地とした
。
地にそれぞれ1/100量ずつ加え、HAT培地とした
。
また、HT培地としては、チミジンおよびピボキサンチ
ン保存液のみをl/looffi加え使用した. 《5》葺豊胆 細胞融合を行う際の親細胞としては、Balb/Cマウ
ス由来のミエローマ細胞であるX63^g 8−6.5
.3細胞を使用した。この細胞をlO%FBS添加RP
MI 1640培地により継代を行い、培地に6−チ
オグアニンを3μg/の濃度となる様に加える事により
突然変異体の出現を阻止した。
ン保存液のみをl/looffi加え使用した. 《5》葺豊胆 細胞融合を行う際の親細胞としては、Balb/Cマウ
ス由来のミエローマ細胞であるX63^g 8−6.5
.3細胞を使用した。この細胞をlO%FBS添加RP
MI 1640培地により継代を行い、培地に6−チ
オグアニンを3μg/の濃度となる様に加える事により
突然変異体の出現を阻止した。
(実施例)
(イ)ハイブリドーマの製造
(1)免炎広
メスの6週令Balb/cマウスを、免疫原として化合
物(A)1■とアジュバントとしてサルモネラ・ミネソ
タ4■とをリン酸緩衝生理食塩水(PBS (−) 、
Ca ..Mgを除いた)1mlにて混合し、適宜希釈
したのち、前記マウスの腹腔内に初日5μg、12日目
10μg、16日目10μg、26日目15μg,35
日目15μgの免疫スケジュールで免疫した。3回目の
免疫後、牌細胞リンパ球をマウスから取り出し、次に単
一細胞の懸濁液をつくった。
物(A)1■とアジュバントとしてサルモネラ・ミネソ
タ4■とをリン酸緩衝生理食塩水(PBS (−) 、
Ca ..Mgを除いた)1mlにて混合し、適宜希釈
したのち、前記マウスの腹腔内に初日5μg、12日目
10μg、16日目10μg、26日目15μg,35
日目15μgの免疫スケジュールで免疫した。3回目の
免疫後、牌細胞リンパ球をマウスから取り出し、次に単
一細胞の懸濁液をつくった。
(2)旦艷紋金広
上記で得られた牌細胞リンパ球と前記親細胞のマウスミ
エローマ細胞との細胞融合をケーラーおよびミルシュタ
イン( K6hlerおよびMilstein)の方法
に従って実施した。すなわち、最終免疫してから3日後
にlOs個の牌細胞リンパ球を、培地中で50%のポリ
エチレングリコール(PEG4000)の存在下で、1
0’個の骨髄腫細胞と融合した。
エローマ細胞との細胞融合をケーラーおよびミルシュタ
イン( K6hlerおよびMilstein)の方法
に従って実施した。すなわち、最終免疫してから3日後
にlOs個の牌細胞リンパ球を、培地中で50%のポリ
エチレングリコール(PEG4000)の存在下で、1
0’個の骨髄腫細胞と融合した。
(3)ハイブリドーマの および
細胞融合後、得られたハイブリドーマ細胞をHAT保存
液及び10%FBSを含有するRPMI−1640培地
中で15日間培養した。
液及び10%FBSを含有するRPMI−1640培地
中で15日間培養した。
15日間培養した後、この培養液の上清を酵素抗体法を
用いて化合物(A)に対する抗体産生についてスクリー
ニングした。
用いて化合物(A)に対する抗体産生についてスクリー
ニングした。
伍
(11酵素抗体法(ELISA法)
96穴平底プレート(ファルコン社製)をエタノールで
前処理して実験に使用した。濃度2%としたN−アセチ
ルノイラミン酸誘導体のエタノール溶岐50μlを各プ
レートに分注し華発させたj麦、0.2%カゼインpB
s (−z容冫反200μlを加え2時間室温に放置し
た。溶液を吸引除去後、一次抗体としてハイブリドーマ
培養上清を50μl加え室温に1時間放置した。
前処理して実験に使用した。濃度2%としたN−アセチ
ルノイラミン酸誘導体のエタノール溶岐50μlを各プ
レートに分注し華発させたj麦、0.2%カゼインpB
s (−z容冫反200μlを加え2時間室温に放置し
た。溶液を吸引除去後、一次抗体としてハイブリドーマ
培養上清を50μl加え室温に1時間放置した。
同様にしてプレートから一次抗体を除きPBS(−1/
8液150μlを加え3回ウェルを洗浄した後に0.
2%カゼインPBS(−)瘤液200μlを加え30分
間放置した。この溶液を除いた後に0,2%カゼインP
BS (−)にて至i!!濃度に希釈した2次抗体50
,cl!を加え室温で1時間30分放置した。一次抗体
と同様二二PBS(=)で3回ウェルを7先浄し反応}
容液100μeをウェルに注ぎ暗所にて反応させた。反
応冷c夜はクエン酸−リン酸緩衝M(p}I=5)にオ
ルトフェニレンジアミン、過酸化水素水の最P:?75
度が0.4■/ 、0.01%となる様調製し実験
に使用した。反応は8N硫酸を30μe加えて停止させ
、490nmの吸収波長にて比色測定を行った。2次抗
体としては西洋ワサビペルオキシダーゼ(H R P)
標識ヤギ抗マウスIg G、M,A抗体を使用した。
8液150μlを加え3回ウェルを洗浄した後に0.
2%カゼインPBS(−)瘤液200μlを加え30分
間放置した。この溶液を除いた後に0,2%カゼインP
BS (−)にて至i!!濃度に希釈した2次抗体50
,cl!を加え室温で1時間30分放置した。一次抗体
と同様二二PBS(=)で3回ウェルを7先浄し反応}
容液100μeをウェルに注ぎ暗所にて反応させた。反
応冷c夜はクエン酸−リン酸緩衝M(p}I=5)にオ
ルトフェニレンジアミン、過酸化水素水の最P:?75
度が0.4■/ 、0.01%となる様調製し実験
に使用した。反応は8N硫酸を30μe加えて停止させ
、490nmの吸収波長にて比色測定を行った。2次抗
体としては西洋ワサビペルオキシダーゼ(H R P)
標識ヤギ抗マウスIg G、M,A抗体を使用した。
この方法により、β配位を有する化合物A〜Fおよびα
配位を有する化合物H−Jについて調べ、第l図〜第3
図の結果を得た。
配位を有する化合物H−Jについて調べ、第l図〜第3
図の結果を得た。
第1図および第2図はそれぞれβ配位を有するN−アセ
チルノイラミン酸を含有する化合物を抗原として使用し
、抗化合物(A)抗体との交叉反応について調べたもの
である。
チルノイラミン酸を含有する化合物を抗原として使用し
、抗化合物(A)抗体との交叉反応について調べたもの
である。
この結果からβ配位を有する化合物はすべて陽性である
ことが判る。
ことが判る。
また第3図はα配位を有するN−アセチルノイラミン酸
を含有する化合物を抗原として使用し、同様に交叉反応
性について調べたものである。
を含有する化合物を抗原として使用し、同様に交叉反応
性について調べたものである。
この結果からα配位を有する化合物はすべて陰性である
ことが判る。
ことが判る。
(ハ)制癌性組成物の調製
上記の様にして得られたハイブリドーマを培養後B A
L B/Cマウス腹腔に移植し、腹水を採取した。そ
の腹水から該モノクローナル抗体をカラムクロマトグラ
フィーで単離精製した。
L B/Cマウス腹腔に移植し、腹水を採取した。そ
の腹水から該モノクローナル抗体をカラムクロマトグラ
フィーで単離精製した。
精製されたモノクローナル抗体を10mg/s+1とな
る様にPBSに溶解し本発明の制癌性組或物を得た。
る様にPBSに溶解し本発明の制癌性組或物を得た。
(二〉癌細胞を抗原としたELISA法96大のマイク
ロプレートに1.OX10’/ウエルの細胞をコートし
、RPMI 1640+ECS 1 0%培地中で2
日間培養した。その後PBS (−)で2回ウエルの洗
浄を行った。
ロプレートに1.OX10’/ウエルの細胞をコートし
、RPMI 1640+ECS 1 0%培地中で2
日間培養した。その後PBS (−)で2回ウエルの洗
浄を行った。
0.25%グルタルアルデヒド(PBS (−)中)を
100ml/ウエルで添加し、室温で2時間処理した。
100ml/ウエルで添加し、室温で2時間処理した。
PBS (−)で2回洗浄した後、0.2%カゼインー
PBS(−)を200μl/ウエル加え、4℃でl晩処
理した。上記の抗体をio−tohの10倍希釈を行な
い50μl/ウエルで添加し、37℃で1時間インキユ
ベートした。その後0.2%力ゼイン−PBS (−)
で3回洗浄した。ベルオキシダーゼ標識2次抗体(ヤギ
抗マウスI gG,M.A)を2000倍に希釈し、5
0μl/ウエルで添加し1時間インキユヘートした。そ
の後0.2%力ゼインーPBS (−)で3回洗浄した
。基質溶液(o−フエニレンジアミン4 0 0 μg
/ml, 0. 0 1%H20,、クエン酸緩衝液中
:p}l=5.0)を100μfl/ウエルで添加し、
5分間反応後4 N LSD4を加えて反応を止め、4
95nmにおけるODを測定した。
PBS(−)を200μl/ウエル加え、4℃でl晩処
理した。上記の抗体をio−tohの10倍希釈を行な
い50μl/ウエルで添加し、37℃で1時間インキユ
ベートした。その後0.2%力ゼイン−PBS (−)
で3回洗浄した。ベルオキシダーゼ標識2次抗体(ヤギ
抗マウスI gG,M.A)を2000倍に希釈し、5
0μl/ウエルで添加し1時間インキユヘートした。そ
の後0.2%力ゼインーPBS (−)で3回洗浄した
。基質溶液(o−フエニレンジアミン4 0 0 μg
/ml, 0. 0 1%H20,、クエン酸緩衝液中
:p}l=5.0)を100μfl/ウエルで添加し、
5分間反応後4 N LSD4を加えて反応を止め、4
95nmにおけるODを測定した。
抗体価の判定方法は、まず細胞(+〉及び(一)のウエ
ル毎に一次抗体なしのウエルを設定しくバックグラウン
ド〉、このバックグラウンドを細胞(+)、(−)ごと
にそれぞれ全ウエルから差し引いた。その後に、細胞(
+)ウエルー細胞(一)ウエルの値が0. 1以上を有
意差とみなし、この有意差を持つ最大希釈倍率を当該細
胞に対する抗体価とした。結果を第4図及び第5図に示
す。本結果から該抗体が癌細胞と反応することが明らか
である。
ル毎に一次抗体なしのウエルを設定しくバックグラウン
ド〉、このバックグラウンドを細胞(+)、(−)ごと
にそれぞれ全ウエルから差し引いた。その後に、細胞(
+)ウエルー細胞(一)ウエルの値が0. 1以上を有
意差とみなし、この有意差を持つ最大希釈倍率を当該細
胞に対する抗体価とした。結果を第4図及び第5図に示
す。本結果から該抗体が癌細胞と反応することが明らか
である。
(ホ)正常細胞との反応性
96穴U底プレート上で、上記モノクローナル抗体を1
0〜312500倍に5段階希釈した。各希釈抗体の入
った上記のウェルに正常ヒト赤血球0.5%(v/v)
(PBS溶液)を添加した。4℃で1時間静置した後、
肉眼にて凝集性の反定を行った。結果を第1表に示す。
0〜312500倍に5段階希釈した。各希釈抗体の入
った上記のウェルに正常ヒト赤血球0.5%(v/v)
(PBS溶液)を添加した。4℃で1時間静置した後、
肉眼にて凝集性の反定を行った。結果を第1表に示す。
本モノクローナル抗体はいずれもlO倍希釈した場合に
各細胞との親和性を示さなかった。この結果より本モノ
クローナル抗体は癌細胞に特異的に反応し、正常細胞に
は反応しないことがわかった。
各細胞との親和性を示さなかった。この結果より本モノ
クローナル抗体は癌細胞に特異的に反応し、正常細胞に
は反応しないことがわかった。
第1表
第l図〜第3図は酵素抗体法によるβ配位N一アセチル
ノイラミン酸各種誘導体との交叉反応を示し、第4図は
本発明の制癌性組戊物に含まれる抗体と癌細胞pc−t
oの反応を示し、第5図は 同様に癌細胞YTS−1との反応を示す。 第 1 図 (u9) O,D 第2図
ノイラミン酸各種誘導体との交叉反応を示し、第4図は
本発明の制癌性組戊物に含まれる抗体と癌細胞pc−t
oの反応を示し、第5図は 同様に癌細胞YTS−1との反応を示す。 第 1 図 (u9) O,D 第2図
Claims (1)
- エピトーブ(抗原決定基)としてβ配位を有するN−ア
セチルノイラミン酸に対して特異性を有するモノクロナ
ール抗体を有効成分として含む制癌性組成物。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1190964A JPH0356425A (ja) | 1989-07-24 | 1989-07-24 | 制癌性組成物 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1190964A JPH0356425A (ja) | 1989-07-24 | 1989-07-24 | 制癌性組成物 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0356425A true JPH0356425A (ja) | 1991-03-12 |
Family
ID=16266605
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1190964A Pending JPH0356425A (ja) | 1989-07-24 | 1989-07-24 | 制癌性組成物 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0356425A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62248500A (ja) * | 1986-04-22 | 1987-10-29 | Kanto Kagaku Kk | 酵素活性測定用試薬 |
US7785892B2 (en) | 2005-05-12 | 2010-08-31 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Method of determining iron concentration |
-
1989
- 1989-07-24 JP JP1190964A patent/JPH0356425A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62248500A (ja) * | 1986-04-22 | 1987-10-29 | Kanto Kagaku Kk | 酵素活性測定用試薬 |
JPH0612998B2 (ja) * | 1986-04-22 | 1994-02-23 | 関東化学株式会社 | 酵素活性測定用試薬 |
US7785892B2 (en) | 2005-05-12 | 2010-08-31 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Method of determining iron concentration |
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